JPWO2006106599A1 - 細胞外ドメインシェディングの異常亢進に起因する疾患の予防及び/又は治療のための医薬 - Google Patents
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Abstract
Description
従って、炎症性サイトカイン又は増殖因子の膜結合型前駆体のシェディングを標的とする治療法の確立のために、シェディング誘導の経路上で、TACE又はMMP等に代わる効果的な標的の発見が求められている。
本発明のさらに好ましい態様によれば、細胞外ドメインシェディングの異常亢進に起因する疾患が炎症性疾患である上記のいずれかの医薬、nardilysin阻害剤がnardilysinの発現を阻害する物質を含む上記のいずれかの医薬、及び阻害がRNAiによる阻害である該医薬が提供される。
本発明のさらに別の観点からは、細胞外ドメインシェディングの異常亢進に起因する疾患の予防及び/又は治療のための医薬の製造のための、nardilysin阻害剤の使用が提供される。
・nardilysinの組み換え蛋白を加えると、TACEのペプチド切断活性が上昇する(例2)。
・nardilysinは、HB-EGFのみならずTACEのその他の基質(TGF-α, アンフィレギュリン, TNF-αなど)のシェディングも増強する(例3、4)。
・シェディング誘導因子により、nardilysinの細胞表面での発現が上昇する(例5)。
・シェディング誘導因子により、nardilysinとTACEの複合体形成が増加する(例6)。
・nardilysinの発現を抑制すると、HB-EGFのシェディングの誘導も抑制される(例7)。
から、ホルボールエステルや炎症性サイトカインなどのシェディング誘導因子によって細胞が活性化されると
(1)細胞質から細胞表面へnardilysinが移動し、
(2)細胞表面のnardilysin がTACEと結合することによって、
(3)TACEが活性化され、
(4)膜蛋白質の細胞外ドメインシェディングが増強されると考えられる。
同様にnardilysinはADAM ファミリーに属するTACE以外の酵素等のシェディングに対する効果を増強させている可能性も考えられる。
nardilysinの発現を阻害する物質としては、RNAi、アンチセンス法又はリボザイム法を利用した物質等が挙げられ、特に限定されないが、RNAiを利用したsiRNAsが好ましい。nardilysinに作用してnardilysinの活性及び機能を阻害する物質としては、低分子化合物及び抗体等が挙げられる。nardilysin及びTACEの会合を阻害する物質、nardilysin及びシェディングを受ける膜結合型蛋白質の結合を阻害する物質又はnardilysin、TACE、及びシェディングを受ける膜結合型蛋白質の複合体の形成を阻害する物質としては低分子化合物、抗体、又はペプチドを用いることができる。
ペプチドとしては、例えば、nardilysinの部分配列(例えば、配列表の配列番号2に記載のアミノ酸配列の472番目から492番目までのアミノ酸配列)を有するペプチド等が挙げられる。
非ウイルスベクター形態としては、リポソームを用いて核酸分子を導入する方法(リポソーム法、HVJ−リポソーム法、カチオニックリポソーム法、リポフェクション法、リポフェクトアミン法等)、マイクロインジェクション法、遺伝子銃(Gene Gun)でキャリア(金属粒子)とともに核酸分子を細胞に移入する方法等を利用した形態であればよい。発現ベクターとしては、例えば、pCAGGS、pBJ-CMV、pcDNA3.1、pZeoSV(Invitrogen社又はStratagene社から入手可能)等が挙げられる。
RNAiによりnardilysinの発現を阻害する物質は、生体の器官や組織等に直接注入してもよい。
(例1)nardilysin及びTACEによるHB-EGFの膜結合型前駆体のシェディング
COS7細胞に、C末端にV5タグを付加したnardilysin、TACE、及びN末端にHA(ヘマグルチニン)タグを付加したHB-EGFの膜結合型前駆体の発現ベクターを図1に示した組み合わせでトランスフェクションした。20時間後に培地をBSA (0.1%) 含有DMEMに交換し、4時間後に培地、及び細胞溶解液を回収(細胞溶解バッファー;10mM Tris (pH7.4), 150 mM NaCl, 1% NP-40、蛋白分解酵素阻害剤カクテル)した。回収した培地中に分泌された分泌型HB-EGFはヘパリンアガロースビーズにて部分精製後、SDS-PAGEにて展開し、ニトロセルロース膜に転写して、抗HAタグ抗体によるウェスタンブロットを行った。細胞溶解液も同様に抗V5タグ抗体、抗TACE抗体にてウェスタンブロットを行った。結果を図1に示す。図1中、上から細胞溶解液の抗V5抗体ブロット(nardilysin)、細胞溶解液の抗TACE抗体ブロット(TACE)、培地の抗HA抗体ブロット(HB-EGF)を示す。
図1に示された結果から、nardilysinとTACEを発現させた細胞の培地中に分泌された可溶型HB-EGFが、nardilysinのみ又はTACEのみを発現させた細胞の培地中に分泌された可溶型HB-EGFと比較して、顕著に増加していることがわかる。
HB-EGFの膜結合型前駆体の膜近傍切断部位に相当する14アミノ酸からなるペプチド鎖(GLSLPVENRLYTYD:配列表の配列番号3)(0.5 mM)を、反応バッファーのみ(25 mM Tris (pH 9), 2μM ZnCl2)(図2上段;(-))、組み換えnardilysin(100μg/ml)(データは示さず)、組み換えTACE(25μg/ml)(図2中段;TACE)、組み換えnardilysin(100μg/ml)及び組み換えTACE(25μg/ml)(図2下段;TACE+nardilysin)と8時間、37℃で反応させた後、ペプチド鎖の切断を質量分析(MALDI-TOF)にて解析した。結果を図2に示す。
nardilysin単独では、反応バッファーのみの結果と同様の結果であり、有意なペプチドの切断は認められなかった。TACE単独では既に報告されている部位での切断を認め、切断によって生じた2種類のペプチド鎖(図2中矢印で表示)が検出された。TACEとnardilysinをともに加えたサンプルでは、TACEでの切断部位と同じ部位でのペプチドの切断が顕著に増加した。
N末端にHAタグを付加したTGF-α、アンフィレギュリンの発現ベクターをそれぞれCOS7細胞にトランスフェクションして組み換えnardilysinとインキュベーションを行い、これらの膜結合型前駆体の細胞外ドメインシェディングにより生じた可溶型蛋白質を、TGF-αは抗HA抗体による免疫沈降で、アンフィレギュリンはヘパリンアガロースビーズにて部分精製後、例1と同様の方法で抗HAタグ抗体によるウェスタンブロットを行った。結果を図3に示す。図3からわかるように、1nM以上の組み換えnardilysinがこれらの膜結合型増殖因子のシェディングを明らかに誘導した。
COS7細胞に後述の発現ベクターをトランスフェクションし、20時間後に培地をBSA (0.1%) 含有DMEMに交換して、4時間後に培地を回収し、pro TNF-αの切断にて生じた培地中の可溶型TNF-α濃度をELISAにて測定した。結果を図4に示す。図中、菱形で示すControl はpro TNF-αの発現ベクターのみ;四角で示すNRDc はpro TNF-α及びnardilysinの発現ベクター;三角で示すTACE はpro TNF-α及びTACE の発現ベクター;丸で示すTACE+NRDc はpro TNF-α、nardilysin、及びTACEの発現ベクターをトランスフェクションしたCOS7細胞における結果である。
HB-EGFと同様に、nardilysinとTACEを共に発現させた細胞の培地中の可溶型TNF-αが、nardilysinのみ又はTACEのみを発現させた細胞の培地中の可溶型TNF-αと比較して、顕著に多かった。
RAW264.7(マウスマクロファージ系細胞株)をホルボールエステルなし(-)、あり(PMA)にて5分あるいは30分間刺激後,細胞表面をビオチン化し、細胞溶解液を回収した。同溶解液を抗nardilysin抗体で免疫沈降し、ストレプトアビジン(図5上段: avidin)、抗nardilysin抗体(図5下段: NRDc)でウェスタンブロットを行った。結果を図5に示す。ホルボールエステル刺激により、nardilysinの総量(図5下段)に著変はないが,細胞表面におけるnardilysinの発現(図5上段)が明らかに増加していることがわかる。
nardilysinとTACEを一過性に発現させたHEK293T細胞(図6左パネル)、およびMKN45細胞(胃癌細胞株:図6右パネル)を2時間ホルボールエステルなし(-)、あり(PMA)で刺激後、細胞溶解液を回収した。同溶解液を抗TACE抗体で免疫沈降し、抗nardilysin抗体(上段: NRDc)、抗TACE抗体(中段)でウェスタンブロットを行った。下段は、細胞溶解液の抗nardilysin抗体によるウェスタンブロットを示す。どちらの細胞においても、ホルボールエステル刺激にてnardilysin、TACEの総量は変化していないが,抗TACE抗体にて共沈するnardilysinの量、即ちnardilysin-TACE複合体の量が増加していることがわかる。
アルカリフォスファターゼ(AP)のタグをN末端に付加したHB-EGF前駆体を安定に発現している293T細胞に、nardilysinに対するsiRNAのカクテル(Dharmacon, siGENOME SMARTpool)をトランスフェクションした。対照として、cyclophilinに対するsiRNAをトランスフェクションした293T細胞を同様に調製した。72時間後に培地をBSA (0.1%) 含有DMEMに交換し、1時間、ホルボールエステル(PMA :100 nM)で刺激し、培地中のAP活性(HB-EGFのシェディングのレベルに比例する)を測定した。結果を図7に示す。図7からわかるように、無刺激の対照と比較して、PMAでAP活性は明らかに増加しているが、nardilysinに対するsiRNAをトランスフェクションした細胞はcyclophilinに対するsiRNAをトランスフェクションした細胞と比べて、増加の程度が低下した。同様の処理をした細胞でウェスタンブロットを行ったところ、siRNAによりnardilysinの蛋白の発現は30-40%低下したことが確認された。これらの結果から、nardilysinの発現抑制により、HB-EGFの膜結合型前駆体のシェディングを抑制できることが示された。
N末端にアルカリフォスファターゼ(AP)タグを付加したHB-EGFの膜結合型前駆体を安定発現させたHEK293T細胞を、コントロールマウスIgG (control IgG; 10μg/ml) あるいはマウス抗nardilysinポリクローナル抗体(anti-NRDc (poly); 10μg/ml)存在下に、ホルボールエステルなし(黒)、あり(白)で2時間刺激後、培地を回収しAP活性を測定した。AP活性は培地中に放出されたHB-EGF量、すなわち膜結合型前駆体のシェディングの量と対応する。結果を図8に示す。データは7回の独立した実験の平均値プラス標準誤差で表示している。
図8より、抗nardilysin抗体はホルボールエステルによるHB-EGFのシェディング誘導を有意に抑制していることがわかる。
N末端にアルカリフォスファターゼ(AP)タグを付加したHB-EGFの膜結合型前駆体を安定発現させたHEK293T細胞の培地中に、ストレプトアビジンアガロースビーズ単独(-)、またはヒトnardilysinの部分配列(配列表の配列番号2に記載のアミノ酸配列の472番目から492番目までのアミノ酸配列)を有するペプチド鎖(peptide 41; SGSGSILSFLRKKCWALALFGGNGE:配列表の配列番号4)のN末端をビオチン修飾したものを上記ビーズに結合させたものを加え、更にホルボールエステルなし(黒)、または、あり(白)で2時間刺激後、培地を回収しAP活性を測定した。結果を図9に示す。データは類似した結果を得た4回の独立した実験のうち、1回分を平均値プラス標準偏差(n=4)で表示している。ペプチド鎖(41)はホルボールエステルによるHB-EGFのシェディング誘導を有意に抑制している。なお、ペプチド鎖(41)は、ヒトnardilysin全長をカバーする92種類のペプチド鎖につき、スクリーニングを行い、最もHB-EGFのシェディング抑制効果の強かったもののひとつである。
Claims (8)
- 細胞外ドメインシェディングの異常亢進に起因する疾患の予防及び/又は治療のための医薬であって、nardilysin阻害剤を有効成分として含む医薬。
- 細胞外ドメインシェディングが、TACEが関与する細胞外ドメインシェディングである請求項1に記載の医薬。
- 細胞外ドメインシェディングが、HB-EGF、 TNF-α、TGF-α、又はアンフィレギュリンの膜結合型前駆体の細胞外ドメインシェディングである請求項1又は2に記載の医薬。
- 細胞外ドメインシェディングの異常亢進に起因する疾患が炎症性疾患である請求項1〜3のいずれか一項に記載の医薬。
- nardilysin阻害剤がnardilysinの発現を阻害する物質を含む請求項1〜4のいずれか一項に記載の医薬。
- 阻害がRNAiによる阻害である請求項5に記載の医薬。
- nardilysin阻害剤が、全長のnardilysin又はnardilysinの部分配列を有するペプチドを免疫源として作製した抗体を含む請求項1〜4のいずれか一項に記載の医薬。
- nardilysin阻害剤が、nardilysinの部分配列を有するペプチドを含む請求項1〜4のいずれか一項に記載の医薬。
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