技術分野
本発明は、改良された薬物保持リポソーム製剤、さらに詳しくは、リポソーム（小胞体）の内部に種々の生理活性物質を封じ込めた薬物保持リポソームの改良された製剤に関する。
背景技術
リポソームは主として脂質よりなる膜を有する閉鎖小胞と定義される。脂質二重層膜の小胞体であるリポソームは，内部に種々の物質を封入でき、また生体由来物質から形成されるため生体適合性に優れることから，薬物送達システムとして有用である。リポソームは、生体膜のモデルとして多くの研究に用いられてきたが、一方で、薬物送達システム（ｄｒｕｇ ｄｅｌｉｖｅｒｙ ｓｙｓｔｅｍ；ＤＤＳ）へ応用されてきた。また、遺伝子やアンチセンスのキャリアーとして遺伝子工学の分野でも用いられている。ところで薬剤のカプセル化は、薬剤の生体内分布や血流中での滞留時間を変化させる。また標的器官への到達性を改善し、薬物の副作用の軽減や徐放化も可能とする。リポソームを用いる利点としては毒性や抗原性が低いことのほか、用いるリン脂質が生体成分であるために生体内で代謝されることがあげられる。またリポソームは大きさや脂質組成を容易に調節でき、水溶性薬物、脂溶性薬物、高分子、タンパク質など多くのものが封入可能であり、高分子、糖質、抗体、レクチンなどによる表面修飾も容易である。また、膜融合性や、特定の細胞への接着制御などの機能をリポソームに付与することにより、目的にあった薬剤カプセルを構築できる。
このように薬物保持リポソーム製剤は、生体内では不安定な薬物の安定化や生体内における薬物の徐放化に利用することが考えられ、また薬物を特定の臓器に選択的に移行させるための手段としても利用が考えられている。例えば安定化や徐放化を目的とした製剤として、ヘモグロビン、インスリン、ヘパリン、ウロキナーゼ、そのほか種々の抗ガン剤、抗真菌剤等を含有するリポソーム製剤が知られており、標的臓器への薬物の速やかな移行を目的とした製剤として、ユビデカレノン、シトシンアラビノシド、ステロイド、そのほか種々の抗ガン剤、抗真菌剤等を含有するリポソーム製剤が知られている。
従来の薬物保持リポソーム製剤の膜剤として使用されるリン脂質には、卵黄レシチンまたは大豆レシチン等の不飽和レシチン、これらに水素添加した精製飽和レシチン、これらをさらに分離精製したホスフアチジルコリン、ホスフアチジルエタノールアミン、ホスフアチジルイノシトール、ホスフアチジルセリン、スフインゴミエリン等の精製レシチン、またジミリストイルレシチン、ジパルミトイルレシチン、ジステアロイルレシチン等の合成レシチンが挙げられる。これらは生体に対する親和性が良く、注射剤等の非経口用製剤に安全に使用される。しかしながら、従来使用されているリポソーム膜材は、薬物の保持率が必ずしも十分ではない。即ち、単位リポソーム薬剤の中に封じ込められる薬物の量が十分ではなく、さらに効率のよい膜材が要望されている。さらに従来の不飽和レシチンや不飽和脂肪酸（特開昭６０−１５５１０９号公報）を原料としたリポソーム膜材は、安定牲が不十分であり、Ｉｎ−ｖｉｔｒｏあるいはＩｎ−Ｖｉｖｏで比較的容易に膜が破壊され、生体内寿命が短い、薬物を放出する等の欠点があった。より安定性の高い精製レシチン、合成レシチンを用いたリポソーム製剤は非常に高価であり、精製レシチン、合成レシチンを製剤原料として用いるには限界がある。また従来知られていた膜剤として炭素数１８−２０の不飽和高級脂肪酸を５−１５ｗｔ％含有するリポソームの製法（特開昭６０−１５５１０９号公報）の範囲では、飽和脂肪酸を用いた場合には、リポソームの薬物保持率が著しく低下するという問題点があった。
従って、本発明の目的は第１に、リポソーム内部への薬物の保持率の優れた薬物保持リポソーム製剤を提供することにある。
本発明の目的は第２に、リポソーム製剤原料として安価な組成の膜剤を提供することにある。
発明の開示
すなわち本発明は、以下の各発明を提供する。
（１）リポソームおよびこのリポソームに取りこまれた物質からなるリポソーム製剤において、リポソームを構成する膜剤がリン脂質と炭素数１０〜２０の高級飽和脂肪酸の少なくとも１種とを含有し、該高級飽和脂肪酸の含有量がリポソーム構成成分中におけるモル比で３０ｍｏｌ％〜５０ｍｏｌ％であることを特徴とするリポソーム製剤。
（２）前記リン脂質が飽和リン脂質或いは水素添加リン脂質である（１）に記載のリポソーム製剤。
（３）前記膜剤としてさらにコレステロールを含む（１）または（２）に記載のリポソーム製剤。
（４）上記リポソーム表面には、さらに、親水性高分子鎖部と疎水性部とを有する凝集抑制剤が結合され、該凝集抑制剤は疎水性部がリポソーム中の脂質層に固定されるとともに親水性高分子鎖部はリポソーム表面から外方向に伸びてなるものである（１）〜（３）のいずれかに記載のリポソーム製剤。
（５）上記リポソームに取り込まれた物質は生理活性物質である（１）〜（４）のいずれかに記載のリポソーム製剤。
（６）前記生理活性物質がヘモグロビンである（５）に記載のリポソーム製剤。
発明を実施するための最良の形態
以下に、本発明を詳細に説明する。
本発明の薬物保持リポソーム製剤に用いる膜剤としては、リポソームを作成するのに適当な脂質が用いられる。リン脂質としては大豆レシチン、卵黄レシチン等の天然不飽和リン脂質、合成リン脂質、あるいは天然不飽和リン脂質に水素添加を行った天然水素添加リン脂質など、任意のリン脂質を利用することができる。天然のリン脂質は全て不飽和脂肪酸を含んでいるため、本発明の目的をより高度に達成するため、上記天然リン脂質の不飽和脂肪酸を水素で飽和した水素添加リン脂質か合成リン脂質を使用するのがより効果的である。
本発明において用いるリン脂質の代表例としては、レシチン、ホスフアチジルエタノールアミン、ホスフアチジルイノシトール、ホスフアチジルセリン、ホスフアチジルグリセロール、スフインゴミエリン、カルジオリビン等を挙げることができる。さらに、これらに常法に従い水素添加したものが挙げられる。特に大豆レシチン、卵黄レシチン、コーンレシチン、綿実油レシチン、ナタネレシチン等を水素添加した水素添加天然レシチンが好適に使用される。
本発明における高級飽和脂肪酸としては、炭素原子１０〜２０個を有する高級脂肪酸が望ましく、その例として、カプリン酸、ラウリン酸、ミリスチン駿、バルミチン酸、ステアリン酸、エイコサン酸等が挙げられる。これらの高級飽和脂肪酸は単独であるいは混合して使用することができる。リポソーム膜構成脂質として好適に使用されるリン脂質の疎水性炭素鎖の炭素数がおよそ１４〜１８個であるため、リン脂質との親和性から、炭素原子１４〜１８個を有する高級飽和脂肪酸がより望ましい。高級飽和脂肪酸のリポソーム構成成分に対するモル比としては３０ｍｏｌ％以上、かつリン脂質とミセル形成をしないモル比とする。高級飽和脂肪酸の配合量がモル比で３０ｍｏｌ％未満でもリポソームを形成し、薬物保持能も有するが、薬物保持率を向上させるためには高級飽和脂肪酸の配合量がモル比で３０ｍｏｌ％以上であることが必要である。さらに４０ｍｏｌ％以上の場合、本発明の目的とする親和性、安定性、薬物の保持率、安価な膜剤として優れた効果を示すのでより好ましい。リン脂質はラメラ構造となる濃度範囲にて用いないとリポソームとして薬物を保持することができないが、高級飽和指防酸の配合量が増大しすぎると、高級飽和脂妨酸が形成するミセルにリン脂質が取り込まれてしまい、リポソームを形成しなくなる。この時の高級飽和脂肪酸の配合比は脂肪酸の炭素数や条件に応じて変動するが、モル比で約５０ｍｏｌ％超となる。従って、高級脂肪酸はこの配合比以下のところで使用しないとリポソームを形成しなくなるため、薬物の保持効率は極端に低下または不能となる。好ましくはモル比で４５ｍｏｌ％以下である。従って、高級飽和脂肪酸のリン脂質に対するモル比は３０ｍｏｌ％〜５０ｍｏｌ％、好ましくは４０ｍｏｌ％〜４５ｍｏｌ％である。
本発明の膜材には、膜の強度を高めるためにコレステロール、トコフェロール等のステロールを添加することができ、また、生体中における標的臓器への移行や、除放性をコントロールするための物質を添加することも可能である。
本発明のリポソーム製剤に取りこまれ、含有保持される被保持物質としては、リポソームの形成を阻害しない限り特に制限はないが、Ｉｎ−ｖｉｔｒｏまたはＩｎ−ｖｉｖｏで不安定なもの、血流中に安定に滞留させたい生理活性物質、あるいは特定の臓器に速やかに分布することが所望されているものが好適に使用される。このような披保持物質として、特に薬剤の例としては、ヘモグロビン、インスリン、ヘパリン、ウロキナーゼ、エビヂカレノン、メトトレキセート ネオマイシン、プレオマイシン、テトラサイクリン、チトクロームＣ、アスパラギナーゼ、シトシンアラビノシド等が挙げられる。その他、薬剤以外のものでも、マーカー、アンチセンス、プラスミドやＤＮＡ、ＲＮＡ等生体内に投与して有効なものであれば特に制限されることはない。本発明の薬物保持リポソーム製剤は、それ自体公知の方法によって製造される。例えば、天然リン脂質、水素添加天然リン脂質、少なくとも１種の上記高級飽和脂肪酸および所望によりステロールをクロロホルム、エタノール等の適当な溶媒に溶解し、得られた溶液から溶媒を留去して脂質混合物を調製する。得られた脂質混合物に、生理活性物質等の薬物の水溶液を加え、得られた混合液を激しく振とう、撹拌或いは超音波処理を行い、薬物水溶液を均一に分散させる。分散液からリポソームに取り込まれなかった薬物を除去し、薬物保持リポソーム製剤を得る。かくして得られたリポソーム製剤は必要により生理的に許容される水溶液、例えば生理食塩水に分散した懸濁状製剤として調整される。本発明のリポソーム製剤は注射剤等の非経口用製剤として投与される。また、本発明のリポソームを凍結乾燥するにあたっては通常の条件でよく、例えば、−２０℃〜−８０℃で凍結させ、０．３ｔｏｒｒ以下の減圧下に氷を昇華させるのが好ましい。さらに良好な凍結乾燥ケーキを形成させるためには、例えば、マンニトール、デキストリン、グリシン等の通常用いられる賦形剤を加えておいても良い。
尚、本発明においてリポソーム製剤とは、リポソーム内部に種々の被保持物質が封じ込められた状態のものと定義する。
本発明のリポソーム製剤には、さらに、親水性高分子鎖部と疎水性部とを有する凝集抑制剤が含まれていてもよい。凝集抑制剤量はリポソーム製剤に対して好ましくは０．０１〜５質量％、より好ましくは０．０１〜１質量％とすることができる。リポソームを「親水性高分子結合脂質」で修飾する時に、カプセル化される物質が加熱可能な場合、５質量％くらいまで修飾可能である。０．０１質量％未満は修飾しても凝集抑制効果が得られにくい。また、１質量％以下であれば加熱しなくとも修飾可能であり生理活性物質やヘモグロビン等の熱に不安定なタンパク質を含有させることができ、凝集抑制効果も十分である。凝集抑制剤をリポソーム製剤に加えると疎水性部分がリポソーム表面へ安定に挿入されリポソーム中の脂質層に固定されるとともに親水性高分子鎖はリポソーム表面から外方向に伸び、リポソームの凝集を抑制する機能を担う。
「凝集抑制剤」の例として、疎水性部としては、各種飽和・不飽和脂肪酸、ステロール、ポリオキシプロピレンアルキルまたはグリセリン脂肪酸エステル、およびリン脂質があげられ、リン脂質が好ましい。
親水性高分子鎖部としては、ポリアルキレングリコール、ポリビニルアルコール、スチレン−無水マレイン酸交互共重合体、ジビニルエーテル−無水マレイン酸交互共重合体、ポリグリコール酸、ポリ乳酸、そして、デキストラン、プルラン、フィコール、アミロース、アミロペクチン、キトサン、マンナン、シクロデキストリン、ペクチン、カラギーナン等の多糖類などである。その中でもポリエチレングリコールは血中滞留性を向上させる効果が顕著であり最も望ましい。ポリエチレングリコール結合リン脂質、ポリエチレングリコール結合コレステロールが好ましい。
以下に実施例をもって、本発明をいっそう具体的に説明するが、これらは実施の一例として示すものであり、本発明はこれらにより何ら限定されるものではない。
（実施例１）
リン脂質として水添大豆レシチン（ＨＳＰＣ：分子量７９０）、コレステロール（分子量３７６）と高級脂肪酸としてステアリン酸（分子量２７８）との混合物で量配合比の異なる混合脂質（表１）を、ｔ−ＢｕＯＨ、１０ｍｌに溶解後、凍結乾燥しｔ−ＢｕＯＨを除去する事で調製した。これにヘモグロビン（４５ｗｔ％）溶液、２０ｍｌを加え、高速攪拌機（クレアミックス社製、ＣＬＭ−０．８Ｓ）を用いて乳化（２０℃以下で１５０００ｒｐｍ、１ｍｉｎ、３回）した。乳化後、各処理物に生理食塩水を３０ｍｌ加え、４万Ｇ、６０ｍｉｎで３回カプセル化されなかったヘモグロビンを遠心洗浄した。その後２０ｍｌの生理食塩水に分散し０．４５μｍフィルターを用いて濾過し、ここに凝集防止剤としてポリエチレングリコール（ＰＥＧ）結合リン脂質を０．１質量％になるように加え、ＰＥＧ表面修飾リポソームカプセル化ヘモグロビン製剤を得た。
このようにして得られた各配合比のリポソームカプセル化ヘモグロビン製剤中のヘモグロビン濃度を原子吸光にて測定し、ＨＳＰＣ濃度、コレステロール濃度、ステアリン酸濃度を高速液体クロマトグラフィーにて測定した。
この結果よりリポソームにカプセル化されたヘモグロビンであるタンパク質の収率を次式により求めた。
「タンパク収率（％）＝（リポソーム内タンパク保持量／調整時タンパク投入量）×１００」
この結果、リン脂質に対する脂肪酸のモル比が３０ｍｏｌ％未満の場合には、タンパク収率が約１０％以下に留まったが、モル比が３０ｍｏｌ％〜５０ｍｏｌ％の範囲では１２％以上のタンパク収率があり、モル比約４０ｍｏｌ％ではタンパク収率が１６％まで高まることが分かった（図１）。
また、リポソームにカプセル化された投与薬物を、効率よく生体に投与することを考えると脂質量あたりのカプセル化タンパク量は多い程良い、そこで脂質量あたりのカプセル化タンパク量を次式により求めた。
「脂質量あたりのカプセル化タンパク量＝（リポソーム内タンパク保持量／（ＨＳＰＣ量＋コレステロール量＋ステアリン酸量））」
この結果から、リン脂質に対する脂肪酸のモル比が２６ｍｏｌ％未満の場合には、全く脂肪酸を含まない場合をのぞき（この場合にはほとんどリポソームカプセル化ヘモグロビン製剤が形成されなかった）脂質量あたりのカプセル化タンパク量は１．２程度に留まったが、モル比が２６ｍｏｌ％−５０ｍｏｌ％の範囲では脂質量あたりのカプセル化タンパク量が著しく増加し、モル比約４６ｍｏｌ％では脂質量あたりのカプセル化タンパク量を１．７にまで高めることが出来た（図２）。
さらに、リポソーム製剤からのＩｎ−Ｖｉｔｒｏ及びＩｎ−Ｖｉｖｏでの薬物の漏れだしの安定性を評価するために、各配合比のリポソームカプセル化ヘモグロビン製剤を５０ｍｌ遠沈管に入れ３７℃にて毎分６０回、３時間振とうした後、４万Ｇで６０ｍｉｎ遠心し、上清に漏れだしたヘモグロビン量を測定した。漏れ出したヘモグロビン量を、元のリポソームカプセル化ヘモグロビン製剤のヘモグロビン量で除した値をタンパク漏れだし率（％）として図３に示した。
この結果リン脂質に対するモル比が１２ｍｏｌ％ぐらいからリポソーム製剤の安定性が高まり、モル比５０ｍｏｌ％の範囲まで安定であり、３３ｍｏｌ％〜４６ｍｏｌ％の範囲で特に安定であることが分かった。モル比５０ｍｏｌ％を越えるような範囲では逆にリポソーム製剤の安定性が損なわれることも分かった。
（実施例２）
リン脂質としてＨＳＰＣ（分子量：７９０）、コレステロール（分子量：３７６）に、高級飽和脂肪酸としてラウリン酸（分子量：２００）、ミリスチン酸（分子量：２２８）、パルミチン酸（分子量：２５６）、ステアリン酸（分子量：２７８）をＨＳＰＣに対するモル比で３３．３ｍｏｌ％配合した混合脂質１ｇを実施例１と同様の方法で調製した。これにヘモグロビン（４５ｗｔ％）溶液、２０ｍｌを加え、高速攪拌機（クレアミックス社製、ＣＬＭ−０．８Ｓ）を用いて乳化（２０℃以下で１５０００ｒｐｍ、１ｍｉｎ、３回）した。乳化後、各処理物に生理食塩水を３０ｍｌ加え、４万Ｇ、６０ｍｉｎで３回カプセル化されなかったヘモグロビンを遠心洗浄した。その後２０ｍｌの生理食塩水に分散し０．４５μｍフィルターを用いて濾過し、ここに凝集防止剤としてポリエチレングリコール結合リン脂質を０．１質量％になるように加え、ＰＥＧ表面修飾リポソームカプセル化ヘモグロビン製剤を得た。
このようにして得られた各脂肪酸配合のリポソームカプセル化ヘモグロビン製剤中のヘモグロビン濃度を原子吸光にて測定し、ＨＳＰＣ濃度、コレステロール濃度、ステアリン酸濃度を高速液体クロマトグラフィーにて測定した。
これから実施例１と同様にタンパク収率及び脂質量あたりのカプセル化タンパク量を求めた（図４）。
この結果からは、炭素数を１２−１８に変化させることで若干タンパク収率は向上するが、脂質量あたりのカプセル化タンパク量は減少する傾向にあることが分かり、リン脂質に対する脂肪酸含有モル比を３０ｍｏｌ％以上にした場合と比して炭素数を変えることによる効果はあまり無く、このリン脂質に対する脂肪酸のモル比が３０ｍｏｌ％〜５０ｍｏｌ％の範囲では炭素鎖長のちがいによる影響は少ないことが分かった。なお、実施例ではリポソームに取りこまれた物質としてタンパク質の、収率、脂質量当たりの量比、、漏れだし率を測定しているが、タンパク質以外の物質が取りこまれた場合も同様である。
産業上の利用可能性
以上、詳述したように本発明のリポソーム製剤は、リポソーム内部への薬物の保持率の優れた薬物保持リポソーム製剤が提供される。さらに、リポソーム形成が不可能と従来考えられていた量の脂肪酸を特定鎖長の高級飽和脂肪酸として配合することで、リポソームが形成されることを見いだした。リン脂質はリポソーム構成膜材組成中、最も多く配合される物質であり、かつ脂肪酸に比して非常に高価である。本発明は、安価な脂肪酸の配合量を増大させることができ、リン脂質の配合量をはるかに少なくできた。従って、リポソーム製剤原料として安価な組成の膜剤が提供される。
【図面の簡単な説明】
図１は、脂肪酸仕込み比とタンパク収率を示すグラフである。
図２は、脂肪酸仕込み比と脂質量あたりのカプセル化タンパク量を示すグラフである。
図３は、脂肪酸仕込み比とリポソームの安定性（タンパク質漏れだし率）を示すグラフである。
図４は、脂肪酸炭素鎖の炭素数とリポソーム製剤のタンパク収率及び脂質量あたりのタンパク量を示すグラフである。TECHNICAL FIELD The present invention relates to an improved drug-loaded liposome formulation, and more particularly, to an improved drug-loaded liposome formulation containing various physiologically active substances inside liposomes (vesicles).
Background Art Liposomes are defined as closed vesicles having a membrane composed primarily of lipids. Liposomes, which are vesicles of a lipid bilayer membrane, can be used as a drug delivery system because they can encapsulate various substances inside and are formed from biological substances and have excellent biocompatibility. Liposomes have been used in many studies as models of biological membranes, but have also been applied to drug delivery systems (DDS). It is also used in the field of genetic engineering as a carrier for genes and antisense. By the way, drug encapsulation changes the biodistribution of the drug and the residence time in the bloodstream. It also improves accessibility to target organs, and allows for reduced side effects and sustained release of drugs. The advantages of using liposomes include low toxicity and antigenicity, and metabolism in vivo because the phospholipid used is a biological component. In addition, liposomes can be easily adjusted in size and lipid composition, can encapsulate many things such as water-soluble drugs, fat-soluble drugs, polymers and proteins, and can be easily surface-modified with polymers, carbohydrates, antibodies, lectins, etc. It is. In addition, by imparting functions such as membrane fusibility and control of adhesion to specific cells to liposomes, a drug capsule suitable for the purpose can be constructed.
As described above, the drug-retaining liposome preparation is considered to be used for stabilizing a drug unstable in a living body or for sustained release of a drug in a living body, and for selectively transferring the drug to a specific organ. Use is also considered as a means. For example, liposome preparations containing hemoglobin, insulin, heparin, urokinase, various other anticancer agents, antifungal agents, and the like are known as preparations for stabilization and sustained release, and drug delivery to target organs is known. As a preparation for rapid transfer, a liposome preparation containing ubidecarenone, cytosine arabinoside, a steroid, and various other anticancer and antifungal agents is known.
Phospholipids used as membranes in conventional drug-retaining liposome formulations include unsaturated lecithins such as egg yolk lecithin or soybean lecithin, purified saturated lecithin hydrogenated on them, phosphatidylcholine further separated and purified from these, and phosphatidylcholine. Examples include purified lecithin such as atidylethanolamine, phosphatidylinositol, phosphatidylserine, and sphingomyelin, and synthetic lecithin such as dimyristoyl lecithin, dipalmitoyl lecithin, and distearoyl lecithin. These have good affinity for the living body and are used safely in parenteral preparations such as injections. However, conventionally used liposome membrane materials do not always have a sufficient drug retention. That is, the amount of the drug contained in the unit liposome drug is not sufficient, and a more efficient membrane material is desired. Further, conventional liposome membrane materials made from unsaturated lecithin or unsaturated fatty acids (Japanese Patent Application Laid-Open No. 60-155109) have insufficient stability and are relatively easily prepared in in-vitro or in-vivo membranes. However, there are drawbacks such as short life in vivo and release of drug. A liposome preparation using purified lecithin and synthetic lecithin having higher stability is very expensive, and there is a limit in using purified lecithin and synthetic lecithin as a raw material for the preparation. Also, in the range of a conventionally known method for producing a liposome containing 5 to 15% by weight of an unsaturated higher fatty acid having 18 to 20 carbon atoms (JP-A-60-155109), when a saturated fatty acid is used. However, there was a problem that the drug retention of the liposome was significantly reduced.
Therefore, an object of the present invention is, first, to provide a drug-loaded liposome preparation having an excellent drug retention rate inside the liposome.
A second object of the present invention is to provide an inexpensive membrane agent as a liposome drug material.
The disclosure of the invention, that is, the present invention provides the following inventions.
(1) In a liposome preparation comprising a liposome and a substance incorporated in the liposome, a membrane agent constituting the liposome contains a phospholipid and at least one kind of a higher saturated fatty acid having 10 to 20 carbon atoms, and A liposome preparation, wherein the content of the fatty acid is 30 mol% to 50 mol% in a molar ratio in the liposome constituent component.
(2) The liposome preparation according to (1), wherein the phospholipid is a saturated phospholipid or a hydrogenated phospholipid.
(3) The liposome preparation according to (1) or (2), further comprising cholesterol as the membrane agent.
(4) An aggregation inhibitor having a hydrophilic polymer chain portion and a hydrophobic portion is further bound to the liposome surface, and the aggregation inhibitor has the hydrophobic portion immobilized on the lipid layer in the liposome. The liposome preparation according to any one of (1) to (3), wherein the hydrophilic polymer chain portion extends outward from the liposome surface.
(5) The liposome preparation according to any one of (1) to (4), wherein the substance incorporated in the liposome is a physiologically active substance.
(6) The liposome preparation according to (5), wherein the physiologically active substance is hemoglobin.
BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION Hereinafter, the present invention will be described in detail.
As the membrane agent used in the drug-containing liposome preparation of the present invention, a lipid suitable for preparing a liposome is used. As the phospholipid, any phospholipid such as a natural unsaturated phospholipid such as soybean lecithin and egg yolk lecithin, a synthetic phospholipid, or a natural hydrogenated phospholipid obtained by hydrogenating a natural unsaturated phospholipid can be used. . Since all natural phospholipids contain unsaturated fatty acids, use hydrogenated phospholipids or synthetic phospholipids in which the unsaturated fatty acids of the above natural phospholipids are saturated with hydrogen to achieve the object of the present invention to a higher degree. It is more effective to do so.
Representative examples of the phospholipid used in the present invention include lecithin, phosphatidylethanolamine, phosphatidylinositol, phosphatidylserine, phosphatidylglycerol, sphingomyelin, cardioribine and the like. Further, there may be mentioned those obtained by hydrogenating them according to a conventional method. In particular, hydrogenated natural lecithin obtained by hydrogenating soybean lecithin, egg yolk lecithin, corn lecithin, cottonseed oil lecithin, rape lecithin and the like is preferably used.
As the higher saturated fatty acid in the present invention, a higher fatty acid having 10 to 20 carbon atoms is desirable, and examples thereof include capric acid, lauric acid, myristic acid, balmitic acid, stearic acid, and eicosanoic acid. These higher saturated fatty acids can be used alone or as a mixture. Since the hydrophobic carbon chain of the phospholipid suitably used as a liposome membrane-constituting lipid has about 14 to 18 carbon atoms, a higher saturated fatty acid having 14 to 18 carbon atoms can be obtained from the affinity with the phospholipid. More desirable. The molar ratio of the higher saturated fatty acid to the liposome component is 30 mol% or more, and the molar ratio does not cause micelle formation with the phospholipid. Even if the blending amount of the higher saturated fatty acid is less than 30 mol% in molar ratio, it forms liposomes and has a drug retention ability, but in order to improve the drug retention, the blending amount of the higher saturated fatty acid is 30 mol% or more in molar ratio. It is necessary. Further, when the content is 40 mol% or more, the affinity, stability, drug retention, and excellent effects as an inexpensive film agent of the present invention are more preferable. Phospholipids cannot retain the drug as liposomes unless they are used in a concentration range that results in a lamellar structure. Lipids are taken up and do not form liposomes. At this time, the blending ratio of the higher saturated fatty acid varies depending on the number of carbon atoms and conditions of the fatty acid, but exceeds about 50 mol% in molar ratio. Therefore, if the higher fatty acid is not used below this ratio, liposomes will not be formed, and the drug retention efficiency will be extremely reduced or impossible. Preferably, the molar ratio is 45 mol% or less. Therefore, the molar ratio of the higher saturated fatty acid to the phospholipid is 30 mol% to 50 mol%, preferably 40 mol% to 45 mol%.
To the membrane material of the present invention, a sterol such as cholesterol or tocopherol can be added in order to increase the strength of the membrane.In addition, a substance for controlling transfer to a target organ in a living body or sustained release is used. It is also possible to add.
The substance to be retained and contained and retained in the liposome preparation of the present invention is not particularly limited as long as it does not inhibit the formation of liposome, but it is unstable in in-vitro or in-vivo, A physiologically active substance to be stably retained or a substance which is desired to be rapidly distributed to a specific organ is preferably used. Examples of such retentive substances include, in particular, drugs such as hemoglobin, insulin, heparin, urokinase, shrimp carenone, methotrexate neomycin, pleomycin, tetracycline, cytochrome C, asparaginase, and cytosine arabinoside. Other than the drug, there is no particular limitation as long as it is effective when administered in vivo, such as a marker, antisense, plasmid, DNA, or RNA. The drug-containing liposome preparation of the present invention is produced by a method known per se. For example, a natural phospholipid, a hydrogenated natural phospholipid, at least one of the above-mentioned higher saturated fatty acids and, if desired, a sterol are dissolved in a suitable solvent such as chloroform, ethanol and the like, and the solvent is distilled off from the obtained solution to remove the lipid mixture. Is prepared. An aqueous solution of a drug such as a physiologically active substance is added to the obtained lipid mixture, and the resulting mixture is vigorously shaken, stirred or subjected to ultrasonic treatment to uniformly disperse the drug aqueous solution. The drug not taken into the liposome is removed from the dispersion to obtain a drug-retaining liposome preparation. The liposome preparation thus obtained is optionally prepared as a suspension preparation dispersed in a physiologically acceptable aqueous solution, for example, physiological saline. The liposome preparation of the present invention is administered as a parenteral preparation such as an injection. The liposome of the present invention may be freeze-dried under ordinary conditions. For example, it is preferable that the liposome is frozen at −20 ° C. to −80 ° C. and the ice is sublimated under a reduced pressure of 0.3 torr or less. In order to form a better freeze-dried cake, commonly used excipients such as mannitol, dextrin, glycine and the like may be added.
In the present invention, the liposome preparation is defined as a liposome in which various substances to be retained are sealed.
The liposome preparation of the present invention may further contain an aggregation inhibitor having a hydrophilic polymer chain portion and a hydrophobic portion. The amount of the aggregation inhibitor can be preferably 0.01 to 5% by mass, more preferably 0.01 to 1% by mass, based on the liposome preparation. When the liposome is modified with the “hydrophilic polymer-bound lipid”, if the substance to be encapsulated can be heated, it can be modified to about 5% by mass. If the content is less than 0.01% by mass, the effect of suppressing aggregation is hardly obtained even if the composition is modified. If the content is 1% by mass or less, modification is possible without heating, and a heat-labile protein such as a physiologically active substance or hemoglobin can be contained, and the effect of suppressing aggregation is sufficient. When an aggregation inhibitor is added to the liposome preparation, the hydrophobic part is stably inserted into the liposome surface and fixed to the lipid layer in the liposome, and the hydrophilic polymer chain extends outward from the liposome surface, suppressing liposome aggregation. Take charge of function.
Examples of the "aggregation inhibitor" include, as the hydrophobic portion, various saturated / unsaturated fatty acids, sterols, polyoxypropylene alkyl or glycerin fatty acid esters, and phospholipids, and phospholipids are preferable.
As the hydrophilic polymer chain portion, polyalkylene glycol, polyvinyl alcohol, styrene-maleic anhydride alternating copolymer, divinyl ether-maleic anhydride alternating copolymer, polyglycolic acid, polylactic acid, and dextran, pullulan, And polysaccharides such as ficoll, amylose, amylopectin, chitosan, mannan, cyclodextrin, pectin, and carrageenan. Among them, polyethylene glycol is most desirable because of its remarkable effect of improving blood retention. Polyethylene glycol-bound phospholipids and polyethylene glycol-bound cholesterol are preferred.
Hereinafter, the present invention will be described more specifically with reference to examples, but these are shown as examples of the present invention, and the present invention is not limited thereto.
(Example 1)
A mixture of hydrogenated soybean lecithin (HSPC: molecular weight 790) as a phospholipid, stearic acid (molecular weight 278) as a higher fatty acid and stearic acid (molecular weight 278) as a mixture of different lipids (Table 1) as t-BuOH, It was prepared by dissolving in 10 ml and freeze-drying to remove t-BuOH. To this, 20 ml of a hemoglobin (45 wt%) solution was added, and emulsified (15000 rpm, 1 min, 3 times at 20 ° C. or lower) using a high-speed stirrer (CLM-0.8S, manufactured by CLEARMIX). After emulsification, 30 ml of physiological saline was added to each treated material, and the unencapsulated hemoglobin was centrifugally washed at 40,000 G for 60 minutes three times. Thereafter, the mixture was dispersed in 20 ml of physiological saline and filtered using a 0.45 μm filter, and a polyethylene glycol (PEG) -bound phospholipid was added thereto as an anticoagulant to a concentration of 0.1% by mass. A hemoglobin preparation was obtained.
From these results, the yield of protein, which is hemoglobin encapsulated in liposomes, was determined by the following equation.
"Protein yield (%) = (protein retention amount in liposome / protein input amount at adjustment) x 100"
As a result, when the molar ratio of the fatty acid to the phospholipid was less than 30 mol%, the protein yield remained at about 10% or less, but when the molar ratio was in the range of 30 mol% to 50 mol%, the protein yield was 12% or more. It was found that at a molar ratio of about 40 mol%, the protein yield increased to 16% (FIG. 1).
Also, considering that the administered drug encapsulated in the liposome is efficiently administered to the living body, the larger the amount of the encapsulated protein per lipid amount, the better. Therefore, the amount of the encapsulated protein per lipid amount was determined by the following equation. .
“Encapsulated protein amount per lipid amount = (protein retention amount in liposome / (HSPC amount + cholesterol amount + stearic acid amount))”
From these results, when the molar ratio of the fatty acid to the phospholipid is less than 26 mol%, except for the case where no fatty acid is contained (in this case, almost no liposome-encapsulated hemoglobin preparation was formed), capsules per lipid amount The amount of the encapsulated protein remained at about 1.2, but when the molar ratio was in the range of 26 mol% to 50 mol%, the amount of the encapsulated protein per lipid amount was significantly increased, and when the molar ratio was about 46 mol%, the amount of the encapsulated protein per lipid amount was increased. The amount could be increased to 1.7 (FIG. 2).
Further, in order to evaluate the stability of drug leakage in the liposome formulation in In-Vitro and In-Vivo, the liposome-encapsulated hemoglobin formulation of each mixing ratio was placed in a 50-ml centrifuge tube at 60 ° C./min at 37 ° C. After shaking for 3 hours, the mixture was centrifuged at 40,000 G for 60 minutes, and the amount of hemoglobin leaked into the supernatant was measured. The value obtained by dividing the amount of leaked hemoglobin by the amount of hemoglobin of the original liposome-encapsulated hemoglobin preparation is shown in FIG. 3 as a protein leakage rate (%).
As a result, it was found that the stability of the liposome preparation was enhanced when the molar ratio to the phospholipid was about 12 mol%, and was stable up to a molar ratio of 50 mol%, and particularly stable in a range of 33 mol% to 46 mol%. On the contrary, it was also found that the stability of the liposome preparation was impaired when the molar ratio exceeded 50 mol%.
(Example 2)
HSPC (molecular weight: 790) as a phospholipid, cholesterol (molecular weight: 376), lauric acid (molecular weight: 200), myristic acid (molecular weight: 228), palmitic acid (molecular weight: 256), stearic acid (molecular weight) as higher saturated fatty acids : 278) in a molar ratio to HSPC of 33.3 mol% was mixed to prepare 1 g of a mixed lipid in the same manner as in Example 1. To this, 20 ml of a hemoglobin (45 wt%) solution was added, and emulsified (15000 rpm, 1 min, 3 times at 20 ° C. or lower) using a high-speed stirrer (CLM-0.8S, manufactured by CLEARMIX). After emulsification, 30 ml of physiological saline was added to each treated material, and the unencapsulated hemoglobin was centrifugally washed at 40,000 G for 60 minutes three times. Thereafter, the mixture was dispersed in 20 ml of physiological saline and filtered with a 0.45 μm filter, and a polyethylene glycol-bound phospholipid was added thereto as an anticoagulant to a concentration of 0.1% by mass. Got.
The hemoglobin concentration in the liposome-encapsulated hemoglobin preparation containing each fatty acid thus obtained was measured by atomic absorption, and the HSPC concentration, cholesterol concentration, and stearic acid concentration were measured by high performance liquid chromatography.
From this, the protein yield and the amount of encapsulated protein per lipid amount were determined in the same manner as in Example 1 (FIG. 4).
From these results, it was found that the protein yield was slightly improved by changing the carbon number to 12-18, but the amount of encapsulated protein per lipid amount tended to decrease. The effect of changing the number of carbon atoms is not so large as compared with the case where is set to 30 mol% or more. When the molar ratio of the fatty acid to the phospholipid is in the range of 30 mol% to 50 mol%, the influence of the difference in carbon chain length is small. Do you get it. In the examples, the protein as a substance incorporated in the liposome, the yield, the amount ratio per lipid amount, the leakage rate is measured, but the same applies when a substance other than the protein is incorporated. is there.
Industrial Applicability As described in detail above, the liposome preparation of the present invention provides a drug-containing liposome preparation having an excellent drug retention rate inside the liposome. Furthermore, they have found that liposomes can be formed by blending a fatty acid in an amount conventionally considered impossible to form a liposome as a higher saturated fatty acid having a specific chain length. Phospholipids are the most frequently incorporated substances in the composition of liposome-constituting membrane materials and are very expensive compared to fatty acids. According to the present invention, the amount of the inexpensive fatty acid can be increased, and the amount of the phospholipid can be significantly reduced. Therefore, a membrane agent having an inexpensive composition is provided as a liposome formulation raw material.
[Brief description of the drawings]
FIG. 1 is a graph showing the fatty acid charge ratio and the protein yield.
FIG. 2 is a graph showing the ratio of charged fatty acids and the amount of encapsulated protein per amount of lipid.
FIG. 3 is a graph showing the ratio of charged fatty acids and the stability of liposomes (protein leakage rate).
FIG. 4 is a graph showing the carbon number of the fatty acid carbon chain, the protein yield of the liposome preparation, and the amount of protein per lipid amount.
