JPS61170386A - Production of xanthine dehydrogenase by fermentation - Google Patents
Production of xanthine dehydrogenase by fermentationInfo
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- JPS61170386A JPS61170386A JP1131985A JP1131985A JPS61170386A JP S61170386 A JPS61170386 A JP S61170386A JP 1131985 A JP1131985 A JP 1131985A JP 1131985 A JP1131985 A JP 1131985A JP S61170386 A JPS61170386 A JP S61170386A
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Abstract
Description
【発明の詳細な説明】
産業上の利用分野
本発明は発酵法によるキサンチン・デヒドロゲナーゼの
製造法に関する。DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION Field of the Invention The present invention relates to a method for producing xanthine dehydrogenase by fermentation.
従来の技術
キサンチン・デヒドロゲナーゼはヒポキサンチンあるい
はキサンチンを尿酸に酸化する作用を触媒する酵素(E
C1,2,1,37)で各々の物質を酸化する際にNA
Dを還元し、NADHを生成する。このNADHを、N
ADHによる吸収や、ジアホラーゼとINT(2−p−
ニトロフェニル−3−p−インドフェニル−5−フェニ
ルテトラゾリウムクロライド)でホルマザン色素として
測定することにより、試料中のヒポキサンチンあるいは
キサンチンが定量できる。又、臨床化学の分野で肝疾患
の指標となるグアナーゼ活性の測定などへの応用も可能
である。NADを電子受容体とするキサンチン・デヒド
ロゲナーゼとしては鳥、ラット肝由来の酵素が代表的な
ものであるが、微生物に由来するものとしてはストレプ
トマイセス属(^grc、Rial、Chew、 41
.1161.1977) 、ミクロコツカス属(J、
Biol、 Chell、 242 、4108.19
67)、ノイoxポラ属(J、 Biol、Chew、
253.2604゜1978) 、シュードモナス属
(Biochim、 Biophys。Conventional technology Xanthine dehydrogenase is an enzyme (E) that catalyzes the oxidation of hypoxanthine or xanthine to uric acid.
When oxidizing each substance with C1, 2, 1, 37), NA
Reduces D and produces NADH. This NADH, N
Absorption by ADH, diaphorase and INT (2-p-
Hypoxanthine or xanthine in a sample can be quantified by measuring nitrophenyl-3-p-indophenyl-5-phenyltetrazolium chloride) as a formazan dye. It can also be applied to the measurement of guanase activity, which is an indicator of liver disease in the field of clinical chemistry. Typical xanthine dehydrogenases that use NAD as an electron acceptor are enzymes derived from bird and rat liver, but those derived from microorganisms include those of the genus Streptomyces (^grc, Rial, Chew, 41
.. 1161.1977), Micrococcus (J.
Biol, Chell, 242, 4108.19
67), Neuoxpora (J, Biol, Chew,
253.2604°1978), Pseudomonas (Biochim, Biophys.
^cta、 410.12.1975)などから単離
あるいは精製が行われている。^cta, 410.12.1975).
発明が解決しようとする問題点
この度、ノカルディオイデス属又はノカルディア属に属
する微生物によりキサンチン・デヒドロゲナーゼが産生
されることが見い出された。Problems to be Solved by the Invention It has recently been discovered that xanthine dehydrogenase is produced by microorganisms belonging to the genus Nocardioides or Nocardia.
問題点を解決するための手段
本発明はノカルディオイデス属又はノカルディア属に属
し、キサンチン・デヒドロゲナーゼ生産能を有する微生
物を栄養培地に培養し、培養物中にキサンチン・デヒド
ロゲナーゼを生成蓄積させ、これを採取することを特徴
とするキサンチン・デヒドロゲーゼの製造法に関する。Means for Solving the Problems The present invention involves culturing a microorganism belonging to the genus Nocardioides or the genus Nocardia and having the ability to produce xanthine dehydrogenase in a nutrient medium, producing and accumulating xanthine dehydrogenase in the culture, and The present invention relates to a method for producing xanthine dehydrogase, which comprises collecting xanthine dehydrogase.
以下に本発明について詳細に説明する。The present invention will be explained in detail below.
本発明で使用する微生物はノカルディオイデス属又はノ
カルディア属に属し、キサンチン・デヒドロゲナーゼを
生産する能力を有するもであればいずれの菌株でもよい
。好適な菌株の例としてノカルディオイデス帝アルバス
(Nocardioides albus)^TCC2
?980 、ノカルディア・ユニフォルミス・サブス
ピーシス・ツヤマネンシス(14(ICardiaun
iformis 5ubsp、 tsu amane
nsis )ATCC21806、ノカルディア自コエ
リア力(Nocardia coeliaca)IF
M30が挙げられる。The microorganism used in the present invention may be any strain that belongs to the genus Nocardioides or Nocardia and has the ability to produce xanthine dehydrogenase. An example of a suitable strain is Nocardioides albus^TCC2.
? 980, Nocardia uniformis subspicis tuyamanensis (14 (ICardiaun
iformis 5ubsp, tsu amane
nsis ) ATCC21806, Nocardia coeliaca IF
An example is M30.
本発明で使用する培地としては炭素源、窒素源、無機物
、その他栄養素を程よく含有すれば、合成培地、天然培
地のいずれも使用可能である。炭素源としてはグルコー
ス、シコークロース、廃糖蜜などの炭水化物やキサンチ
ン、ヒポキサンチン、アデニン、イノシンなどの核酸類
が用いられる。As the medium used in the present invention, either a synthetic medium or a natural medium can be used as long as it contains an appropriate amount of carbon sources, nitrogen sources, inorganic substances, and other nutrients. As carbon sources, carbohydrates such as glucose, sicucrose, and blackstrap molasses, and nucleic acids such as xanthine, hypoxanthine, adenine, and inosine are used.
窒素源としては塩化アンモニウム、硫酸アンモニウム、
リン酸アンモニウム、炭酸アンモニウム、酢酸アンモニ
ウム等の各種無機及び有機のアンモニウム化合物、キサ
ンチン、ヒポキサンチン、アデニン、イノシンなどの核
酸関連物質、尿素などの窒素化合物、ペプトン、酵素エ
キス、カゼイン加水分解物、肉エキス、コーン・スチー
ブ・リカーなどの含窒素天然物が使用できる。無機物と
しては、ナトリウム、カリウム、マンガン、マグネシウ
ム、カルシウム等の金属と燐酸、硫酸、硝酸、塩酸等の
無機酸との塩が使用できる。Ammonium chloride, ammonium sulfate,
Various inorganic and organic ammonium compounds such as ammonium phosphate, ammonium carbonate, and ammonium acetate, nucleic acid-related substances such as xanthine, hypoxanthine, adenine, and inosine, nitrogen compounds such as urea, peptone, enzyme extract, casein hydrolyzate, and meat. Nitrogen-containing natural products such as extracts, corn stave liquor, etc. can be used. As the inorganic substance, salts of metals such as sodium, potassium, manganese, magnesium, and calcium and inorganic acids such as phosphoric acid, sulfuric acid, nitric acid, and hydrochloric acid can be used.
培養温度は20〜35℃、好適には25〜30℃の範囲
で行われる。培養開始時のpHは通常6.0〜8.5、
好適には6.5〜8.0の範囲であることが望ましい。The culture temperature is 20 to 35°C, preferably 25 to 30°C. The pH at the start of culture is usually 6.0 to 8.5,
It is preferably in the range of 6.5 to 8.0.
このような条件下で1〜3日間振とう培養すれば、培養
物中車として菌体中にキサンチン・デヒドロゲナーゼが
生成蓄積する。When cultured with shaking for 1 to 3 days under such conditions, xanthine dehydrogenase is produced and accumulated in the bacterial cells as a cell in the culture.
培養終了後、該培養物より本酵素の採取は通常の酵素採
取手段を用いて行うことができる。通常は該培養物から
菌体を遠心分離などにより取得し、この菌体を適当な手
段で破砕し、破砕液から遠心分離等により、上清液を得
る。上清液は通常酵素精製に用いられる方法、たとえば
塩析、透析、DEAE−セルロース、QAE−セファデ
ックス等を用いるイオン交換クロマトグラフィー法やセ
ファデックスG−200、セファロース6BIを用いる
ゲル濾過法及び、ハイドロキシアバタイド等を用いる吸
着溶出法など組み合わせて実施することにより高度に精
製された本酵素標品を得ることができる。After completion of the culture, the enzyme can be collected from the culture using a conventional enzyme collection method. Usually, bacterial cells are obtained from the culture by centrifugation or the like, the bacterial cells are disrupted by an appropriate means, and a supernatant is obtained from the crushed liquid by centrifugation or the like. The supernatant liquid can be purified by methods commonly used for enzyme purification, such as salting out, dialysis, ion exchange chromatography using DEAE-cellulose, QAE-Sephadex, etc., gel filtration using Sephadex G-200, Sepharose 6BI, and A highly purified preparation of the present enzyme can be obtained by a combination of adsorption and elution methods using hydroxy abatide and the like.
本発明におけるキサンチン・デヒドロゲナーゼの活性は
次の方法で測定する。The activity of xanthine dehydrogenase in the present invention is measured by the following method.
0.2Mリン酸緩衝液(1)H7,5) 1.Oa+1
.10mM NAD” 0.2+11.5mMキサン
チン水溶液Q、la+1にジアホラーゼ3.3u%IN
T0.4211g、キサンチン・デヒドロゲナーゼ溶液
0.2mlを加え、全量3.Qslとし、37℃で5分
間反応させ、ホルマザンの490nmの吸光度を測定す
ることにより酵素活性を求めた。0.2M phosphate buffer (1) H7,5) 1. Oa+1
.. 10mM NAD” 0.2+11.5mM xanthine aqueous solution Q, la+1 with diaphorase 3.3u% IN
Add 0.4211 g of T and 0.2 ml of xanthine dehydrogenase solution to bring the total volume to 3. Qsl, the reaction was carried out at 37° C. for 5 minutes, and the enzyme activity was determined by measuring the absorbance of formazan at 490 nm.
酵素単位は、37℃で1分間に1μ1IIO1のキサン
チンを酸化する酵素量を1単位とした。One enzyme unit was defined as the amount of enzyme that oxidized 1μ1IIO1 of xanthine in 1 minute at 37°C.
本発明で得られるキサンチン・デヒドロゲナーゼの性質
は以下に示す。The properties of xanthine dehydrogenase obtained by the present invention are shown below.
(1) 至適pH,安定pH範囲
本酵素の至適pHは8〜8.5で、37℃、30分処理
でpH5〜11まで安定である(第1.2図)。(1) Optimal pH and stable pH range The optimal pH of this enzyme is 8 to 8.5, and it is stable up to pH 5 to 11 when treated at 37°C for 30 minutes (Figure 1.2).
0)至適温度、耐熱性
本酵素の至適温度は40℃付近にあり、0.1Mリン酸
緩衝液(pH7,5)で、50℃、30分処理しても残
存活性90%示す(第3.4図)。0) Optimal temperature and thermostability The optimal temperature of this enzyme is around 40°C, and it shows 90% residual activity even when treated with 0.1M phosphate buffer (pH 7.5) at 50°C for 30 minutes ( Figure 3.4).
(3)基質特異性
前述の測定法において5mM基質溶液0.11を用いて
本酵素−活性を測定し、キサンチンを基質としたときの
値を100として各基質の活性を相対活性で示した。結
果を第1表に示す。(3) Substrate specificity The activity of this enzyme was measured using 0.11 of a 5mM substrate solution in the measurement method described above, and the activity of each substrate was expressed as relative activity, with the value when xanthine being used as a substrate being set as 100. The results are shown in Table 1.
(萄阻害剤
阻害剤を第2表に示す濃度を添加し、本酵素活性を測定
した結果を第2表に示す。(Table 2 shows the results of measuring the activity of this enzyme after adding the inhibitor at the concentration shown in Table 2.
第1表
キサンチン 100
ヒポキサンチン 67.6イ )
シ ン
6.8プ リ ン
2.4キサントシン 2.1
ア デ ニ ン
0.7アデノシン 0
グ ア ニ ン
0グアノシン 0
尿 酸 08−アザ
キサンチン 0
8−アザグアニン 0
第2表
化合物 添加濃度(iM) 相対活性(%)A
gNOs 0.1 0 (3,5)0
CuS04’ 5H*0 0.1 0 (
1,2> ”ZnC1z 3 ’ 92
.3p −クロルマーキlリ−0,10(0)”プエニ
ルスル参ン酸
NaN5 3
96.0EDT^ ・2Na
3 100*N^口Hの340nmの吸収
で測定
(5)分子量
セファデックスG−200を用いたゲルー過法により測
定した本酵素の分子量は54万であった。Table 1: Xanthine 100 Hypoxanthine 67.6a)
Shin
6.8 Pudding
2.4 Xanthosine 2.1 Adenine
0.7 adenosine 0 guanine
0 Guanosine 0 Uric acid 0 8-Azaxanthin 0 8-Azaguanine 0 Table 2 Compound Added concentration (iM) Relative activity (%) A
gNOs 0.1 0 (3,5)0
CuS04' 5H*0 0.1 0 (
1, 2> ”ZnC1z 3' 92
.. 3p-chlormarcyl-0,10(0)”puenylsulnic acid NaN5 3
96.0EDT^ ・2Na
(5) Molecular weight The molecular weight of the enzyme was 540,000 as measured by gel permeation method using Sephadex G-200.
(6)等電点
p H3,5〜10のキャリアアンホライFを用いた焦
点電気泳動より本酵素の等電点は4.1であった。(6) Isoelectric Point The isoelectric point of this enzyme was found to be 4.1 by focusing electrophoresis using carrier amphorae F at pH 3.5 to 10.
(η Klm Vmax
本酵素のキサンチンに対するにω値、Vmaxを測定し
たところ、それぞれ24μM 、0.042u/mlで
あった。(η Klm Vmax When the ω value and Vmax of this enzyme for xanthine were measured, they were 24 μM and 0.042 u/ml, respectively.
以下に本発明の実施例を示す。Examples of the present invention are shown below.
実施例1
第3表に示す3株をキサンチン0.5g/d1、酵母エ
キス0.5g/a、ペプトン0.5g#!。Example 1 Three strains shown in Table 3 were mixed with xanthine 0.5g/d1, yeast extract 0.5g/a, and peptone 0.5g#! .
肉エキス0.5g/aを含む培地(pH7,0)で28
℃で2日間培養し、培養物を遠心分離して菌体を取得す
る。菌体を0.1mM EDTA、0.5mMメルカ
プトエタノールを含む0.02 Mリン酸all液(p
H7,5)に懸濁後、ガラスピーズで破砕して遠心分
離し、無細胞抽出液を得た。その無細胞抽出液の酵素力
価を培養液ml当たりの単位で第3表に示す。28 in a medium (pH 7.0) containing 0.5 g/a of meat extract.
After culturing at ℃ for 2 days, the culture is centrifuged to obtain bacterial cells. The bacterial cells were dissolved in 0.02 M phosphoric acid all solution (p
After suspending in H7,5), the cells were crushed with glass beads and centrifuged to obtain a cell-free extract. The enzyme titer of the cell-free extract is shown in Table 3 in units per ml of culture fluid.
第3表
ノカルディア・ 0.006コ工リ
アカIPM 30
実施例2
ノカルディオイデス・アルバス ATCC27980を
キサンチン0.5g/a、酵母エキス0.5g/J、ペ
プトン0.5g/d1、肉エキス0.5g/di!を含
む培地(p H7,0) 0.31に接種し、28℃で
3日間振とう培養し、培養物を上記培地151中に接種
し、28℃で2日間通気攪拌培養する(攪拌数35 O
r、p、a、 )。得られた培養物から菌体を遠心分離
(8,θ00r、p、m、 xlS分)により取得し、
0.1霞賢EDTA、0.5mMメルカプトエタノール
を含む0、02 Mリン酸緩衝液(p H7,5>に懸
濁後、ダイノミルで破砕し、遠心分離(8,0GOr、
p、 ta、X 20分)により上清に粗酵素液(0
,8u/ml)を得る。粗酵素液に80%(W/V)飽
和までの硫酸アンモニウムを加え、4℃で1晩放置後、
濾過助剤を加えて沈殿区分を集める。沈殿を上記緩衝液
で十分透析後、透析内液を遠心分離(10,00Or、
p、 m、 x20分)し、上清液を得る。上清液に
硫酸アンモニウムを加え、50〜75%飽和で沈殿する
区分を上記緩衝液で十分透析後、HPA−75(三菱化
成)のカラムに通す。上記緩衝液で十分洗浄後、0〜I
M NaC1を用いて濃度勾配法で溶出する。Table 3 Nocardioides 0.006 Co. IPM 30 Example 2 Nocardioides albus ATCC27980 was mixed with 0.5 g/a of xanthine, 0.5 g/J of yeast extract, 0.5 g/d1 of peptone, and 0.0 g of meat extract. 5g/di! (pH 7,0) 0.31, and cultured with shaking at 28°C for 3 days.The culture was inoculated into the above medium 151, and cultured with aeration and stirring at 28°C for 2 days (number of stirring: 35 O
r, p, a, ). Bacterial cells were obtained from the obtained culture by centrifugation (8, θ00r, p, m, xlS minutes),
After suspending in 0.02 M phosphate buffer (pH 7.5>) containing 0.1 Kasumi EDTA and 0.5 mM mercaptoethanol, it was crushed with a Dynomill and centrifuged (8.0 GOr,
p, ta, x 20 min) to add crude enzyme solution (0
, 8u/ml). Ammonium sulfate was added to the crude enzyme solution to saturation of 80% (W/V), and after leaving it at 4°C overnight,
Add filter aid and collect the precipitate fraction. After sufficiently dialyzing the precipitate with the above buffer solution, the dialyzed solution was centrifuged (10,00 Or,
p, m, x 20 min) and obtain the supernatant. Ammonium sulfate is added to the supernatant, and the fraction that precipitates at 50 to 75% saturation is sufficiently dialyzed with the above buffer solution and then passed through a column of HPA-75 (Mitsubishi Kasei). After thorough washing with the above buffer, 0 to I
Elute with concentration gradient method using M NaCl.
得られた活性区分を合わせ、硫酸アンモニウムを75%
飽和になるように添加し、酵素を沈殿させる。次に生じ
た沈殿を遠心分離(12,00Or、 p、III、
x20分)で集め、上記緩衝液5mlに溶解後、平衡化
しておいたセフ7デフクX G −200(Pharm
aciaFine Chen+1cals社製)のカラ
ムに通す。流出した活性画分を集め、^n+1con
Y M−10の膜で濃縮し、ハイドロキシアパタイト
のカラムに通す。素通りしてきた本酵素の活性画分を集
め、凍結乾燥し、粉末精製酵素標品17■を得る。Combine the obtained active categories and add 75% ammonium sulfate.
Add to saturation and precipitate the enzyme. Next, the resulting precipitate was centrifuged (12,00 Or, p, III,
x 20 minutes), dissolved in 5 ml of the above buffer solution, and equilibrated Cef7 Defuku X G-200 (Pharm.
aciaFine Chen+1cals Co.) column. Collect the active fraction that flowed out, and add it to ^n+1con
Concentrate with a YM-10 membrane and pass through a hydroxyapatite column. The active fraction of the enzyme that passed through was collected and lyophilized to obtain powdered purified enzyme preparation 17■.
実施例3
ノカルディア・ユニフォルミス・サブスピーシス・ツヤ
マネンシスATCC21806を用いて実施例2と同様
に培養し、151の培地から自体90gを得る。Example 3 Nocardia uniformis subspice ATCC 21806 was cultured in the same manner as in Example 2, and 90 g of Nocardia uniformis subspice ATCC 21806 was obtained from the 151 medium.
この菌体を実施例2と同様に破砕、精製し、粉末精製酵
素標品91gを得る。The cells were crushed and purified in the same manner as in Example 2 to obtain 91 g of a powdered purified enzyme preparation.
発明の効果
本発明によればノカルディオイデス属又はノカルディア
属に属する微生物によりキサンチン・デヒドロゲナーゼ
が産生される。Effects of the Invention According to the present invention, xanthine dehydrogenase is produced by a microorganism belonging to the genus Nocardioides or the genus Nocardia.
第1〜4図は、それぞれ本発明によるキサンチン・デヒ
ドロゲナーゼの至適pH,安定pH範囲、至適温度、耐
熱性を示す。第1〜4図中、o−。
はリン酸緩衝液の場合を、X−Xはビシンー水酸化ナト
リウム緩衝液の場合を示す。
iJ÷!
Jll 日
pH
第 21!1
処3 園
第4 日
温度(°0
手続補正書
昭和60年3月68
1、事件の表示
昭和60年特許願第11319号
2、発明の名称
発酵法によるキサンチン・デヒドロゲナーゼの製造法
3、補正をする者
事件との関係 特許出願人
郵便番号 100
住 所 東京都千代田区大手町−丁目6番1号名称
(102)協和醗酵工業株式会社明細書の特許請求の範
囲の欄および発明の詳細な説明の欄
5、補正の内容
(1) 特許請求の範囲を別紙のとおり訂正する。
特許請求の範囲
ノカルディオイデス属又はノカルディア属に属し、キサ
ンチン・デヒドロゲナーゼ生産能を有する微生物を栄養
培地に培養し、培養物中にキサンチン・デヒドロゲナー
ゼを生成蓄積させ、これを採取することを特徴とするキ
サンチン・デヒドロゲナーゼの製造法。Figures 1 to 4 respectively show the optimum pH, stable pH range, optimum temperature, and heat resistance of xanthine dehydrogenase according to the present invention. In Figures 1 to 4, o-. indicates the case of phosphate buffer, and XX indicates the case of bicine-sodium hydroxide buffer. iJ÷! Jll Day pH No. 21!1 Place 3 Garden 4 Day Temperature (°0 Procedural amendment March 68, 1985 1, Indication of the case 1985 Patent Application No. 11319 2, Name of the invention Xanthine dehydrogenase by fermentation method Manufacturing method 3, relationship with the case of the person making the amendment Patent applicant postal code 100 Address 6-1 Otemachi-chome, Chiyoda-ku, Tokyo Name
(102) Claims column and Detailed Description of the Invention column 5 of the Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. specification, Contents of amendment (1) The claims are amended as shown in the attached sheet. Claims: A microorganism belonging to the genus Nocardioides or Nocardia and having the ability to produce xanthine dehydrogenase is cultured in a nutrient medium, and xanthine dehydrogenase is produced and accumulated in the culture, which is then collected. A method for producing xanthine dehydrogenase.
Claims (1)
サチン・デヒドロゲナーゼ生産能を有する微生物を栄養
培地に培養し、培養物中にキサンチン・デヒドロゲナー
ゼを生成蓄積させ、これを採取することを特徴とするキ
サンチン・デヒドロゲナーゼの製造法。A xanthine dehydrogenase characterized by culturing a microorganism belonging to the genus Nocardioides or the genus Nocardia and having the ability to produce quinsatin dehydrogenase in a nutrient medium, producing and accumulating xanthine dehydrogenase in the culture, and collecting the same. manufacturing method.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP1131985A JPS61170386A (en) | 1985-01-24 | 1985-01-24 | Production of xanthine dehydrogenase by fermentation |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP1131985A JPS61170386A (en) | 1985-01-24 | 1985-01-24 | Production of xanthine dehydrogenase by fermentation |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS61170386A true JPS61170386A (en) | 1986-08-01 |
Family
ID=11774700
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP1131985A Pending JPS61170386A (en) | 1985-01-24 | 1985-01-24 | Production of xanthine dehydrogenase by fermentation |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS61170386A (en) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105734027A (en) * | 2014-12-11 | 2016-07-06 | 清华大学 | Xanthine dehydrogenase, and coding gene thereof and application |
CN105985935A (en) * | 2015-01-30 | 2016-10-05 | 清华大学 | Xanthine dehydrogenase intercepting body and application thereof |
-
1985
- 1985-01-24 JP JP1131985A patent/JPS61170386A/en active Pending
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN105734027A (en) * | 2014-12-11 | 2016-07-06 | 清华大学 | Xanthine dehydrogenase, and coding gene thereof and application |
CN105734027B (en) * | 2014-12-11 | 2019-03-05 | 清华大学 | A kind of xanthine dehydrogenase and its encoding gene and application |
CN105985935A (en) * | 2015-01-30 | 2016-10-05 | 清华大学 | Xanthine dehydrogenase intercepting body and application thereof |
CN105985935B (en) * | 2015-01-30 | 2019-06-11 | 清华大学 | A kind of xanthine dehydrogenase truncation body and its application |
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