JPS61165400A - アセトアミノフエン分折、トレーサ、免疫源および抗体 - Google Patents

Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 〈産業上の利用分野〉 本発明は流体特に血清、血漿または尿のような生物学的
流体の中のアセトアミノフェンの量を検出するための螢
光偏光免疫分析の方法と試剤、ならびに該試剤の製造法
に関する。更に詳しくは本発明は（１）試料中のアセト
アミノフェンの量を検出するための試剤（トレーサ２よ
び抗体）；（２）抗体を作るのに使用する免疫源化合物
；（トレーサ２よび免疫源化合物を製造するための）合
成法；２よび（３）上記の分析を行なうための分析法に
関する。

く従来の技術〉 アセトアミノフェンは式１ の構造をもち、鎮痛剤および解熱剤として多くの場合処
方される普通のアスピリン代替物でちり、そして一般に
比較的安定なものと考えられている。然し、高い調薬量
は肝臓障害を生せしめることがおり、小売店の処方で入
手できるため偶然まえは意図的な過剰調薬量を伴ないや
すい。その上、過度のアセトアミノフェンによって生じ
る肝臓障害は多くの場合、過度の調剤量の投与がちった
数日後までは徴候があられれず、アセトアミノフェン毒
の解毒剤を有効に投与するには遅すぎることができる。

従って、起りうる過剰投与の診断においてこの薬剤の半
減期をモニタするととが重畳である。これは広範な毒性
の指標だからである。アセトアミノフェンは尿、血清ま
たは血漿中で測定することができる。

過去に２いて、患者の血清または血漿の中にあるアセト
アミノフェンの濃度は代表的には比色分析、薄層クロマ
トグラフ免疫分析、ま九は高性能液体グロマトグラフＣ
ＨＰＬＣ）分析によって測定された。これらの方法は欠
点なしとしない。たとえばこの分析は一般に時間がかか
りすぎる＠ 他の物質についての分析において、競合結合性免疫分析
がもつと満足丁べき別法として与えられた。代表的には
、競合結合性免疫分析は試験試料中のリガンドを測定す
るために使用される（ここでいう「リガンド」とは競合
結合性免疫分析技術によって定量的に測定されるべき生
物学的関心のめる物質でろる。）リガンドはリガンドお
よびリガンド類似体に特異な抗体上の限られ九数の受容
体結合の場について標識付き試剤、または「リガンド類
似体」または「トレーサ」と競合する。試料中のリガン
ドの濃度は抗体に結合するリガンド類似体の量を決定す
る。リガンド同族体の量は試料中のリガンドの濃度に逆
比例する。リガンドとリガンド同族体はそれぞれの濃度
に比例して抗体にそれぞれ結合するからである。

螢光偏光は競合結合性免疫分析中に生成するトレーサー
抗体共役体の量を測定するための定量的手段を与える。

螢光偏光技術は、螢光標識付き化合物は平らな偏光によ
って励起されるときその回転度に逆比例する偏光度をも
つ螢光を放出する、という原理にもとすいている。従っ
て、螢光標識をもつトレーサー抗体共役体が平らな偏光
により励起されると、放出光は高度に偏光された状態に
とどまる。螢光体は光が吸収されて放出されるまでの時
間回転全拘束されるからでるる。これに対して、非結合
トレーサが平らな偏光によって励起されるときは、その
回転は対応するトレーサー抗体共役体よりもずっと速く
なり、分子は一層ランダムに配位される。その結果とし
て、非結合トレーサ分子から放出されゐ光は脱偏光され
る。

このような螢光偏光技術は米国特許第４．４２０．５６
８号（発明者ワングら）に応用されてｐす、そこにはト
リアジニルアミノフルオレセイン部分を螢光体として使
用することが記載されている。

く本発明が解決しようとする問題点〉 本発明は高感度トレーサ、該トレーサの製造法、および
該トレーサを使用する分析をアセトアミノフェンの測定
の九めに特に与えるという点において上記米国特許を越
える進歩を当業技術に提供するものである。本発明によ
り行なわれる分析は以下に述べるように％に正確でらる
。

く問題点を解決するための手段〉 本発明はアセトアミノ７エンの螢光偏光分析：この分析
に使用するトレーサ、免疫源ンよび抗体：ならびにこれ
らトレーサ、免疫源、抗体の製造法に関する。

本発明の第１の面は新規な構造をもつ独特のトレーサお
よび免疫源の発見に関する。本発明の第１の面によれば
、これらのトレーサおよび抗体は共に下記の式５に示す
構造式によって表わすことができる。

友だし上記式５において； Ｑはポリ（アミノ酸）またはポリ（アミノＦｌ）ｎ導体
、フルオレセインま九はフルオレセイン誘導体であり：
ＸはＮＨまたはＣＯでめり； 襲は０．１、ま几は２でｂ９： ＲはＱがポリ（アミノ酸）ま友はポリ（アミノ酸）誘導
体であるときは２個までのへテロ原子を含み、Ｑがフル
オレセインまたはフルオレセイン誘導体であるときは４
個までのへテロ原子上官む、炭素原子とへテロ原子との
合計がＯ〜８である結合基でｂす； ＷはＱがフルオレセインま几はフルオレセイン誘導体で
あるときはＯま友はＳで６９、Ｑがポリ（アミノ）酸ま
たはポリ（アミノ酸）誘導体であるときはＯであり；Ｙ
はＱがフルオレセインまたはフルオレセイン誘導体でる
るときはＯＨ，ＭＥ、、ＣＨ３、Ｆ％ＣＬ、Ｅｒまたは
Ｈでるり、Ｑがポリ（アミノ酸）またはポリ（アミノ［
）誘導体でめるときはＯＨ％ＮＨｔ、　ＣＨ，、Ｆまた
はＣｔ　であり：そして ｚｌ、Ｚｌ、Ｚ、およびＺ４はＱがフルオレセインまた
はフルオレセイン誘導体であるときはそれぞれ独立にＨ
ま几はＦでろり：Ｑがポリ（アミノ酸ンま几はポリ（ア
ミノ酸）誘導体であるときはそれぞれＨである。

Ｑがポリ（アミノ酸〕またはその誘導体でろるとき、該
化合物は免疫源として使用することができる。Ｑがフル
オレセインま次はその誘導体でるるときは、該化合物は
トレーサとして使用することができる。

不発明の第２の面は上記の新規な免疫源によって生ずる
抗体に関する。本発明の第２の面によれば、Ｑがポリ（
アミノ酸）またはその誘導体であるときの前記式５の化
合物に応答して抗体が生成される。

本発明の第３の面によれば、下記の式２に示す構造式に
よって懺わされる化合物をポリ（アミノ酸）またはポリ
（アミノ酸〕誘導体とカップリングさせる工程から成る
ことを特徴とする方法によって免疫源が製造される。

友だし上記式２に２いて； ＸはＮＨ２、Ｃ０ＯＨ，ＣＮ％ＣＨＯ，Ｂｒ１１または
ＯＨであり； ＲはＸがＣ０ＯＨでろるときは炭素原子とへテロ原子と
の合計が０〜８でおって２個までのへテロ原子を含む、
そしてＸがＮＨ，、ＣＭ、ＣＨＯ，Ｂｒ、ＩまたはＯＨ
であるときは炭素原子とへテロ原子の合計が１〜８であ
って２個までのヘテロ原子を含む、結合基であり： Ｙは０１ｌ−ＮＨｔ、ＣＨｓ１Ｊ’またはＣｔである。

本発明の第４の面によれば、下記式３に示す構造式によ
って表わされる化合物を２ルオレセインまたはフルオレ
セイン誘導体とカップリングさせることによるトレーサ
の製造性が提供される。

はＸがＣ０ＯＨ″′ｃめるときは炭素原子とへテロ原子
との合計が０〜８でろって４個までのへテロ原子を含む
、セしてＸがＮＨ，、ＣＭまたはＯＨでちるときは炭素
原子とへテロ原子との合計が１〜８でおって４４ｖＡま
でのへテロ原子を含む、結合基でめり：ＸはＭＥ、、Ｃ
０ＯＨ，ＣＮまたはＯＨである）をもつ基であり： ＹはＯＨ，ＮＥｔ、ＣＨ３，Ｆ％ＣＬ、ＢｙまたはＨで
あり；そして Ｚ□、Ｘ、　、ｚ、およびＺ４はそれぞれ独立にＨまｆ
ｃはＦでろる。

本発明の第５の面によれば、アセトアミノフェンの濃度
測定法が提供される。試料をアセトアミノフェン抗血清
およびアセトアミノフェン抗血清の存在に応答して検出
可能な螢光偏光を発生しうるフルオレセイン含有アセト
アミノフェン誘導体と接触させる。久いて平らな偏光を
この溶液に通して螢光偏光応答を取得し、そしてこの応
答を試料中のアセトアミノフェンの量の順として検出す
る〇本発明の更なる目的および追加の利点は下記の実施
例から最も良く理解されるでろろう。

〈実施例〉 本発明はフルオレセイ７′ｉ？よびフルオレセイン誘導
体の使用を包含する。特にトレーサ化合物の有用性に必
要なフルオレセイン訃よびその誘導体の部分はフルオレ
セインの螢光でろる。フルオレセインは現況の１Ｉ２ｒ
ｌｋ度（アＢ）に依存して下記の式４に示す２つの互変
異性の形体で存在する。

開環形体（酸型）において、青色光を吸収して約４ナノ
秒の励起状態の寿命の後に緑色螢光を放出しうるクルオ
レセイン（′ｓＰよびフルオレセイン部分部分を含む化
合物）の形体全作る多数の共役二重結合が存在する。開
環形体と閉環形体が共有すると、両者の形体の分子の相
対濃度はｐＨ水準の調節によって容易に変えられる。一
般に、本発明のトレーサ化合物はナトリウム、カリウム
、アンモニウムなどのような生物学的に許容しうる塩と
して溶液中に存在する。これらの塩は本発明の分析法に
使用するどき開環螢光形体で該化合物を存在させること
を可能にする。存在する特定の塩はｐＨ水準を調節する
几めに使用する緩衝溶液に依存する。たとえば、リン酸
す）　ＩＪウム緩衝液の存在に２いて、本発明の化合物
は一般にナトＩＪウム塩として開環形体で存在する。

ここで使用する個々の化合物としての又は大きな化合物
＋７）−ｇ分トしての「フルオレセイン」なる用語は、
螢光といり文脈を除いて、特定の分子について存在する
場合の開環と閉環の双方の形体を含むものを意味する。

螢光を生ぜしめるには開放形体が必要である。

フルオレ上４フ分子のもつ炭素原子の番号づけは該分子
の開環形体を考える閉環形体を考えるかによって変化す
る。

従って、フルオレセイン２よびその化合物に関する文献
は炭素原子の番号づけに２いて均一ではない。閉環形体
に２いては、フェニル環のラクトン−カーボニルに対（
、てパラ位置にある炭素が６番である（これは時として
「異性体■」と呼ばれる）。開環形体においては、フェ
ニル環のカルボン酸基に対してパラ位置にある炭素が５
番である（これは時として「異性体Ｉ」と呼ばれる）。

上記の式４はこれらの異性体を示している。本発明の説
明のためには、閉環形体の番号っけが採用される。合成
に使用する原料は最も一般的にこの系について番号づけ
がなされているからでおる。

それ故、カルボキシル基と反対位置のフルオレセイン２
よびその化合物の炭素原子燻本明Ｍｉ沓では６番と呼、
穐抗体に結合していないトレーサは螢光の吸収と再放田
に球な時間よりも短い時間だけ回転自白でるる。その結
果として、再放出光は比較的ランダムに配向され、抗体
に結合していないトレーサの螢光偏光は低く、はぼゼロ
である。

特定の抗体に結合すると、そのようにして生成したトレ
ーサー抗体錯体は比較的小さいトレーサ分子の回転より
も遅い抗体分子の回転をと９、それによって観察される
偏光は増大する。それ故、リガンドが抗体の場について
トレーサと競合するとき、トレーサー抗体錯体について
観察される螢光偏光はトレーサとトレーサー抗体錯体と
の間のどこかの値になる。試料が高濃度リガンドを含ん
でいると、偏光値は遊離トレーサのそれに近い、丁なわ
ち低い。試料が低濃度リガンドを含んでいると、偏光値
は結合トレーサのそれに近い、すなわち高い。免疫分析
の反応混合物を垂直偏光により次いで水平偏光によつ逐
次励起させ、そして放出光の垂直成分のみ全分析するこ
とによって、反応混合物中の螢光偏光を正確に測定する
ことができる。測定子べきリガンド濃度と偏光との間の
正確な関係は周知濃度についてキャリブレータの偏ｉ＊
を測定することによって求められる。リガンド濃度はこ
の方法で作られた標準曲線が外挿することができる。

本発明（より作られる特殊なトレーサは後に詳しく述べ
るように驚くべきほど良好な分析を生ぜしめることが見
出された。

１、試料 本発明の免疫源とトレーサの双方は前記の式５に示す一
般構造式によって表わすことができる。Ｑがポリ（アミ
ノｍｌ）であるとき式５の化合物は免疫源を表わし、Ｑ
がフルオレセイン部分であるとき式５の化合物はトレー
サを表わす０ 目的物は抗体の認識場所についてアセトアミノフェンと
トレーサとの間に競合をもつものでなければならない。

ハプテンとトレーサとの構造の大きな変化はこの目的を
達成することを可能にする。本発明の目的にとって、「
ノ・ブテン」は免疫源の前駆体でおり、一般には置換ア
＝　ＩＪド誘導体２よびポリ（アミノ酸Ｊ担体への結合
性基から成る。

侮）免疫源の構造 使用しうる抗体は種々のアニリド誘導体から製造するこ
とができる。アセトアミノフェンのＯＨの代すニｏＨ。

ＮＨ２、ＣＨ８、ＦまたはＣｔをもつ化合物から作った
免疫源は動物中に抗体を作りうる。このような抗体は適
切なトレーサと組合せたとき本発明によるアセトアミノ
フェン分析に有用である。

本発明の免疫源は下記の式６に示す一般構造式をもち、
そして本発明の好ましい形体に２いて該免疫源は下記の
弐８の一般構造式をもつ。

ＯＨ基訃よび芳香環の最良の認識は、これらの基からで
きるだけ離れた位置で環が置換されているときに生じる
ので、上記の構造は好ましい。ウシ血清アルブミンはこ
の好ましい形体に訃けるポリ（アミノ［）であるけれど
も、アルブミ／、血清タンパク九とえばグロブリン、眼
球レンズのタンパク、脂質タンパクなどを包含する種々
のタンパク担体も使用しうろことを理解丁べきでめる。

このようなタンパク担体として、クシ血清アルブミン、
キイホールリンペットヘモシアニン、卵巣アルフミン、
ウシ−γ−グロブリン、チロキシン結合性グロブリンな
どがめげられる。るるいはまた、十分な数の有効アミン
基金もつ合成〔ポリアミノ酸９次とえばりジンも好まし
い。

免疫源は前記式２に示す種類の化合物をポリ（アミノ酸
）ま′ｆｃはポリ（アミノ酸）誘導体と、以下に述べる
合成法２よび実施例のようにして、カップリングさせる
ことによって製造しうる。

本発明のトレーサの構造の可能な変化はそのハプテンの
構造の可能な変化よりも大きくさえおる。不発明のトレ
ーサは下記の式７に示す一般構造金もつ。ただしＦｔは
フルオレセイン部分ま几はフルオレセイン誘導体上水す
。本発明の好ましい形体に２いて、トレーサは下記の式
９に示す一般構造をもつ〇 トレーサは、たとえばアミド、アミジノ、トリアジニル
アミノ、カルバミド、チオカルバミド、カルボモイル、
チオカルバモイル、ま友はスルホニルカルバモイル基に
よってフルオレセイン誘導体に結合されるアニリド鰻導
体である。これらのトレーサの構造式は下記式１１−１
〜式１ｌ−ＩＯＫよって示される（式中のＦｔは前記の
とおりである）。

（式１ｌ−１）Ｃ式１ｌ−２） （式１ｌ−３）Ｃ式１ｌ−４） −ＣＯＮＨ−Ｆｔ　　　　−ＣＮＨ−ＮＨ−ＩＰｔ　　
−ＮＨ−ＣＯ→＃Ｆｔ（式１ｌ−５）Ｃ式１ｌ−６）（
弐１ｌ−７）−ＮＨ−Ｃ３−ＮＨ−ＦＬ　　−０−ＣＤ
−ＮＨ−ＦＬ　　−０−Ｃ８−ＭＥ−ＦＬ（式１ｌ−８
）（式１ｌ−９）（式１ｌ−１０）トレーサは適当なフ
ルオレセイン誘導体をアミノ、カルボン酸、ヒドロキシ
、イミデート、ヒドラジド、インシアネート、チオイソ
シアネート、クロホーメート、クロロチオホーメート、
クロロマルホニルカルバそイル、などの基を含むアニＩ
Ｊド誘導体に、下記の合成法および実施例に示すように
して、結合させることによって製造される。

実例をめげれば、下記のフルオレセイン誘導体の任意ノ
ものを使用することができる。

Ｆｔ−ＮＨ，フルオレセインアミン Ｆｔ−ＣＯＯＨカルボキシフルオレセインＦｔＮＨＣＯ
ＣＨｘｌ　　　　α−ヨードアセトアミドフルオレセイ
ン ｉ”ｔ−ｙｃ　ｓ　　　　　　フルオレセインチオイソ
シアネート ２、抗体 本発明の抗体は上述の免疫源に対する動物中の６答を発
展させることによって製造される。免疫源は当業者に周
知の方法でウサギまたはヒツジのような動物に一連の注
射により投与される。

８、合成法 本発明の免疫源とトレーサの双方は次式１０に示す一般
構造式をもつ前駆体から製造することができる。

ただし上記式１０において、 基Ｕ中のＸは免疫源の製造の場合にはＮＨ，％Ｃ０ＯＨ
。

ＣＨＯ，ＣＭ％Ｂデ、ＩまたはＯＨであり、トレーサの
製造の場合にはＮＨ，、Ｃ０ＯＨ，ＣＭまたはＯＨでめ
り：ＵはＨまたは式−〇−Ｒ−Ｘ（Ｗはトレーサの製造
の場合にはＯまたはＳでおって免疫源の製造の場合には
Ｏでろ’）；！＆ｉ上記定義ｏ　ト２　つテｈ　’）　
ｐ　Ｒｉｊ：Ｘ　ｂ”ＮＨｔ、ＣＭ。

ＣＨＯ％Ｂｙ％ＩまたはＯＨでおるときは炭素原子とへ
テロ原子との合計が１〜８でおってＸがＣ０ＯＨでろる
ときは炭素原子とへテロ原子との合計が０〜８である、
４個までのへテロ原子を含む結合基である）の基であり
：Ｙはトレーサ製造の場合にはＯＨ，ＮＨ，、ＣＨｌ、
Ｆ％ＣムＢデまたはＨであって免疫源製造の場合には０
Ｈ１ＮＨｈｃＨ３、Ｆま九はＣｔでめり；そして ＺＩ、ｌ１２ｓＺ３およびｚ４はトレーサ製造の場合に
はそれぞれ独立にＨまたはＦでおり、免疫源製造の場合
にはそれぞれＨでおる。

（α）免疫源の合成 本発明の免疫源はハプテンたとえばＸがＮＨｖ　、　Ｃ
０ＯＨ。

ＣＮ、ＣＨＯ％Ｂｙ１１またはＯＨでろるときの前記劇
匂の一般構造式で示されるハプテンをポリ（アミノＩＩ
）にカップリングさせることによって製造される。ポリ
（アミノＩＩ）部分はアミド、アミジン、アルキル、尿
素、チオ尿素、カーバメート、またはチオカーバメート
の結合によってノ・ブテンに結合させることができる。

好ましい具体例に２いて、ポリ（アミノＥｌ）はウシ血
清アルブミン（ＢＳＡ）であり、そしてハプテンは下記
の実施例４で使用される下記の化合物１８で示される。

０＝ＣＣＨｄ このハプテンは好ましくはふつうに使用される条件下で
カップリングされてアルキル結合を形成する。このよう
な条件は当業者に周知である。高ｐＨ条件を使用して所
望のアルキル結合を生成させるのが最も好ましい。これ
らの条件がこの種の結合を作るのに最も有効だからであ
る。

免疫源は−ＮＨ宜、　Ｃ０８Ｈ１Ｃ０ＮＨＮＨ＊、−Ｃ
ＭＯＲ。

−ＣＨｏ、−Ｂデ、−１，−ＮＣＯ，−ＮＣ３，−０Ｃ
ＯＣＬ　　または−ｏｃｓｃｔの基を含むノ・ブテンを
ポリ（アミノ酸）にカップリングさせることによって製
造される。−ＮＨ，基を含むハプテンは該−ＮＨ，基の
存在下でポリ（アミノＩりのカルボン酸基を活性化する
ことによってカップリングさせるコトができる。ポリ（
アミノ酸］のカルボン酸基の活性化はハプテンおよびポ
リ（アミノ酸）を１−エチル−３−（３−ジメチルアミ
ノプロピル）カルボジイミド（ＥＤＣン、ｙ、ｙ’−ジ
シクロへキシルカルボジイミド（ＤＣＣ）、１−シクロ
ヘキシル−３−（２−モルホリノエチル］カルボジイミ
ド−メトキシ−ｐ−トルエンスルホネートなどと混合す
ることによって達成される。−〇〇、Ｈ基を含むノーブ
テンもこの活性化法（ＥＤＣ）によって又は下記のトレ
ーサ合成の項で述べる活性エステル化法によってカップ
リングさせることができる。−ＣＯＮＭＨ，基を含むノ
・ブテンは非芳香族アミノの場合と同様の方法でカップ
リングさせることができる。−ＣＮＯＥ基金含む上官テ
ンはポリ（アミノ酸）に直接カップリングさせられる。

−ＣＨＯ基を含むハプテンは還元アミノ化によってポリ
（アミノＩＩ）にカップリングさせられる。ポリ（アミ
ノ酸）は−〇ＨＯ含有ハプテンと混合し、生成するイミ
ンをナトリウムシアノボロハイドライドで還元してポリ
（アミノＩＩ）上にアルキル化アミンを生せしめる。−
Ｂｒまたは−Ｉｆ含むハプテンもポリ（アミノ酸）上に
アルキル化アミン金生ぜしめるが、ポリ（アミノ酸）上
のアミンへのアルキル・ハライドの直接カップリングに
よる。インシアホー）（−ＮＣＯ）、インチオシアネー
ト（−ＮＳＣ）、クロロホーメート（−〇〇〇Ｃ１）ま
たはクロロテオホーメー）　（−０Ｃ８ＣＬ）ｋ含むハ
プテンはそれぞれ尿素、チオ尿素、カーバメート、また
はチオカーバメートの結合を作る。これはポリ（アミノ
［）へのハプテンの直接カップリングによって達成され
る。

上記のハプテン（Ｙ−ＯＨ，ＮＨｔ、ＣＨｓ％Ｆまたは
Ｃｔの場合の免疫源前駆体）の合成は非常に類似の方法
で行なわれる。前記式２は本発明の方法の好ましい具体
例による免疫源前駆体を示すもののである。

一般に、ハプテンは適当なアニリン誘導体たとえば４−
ヒドロキシアニリン、４−フロロアニリンなど全対応す
るカルボン酸誘導体Ｘ−Ｅ−ＣＯ２Ｈと反応させること
によって製造される。このカップリングはカルボン酸誘
導体の対応する酸塩化物、酸無水物、活性エステルま几
は混合酸無水物の形成によって達成される。

Ｙ＝ＮＨ，の場合には、最良の結果をもたらす出発原料
は４−ニトロアニリン（Ｙ＝ＮＯ，）である。合成の適
切な段階において、標準法によりニトロ基ｔアミノ基に
還元する。

Ｘ＝ＮＨ，およびＣＨＯの場合には、これらの基をそれ
ぞれＣ−ブトキシカーバミル基などで保護し及びアセタ
ール誘導体への転化で保護するのが最も良い。カップリ
ング完了後に、これらの保護基を除く。Ｘ＝Ｃ０，Ｈの
場合には、対応する環状無水物を利用するのが最も艮い
。この環状無水物は適当なアニリン誘導体ど縮合して・
・ブテンを生成する。

これが容易でないか又は望ましくないときは、このＸ＝
ＣＯ！Ｈの基はエステルとして保護することができ、こ
のエステルは標準法によって容易に加水分解してカルボ
ン酸基とすることができる。

Ｘ＝ＮＨ，、−Ｃｏ、Ｈ，−ＢＴ、および−Ｉの誘導体
が免疫源を製造するためカップリングを行なうのに好適
でるる・；トリル誘導体（Ｘ＝ＣＭ）は該ニトリル基を
無水アルコール訃よび塩化水素ガスで処理することによ
ってアルコキシ・イミデー）ＣＩ＝−ＣＭＯｎ）に転化
される。このアルコキシ・イミデー）？Ｒいてカップリ
ングのｔめ使用する。ヒドラジド誘導体（Ｘ：＋＋−Ｃ
ＯＮＨＮＨｔ　）は活性エステルをヒドラジンとカップ
リングさせることによって又はヒドラジンを対応するカ
ルボン酸エステル誘導体と反応させることによって対応
するカルボン酸誘導体から製造される。アルデヒド誘導
体（Ｘ＝−ＣＨＯ）を前述のように免疫源を作る友めに
カップリングさせるのに好適である。Ｙ＝ＯＨまたはｆ
ｆ、基の適切な保護を用い、アミンまたはアルコールを
ホスゲンまたはチオホスゲンと反応させることによりア
ミン（Ｘ＝ＮＨ，）　　をインシアネートまたはチオイ
ソシアネ−ト誘導体に転化することができ、そしてアル
コール＜Ｘ＝ＯＲ）をクロロホーメートまたはクロロチ
オホーメートに転化することができる。これらの誘導体
を次いでポリ（アミノ酸）にカップリングさせてから保
護基な除く。

ヨード誘導体は沃化ナトリウムなどを用いるハロゲン交
換により対応するブロモまたはクロロ銹導体から製造す
ることができる。

アルデヒドは（アミノヒドロキシ）アルキルカルボン酸
たとえばＮ＆　ＯＣＨｚ　Ｃ□ｔＨと縮合させて置換オ
キシム訪導体とすることができる。これらは容易にポリ
（アミノ酸）にカップリングされる。オキシムアルキル
カルボン阪誘導体は部分還元して対応する（アミノヒド
ロキシンアルキルｆＪｋボン酸とすることができ、後者
もポリ（アミノＦｌ）にカップリングされる。同様の種
類縮合と還元はヒト２ジンおよびヒドラジン誘導体を用
ｉて行なうことができる。

（ｂ）トレーサの合成 本発明のトレーサはフルオレセイン部分またはフルオレ
セイン誘導体ｔ％ＸがＮＨ，、ＣｏＯＨ％ＣＮ０Ｅまた
はＯＢである前記式６で示される一般構造式をもつ前駆
体にカップリングさせることによって製造される。フル
オレセイン部分は前記式１１−ＩＮｌ　１−１０に示す
ように、アミド、アミジン、尿素、チオ尿素、カーバメ
ート、チオカーバメート、トリアジニルアミノ、または
スルホニルカーバメートの結合によってアミノ、カルボ
キシ、イミデートまたはアルコキシの官能器に結合させ
ることができる。現在好ましい具体例において、フルオ
レセイン誘導体は６−カルボキシフルオレセインであり
、これは前記式１０に示す前駆体にカップリングさせる
ことができる。６−カルボキシフルオレセインは６−カ
ルボキシフルオレセインの活性エステルをまず作ること
によって４−アミノフェノールにカップリングされる。

この活性エステルは乾燥ピリジン中のＮ、Ｎ’−ジシク
ロへキシルカルボジイミドにより、Ｎ−ヒドロキシサク
シノイミド、１−ヒドロキシベンゾトリアゾール、また
はｐ−ニトロフェノールから製造することができる。他
の溶媒たとえばジメチルホルムアミドおよびジメチルス
ルホキサイドを使用することもできる。このトレーサの
構造式は実施例１７に式１７で示すとおりでめる。有用
なトレーサは種々のアニリド誘導体から製造することが
できる。

末端アミノ基たとえばアミノ、ヒドラジニル、ヒドラジ
ドなどをもつすべてのアニリド誘導体は活性エステル化
法または混合無水物法によってカルボキシフルオレセイ
ンにカップリングさせられ、また溶液中で単に両者を混
合することによってフルオレセイン・インシアネート、
ＤＴＡＦまたはアルコキシＤＴＡＦにカップリングさせ
られる。アミノ基はそれぞれホスゲンおよびチオホスゲ
ンとの反応によってインシアネートおよびチオイソシア
ネートに転化させることができる。これらは次いでアミ
ノフルオレセインとの縮合によりトレーナを生じる。Ｙ
＝ＯＨおよびＮＨ，基はアミノ基からインシアネートま
たはチオイソシアネート基への変換のために保護基を必
要とする。フルオレセイン・アミンへのカップリングが
完了した後（保護基を除くことができる。

末端カルボン酸基たとえばカルボン酸、（アミノヒドロ
キシ）アルキルカルボン酸などをもつすべてのアニリド
誘導体は活性エステル化法によって７ミノフルオレセイ
ンにカップリングされる。Ｙ＝ＮＨ，基は活性エステル
化カップリング中に保護されることが好ましい。

末端ヒドロキシ基をもつすべてのアニリド誘導体は溶液
中でのＤＴＡＥ１α−ヨードアセトアミドフルオレセイ
ン、またはフルオレセインインチオシアネートとの反応
によってフルオレセインにカップリングさせることがで
きる。ヒドロキシ基はクロロスルホニルイソシアネート
、ホスゲンおよびチオホスゲ／との反応によりそれぞれ
クロロスルホニルカーバ七イル、クロロホーメートおよ
びスルホニルイソシアネートに１ヒさせることができる
。これらの誘導体は次いで溶液中のアミノフルオレセイ
ンにカップリングされてトレーサを生じる。Ｙ＝ＯＨ＆
よびＮＨ，基はカップリング反応およびヒドロキシ基か
らクロロスルホニルカーバモイル、クロロホーメート２
よびクロロチオホーメートへの転化のために保護基を必
要とする。これらの保護基はフルオレセイン誘導体への
カップリングの後に除かれる。

宋端ニトリル基をもつすべてのアニリド誘導体は塩化水
素ガスの存在下で無水アルコール中においてイミデート
に転化される。このイミデートは次いで溶液中のフルオ
レセインアミンにカップリングしてトレーサを生じる。

アニリド誘導体の種々のアミノ、カルボン酸、およびニ
トリル誘導体の製造は、Ｙ＝Ｂｒｓ　ＨｓでＺ　１　、
Ｚ　ｔ　％：ｌ　ｚ　オよび／またはＺ４＝Ｆの場合を
除いて、前記の免疫源の製造の項で述べたとおりである
。Ｙ＝またはＨの場合の誘導体はＹ＝Ｃ１の場合と同じ
方法で製造され也Ｚ　１　、ＩＩ　＊、Ｚ３′ｓ？よび
／またはＩＩ、＝Ｆ　　の場合の誘導体は対応するアミ
ノ誘導体から製造される。アミン誘導体は対応するニト
ロ誘導体　。

の反応によって製造される。ニトロ誘導体は周知のベン
ゼン誘導体から周知の方法によって製造される。

４、分析 本発明の特殊なトレーサと抗体はアセトアミノ７エンの
螢光偏光分析において驚異的に艮好な結果を生ずること
が発見された。前記式ｌば本発明により定量的に測定し
うるアセトアミノフェンの一般構造式を示す。本発明の
分析法は分析前に試料の処理全必要としないので、はと
んどの従来技術よりも迅速なアセトアミノフェン分析法
金与える。

この分析系は、分析がアセドアミノフェン状物質に対し
て最小のクロス反応をもつので、試料中のアセトアミノ
フェンの食を正確［測定する。

本発明の分析法によれば、すなわち本発明のトレーサ化
合物と免疫源を使用する螢光免疫分析法によるアセトア
ミノフェン測定法によれば、アセトアミノフェンを含む
又は含むと考えられる試料金トレーサの生物学的に許容
しうる塩２よびアセトアミノフエ／とトレーサに対して
特異性をもつ抗体に混合する。抗体は前述のようにして
免疫源を使用して製造される。アセトアミノフェンとト
レーサは限うれた抗体の場について競合し、錯体の形成
をもたらす。トレーサと抗体の濃度を一定に保つことに
よって、生成するアセトアミノフェン・抗体錯体／トレ
ーサー抗体錯体の比は試料中のアセトアミノフェンの量
に正比例する。それ故、混合物を線状偏光で励起してト
レーサ２よびトレーサー抗体錯体によって放出される螢
光を測定すれば、試料中のアセトアミノフェンの量を定
量的に求めることができる。

見られる結果は正味のミリ偏光単位、スパン（ミリ偏光
単位で表示ンおよび相対強度の項目で定量化することが
できる。ミリ偏光単位の測定は最大量のトレーサがアセ
トアミノフェンの不存在下で抗体に結合するときの最大
偏光を示す。正味のミリ偏光単位が高いほど抗体へのト
レーサの結合は良好でおる。スパンは正味のミリ偏光単
位と抗体へのトレーサの最小結合量との間の差の指標で
らる。大きなスパンはど良好な数値分析データ金与える
。強度は背景より上の信号の強度の尺度である。従って
強度が大きいほどより正確な測定を与える。強度は、（
垂直偏光強度）＋２×（水平偏光強度）の合計として、
本発明の好ましいトレ−サについて約０．９〜２，２ナ
ノモルにおいて測定される。

強度は、トレーサ濃度および他の分析可変因子に依存し
て、背景ノイズの約３倍から約３０倍までの信号からの
ものでありうる。本発明の目的のためには、背景ノイズ
の約８倍〜約１０倍にはソ当る強度が好ましい。

下記の第１表は本発明の稽々の実施例で見られ九結果を
スパン、ミリ偏光単位２よび強度の項目で示すものであ
る。

丁べての場合に、クシ血清アルブミン（ＢＳＡ）ｋタン
パク担体として使用した。第１表のデータかられかるよ
うに、式１８（実施例４参照）のハブテンを式１７（実
施例１７参照ンのトレーサと組合せて製造した免疫源か
ら見られた分析は丁ぐれた結果を与える。従ってこの組
合せは本発明の最も好ましい形体である。また、式１８
と式１２、式１８と式１３、式１９と式１３、式１９と
式１４、および式２０と式１３のそれぞれの組合せによ
って示されるハブテン／トレーサの組合せも許容しうる
結果金与え、別の好ましい組合せである。

第　Ｉ　茨 式１９　　　式１４　　　２１９　１４０　１２．９式
２０　　　式１４　　　１８１　　４０　１３．２注： 畳ミリ偏光単位で表示した値 軸　これは（正味の強度〕／背景ノイズの比として表示
した値でろる。

本発明の方法を実施する際のｐＨはトレーサのフルオレ
セイン部分を開環形体で存在させるにｆ分でなければな
らない。このｐＨは約３〜約１２の範囲にあることがで
きるが、よりふつうには約５〜１０でちり、最も好まし
くは約６〜９で弗る。種々の緩衝液を使用して分析実施
中のｐＨ金上記の範囲に到達させ且つ維持することがで
きる。代表的な緩衝液はボレート、ホスフェート、カー
ボネート、トリス、バルビタールなどである。使用する
特定の緩衝液は本発明にとって臨界的ではないが、トリ
スおよびホスフェートの緩衝液が好ましい。緩衝液のカ
チオン部分は溶液中のトレーサ塩のカチオン部分を一般
に決定する。

本発明の改良分析の好ましい方法を以下に詳しく述べる
。

ここでいう分析は「均一分析」であって、端部偏光の読
みが、結合トレーサが非結合トレーサから分離されない
溶液からとられたものであることを意味する。これは読
＆を行なう前に結合トレーサ金非結合トレーサから分離
しなければならない不均一免疫分析法よりも明らかに丁
ぐれ次利点である。

本発明の螢光偏光分析用試剤はアセトアミノフェンとト
レーナに対して特異性のめる抗体を含む。また、アセト
アミノフェン予備処理溶液、稀釈緩衝液、アセトアミノ
フェンのキャリブレータ、訃よびアセトアミノフェンの
対照標準を包含するきわめてふつうの溶液も望ましく製
造される。

これらの試剤の溶液（そのうちの若干は下記に示す）は
米国イリノイ州アボット・パークのアボット・ラボラト
リーズからの分析「箱」に２いて商業的に入手できる。

ここに述べる丁べての％は他に特別の記載のない限りｌ
量／容量で表わし九％である。好ましいトレーサ配合物
は０．１モルのトリス緩衝液（ｐＨ７，５）、０．２％
ドデシル硫酸ナトリウム、０．１％アジ化ナトリウム２
よび０．０１％ウシ−ｒ−グロブリンの中の７８または
１５６ナノモルのトレーサである。抗血清配合物は０．
１モルのリン酸ナトＩＪウム緩衝液（ｐＥ　７．５　）
、０．１％アジ化ナトリウム、０．０１％ウシ−γ−グ
ロブリン、訃よび２％エチレングリコール（容ｆｃ／容
量〕で希釈したヒツジ血清から成る。この希釈用緩衝液
は０．１モルのリン酸ナトリウム（ｐＥ　７．５　）、
０．１％アジ化ナトリウム、ひよび０．０１％ウシ−γ
−グロブリンから成る。予備処理溶液は０．１モルのト
リスミｍ液（、Ｉｆ　７．５）、０．１％アジ化ナトリ
ウム、（Ｌ２Ｎドデシル硫酸ナトリウム、２よび０．０
１％クシ−γ−グロブリンから成る。アセトアミノフェ
ンのキャリブレータはｌ＋＋ｄ当り０．０．１０．０．
２０．０．５０．０、ＩＱＯ，Ｏｊ？よび２００．０マ
イクログラム（μｊｉ）（Ｉｋｌｔの通常のヒト血清中
のアセトアミノフェンから成り、保存剤として０・１％
アジ化ナトリウムを用いるのも有用でろる〇 好ｆしい方法は、米国テキサス州アービングのアボット
・ラボラトリーズから入手しうるＡｂｂｏｔｔ　ＴＤ、
＠　ＡＳＧ−ｔｙロデど組合せて用いるように特に設計
されている。

５０μｔ（マイクロリットルンの血清ｆ友は血漿が必要
である。キャリブレータ、対照標準Ｉたは禾昶試料全上
記ＴＤ、■試料カートリッジの試料血中に直接ピペット
で入れる。この方法の利点の１つは試料が特別の調製ｔ
−なんら必要としないことである。分析法はこの観点か
ら十分に自動化される。

手動による分析が好ましいときは、試料金希釈用ｉ＆衝
剤中の予備処理溶液と混合して背京の仇みｔとる。久い
でトレーサを分析試料と混合する。次いで抗体を試験溶
液中に最終的に混合する。培養後に、螢光偏光の読４を
とる。

キャリブレータ、対照標準または試料のそれぞれの螢光
偏光値ｔｍＪ足し、Ａｂｈｏｔｔ　ＴＤｌｏＡｓａｌｙ
ｚａｒのような機器の出力テープにプリントする。非線
状回帰分析を使用してそれぞれのキャリブレータの偏光
ｔその濃度に対してプロットすることによって標準−ｌ
ｌ１ｔｔ−機器中に発生させる。

対照標準ま次は試料のそれぞれの濃度を貯蔵キャリブレ
ーション曲線から読みと９、出力テープ上にプリントす
る。

上記の好ましい方法に関して、トレーサ、抗体、予備処
理溶液、キャリブレータ、２よび対照標準は約り℃〜約
８℃の間に貯蔵丁べきでらるが希釈用緩衝液はＮ温で貯
蔵すべきでおるということに注目丁べきてるる。標準曲
線および対照標準は２週間毎に行なうべきでめ９、それ
ぞれのキャリブレータ２よび対照標準の操作は２回行な
うべきでめる。対照標準はそれぞれのバッチについて行
なうべきでるるか、すべての試料は２回行なうことがで
きる。

以上の詳ｍな記述２よび下記の実施例は説明の友めのも
ので心って本発明の範囲を限定するものではないことを
理解丁べきでめる。種々の変形が漁業＠にとって明らか
くなるであろう。従って本発明の範囲は特許請求の範囲
およびその法的均等範囲によってのみ規定される。

実施例 実施例１〜２０は本発明の概念に従って行なわれ′ｆｃ
笑験金述べたものである。実施例１〜２は抗体の装造に
有用な免疫源の製造に関し、実施例３〜１３は免疫源お
よびトレーサの前駆体の製造に関し、そして実施例１４
〜２０はトレーサの製造に関する。

疫源の製造 式１８ 全もつハプテｙ（１５２，０４ｍ９）を約１．０−のジ
メチルホルムア゛ミドにとかした。蒸留水（９，０−）
ｔ−この溶液に加え、次いで７９．８６〜のＢ５Ａｔ−
加えた。この溶液を１．０Ｎ（ＤＫＯＨでｐＨ１０，０
にまで滴定した。反応中このｐＨｔモニタしてこの（［
が保たれて―ることを確かめた流出液としてｐＨα０の
０．０１ｊ７カーボ不−ト緩衝液金使用して、生成物ｆ
Ｇ−２５セファデックスカラム上で精製した。

次いで生成’＊ｔ″水酸化アンモニウムに対して久ｉで
塩水に対して透析した。

実施例２゜ の免疫源の製造 式１９ をもつハプテン（１００ｍ９）ｉ７７．９■のＮ−ヒド
ロキシサクシニイミドと１３　ｇ、５Ｍ９のジシクロへ
キシルカルボジイミドと混合し、１．０１１１ｔのピリ
ジンにとかした。約１％時間後に、ジシクロヘキシル尿
素が生成し、反応が起つ友ことを示した。次いで約１０
０■のＢＳＡｆ蒸留水にとかした。ハプテン溶液を濾過
し、ＥＳＡ溶液に（混合しながら）滴下状に加えた。反
応全呈色で一夜進行させた。溶出液としてリン酸塩緩衝
液を使用して、生成物をＧ−２５セフアデツクスカラム
上で精製し、次いで水に対して透析した。

実施例８゜ ４−（グロロアセトアミド）フェノール４−アミンフェ
ノール（２−２１ｔ”５０−のアセトン中に懸濁させ、
この懸濁液に１０−アセトン中のクロロアセチルクロラ
イド（５，６，９）　ｋ滴下状に加えた。混合物を１時
間還流させた。呈色１で冷却した後に、５０ｍの水を加
えた。アセトン全真空除去し、水（５０ｍ）ｔ−加えた
。この溶ａ’ｔ１時間、約ｌＯ℃になるまで冷却した。

生成した固体生成物を濾過して２３ｇの生成物をえ次。

４−（２−グロロアセチルアミトリフェノール（１８６
／〕２よびヨウ化ナトリウム（３，０Ｑｐ）１ｔ３０−
のアセトンにとかし、約１時間還流させた。熱溶液をＰ
遇し、アセトンで洗った。溶ＩＦＬｔ−集めて５０−の
水に加え、２５献のメチン／クロライドで２回抽出した
。抽出ａを集めて硫酸ナトリウムと重亜硫酸ナトリウム
の上で乾燥して遊離ヨードを除いた。濾過後に、溶ａｔ
−真空除去した。黄褐色固体（２・０９）をえた。

４−アミノフェノール（０，５０ｊ／　）および無水ゲ
ルタール［（０，６ｉ）ｔ５ｗ１ｔの酢酸にとかし、室
温で３時間かくはんした。生成ｌｖが乳白色固体として
沈殿したのでこれｔ−濾過し、酢酸で洗った。固体を真
空乾燥して１．０Ｉの生成物に、ｔた。ｌ＠点２０６〜
２１２℃４−アミノフェノール（２−００１）ｓｒよび
無水コハク酸（２，２０，９）ｊ−４０ｍの酢酸にとか
し、室温で３−５時間かくはんした。白色固体として沈
殿した生成物ｔ−濾過し、最小量の酢酸で洗った。固体
ｔ−Ｘ臣乾燥して３・１ｇの生成物上えた。融点１６３
〜１６６℃ 実施例？。

４−〔Ｎ’−ｇ−／トキシカーボニルノグリシンアミト
〕−フェノール ４−（ｔ−ブトキシカーボニルフグリシン（１，Ｏｙ）
とジシクロへキシルカルボジイミド（０，６９）　ｔ−
５−の乾燥ピリジンにとかし、室温で１０分間かくはん
した。溶液は曇って濃くなった。４−アミノフェノール
（０，３１，９）　ｔ−加え、混合物七呈色で約４５時
間かくはんした。固体の塊’）ｋ濾過し、Ｆ液を真空中
で減少させた。残渣ｔメチレンクロライドにとかし、そ
の溶液を褐色のほとんどが除かれるまで（少なくとも３
回）０．ＩＮの塩酸で洗った。メチレンクロライド層を
シリカゲルカラムに加え、クロロホルムとエチルアセテ
ートとの過当な混合物で溶出させて０・３５ｙの生成物
をえた＠ 実施例８゜ ４−（Ｎ’−（ｔ−ブトキシカーボニル〕グリシンアミ
ド〕フェノール（０，３５，９）　ｔ−５０％（容量／
容量ノメチレンクロライド／トリフロロ酢酸の３０−中
で室温に２いて１時間かくはんしｆｃ、溶媒を真空除去
して０．３３　Ｊの生成物ｔトリフロ諺酢賊塩としてえ
た 実施例９゜ ４−アミノ酪＋ｔｌＬ　（０・３５ｇ）と重炭散ナトリ
ウム（０，４１１ｋｌ：ｌ（容量／容量〕のジオキサン
／水の１０−中にとかした。ジーｔ−プチルジカーボネ
ー）　（１，Ｉ　Ｉｎ）を加え、反応混合物ｔ−呈呈色
約１８時間かくはんしもジオキサンを真空除去し、１０
−の０．１Ｎ塩ＷＬ金加えあこの溶液をメチレンクロラ
イドで抽出し、メチレンクロライドを硫酸す）　ＩＪウ
ム上で乾燥した。俗ｍｉ真空除去してθ・７ｇｏ無色油
をえた。

実施例１仏 ４−　しＮ−（ｔ−ブトキシカーボニル〕アミノ）Ｍ＆
ｔＯ，７’１ｊｌ）と１−ヒドロキシベンゾトリアゾー
ル（０，６５Ｉ）ｔ″１０ｓ＋７の乾燥ピリジンにとか
した。ジシクロへキシルカルボジイミド（２，３２、ｉ
ｌ’　）　ｔ”加え、混曾物ｔ−呈色で約１時間かくは
んした。４−アミンフェノール（０，４６＆　）を加え
、桜赤色浴液を約１８時間かくはんした。反応混合物ｔ
濾過し、Ｆａｔ真臣乾燥した。残渣をメチレンクロライ
ドにとかしムメチレンクロライドを希塩酸で洗い、久い
て１０％ＮａＯＨで抽出した。Ｎａ０ＨＮ’ｉｒ：メチ
レンクロライドでメチレンクロライドが無色になるまで
洗つ九。水層を濃塩酸でｐＨ約１まで酸性化し、白色固
体を生成させた。

水層をメチレンクロライドで数回抽出した。このメテレ
ンクロライドをメチレンクロライド充てんシリカゲルカ
ラムに加え、生成物をエチルアセテートとメチレンクロ
ライドとの正確な混合物で溶出しもメチレンクロライド
から晶出させて０．９０　Ｊの生成物をえ九融点１３８
〜１４０℃。

４−Ｃ４−（Ｎ−Ｃ１−ブトキシカーボニルノアミノ）
ブチルアミド〕フェノール（０，８０１に一５０％（容
１／容量）トリフロロ酢阪／メチレンクロライドの１６
−にとかし、溶液を真空除去して生成物’ｉトＩＪフロ
ロ酢酸塩としＮ−（ｔ−ブトキシカーボ二ル〕グリシン
（Ｃ４１）と１−ヒドロキシベンゾトリアゾール（２，
２１に３０−の乾燥ピリジンにとかし、ジシクロへキシ
ルカルボジイミド（３，３１ｉ　）　ｔ−加えた。混合
＠ｔ−呈温呈色０分間かくはんし、久−で４−クロロア
ニリン（１，０＆　）　ｔ−加えた。混ｅ物金１８ｗＰ
間かくはんし、次いで濾過し池水（２０ｍ）ｔ−加え、
反応混合物を再び濾過しｆｃ、溶媒を真空除去し池浅渣
をメチレンクロライド中に懸濁させ、Ｆ遇した。Ｐ液金
約り容量ｆで真壁で減少させ、蕎び濾過しｆ−Ｆ液をメ
チレンクロライド充てんシリカゲルカラムに加え、正し
い比のエチルアセテート／メチレンクロライドで抽出し
て生成物０．３４　ＩＩをえた。

Ｎ−（ｇ−ブトキシカーボニルフグリシン−１−（４−
クロロフェニル）アミド（α３４１に５０％（容量／容
量）トリ２０口酢酸／メチレンクロライドの３０−にと
かし、室温で１時間かくはん一一溶ｔＩ＆ｔ−真！除去
しム残渣をメチレンクロライドにとかし、１ｊＶｔｉｍ
！で抽出しへ水層上炭酸カリウムでアルカリ性となし、
メチレンクロライドで抽出し旭このメチレンクロライド
を硫酸ナトリウム上で乾燥し、真空除去して生成物を白
色固体としてえた。

４−グリシンアミドフェノール＜２１に？）と５−　Ｃ
（４。

６−ジクロロ−１，３，５−トリアジン−２−イル〕ア
ミノ〕フルオレセイン（６１１Ｑ）ｔ”ｌ　：　ｌ　（
容量／容量〕メタノール／ジメチルスルホキサイドの２
ｓｄにとかし、室温で３０分間かくはんしム生属物を正
し比のメタノール／クロロホルムで溶出するシリカゲル
・プレパラテイブプレート上で精製しム適切なバンドか
正しい比のメタノール／クロロホルムで溶出されるシリ
カゲル・プＶパラテイブプレート上で再精製された。

２θ０−の乾燥メタノール中のアミノフルオレセイン異
性体１（３，８２１ｔ−濾過し、０℃に冷却し４１５１
１ｔ。

クロロホルム中の２．＋−−）クロロ−６−メ）ｄｉ−
／−１゜３．５−トリアジン（′Ｌｓｏｙ；米国ウイス
コンつン洲ミルウオーキーのアルドリッチ・ケミカル）
を０℃でかくはんしながら滴下状に加えも　１時間後に
５−〇盪塩酸を加えた。更に１時間後に生成物を２回濾
過し、５０ｍｇのクロロホルムで洗つ旭 ４−グリシンアミドフェノール（２９■）と２−クロロ
−４−（フルオレセイン−５−イルアミノ）−６−メド
キシー１．３．５−トリアジン（１００１１９）　ｔ−
５ｗｔメタノール２よヒ０．５−トリエチルアミンにと
かした。混合物ｔかくはんし、５時間還流させ旭嵐温に
１で冷却した後に、生成物を正しい比のクロロホルム／
メタノールで溶出されるシリカゲル・プレパレーテイブ
・プレート上で精製した。

適切なバンド全圧しい比のクロロホルム／メタノールで
溶出されるシリカゲル・プレバレーテイブ・プレート上
で再精製した。

６−カルボキシフルオレセイン（１０ｇ９）、Ｎ−ヒド
ロキシーサクシニイミド（３Ｍ９）：ｓよびジシクロへ
キシルカルボジイミド（１０ＩＩ９）ｔ”ｌ−の乾燥ピ
リジンにとかし、室温で１０分間かくはんした。４−７
ミノフエノール（３ｍ９）ｋ加え、混合物ｔ−２５時間
かくはんし旭生成物を正し比のメタノール／クロロホル
ムで溶出されるシリカゲル・プレバレーテイブプレート
上で精製した。適切なバンドを正しい比のメタノール／
エテルエーテルで溶出されるシリカゲル・プレパレーテ
イブプレート上で再精製した。

電 ６−カルボキシフルオレセイン（３０ｍｇ；カルビオケ
ミカル）と＃、Ｎ’−ジシクロへキシルカルボジイミド
（５７１ｎ？）’ｔ２−の乾燥ピリジンにかくはんしな
がらとかし、次いでｌ−ヒドロキシベンゾトリアゾール
（１１ＭＰ）？加えた。３０分後に、４−グリシンアミ
ドフェノール（１２゜６ダ）を加え、室温で約１７時間
かくはんしム生成物を正しい比のクロロホルム／メタノ
ールで溶出されるシリカゲル・プレパレーティブプレー
ト上でＮ製した。

１−（４−ヒドロキシフェニル）アミド（式１５）％式
％ カル）とＮ、Ｎ’−ジシクロへキシルカルボジイミド（
５０１１９）ｔ−２ｍの乾燥ピリジンにかくはんしなが
らとかし、久いて１−ヒドロキシ−ベンゾトリアゾール
（１１１Ｉ９）ｔ″加エタ。３０分後に、４−グリシン
アミドフェノール（１２４５岬）ヲ加えて室温で約１７
時間乾燥し池生成物全圧しい比のクロロホルム／メタノ
ールで溶出されるシリカゲル・プレパレーテイブプレー
ト上で精製しも＋−ｊａ−カルボキシプロピオンアミド
）フェノール（０，，２０Ｊへ１−ヒドロキシベンゾト
リアゾール（０ユ５１）ｐよびジシクロへキシルカルボ
ジイミド（０，２２，９）ｔ−０℃で乾燥ビリジ／にと
かし、１５分間かくはんしたアミノフルオレセインＡ性
体ＩＩＪ４ｇ）ｔ’加え、反応混合物ｔＮ温で８日間か
くはんし旭生成物を正しい比のクロロホルム／メタノー
ルで溶出されるシリカゲル・７”ｌ／パレーテイブプレ
ート上で精製した。逼切なバンド全圧しい比のクロロホ
ルム／エチルエーテルで溶出されるシリカゲル・プレパ
レーテイブプレート上で再精製した。

−〉 代　理　人　弁理士　　斉　藤　武　彦　、　、Ｊ、、
、７＄＋＄

Claims (1)

1. 【特許請求の範囲】 １、次の構造式をもつ化合物： ▲数式、化学式、表等があります▼ ただし上記式中、Ｑはポリ（アミノ酸）、ポリ（アミノ
   酸）誘導体、フルオレセイン、またはフルオレセイン誘
   導体であり； ＸはＮＨまたはＣＯであり； ｎは０、１または２であり、 ＲはＱがポリ（アミノ酸）またはポリ（アミノ酸）誘導
   体であるときは２個までのヘテロ原子を含み、Ｑがフル
   オレセインまたはフルオレセイン誘導体であるときは４
   個までのヘテロ原子を含む、炭素原子とヘテロ原子との
   合計が０〜８である結合基であり； ＷはＱがフルオレセインまたはフルオレセイン誘導体で
   あるときはＯまたはＳであり、Ｑがポリ（アミノ酸）ま
   たはポリ（アミノ酸）誘導体であるときはＯであり；Ｙ
   はＱがフルオレセインまたはフルオレセイン誘導体であ
   るときはＯＨ、ＮＨ＿２、ＣＨ＿３、Ｆ、Ｃｌ、Ｂｒま
   たはＨであり、Ｑがポリ（アミノ酸）またはポリ（アミ
   ノ酸）誘導体であるときはＯＨ、ＮＨ＿２、ＣＨ＿３、
   ＦまたはＣｌであり；そして Ｚ＿１、Ｚ＿２、Ｚ＿３およびＺ＿４はＱがフルオレセ
   インまたはフルオレセイン誘導体であるときはそれぞれ
   独立にＨまたはＦであり、Ｑがポリ（アミノ酸）または
   ポリ（アミノ酸）誘導体であるときはそれぞれＨである
   。 ２、Ｑがウシ血清アルブミンである特許請求の範囲第１
   項記載の化合物。 ３、Ｑがフルオレセインのアミノ−、アミド−、アミジ
   ノ−、尿素−チオ尿素−、カーバメート−、チオカーバ
   メート−、トリアジニルアミノ−、または（カルボキシ
   アミノ）−スルホンアミド−誘導体である特許請求の範
   囲第１項記載の化合物。 ４、次式 ▲数式、化学式、表等があります▼ をもつ前駆体をポリ（アミノ酸）またはポリ（アミノ酸
   ）誘導体とカップリングさせる工程から成ることを特徴
   とする免疫源の製造法： ただし上記式中、ＸはＮＨ＿２、ＣＯＯＨ、ＣＮ、ＣＨ
   Ｏ、Ｂｒ、ＩまたはＯＨであり； ＲはＸがＣＯＯＨであるときは炭素原子とヘテロ原子と
   の合計が０〜８であつて２個までのヘテロ原子を含む、
   そしてＸがＮＨ＿２、ＣＮ、ＣＨＯ、Ｂｒ、Ｉ、または
   ＯＨであるときは炭素原子とヘテロ原子との合計が１〜
   ８であつて２個までのヘテロ原子を含む、結合基であり
   ； ＹはＯＨ、ＣＨ＿３、Ｆ、ＣｌまたはＮＨ＿２であるか
   、あるいはＸがＣＨＯ、Ｂｒ、またはＩである場合には
   ＮＨ＿２の保護誘導体である。 ５、ＸがＮＨ＿２またはＣＯ＿２Ｈであるときの前駆体
   をＮ，Ｎ′−ジシクロヘキシルカルボジイミド、１−エ
   チル−３−（３−ジメチル−アミノプロピル）カルボジ
   イミド、または１−シクロヘキシル−３−（２−モルホ
   リノエチル）−カルボジイミド−メト−ｐ−トルエンス
   ルホネートの添加によりポリ（アミノ）酸と反応させる
   ことによつてカップリングさせる特許請求の範囲第４項
   記載の方法。 ６、次式 ▲数式、化学式、表等があります▼ をもつ前駆体をフルオレセインまたはフルオレセイン誘
   導体とカップリングさせる工程から成ることを特徴とす
   るトレーサの製造法： ただし上記式中、ＵはＨまたは式▲数式、化学式、表等
   があります▼（ＷはＯまたはＳであり；ＲはＸがＣＯＯ
   Ｈであるときは炭素原子とヘテロ原子との合計が０〜８
   であつて４個までのヘテロ原子を含む、そしてＸがＮＨ
   ＿２、ＣＮまたはＯＨであるときは炭素原子とヘテロ原
   子との合計が１〜８であつて４個までのヘテロ原子を含
   む、結合基であり；ＸはＮＨ＿２、ＣＯＯＨ、ＣＮまた
   はＯＨである）をもつ基であり；ＹはＯＨ、ＮＨ＿２、
   ＣＨ＿３、Ｆ、Ｃｌ、Ｂｒ、またはＨであり；そしてＺ
   ＿１、Ｚ＿２、Ｚ＿３、およびＺ＿４はそれぞれ独立に
   ＨまたはＦである。 ７、ＵがＨであるか、またはＸがＮＨ＿２であるときの
   前躯体を（ａ）カルボキシフルオレセインの活性エステ
   ルの製造および（ｂ）該活性エステルと前駆体との反応
   によつてカップリングさせる特許請求の範囲第６項記載
   の方法。 ８、ＸがＣＯ＿２Ｈであるときの前駆体を（ａ）ＹがＮ
   Ｈ＿２である場合には該ＮＨ＿２を保護し、（ｂ）前駆
   体の活性エステルを製造し、そして（ｃ）該活性エステ
   ルをアミノフルオレセインと反応させることによつてカ
   ップリングさせる特許請求の範囲第６項記載の方法。 ９、次の（ａ）〜（ｃ）の諸工程から成ることを特徴と
   するアセトアミノフェンの濃度測定法： （ａ）試料をアセトアミノフェン抗血清および次式▲数
   式、化学式、表等があります▼ をもち、アセトアミノフェン抗血清の存在に応答して検
   出可能な螢光偏光を生じうる化合物と接触させ；〔ただ
   し上記式中、Ｑはポリ（アミノ酸）、ポリ（アミノ酸誘
   導体）、フルオレセイン、またはフルオレセイン誘導体
   であり；ＸはＮＨまたはＣＯであり；ｎは０、１、また
   は２であり；ＲはＱがポリ（アミノ酸）またはポリ（ア
   ミノ酸）誘導体であるときは２個までのヘテロ原子を含
   み、Ｑがフルオレセインまたはフルオレセイン誘導体で
   あるときは４個までのヘテロ原子を含む、炭素原子とヘ
   テロ原子との合計が０〜８である結合基であり；ＷはＱ
   がフルオレセインまたはフルオレセイン誘導体であると
   きはＯまたはＳであり、Ｑがポリ（アミノ酸）またはポ
   リ（アミノ酸）誘導体であるときはＯであり；ＹはＱが
   フルオレセインまたはフルオレセイン誘導体であるとき
   はＯＨ、ＮＨ＿２、ＣＨ＿３、Ｆ、Ｃｌ、ＢｒまたはＨ
   であり、Ｑがポリ（アミノ酸）またはポリ（アミノ酸）
   誘導体であるときはＯＨ、ＮＨ＿２、ＣＨ＿３、Ｆまた
   はＣｌであり；そしてＺ＿１、Ｚ＿２、Ｚ＿３およびＺ
   ＿４はＱがフルオレセインまたはフルオレセイン誘導体
   であるときはそれぞれ独立にＨまたはＦであり、Ｑがポ
   リ（アミノ酸）またはポリ（アミノ酸）誘導体であると
   きはそれぞれＨである。〕 （ｂ）工程（ａ）からえられた溶液に平らな偏光を通し
   て螢光偏光の応答を取得し、そして （ｃ）工程（ｂ）の溶液の螢光偏光の応答を試料中のア
   セトアミノフェンの量の尺度として検出する。