JPS6043399A - Measurement of amylase activity - Google Patents
Measurement of amylase activityInfo
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- JPS6043399A JPS6043399A JP14964583A JP14964583A JPS6043399A JP S6043399 A JPS6043399 A JP S6043399A JP 14964583 A JP14964583 A JP 14964583A JP 14964583 A JP14964583 A JP 14964583A JP S6043399 A JPS6043399 A JP S6043399A
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Abstract
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、α−アミラーゼ、β−アミラーゼ又はグルコ
アミラーゼの活性の測定方法に関するものである。DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION The present invention relates to a method for measuring the activity of α-amylase, β-amylase or glucoamylase.
更に詳細には、本発明は、だ液、血液、植物等の検体中
に存在するα−アミラーゼなどのアミラーゼ活性をその
まま直接測定する方法に関するものである。More specifically, the present invention relates to a method for directly measuring amylase activity such as α-amylase present in samples such as saliva, blood, and plants.
従来、生体に由来するだ液、血液等の検体中に存在する
α−アミラーゼ等の活性を測定するにdまず検体中にす
でに存在しているマルトース、グルコースを透析処理や
樹脂による吸着処理をして除去するか、又はあらかじめ
検体の盲検を行い検体のα−アミラーゼ活性を測定して
いた。l−かしながら検体の透析処理は煩雛な上に検体
が希釈される欠点があり、樹脂による吸着処理も、グル
コースは吸着分離されるがα−アミラーゼ自体も、吸着
されることがあっていずれも好ましく々い。Conventionally, in order to measure the activity of α-amylase, etc. present in samples such as saliva and blood derived from living organisms, the maltose and glucose already present in the sample are first subjected to dialysis treatment or adsorption treatment with a resin. The alpha-amylase activity of the sample was measured by either removing the sample or blindly testing the sample in advance. However, the dialysis treatment of the specimen is complicated and has the disadvantage that the specimen is diluted, and in the adsorption treatment with a resin, although glucose is adsorbed and separated, α-amylase itself may also be adsorbed. Both are good.
また検体を盲検する方法は二度手間がかかる上に検体量
が少ない場合は測定できないことになって好ましいもの
ではなかった。In addition, the method of blind testing the specimen was not preferred because it required double effort and also resulted in the inability to perform measurements when the amount of specimen was small.
本発明者らは、アミラーゼ含有検体から直接アミラーゼ
活性を測定する方法をめて鋭意研究した結果、直接アミ
ラーゼ活性を測定するのに障害となるグルコースおよび
/またはマルト−スを検体中でグルコノ−δ−ラクトン
および/ −f *−けグルコースーグルコノーδ−ラ
クトンに変化させることによって解決することができた
。As a result of intensive research into a method for directly measuring amylase activity from amylase-containing samples, the present inventors found that glucose and/or maltose, which is an obstacle to directly measuring amylase activity, was detected in the sample by gluconose δ. -lactone and /-f*-glucose-gluconose δ-lactone.
本発明は、α−アミラーゼ、β−アミラーゼ又はグルコ
アミラーゼを含有する検体に、アルカリ性域で、グルコ
ース脱水素酵素および/またはマルトース脱水素酵素と
NAr)+および/またはNA、DP”を添加し、検体
中に存在するグルコースおよび/マタハマルトースをグ
ルコノ−δ−ラクトンおよび/またはグルコース−グル
コノ−δ−ラクトンに変化させ、次いで検体のpiを中
性域に戻し過剰量のアミラーゼ反応基質を添加し、アミ
ラーゼ活性を測定することを特徴とするアミラーゼ活性
測定法である。The present invention involves adding glucose dehydrogenase and/or maltose dehydrogenase and NAr) + and/or NA, DP'' to a sample containing α-amylase, β-amylase or glucoamylase in an alkaline range, converting glucose and/or Matahamaltose present in the sample into glucono-δ-lactone and/or glucose-glucono-δ-lactone, then returning the pi of the sample to the neutral range and adding an excess amount of amylase reaction substrate; This is an amylase activity measuring method characterized by measuring amylase activity.
本発明の特色とするところは、検体中にすでに存在する
マルトースおよび/またはグルコースをアルカリ性域で
活性を発現し、中性付近ではほとんど活性を発現しない
アルカロフイリツクなグルコース脱水素酵素および/ま
たはマルトース脱水素酵素によりグルコノ−δ−ラクト
ンおよび/まタハグルコースーグルコノーδ−ラクトン
に変化せしめ、pHを中性に戻し、過剰量の澱粉、デキ
ストリン、アミロース、アミロペクチン、オリゴ糖又は
それらの誘導体から選ばれた一種又は二種以上を基質と
して用いてアミラーゼ活性を測定する方法である。The present invention is characterized by alkalophilic glucose dehydrogenase and/or glucose dehydrogenase that is active in an alkaline range and exhibits almost no activity near neutrality in maltose and/or glucose already present in a sample. Maltose is converted to glucono-δ-lactone and/or tahaganglucose-glucono-δ-lactone by maltose dehydrogenase, the pH is returned to neutral, and excess starch, dextrin, amylose, amylopectin, oligosaccharide or their derivatives are removed. This is a method for measuring amylase activity using one or more selected substrates.
本発明のアミラーゼ活性測定法によれば検体中にすでに
存在するマルトース、グルコースヲ前モって消費させて
しまっているので同一検体でそのまま添加したアミラー
ゼ用基質などからグルコースを生成させ、直接生成する
グルコース含団をアミラーゼによって分解されたグルコ
ースと17て測定することができるので、アミラーゼ活
性は正確に測定することができることに々るのである。According to the amylase activity measurement method of the present invention, since the maltose and glucose already present in the sample are consumed in advance, glucose is directly generated from the amylase substrate added as is in the same sample. Amylase activity can often be measured accurately because glucose groups can be measured as glucose degraded by amylase.
本発明のアミラーゼ活性の測定法はだ液、血液、スイ液
、尿などのα−アミラーゼ活性、血液中のグルコアミラ
ーゼ活性、植物組織中のβ−アミラーゼ活性、その他α
−アミラーゼ、β−アミラーゼ又はグルコアミラーゼ含
有検体の測定に用いられる。Method for measuring amylase activity of the present invention α-amylase activity in saliva, blood, Swiss fluid, urine, etc., glucoamylase activity in blood, β-amylase activity in plant tissues, and other α-amylase activities
- Used for measuring samples containing amylase, β-amylase or glucoamylase.
普通、これらの検体には、すでに徴m−のマルトース、
グルコースがたえず存在しているため直接グルコース生
成反応によって測定すると各アミラーゼの活性が微量の
マルトースおよび/またはグルコースを付加して測定さ
れてしまうので正確力力価が得られなかったものである
。Usually, these samples already contain signs of maltose,
Since glucose is constantly present, if the activity of each amylase is measured by direct glucose production reaction, the activity of each amylase will be measured by adding trace amounts of maltose and/or glucose, making it impossible to obtain an accurate titer.
本発明では、あらかじめ徴−lのグルコースおよび/ま
たはマルトースをグルコノ−δ−ラクトンおよび/また
はグルコース−グルコノ−δ−ラクトンに変化させてい
るので、アミラーゼ活性測定時に生成するグルコースの
定量に関与することなく、そこに生成するグルコースの
量は正確にアミラーゼの活性として測定されるものであ
る。In the present invention, glucose and/or maltose are converted into glucono-δ-lactone and/or glucose-glucono-δ-lactone in advance, so that glucose and/or maltose are converted into glucono-δ-lactone and/or glucose-glucono-δ-lactone. Instead, the amount of glucose produced is accurately measured as amylase activity.
本発明において使用するグルコース脱水素酵素およびマ
ルトース脱水素酵素はアルカリ域、例えばpH=9〜1
1以」二で活性を発現し、中性では活性を示さない。従
ってグルコース脱水素酵素オヨび/またはマルトース脱
水素酵素を用いてアルカリ域でグルコースおよび/また
はマルトースを消費させた後、検体を中性に戻しておけ
ば、両酵素は生成するグルコースには例ら作用すること
はない。Glucose dehydrogenase and maltose dehydrogenase used in the present invention are in an alkaline range, for example, pH=9 to 1.
It exhibits activity when it is 1 to 2, and shows no activity when it is neutral. Therefore, if the sample is returned to neutrality after consuming glucose and/or maltose in an alkaline region using glucose dehydrogenase and/or maltose dehydrogenase, both enzymes will produce no amount of glucose. It has no effect.
本発明に用いるグルコース脱水素酵素および/またはマ
ルトース脱水素酵素としては、従来知られたこれら酵素
を広く使用することができる。好ましいのは、アルカル
性菌のコリネバクテリウム属菌の生産するグルコース脱
水素酵素および/捷たはマルトース脱水素酵素がよい。As the glucose dehydrogenase and/or maltose dehydrogenase used in the present invention, a wide variety of conventionally known enzymes can be used. Preferably, glucose dehydrogenase and/or maltose dehydrogenase produced by an alkaline bacterium of the genus Corynebacterium are used.
この酵素は単一の酵素でありながら、グルコースとマル
トースに同時に作用して、グルコノ−δ−ラクトンとグ
ルコース−グルコノ−δ−ラクトンに変換することがで
きる酵素である。Although this enzyme is a single enzyme, it can act on glucose and maltose simultaneously and convert them into glucono-δ-lactone and glucose-glucono-δ-lactone.
本発明においては、まず、検体にpi−T = 1 F
1程度の緩衝液が加えられるが、この緩衝液にはグルコ
ース脱水素酵素および/またはマルトース脱水素酵素と
NAD+および/またはNAI)P ”を添加しておく
のがよい。In the present invention, first, pi-T = 1 F is applied to the specimen.
About 100% of a buffer solution is added, and it is preferable to add glucose dehydrogenase and/or maltose dehydrogenase and NAD+ and/or NAI)P'' to this buffer solution.
NAD+および/またはNAT)P+けグルコース脱水
素酵素および/またはマルトース脱水素酵素の補酵素と
して作用し、グルコースおよび/またはマルトースを酸
化し、NAT)Hおよび/まだはNAT’)PITに変
化する。NAD+ and/or NAT)P+ acts as a coenzyme for glucose dehydrogenase and/or maltose dehydrogenase, oxidizing glucose and/or maltose and converting it to NAT)H and/or NAT')PIT.
検体中のグルコースおよび/まだはマルトースの消費は
25℃程度に加温し、64o酩の吸光度の変化がある間
は反応を続け、変化が終了したら停止する。To consume glucose and/or maltose in the sample, the sample is heated to about 25° C., and the reaction continues while there is a change in absorbance at 64° C., and is stopped when the change ends.
検体中のグルコースおよび/″!、たはマルトースがす
べてグルコノ−δ−ラクトンおよび7寸たけグルコース
−グルコノ−δ−ラクトンに変化した後は、検体のpH
を中性域にもどlAα−アミラーゼ、β−アミラーゼ、
又はグルコアミラーゼの活性を測定することができる。After all the glucose and maltose in the sample has been changed to glucono-δ-lactone and glucose-glucono-δ-lactone, the pH of the sample is
Returns lA α-amylase, β-amylase to the neutral range,
Alternatively, glucoamylase activity can be measured.
α−アミラーゼの活性を測定する場合の測定糸としては
、グルコースおよび/まだはマルトースの消費後添加し
たグルカン又はその訪導体の基質より生じたマルトース
をグルコースに変換せしめた後グルコースを定h1シう
る測定糸であればよい。たとえばそのような系としては
、グルカン又はそのt4導体とマルターゼ、ヘキソキナ
ーゼ、グルコース6燐酸脱水素酵素とA、TT’および
NAI’)+又はNAT)P4全添加i〜て、生成する
NAT)T(又はNADP)Tの量によってアミラーゼ
活性を測定する方法がある。As a measurement thread for measuring the activity of α-amylase, maltose produced from the substrate of glucan or its conductor added after consumption of glucose and/or maltose is converted to glucose, and then glucose is fixed at a constant level. Any measuring thread will suffice. For example, such systems include glucan or its t4 conductor and maltase, hexokinase, glucose 6-phosphate dehydrogenase and A, TT' and NAI')+ or NAT)P4 total addition i~ to produce NAT)T( Alternatively, there is a method of measuring amylase activity by the amount of NADP)T.
また、同様にグルコースおよびマルトースを消費した後
マルターゼ、ムタロターゼ、グルコースオキソターゼ、
ベルオキシターゼ、4−アミノアンチピリン、およびフ
ェノールを添加し、ギノン色素の発色の量によりアミラ
ーゼ活性を測定する方法、および、その他(、アミラー
ゼの作用により生成したマルトースをグルコースへ変換
(〜、ソノグルコースを定搦°する系であればいすねで
もよい。Also, after consuming glucose and maltose, maltase, mutarotase, glucose oxotase,
A method of measuring amylase activity by adding peroxidase, 4-aminoantipyrine, and phenol and measuring the amount of guinone color, and others (converting maltose produced by the action of amylase to glucose (~, converting sonoglucose to glucose) A chair may be used as long as it is a stable system.
またβ−アミラーゼ活性の測定もα−アミラーゼ活性の
測定と同様に行なうことができる。そI7てグルコアミ
ラーゼの測定はマルターゼを必歎トしないほかはα−ア
ミラーゼと全く同様に測定することができるものである
。Furthermore, the measurement of β-amylase activity can be carried out in the same manner as the measurement of α-amylase activity. Glucoamylase can be measured in exactly the same way as α-amylase, except that maltase is not required.
このように本発明は、アミラーゼ活(”lの測定におい
て、前もって検体中のマルトース、グルコースを消費せ
しめたために、引続き同一検体で直接アミラーゼ活性の
測定を可能と1.たもので、アミラーゼ活性の自動分析
にきわめて適し/仁方法を提供するものである。In this way, the present invention enables direct measurement of amylase activity in the same sample by consuming maltose and glucose in the sample in advance in the measurement of amylase activity. It provides an extremely suitable method for automatic analysis.
次に、本発明の試験例及び実施例を示す。Next, test examples and examples of the present invention will be shown.
試験例
67℃におけるだ液および膵液アミラーゼのpH10で
の安定性。だ液および膵液アミラーゼを約6u/meに
なるように1部1mMグリシン緩衝液(p)110)で
希釈し37℃のウォーターバスでインキニペーション1
,2各時間毎に活性を測定した。Test Example 6 Stability of saliva and pancreatic juice amylase at pH 10 at 67°C. Dilute saliva and pancreatic juice amylase to approximately 6 u/me with 1 part 1 mM glycine buffer (p110) and incubate with inkinipation 1 in a water bath at 37°C.
, 2. Activity was measured every hour.
その結果は次の表1に示されるが、この表から明らか外
ように、α−アミラーゼが一時的にpH=10の条件下
にあっても、?4とX7ど活性に変化の々いことが分る
。The results are shown in Table 1 below, but as is clear from this table, even if α-amylase is temporarily under the condition of pH=10, ? It can be seen that there are significant changes in the activity of 4 and X7.
表137℃におけるアミラーゼのpH1oでの安定性0
5.86 5.67
10 5.57 5.85
20 6.01 5.86
30 6.35 5.72
60 6、nl 5.91
実施例
NAD” 3.OnM
グルコース脱水素酵素 411/ゴ
以上を含有する001Mグリシン−KO目緩衝液(pH
10)/m/づつを4本のチューブに入れ、各4本に5
mMグルコースを含むヒトだ液を任意の各別濃度になる
ように調整した検体7μtあて4部を作り、これらを添
加し、それぞれ25℃で10分間保温した後、3400
mの吸光度で測定1〜、吸光度の変化が停止したところ
で、300 mM NaC! 、 30 mMMfC1
2を含む200 mM PTPES緩価液(pT+ 7
)0.15−1及び
7A/ターゼ 1000o/mf! 20111へキソ
キナーゼ 1 [100u/mf、 5111グルコー
ス−6−ホスホ−デヒドロゲナーゼ 1000 u/m
e 5μtATP 72mM 15μt
マルトペンタオース 1 [1oJrrf//me 1
01tLを添加1.340 nmの吸光1■−の増加を
約2分間追跡1−1α−アミラーゼ活性を測定した。Table 1 Stability of amylase at pH 1o at 37°C 0
5.86 5.67 10 5.57 5.85 20 6.01 5.86 30 6.35 5.72 60 6, nl 5.91 Example NAD" 3.OnM Glucose dehydrogenase 411/g or more 001M glycine-KO buffer containing (pH
10) Put /m/ into 4 tubes, and put 5 into each 4 tubes.
Prepare 4 parts of 7 μt of human saliva containing mM glucose adjusted to different concentrations, add these, incubate at 25°C for 10 minutes, and add 3400 μt each.
Measurement 1 with absorbance of 300 mM NaC! , 30mMfC1
200 mM PTPES slow solution containing pT+ 7
) 0.15-1 and 7A/tase 1000o/mf! 20111 hexokinase 1 [100 u/mf, 5111 glucose-6-phospho-dehydrogenase 1000 u/m
e 5μt ATP 72mM 15μt Maltopentaose 1 [1oJrrf//me 1
01tL was added, and the increase in absorbance at 1.340 nm was followed for about 2 minutes to measure 1-1α-amylase activity.
4種の検体の1分間の吸光度の増加は、A= 0.26
4 B = 0.2280 = [+、!112 D
= 0.240であった。The increase in absorbance for 1 minute for the 4 types of samples is A = 0.26
4 B = 0.2280 = [+,! 112D
= 0.240.
これを次式によってα−アミラーゼ活性を算出すると、
それぞれ
Aニア、 36 B = 6.36 C= 8.70
T) = 6.69であった。Calculating α-amylase activity using the following formula:
A near, 36 B = 6.36 C = 8.70 respectively
T) = 6.69.
(国際単位)
△E= NAT)Hの増加による吸光度の増加6.2
= NADHの1mMの吸光係数1.21=全反応液址
0007−唾液−址
ここでα−アミラーゼIu(国際単位)トハ25℃で1
分に1μmoleのマルトースを生成する活性をいう。(International units) △E = NAT) Increase in absorbance due to increase in H 6.2
= Extinction coefficient of 1mM of NADH 1.21 = Total reaction volume 0007 - Saliva - where α-amylase Iu (International Units) 1 at 25°C
It refers to the activity of producing 1 μmole of maltose per minute.
代理人 弁理士 戸 1)親 男
(11)
第1頁の続き
0発 明 者 高 河 原 勇 川西市大和東@発 明
者 岩崎 慎二部 日野南東豊田612−
:5−7−13
12−21−17Agent Patent Attorney 1) Parent Male (11) Continued from page 1 0 Inventor Isamu Takakawahara Yamato Higashi, Kawanishi City Inventor Shinji Iwasaki 612 Hino Minami Toyoda: 5-7-13 12-21 -17
Claims (1)
を含有する検体に、アルカリ性域で、グルコース脱水素
酵素および/またはマルトース脱水素酵素とNAT)+
および/またはNAr)P+を添加;7、検体中に存在
するグルコースおよび/″!たけマルトースをグルコノ
−δ−ラクトンおよび/またはグルコース−グルコノ−
δ−ラクトンに変什させ、次いで検体のpHを中性域に
戻1−1過剰量のアミラーゼ反応基質を添加し、アミラ
ーゼ活性を測定することを特徴とするアミラーゼ活性測
定法。For samples containing α-amylase, β-amylase or glucoamylase, in an alkaline range, glucose dehydrogenase and/or maltose dehydrogenase and NAT) +
and/or NAr) P+; 7. Glucose and/or maltose present in the sample are converted into glucono-δ-lactone and/or glucose-glucono-
A method for measuring amylase activity, which comprises converting the sample into δ-lactone, returning the pH of the sample to a neutral range, adding a 1-1 excess amount of amylase reaction substrate, and measuring amylase activity.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP14964583A JPS6043399A (en) | 1983-08-18 | 1983-08-18 | Measurement of amylase activity |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP14964583A JPS6043399A (en) | 1983-08-18 | 1983-08-18 | Measurement of amylase activity |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS6043399A true JPS6043399A (en) | 1985-03-07 |
JPH04639B2 JPH04639B2 (en) | 1992-01-08 |
Family
ID=15479748
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP14964583A Granted JPS6043399A (en) | 1983-08-18 | 1983-08-18 | Measurement of amylase activity |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS6043399A (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH02212597A (en) * | 1989-02-14 | 1990-08-23 | Mitsubishi Kakoki Kaisha Ltd | Method for radiation sterilization of metal working oil |
-
1983
- 1983-08-18 JP JP14964583A patent/JPS6043399A/en active Granted
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH02212597A (en) * | 1989-02-14 | 1990-08-23 | Mitsubishi Kakoki Kaisha Ltd | Method for radiation sterilization of metal working oil |
JPH0583117B2 (en) * | 1989-02-14 | 1993-11-24 | Mitsubishi Kakoki Kk |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH04639B2 (en) | 1992-01-08 |
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