JPS60141289A - アルカリ・プロテア−ゼの製造方法 - Google Patents
アルカリ・プロテア−ゼの製造方法Info
- Publication number
- JPS60141289A JPS60141289A JP58245459A JP24545983A JPS60141289A JP S60141289 A JPS60141289 A JP S60141289A JP 58245459 A JP58245459 A JP 58245459A JP 24545983 A JP24545983 A JP 24545983A JP S60141289 A JPS60141289 A JP S60141289A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- fermentation
- bacterial
- bacterial cell
- medium
- extract
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明はアルカリ・プロテアーゼの発酵による製造方法
、さらに詳しくいえば、バチルス・リケニホルミス（Ｂ
ａｃｉｌｌｕｓ ｌｉｃｈｅｎｉｆｏｒｍｉｓ ） Ａ
ＴＯＯ１４５８０を用いてアルカリ°プロテアーゼを発
酵生産するに当り、発酵液の酵素活性全高め、かつ発酵
時間を短縮したアルカリ・プロテアーゼの製造方法に関
するものである。
、さらに詳しくいえば、バチルス・リケニホルミス（Ｂ
ａｃｉｌｌｕｓ ｌｉｃｈｅｎｉｆｏｒｍｉｓ ） Ａ
ＴＯＯ１４５８０を用いてアルカリ°プロテアーゼを発
酵生産するに当り、発酵液の酵素活性全高め、かつ発酵
時間を短縮したアルカリ・プロテアーゼの製造方法に関
するものである。
従来、プロテアーゼは食品・水産物加工工業において、
大豆タンパクや魚肉の加水分解などに用いられており、
また皮革工業、醸造工業あるいは洗剤工業などの分野に
おいても広く用いられている。特に近年、衣料用洗剤に
おいては、環境汚染の而からリン酸塩の使用が規制され
るに伴い、洗浄力を高めるためにアルカリ・プロテアー
ゼが配合されてきた。このリン酸塩の規制はますます強
化される傾向にあるため、今後、アルカリ・プロテアー
ゼの需要は大きく拡大することが予想される。
大豆タンパクや魚肉の加水分解などに用いられており、
また皮革工業、醸造工業あるいは洗剤工業などの分野に
おいても広く用いられている。特に近年、衣料用洗剤に
おいては、環境汚染の而からリン酸塩の使用が規制され
るに伴い、洗浄力を高めるためにアルカリ・プロテアー
ゼが配合されてきた。このリン酸塩の規制はますます強
化される傾向にあるため、今後、アルカリ・プロテアー
ゼの需要は大きく拡大することが予想される。
ところで、バチリス・リケニホルミスＡＴＯ０１４５８
０はアルカリ・プロテアーゼ生産株としてよく知られて
いるが、この菌体を用いてアルカリ、プロテアーゼを工
業的に発酵生産する場合には、発酵液の酵素活性をでき
るだけ高めるとともに、発酵時間をできるだけ短縮する
ことが重要である。これは、酵素活性が高ければ、一定
量の酵素を生産する場合に発酵槽の容ｈ１を小さくしう
るのみならず、菌体分離や酵素精製などの後工程におけ
る装置も小型化、及び発酵時間の短縮による装置容量当
シの生産性の向上が可能にな９、その結果として生産コ
ストを低減しうるためである。
０はアルカリ・プロテアーゼ生産株としてよく知られて
いるが、この菌体を用いてアルカリ、プロテアーゼを工
業的に発酵生産する場合には、発酵液の酵素活性をでき
るだけ高めるとともに、発酵時間をできるだけ短縮する
ことが重要である。これは、酵素活性が高ければ、一定
量の酵素を生産する場合に発酵槽の容ｈ１を小さくしう
るのみならず、菌体分離や酵素精製などの後工程におけ
る装置も小型化、及び発酵時間の短縮による装置容量当
シの生産性の向上が可能にな９、その結果として生産コ
ストを低減しうるためである。
しかしながら、従来の前記菌体を用いるアルカリ・プロ
テアーゼの工業的発酵生産法においては、発酵液の酵素
活性や発酵時間に関して工業的に実施する上で必ずしも
満足しうるものではなかった。
テアーゼの工業的発酵生産法においては、発酵液の酵素
活性や発酵時間に関して工業的に実施する上で必ずしも
満足しうるものではなかった。
本発明者らは、このような事情に鑑み、バチルス・リケ
ニホルミスＡＴＯ０１４５８０を用いてアルカリ・プロ
テアーゼを発酵生産するに当り、発酵液の酵素活性を高
め、かつ発酵時間を短縮する方法について鋭意研究を重
ねた結果、特定の炭素源及び窒素源を所定ｈＶ添加した
栄養培地中で、温度及びＰＨを所定の条件に設定して前
記菌体を培養することにより、その目的を達成しうるこ
とを見出しその知見に基づいて本発明を完成するに至っ
た。
ニホルミスＡＴＯ０１４５８０を用いてアルカリ・プロ
テアーゼを発酵生産するに当り、発酵液の酵素活性を高
め、かつ発酵時間を短縮する方法について鋭意研究を重
ねた結果、特定の炭素源及び窒素源を所定ｈＶ添加した
栄養培地中で、温度及びＰＨを所定の条件に設定して前
記菌体を培養することにより、その目的を達成しうるこ
とを見出しその知見に基づいて本発明を完成するに至っ
た。
すなわち、本発明は、バチルス・リケニホルミスＡＴＯ
Ｃ１４５８０”ａ’用いてアルカリ°プロテアーゼを発
酵生産するに当シ、炭素源として培地１１当リラクトー
ス６０〜ａｏｙを、窒素源として培地１／２当り大豆カ
ゼイン１０〜２５．ｊ７と、酵母エキス５〜２０ｇ又は
前記菌体エキス若しくはその両方とを添加した栄養培地
中で、温度３５〜３８°Ｃ及びＰＨ６，５〜７．０の条
件下で前記菌体を培養することを特徴とするアルカリ・
プロテアーゼの発酵製造法を提供するものである。
Ｃ１４５８０”ａ’用いてアルカリ°プロテアーゼを発
酵生産するに当シ、炭素源として培地１１当リラクトー
ス６０〜ａｏｙを、窒素源として培地１／２当り大豆カ
ゼイン１０〜２５．ｊ７と、酵母エキス５〜２０ｇ又は
前記菌体エキス若しくはその両方とを添加した栄養培地
中で、温度３５〜３８°Ｃ及びＰＨ６，５〜７．０の条
件下で前記菌体を培養することを特徴とするアルカリ・
プロテアーゼの発酵製造法を提供するものである。
本発明方法に用いるバチルス・リケニホルミスＡＴＣＯ
１４８５１］は、アルカリ”プロテアーゼ生産に対する
炭素源の要求特異性が極めて強い。本発明者らは炭素源
としてラフ）−ス、ガラクトース、グルコース、フラク
トース、シュークロス、マルトース、デキストリン、廃
糖蜜、デンプンなどについて検討したところ、グルコー
ス、フラクトース、シュークロース、マルトース、テキ
ストリン、廃糖蜜及びデンプンにおいては、菌体濃度は
ラクトースと同等以上、特にシュークロースでは約２倍
に達するものの、酵素活性はほとんど認められず、ラク
トース及びガラクトースのみにおいて、効率よくアルカ
リ・プロテアーゼが生産されることが分った。しかしな
がら、ラクトースとガラクトースとを比較した場合、ラ
クトースの方が約２倍の酵素活性を示すことから、本発
明方法においては、最適炭素源としてラクトースが用い
られる。
１４８５１］は、アルカリ”プロテアーゼ生産に対する
炭素源の要求特異性が極めて強い。本発明者らは炭素源
としてラフ）−ス、ガラクトース、グルコース、フラク
トース、シュークロス、マルトース、デキストリン、廃
糖蜜、デンプンなどについて検討したところ、グルコー
ス、フラクトース、シュークロース、マルトース、テキ
ストリン、廃糖蜜及びデンプンにおいては、菌体濃度は
ラクトースと同等以上、特にシュークロースでは約２倍
に達するものの、酵素活性はほとんど認められず、ラク
トース及びガラクトースのみにおいて、効率よくアルカ
リ・プロテアーゼが生産されることが分った。しかしな
がら、ラクトースとガラクトースとを比較した場合、ラ
クトースの方が約２倍の酵素活性を示すことから、本発
明方法においては、最適炭素源としてラクトースが用い
られる。
このラクトースの添加量は培地ｉｚ当り６０〜８０ｇ、
好ましくは５０〜８０ｇの範囲である。
好ましくは５０〜８０ｇの範囲である。
この量が３０．９未満では酵素活性が低く、また８０．
９を超えると菌体の基質用害が生じ、その増殖が著しく
抑制される。
９を超えると菌体の基質用害が生じ、その増殖が著しく
抑制される。
本発明方法において用いる窒素源は、大豆カゼインと、
酵母エキス又は前記菌体の発酵後分離した菌体エキス又
はその両方を組み合わせたもので、ある。このように、
大豆カゼインを用いることにより、他の窒素源、例えば
ペプトン、コーンステイープリカー、酵母エキス、硫安
、尿素などを用いた場合に比べて、酵素活性が最大にな
るまでの時間（発酵時間）が短縮される。しかしながら
、この大豆カゼインにおいては酵素活性がペプトンやコ
ーンステイープリカーなどに比較して若干低いという問
題があるが、この大豆カゼインに、他の窒素源として、
酵苛エキス又は前記菌体の発酵後分離した菌体エキス若
しくはその両方を組み合わせることにより、相乗効果が
発揮されて、大豆カゼイン単独系に比べて、発酵時間を
変えずに酵素活性を約１６５〜１．７倍向上させること
ができへこれは、大豆カゼイン単独系においては菌体濃
度が低く、前記窒素源を加えることにょシ、菌体濃度が
約１．３〜１．７倍となり、しかも菌体１個当シのアル
カリ°プロテアーゼ生産能が大豆カゼイン単独系と同等
か、又は若干大きくなるためと考えられる。
酵母エキス又は前記菌体の発酵後分離した菌体エキス又
はその両方を組み合わせたもので、ある。このように、
大豆カゼインを用いることにより、他の窒素源、例えば
ペプトン、コーンステイープリカー、酵母エキス、硫安
、尿素などを用いた場合に比べて、酵素活性が最大にな
るまでの時間（発酵時間）が短縮される。しかしながら
、この大豆カゼインにおいては酵素活性がペプトンやコ
ーンステイープリカーなどに比較して若干低いという問
題があるが、この大豆カゼインに、他の窒素源として、
酵苛エキス又は前記菌体の発酵後分離した菌体エキス若
しくはその両方を組み合わせることにより、相乗効果が
発揮されて、大豆カゼイン単独系に比べて、発酵時間を
変えずに酵素活性を約１６５〜１．７倍向上させること
ができへこれは、大豆カゼイン単独系においては菌体濃
度が低く、前記窒素源を加えることにょシ、菌体濃度が
約１．３〜１．７倍となり、しかも菌体１個当シのアル
カリ°プロテアーゼ生産能が大豆カゼイン単独系と同等
か、又は若干大きくなるためと考えられる。
本発明方法においては、大豆カゼインの添加量は、培地
１１当り１０〜２５ｇの範囲であり、１０ｇ未満では菌
体濃度が低くて酵素活性も低く、また２５．９を超える
と菌の増殖が著しく阻害される。
１１当り１０〜２５ｇの範囲であり、１０ｇ未満では菌
体濃度が低くて酵素活性も低く、また２５．９を超える
と菌の増殖が著しく阻害される。
酵母エキスの添加量は培地１１当り５〜２０１１好まし
くは５〜ｉｏ、！７の範囲であり、５ｇ未満では大豆カ
ゼイン単独系に比して顕著な菌体濃度の上昇が認められ
ず、また２０．９を超えると菌体濃度が著しく高くなっ
て、栄養分は菌体増殖に多く消費され、アルカリ・プロ
テアーゼ生産が抑制される。
くは５〜ｉｏ、！７の範囲であり、５ｇ未満では大豆カ
ゼイン単独系に比して顕著な菌体濃度の上昇が認められ
ず、また２０．９を超えると菌体濃度が著しく高くなっ
て、栄養分は菌体増殖に多く消費され、アルカリ・プロ
テアーゼ生産が抑制される。
前記菌体エキスは、例えば分離した該菌体（湿潤状態）
を１０倍量の水で１〜２回洗浄したのち、これに卵白又
はリゾチームを添加してかきまぜ、該菌体の細胞壁を溶
解し、次いで加熱して内容物を抽出したのち、遠心分離
やろ過などによって分解した細胞壁を分離除去すること
によって得られる。
を１０倍量の水で１〜２回洗浄したのち、これに卵白又
はリゾチームを添加してかきまぜ、該菌体の細胞壁を溶
解し、次いで加熱して内容物を抽出したのち、遠心分離
やろ過などによって分解した細胞壁を分離除去すること
によって得られる。
本発明方法に用いる栄養培地には、前記の必須成分であ
る炭素源及び窒素源以外に、通常培地に用いられている
添加成分、例えばリン酸カリウム塩類、硫酸アンモニウ
ム、硫酸マグネシウム、炭酸カルシウムなどの無機塩類
、ビタミン類なども゛必要に応じ添加することができる
。
る炭素源及び窒素源以外に、通常培地に用いられている
添加成分、例えばリン酸カリウム塩類、硫酸アンモニウ
ム、硫酸マグネシウム、炭酸カルシウムなどの無機塩類
、ビタミン類なども゛必要に応じ添加することができる
。
本発明方法における培養温度は６５〜６８°Ｃの範囲で
ある。この温度が３５℃未満では増殖速度が極めて遅く
、また３８℃を超えると培養初期における増殖速度は速
いものの、最終的菌体濃度が低くなる。
ある。この温度が３５℃未満では増殖速度が極めて遅く
、また３８℃を超えると培養初期における増殖速度は速
いものの、最終的菌体濃度が低くなる。
本発明方法に用いるバチルス°リケニホルミスＡＴＣ０
１４５８Ｇは極めて酸素要求性の強い変異株であること
が、本発明者らの研究によ１り分った。すなわち、該菌
体の培養において、一時的に窒素を通して嫌気状態にし
、酵素活性を向上させることを試みたが、予想に反し逆
効果となって酵素活性は極めて低く、該菌体を寒天培地
に移してそのコロニー形態を観察したところ、全く異な
ってい丸したがって、該菌体の培養において、アルカ１
ノ・プロテアーゼ生産に好ましい通気条件を見出すため
に、亜硫酸ナトリウムの酸化テスト（二より、酸素移動
速度（Ｏｘｙｇｅｎ Ｔｒａｎｓｆｅｒ Ｈａｔｅ ）
をめたところ、１Ｘ １０’ 〜１０ Ｘ １０’ ｇ
−ｍｏｌ−０２／Ｈ１−ｍ ｉ ｎ の範囲が最適であ
ること力ぷ分った。酸素移動速度がこの範囲を逸脱する
と、菌体の増殖〃Ｓ著しく抑制されて菌体濃度が低くな
シ、その結果酵素活性も低くなる。
１４５８Ｇは極めて酸素要求性の強い変異株であること
が、本発明者らの研究によ１り分った。すなわち、該菌
体の培養において、一時的に窒素を通して嫌気状態にし
、酵素活性を向上させることを試みたが、予想に反し逆
効果となって酵素活性は極めて低く、該菌体を寒天培地
に移してそのコロニー形態を観察したところ、全く異な
ってい丸したがって、該菌体の培養において、アルカ１
ノ・プロテアーゼ生産に好ましい通気条件を見出すため
に、亜硫酸ナトリウムの酸化テスト（二より、酸素移動
速度（Ｏｘｙｇｅｎ Ｔｒａｎｓｆｅｒ Ｈａｔｅ ）
をめたところ、１Ｘ １０’ 〜１０ Ｘ １０’ ｇ
−ｍｏｌ−０２／Ｈ１−ｍ ｉ ｎ の範囲が最適であ
ること力ぷ分った。酸素移動速度がこの範囲を逸脱する
と、菌体の増殖〃Ｓ著しく抑制されて菌体濃度が低くな
シ、その結果酵素活性も低くなる。
また、本発明方法においては、培養中のｐＨ）ま６．５
〜７．０の範囲であり、６．５未満では酵素活イ生が低
く、また７、０を超えると菌体の増殖ｉ＝抑溜１］され
る。
〜７．０の範囲であり、６．５未満では酵素活イ生が低
く、また７、０を超えると菌体の増殖ｉ＝抑溜１］され
る。
本発明のアルカリ・プロテアーゼの発酵製造法（二よる
と、発酵液の酵素活性を高めることｉ＝でき、かつ発酵
時間を短縮しうるので、発酵槽や１麦処理工程における
装置の小型化か可能であり、その上装置容量当りの生産
性を向上させることｉ＝できもしたがって、本発明方法
はアルカリ・プロテアーゼの工業的発酵生産に極めて適
している。
と、発酵液の酵素活性を高めることｉ＝でき、かつ発酵
時間を短縮しうるので、発酵槽や１麦処理工程における
装置の小型化か可能であり、その上装置容量当りの生産
性を向上させることｉ＝できもしたがって、本発明方法
はアルカリ・プロテアーゼの工業的発酵生産に極めて適
している。
次に実施例によって本発明をさらに詳細に説明するＯ
参考例１
第１表に示すような成分を含む培地に、種々の炭素源を
添加したもの１０ Ｄ ｍｌを５ Ｄ Ｏ、ｎｌ坂ロフ
ラスコに入れ、初期ＰＨを６にして、バチリス゛リケニ
ホルミスＡＴＣＣ１４５８０を３７°Ｃで６日間振どう
培養したときの発酵液１ ｍｌ当りの酵素活性（ＰＵＡ
ｌ ）をめた。その結果を第２表に示す。
添加したもの１０ Ｄ ｍｌを５ Ｄ Ｏ、ｎｌ坂ロフ
ラスコに入れ、初期ＰＨを６にして、バチリス゛リケニ
ホルミスＡＴＣＣ１４５８０を３７°Ｃで６日間振どう
培養したときの発酵液１ ｍｌ当りの酵素活性（ＰＵＡ
ｌ ）をめた。その結果を第２表に示す。
第 １ 表
第２表
第２表からラクトースとガラクトース以外は、はとんど
アルカリ・プロテアーゼを生産しないこと及び、ラクト
ースはガラクトースの約２倍の酵素活性を示すことが分
る。
アルカリ・プロテアーゼを生産しないこと及び、ラクト
ースはガラクトースの約２倍の酵素活性を示すことが分
る。
参考例２
参考例１の第１表に示す組成の培地に、種々の量のラク
トースを添加したもの１００１１１を５００ ｍｌの坂
ロフラスコに入れ、初期ＰＨを６にして、参考例１で用
いた菌体を３７℃で３日間振どう培養したときの発酵液
１ゴ当りの酵素をめた。その結果を第３表に示す。
トースを添加したもの１００１１１を５００ ｍｌの坂
ロフラスコに入れ、初期ＰＨを６にして、参考例１で用
いた菌体を３７℃で３日間振どう培養したときの発酵液
１ゴ当りの酵素をめた。その結果を第３表に示す。
第３表
第３表から、ラクトース添加量が培地１１当り３０〜８
０．９のものが酵素活性が大きいことが分る。
０．９のものが酵素活性が大きいことが分る。
実施例１
参考例１の第１表に示す組成の培地に、炭素源としてラ
クトース６０ｆｌ／ｌを添加し、さらに窒素源として第
４表に示すように種々のものを添加し、参考例１と同様
にして培養試験を行い、酵素活性と培養時間をめた。そ
の結果を第４表に示す。
クトース６０ｆｌ／ｌを添加し、さらに窒素源として第
４表に示すように種々のものを添加し、参考例１と同様
にして培養試験を行い、酵素活性と培養時間をめた。そ
の結果を第４表に示す。
実施例２
参考例１の第１表に示す組成の培地に、炭素源どしてラ
クトース６０β／ｌを添加し、窒素源として酵母エキス
１０．！９／ｌ及び種々の量の大豆カゼインを添加し、
参考例１と同様にして培養試験を行い、酵素活性と培養
時間をめた。その結果を第５表に示す。
クトース６０β／ｌを添加し、窒素源として酵母エキス
１０．！９／ｌ及び種々の量の大豆カゼインを添加し、
参考例１と同様にして培養試験を行い、酵素活性と培養
時間をめた。その結果を第５表に示す。
第５表
実施例３
実施例２において、大豆カゼイン添加量を２０ｇ／ｌと
し、酵母エキスの添加量を種々変える以外は、実施例２
と同様にして培養試験を行い、酵素活性と培養時間をめ
た。その結果を第６表に示す。
し、酵母エキスの添加量を種々変える以外は、実施例２
と同様にして培養試験を行い、酵素活性と培養時間をめ
た。その結果を第６表に示す。
第６表
実施例４
実施例２における酵母エキス１０．９／ｌの代りに、菌
体エキス１バツチ分を用いる以外は、実施例２と全く同
様にして培養試験を行い、酵素活性と培養時間をめた。
体エキス１バツチ分を用いる以外は、実施例２と全く同
様にして培養試験を行い、酵素活性と培養時間をめた。
その結果を第７表に示す。
第 ７ 表
実施例５
第８表に示すような組成の培地を用い、培養温度を変え
て前記と同様に培養試験を行い、酵素活性と培養時間を
めた。その結果を第９表に示す。
て前記と同様に培養試験を行い、酵素活性と培養時間を
めた。その結果を第９表に示す。
第８表
第 ９ 表
実施例６
実施例５における酵ｆＵエキス１０９／ｌ：の代りに、
菌体エキス１バッチ分を用いる以外は実施例５と全く同
様にして培養試験を行い、酵素活性と培養時間をめた。
菌体エキス１バッチ分を用いる以外は実施例５と全く同
様にして培養試験を行い、酵素活性と培養時間をめた。
その結果を第１０表に示す。
第１０表
実施例７
実施例５における培地と同様のものを用い、３７℃で培
養するに当り、ｌ／−ジャー゛ファーメンタでかきまぜ
速度を変化させて酸素移動速度（ＱＴＲと略す）を変化
させ、培養試験を行い、酵素活性と培養時間をめた。そ
の結果を第１１表に示す。
養するに当り、ｌ／−ジャー゛ファーメンタでかきまぜ
速度を変化させて酸素移動速度（ＱＴＲと略す）を変化
させ、培養試験を行い、酵素活性と培養時間をめた。そ
の結果を第１１表に示す。
実施例８
実施例乙における培地と同様のものを用い、実施例７と
同様にして培養試験を行い、酵素活性と培養時間をめた
。その結果を第１２表に示す。
同様にして培養試験を行い、酵素活性と培養時間をめた
。その結果を第１２表に示す。
実施例９
実施例５における培地と同様のものを用い、３７°Ｃで
培養するに当り、Ｐｌ（を種々変えて培養試験を行い、
酵素活性と培養時間をめた。その結果を第１３表に示す
。
培養するに当り、Ｐｌ（を種々変えて培養試験を行い、
酵素活性と培養時間をめた。その結果を第１３表に示す
。
第１３表
Ａ（Ｖｔ−
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 １ バチルス・リケニホルミス（Ｂａｃｉｌｌｕｓｌｉ
ｃｈｅｎｉｆｏｒｍｉｓ ） ＡＴＯＯ１４５８０を用
いてアルカリ・プロテアーゼを発酵生産するに当り、炭
素源として培地ＩＪ当りラクトース３０〜８０１１を、
窒素源として培地１１当シ大豆カゼイン１０〜２５５と
、酵母エキス５〜２０ｇ又は前記菌体の発酵後分離した
菌体エキス若しくはその両方とを添加した栄養培地中で
、温度３５〜３８℃及びＰＨ６，５〜７．０の条件下で
前記菌体を培養することを特徴とするアルカリ°プロテ
アーゼの製造方法。 ２ 菌体エキスが、発酵後分離した菌体と卵白とを混合
してかきまぜながら加熱したのち、該菌体の細胞壁を取
り除いて成るものである特許請求の範囲第１項記載の製
造方法。 ６ 菌体エキスが、発酵後分離した菌体とリゾチームと
を混合してかきまぜながら加熱したのち、該菌体の細胞
壁を取り除いて成るものである特許請求の範囲第１項記
載の製造方法。 ４ 酸素移動速度（Ｏｘｙｇｅｎ Ｔｒａｎｓｆｅｒ
Ｒａｔｅ ）をＩ Ｘｌ ０”’ 〜１０Ｘ１０″ｌ−
ｍ０１．０２／１１−ｍ１ｎの範囲で行う特許請求の範
囲第１項記載の製造方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP58245459A JPS60141289A (ja) | 1983-12-28 | 1983-12-28 | アルカリ・プロテア−ゼの製造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP58245459A JPS60141289A (ja) | 1983-12-28 | 1983-12-28 | アルカリ・プロテア−ゼの製造方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPS60141289A true JPS60141289A (ja) | 1985-07-26 |
Family
ID=17133972
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP58245459A Pending JPS60141289A (ja) | 1983-12-28 | 1983-12-28 | アルカリ・プロテア−ゼの製造方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPS60141289A (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH05192131A (ja) * | 1991-03-19 | 1993-08-03 | Becton Dickinson & Co | 環境サンプリング用器具として使用するのに適した微生物培地 |
| CN110408568A (zh) * | 2019-08-09 | 2019-11-05 | 中国农业科学院饲料研究所 | 一株高产蛋白酶的地衣芽孢杆菌及其发酵产酶方法 |
-
1983
- 1983-12-28 JP JP58245459A patent/JPS60141289A/ja active Pending
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH05192131A (ja) * | 1991-03-19 | 1993-08-03 | Becton Dickinson & Co | 環境サンプリング用器具として使用するのに適した微生物培地 |
| CN110408568A (zh) * | 2019-08-09 | 2019-11-05 | 中国农业科学院饲料研究所 | 一株高产蛋白酶的地衣芽孢杆菌及其发酵产酶方法 |
| CN110408568B (zh) * | 2019-08-09 | 2021-06-08 | 中国农业科学院饲料研究所 | 一株高产蛋白酶的地衣芽孢杆菌及其发酵产酶方法 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Arvidson et al. | Influence of cultivation conditions on the production of extracellular proteins by Staphylococcus aureus | |
| US3723250A (en) | Proteolytic enzymes, their production and use | |
| US3623957A (en) | Preparation of microbial alkaline protease by fermentation with bacillus subtilis, variety licheniformis | |
| US6475759B1 (en) | Low PH lactic acid fermentation | |
| US3674643A (en) | Preparation of proteolytic enzymes having maximum activity at high alkalinity | |
| Escobar et al. | Effect of agitation speed on the synthesis of Mucor miehei acid protease | |
| US3623956A (en) | Preparation of microbial alkaline protease by fermentation with bacillus subtilis, variety licheniformis | |
| Espoui et al. | Optimization of protease production process using bran waste using Bacillus licheniformis | |
| JPS60141289A (ja) | アルカリ・プロテア−ゼの製造方法 | |
| Kumar et al. | Arrowroot (Marantha arundinacea) starch as a new low-cost substrate for alkaline protease production | |
| US6022537A (en) | Bacterial strains of the genus Bacillus, closely phenotypically related to the genus Lactobacillus, culture method and use | |
| Ozdenefe et al. | Optimization of culture conditions for alkaline protease production from waste breads using Bacillus subtilis | |
| EP4189062A1 (en) | Industrial fermentation process for bacillus using feed rate shift | |
| Sinha et al. | Studies on the production of acid protease by submerged fermentation | |
| EP4189103A1 (en) | Industrial fermentation process for bacillus using temperature shift | |
| Ustáriz et al. | Fermentation conditions increasing protease production by Serratia marcescens in fresh whey | |
| CN113528599A (zh) | 一种高效螯合型酵素肽的生产方法 | |
| Aunstrup | Industrial approach to enzyme production | |
| Priyanka et al. | Neutral protease production by Rhizopus oligosporus NCIM 1215 under solid state fermentation using mixed substrates of agro industrial residues | |
| Raninger et al. | Accelerated process development for protease production in continuous multi‐stage cultures | |
| CN116965482B (zh) | 一种生物发酵制备大豆酶解蛋白的方法及其应用 | |
| US2572823A (en) | Process for reducing foaming in protein-containing mixtures | |
| RU2061035C1 (ru) | Питательная среда для культивирования микромицетов aspergillus oryzal - продуцентов гидролитических ферментов | |
| JP3642095B2 (ja) | 新規中性キシラナーゼおよびその製造法 | |
| Wongso | Optimisation of industrial whey ethanol fermentation process: a thesis presented in partial fulfilment of the requirements for the degree of Doctor of Philosophy in Biotechnology at Massey University |