JPH11507811A - Human cystatin E - Google Patents

Human cystatin E

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JPH11507811A
JPH11507811A JP9500362A JP50036295A JPH11507811A JP H11507811 A JPH11507811 A JP H11507811A JP 9500362 A JP9500362 A JP 9500362A JP 50036295 A JP50036295 A JP 50036295A JP H11507811 A JPH11507811 A JP H11507811A
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ヒューマン ジノーム サイエンシーズ,インコーポレイテッド
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Abstract

(57)【要約】 ヒトCysEポリペプチド、およびこのようなポリペプチドをコードするDNA(RNA)が開示される。組換え技術によりこのようなポリペプチドを産生するための手順もまた開示する。このようなポリペプチドを、骨粗鬆症、腫瘍転移、細菌感染、ウイルス感染、敗血性ショック、炎症、網膜過敏、カリエス、悪液質、および筋肉るいそうを処置するために利用するための方法もまた開示する。コード配列における変異、および宿主由来のサンプル中のポリペプチドの濃度の変化を検出するための診断方法もまた開示する。   (57) [Summary] Disclosed are human CysE polypeptides, and DNA (RNA) encoding such polypeptides. Procedures for producing such polypeptides by recombinant techniques are also disclosed. Also disclosed are methods for utilizing such polypeptides to treat osteoporosis, tumor metastasis, bacterial infection, viral infection, septic shock, inflammation, retinal hypersensitivity, caries, cachexia, and muscle wasting. I do. Also disclosed are diagnostic methods for detecting mutations in the coding sequence and changes in the concentration of the polypeptide in a sample derived from the host.

Description

【発明の詳細な説明】 ヒトシスタチンE 本発明は、新たに同定されたポリヌクレオチド、このようなポリヌクレオチド によりコードされるポリペプチド、このようなポリヌクレオチドおよびポリペプ チドの使用、ならびにこのようなポリヌクレオチドおよびポリペプチドの産生に 関する。より詳細には、本発明のポリペプチドは、ヒトシスタチンEとして推定 的に同定されており、本明細書中、以下でときどき「CysE」と呼ばれる。本発明 はまた、このようなポリペプチドの作用を阻害することに関する。 シスタチンのスーパーファミリーは、システインプロテイナーゼインヒビター の群を包含し、これらはヒトの組織および体液に広く分布し、そしてそれらは強 固でかつ可逆的な複合体を、カテプシンB、H、L、およびSのようなシステイ ンプロテイナーゼと形成する。シスタチンは、これらのプロテイナーゼが参加す る正常または病理学的なプロセスの調節に関わっていることが最もあり得る。従 って、シスタチンは、タンパク質およびペプチドの細胞内および細胞外異化に影 響を及ぼし得(Barret,A.J.およびKirchke,H.,Methods Enzymol.,80:535-56 1(1981))、プロホルモン(Orlowski,M.,Mol .Cell.Biochem.,52:49-74(198 3))およびプロ酵素(Taugner,R.ら、Histochemistry,83:103-108(1985))の タンパク質分解的プロセシングを調節し得、悪性細胞(Sloane,B.F.,Semin .C ancer Biol. ,1:137-152(1990))または微生物(Bjorck,L.ら、Nature,337:38 5-386(1989)およびBjorck,L.ら、J .Virol.,64:941-943(1990))による正常細 胞の侵入に対して保護し得、そして関節リューマチにおける局所的な炎症性プロ セス(Mort,J.S.ら、Arthritis Rheum.,27:509-515(1984))および化膿性の気 管支拡張症(Buttle,D.J.ら、Scand .J.Clin.Lab.Invest.,50:509-516(1990 ))を調節し得る。 シスタチンのスーパーファミリーは、ファミリーI、II、およびIII(それぞ れ、ステフィンファミリー、シスタチンファミリー、およびキニノーゲンファミ リーとも呼ばれる)に細区画されており、各々が他方のファミリーのメンバーと 構造的機構および生物学的分布において異なるメンバーを有する(Barret,A.J. ら、Biochem .J.,236:312(1986))。ファミリーIシスタチンAおよびBは、単 一の約100アミノ酸残基のポリペプチド鎖からなり、ジスルフィド架橋を有しな い。ファミリーIIシスタチンは、約120鎖アミノ酸残基のポリペプチド鎖からな り、2つの鎖内ジスルフィド結合を有する。最後に、ファミリーIIIシスタチン であるキニノーゲンは、3つのファミリーIIシスタチン様ドメインの存在によっ て特徴づけられるような、高度の構造的な複雑さを示す。各々のドメインは、2 つのジスルフィド架橋を、ファミリーIIシスタチンに相同な位置に有する(Mull er-Esterl,W.ら、Transbiochem .Sci.,11:336-339(1986))。ファミリーIお よびIIシスタチンは、主に細胞内、および分泌液中に存在する(Abrahamson,M. ら、J.Biol.Chem.,261:11282-11289(1986))、これに対しキニノーゲンは、 血液プラズマに非常に濃縮されている(Adam,A.ら、Clin .Chem.,31:423-426( 1985))。 少なくとも1つのII型シスタチンで、シスタチンCと命名されているものが、 全ての組織中に発現されているようである(Abrahamson,M.ら、Biochem .J.,2 68:287-294(1990))。これに対して、S-型のシスタチンは、唾液中に優性に見 出される(Abrahamson,M.ら、J.Biol.Chem.,261:11282-11289(1986))。シ スタチンおよび派生的ペプチドは、抗菌活性および抗ウイルス活性を有し(Bjor ckら、(1989,1990))、これはそれらが環境に直接曝露された上皮の表面を濡ら している分泌物中に存在することと一致する。シスタチンはまた、免疫応答を調 節し得る。これは、マクロファージによるシスタチンプロテアーゼの放出を阻害 することによって(Bieth,J.,Cysteine Proteinases and Their Inhibitors V.Turk,編(Walter De Gruyter & Company,New York)693-703頁(1986))、直 接的に起こり得るか、または走化性の応答および細胞のファゴサイトーシス関連 のレスピラトリーバーストを阻害することによって(Leung-Tackら、Biol .Chem . ,371:255-258(1990))、非直接的に起こり得る。このデータは、II型のシスタ チンが、上皮表面で種々の保護性の機能を行い得ることを示唆する。ヒトII型シ スタチン遺伝子ファミリーは、少なくとも7つのメンバーからなる。 遺伝性シスタチンCアミロイド脈管障害(HCCAA)疾患は、シスタチンCをコ ードする遺伝子中の、Glu→Leu変異に関連する。これは、大脳動脈におけるこの 変異シスタチンCから成るアミロイド線維の沈着を導く。これは致命的な出血を 引き起こすようである(Ghiso,J.ら、PNAS ,USA,83:2974-2978(1986))。 本発明のポリペプチドは、シスタチンCとのアミノ酸配列の相同性の結果とし て、推定的にCysEとして同定された。この同定は、アミノ酸配列の相同性の結果 としてなされた。 本発明の1つの局面によれば、新規の成熟ポリペプチド、ならびにそれらの生 物学的に活性で、かつ診断または治療に有用なフラグメント、アナログおよび誘 導体が提供される。本発明のポリペプチドはヒト起源である。 本発明の別の局面によれば、本発明のポリペプチドをコードする単離された核 酸分子が提供され、この核酸分子は、mRNA、DNA、cDNA、ゲノムDNA、ならびにア ナログ、および生物学的に活性で、かつ診断または治療に有用なそれらのフラグ メントを含む。 本発明のなおさらなる局面によれば、本発明のポリペプチドをコードするヒト 核酸配列を含む組換え原核生物宿主細胞および/または組換え真核生物宿主細胞 を、前記タンパク質の発現およびその後の前記タンパク質の回収を促進する条件 下で、培養する工程を包含する組換え技術によってこのようなポリペプチドを産 生するためのプロセスが提供される。 本発明のなおさらなる局面によれば、このようなポリペプチド、またはこのよ うなポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを、治療的目的、例えば、カテ プシンを阻害するために、ならびに骨粗相症、腫瘍の転移、ウイルス複製、炎症 、化膿の気管支拡張症を妨げるため、網膜を保護するため、白質脳症を妨げるた め、カリエスを減少させるため、アレルギー反応を処置するため、悪液質および 筋るいそうを処置するため、ならびにアミロイド症を妨げるため、ならびに抗菌 剤として利用するためのプロセスが提供される。 本発明のなおさらなる局面によれば、本発明のポリペプチドをコードする核酸 配列に特異的にハイブリダイズするのに十分な長さの核酸分子を含む核酸プロー ブもまた提供される。 本発明のなおさらなる局面によれば、このようなポリペプチドに対する抗体が 提供される。 本発明のなお別の局面によれば、本発明のポリペプチドをコードする核酸配列 における変異に関連する疾患または疾患に対する感受性を検出するための診断的 アッセイが提供される。 本発明のなおさらなる局面によれば、このようなポリペプチド、またはこのよ うなポリペプチドをコードするポリヌクレオチドを、科学的研究、例えば、DNA の合成およびDNAベクターの製造に関するインビトロの目的のために利用するた めのプロセスが提供される。 本発明のこれらおよび他の局面は、本明細書中の教示から当業者に明らかであ るはずである。 以下の図面は、本発明の実施態様の例示であり、そして請求の範囲により包含 される本発明の範囲を限定することを意味しない。 図1は、本発明のポリペプチドのcDNA配列、および対応する推定アミノ酸配列 を示す。アミノ酸の標準1文字略語を使用する。配列決定を、373自動DNAシーケ ンサー(Applied Biosystems,Inc.)を用いて行った。 図2は、本発明のポリペプチド(上列)とヒトシスタチンC(下列)との間の アミノ酸配列相同性を示す。 本発明の1つの局面によれば、図1の推定アミノ酸配列(配列番号2)を有す る成熟ポリペプチド、および1995年3月20日にATCC受託番号第97103号として寄 託されたクローンのcDNAによりコードされる成熟ポリペプチドをコードする単離 された核酸(ポリヌクレオチド)が提供される。 本発明のポリヌクレオチドは、初代培養羊膜細胞由来のcDNAライブラリーにお いて発見された。これは構造的にシスタチンIIスーパーファミリーに関連する。 これは、148アミノ酸残基(そのうち、大体初めの28アミノ酸残基が推定のリー ダー配列であり、従って成熟タンパク質は120アミノ酸をふくむ)のタンパク質 をコードするオープンリーディングフレームを含む。このタンパク質は、ヒトシ スタチンCに最も高い程度の相同性を示し、147アミノ酸のストレッチにわたっ て33.566%の同一性および53.846%の類似性を有する。 本発明のポリヌクレオチドは、RNAの形態またはDNA(このDNAは、cDNA、ゲノ ムDNA、および合成DNAを含む)の形態であり得る。DNAは二本鎖または一本鎖で あり得、そして一本鎖の場合には、コード鎖または非コード(アンチセンス)鎖 であり得る。成熟ポリペプチドをコードするコード配列は、図1(配列番号1) に示すコード配列または寄託したクローンのコード配列と同一であり得るか、あ るいはそのコード配列が、遺伝コードの重複または縮重の結果として、図1(配 列番号1)のDNAまたは寄託したcDNAと同じ成熟ポリペプチドをコードする異な るコード配列であり得る。 図1(配列番号2)の成熟ポリペプチドまたは寄託したcDNAによりコードされ る成熟ポリペプチドをコードするポリヌクレオチドは、以下を含み得るがこれら に限定されない:成熟ポリペプチドのコード配列のみ;成熟ポリペプチドのコー ド配列およびリーダー配列または分泌配列あるいはプロタンパク質配列のような さらなるコード配列;成熟ポリペプチドのコード配列(および必要に応じてさら なるコード配列)ならびに非コード配列(例えば、イントロンあるいは成熟ポリ ペプチドのコード配列の5'および/または3'非コード配列)。 従って、用語「ポリペプチドをコードするポリヌクレオチド」は、ポリペプチ ドのコード配列のみを含むポリヌクレオチド、ならびにさらなるコード配列およ び/または非コード配列を含むポリヌクレオチドを含む。 本発明はさらに、図1(配列番号2)の推定アミノ酸配列を有するポリペプチ ドまたは寄託したクローンのcDNAによりコードされるポリペプチドのフラグメン ト、アナログ、および誘導体をコードする本明細書中上記のポリヌクレオチドの 改変体に関する。ポリヌクレオチドの改変体は、ポリヌクレオチドの天然に存在 する対立遺伝子改変体またはポリヌクレオチドの天然に存在しない改変体であり 得る。 従って、本発明は、図1(配列番号2)に示すものと同じ成熟ポリペプチド、 または寄託したクローンのcDNAによりコードされるものと同じ成熟ポリペプチド をコードするポリヌクレオチド、ならびにそのようなポリヌクレオチドの改変体 を含む。この改変体は、図1(配列番号2)のポリペプチドまたは寄託したクロ ーンのcDNAによりコードされるポリペプチドのフラグメント、誘導体またはアナ ログをコードする。このようなヌクレオチド改変体は、欠失改変体、置換改変体 、 および付加または挿入改変体を含む。 本明細書中上記で示したように、ポリヌクレオチドは、図1(配列番号1)に 示すコード配列または寄託したクローンのコード配列の天然に存在する対立遺伝 子改変体であるコード配列を有し得る。当該分野で公知なように、対立遺伝子改 変体は、1つ以上のヌクレオチドの置換、欠失または付加を有し得るポリヌクレ オチド配列の別の形態であり、これはコードされるポリペプチドの機能を実質的 に変化させない。 本発明はまた、成熟ポリペプチドのコード配列が、宿主細胞からのポリペプチ ドの発現および分泌を援助するポリヌクレオチド配列(例えば、細胞からのポリ ペプチドの輸送を制御するための分泌配列として機能するリーダー配列)と同一 のリーディングフレームに融合され得るポリヌクレオチドを包含する。リーダー 配列を有するこのポリペプチドはプロタンパク質であり、そしてこのポリペプチ ドの成熟した形態を形成するために宿主細胞により切断されたリーダー配列を有 し得る。ポリヌクレオチドはまたプロタンパク質をコードし得、これは成熟タン パク質にさらなる5'アミノ酸残基を有する。プロ配列を有する成熟タンパク質は 、プロタンパク質であり、そしてタンパク質の不活性な形態である。一旦プロ配 列が切断されると、活性な成熟タンパク質が残る。 従って、例えば、本発明のポリヌクレオチドは、成熟タンパク質、またはプロ 配列を有するタンパク質、あるいはプロ配列およびプレ配列(リーダー配列)の 両方を有するタンパク質をコードし得る。 本発明のポリヌクレオチドはまた、本発明のポリペプチドの精製を可能にする マーカー配列にインフレームで融合されたコード配列を有し得る。マーカー配列 は、細菌宿主の場合には、マーカーに融合された成熟ポリペプチドの精製を提供 する、pQE-9ベクターにより供給されるヘキサヒスチジンタグであり得る。ある いは、例えばマーカー配列は、哺乳動物宿主(例えば、COS-7細胞)が使用され る場合は、赤血球凝集素(HA)タグであり得る。HAタグは、インフルエンザ赤血 球凝集素タンパク質に由来するエピトープに対応する(Wilson,I.ら、Cell,37 :767(1984))。 用語「遺伝子」は、ポリペプチド鎖を産生することに関与するDNAのセグメン トを意味し;これは、コード領域の前および後(リーダーおよびトレイラー(tra iler))の領域ならびに個々のコードセグメント(エクソン)の間の介在配列( イントロン)を含む。 全長CysE遺伝子のフラグメントは、全長CysE遺伝子を単離するため、およびCy sE遺伝子に対する高い配列類似性または類似した生物学的活性を有する他の遺伝 子を単離するために、cDNAライブラリーのハイブリダイゼーションプローブとし て使用され得る。このタイプのプローブは、好ましくは、少なくとも30塩基を有 し、そして例えば、50塩基以上を有し得る。プローブはまた、全長の転写物に対 応するcDNAクローンおよびゲノムクローン、または調節領域およびプロモーター 領域、エキソン、ならびにイントロンを含む完全CysE遺伝子を含有するクローン を同定するために使用され得る。スクリーニングの例は、既知のDNA配列を使用 し、オリゴヌクレオチドプローブを合成することにより、CysE遺伝子のコード領 域を単離することを含む。本発明の遺伝子の配列に相補的な配列を有する標識さ れたオリゴヌクレオチドは、ヒトcDNA、ゲノムDNA、またはmRNAのライブラリー をスクリーニングして、ライブラリーのどのメンバーにプローブがハイブリダイ ズするかを決定するために使用される。 本発明はさらに、配列間に少なくとも70%、好ましくは少なくとも90%、およ びより好ましくは95%の同一性が存在する場合、本明細書中上記の配列にハイブ リダイズするポリヌクレオチドに関する。本発明は特に、本明細書中上記のポリ ヌクレオチドにストリンジェントな条件下でハイブリダイズするポリヌクレオチ ドに関する。本明細書中で用いられる用語「ストリンジェントな条件」は、ハイ ブリダイゼーションが、配列間に少なくとも95%、そして好ましくは少なくとも 97%の同一性が存在する場合のみに生じることを意味する。好ましい実施態様に おいて、本明細書中上記のポリヌクレオチドにハイブリダイズするポリヌクレオ チドは、図1(配列番号1)のcDNAまたは寄託したcDNA(単数または複数)によ りコードされる成熟ポリペプチドと実質的に同じ生物学的機能または活性のいず れかを保持するポリペプチドをコードする。 あるいは、このポリヌクレオチドは、本発明のポリヌクレオチドにハイブリダ イズし、本明細書中上記したように、それに対して同一性を有し、そして活性を 保持てもよいかまたはしなくてもよい、少なくとも20塩基、好ましくは30塩基、 そしてより好ましくは少なくとも50塩基を有し得る。例えばそのようなポリヌク レオチドは、配列番号1のポリヌクレオチドのためのプローブとして(例えば、 このポリヌクレオチドの回収のためのプローブ、または診断用プローブ)あるい はPCRプライマーとして用いられ得る。 従って、本発明は、配列番号2のポリペプチドをコードするポリヌクレオチド に対して少なくとも70%、好ましくは少なくとも90%の同一性およびより好まし くは95%の同一性を有するポリヌクレオチドならびにそのフラグメント(このフ ラグメントは、少なくとも30塩基および好ましくは少なくとも50塩基を有する) ならびにこのようなポリヌクレオチドによりコードされるポリペプチドに関する 。 本明細書中でいう寄託物(単数または複数)は、特許手続き上の微生物の寄託 の国際的承認に関するブダペスト条約の下に維持される。これらの寄託物は、当 業者に対する便宜として提供されるにすぎず、そして米国特許法第112条の下で 寄託が必要とされることを認めたわけではない。寄託物に含まれるポリヌクレオ チドの配列、ならびにそれによりコードされるポリペプチドのアミノ酸配列は、 本明細書中に参考として援用され、そして本明細書中の配列の任意の記載とのい かなる対立の場合にも管理している。寄託物を製造し、使用し、または販売する ためには実施許諾が必要とされ得、そしてそのような実施許諾は本明細書によっ て与えられるわけではない。 本発明はさらに、図1(配列番号2)の推定アミノ酸配列を有するか、または 寄託したcDNAによりコードされるアミノ酸配列を有するCysEポリペプチド、なら びにそのようなポリペプチドのフラグメント、アナログおよび誘導体に関する。 用語「フラグメント」、「誘導体」、および「アナログ」は、図1(配列番号 2)のポリペプチドまたは寄託したcDNAにコードされるポリペプチドをいう場合 、そのようなポリペプチドと実質的に同じ生物学的機能または活性を保持するポ リペプチドを意味する。従って、アナログは、活性な成熟ポリペプチドを産生す るためのプロタンパク質部分の切断によって活性化され得るプロタンパク質を含 む。 本発明のポリペプチドは、組換えポリペプチド、天然のポリペプチドまたは合 成ポリペプチドであり得、好ましくは組換えポリペプチドであり得る。 図1(配列番号2)のポリペプチドまたは寄託したcDNAによりコードされるポ リペプチドのフラグメント、誘導体、またはアナログは、(i)1つ以上のアミノ 酸残基が保存アミノ酸残基または非保存アミノ酸残基(好ましくは保存アミノ酸 残基)で置換され、そしてこのような置換されるアミノ酸残基は遺伝的コードに よりコードされ得るアミノ酸残基であってもよく、またはそうでなくてもよいも の、あるいは(ii)1つ以上のアミノ酸残基が置換基を含有するもの、あるいは(i ii)成熟ポリペプチドが、ポリペプチドの半減期を増加させる化合物(例えば、 ポリエチレングリコール)のような別の化合物と融合されているもの、あるいは (iv)さらなるアミノ酸が、リーダー配列または分泌配列、あるいは成熟ポリペプ チドまたはプロタンパク質配列の精製のために使用される配列のような、成熟ポ リペプチドに融合されているものであり得る。このようなフラグメント、誘導体 およびアナログは、本明細書中の教示から、当業者の範囲内にあると考えられる 。 本発明のポリペプチドおよびポリヌクレオチドは、好ましくは、単離された形 態で提供され、そして好ましくは均質に精製される。 用語「単離された」は、物質がその本来の環境(例えば、天然に存在する場合 は、天然の環境)から取り出されていることを意味する。例えば、生存する動物 の中に存在する天然に存在するポリヌクレオチドまたはポリペプチドは単離され ていないが、天然の系において共存する物質の幾らかまたは全てから分離されて いる同一のポリヌクレオチドまたはポリペプチドは単離されている。このような ポリヌクレオチドはベクターの一部であり得、そして/またはこのようなポリヌ クレオチドまたはポリペプチドは、組成物の一部であり得、かつそのようなベク ターまたは組成物がその天然の環境の一部ではない点で、なお単離されている状 態であり得る。 本発明のポリペプチドは、配列番号2のポリペプチド(特に成熟ポリペプチド )ならびに少なくとも70%の類似性(好ましくは少なくとも70%の同一性)を配 列番号2のポリペプチドに対して有し、そしてより好ましくは少なくとも90%の 類似性(より好ましくは少なくとも90%の同一性)を配列番号2のポリペプチド に対して有し、そしてなおより好ましくは少なくとも95%の類似性(なおより好 ましくは少なくとも95%の同一性)を配列番号2のポリペプチドに対して 有するポリペプチドを含み、そしてまた一般に少なくとも30%のアミノ酸および より好ましくは少なくとも50アミノ酸を含むこのようなポリペプチドの部分を有 するこのようなポリペプチドの部分を含む。 当業者に公知なように、2つのポリペプチド間の「類似性」は、1つのポリペ プチドのアミノ酸配列およびその保存されたアミノ酸置換を第2のポリペプチド の配列と比較することにより決定される。 本発明のポリペプチドのフラグメントまたは部分は、ペプチド合成により対応 する全長ポリペプチドを産生するために使用され得る。従って、このフラグメン トは全長ポリペプチドを産生するための中間体として使用され得る。本発明のポ リヌクレオチドのフラグメントまたは部分は、本発明の全長ポリヌクレオチドを 合成するために使用され得る。 本発明はまた、本発明のポリヌクレオチドを含むベクター、本発明のベクター を用いて遺伝子操作される宿主細胞、および組換え技術による本発明のポリペプ チドの産生に関する。 宿主細胞は、本発明のベクター(これは、例えば、クローニングベクターまた は発現ベクターであり得る)を用いて遺伝子操作される(形質導入されるか、ま たは形質転換されるか、またはトランスフェクトされる)。ベクターは、例えば 、プラスミド、ウイルス粒子、ファージなどの形態であり得る。操作された宿主 細胞は、プロモーターを活性化するか、形質転換体を選択するか、またはCysE遺 伝子を増幅するために適切に改変した従来の栄養培地中において培養され得る。 培養条件(例えば、温度、pHなど)は、発現のために選択される宿主細胞に以前 使用された条件であり、そして当業者には明らかである。 本発明のポリヌクレオチドは、組換え技術によりポリペプチドを産生するため に用いられ得る。従って、例えば、ポリヌクレオチドは、ポリペプチドを発現す るための種々の発現ベクターのいずれか1つに含まれ得る。このようなベクター は、染色体DNA配列、非染色体DNA配列、および合成DNA配列を包含する。このよ うなベクターは、例えば、SV40の誘導体;細菌性プラスミド;ファージDNA;バ キュロウイルス;酵母プラスミド;プラスミドおよびファージDNAの組み合わせ に由来するベクター、ウイルスDNA(例えば、ワクシニア、アデノウイルス、鶏 痘ウイルス、および仮性狂犬病)である。しかし、宿主において複製可能で、か つ存続可能である限り、他の任意のベクターも使用され得る。 適切なDNA配列は、種々の手順によりベクターに挿入され得る。一般に、DNA配 列は、当該分野で公知の手順により適切な制限エンドヌクレアーゼ部位に挿入さ れる。このような手順および他の手順は、当業者の範囲内であると考えられる。 発現ベクター中のDNA配列は、mRNAの合成を指示する適切な発現制御配列(プ ロモーター)に作動可能に連結される。このようなプロモーターの代表的な例と しては、以下が挙げられ得る:LTRまたはSV40プロモーター、E.coli lacまたはt rp 、λファージPLプロモーター、および原核生物細胞または真核生物細胞あるい はそれらのウイルス内で遺伝子の発現を制御することが知られている他のプロモ ーター。発現ベクターはまた、翻訳開始のためのリボソーム結合部位および転写 ターミネーターを含有する。ベクターはまた、発現を増幅するための適切な配列 を含有し得る。 さらに、発現ベクターは、好ましくは、形質転換された宿主細胞の選択のため の表現型特性(例えば、真核細胞培養物についてはジヒドロ葉酸レダクターゼま たはネオマイシン耐性、あるいは例えばE.coliにおけるテトラサイクリン耐性ま たはアンピシリン耐性)を提供する1つ以上の選択マーカー遺伝子を含有する。 本明細書中上記のような適切なDNA配列ならびに適切なプロモーター配列また は制御配列を含有するベクターは、適切な宿主を形質転換して宿主にタンパク質 を発現させるために用いられ得る。 適切な宿主の代表的な例としては、以下が挙げられ得る:細菌細胞(例えば、E.coliStreptomycesSalmonella typhimurium);真菌細胞(例えば酵母); 昆虫細胞(例えば、Drosophila S2およびSpodoptera Sf9);動物細胞(例えば 、CHO、COSまたはBowes黒色腫);アデノウイルス;植物細胞など。適切な宿主 の選択は、本明細書中の教示から当業者の範囲内であると考えられる。 さらに詳細には、本発明はまた、上記で広範に記載した1つ以上の配列を含む 組換え構築物を包含する。構築物は、ベクター(例えば、プラスミドベクターま たはウイルスベクター)を包含し、このベクターの中に、本発明の配列が正方向 または逆方向に挿入されている。この実施態様の好ましい局面において、構築物 はさらに、配列に作動可能に連結された調節配列(例えば、プロモーターを包含 する)を含む。非常に多数の適切なベクターおよびプロモーターが当業者には公 知であり、そして市販されている。以下のベクターが例として提供される。細菌 性:pQE70、pQE60、pQE-9(Qiagen)、pBS、pD10、phagescript、psiX174、pblues cript SK、pbsks、pNH8A,pNH16a、pNH18A、pNH46A(Stratagene);ptrc99a、pKK 223-3、pKK233-3、pDR540、pRIT5(Pharmacia)。真核性:pWLNEO、pSV2CAT、pOG4 4、pXT1,pSG(Stratagene)pSVK3、pBPV、pMSG、pSVL(Pharmacia)。しかし、他の 任意のプラスミドまたはベクターも、それらが宿主において複製可能で、かつ存 続可能である限り、使用され得る。 プロモーター領域は、CAT(クロラムフェニコールトランスフェラーゼ)ベク ターまたは選択マーカーを有する他のベクターを使用して、任意の所望の遺伝子 から選択され得る。2つの適切なベクターは、PKK232-8およびpCM7である。特に よく知られた細菌性プロモーターは、lacI、lacZ、T3、T7、gpt.λPR、PLおよ びtrpを包含する。真核生物プロモーターは、CMV即時型、HSVチミジンキナーゼ 、初期SV40および後期SV40、レトロウイルス由来のLTR、およびマウスメタロチ オネインIを包含する。適切なベクターおよびプロモーターの選択は、十分に当 業者のレベル内である。 さらなる実施態様では、本発明は上記の構築物を含有する宿主細胞に関する。 宿主細胞は、高等真核生物細胞(例えば、哺乳動物細胞)または下等真核生物細 胞(例えば、酵母細胞)であり得るか、あるいは宿主細胞は原核生物細胞(例え ば、細菌細胞)であり得る。構築物の宿主細胞への導入は、リン酸カルシウムト ランスフェクション、DEAE-デキストラン媒介トランスフェクション、またはエ レクトロポレーションにより達成され得る(Davis,L.,Dibner,M.,Battey,I.,B asic Methods in Molecular Biology,(1986))。 宿主細胞中の構築物を用いて、従来の方法で、組換え配列によりコードされる 遺伝子産物を産生し得る。あるいは、本発明のポリペプチドは、従来のペプチド 合成機により合成的に産生され得る。 成熟タンパク質は、哺乳動物細胞、酵母、細菌、または他の細胞中で適切なプ ロモーターの制御下で発現され得る。無細胞翻訳系もまた、本発明のDNA構築物 に由来するRNAを使用して、このようなタンパク質を産生するために用いられ得 る。原核生物宿主および真核生物宿主で使用される適切なクローニングベクター および発現ベクターは、Sambrookら,Molecular Cloning: A Laboratory Manual ,第2版,Cold Spring Harbor,N.Y.,(1989)(この開示は、本明細書中に参考と して援用される)に記載されている。 本発明のポリペプチドをコードするDNAの高等真核生物による転写は、ベクタ ーにエンハンサー配列を挿入することにより増大される。エンハンサーはDNAの シス作用エレメントであり、通常は約10〜約300bpであり、これはプロモーター に作用してその転写を増大させる。例として、複製起点のbp100〜270の後期側の SV40エンハンサー、サイトメガロウイルスの初期プロモーターエンハンサー、複 製起点の後期側のポリオーマエンハンサー、およびアデノウイルスエンハンサー が挙げられる。 一般に、組換え発現ベクターは、宿主細胞の形質転換を可能とする複製起点お よび選択マーカー(例えば、E.coliのアンピシリン耐性遺伝子およびS.cerevisi ae のTRP1遺伝子)、ならびに下流の構造配列の転写を指示する高発現遺伝子由来 のプロモーターを含有する。このようなプロモーターは、中でも解糖酵素(例え ば、3-ホスホグリセリン酸キナーゼ(PGK))、α因子、酸性ホスファターゼ、ま たは熱ショックタンパク質などをコードするオペロンに由来し得る。異種構造配 列は、翻訳開始配列および翻訳終結配列、ならびに好ましくは、翻訳タンパク質 をペリプラズム腔または細胞外培地への分泌を指向し得るリーダー配列と適切な 相内で組立てられる。必要に応じて、異種配列は、所望の特徴(例えば、発現さ れた組換え産物の安定化または簡略化された精製)を与えるN末端同定ペプチド を含む融合タンパク質をコードし得る。 細菌の使用に有用な発現ベクターは、機能的なプロモーターと作動可能な読み 取り相で、適切な翻訳開始シグナルおよび翻訳終止シグナルと共に所望のタンパ ク質をコードする構造DNA配列を挿入することにより構築される。ベクターは、 1つ以上の表現型選択マーカー、およびベクターの維持を確実にし、かつ所望さ れる場合は宿主内での増幅を提供するための複製起点を含有する。形質転換のた めに適切な原核生物宿主は、E.coliBacillus subtilisSalmonella typhimur ium 、ならびにPseudomonas属、Streptomyces属、およびStaphylococcus属内の種 々の種を包含するが、他の種もまた選択対象として用いられ得る。 代表的な、しかし限定しない例として、細菌の使用に有用な発現ベクターは、 周知のクローニングベクターpBR322(ATCC 37017)の遺伝的エレメントを含む市販 のプラスミドに由来する選択マーカーおよび細菌性の複製起点を含有し得る。こ のような市販のベクターは、例えば、pKK223-3(Pharmacia Fine Chemicals,Upp sala,Sweden)およびGEM1(Promega Biotec,Madison,WI,USA)を含む。これら のpBR322「骨格」部分は、適切なプロモーターおよび発現されるべき構造配列と 組み合わされる。 適切な宿主株の形質転換および適切な細胞密度までの宿主株の増殖に続いて、 選択されたプロモーターは適切な手段(例えば、温度シフトまたは化学的誘導) により誘導され、そして細胞はさらなる期間培養される。 細胞は、代表的には遠心分離により回収され、物理的手段または化学的手段に より破砕され、そして得られた粗抽出物はさらなる精製のために保持される。 タンパク質の発現において用いられる微生物細胞は、凍結融解サイクル、超音 波処理、機械的破砕、または細胞溶解剤の使用を包含する任意の便利な方法によ り破砕され得る。このような方法は当業者に周知である。 種々の哺乳動物細胞の培養系もまた、組換えタンパク質を発現するために用い られ得る。哺乳動物発現系の例には、Gluzman,Cell,23: 175(1981)に記載さ れるサル腎臓線維芽細胞のCOS-7株、および適合性のベクターを発現し得る他の 細胞株(例えば、C127、3T3、CHO、HeLa、およびBHK細胞株)が含まれる。哺乳 動物発現ベクターは、複製起点、適切なプロモーターおよびエンハンサー、なら びに任意の必要なリボソーム結合部位、ポリアデニル化部位、スプライスドナー 部位およびスプライスアクセプター部位、転写終結配列、および5'フランキン グ非転写配列をまた含有する。SV40スプライス部位に由来するDNA配列、および ポリアデニル化部位は、必要な非転写遺伝的エレメントを提供するために使用さ れ得る。 本発明のポリペプチドは、以下を含む方法により組換え細胞培養物から回収さ れ、そして精製され得る:硫安沈殿またはエタノール沈殿、酸抽出、陰イオンま たは陽イオン交換クロマトグラフィー、ホスホセルロースクロマトグラフィー、 疎水的相互作用クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフィー、ヒド ロキシルアパタイトクロマトグラフィー、およびレクチンクロマトグラフィー。 必要に応じて、タンパク質の再折りたたみ(refolding)工程が、成熟タンパク 質の配置を完全にするために使用され得る。最終的に、高速液体クロマトグラフ ィー(HPLC)が、最終的な精製工程に用いられ得る。 本発明のポリペプチドは、天然の精製された産物、または化学合成手順の産物 であり得るか、あるいは原核生物宿主または真核生物宿主(例えば、培養物中の 細菌、酵母、高等植物、昆虫、および哺乳動物細胞)から組換え技術により産生 され得る。組換え産生手順に用いられる宿主に依存して、本発明のポリペプチド は、グリコシル化され得るか、またはグリコシル化されないかもしれない。本発 明のポリペプチドはまた、最初のメチオニンアミノ酸残基を含み得る。 本発明のCysEポリペプチドは、ヒトカテプシン酵素、および結果としてのこれ らカテプシンの作用に関連する病態を阻害するために使用され得る。例えば、Cy sEは、骨粗鬆症、ベヘット(Behcet)病、高カルシウム血症、骨軟化症、アレルギ ー性皮膚疾患、アレルギー性鼻炎、およびアレルギー性紫班病を処置するために 使用され得る。 カテプシンは、腫瘍の転移において重要な役割を演じ、従って、CysEは腫瘍の 転移を妨げるために使用され得ることもまた考えられる。 CysEポリペプチドは、特定の細菌剤(例えば、連鎖球菌)の増殖を停止するた めに、およびカリエスに寄与する酸の産生を減少させることにより虫歯を減少さ せるために、抗菌剤として利用され得る。 CysEポリペプチドはまた、ウイルスによって引き起こされる感染を処置するた めに(例えば、単純ヘルペスウイルス(HSV)の複製を阻止するために)、抗ウイ ルス剤として使用され得る。CysEポリペプチドはまた、網膜をシステインプロテ イナーゼによる攻撃に対して保護するために使用され得る。 本発明のCysEポリペプチドはまた、システインプロテイナーゼの作用を妨げる ことにより悪液質および筋肉るいそうを処置するために使用され得る。 CysEポリペプチドはまた、(例えば、慢性関節リウマチに関連する)炎症を改 変するために、および敗血性ショックを処置するために使用され得る。CysEポリ ペプチドはまた、化膿性の気管支拡張症を処置するために使用され得る。 本発明のポリヌクレオチドおよびポリペプチドは、ヒトの疾患に対する処置お よび診断の発見のための試験薬および試験物質として使用され得る。 本発明は、シスタチンEポリペプチドのレセプターの同定のための方法を提供 する。レセプターをコードする遺伝子は、当業者に公知の数多くの方法、例えば 、リガンドパニングおよびFACSソーティング(Coliganら、Current Protocols in Immun.,1(2),Chapter 5,(1991))によって同定され得る。好ましくは、発現 クローニングは、ここでポリアデニル化RNAを、シスタチンEポリペプチドに応 答する細胞から調製する場合に使用され、そしてこのRNAから作製されたcDNAラ イブラリーはプールに分割され、そしてCOS細胞またはシスタチンEポリペプチ ドに応答しない他の細胞をトランスフェクトするために使用される。スライドガ ラス上で培養されたトランスフェクトされた細胞は、標識されたシスタチンEポ リペプチドに曝される。シスタチンEポリペプチドを、ヨー素化または部位特異 的タンパク質キナーゼの認識部位の封入を含む種々の手段により標識し得る。固 定化およびインキュベーションの後、スライドをオートラジオグラフ分析に供す る。陽性のプールを同定し、そしてサブプールを調製し、そして反復サブプール 化および再スクリーニングプロセスを用いて再びトランスフェクトし、最終的に 推定のレセプターをコードする単一のクローンを生じる。レセプター同定のため の別のアプローチとして、標識されたリガンドを、細胞膜またはレセプター分子 を発現する抽出調製物と光親和的に結合し得る。架橋された材料をPAGEによって 分解し、X線フィルムに曝す。リガンドレセプターを含む標識された複合体を切 り出し、ペプチドフラグメントに分解し、そしてタンパク質微量配列決定に供し 得る。微量配列決定から得られたアミノ酸配列を使用して、縮重オリゴヌクレオ チドプローブの対を設計し、cDNAライブラリーをスクリーニングして推定のレセ プターをコードする遺伝子を同定する。 本発明は、シスタチンEレセプターに結合する化合物を同定し、そしてそこか らセカンドメッセンジャー応答を誘導するために、化合物をスクリーニングする 方法を提供する。一例として、シスタチンEレセプターを発現する哺乳動物細胞 または膜調製物を、スクリーンされるべき化合物の存在下でインキュベートする 。この化合物とレセプターの相互作用に続く既知のセカンドメッセンジャー系の 応答が測定され、そしてシスタチンEによって誘導されたセカンドメッセンジャ ーの応答と比較される。このようなセカンドメッセンジャー系には、cAMPグアニ ル酸シクラーゼ、イオンチャンネル、またはホスホイノシチド加水分解が含まれ るが、これらに限定されない。 本発明のポリペプチドおよびアゴニスト化合物は、システインプロテイナーゼ 活性を阻害する能力についてアッセイされ得る。このアッセイは、パパインおよ びヒトカテプシンBとシスタチンE複合体との解離の平衡定数(K1)を、100Mリ ン酸ナトリウム緩衝液中に基質としての10μM Z-Phe-Arg-NHMecを用いる連続的 速度アッセイによって決定する工程を包含する(Nicklin,M.J.H.およびBarrett, A.J.,Biochem.J.,223:245-253(1984))。この緩衝液は、1mMジチオスレイト ールおよび2mM EDTAを含み、そしてパパインアッセイのためにpH 6.5に、そし てカテプシンBアッセイのためにpH6.0に調整される。カテプシンBは、使用前 にアッセイ緩衝液中で20分間室温で予めインキュベートされる。アッセイにおけ る酵素濃度は、0.05〜0.25nMである。カテプシンBアッセイで試されたシスタチ ンEの最高濃度は、100nMである。有益な阻害を与える(すなわちインヒビター の添加後1時間以内に新たな定常状態を得る)インヒビター濃度は、パパインア ッセイにおいて20〜50nMである。37℃における基質加水分解は、Parkin-Elmer C etus LS50蛍光光度計において、励起波長および発光波長がそれぞれ360および46 0nmにおいてモニターされた。アッセイ下でのZ-Phe-Arg-NHMecの加水分解のKm 値は、基質によって誘導されるインヒビターの解離について得られた見かけのKi 値を、以下の関係によって補正するために用いられる:見かけのKi=Ki(1 +[S]/Km)。 本発明のポリペプチドおよびアゴニスト化合物は、適切な薬学的キャリアと組 み合わせて用いられ得る。このような組成物は、治療的有効量のポリペプチドま たはアゴニスト、および薬学的に受容可能なキャリアまたは賦形剤を含む。この ようなキャリアとしては、生理食塩水、緩衝化生理食塩水、デキストロース、水 、グリセロール、エタノール、およびそれらの組み合わせが挙げられるが、これ ら に限定されない。処方は、投与の様式に合わせるべきである。 本発明はまた、本発明の薬学的組成物の1つまたはそれ以上の成分で満たされ た1つ以上の容器を含む薬学的パックまたはキットを提供する。このような容器 (単数または複数)に関して、薬剤または生物学的製品の製造、使用、または販 売を統制する政府機関により規定された形式の製品表示をし得、この製品表示は 、ヒトへの投与についての製造、使用、または販売における機関による認可を表 す。さらに、本発明のポリペプチドまたはアゴニストは、他の治療化合物と併用 して用いられ得る。 薬学的組成物は、例えば、経口、局所、静脈内、腹膜腔内、筋肉内、皮下、鼻 腔内、または皮内経路による便利な様式で投与され得る。薬学的組成物は、特定 の症状の処置および/または予防に有効な量で投与される。一般に、それらは少 なくとも約10μg/kg体重の量で投与され、そして多くの場合、それらは1日に約 8mg/kg体重を超えない量で投与される。多くの場合、投薬量は、1日に約10μg /kg体重から約1mg/kg体重であり、投与経路、症状などが考慮される。 CysEポリペプチドおよびポリペプチドであるアゴニスト化合物は、本発明に従 って、インビボでのこのようなポリペプチドの発現により用いられ得る。これは しばしば「遺伝子治療」と呼ばれる。 従って、例えば、患者由来の細胞は、ポリペプチドをコードするポリヌクレオ チド(DNAまたはRNA)を用いてエキソビボで操作され得、次いで、操作された細胞 はこのポリペプチドで処置されるべき患者に提供される。このような方法は当該 分野で周知であり、そして本明細書中の教示から明らかである。例えば、細胞は 、本発明のポリペプチドをコードするRNAを含有するレトロウイルスプラスミド ベクターの使用により操作され得る。 同様に、細胞は、インビボでのポリペプチドの発現のために、例えば、当該分 野で公知の手順によりインビボで操作され得る。例えば、パッケージング細胞は 、本発明のポリペプチドをコードするRNAを含有するレトロウイルスプラスミド ベクターでトランスフェクトされ、その結果、パッケージング細胞はここで目的 の遺伝子を含む感染性ウイルス粒子を産生する。これらのプロデューサー細胞は 、インビボで細胞を操作するため、およびインビボでのポリペプチドの発現のた め に患者に投与され得る。このような方法により本発明のポリペプチドを投与する ためのこれらの方法および他の方法は、本発明の教示から当業者には明らかなは ずである。 本明細書中上記のレトロウイルスプラスミドベクターが由来し得るレトロウイ ルスとしては、モロニーマウス白血病ウイルス、脾臓壊死ウイルス、ラウス肉腫 ウイルスのようなレトロウイルス、ハーベイ肉腫ウイルス、ニワトリ白血症ウイ ルス、テナガザル白血病ウイルス、ヒト免疫不全症ウイルス、アデノウイルス、 骨髄増殖性肉腫ウイルス、および哺乳動物腫瘍ウイルスが挙げられるが、これら に限定されない。1つの実施態様において、レトロウイルスプラスミドベクター は、モロニーマウス白血病ウイルスに由来する。 ベクターは、1つ以上のプロモーターを含む。使用され得る適切なプロモータ ーとしては、Millerら、Biotechniques、第7巻、第9号、980-990(1989)に記載 のレトロウイルスLTR;SV40プロモーター;およびヒトサイトメガロウイルス(CM V)プロモーター、または他の任意のプロモーター(例えば、真核生物細胞プロモ ーター(ヒストン、pol III、およびβ-アクチンプロモーターを含むが、これら に限定されない))が挙げられるが、これらに限定されない。使用され得る他の ウイルスプロモーターとしては、アデノウイルスプロモーター、チミジンキナー ゼ(TK)プロモーター、およびB19パルボウイルスプロモーターが挙げられるが、 これらに限定されない。適切なプロモーターの選択は、本明細書中に含まれる教 示から当業者に明らかである。 本発明のポリペプチドをコードする核酸配列は、適切なプロモーターの制御下 にある。使用され得る適切なプロモーターとしては、アデノウイルスプロモータ ー(例えば、アデノウイルス主要後期プロモーター);または異種プロモーター (例えば、サイトメガロウイルス(CMV)プロモーター);RSウイルス(RSV)プロ モーター;誘導性プロモーター(例えば、MMTプロモーター、メタロチオネイン プロモーター);ヒートショックプロモーター;アルブミンプロモーター;ApoA Iプロモーター;ヒトグロビンプロモーター;ウイルスチミジンキナーゼプロモ ーター(例えば、単純ヘルペスチミジンキナーゼプロモーター);レトロウイル スLTR(本明細書上記に記載の改変レトロウイルスLTRを含む);βアクチンプロ モーター:およびヒト成長ホルモンプロモーターが挙げられるが、これらに限定 されない。プロモーターはまた、ポリペプチドをコードする遺伝子を制御する天 然のプロモーターであり得る。 レトロウイルスプラスミドベクターは、パッケージング細胞株に形質導入し、 プロデューサー細胞株を形成するために使用される。トランスフェクトされ得る パッケージング細胞の例としては、Miller、Human Gene Therapy、第1巻、5-14 頁(1990)(その全体が参考として本明細書中に援用される)に記載のPE501、PA3 17、ψ-2、ψ-AM,PA12、T19-14X、VT-19-17-H2、ψCRE、ψCRIP、GP+E-86、GP- envAm12、およびDAN細胞株が挙げられるが、これらに限定されない。ベクターは 、当該分野で公知の任意の手段によりパッケージング細胞を形質導入し得る。こ のような手段としては、エレクトロポレーション、リポソームの使用、およびCa PO4沈澱が挙げられるが、これらに限定されない。1つの代替として、レトロウ イルスプラスミドベクターは、リポソームにカプセル化され得るか、または脂質 に結合され得、次いで宿主に投与され得る。 プロデューサー細胞株は、ポリペプチドをコードする核酸配列(単数または複 数)を含む感染性レトロウイルスベクター粒子を産生する。次いで、このような レトロウイルスベクター粒子は、インビトロまたはインビボのいずれかで、真核 生物細胞を形質導入するために使用され得る。形質導入された真核生物細胞は、 ポリペプチドをコードする核酸配列(単数または複数)を発現する。形質導入さ れ得る真核生物細胞としては、胚芽幹細胞、胚芽肉腫細胞ならびに造血幹細胞、 肝細胞、線維芽細胞、筋芽細胞、ケラチノサイト、内皮細胞、および気管支上皮 細胞が挙げられるが、これらに限定されない。 遺伝性のシスタチンCアミロイド血管障害疾患は、致命的な出血を引き起こし 、そしてアルツハイマー病、ダウン症候群、パーキンソン病、ジメンチア(dimen tia)に関連し、そして40歳前の死を導き得る。 従って、本発明は、診断薬としてのCysE遺伝子の使用に関する。CysEの変異体 の検出は、CysE遺伝子の変異から生じるHCCAAに類似の疾患の診断を可能にする 。 ヒトCysE遺伝子における変異を有する個体は、種々の技術によりDNAレベルで 検出され得る。診断のための核酸は、患者の細胞(血液、尿、唾液、組織バイオ プシー、および剖検材料を含むが、これらに限定されない)より得られ得る。ゲ ノムDNAは、検出のために直接使用され得るか、または分析前にPCRを用いること により酵素的に増幅され得る(Saikiら、Nature、324:163-166(1986))。RNAあ るいはcDNAはまた、同じ目的のために使用され得る。例として、CysEをコードす る核酸に相補的なPCRプライマーが、CysE変異を同定および解析するために使用 され得る。例えば、欠失および挿入は、正常な遺伝子型との比較における増幅さ れた産物のサイズの変化により検出され得る。点変異は、放射性標識されたCysE RNAまたは、あるいは、放射性標識されたCysEアンチセンスDNA配列に、増幅さ れたDNAをハイブリダイズさせることにより同定され得る。完全に対合した配列 は、RNaseA消化または融解温度の差により、誤対合した二本鎖と区別され得る 。 対照遺伝子と変異を有する遺伝子との間の配列の相違は、直接DNA配列決定法 によって明らかにされ得る。さらに、クローン化されたDNAセグメントは、特定 のDNAセグメントを検出するためのプローブとして用いられ得る。本方法の感度 は、PCRと組み合わされた場合、非常に増強される。例えば、配列決定プライマ ーは、二本鎖PCR産物、または改変されたPCRによって作製された一本鎖テンプレ ート分子とともに使用される。配列決定は、放射性標識ヌクレオチドを用いる従 来の手順または蛍光タグを用いる自動配列決定手順によって実施される。 DNA配列の差異に基づいた遺伝子試験は、変性剤を含むかまたは含まないゲル におけるDNAフラグメントの電気泳動移動度における変化の検出により達成され 得る。小さな配列欠失および挿入は、高分解能ゲル電気泳動によって視覚化され 得る。異なる配列のDNAフラグメントは、変性ホルムアミド勾配ゲルにおいて区 別され得る。ここでゲル中の異なるDNAフラグメントの移動度は、それらの特異 的融解温度または部分的融解温度に従って異なる位置にゲル内で遅延される(例 えば、Myersら、Science,230:1242(1985)を参照のこと)。 特定の位置での配列の変化はまた、ヌクレアーゼ保護アッセイ(例えば、RNas e保護およびS1保護または化学的切断法(例えば、Cottonら、PNAS、USA、85:439 7-4401(1985)))により明らかにされ得る。 従って、特定のDNA配列の検出は、ハイブリダイゼーション、RNase保護、化学 的切断、直接的なDNA配列決定、または制限酵素の使用(例えば、制限断片長多 型(RFLP))およびゲノムDNAのサザンブロッティングのような方法によって達成 され得る。 より慣習的なゲル電気泳動およびDNA配列決定に加えて、変異はまたインサイ チュ分析により検出され得る。 本発明の配列はまた、染色体の同定に有益である。この配列は、個々のヒト染 色体上の特定の位置を特異的に標的化し、そしてその位置にハイブリダイズし得 る。さらに、現在は染色体上の特定の部位を同定する必要性がある。現在、染色 体位置の標識化に利用可能な実際の配列データ(反復多型)に基づいた染色体標 識化試薬はほとんどない。本発明のDNAの染色体へのマッピングは、これらの配 列と疾患に関連する遺伝子との相関における重要な第1工程である。 簡潔に述べれば、配列は、cDNAからPCRプライマー(好ましくは15〜25bp)を 調製することにより染色体にマップされ得る。遺伝子の3'非翻訳領域のコンピュ ーター解析が、ゲノムDNA内で1より多いエキソンにまたがらない、従って増幅 プロセスを複雑化するプライマーを迅速に選択するために使用される。次いで、 これらのプライマーは、個々のヒト染色体を含む体細胞ハイブリッドのPCRスク リーニングに使用される。プライマーに対応するヒト遺伝子を含むハイブリッド のみが増幅フラグメントを生じる。 体細胞ハイブリッドのPCRマッピングは、特定の染色体に特定のDNAを割り当て るための迅速な手順である。同じオリゴヌクレオチドプライマーを本発明と共に 使用して、特定の染色体由来のフラグメントのパネルまたは類似の様式の大きな ゲノムクローンのプールを用いて、部分的局在性の決定(sublocalization)が達 成され得る。染色体にマップするために同様に使用され得る他のマッピングスト ラテジーは、インサイチュハイブリダイゼーション、標識化フロー選別した(flo w-sorted)染色体を用いるプレスクリーニング、および染色体特異的cDNAライブ ラリーを構築するためのハイブリダイゼーションによる前選択を包含する。 cDNAクローンの中期染色体スプレッドへの蛍光インサイチュハイブリダイゼー ション(FISH)は、1工程で正確な染色体位置を提供するために使用され得る。こ の技術は、少なくとも50または60塩基を有するcDNAを用いて使用され得る。この 技術の総説については、Vermaら,Human Chromosomes: a Manual of Basic Tech niques,Pergamon Press,New York(1988)を参照のこと。 一旦配列が正確な染色体位置にマップされると、配列の染色体上での物理的な 位置を遺伝子地図のデータと相関させ得る。このようなデータは、例えば、V.M cKusick,Mendelian Inheritance in Man(Johns Hopkins University Welch Med ical Libraryからオンラインで入手可能である)において見出される。次いで、 同じ染色体領域にマップされる遺伝子と疾患との間の関係が、連鎖解析(物理的 に隣接した遺伝子の同時遺伝)により同定される。 次に、罹患個体と非罹患個体との間のcDNA配列またはゲノム配列における差異 を決定する必要がある。変異がいくつかまたは全ての罹患個体に観察されるが、 いずれの正常な個体には観察されない場合、この変異は疾患の原因因子であるよ うである。 物理的マッピング技術および遺伝子マッピング技術の現在の解像度では、疾患 に関連する染色体領域に正確に位置決めされたcDNAは、50と500との間の潜在的 原因遺伝子の1つであり得る。(これは、1メガベースのマッピング解像度、お よび20kbあたり1遺伝子と仮定する)。 このポリペプチド、そのフラグメントまたは他の誘導体、またはそれらのアナ ログ、あるいはそれらを発現する細胞は、それらに対する抗体を産生させるため の免疫原として使用され得る。これらの抗体は、例えば、ポリクローナル抗体、 またはモノクローナル抗体であり得る。本発明はまた、キメラ抗体、単鎖抗体、 およびヒト化抗体、ならびにFabフラグメント、またはFab発現ライブラリーの産 物を包含する。当該分野で公知の種々の手順が、このような抗体およびフラグメ ントの産生のために使用され得る。 本発明の配列に対応するポリペプチドに対して生成される抗体は、動物へのポ リペプチドの直接注射により、または動物へのポリペプチドの投与により得られ ることができる。この動物は、好ましくは非ヒトである。次いで、このようにし て得られた抗体は、ポリペプチド自体に結合する。このようにして、ポリペプチ ドのフラグメントのみをコードする配列でさえも、天然のポリペプチド全体に結 合する抗体を生成するために使用され得る。次いで、このような抗体は、そのポ リペプチドを発現する組織からポリペプチドを単離するために使用され得る。 モノクローナル抗体の調製のために、細胞株の連続培養により産生される抗体 を提供する任意の技術が使用され得る。例としては、ハイブリドーマ技術(Kohle rおよびMilstein,1975,Nature,256: 495-497)、トリオーマ技術、ヒトB細胞 ハイブリドーマ技術(Kozborら,1983,Immunology Today 4: 72)、およびヒトモ ノクローナル抗体を産生するためのEBVハイブリドーマ技術(Coleら,1985,Mono clonal Antibodies and Cancer Therapy,Alan R.Liss,Inc.,77-96頁)が挙げら れる。 単鎖抗体を産生するために記載された技術(米国特許第4,946,778号)を、本発 明の免疫原性ポリペプチド産物に対する単鎖抗体を生成するために適合させ得る 。また、トランスジェニックマウスが、本発明の免疫原性のポリペプチド産物に 対するヒト化抗体を発現するために使用され得る。 本発明を以下の実施例を参照にしてさらに記載する;しかし、本発明はこのよ うな実施例に限定されないことが理解されるべきである。すべての部分または量 は、他に明記しない限り重量基準である。 以下の実施例の理解を容易にするために、頻繁に出現する特定の方法および/ または用語が記載される。 「プラスミド」は、小文字のpの前および/またはそれに続く大文字および/ または数字を示すことにより明示される。本明細書中の出発プラスミドは、市販 されており、制限無く公的に入手可能であるか、または公開された手順に従って 入手可能なプラスミドから構築され得る。さらに、記載されるプラスミドと等価 のプラスミドが当該分野において公知であり、そして当業者には明らかである。 DNAの「消化」は、DNA中の特定の配列でのみ作用する制限酵素でそのDNAを触 媒反応的に切断することをいう。本明細書中で使用される種々の制限酵素は、市 販されており、そしてそれらの反応条件、補因子、および他の必要条件は当業者 に公知のものが使用された。分析目的のためには、典型的には1μgのプラスミ ドまたはDNAフラグメントが、約2単位の酵素と共に約20μlの緩衝溶液中で使用 される。プラスミド構築のためのDNAフラグメントを単離する目的のためには、 代表的には5〜50μgのDNAが、20〜250単位の酵素を用いてより大きな容量中で 消化される。特定の制限酵素のための適切な緩衝液および基質量は、製造者によ り特定される。37℃で約1時間のインキュベーション時間が通常使用されるが、 これは供給者の説明書に従って変わり得る。消化後、反応物をポリアクリルアミ ドゲル上で直接電気泳動して所望のフラグメントを単離する。 切断フラグメントのサイズ分離は、Goeddel,D.ら,Nucleic Acids Res.,8:4 057(1980)により記載された8%ポリアクリルアミドゲルを使用して行われる。 「オリゴヌクレオチド」は、一本鎖ポリデオキシヌクレオチドまたは2つの相 補的なポリデオキシヌクレオチド鎖のいずれかをいい、これらは化学的に合成さ れ得る。このような合成オリゴヌクレオチドは、5'リン酸を有さず、従ってキ ナーゼの存在下でATPと共にリン酸を添加しなければ、別のオリゴヌクレオチド と連結しない。合成オリゴヌクレオチドは、脱リン酸化されていないフラグメン トに連結する。 「連結」は、2つの二本鎖核酸フラグメントの間でリン酸ジエステル結合を形 成するプロセスをいう(Maniatis,Tら、前出、146頁)。他に提供しなければ、連 結は公知の緩衝液および条件を使用して、ほぼ等モル量の連結されるべきDNAフ ラグメント0.5μgあたり10単位のT4 DNAリガーゼ(「リガーゼ」)を用いて達成 され得る。 他に記載しない限り、Graham,F.およびVan der Eb,A.,Virology,52:456-45 7(1973)の方法に記載されるように、形質転換を実施した。 実施例1 可溶性CysEの細菌発現および精製 CysEをコードするDNA配列(ATCC受託番号97103)を、プロセシングされたCysE タンパク質(シグナルペプチド配列を除く)の5'配列、ならびにCysE遺伝子の 3'側のベクター配列に対応するPCRオリゴヌクレオチドプライマーを用いて最初 に増幅する。CysEに対応するさらなるヌクレオチドを、それぞれ5'および3'配 列に添加した。5'オリゴヌクレオチドプライマーは、配列5' CGCCCATGGCGGCCG CAGGAG 3'(配列番号3)を有し、これはNcoI制限酵素部位、それに続くプロセ シングされたタンパク質の推定末端アミノ酸から始まるCysEコード配列を含む。 3'配列、5' CGCAAGCTTTCACATCTGCAAAAAGTTGGC 3'(配列番号4)は、HindII I部位に相補的な配列を含み、そして続いてCysEコード配列を含む。制限酵素部 位は、細菌性発現ベクターpQE-9(Qiagen,Inc.Chatsworth,CA,91311)上の 制限酵素部位に対応する。pQE-9は、抗生物質耐性(Ampr)、細菌の複製起点(o ri)、IPTG調節可能プロモーターオペレーター(P/O)、リボソーム結合部位(R BS)、6-Hisタグ、および制限酵素部位をコードする。次いで、pQE-9をNcoIおよ びHindIIIで消化した。増幅した配列をpQE-9内に連結し、そしてヒスチジンタグ およびRBSをコードする配列とともにインフレームで挿入した。次いで、連結混 合物を用いて、E .coliM15/rep 4株(Qiagen,Inc.)を、Sambrook,J.ら、Molecu lar Cloning: A Laboratory Manual,Cold Spring Laboratory Press,(1989)に 記載の手順により形質転換した。M15/rep4はプラスミドpREP4の多数のコピーを 含有する。これは、lacIリプレッサーを発現し、そしてまたカナマイシン耐性( Kanr)を付与する。形質転換体をLBプレート上で増殖するそれらの能力により同 定する。そしてアンピシリン/カナマイシン耐性コロニーを選択した。プラスミ ドDNAを単離し、そして制限酵素分析により確認した。所望の構築物を含むクロ ーンを、Amp(100μg/ml)とKan(25μg/ml)との両方を補充したLB培地中の液 体培養で一晩(O/N)増殖させた。O/N培養物を用いて1:100〜1:250の比で大規模 培養物に接種する。細胞を、600の光学密度(O.D.600)が0.4と0.6との間になる まで増殖させた。次いで、IPTG(「イソプロピル-B-D-チオガラクトピラノシド 」)を加えて1mMの最終濃度にした。IPTGは、lacIリプレッサーを不活性化する ことにより、P/Oの解放(clear)を誘導して遺伝子発現の増加を導く。細胞をさ らに3〜4時間増殖させた。次いで、細胞を遠心分離により収集した。細胞ペレ ットをカオトロピック薬剤6MグアニジンHCl中で可溶化した。明澄化後、可溶 化CysEを、6-Hisタグを含有するタンパク質により強固に結合され得る条件下で 、ニッケル−キレートカラムにおけるクロマトグラフィーによりこの溶液から精 製した(Hochuli,E.ら、J.Chromatography 411: 177-184(1984))。CysEを6M グアニジンHCl(pH5.0)中でカラムから溶出し、そして再生の目的で、3Mグアニ ジンHCl、100mMリン酸ナトリウム、10mMグルタチオン(還元型)、および2mMグ ルタチオン(酸化型)に調整した。この溶液中での12時間のインキュベーション の後、タンパク質を10mMリン酸ナトリウムに対して透析した。 実施例2 バキュロウイルス発現系を用いるCysEのクローニングおよび発現 全長CysEタンパク質をコードするDNA配列(ATCC受託番号第97103号)を、この 遺伝子の5'配列および3'配列に対応するPCRオリゴヌクレオチドプライマーを 用いて増幅した: 番号5)を有し、そしてBamHI制限酵素部位(太字)と、それに続く真核生物細 胞における翻訳の開始に効率的なシグナル(Kozak,M.,J.Mol.Biol.,196:94 7-950(1987))、およびこのCysE遺伝子の18ヌクレオチド(翻訳の開始コドン「A TG」に下線を付する)を含有する。 号6)を有し、そして制限エンドヌクレアーゼBamHIの切断部位およびこのCysE 遺伝子の3'非翻訳配列に相補的なヌクレオチドを含む。増幅した配列を、市販 のキット(「Geneclean」 BIO 101 Inc.,La Jolla,Ca.)を用いて、1%アガ ロースゲルから単離した。次いで、このフラグメントをエンドヌクレアーゼBamH Iで消化し、次いで再び1%アガロースゲルで精製した。このフラグメントを、F 2と呼ぶ。 ベクターpA2(pVL941ベクターの改変体、下記)を、バキュロウイルス発現系 を用いるCysEタンパク質の発現のために用いる(総説について、Summers,M.D. およびSmith,G.E.1987,A manual of methods for baculovirus vectors and insect cell culture procedures,Texas Agricultural Experimental Station Bulletin No.1555を参照のこと)。この発現ベクターは、Autographa californ ica核多角体病ウイルス(AcMNPV)の強力なポリヘドリンプロモーター、それに 続く制限エンドヌクレアーゼBamHIの認識部位を含む。シミアンウイルス(SV)4 0のポリアデニル化部位を、効率的なポリアデニル化のために用いる。組換えウ イルスを容易に選択するために、E.coli由来のβ-ガラクトシダーゼ遺伝子をポ リヘドリンプロモーターと、それに続くポリヘドリン遺伝子のポリアデニル化シ グナルと同方向に挿入する。ポリヘドリン配列を、コトランスフェクトした野生 型ウイルスDNAの細胞媒介性相同組換えのためにウイルス配列に両端で隣接させ る。多くの他のバキュロウイルスベクターが、pA2の代わりに用いられ得る。例 えば、pRG1 pAc373、pVL941、およびpAcIM1である(Luckow,V.A.およびSummers ,M.D.、Virology,170:31-39)。 プラスミドを制限酵素BamHIで消化し、次いで当該分野で公知の手順により仔 ウシ腸ホスファターゼを用いて脱リン酸化した。次いで、DNAを、市販のキット( 「Geneclean」BIO 101 Inc.,La Jolla,Ca.)を用いて、1%アガロースゲルか ら単離した。このベクターDNAをV2と呼ぶ。 フラグメントF2および脱リン酸化したプラスミドV2を、T4DNAリガーゼを用い て連結した。次いで、E.coli HB101細胞を形質転換し、そして酵素BamHIを用い て、CysE遺伝子を有するプラスミド(pBacCysE)を含む細菌を同定した。クロー ン化フラグメントの配列を、DNA配列決定により確認した。 5μgのプラスミドpBacCysEを、リポフェクション法(Felgnerら Proc.Natl. Acad.Sci.USA,84:7413-7417(1987))を用いて、1.0μgの市販の線状化したバ キュロウイルス(「BaculoGoldTMbaculovirus DNA」,Pharmingen,San Diego,C A.)とともにコトランスフェクトした。 1μgのBaculoGoldTMウイルスDNAおよび5μgのプラスミドpBacCysEを、50μl の無血清Grace培地(Life Technologies Inc.,Gaithersburg,MD)を含むマイ クロタイタープレートの無菌ウェル中で混合した。その後、10μlのリポフェク チンおよび90μlのGrace培地を添加し、混合し、そして室温にて15分間インキュ ベートした。次いで、そのトランスフェクション混合物を、血清を含まないGrac e培地1mlを含有する35mm組織培養プレート内に播種されたSf9昆虫細胞(ATCC C RL 1711)に滴下して加えた。プレートを、新たに加えられた溶液を混合するた めに、前後に振動させた。次いでプレートを、27℃で5時間インキュベートした 。5時間後、トランスフェクション溶液をプレートから除去し、そして10%ウシ 胎児血清を補充した1mlのGrace昆虫培地を添加した。プレートをインキュベー ターに戻し、そして27℃で4日間培養を続けた。 4日後、上清を回収し、そしてSummersおよびSmith(前出)による記載と同様 にプラークアッセイを行った。改変法として、青く染色されたプラークの容易な 単離を可能にする、「Blue Gal」(Life Technologies Inc.,Gaithersburg)を 有するアガロースゲルを用いた。(「プラークアッセイ」の詳細な記述はまた、 Life Technologies Inc.、Gaithersburgが配布する昆虫細胞培養およびバキュロ ウイルス学の使用者ガイド(9〜10頁)においても見い出され得る)。 連続希釈の4日後、ウイルスを細胞に加え、青く染色されたプラークをエッペ ンドルフピペットのチップで拾った。次いで、組換えウイルスを含む寒天を、20 0μlのGrace培地を含むエッペンドルフチューブ中で再懸濁した。寒天を、短か い遠心分離により除去し、そして組換えバキュロウイルスを含む上清を、35mmデ ィッシュに播種されたSf9細胞に感染させるために用いた。4日後、これらの培 養ディッシュの上清を収集し、次いで4℃で保存した。 Sf9細胞を、10%熱不活化FBSを補充したGrace培地中で増殖させた。細胞を、 感染多重度(MOI)2で、組換えバキュロウイルスV-CysEで感染させた。6時間 後、培地を除去し、そしてメチオニンおよびシステインを除いたSF900 II培地( Life Technologies Inc.,Gaithersburg)に置き換えた。42時間後、5μCiの35 S-メチオニンおよび5μCiの35Sシステイン(Amersham)を添加した。細胞を さらに16時間インキュベートし、その後細胞を遠心分離により収集し、そして標 識されたタンパク質をSDS-PAGEおよびオートラジオグラフィーにより可視化した 。 実施例3 COS 細胞中での組換えCysEの発現 プラスミド、CysE HAの発現を、ベクターpcDNAI/Amp(Invitrogen)から誘導 する。ベクターpcDNAI/Ampは以下を含有する:1)SV40複製起点、2)アンピシ リン耐性遺伝子、3)E.coli複製起点、4)ポリリンカー領域、SV40イントロ ン、およびポリアデニル化部位が続くCMVプロモーター。CysE前駆体全体および その3'末端にインフレームで融合されたHAタグをコードするDNAフラグメントを 、ベクターのポリリンカー領域にクローン化した。それゆえ、組換えタンパク質 発現はCMVプロモーター下に支配される。HAタグは、先に記載された(I.Wilson 、H.Niman、R.Heighten、A Cherenson、M.Connolly、およびR.Lerner、1984 ,Cell 37,767)ようなインフルエンザ赤血球凝集素タンパク質由来のエピトー プ に対応する。本発明者らの標的タンパク質へのHAタグの融合により、HAエピトー プを認識する抗体を用いる組換えタンパク質の容易な検出が可能になる。 プラスミド構築ストラテジーを以下に記載する: CysEをコードするDNA配列(ATCC受託番号第97103号)を、以下の2つのプラ イマーを用いてクローン化された最初のESTにおけるPCRにより構築した:5'プ ライマー5' GCGCGGATCCACCATGGCGCGTTCG 3'(配列番号7)は、BamHI部位、そ れに続く開始コドンから始まるCysEコード配列の12ヌクレオチドを含む;3'配 列、5'GCGCTCTAGATCAAGCGTAGTCTGGGACGTCGTATGGGTACATCTGCACAAA 3'(配列番 号8)は、XbaI部位、翻訳停止コドン、HAタグ、およびCysEコード配列のヌクレ オチド(停止コドンは含まない)に相補的な配列を含む。それゆえ、PCR産物は 、BamHI部位、インフレームで融合したHAタグが続くCysEコード配列、HAタグに 隣接する翻訳終結停止コドン、およびXbaI部位を含む。PCR増幅DNAフラグメント およびベクター(pcDNAI/Amp)を、BamHIおよびXbaI制限酵素を用いて消化し、 そして連結した。連結混合物を、E.coli SURE株(Stratagene Cloning Systems ,11099 North Torrey Plnes Road,La Jolla,CA 92037より入手可能)に形質 転換し、形質転換培養物をアンピシリン培地プレートに播種し、そして耐性コロ ニーを選択した。プラスミドDNAを形質転換体から単離し、そして正しいフラグ メントの存在を制限酵素分析で調べた。組換えCysEの発現のために、COS細胞をD EAE-DEXTRAN法(J.Sambrook、E.Fritsch、T.Maniatis,Molecular Cloning: A Laboratory Manual,Cold Spring Laboratory Press,(1989))により発現ベ クターでトランスフェクトした。CysE HAタンパク質の発現を、放射性標識およ び免疫沈降法により検出した(E.Harlow,D.Lane,Antibodies: A Laboratory Manual,Cold Spring Harbor Laboratory Press,(1988))。細胞を、トランス フエクションの2日後、35S-システインで8時間標識した。次いで培養培地を回 収し、そして細胞を界面活性剤(RIPA緩衝液(150mM NaCl、1% NP-40、0.1%SD S、1% NP-40、0.5% DOC、50mM Tris(pH7.5))で溶解した(Wilson,I.ら、同 上37:767(1984))。細胞溶解物および培養培地の両方を、HA特異的モノクローナ ル抗体を用いて沈降させた。沈降したタンパク質を15% SDS-PAGEゲルにおいて 分析した。DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION                             Human cystatin E   The present invention relates to newly identified polynucleotides, such polynucleotides Polypeptides, such polynucleotides and polypeptides For the use of tides and the production of such polynucleotides and polypeptides Related. More specifically, the polypeptide of the present invention is putative as human cystatin E. And is sometimes referred to herein as "CysE". The present invention Also relates to inhibiting the action of such polypeptides.   The cystatin superfamily is a cysteine proteinase inhibitor Which are widely distributed in human tissues and fluids, and The rigid and reversible complex is converted to cysteines such as cathepsins B, H, L and S. Form with proteinase. Cystatin is involved in these proteinases. It is most likely involved in the regulation of normal or pathological processes. Obedience Therefore, cystatin affects the intracellular and extracellular catabolism of proteins and peptides. (Barret, A.J. and Kirchke, H.,Methods Enzymol., 80: 535-56 1 (1981)), prohormone (Orlowski, M.,Mol . Cell. Biochem., 52: 49-74 (198 3)) and proenzymes (Taugner, R. et al., Histochemistry, 83: 103-108 (1985)). It can regulate proteolytic processing and can be used in malignant cells (Sloane, BF,Semin . C ancer Biol. , 1: 137-152 (1990)) or microorganisms (Bjorck, L. et al.,Nature, 337: 38 5-386 (1989) and Bjorck, L. et al.J . Virol., 64: 941-943 (1990)) Can protect against vesicle invasion, and can be used to Seth (Mort, J.S. et al.Arthritis Rheum.27: 509-515 (1984)) and purulent qi. Bronchiectasis (Buttle, DJ, et al.,Scand . J. Clin. Lab. Invest., 50: 509-516 (1990 )) Can be adjusted.   The cystatin superfamily includes families I, II, and III (each And the Stefin family, the Cystatin family, and the Kininogen family (Also called Lee), each with members of the other family It has different members in its structural organization and biological distribution (Barret, A.J. Et al.,Biochem . J.236: 312 (1986)). Family I cystatins A and B are simply It consists of a polypeptide chain of about 100 amino acid residues and has no disulfide bridge. No. Family II cystatins consist of a polypeptide chain of about 120 amino acid residues. And has two intrachain disulfide bonds. Finally, Family III cystatins Kininogen is due to the presence of three family II cystatin-like domains. Exhibit a high degree of structural complexity, as characterized by Each domain is 2 With two disulfide bridges at positions homologous to Family II cystatins (Mull er-Esterl, W. et al.Transbiochem . Sci., 11: 336-339 (1986)). Family I And II cystatins are mainly present intracellularly and in secretions (Abrahamson, M .; J. et al. Biol. Chem., 261: 11282-11289 (1986)), whereas kininogen is Highly concentrated in blood plasma (Adam, A. et al.,Clin . Chem., 31: 423-426 ( 1985)).   At least one type II cystatin, designated cystatin C, It appears to be expressed in all tissues (Abrahamson, M. et al.Biochem . J., 2 68: 287-294 (1990)). In contrast, S-type cystatins dominantly appear in saliva. (Abrahamson, M. et al., J. Biol. Chem., 261: 11282-11289 (1986)). Shi Statins and derived peptides have antibacterial and antiviral activity (Bjor ck et al. (1989, 1990)), which wet the surface of epithelia where they were directly exposed to the environment. Is consistent with its presence in secretions. Cystatin also modulates the immune response. You can save. This inhibits the release of cystatin protease by macrophages By doing (Bieth, J.,Cysteine Proteinases and Their Inhibitors , V. Turk, ed. (Walter De Gruyter & Company, New York) 693-703 (1986)) Possible indirect or chemotactic response and phagocytosis of cells By inhibiting the respiratory burst of (Leung-Tack et al.,Biol . Chem . , 371: 255-258 (1990)), which can occur indirectly. This data is based on Type II system It suggests that tin may perform various protective functions on epithelial surfaces. Human type II The statin gene family consists of at least seven members.   Hereditary cystatin C amyloid vasculopathy (HCCAA) disease Related to the Glu → Leu mutation in the gene to be loaded. This is the cerebral artery It leads to the deposition of amyloid fibrils consisting of mutant cystatin C. This can cause fatal bleeding (Ghiso, J. et al.PNAS , USA,83: 2974-2978 (1986)).   The polypeptides of the present invention result from amino acid sequence homology with cystatin C. Presumably identified as CysE. This identification is a consequence of amino acid sequence homology. It was made as.   According to one aspect of the invention, novel mature polypeptides, as well as their production Fragments, analogs and derivatives that are physically active and useful for diagnosis or therapy A conductor is provided. The polypeptides of the present invention are of human origin.   According to another aspect of the present invention, an isolated nucleus encoding a polypeptide of the present invention. An acid molecule is provided, the nucleic acid molecule comprising mRNA, DNA, cDNA, genomic DNA, and DNA. Nalogs and their flags that are biologically active and useful for diagnosis or treatment Including statements.   According to yet a further aspect of the invention, a human encoding a polypeptide of the invention Recombinant prokaryotic and / or eukaryotic host cell containing the nucleic acid sequence Conditions that promote expression of the protein and subsequent recovery of the protein Below, such polypeptides are produced by recombinant techniques, including the step of culturing. A process is provided for producing.   According to a still further aspect of the invention, such a polypeptide, or such a polypeptide. Polynucleotides encoding such polypeptides may be used for therapeutic purposes, e. To inhibit psin, as well as osteoporosis, tumor metastasis, viral replication, inflammation To prevent bronchiectasis of suppuration, to protect the retina, to prevent leukoencephalopathy To reduce caries, treat allergic reactions, For treating wasting and for preventing amyloidosis, and for antimicrobial A process for utilizing as an agent is provided.   According to yet a further aspect of the invention, a nucleic acid encoding a polypeptide of the invention Nucleic acid probes containing nucleic acid molecules of sufficient length to specifically hybridize to a sequence Is also provided.   According to yet a further aspect of the invention, antibodies against such polypeptides are Provided.   According to yet another aspect of the invention, a nucleic acid sequence encoding a polypeptide of the invention For detecting diseases or susceptibility to diseases associated with mutations in An assay is provided.   According to a still further aspect of the invention, such a polypeptide, or such a polypeptide. Polynucleotides encoding such polypeptides can be used in scientific studies, such as DNA For in vitro purposes related to DNA synthesis and DNA vector production Process is provided.   These and other aspects of the invention will be apparent to those skilled in the art from the teachings herein. Should be.   The following drawings are illustrative of embodiments of the present invention and are encompassed by the claims. It is not meant to limit the scope of the invention.   FIG. 1 shows the cDNA sequence of the polypeptide of the invention and the corresponding deduced amino acid sequence Is shown. Use the standard one-letter abbreviations for amino acids. Sequencing, 373 automated DNA sequencing This was performed using a sensor (Applied Biosystems, Inc.).   FIG. 2 shows the relationship between the polypeptide of the invention (top row) and human cystatin C (bottom row). Shows amino acid sequence homology.   According to one aspect of the invention, it has the deduced amino acid sequence of FIG. 1 (SEQ ID NO: 2). Matured polypeptide, and was deposited on March 20, 1995 as ATCC Accession No. 97103. Isolation encoding the mature polypeptide encoded by the cDNA of the deposited clone Provided nucleic acid (polynucleotide).   The polynucleotide of the present invention can be used in a cDNA library derived from primary cultured amniotic cells. And was discovered. It is structurally related to the cystatin II superfamily. This is because 148 amino acid residues (of which approximately the first 28 amino acid residues Protein, so the mature protein contains 120 amino acids) Includes an open reading frame encoding This protein is It shows the highest degree of homology to statin C, spanning a stretch of 147 amino acids. 33.566% identity and 53.846% similarity.   The polynucleotide of the present invention may be in the form of RNA or DNA (this DNA is cDNA, DNA, and synthetic DNA). DNA is double-stranded or single-stranded Possible and, if single-stranded, the coding strand or the non-coding (antisense) strand Can be The coding sequence encoding the mature polypeptide is shown in FIG. 1 (SEQ ID NO: 1) May be identical to the coding sequence shown in Alternatively, as a result of the duplication or degeneracy of the genetic code, the coding sequence A different polypeptide encoding the same mature polypeptide as the DNA of SEQ ID NO: 1) or the deposited cDNA. Coding sequence.   Encoded by the mature polypeptide of FIG. 1 (SEQ ID NO: 2) or the deposited cDNA The polynucleotides encoding the mature polypeptides can include but are not limited to: Not limited to: coding sequence for mature polypeptide only; coding sequence for mature polypeptide Sequence and leader sequence or secretory sequence or proprotein sequence Additional coding sequence; coding sequence for mature polypeptide (and additional Coding sequence) as well as non-coding sequences (eg, introns or mature poly 5 'and / or 3' non-coding sequences of the peptide coding sequence).   Thus, the term "polynucleotide encoding a polypeptide" refers to a polypeptide. A polynucleotide containing only the coding sequence of the And / or polynucleotides containing non-coding sequences.   The present invention further relates to a polypeptide having the deduced amino acid sequence of FIG. 1 (SEQ ID NO: 2). Fragment of the polypeptide encoded by the cDNA of the clone or deposited clone Of the polynucleotides herein, which encode the analogs, analogs, and derivatives Related to variants. A variant of a polynucleotide is a naturally occurring version of the polynucleotide. Allelic variants or non-naturally occurring variants of the polynucleotide obtain.   Thus, the present invention provides the same mature polypeptide as shown in FIG. 1 (SEQ ID NO: 2), Or the same mature polypeptide encoded by the cDNA of the deposited clone , And variants of such polynucleotides including. This variant may be the polypeptide of FIG. 1 (SEQ ID NO: 2) or the deposited clone. Fragments, derivatives or analogs of the polypeptide encoded by the Code the log. Such nucleotide variants include deletion variants, substitution variants , And additional or insertion variants.   As shown herein above, the polynucleotide is shown in FIG. 1 (SEQ ID NO: 1). Naturally occurring alleles of the coding sequence shown or of the deposited clone It may have a coding sequence that is a child variant. As is known in the art, allelic modification A variant is a polynucleotide which may have one or more nucleotide substitutions, deletions or additions. Another form of the otide sequence, which substantially modifies the function of the encoded polypeptide. Do not change to   The invention also provides that the coding sequence for the mature polypeptide is a polypeptide from a host cell. Polynucleotide sequences that assist in the expression and secretion of the polynucleotide (eg, polynucleotides from cells). Leader sequence that functions as a secretory sequence to control peptide trafficking) Polynucleotides that can be fused to the reading frame of leader The polypeptide having the sequence is a proprotein and the polypeptide Has a leader sequence cleaved by the host cell to form the mature form of the I can do it. A polynucleotide may also encode a proprotein, which is a mature protein. It has an additional 5 'amino acid residue in the protein. Mature proteins with prosequences , Proproteins, and inactive forms of proteins. Once professional distribution When the row is cut, the active mature protein remains.   Thus, for example, a polynucleotide of the invention may comprise a mature protein, Of a protein having a sequence, or of a prosequence and a presequence (leader sequence) It may encode a protein that has both.   The polynucleotide of the present invention also allows for purification of the polypeptide of the present invention. It may have the coding sequence fused in frame to the marker sequence. Marker sequence Provides for purification of the mature polypeptide fused to a marker in the case of a bacterial host The hexahistidine tag supplied by the pQE-9 vector. is there Alternatively, for example, a marker sequence is used in a mammalian host (eg, COS-7 cells). If so, it may be a hemagglutinin (HA) tag. HA tag for influenza red blood Corresponding to an epitope derived from the hemagglutinin protein (Wilson, I. et al., Cell, 37 : 767 (1984)).   The term “gene” is a segment of DNA involved in producing a polypeptide chain. Means before and after the coding region (leader and trailer). iler)) as well as intervening sequences between individual coding segments (exons) ( Intron).   Fragments of the full-length CysE gene are used to isolate the full-length CysE gene and Other inheritances with high sequence similarity or similar biological activity to the sE gene For isolation of offspring, use as a hybridization probe in a cDNA library. Can be used. This type of probe preferably has at least 30 bases. And may have, for example, 50 bases or more. Probes also bind to full-length transcripts. Corresponding cDNA and genomic clones or regulatory regions and promoters A clone containing the complete CysE gene, including regions, exons, and introns Can be used to identify Screening example uses a known DNA sequence By synthesizing an oligonucleotide probe, the coding region of the CysE gene can be Isolating the region. Labeled DNA having a sequence complementary to the sequence of the gene of the present invention Oligonucleotides can be used as libraries of human cDNA, genomic DNA, or mRNA. Screen to determine which members of the library Used to determine whether   The invention further provides that at least 70%, preferably at least 90%, and If more than 95% identity is present, the sequence may be hybridized to a sequence as described herein. It relates to a polynucleotide to be rediscovered. The present invention particularly relates to Polynucleotides that hybridize to nucleotides under stringent conditions About As used herein, the term "stringent conditions" Hybridization is at least 95% between sequences, and preferably at least Meaning occurs only when 97% identity is present. In a preferred embodiment A polynucleotide that hybridizes to the polynucleotide described above in the present specification. The tide was determined by the cDNA of FIG. 1 (SEQ ID NO: 1) or the deposited cDNA (s). Has substantially the same biological function or activity as the encoded mature polypeptide. Encodes a polypeptide that retains the same.   Alternatively, the polynucleotide is hybridized to a polynucleotide of the invention. And has identity thereto, and has activity as described hereinabove. At least 20 bases, preferably 30 bases, which may or may not be retained, And more preferably it may have at least 50 bases. For example such polynuks Reotide is used as a probe for the polynucleotide of SEQ ID NO: 1 (eg, A probe for recovery of this polynucleotide, or a diagnostic probe) or Can be used as a PCR primer.   Accordingly, the present invention relates to a polynucleotide encoding the polypeptide of SEQ ID NO: 2. At least 70%, preferably at least 90%, and more preferably Or a polynucleotide having 95% identity and fragments thereof (this fragment). A fragment has at least 30 bases and preferably at least 50 bases) And polypeptides encoded by such polynucleotides .   Deposit (s) referred to herein are deposits of microorganisms for patent purposes Maintained under the Budapest Treaty on the International Recognition of These deposits are It is provided only as a convenience to the merchant, and under 35 U.S.C. 112 It does not acknowledge that a deposit is required. Polynucleotides in the deposit The sequence of the tide, as well as the amino acid sequence of the polypeptide encoded thereby, It is incorporated herein by reference, and includes any description of sequences herein. We manage in the event of such a conflict. Manufacture, use, or sell the deposit May require a license, and such a license is hereby granted. Is not given.   The present invention further has the deduced amino acid sequence of FIG. 1 (SEQ ID NO: 2), or A CysE polypeptide having an amino acid sequence encoded by the deposited cDNA, And fragments, analogs and derivatives of such polypeptides.   The terms "fragment", "derivative", and "analog" are shown in FIG. When referring to the polypeptide of 2) or the polypeptide encoded by the deposited cDNA A polypeptide that retains substantially the same biological function or activity as such a polypeptide. Means a repeptide. Thus, the analog produces an active mature polypeptide. Proprotein that can be activated by cleavage of the proprotein portion to No.   The polypeptide of the present invention can be a recombinant polypeptide, a natural polypeptide or a synthetic polypeptide. It can be a synthetic polypeptide, preferably a recombinant polypeptide.   The polypeptide encoded by the polypeptide of FIG. 1 (SEQ ID NO: 2) or the deposited cDNA A fragment, derivative, or analog of a polypeptide may comprise (i) one or more amino acids The acid residue is a conserved amino acid residue or a non-conserved amino acid residue (preferably a conserved amino acid residue). Residue), and such substituted amino acid residues are included in the genetic code. It may or may not be an amino acid residue that can be encoded more. Or (ii) one or more amino acid residues contain a substituent, or (i. ii) the mature polypeptide is a compound that increases the half-life of the polypeptide (eg, Fused with another compound such as polyethylene glycol), or (iv) the additional amino acid is a leader or secretory sequence, or a mature polypeptide; Mature proteins, such as those used for purification of peptide or proprotein sequences It may be fused to a polypeptide. Such fragments, derivatives And analogs are considered to be within the purview of those skilled in the art from the teachings herein. .   The polypeptides and polynucleotides of the present invention are preferably in isolated form And is preferably purified to homogeneity.   The term "isolated" refers to a substance that is in its natural environment (e.g., when it occurs in nature). Means taken out of the natural environment). For example, surviving animals The naturally occurring polynucleotide or polypeptide present in the But not separated from some or all of the coexisting materials in the natural system The same polynucleotide or polypeptide has been isolated. like this The polynucleotide may be part of a vector and / or such a polynucleotide Nucleotides or polypeptides can be part of the composition and such vectors State that the substance or composition is not part of its natural environment, State.   The polypeptide of the present invention is a polypeptide of SEQ ID NO: 2 (particularly a mature polypeptide). ) And at least 70% similarity (preferably at least 70% identity) Has to the polypeptide of SEQ ID NO: 2, and more preferably at least 90% Similarity (more preferably at least 90% identity) to the polypeptide of SEQ ID NO: 2 And even more preferably at least 95% similarity (even more Preferably at least 95% identity) to the polypeptide of SEQ ID NO: 2. And also generally has at least 30% amino acids and More preferably, it has a portion of such a polypeptide comprising at least 50 amino acids. And a portion of such a polypeptide.   As is known to those skilled in the art, the "similarity" between two polypeptides is one polypeptide. Amino acid sequence of a peptide and its conserved amino acid substitutions in a second polypeptide Is determined by comparison with the sequence of   Fragments or portions of the polypeptides of the present invention can be accommodated by peptide synthesis Can be used to produce a full-length polypeptide. Therefore, this fragment Can be used as an intermediate to produce a full-length polypeptide. The present invention A fragment or portion of a polynucleotide may comprise a full-length polynucleotide of the invention. Can be used to synthesize.   The present invention also provides a vector comprising the polynucleotide of the present invention, a vector of the present invention. Cells genetically engineered with E. coli and polypep of the invention by recombinant technology It relates to the production of pide.   A host cell is a vector of the present invention (for example, a cloning vector or Can be genetically engineered (transduced or otherwise) using an expression vector. Or transformed or transfected). Vectors, for example , Plasmids, virus particles, phages and the like. Manipulated host Cells may activate the promoter, select for transformants, or It can be cultured in a conventional nutrient medium suitably modified to amplify the gene. Culture conditions (eg, temperature, pH, etc.) are dependent upon the host cell chosen for expression. Conditions used, and will be apparent to those skilled in the art.   The polynucleotide of the present invention is used for producing a polypeptide by recombinant technology. Can be used. Thus, for example, a polynucleotide expresses a polypeptide May be included in any one of a variety of expression vectors. Vector like this Encompasses chromosomal, non-chromosomal, and synthetic DNA sequences. This Such vectors include, for example, derivatives of SV40; bacterial plasmids; phage DNA; Culovirus; yeast plasmid; combination of plasmid and phage DNA And viral DNAs (eg, vaccinia, adenovirus, chicken) Pox virus, and pseudorabies). However, is it replicable in the host, Any other vector can be used as long as it is viable.   The appropriate DNA sequence can be inserted into the vector by various procedures. Generally, DNA distribution The row is inserted into the appropriate restriction endonuclease site by procedures known in the art. It is. Such and other procedures are deemed to be within the purview of those skilled in the art.   The DNA sequence in the expression vector may contain appropriate expression control sequences (protocol) that direct the synthesis of mRNA. Motor). Representative examples of such promoters May include: the LTR or SV40 promoter,E.coli lacOrt rp , Λ phage PLPromoters and prokaryotic or eukaryotic cells or Are other promoters known to control gene expression in those viruses. Data. Expression vectors also provide a ribosome binding site for translation initiation and transcription. Contains a terminator. Vectors may also contain appropriate sequences for amplifying expression. May be contained.   Furthermore, the expression vector is preferably for selection of transformed host cells. Phenotypic characteristics (eg, for eukaryotic cell cultures, dihydrofolate reductase or Or neomycin resistance, or for exampleE.coliTetracycline resistance in Or one or more selectable marker genes that provide for ampicillin resistance.   A suitable DNA sequence as described herein above, as well as a suitable promoter sequence or The vector containing the control sequences is used to transform the Can be used to express   Representative examples of suitable hosts may include: bacterial cells (eg,E.coli ,Streptomyces,Salmonella typhimuriumA fungal cell (eg, yeast); Insect cells (eg,Drosophila S2andSpodoptera Sf9); Animal cells (eg, CHO, COS or Bowes melanoma); adenovirus; plant cells and the like. Suitable host The selection of is considered to be within the purview of those skilled in the art from the teachings herein.   More particularly, the present invention also includes one or more of the sequences broadly described above. Includes recombinant constructs. The construct may be a vector (eg, a plasmid vector or Or a viral vector), in which the sequence of the present invention is contained in the forward direction. Or they are inserted in the opposite direction. In a preferred aspect of this embodiment, the construct Further comprises a regulatory sequence operably linked to the sequence (eg, including a promoter). To). Numerous suitable vectors and promoters are available to those of skill in the art. Knowledgeable and commercially available. The following vectors are provided as examples. Bacteria Gender: pQE70, pQE60, pQE-9 (Qiagen), pBS, pD10, phagescript, psiX174, pblues cript SK, pbsks, pNH8A, pNH16a, pNH18A, pNH46A (Stratagene); ptrc99a, pKK 223-3, pKK233-3, pDR540, pRIT5 (Pharmacia). Eukaryotic: pWLNEO, pSV2CAT, pOG4 4, pXT1, pSG (Stratagene) pSVK3, pBPV, pMSG, pSVL (Pharmacia). But other Any plasmids or vectors that are capable of replicating in the host and exist It can be used as long as it can be continued.   The promoter region is CAT (chloramphenicol transferase) vector Using any vector that has a desired marker or other Can be selected from Two suitable vectors are PKK232-8 and pCM7. Especially Well known bacterial promoters include lacI, lacZ, T3, T7, gpt. λPR, PLAnd And trp. Eukaryotic promoters include CMV immediate, HSV thymidine kinase , Early and late SV40, LTR from retrovirus, and mouse metalloti Includes Onein I. Selection of appropriate vectors and promoters is Within the level of the trader.   In a further embodiment, the present invention relates to a host cell containing the above-described construct. Host cells can be higher eukaryotic cells (eg, mammalian cells) or lower eukaryotic cells. Or a host cell can be a prokaryotic cell (eg, a yeast cell). Bacterial cell). The introduction of the construct into the host Transfection, DEAE-dextran mediated transfection, or Can be achieved by Lectroporation (Davis, L., Dibner, M., Battey, I., B asic Methods in Molecular Biology, (1986)).   Encoded by a recombinant sequence in a conventional manner using the construct in a host cell Gene products can be produced. Alternatively, the polypeptide of the invention may be a conventional peptide It can be produced synthetically by a synthesizer.   Mature proteins are suitable for use in mammalian cells, yeast, bacteria, or other cells. And can be expressed under the control of a promoter. The cell-free translation system is also a DNA construct of the present invention. Can be used to produce such proteins using RNA from You. Suitable cloning vectors for use in prokaryotic and eukaryotic hosts And expression vectors are described in Sambrook et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual. , Second Edition, Cold Spring Harbor, N.Y., (1989) (the disclosure of which is incorporated herein by reference). Which is incorporated by reference).   Transcription of a DNA encoding a polypeptide of the present invention by higher eukaryotes may be a vector It is increased by inserting an enhancer sequence into the gene. Enhancers are DNA Cis-acting element, usually about 10 to about 300 bp, To increase its transcription. For example, on the late side of bp 100-270 of the replication origin SV40 enhancer, cytomegalovirus early promoter enhancer, Polyoma enhancer and adenovirus enhancer on the late stage of origin Is mentioned.   Generally, a recombinant expression vector contains an origin of replication and And a selectable marker (eg,E.coliAmpicillin resistance gene andS.cerevisi ae TRP1 gene) and highly expressed genes that direct transcription of downstream structural sequences Contains a promoter. Such promoters are, among others, glycolytic enzymes (eg, For example, 3-phosphoglycerate kinase (PGK)), α-factor, acid phosphatase, Or from an operon encoding a heat shock protein or the like. Heterogeneous structure The columns are the translation initiation and termination sequences and, preferably, the translated protein With a leader sequence capable of directing secretion into the periplasmic space or extracellular medium Assembled in phase. If desired, the heterologous sequence may have desired characteristics (eg, expressed N-terminal identification peptide that provides for the stabilization or simplified purification of a modified recombinant product) May be encoded.   Expression vectors useful for bacterial use include functional promoters and operable readouts. In the interrogation phase, the desired protein with the appropriate translation initiation and termination signals It is constructed by inserting a structural DNA sequence encoding a protein. The vector is Ensure the maintenance of one or more phenotypic selectable markers, and vectors, and Contain an origin of replication to provide for amplification in the host. Transformation Prokaryotic hosts suitable forE.coli,Bacillus subtilis,Salmonella typhimur ium And species within the genera Pseudomonas, Streptomyces, and Staphylococcus Although encompassing various species, other species can also be used as selections.   As a representative, but non-limiting example, an expression vector useful for bacterial use is Commercially available containing the genetic elements of the well-known cloning vector pBR322 (ATCC 37017) And a bacterial origin of replication. This Commercially available vectors such as, for example, pKK223-3 (Pharmacia Fine Chemicals, Upp. sala, Sweden) and GEM1 (Promega Biotec, Madison, WI, USA). these The pBR322 "backbone" portion of the plasmid contains a suitable promoter and the structural sequence to be expressed. Be combined.   Following transformation of the appropriate host strain and propagation of the host strain to an appropriate cell density, The selected promoter is a suitable means (eg, temperature shift or chemical induction) And the cells are cultured for an additional period.   Cells are typically harvested by centrifugation and applied by physical or chemical means. More disrupted and the resulting crude extract is retained for further purification.   Microbial cells used in protein expression include freeze-thaw cycles, supersonic By any convenient method, including sonication, mechanical disruption, or use of cell lysing agents. Can be crushed. Such methods are well-known to those skilled in the art.   Various mammalian cell culture systems have also been used to express recombinant proteins. Can be Examples of mammalian expression systems are described in Gluzman, Cell, 23: 175 (1981). COS-7 strain of monkey kidney fibroblasts, and other capable of expressing compatible vectors Cell lines (eg, C127, 3T3, CHO, HeLa, and BHK cell lines) are included. Feeding Animal expression vectors contain an origin of replication, an appropriate promoter and enhancer, Ribosome binding site, polyadenylation site, splice donor Site and splice acceptor site, transcription termination sequence, and 5 'frankin It also contains non-transcribed sequences. A DNA sequence derived from the SV40 splice site, and Polyadenylation sites are used to provide the necessary non-transcribed genetic elements. Can be   The polypeptides of the present invention can be recovered from recombinant cell culture by a method comprising: And may be purified: ammonium sulfate or ethanol precipitation, acid extraction, anions and Or cation exchange chromatography, phosphocellulose chromatography, Hydrophobic interaction chromatography, affinity chromatography, hide Roxyl apatite chromatography and lectin chromatography. If necessary, the protein refolding step can Can be used to complete quality placement. Finally, high-performance liquid chromatography (HPLC) can be used for the final purification step.   The polypeptides of the present invention may be natural purified products or products of chemical synthetic procedures. Or a prokaryotic or eukaryotic host (eg, in culture) Bacterial, yeast, higher plants, insects, and mammalian cells) Can be done. Depending on the host used in the recombinant production procedure, the polypeptide of the invention May be glycosylated or may be non-glycosylated. Departure The light polypeptide may also include the first methionine amino acid residue.   The CysE polypeptides of the present invention comprise a human cathepsin enzyme, and consequently Can be used to inhibit pathologies associated with the action of cathepsins. For example, Cy sE includes osteoporosis, Behcet's disease, hypercalcemia, osteomalacia, -To treat allergic skin diseases, allergic rhinitis, and allergic purpura Can be used.   Cathepsins play an important role in tumor metastasis, and therefore, CysE It is also conceivable that it could be used to prevent metastasis.   CysE polypeptides stop the growth of certain bacterial agents (eg, streptococci). And reducing caries by reducing the production of caries-contributing acids. Can be used as an antimicrobial agent.   CysE polypeptides are also useful for treating infections caused by viruses. (For example, to prevent the replication of herpes simplex virus (HSV)) It can be used as a loose agent. CysE polypeptides also bind cysteine protein to the retina. It can be used to protect against attack by inase.   CysE polypeptides of the invention also interfere with the action of cysteine proteinases And can be used to treat cachexia and muscle wasting.   CysE polypeptides also modulate inflammation (eg, associated with rheumatoid arthritis). It can be used to transform and to treat septic shock. CysE poly Peptides can also be used to treat purulent bronchiectasis.   The polynucleotides and polypeptides of the present invention are useful for treating and treating human diseases. And can be used as test drugs and test substances for the discovery of diagnostics.   The present invention provides a method for identifying a receptor for a cystatin E polypeptide. I do. The gene encoding the receptor can be prepared by a number of methods known to those skilled in the art, for example, , Ligand panning and FACS sorting (Coligan et al., Current Protocols in  Immun., 1 (2), Chapter 5, (1991)). Preferably, expression Cloning is performed here by converting the polyadenylated RNA to a cystatin E polypeptide. CDNA library used when preparing from responding cells and made from this RNA. Libraries were split into pools and COS cells or cystatin E polypeptides. It is used to transfect other cells that do not respond to the cells. Slide gadget Transfected cells cultured on ras were labeled with cystatin E Exposure to the polypeptide. Cystatin E polypeptide can be iodinated or site-specific Can be labeled by a variety of means, including inclusion of a recognition site for the specific protein kinase. Solid After stabilization and incubation, slides are subjected to autoradiographic analysis You. Identify positive pools and prepare subpools and repeat subpools Re-transfected using a purification and rescreening process, A single clone is generated which encodes the putative receptor. For receptor identification Another approach is to use a labeled ligand, such as a cell membrane or receptor molecule. Can be bound photoaffinity with an extract preparation that expresses Crosslinked material by PAGE Decompose and expose to X-ray film. Disconnect the labeled complex containing the ligand receptor And digested into peptide fragments and submitted for protein microsequencing. obtain. Using amino acid sequences obtained from microsequencing, degenerate oligonucleotides can be used. Paired probe pairs are designed, cDNA libraries are screened and putative Identify the gene encoding the puter.   The present invention has identified compounds that bind to the cystatin E receptor, and Compounds to elicit a second messenger response Provide a way. As an example, mammalian cells expressing cystatin E receptor Alternatively, incubate the membrane preparation in the presence of the compound to be screened . Following the interaction of this compound with the receptor, a known second messenger system Response was measured and a second messenger induced by cystatin E Is compared to the response of the Such a second messenger system includes cAMP guanidine. Includes luate cyclase, ion channel, or phosphoinositide hydrolysis But not limited to these.   The polypeptide and the agonist compound of the present invention may be a cysteine proteinase. It can be assayed for its ability to inhibit activity. This assay is compatible with papain and Equilibrium constant (K) for dissociation of cystatin E complex with human and cathepsin B1), 100M Continuous using 10 μM Z-Phe-Arg-NHMec as substrate in sodium phosphate buffer (Nicklin, M.J.H. and Barrett, A.J., Biochem. J., 223: 245-253 (1984)). This buffer is 1 mM dithiolate And 2 mM EDTA, and pH 6.5 for papain assay. PH is adjusted to 6.0 for cathepsin B assay. Cathepsin B before use For 20 minutes at room temperature in assay buffer. Assay The enzyme concentration is between 0.05 and 0.25 nM. Cystati tested in cathepsin B assay The highest concentration of protein E is 100 nM. Provide beneficial inhibition (ie, inhibitors A new steady state is obtained within one hour after the addition of). 20-50 nM in the assay. Substrate hydrolysis at 37 ° C is performed by Parkin-Elmer C In the etus LS50 fluorometer, the excitation and emission wavelengths were 360 and 46, respectively. Monitored at 0 nm. K of hydrolysis of Z-Phe-Arg-NHMec under assaym The value is the apparent K obtained for the substrate-induced inhibitor dissociation.i The value is used to correct by the following relationship: Apparent Ki= Ki(1 + [S] / Km).   The polypeptides and agonist compounds of the invention can be combined with a suitable pharmaceutical carrier. It can be used in combination. Such compositions comprise a therapeutically effective amount of the polypeptide or Or an agonist, and a pharmaceutically acceptable carrier or excipient. this Such carriers include saline, buffered saline, dextrose, water , Glycerol, ethanol, and combinations thereof. La It is not limited to. The formulation should suit the mode of administration.   The present invention also relates to a pharmaceutical composition of the invention filled with one or more components. Or a pharmaceutical pack or kit comprising one or more containers. Such a container Manufacture, use, or sale of a drug or biological product with respect to (one or more) Product labeling in the form prescribed by the governmental entity controlling the sale, Indicates an institutional approval for manufacture, use, or sale for human administration You. Further, the polypeptides or agonists of the present invention may be used in combination with other therapeutic compounds. Can be used.   Pharmaceutical compositions include, for example, oral, topical, intravenous, intraperitoneal, intramuscular, subcutaneous, nasal It may be administered in a convenient manner by the intracavitary or intradermal route. Pharmaceutical compositions are identified Is administered in an amount effective to treat and / or prevent the symptoms of In general, they Doses of at least about 10 μg / kg body weight, and in many cases, It is administered in an amount not exceeding 8 mg / kg body weight. In most cases, the dosage is about 10 μg / day The dose ranges from about 1 mg / kg to about 1 mg / kg body weight, taking into account the administration route, symptoms and the like.   CysE polypeptides and agonist compounds that are polypeptides are described in accordance with the present invention. Thus, it can be used by expressing such polypeptides in vivo. this is Often referred to as "gene therapy".   Thus, for example, a cell from a patient can be a polynucleotide encoding a polypeptide. Can be engineered ex vivo with tide (DNA or RNA) and then engineered cells Is provided to the patient to be treated with this polypeptide. Such a method is It is well known in the art and is apparent from the teachings herein. For example, cells A retroviral plasmid containing an RNA encoding a polypeptide of the invention It can be manipulated by the use of vectors.   Similarly, cells can be used, for example, to express the polypeptide for in vivo expression of the polypeptide. It can be manipulated in vivo by known procedures in the field. For example, packaging cells A retroviral plasmid containing an RNA encoding a polypeptide of the invention Transfected with the vector, so that the packaging cells are the target here Produce infectious virus particles containing These producer cells To manipulate cells in vivo, and to express polypeptides in vivo. Me May be administered to the patient. The polypeptide of the present invention is administered by such a method. These and other methods for making clear from the teachings of the present invention will be apparent to those skilled in the art. It is.   The retrovirus from which the retroviral plasmid vector described above can be derived Lus includes Moloney mouse leukemia virus, spleen necrosis virus, Rous sarcoma Virus-like retrovirus, Harvey sarcoma virus, chicken leukemia Rus, gibbon leukemia virus, human immunodeficiency virus, adenovirus, Myeloproliferative sarcoma virus, and mammalian tumor viruses, It is not limited to. In one embodiment, a retroviral plasmid vector Is derived from Moloney murine leukemia virus.   Vectors include one or more promoters. Suitable promoters that can be used -Miller et al.,Biotechniques, Vol. 7, No. 9, 980-990 (1989) Retroviral LTR; SV40 promoter; and human cytomegalovirus (CM V) promoter, or any other promoter (eg, a eukaryotic cell promoter) (Including the histone, pol III, and β-actin promoters, )), But is not limited thereto. Other that could be used Adenovirus promoter, thymidine kinase Zea (TK) promoter, and B19 parvovirus promoter, It is not limited to these. The selection of an appropriate promoter will depend on the teachings contained herein. It will be apparent to those skilled in the art from the illustration.   The nucleic acid sequence encoding the polypeptide of the present invention may be under the control of a suitable promoter. It is in. Suitable promoters that can be used include adenovirus promoters -(Eg, adenovirus major late promoter); or heterologous promoter (Eg, cytomegalovirus (CMV) promoter); RS virus (RSV) pro Motor; inducible promoters (eg, MMT promoter, metallothionein Promoter); heat shock promoter; albumin promoter; ApoA I promoter; human globin promoter; viral thymidine kinase promoter (Eg, herpes simplex thymidine kinase promoter); retrovirus LTR (including the modified retroviral LTR described herein above); β-actin pro Motor: and, but not limited to, the human growth hormone promoter Not done. A promoter also controls the gene encoding the polypeptide. It can be a natural promoter.   The retroviral plasmid vector transduces the packaging cell line, Used to form producer cell lines. Can be transfected Examples of packaging cells include Miller,Human Gene Therapy, Volume 1, 5-14 PE501, PA3 as described on page (1990), which is hereby incorporated by reference in its entirety. 17, ψ-2, ψ-AM, PA12, T19-14X, VT-19-17-H2, ψCRE, ψCRIP, GP + E-86, GP- envAm12, and DAN cell lines, but are not limited thereto. Vector The packaging cells can be transduced by any means known in the art. This Means such as electroporation, the use of liposomes, and Ca POFourBut not limited to precipitation. As an alternative, retro The ils plasmid vector can be encapsulated in liposomes or And can then be administered to a host.   Producer cell lines contain a nucleic acid sequence (single or multiple) that encodes the polypeptide. Infectious retroviral vector particles are produced. Then, like this Retroviral vector particles can be eukaryotic, either in vitro or in vivo. It can be used to transduce a biological cell. The transduced eukaryotic cells are Express the nucleic acid sequence (s) encoding the polypeptide. Transduced Possible eukaryotic cells include embryonic stem cells, embryonic sarcoma cells and hematopoietic stem cells, Hepatocytes, fibroblasts, myoblasts, keratinocytes, endothelial cells, and bronchial epithelium Cells, including but not limited to cells.   Hereditary Cystatin C Amyloid Angiopathy Disease Causes Fatal Bleeding And Alzheimer's disease, Down's syndrome, Parkinson's disease, dimentia tia) and can lead to death before the age of 40.   Accordingly, the present invention relates to the use of the CysE gene as a diagnostic. CysE mutant Detection allows diagnosis of HCCAA-like diseases arising from mutations in the CysE gene .   Individuals with mutations in the human CysE gene can be Can be detected. Nucleic acids for diagnosis are derived from patient cells (blood, urine, saliva, tissue bio Psy, and autopsy material, including, but not limited to). Get Nom DNA can be used directly for detection or use PCR before analysis (Saiki et al., Nature, 324: 163-166 (1986)). RNA Alternatively, cDNA can also be used for the same purpose. As an example, code CysE PCR primers complementary to the nucleic acid used to identify and analyze CysE mutations Can be done. For example, deletions and insertions are amplified in comparison to the normal genotype. Can be detected by a change in the size of the resulting product. Point mutations are radiolabeled CysE  RNA or, alternatively, a radiolabeled CysE antisense DNA sequence Can be identified by hybridizing the isolated DNA. Perfectly matched array Can be distinguished from mismatched duplexes by differences in RNase A digestion or melting temperature .   Sequence differences between the control gene and the mutated gene can be determined by direct DNA sequencing. Can be revealed by In addition, cloned DNA segments are identified Can be used as a probe to detect a DNA segment. Sensitivity of the method Is greatly enhanced when combined with PCR. For example, sequencing primers Indicates the double-stranded PCR product or the single-stranded template produced by the modified PCR. Used with a salt molecule. Sequencing is performed using radiolabeled nucleotides. Performed by conventional procedures or automated sequencing procedures using fluorescent tags.   Genetic testing based on DNA sequence differences can be performed on gels with or without denaturing agents. Achieved by detecting changes in the electrophoretic mobility of DNA fragments in obtain. Small sequence deletions and insertions are visualized by high-resolution gel electrophoresis. obtain. DNA fragments of different sequences are separated on denaturing formamide gradient gels. Can be separated. Here the mobility of different DNA fragments in the gel depends on their specificity Is delayed in the gel at different positions according to the local or partial melting temperature (eg See, for example, Myers et al., Science, 230: 1242 (1985)).   Sequence changes at specific positions may also be attributed to nuclease protection assays (eg, RNas e-protection and S1 protection or chemical cleavage methods (eg, Cotton et al., PNAS, USA, 85: 439) 7-4401 (1985))).   Therefore, detection of a specific DNA sequence can be detected by hybridization, RNase protection, Cleavage, direct DNA sequencing, or the use of restriction enzymes (e.g., (RFLP) and achieved by methods such as Southern blotting of genomic DNA Can be done.   In addition to more conventional gel electrophoresis and DNA sequencing, mutations are also It can be detected by Chu analysis.   The sequences of the present invention are also valuable for chromosome identification. This sequence is Specifically target a specific location on a chromosome and hybridize to that location You. In addition, there is now a need to identify specific sites on the chromosome. Currently dyed Chromosome markers based on actual sequence data (repetitive polymorphisms) that can be used to label body positions There are few intellectualizing reagents. Mapping of the DNA of the present invention to the chromosome This is an important first step in correlating sequences with disease-related genes.   Briefly, the sequence consists of the PCR primers (preferably 15-25 bp) from the cDNA. It can be mapped to a chromosome by preparation. Computation of the 3 'untranslated region of the gene Data analysis does not span more than one exon in genomic DNA, and therefore amplification Used to quickly select primers that complicate the process. Then These primers are used for PCR screening of somatic cell hybrids containing individual human chromosomes. Used for leaning. Hybrid containing human gene corresponding to primer Only yield amplified fragments.   PCR mapping of somatic cell hybrids assigns specific DNA to specific chromosomes A quick procedure for Use the same oligonucleotide primer with the present invention Use a panel of fragments from a particular chromosome or similar format in a large A pool of genomic clones is used to achieve sublocalization. Can be achieved. Other mapping lists that can also be used to map to chromosomes The strategy was in situ hybridization, labeled flow sorting (float w-sorted) Prescreening using chromosomes and live chromosome-specific cDNA Includes preselection by hybridization to build a rally.   Fluorescence in situ hybridization of cDNA clones to metaphase chromosome spreads (FISH) can be used to provide a precise chromosomal location in one step. This Can be used with cDNAs having at least 50 or 60 bases. this For a review of technologies, see Verma et al., Human Chromosomes: a Manual of Basic Tech See niques, Pergamon Press, New York (1988).   Once a sequence has been mapped to a precise chromosomal location, the physical The location can be correlated with the genetic map data. Such data is described, for example, in M cKusick, Mendelian Inheritance in Man (Johns Hopkins University Welch Med (available online from the ical Library). Then The relationship between a disease and a gene that maps to the same chromosomal region is described by linkage analysis (physical analysis). (Simultaneous inheritance of genes adjacent to the gene).   Next, differences in the cDNA or genomic sequence between affected and unaffected individuals Need to decide. The mutation is observed in some or all affected individuals, If not observed in any normal individual, this mutation is a causative agent of the disease. It is.   At the current resolution of physical and genetic mapping techniques, disease A cDNA correctly located in a chromosomal region associated with a potential of between 50 and 500 It may be one of the causative genes. (This is a 1 megabase mapping resolution, And one gene per 20 kb).   The polypeptide, a fragment or other derivative thereof, or an analog thereof. Logs, or cells that express them, produce antibodies against them Can be used as an immunogen. These antibodies are, for example, polyclonal antibodies, Or it may be a monoclonal antibody. The present invention also provides chimeric antibodies, single chain antibodies, And production of humanized antibodies and Fab fragments or Fab expression libraries Things. Various procedures known in the art can be used to construct such antibodies and fragments. Can be used for the production of   Antibodies raised against polypeptides corresponding to the sequences of the present invention may be used to Obtained by direct injection of the polypeptide or by administration of the polypeptide to the animal. Can be The animal is preferably non-human. Then, like this The resulting antibody binds to the polypeptide itself. In this way, polypepti Even a sequence that encodes only the fragment of the peptide binds to the entire native polypeptide. Can be used to generate matching antibodies. Such antibodies are then It can be used to isolate a polypeptide from a tissue that expresses the polypeptide.   Antibodies produced by continuous culture of cell lines for preparation of monoclonal antibodies Any technique that provides a can be used. Examples include hybridoma technology (Kohle r and Milstein, 1975, Nature, 256: 495-497), trioma technology, human B cells Hybridoma technology (Kozbor et al., 1983, Immunology Today 4:72), and human EBV hybridoma technology for producing noclonal antibodies (Cole et al., 1985, Mono clonal Antibodies and Cancer Therapy, Alan R. Liss, Inc., pp. 77-96). It is.   The technology described for producing single-chain antibodies (U.S. Pat. Can be adapted to generate single-chain antibodies to light immunogenic polypeptide products . In addition, the transgenic mouse is used as the immunogenic polypeptide product of the present invention. It can be used to express humanized antibodies to it.   The invention will be further described with reference to the following examples; It should be understood that the present invention is not limited to such an embodiment. All parts or quantity Are by weight unless otherwise specified.   To facilitate understanding of the following examples, certain frequently occurring methods and / or Or terms are described.   "Plasmids" are capitalized with a lower case p followed by and / or followed by a capital letter and / or Or it is specified by showing a number. The starting plasmids herein are commercially available And are publicly available without restriction or in accordance with published procedures It can be constructed from available plasmids. In addition, equivalent to the described plasmid Are known in the art and will be apparent to those skilled in the art.   `` Digestion '' of DNA involves touching it with a restriction enzyme that acts only at certain sequences in the DNA. It means to cut by a medium reaction. The various restriction enzymes used herein are commercially available. Are sold and their reaction conditions, cofactors, and other requirements are The known ones were used. For analytical purposes, typically 1 μg of plasmid Or DNA fragment is used in about 20 μl of buffer solution with about 2 units of enzyme Is done. For the purpose of isolating DNA fragments for plasmid construction, Typically, 5-50 μg of DNA is used in larger volumes with 20-250 units of enzyme. Digested. Appropriate buffers and substrate amounts for particular restriction enzymes can be determined by the manufacturer. Specified. An incubation time of about 1 hour at 37 ° C is usually used, This can vary according to the supplier's instructions. After digestion, the reaction is The desired fragment is isolated by direct electrophoresis on a gel.   Size separation of truncated fragments is described by Goeddel, D. et al., Nucleic Acids Res., 8: 4. This is done using an 8% polyacrylamide gel as described by O57 (1980).   "Oligonucleotide" refers to a single-stranded polydeoxynucleotide or two phases. Refers to any of the complementary polydeoxynucleotide chains, which are chemically synthesized Can be Such synthetic oligonucleotides have no 5 'phosphate and therefore If you do not add phosphate with ATP in the presence of the enzyme, another oligonucleotide Do not connect with Synthetic oligonucleotides are non-dephosphorylated fragment Connect to   "Ligation" forms a phosphodiester bond between two double-stranded nucleic acid fragments. (Maniatis, T et al., Supra, p. 146). If not provided otherwise, Ligation is performed using known buffers and conditions, using approximately equimolar amounts of the DNA to be ligated. Achieved using 10 units of T4 DNA ligase (“ligase”) per 0.5 μg of fragment Can be done.   Unless otherwise stated, Graham, F. and Van der Eb, A., Virology, 52: 456-45. 7 (1973). Transformation was performed as described in Method 7 (1973).                                 Example 1 Bacterial expression and purification of soluble CysE   The DNA sequence encoding CysE (ATCC accession number 97103) was replaced with the processed CysE 5 ′ sequence of protein (excluding signal peptide sequence) and CysE gene First, use a PCR oligonucleotide primer corresponding to the 3 'vector sequence. To amplify. Additional nucleotides corresponding to CysE were added to the 5 'and 3' Added to row. The 5 'oligonucleotide primer has the sequence 5' CGCCCATGGCGGCCG CAGGAG 3 '(SEQ ID NO: 3), which is an NcoI restriction enzyme site followed by a process Contains the CysE coding sequence starting from the putative terminal amino acids of the shingled protein. 3 ′ sequence, 5 ′ CGCAAGCTTTCACATCTGCAAAAAGTTGGC 3 ′ (SEQ ID NO: 4) is HindII It contains the sequence complementary to the I site, followed by the CysE coding sequence. Restriction enzyme section The position is on the bacterial expression vector pQE-9 (Qiagen, Inc. Chatsworth, CA, 91111). Corresponds to a restriction enzyme site. pQE-9 is resistant to antibiotics (Ampr), Bacterial origin of replication (o ri), IPTG regulatable promoter operator (P / O), ribosome binding site (R BS), a 6-His tag, and a restriction enzyme site. Then, pQE-9 was transferred to NcoI and And HindIII. The amplified sequence is ligated into pQE-9 and a histidine tag And the sequence encoding RBS were inserted in frame. Then, Using the compound,E . coliThe M15 / rep 4 strain (Qiagen, Inc.) was isolated from Sambrook, J. et al., Molecu. lar Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Laboratory Press, (1989) Transformation was performed according to the procedure described. M15 / rep4 provides multiple copies of plasmid pREP4 contains. It expresses the lacI repressor and also has kanamycin resistance ( Kanr). Transformants are identical due to their ability to grow on LB plates. Set. Then, ampicillin / kanamycin resistant colonies were selected. Plasmi DNA was isolated and confirmed by restriction enzyme analysis. Black containing the desired construct Solution in LB medium supplemented with both Amp (100 μg / ml) and Kan (25 μg / ml). Grow overnight (O / N) in body culture. Large scale with 1: 100 to 1: 250 ratio using O / N culture Inoculate the culture. Cells are grown at an optical density of 600 (O.D.600) Is between 0.4 and 0.6 Grown up to Then, IPTG ("Isopropyl-B-D-thiogalactopyranoside" ") To a final concentration of 1 mM. IPTG inactivates the lacI repressor This induces clearing of P / O, leading to increased gene expression. The cells Were grown for 3-4 hours. The cells were then collected by centrifugation. Cell pellet The soot was solubilized in the chaotropic drug 6M guanidine HCl. Soluble after clarification CysE under conditions that allow it to be more tightly bound by a protein containing a 6-His tag This solution was purified by chromatography on a nickel-chelate column. (Hochuli, E. et al., J. Chromatography 411: 177-184 (1984)). 6M CysE The column was eluted in guanidine HCl (pH 5.0) and, for regeneration purposes, 3M guanidine was used. Gin HCl, 100 mM sodium phosphate, 10 mM glutathione (reduced), and 2 mM Adjusted to rutathione (oxidized form). 12 hours incubation in this solution After that, the protein was dialyzed against 10 mM sodium phosphate.                                 Example 2 Cloning and expression of CysE using the baculovirus expression system   The DNA sequence encoding the full-length CysE protein (ATCC Accession No. 97103) was PCR oligonucleotide primers corresponding to the 5 ′ and 3 ′ sequences of the gene Amplified using: No. 5) and a BamHI restriction enzyme site (bold) followed by a eukaryotic cell. Signal efficient for initiation of translation in cells (Kozak, M., J. Mol. Biol., 196: 94). 7-950 (1987)) and the 18 nucleotides of this CysE gene (the translation start codon "A TG "is underlined). No. 6) and the cleavage site of the restriction endonuclease BamHI and this CysE Contains nucleotides complementary to the 3 'untranslated sequence of the gene. Commercialize amplified sequences 1% agar using a kit ("Geneclean" BIO 101 Inc., La Jolla, Ca.) Isolated from loin gel. This fragment was then used for the endonuclease BamH Digested with I and then purified again on a 1% agarose gel. This fragment is Call it 2.   The vector pA2 (a modified version of the pVL941 vector, described below) was transformed into a baculovirus expression system. (For a review, see Summers, M.D.). And Smith, G.E. 1987, A manual of methods for baculovirus vectors and insect cell culture procedures, Texas Agricultural Experimental Station Bulletin No. 1555). This expression vector was obtained from Autographa californ Strong polyhedrin promoter of ica nuclear polyhedrosis virus (AcMNPV), and Includes a recognition site for the subsequent restriction endonuclease BamHI. Simian virus (SV) 4 A polyadenylation site of 0 is used for efficient polyadenylation. Recombinant c For easy selection of ills, coli β-galactosidase gene Lihedrin promoter followed by polyadenylation of the polyhedrin gene Insert in the same direction as the signal. Polyhedrin sequence cotransfected in the wild Flanking the viral sequence for cell-mediated homologous recombination of type 2 viral DNA You. Many other baculovirus vectors can be used in place of pA2. An example Examples are pRG1 pAc373, pVL941, and pAcIM1 (Luckow, V.A. and Summers , M.D., Virology, 170: 31-39).   The plasmid is digested with the restriction enzyme BamHI and the pups are then digested by procedures known in the art. Dephosphorylated using bovine intestinal phosphatase. Then, the DNA was purchased from a commercially available kit ( 1% agarose gel using "Geneclean" BIO 101 Inc., La Jolla, Ca. Isolated. This vector DNA is called V2.   Fragment F2 and dephosphorylated plasmid V2 were converted using T4 DNA ligase. Connected. Then, E. Transform E. coli HB101 cells and use the enzyme BamHI Thus, bacteria containing a plasmid having the CysE gene (pBacCysE) were identified. Claw The sequence of the activated fragment was confirmed by DNA sequencing.   5 μg of the plasmid pBacCysE was ligated with the lipofection method (Felgner et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 84: 7413-7417 (1987)). Culovirus ("BaculoGoldTMbaculovirus DNA ", Pharmingen, San Diego, C A.) and co-transfected.   1 μg BaculoGoldTM50 μl of viral DNA and 5 μg of plasmid pBacCysE Containing serum-free Grace's medium (Life Technologies Inc., Gaithersburg, MD) Mixing in sterile wells of a crotiter plate. Then 10 μl of Lipofect Tin and 90 μl of Grace medium, mix and incubate for 15 minutes at room temperature. I was vate. The transfection mixture was then added to serum-free Grac Sf9 insect cells (ATCC C) seeded in 35 mm tissue culture plates containing 1 ml of e-medium RL 1711). Mix the plate with the newly added solution. For this purpose, it was vibrated back and forth. The plate was then incubated at 27 ° C. for 5 hours . After 5 hours, the transfection solution was removed from the plate and 10% bovine 1 ml of Grace insect medium supplemented with fetal serum was added. Incubate plate And the culture was continued at 27 ° C. for 4 days.   After 4 days, the supernatant was collected and as described by Summers and Smith (supra). A plaque assay was performed. As an alternative, the blue stained plaque "Blue Gal" (Life Technologies Inc., Gaithersburg) Agarose gel was used. (A detailed description of the "plaque assay" Insect cell culture and baculo distributed by Life Technologies Inc., Gaithersburg (It can also be found in the Virology User Guide (pages 9-10)).   Four days after serial dilution, the virus is added to the cells and blue stained plaques are I picked it up with the tip of a Ndolph pipette. The agar containing the recombinant virus was then Resuspended in Eppendorf tubes containing 0 μl Grace medium. Agar, short The supernatant containing the recombinant baculovirus was removed by centrifugation. It was used to infect Sf9 cells seeded on the tissue. Four days later, these cultures The culture dish supernatant was collected and then stored at 4 ° C.   Sf9 cells were grown in Grace medium supplemented with 10% heat inactivated FBS. Cells At a multiplicity of infection (MOI) of 2, the cells were infected with the recombinant baculovirus V-CysE. 6 hours Afterwards, the medium was removed and SF900 II medium without methionine and cysteine ( Life Technologies Inc., Gaithersburg). 42 hours later, 5 μCi35 S-methionine and 5 μCi35S-cysteine (Amersham) was added. Cells Incubate for an additional 16 hours, after which cells are collected by centrifugation and Identified proteins were visualized by SDS-PAGE and autoradiography .                                 Example 3 COS Expression of recombinant CysE in cells   Induction of expression of plasmid CysE HA from vector pcDNAI / Amp (Invitrogen) I do. The vector pcDNAI / Amp contains the following: 1) SV40 origin of replication, 2) Ampici Phosphorus resistance gene, 3) E. coli origin of replication, 4) polylinker region, SV40 intro And a CMV promoter followed by a polyadenylation site. The entire CysE precursor and A DNA fragment encoding the HA tag fused in-frame to its 3 'end Was cloned into the polylinker region of the vector. Therefore, the recombinant protein Expression is controlled under the CMV promoter. The HA tag was previously described (I. Wilson , H. Niman, R .; Heighten, A Cherenson, M.S. Connolly, and R. Lerner, 1984 Epitome from influenza hemagglutinin protein such as Step Corresponding to The fusion of the HA tag to our target protein allows the This allows easy detection of recombinant proteins using antibodies that recognize the protein.   The plasmid construction strategy is described below:     The DNA sequence encoding CysE (ATCC Accession No. 97103) was Constructed by PCR in the first EST cloned using the imer: The primer 5 'GCGCGGATCCACCATGGCGCGTTCG 3' (SEQ ID NO: 7) has a BamHI site It contains the 12 nucleotides of the CysE coding sequence beginning with the start codon following it; Row, 5'GCGCTCTAGATCAAGCGTAGTCTGGGACGTCGTATGGGTACATCTGCACAAA 3 '(sequence number No. 8) contains the XbaI site, the translation stop codon, the HA tag, and the nucleotide sequence of the CysE coding sequence. Contains sequences complementary to otide (not including stop codon). Therefore, the PCR product , BamHI site, CysE coding sequence followed by HA tag fused in frame, HA tag Includes an adjacent translation termination stop codon, and an XbaI site. PCR amplified DNA fragment And the vector (pcDNAI / Amp) are digested with BamHI and XbaI restriction enzymes, And connected. The ligation mixture is coli SURE strain (Stratagene Cloning Systems , 11099 North Torrey Plnes Road, available from La Jolla, CA 92037) Transform, inoculate the transformed culture into ampicillin medium plates, and Knee selected. Isolate plasmid DNA from transformants and correct The presence of the ment was determined by restriction enzyme analysis. For expression of recombinant CysE, COS cells were EAE-DEXTRAN method (J. Sambrook, E. Fritsch, T. Maniatis, Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Laboratory Press, (1989)) Transfected. Expression of CysE HA protein is determined by radiolabeling. And immunoprecipitation (E. Harlow, D. Lane, Antibodies: A Laboratory  Manual, Cold Spring Harbor Laboratory Press, (1988)). Transform cells Two days after fiction,35Labeled with S-cysteine for 8 hours. The culture medium is then And harvest the cells with detergent (RIPA buffer (150 mM NaCl, 1% NP-40, 0.1% SD S, 1% NP-40, 0.5% DOC, 50 mM Tris (pH 7.5)) (Wilson, I. et al., Supra). 37: 767 (1984)). Both cell lysate and culture medium are Sedimentation with the antibody. Precipitated protein on 15% SDS-PAGE gel analyzed.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 FI A61K 45/00 ADS A61K 45/00 ADY ADY 48/00 ADU 48/00 ADU C12N 1/21 C12N 1/21 C12Q 1/68 ZNAA C12Q 1/68 ZNA G01N 33/566 G01N 33/566 33/573 33/573 A61K 37/02 ABJ //(C12N 1/21 C12R 1:19) (81)指定国 EP(AT,BE,CH,DE, DK,ES,FR,GB,GR,IE,IT,LU,M C,NL,PT,SE),OA(BF,BJ,CF,CG ,CI,CM,GA,GN,ML,MR,NE,SN, TD,TG),AP(KE,MW,SD,SZ,UG), AM,AT,AU,BB,BG,BR,BY,CA,C H,CN,CZ,DE,DK,ES,FI,GB,GE ,HU,JP,KE,KG,KP,KR,KZ,LK, LT,LU,LV,MD,MG,MN,MW,MX,N O,NZ,PL,PT,RO,RU,SD,SE,SI ,SK,TJ,TT,UA,US,UZ,VN (72)発明者 ユウ,グオ−リアン アメリカ合衆国 メリーランド 20878, ダーネスタウン,ストロー ベール レー ン 13524 (72)発明者 ジェンツ,レイナー アメリカ合衆国 メリーランド 20904, シルバー スプリング,フェアランド パ ーク ドライブ 13404 (72)発明者 ローゼン,クレイグ エイ. アメリカ合衆国 メリーランド 20882, レイトンズビル,ローリング ヒル ロー ド 22400──────────────────────────────────────────────────の Continued on the front page (51) Int.Cl. 6 Identification code FI A61K 45/00 ADS A61K 45/00 ADY ADY 48/00 ADU 48/00 ADU C12N 1/21 C12N 1/21 C12Q 1/68 ZNAA C12Q 1/68 ZNA G01N 33/566 G01N 33/566 33/573 33/573 A61K 37/02 ABJ // (C12N 1/21 C12R 1:19) (81) Designated country EP (AT, BE, CH, DE) , DK, ES, FR, GB, GR, IE, IT, LU, MC, NL, PT, SE), OA (BF, BJ, CF, CG, CI, CM, GA, GN, ML, MR, NE) , SN, TD, TG), AP (KE, MW, SD, SZ, UG), AM, AT, AU, BB, BG, BR, BY, CA, CH, CN, CZ DE, DK, ES, FI, GB, GE, HU, JP, KE, KG, KP, KR, KZ, LK, LT, LU, LV, MD, MG, MN, MW, MX, NO, NZ, PL , PT, RO, RU, SD, SE, SI, SK, TJ, TT, UA, US, UZ, VN (72) Inventor Yu, Guorian United States of America Maryland 20878, Darnesstown, Strawvale Lane 13524 (72 Inventor Gents, Reiner United States of America Maryland 20904, Silver Spring, Fairland Park Drive 13404 (72) Inventor Rosen, Craig A. United States of America Maryland 20882, Laytonsville, Rolling Hill Road 22400

Claims (1)

【特許請求の範囲】 6.図1に示す配列のヌクレオチド1からヌクレオチド576からなる、請求項1 に記載のポリヌクレオチド。 7.図1に示す配列のヌクレオチド14からヌクレオチド459からなる、請求項1 に記載のポリヌクレオチド。 8.請求項2に記載のDNAを含むベクター。 9.請求項10に記載のベクターで遺伝子操作された宿主細胞。 10.ポリペプチドを産生するためのプロセスであって:請求項11に記載の宿 主細胞から前記DNAによりコードされるポリペプチドを発現する工程を包含する 、プロセス。 11.請求項10に記載のベクターで細胞を遺伝子操作する工程を包含する、ポ リペプチドを発現し得る細胞を産生するためのプロセス。 12.以下からなる群から選択されるメンバーを包含するポリペプチド: (i) 図1のす推定アミノ酸配列を有するポリペプチドならびにそのフラグメン ト、アナログ、および誘導体;および (ii) ATCC受託番号97103のcDNAによりコードされるポリペプチド、ならびに該 ポリペプチドのフラグメント、アナログ、および誘導体。 13.請求項12に記載のポリペプチドのレセプターを活性化する化合物。 14.請求項12に記載のポリペプチドのレセプターを阻害する化合物。 15.請求項12に記載のポリペプチドの治療有効量を患者に投与する工程を包 含する、CysEの必要性を有する患者の処置のための方法。 16.前記ポリペプチドをコードし、そして該ポリペプチドをインビボで発現す るDNAを患者に提供することによって、前記治療有効量のポリペプチドが投与さ れる、請求項15に記載の方法。 17.CysEポリペプチドを阻害する必要性を有する患者の処置方法であって:請 求項14に記載の化合物の治療有効量を患者に投与する工程を包含する、方法。 18.請求項12に記載のポリペプチドの過小発現に関連する疾患または疾患に 対する感受性を診断するためのプロセスであって: 該ポリペプチドをコードする核酸配列中の変異を決定する工程を包含する、プ ロセス。 19.診断プロセスであって: 宿主由来のサンプルにおける請求項12に記載のポリペプチドの存在を分析す る工程を包含する、プロセス。 20.請求項12に記載のポリペプチドに結合し、そして該ポリペプチドに対す るレセプターを活性化する化合物を同定するための方法であって: 細胞表面上で該ポリペプチドに対するレセプターを発現する細胞と、スクリー ニングされるべき化合物とを、該レセプターへの結合を許容する条件下で接触さ せる工程であって、該レセプターは、化合物の該レセプターへの結合に応答して 検出可能なシグナルを提供し得る第2の成分と会合される、工程;および 該化合物と該レセプターとの相互作用から生成されるシグナルの存在を検出す ることにより、該化合物が該レセプターに結合し、そして該レセプターを活性化 するか否かを決定する工程、 を包含する、方法。[Claims] 6. 2. The method according to claim 1, comprising nucleotides 1 to 576 of the sequence shown in FIG. 3. The polynucleotide according to item 1. 7. 2. The method according to claim 1, comprising nucleotides 14 to 459 of the sequence shown in FIG. 3. The polynucleotide according to item 1. 8. A vector comprising the DNA according to claim 2. 9. A host cell genetically engineered with the vector of claim 10. 10. A process for producing a polypeptide, comprising: the inn of claim 11. Expressing a polypeptide encoded by the DNA from the main cell ,process. 11. A method comprising genetically engineering a cell with the vector of claim 10. A process for producing cells capable of expressing a repeptide. 12. A polypeptide comprising a member selected from the group consisting of:   (i) a polypeptide having the deduced amino acid sequence shown in FIG. 1 and a fragment thereof Analogs and derivatives; and   (ii) a polypeptide encoded by the cDNA of ATCC Accession No. 97103; Fragments, analogs, and derivatives of polypeptides. 13. A compound that activates the receptor of the polypeptide of claim 12. 14. A compound that inhibits the receptor of the polypeptide according to claim 12. 15. Administering a therapeutically effective amount of the polypeptide of claim 12 to a patient. A method for the treatment of a patient having a need for CysE, including. 16. Encodes said polypeptide and expresses said polypeptide in vivo By providing the patient with DNA, the therapeutically effective amount of the polypeptide is administered. The method of claim 15, wherein 17. A method of treating a patient having a need to inhibit a CysE polypeptide, comprising: 15. A method comprising administering to a patient a therapeutically effective amount of the compound of claim 14. 18. A disease or disorder associated with underexpression of the polypeptide of claim 12. A process for diagnosing susceptibility to:   Determining a mutation in the nucleic acid sequence encoding the polypeptide. Roses. 19. The diagnostic process:   Analyzing the presence of the polypeptide of claim 12 in a sample derived from the host. Process comprising the steps of: 20. Binding to and against the polypeptide of claim 12; A method for identifying a compound that activates a receptor comprising:   A cell that expresses a receptor for the polypeptide on the cell surface; Contact with the compound to be treated under conditions that permit binding to the receptor. Wherein the receptor responds to the binding of a compound to the receptor. Associated with a second component that can provide a detectable signal; and   Detecting the presence of a signal generated from the interaction of the compound with the receptor The compound binds to the receptor and activates the receptor Determining whether to do, A method comprising:
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