JPH1080288A - 免疫担当細胞においてインターフェロン−γの産生を誘導するポリペプチドをコードする染色体DNA - Google Patents

免疫担当細胞においてインターフェロン−γの産生を誘導するポリペプチドをコードする染色体DNA

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JPH1080288A
JPH1080288A JP9187418A JP18741897A JPH1080288A JP H1080288 A JPH1080288 A JP H1080288A JP 9187418 A JP9187418 A JP 9187418A JP 18741897 A JP18741897 A JP 18741897A JP H1080288 A JPH1080288 A JP H1080288A
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chromosomal dna
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Takanori Okura
隆則 大倉
Kakuji Torigoe
角二 鳥越
Masashi Kurimoto
雅司 栗本
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Hayashibara Seibutsu Kagaku Kenkyujo KK
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Hayashibara Biochemical Laboratories Co Ltd
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Abstract

(57)【要約】 【課題】 哺乳類由来の宿主細胞に導入すると、免疫担
当細胞においてインターフェロン−γの産生を誘導する
ポリペプチドを効率的に発現するDNAを提供すること
を課題とする。 【解決手段】 特定のアミノ酸配列を有し、免疫担当細
胞においてインターフェロン−γの産生を誘導するポリ
ペプチドをコードする染色体DNAと、その染色体DN
Aを哺乳類由来の宿主細胞に導入してなる形質転換体
と、その形質転換体を培養する工程と、培養物から当該
ポリペプチドを採取する工程を含んでなるポリペプチド
の製造方法により解決する。

Description

【発明の詳細な説明】
【0001】
【発明の属する技術分野】この発明は染色体DNA、と
りわけ、免疫担当細胞においてインターフェロン−γ
(以下、「IFN−γ」と略記する。)の産生を誘導す
るポリペプチドをコードする染色体DNAに関する。
【0002】
【従来の技術】本発明者らは免疫担当細胞においてIF
N−γの産生を誘導するポリペプチドの単離と、そのポ
リペプチドをコードするcDNAのクローニングに成功
し、特開平8−27189号公報及び特開平8−193
098号公報に開示した。このポリペプチドは有用な生
理活性蛋白質であるIFN−γの産生を誘導する性質
と、キラー細胞による細胞障害性を増強したり、キラー
細胞の生成を誘導する性質を兼備しているので、抗ウイ
ルス剤、抗菌剤、抗腫瘍剤、免疫疾患剤などとして広範
な用途が期待されている。
【0003】ところで、ヒト細胞においては、遺伝子の
発現により生成したポリペプチドは細胞内酵素によるプ
ロセッシングを受け、ポリペプチドの一部が切断された
り、糖鎖が付加したりすると言われている。医薬品に配
合するポリペプチドとしては、ヒト細胞におけると同様
のプロセッシングを受けたものが望ましいところ、特願
平8−269105号明細書に記載されているように、
ヒト細胞株は一般に当該ポリペプチドの産生量が少ない
という問題がある。したがって、現時点で当該ポリペプ
チドを大量に入手しようとすると、組換えDNA技術を
適用せざるを得ない。組換えDNA技術を適用しつつ、
ポリペプチドにヒト細胞におけると同様なプロセッシン
グを受けさせるには、宿主に哺乳類由来の細胞を用いる
こととなる。
【0004】
【発明が解決しようとする課題】斯かる状況に鑑み、こ
の発明の第一の課題は、哺乳類由来の宿主細胞に導入し
たときに、当該ポリペプチドの産生を効率的に発現する
DNAを提供することにある。
【0005】さらに、この発明の第二の課題は、斯かる
DNAを導入してなる形質転換体を提供することにあ
る。
【0006】加えて、この発明の第三の課題は、斯かる
形質転換体を用いるポリペプチドの製造方法を提供する
ことにある。
【0007】
【課題を解決するための手段】本発明者が上記諸課題を
解決すべく鋭意研究したところ、当該ポリペプチドをコ
ードする染色体DNAは、哺乳類由来の宿主細胞に導入
すると、当該ポリペプチドを効率的に発現することを見
出した。しかも、この染色体DNAを哺乳類由来の宿主
細胞で発現させて得られるポリペプチドは、当該ポリペ
プチドをコードするcDNAを大腸菌で発現させて得ら
れるポリペプチドに比較して、生理活性が有意に高いこ
とを見出した。
【0008】すなわち、この発明は上記第一の課題を、
配列表における配列番号1に示すアミノ酸配列(ただ
し、符合「Xaa」を付して示したアミノ酸は、イソロ
イシン又はトレオニンを表すものとする。)又はそのア
ミノ酸配列に相同的なアミノ酸配列を有し、免疫担当細
胞においてIFN−γの産生を誘導するポリペプチドを
コードする染色体DNAにより解決するものである。
【0009】さらに、この発明は上記第二の課題を、こ
の染色体DNAを哺乳類由来の宿主細胞に導入してなる
形質転換体により解決するものである。
【0010】加えて、この発明は上記第三の課題を、こ
の形質転換体を培養する工程と、培養物から免疫担当細
胞においてIFN−γの産生を誘導するポリペプチドを
採取する工程を含んでなるポリペプチドの製造方法によ
り解決するものである。
【0011】
【発明の実施の形態】以下、この発明の実施の形態につ
き説明するが、前述のとおり、この発明は、配列表にお
ける配列番号1に示すアミノ酸配列又はそのアミノ酸配
列に相同的なアミノ酸配列を有するポリペプチドをコー
ドする染色体DNAの発見と、その染色体DNAが哺乳
類由来の宿主細胞に導入したときに、生理活性の高いポ
リペプチドを効率的に発現するという知見に基づくもの
である。この発明の染色体DNAは、通常、2個以上の
エクソンを含んでなり、そのうちの1個又は2個以上の
エクソンは配列表における配列番号2に示す塩基配列の
一部又は全部を有する。斯かるエクソンの具体例として
は、例えば、配列表における配列番号3及び4に示す塩
基配列のものが挙げられる。ヒトに由来する染色体DN
Aは、それ以外に、例えば、配列表における配列番号5
乃至7に示す塩基配列のエクソンを含んでなることがあ
る。この発明の染色体DNAは、哺乳類の染色体DNA
に由来するものであるが故に、哺乳類の染色体DNAに
特徴的なイントロンを含んでなる。イントロンは、通
常、2個以上存在し、個々のイントロンとしては、例え
ば、配列表における配列番号8乃至12に示す塩基配列
のものが挙げられる。
【0012】この発明の染色体DNAのさらに具体的な
例としては、例えば、配列表における配列番号13及び
14に示す塩基配列及びその塩基配列に相補的な塩基配
列を有するものが挙げられる。配列表における配列番号
13に示す塩基配列も、配列番号14に示す塩基配列も
本質的に変わるところはなく、例えば、配列番号14に
示す塩基配列はその第15,607乃至15,685番
目、第17,057乃至17,068番目及び20,4
52乃至20,468番目にリーダーペプチドをコード
する領域を、第20,469乃至20,586番目、第
21,921乃至22,054番目及び第26,828
乃至27,046番目に配列表における配列番号1に当
該ポリペプチドをコードする領域を、そして、第15,
686乃至17,056番目、第17,069乃至2
0,451番目、第20,587乃至21,920番目
及び第22,055乃至26,827番目にイントロン
に相当する領域をそれぞれ含んでなる。なお、配列表に
おける配列番号13に示す塩基配列の染色体DNAは、
哺乳類由来の宿主細胞中で当該ポリペプチドを発現させ
るのに好適である。
【0013】ところで、斯界においては、一般に、ある
ポリペプチドをコードするDNAを宿主中で発現させる
に際し、そのDNAの発現効率を改善したり、あるい
は、ポリペプチドそのものの物性を改善する目的で、D
NAにおける塩基の1個又は2個以上を他の塩基で置換
したり、DNAに適宜のプロモーターやエンハンサーを
連結することがある。この発明の染色体DNAにおいて
も斯かる改変は当然あり得ることであり、具体的には、
最終的に得られるポリペプチドの生理活性を実質的に変
更しない範囲で、例えば、配列表における配列番号3乃
至14に示す塩基配列における塩基の1個又は2個以上
を他の塩基で置換したり、配列番号3、4、5、6、
7、13及び14に示す塩基配列における5´末端及び
/又は3´末端の非翻訳領域やリーダーペプチドに相当
する領域を切除したり、あるいは、配列番号13に示す
塩基配列の一端又は両端に適宜オリゴヌクレオチドを連
結した場合であっても、当然、この発明の染色体DNA
に包含されることは言うまでもない。
【0014】この発明でいう染色体DNAとは、上記の
ごとき塩基配列を含んでなる染色体由来のDNA全般を
包含するものとし、それが元の生体から一旦単離された
ものであるかぎり、その出所・由来は問わない。この発
明の染色体DNAを得るには、例えば、配列表における
配列番号2乃至14に示す塩基配列に基づき化学合成す
るか、あるいは、ヒトの染色体DNAから単離する。ヒ
トの染色体DNAから単離するには、常法にしたがって
ヒト細胞から染色体DNAを分離する一方、配列表にお
ける配列番号2に示す塩基配列の一部又は全部を有する
オリゴヌクレオチドを化学合成し、これをプローブ又は
プライマーにして染色体DNAを検索し、顕著な会合を
示すDNAを採取する。いずれにしても、この発明の染
色体DNAは、一旦これを入手すれば、常法にしたがっ
て自律複製可能なベクターとの組換えDNAを作製し、
この組換えDNAを微生物や動物由来の適宜宿主に導入
して培養するか、あるいは、PCR法を適用すれば、無
限に複製可能である。
【0015】この発明の染色体DNAは、哺乳類由来の
宿主細胞に導入すると、生理活性の高いポリペプチドを
効率的に発現するので、組換えDNA技術による当該ポ
リペプチドの製造に極めて有用である。この発明は特定
の染色体DNAを用いるポリペプチドの製造方法をも提
供するものであり、この発明の製造方法は、当該染色体
DNAを哺乳類由来の宿主細胞に導入してなる形質転換
体を培養する工程と、培養物から免疫担当細胞において
IFN−γの産生を誘導するポリペプチドを採取する工
程を含んでなる。
【0016】この発明によるポリペプチドの製造方法に
ついて説明すると、当該染色体DNAは、通常、組換え
DNAの形態で宿主細胞に導入される。組換えDNAは
この発明の染色体DNAと自律複製可能なベクターを含
んでなり、染色体DNAさえ入手できれば、通常一般の
組換えDNA技術により比較的容易に調製することがで
きる。この発明の染色体DNAを挿入可能なベクターと
しては、例えば、pcD、pcDL−SRα、pKY
4、pCDM8、pCEV4、pME18Sなどのプラ
スミドベクターが挙げられる。自律複製可能なベクター
は、通常、プロモーター、エンハンサー、複製起点、転
写終結部位、スプライシング配列及び/又は選択マーカ
ーなどの、この発明の染色体DNAが個々の宿主細胞に
おいて発現するための適宜塩基配列をさらに含んでな
る。なお、プロモーターとして、例えば、熱ショック蛋
白質プロモーターや、あるいは、同じ特許出願人が特開
平7−163368号公報に開示したインターフェロン
−αプロモーターを用いるときには、形質転換体におけ
る当該染色体DNAの発現を外部刺激により人為的に制
御できることとなる。
【0017】斯かるベクターにこの発明の染色体DNA
を挿入するには、斯界において慣用の方法が用いられ
る。具体的には、まず、この発明の染色体DNAを含む
遺伝子と自律複製可能なベクターとを制限酵素及び/又
は超音波により切断し、つぎに、生成したDNA断片と
ベクター断片を連結する。遺伝子及びベクターの切断に
ヌクレオチドに特異的に作用する制限酵素、とりわけ、
AccI、BamHI、BglI、BstXI、Eco
RI、HindIII、NotI、PstI、Sac
I、SalI、SmaI、SpeI、XbaI、Xho
Iなどを用いれば、DNA断片とベクター断片を連結す
るのが容易となる。DNA断片とベクター断片を連結す
るには、必要に応じて、両者をアニーリングした後、生
体内又は生体外でDNAリガーゼを作用させればよい。
斯くして得られる組換えDNAは、微生物や動物由来の
宿主において無限に複製可能である。
【0018】宿主細胞としては、例えば、3T3細胞、
C127細胞、CHO細胞、CV−1細胞、COS細
胞、HeLa細胞、MOP細胞及びそれらの変異株を始
めとする、斯界において宿主として慣用されるヒト、サ
ル、マウス及びハムスター由来の上皮系細胞、間質系細
胞及び造血系細胞であっても、当該ポリペプチドを本来
的に産生するヒトのリンパ芽球、リンパ球、単芽球、単
球、骨髄芽球、骨髄球、顆粒球、マクロファージなどの
造血系細胞や、例えば、肺癌、大腸癌、結腸癌などの固
形腫瘍由来の上皮系細胞や間質系細胞であってもよい。
後者の造血系細胞の具体例としては、例えば、ジュン・
ミノワダ『キャンサー・リサーチ』、第10巻、1乃至
18頁(1988年)などに記載されている骨髄性白血
病、前骨髄性白血病、単球性白血病、成人T細胞白血病
及びヘアリー細胞白血病を含む白血病又はリンパ腫由来
のHBL−38細胞、HL−60細胞(ATCC CC
L240)、K−562細胞(ATCC CCL24
3)、KG−1細胞(ATCCCCL246)、Mo細
胞(ATCC CRL8066)、THP−1細胞(A
TCC TIB202)、U−937細胞(ATCC
CRL1593)などの白血病細胞株及びそれらの変異
株が挙げられる。これらの白血病細胞及び変異株は当該
ポリペプチドをプロセッシングする性質が顕著なので、
宿主細胞として用いると、生理活性の高いポリペプチド
が容易に得られる特徴がある。
【0019】斯かる宿主細胞にこの発明の染色体DNA
を導入するには、例えば、公知のDEAE−デキストラ
ン法、燐酸カルシウム法、エレクトロポレーション法、
リポフェクション法、マイクロインジェクション法、さ
らには、レトロウイルス、アデノウイルス、ヘルペスウ
イルス、ワクシニアウイルスなどによるウイルス感染法
などを用いればよい。形質転換体から当該ポリペプチド
を産生するクローンを選択するには、コロニーハイブリ
ダイゼーション法を適用するか、形質転換体を培養培地
で培養し、当該ポリペプチドの産生が観察されたクロー
ンを選択すればよい。なお、哺乳類由来の宿主細胞を用
いる組換えDNA技術については、例えば、黒木登志
夫、谷口克、押村光雄編集、『実験医学別冊細胞工学ハ
ンドブック』、1992年、羊土社発行や横田崇、新井
賢一編集、『実験医学別冊バイオマニュアルシリーズ3
遺伝子クローニング実験法』、1993年、羊土社発
行などに詳述されている。
【0020】斯くして得られる形質転換体は、培養培地
で培養すると、細胞内外に当該ポリペプチドを分泌す
る。培養培地としては、哺乳類由来の細胞を培養するた
めの慣用の培養培地を用いればよく、斯かる培養培地
は、通常、緩衝水を基材とし、これにナトリウムイオ
ン、カリウムイオン、カルシウムイオン、燐イオン、塩
素イオンなどの無機イオンと、細胞の代謝能力に応じた
微量元素、炭素源、窒素源、アミノ酸、ビタミンなどを
加え、必要に応じて、さらに血清、ホルモン、細胞成長
因子、細胞接着因子などを含有せしめて構成される。個
々の培養培地としては、例えば、199培地、DMEM
培地、Ham’s F12培地、IMDM培地、MCD
B104培地、MCDB153培地、MEM培地、RD
培地、RITC80−7培地、RPMI−1630培
地、RPMI−1640培地、WAJC404培地など
が挙げられる。斯かる培養培地に形質転換体を約1×1
4 乃至1×107 個/ml、望ましくは、約1×10
5 乃至1×106 個/ml接種し、必要に応じて新鮮な
培養培地と取替えながら、温度37℃前後で1日乃至1
週間、望ましくは、2乃至4日間浮遊培養又は単層培養
すると、当該ポリペプチドを含む培養物が得られる。形
質転換体の種類や培養条件にもよるが、斯くして得られ
る培養物は、通常、当該ポリペプチドを約1乃至100
μg/ml含む。
【0021】このようにして得られた培養物はIFN−
γ誘導剤としてそのまま用いられることもあるが、通常
は使用に先立ち、必要に応じて、超音波、細胞溶解酵素
及び/又は界面活性剤により細胞を破砕した後、濾過、
遠心分離などにより当該ポリペプチドを細胞又は細胞破
砕物から分離し、精製する。精製には細胞又は細胞破砕
物を除去した培養物に、例えば、塩析、透析、濾過、濃
縮、分別沈澱、イオン交換クロマトグラフィー、ゲル濾
過クロマトグラフィー、吸着クロマトグラフィー、等電
点クロマトグラフィー、疎水性クロマトグラフィー、逆
相クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフ
ィー、ゲル電気泳動、等電点電気泳動などの生理活性蛋
白質を精製するための斯界における慣用の方法が適用さ
れ、必要に応じて、これらは適宜組合せて適用される。
そして、最終使用形態に応じて、精製ポリペプチドを濃
縮・凍結乾燥して液状又は固状にすればよい。なお、同
じ特許出願人による特開平8−231598号公報に開
示されたモノクローナル抗体は当該ポリペプチドの精製
に極めて有用であり、このモノクローナル抗体を用いる
イムノアフィニティークロマトグラフィーによるときに
は、高純度の当該ポリペプチドを最少のコストと労力で
得ることができる。
【0022】前述のとおり、この発明の方法により得ら
れるポリペプチドは、有用な生理活性蛋白質であるIF
N−γの産生を誘導する性質と、キラー細胞の細胞障害
性を増強したり、キラー細胞の生成を誘導する性質を兼
備するので、IFN−γ及び/又はキラー細胞に感受性
を有する各種疾患の治療・予防に著効を発揮する。さら
に、この発明の方法により得られるポリペプチドは強力
なIFN−γ誘導能を有することから、一般に少量で所
期のIFN−γを産生でき、また、毒性が極めて低いこ
とから、多量投与しても重篤な副作用を惹起することが
ない。したがって、この発明の方法により得られるポリ
ペプチドは、使用に際して用量を厳密に管理しなくて
も、所望のIFN−γ産生を迅速に誘導できる利点があ
る。なお、当該ポリペプチドの感受性疾患剤としての用
途は、同じ特許出願人による特願平8−28722号明
細書に詳述されている。
【0023】ところで、この発明の染色体DNAは、い
わゆる、「遺伝子療法」にも有用である。すなわち、通
常の遺伝子療法においては、この発明の染色体DNA
を、例えば、レトロウイルス、アデノウイルス、アデノ
随伴ウイルスなどのウイルス由来のベクターに挿入する
か、カチオニックリポソームや膜融合型リポソームなど
のリポソームに包埋し、この状態で、IFN−γ及び/
又はキラー細胞に感受性を有する疾患に罹患した患者に
直接注入するか、あるいは、患者からリンパ球を採取
し、生体外で導入した後、患者に自家移植するのであ
る。また、養子免疫遺伝子療法においては、効果細胞に
この発明の染色体DNAを通常の遺伝子療法の場合と同
様にして導入すると、腫瘍細胞に対する効果細胞の細胞
障害性が高まり、養子免疫療法を強化することができ
る。さらに、腫瘍ワクチン遺伝子療法においては、患者
から摘出した腫瘍細胞にこの発明の染色体DNAを通常
の遺伝子療法の場合と同様にして導入し、生体外で一定
数に達するまで増殖させた後、患者に自家移植するので
ある。移植された腫瘍細胞は患者体内においてワクチン
として作用し、強力且つ抗原特異的な抗腫瘍免疫を発揮
する。斯くして、この発明の染色体DNAは、ウイルス
疾患、細菌感染症、悪性腫瘍及び免疫疾患を始めとする
各種疾患の遺伝子療法に著効を発揮することとなる。な
お、これらの遺伝子療法を実施するための一般的手順
は、例えば、島田隆、斎藤泉、小澤敬也編集、『実験医
学別冊バイオマニュアルUPシリーズ 遺伝子治療の基
礎技術』、1996年、羊土社発行に詳述されている。
【0024】以下、実施例に基づきこの発明を説明する
が、そこで用いられる手法は斯界において慣用のもので
あり、例えば、黒木登志夫、谷口克、押村光雄編集、
『実験医学別冊細胞工学ハンドブック』、1992年、
羊土社発行や横田崇、新井賢一編集、『実験医学別冊バ
イオマニュアルシリーズ3 遺伝子クローニング実験
法』、1993年、羊土社発行などにも詳述されてい
る。
【0025】
【実施例1】 〈染色体DNAのクローニングと塩基配列の決定〉
【0026】
【実施例1−1】 〈部分塩基配列の決定〉クローンテック製ヒト胎盤由来
のゲノムDNAライブラリー『PromoterFin
der DNA PvuII Library』を5n
gとり、これに10×Tth PCR反応溶液を5μ
l、25mM酢酸マグネシウムを2.2μl、そして、
2.5mM dNTP混液を4μlそれぞれ加え、さら
に、2単位/μlのrTth DNAポリメラーゼXL
と2.2μg/μlのTth Start Antib
odyの4:1の混液を1μl、アダプタープライマー
として5´−CCATCCTAATACGACTCAC
TATAGGGC−3´で表される塩基配列を有するオ
リゴヌクレオチドを10ピコモル、そして、アンチセン
スプライマーとして配列表における配列番号2に示す塩
基配列の第88乃至115番目の配列に基づき化学合成
した5´−TTCCTCTTCCCGAAGCTGTG
TAGACTGC−3´で表される塩基配列のオリゴヌ
クレオチドを10ピコモルそれぞれ加え、滅菌蒸留水で
全量を50μlとした。この混合物を94℃で1分間イ
ンキュベートした後、先ず、94℃で25秒間、72℃
で4分間でインキュベートするサイクルを7回繰返して
反応させ、次に、94℃で25秒間、67℃で4分間イ
ンキュベートするサイクルを32回繰返してPCR反応
させた。
【0027】滅菌蒸留水で反応物を100倍希釈した
後、その1μlをとり、これに10×Tth PCR反
応溶液を5μl、25mM酢酸マグネシウムを2.2μ
l、そして、2.5mM dNTP混液を4μlそれぞ
れ加え、さらに、2単位/μlのrTth DNAポリ
メラーゼXLと2.2μg/μlのTth Start
Antibodyの4:1の混液を1μl、ネステッド
アダプタープライマーとして5´−CTATAGGGC
ACGCGTGGT−3´で表される塩基配列のオリゴ
ヌクレオチドを10ピコモル、アンチセンスプライマー
として上記と同様にして化学合成した5´−TTCCT
CTTCCCGAAGCTGTGTAGACTGC−3
´で表される塩基配列のオリゴヌクオチドを10ピコモ
ルそれぞれ加え、滅菌蒸留水で50μlとした。この混
合物を94℃で1分間インキュベートした後、先ず、9
4℃で25秒間、72℃で4分間インキュベートするサ
イクルを5回繰返して反応させ、次に、94℃で25秒
間、67℃で4分間インキュベートするサイクルを22
回繰返してPCR反応させて当該染色体DNAにおける
DNA断片の一つを増幅した。なお、染色体DNAライ
ブラリー及びPCR反応試薬としては、主として、クロ
ーンテック製『PromoterFinder DNA
Walking Kits』を用いた。
【0028】このようにして得たPCR反応物を適量と
り、これにノバジーン製プラスミドベクター『pT7
Blue(R)』を50ngとT4 DNAリガーゼの
適量を加え、さらに、100mM ATPを最終濃度1
mMまで加えた後、16℃で18時間インキュベートし
てプラスミドベクターにDNA断片を挿入した。得られ
た組換えDNAをコンピテントセル法により大腸菌JM
109株に導入して形質転換体とし、これをアンピシリ
ンを50μg/ml含むL−ブロス培地(pH7.2)
に接種し、37℃で18時間培養した後、培養物から菌
体を分離し、通常のアルカリ−SDS法により組換えD
NAを採取した。ジデオキシ法により調べたところ、こ
の組換えDNAは、配列表における配列番号14に示す
塩基配列の第5,150乃至6,709番目に相当する
塩基配列のDNA断片を含んでいた。
【0029】
【実施例1−2】 〈部分塩基配列の決定〉実施例1−1における第一回目
のPCR反応において、アンチセンスプライマーとし
て、実施例1−1で得たDNA断片の塩基配列に基づき
化学合成した5´−GTAAGTTTTCACCTTC
CAACTGTAGAGTCC−3´で表される塩基配
列のオリゴヌクレオチドを用いた以外は同様にしてPC
R反応させた。
【0030】滅菌蒸留水で反応物を100倍希釈した
後、その1μlをとり、これをアンチセンスプライマー
として、実施例1−1で得たDNA断片の塩基配列に基
づき化学合成した5´−GGGATCAAGTAGTG
ATCAGAAGCAGCACAC−3´で表される塩
基配列のオリゴヌクレオチドを用いた以外は実施例1−
1における第二回目のPCR反応と同様に反応させて当
該染色体DNAにおける別のDNA断片を増幅した。
【0031】このDNA断片を実施例1−1と同様にプ
ラスミドベクターに挿入して組換えDNAとし、これを
大腸菌で複製した後、採取し、分析したところ、本例の
組換えDNAは、配列表における配列番号14に示す塩
基配列の第1乃至5,228番目に相当する塩基配列の
DNA断片を含んでいた。
【0032】
【実施例1−3】 〈部分塩基配列の決定〉クローンテック製ヒト胎盤由来
のゲノムDNAを0.5μgとり、これに10×LA
PCR反応溶液を5μlと2.5mM dNTP混液を
8μlそれぞれ加え、さらに、5単位/μl TAKA
RA LA Taqポリメラーゼと1.1μg/μl
TaqStart Antibodyの1:1の混液を
1μl、センスプライマーとして配列表における配列番
号2に示す塩基配列の第46乃至75番目の配列に基づ
き化学合成した5´−CCTGGCTGCCAACTC
TGGCTGCTAAAGCGG−3´で表される塩基
配列のオリゴヌクレオチドを10ピコモル、アンチセン
スプライマーとして配列表における配列番号2に示す塩
基配列の第210乃至242番目の配列に基づき化学合
成した5´−GTATTGTCAATAAATTTCA
TTGCCACAAAGTTG−3´で表される塩基配
列のオリゴヌクレオチドを10ピコモルそれぞれ加え、
滅菌蒸留水で全量を50μlとした。この混合物を94
℃で1分間インキュベートした後、先ず、98℃で20
秒間、72℃で10分間インキュベートするサイクルを
5回繰返して反応させ、次に、98℃で20秒間、68
℃で10分間インキュベートするサイクルをサイクルを
重ねるたびに時間を5秒ずつ延長しながら、25回繰返
しPCR反応させ、その後、72℃でさらに10分間反
応させて当該染色体DNAにおけるさらに別のDNA断
片を増幅した。なお、PCR反応試薬としては、主とし
て、宝酒造製『TAKARA LA PCR Kit
Version2』を用いた。
【0033】このDNA断片を実施例1−1と同様にプ
ラスミドベクターに挿入して組換えDNAとし、これを
大腸菌で複製した後、採取し、分析したところ、本例の
組換えDNAは、配列表における配列番号14に示す塩
基配列の第6,640乃至15,671番目に相当する
塩基配列のDNA断片を含んでいた。
【0034】
【実施例1−4】 〈部分塩基配列の決定〉実施例1−3におけるPCR反
応において、センスプライマーとして、配列表における
配列番号2に示す塩基配列の第175乃至207番目の
配列に基づき化学合成した5´−AAGATGGCTG
CTGAACCAGTAGAAGACAATTGC−3
´で表される塩基配列のオリゴヌクレオチドを、また、
アンチセンスプライマーとして、配列表における配列番
号2に示す塩基配列の第334乃至360番目の配列に
基づき化学合成した5´−TCCTTGGTCAATG
AAGAGAACTTGGTC−3´で表される塩基配
列のオリゴヌクレオチドを用い、さらに、PCR反応の
サイクルを、先ず、94℃で1分間インキュベートした
後、98℃で20秒間、68℃で3分間のサイクルを3
0回繰返して反応させ、次に、72℃で10分間のサイ
クルを1回だけ反応させた以外は同様にして当該染色体
DNAにおけるさらに別のDNA断片を増幅した。
【0035】このDNA断片を実施例1−1と同様にプ
ラスミドベクターに挿入して組換えDNAとし、これを
大腸菌で複製した後、採取し、分析したところ、本例の
組換えDNAは、配列表における配列番号14に示す塩
基配列の第15,604乃至20,543番目に相当す
る塩基配列のDNA断片を含んでいた。
【0036】
【実施例1−5】 〈部分塩基配列の決定〉実施例1−4におけるPCR反
応において、センスプライマーとして、配列表における
配列番号2に示す塩基配列の第273乃至305番目の
配列に基づき化学合成した5´−CCTGGAATCA
GATTACTTTGGCAAGCTTGAATC−3
´で表される塩基配列のオリゴヌクレオチドを、また、
アンチセンスプライマーとして、配列表における配列番
号2に示す塩基配列の第500乃至531番目の配列に
基づき化学合成した5´−GGAAATAATTTTG
TTCTCACAGGAGAGAGTTG−3´で表さ
れる塩基配列のオリゴヌクレオチドを用いた以外は同様
にして当該染色体DNAにおけるさらに別のDNA断片
を増幅した。
【0037】このDNA断片を実施例1−1と同様にプ
ラスミドベクターに挿入して組換えDNAとし、これを
大腸菌で複製した後、採取し、分析したところ、本例の
組換えDNAは、配列表における配列番号14に示す塩
基配列の第20,456乃至22,048番目に相当す
る塩基配列のDNA断片を含んでいた。
【0038】
【実施例1−6】 〈部分塩基配列の決定〉実施例1−4におけるPCR反
応において、センスプライマーとして、配列表における
配列番号2に示す塩基配列の第449乃至479番目の
配列に基づき化学合成した5´−GCCAGCCTAG
AGGTATGGCTGTAACTATCTC−3´で
表される塩基配列のオリゴヌクレオチドを、また、アン
チセンスプライマーとして、配列表における配列番号2
に示す塩基配列の第745乃至777番目の配列に基づ
き化学合成した5´−GGCATGAAATTTTAA
TAGCTAGTCTTCGTTTTG−3´で表され
る塩基配列のオリゴヌクレオチドを用いた以外は同様に
して当該染色体DNAにおけるさらに別のDNA断片を
増幅した。
【0039】このDNA断片を実施例1−1と同様にプ
ラスミドベクターに挿入して組換えDNAとし、これを
大腸菌で複製した後、採取し、分析したところ、本例の
組換えDNAは、配列表における配列番号14に示す塩
基配列の第21,996乃至27,067番目に相当す
る塩基配列のDNA断片を含んでいた。
【0040】
【実施例1−7】 〈部分塩基配列の決定〉実施例1−2における第一回目
のPCR反応において、センスプライマーとして、配列
表における配列番号2に示す塩基配列の第575乃至6
04番目の配列に基づき化学合成した5´−GTGAC
ATCATATTCTTTCAGAGAAGTGTCC
−3´で表される塩基配列のオリゴヌクレオチドを用い
た以外は同様にしてPCR反応させた。
【0041】滅菌蒸留水で反応物を100倍希釈した
後、その1μlをとり、これをセンスプライマーとし
て、配列表における配列番号2に示す塩基配列の第62
4乃至654番目の配列に基づき化学合成した5´−G
CAATTTGAATCTTCATCATACGAAG
GATAC−3´で表される塩基配列のオリゴヌクレオ
チドを用いた以外は実施例1−2における第二回目のP
CR反応と同様にして当該染色体DNAにおけるさらに
別のDNA断片を増幅した。
【0042】このDNA断片を実施例1−1と同様にし
てプラスミドベクターに挿入して組換えDNAとし、こ
れを大腸菌で複製した後、採取し、分析したところ、本
例の組換えDNAは、配列表における配列番号14に示
す塩基配列の第26,914乃至28,994番目に相
当する塩基配列のDNA断片を含んでいた。
【0043】
【実施例1−8】 〈全塩基配列の決定〉同じ特許出願人が特開平8−19
3098号公報に開示したように、当該ポリペプチドを
コードすることがすでに判明している配列表における配
列番号2に示す塩基配列と、実施例1−1乃至1−7に
より、この発明で初めて明らかになった部分塩基配列を
それぞれ比較したところ、当該染色体DNAは、ヒトに
おいて、配列表における配列番号14に示す塩基配列を
含んでなることが判明した。配列番号2に示す塩基配列
が僅か471塩基対からなるのに対して、配列番号14
に示す塩基配列は28,994塩基対と甚だ大きく、こ
のことは、配列番号14に示す塩基配列が真核細胞に特
有のイントロンを含むことを示唆している。
【0044】そこで、配列表における配列番号14に示
す塩基配列において、配列番号2に示す塩基配列の一
部、すなわち、エクソンがどの領域に位置しているか、
さらには、イントロンに固有の供与部位であるGTと受
容部位であるAGがどの領域に位置しているかを調べ
た。その結果、配列番号14に示す塩基配列は少なくと
も5種類のイントロンを含んでなり、個々のイントロン
の塩基配列は配列番号14に示す塩基配列の5´末端か
ら3´末端に向かって、配列表における配列番号10、
11、12、8、9に示す塩基配列の順序で位置してい
ることが判明した。したがって、それらのイントロンに
おける隣接するイントロン間に位置する配列はエクソン
ということになり、個々のエクソンは配列表における配
列番号14に示す塩基配列の5´末端から3´末端に向
かって、配列表における配列番号5、6、3、4、7に
示す塩基配列の順序で位置していることになる。なお、
配列番号7に示す塩基配列は、エクソン以外に、3´末
端の非翻訳領域を含んでいる。
【0045】以上の考察に基づき決定した配列の特徴
を、配列表における配列番号14に併記した。なお、同
じ特許出願人が特願平8−269105号明細書に開示
したように、当該ポリペプチドは、ヒト細胞において、
配列表における配列番号1に示すアミノ酸配列に見られ
るように、N末端にメチオニンではなく、チロシンを有
するポリペプチドとして産生される。このことは、当該
ポリペプチドをコードするヒトの染色体DNAにおいて
は、当該ポリペプチドをコードする領域の5´末端側に
リーダーペプチド領域が連結していることを示唆してい
る。そこで、配列表における配列番号14に示す塩基配
列においては、その第20,469乃至20,471番
目のTACの5´末端側に位置するアミノ酸36個をリ
ーダーペプチドとして記載している。
【0046】
【実施例2】 〈発現用組換えDNA pBGHuGFの調製〉実施例
1−4の方法により得た3ng/50μl DNA断片
を0.06ngと実施例1−5の方法により得たDNA
断片を0.02ngとり、10×LAPCR反応溶液を
5μl、2.5mM dNTP混液を8μlそれぞれ加
え、さらに、5単位/μl TAKARA LA Ta
qポリメラーゼと1.1μg/μl TaqStart
Antibodyの1:1の混液を1μl、センスプ
ライマーとして実施例1−4のDNA断片の塩基配列に
基づき化学合成した5´−TCCGAAGCTTAAG
ATGGCTGCTGAACCAGTA−3´で表され
る塩基配列のオリゴヌクレオチドを10ピコモルと、ア
ンチセンスプライマーとして、実施例1−5のDNA断
片の塩基配列に基づき化学合成した5´−GGAAAT
AATTTTGTTCTCACAGGAGAGAGTT
G−3´で表される塩基配列のオリゴヌクレオチドを1
0ピコモルそれぞれ加え、滅菌蒸留水で全量を50μl
とした。混液を94℃で1分間インキュベートした後、
先ず、98℃で20秒間、72℃で7分間インキュベー
トするサイクルを5回繰返し、次に、98℃で20秒
間、68℃で7分間インキュベートするサイクルを25
回繰返してPCR反応させた。そして、反応物を常法に
したがって制限酵素HindIII及びSphIにより
切断し、HindIII切断部位とSphI切断部位を
両端に有する約5,900塩基対のDNA断片を得た。
【0047】別途、実施例1−5の方法により得たDN
A断片を0.02ngと実施例1−6の方法により得た
DNA断片を0.06ngそれぞれとり、これに実施例
1−6のDNA断片の塩基配列に基づき化学合成した5
´−ATGTAGCGGCCGCGGCATGAAAT
TTTAATAGCTAGTC−3´で表される塩基配
列のオリゴヌクレオチドをアンチセンスプライマーとし
て、また、センスプライマーとして、実施例1−5のD
NA断片の塩基配列に基づき化学合成した5´−CCT
GGAATCAGATTACTTTGGCAAGCTT
GAATC−3´で表される塩基配列のオリゴヌクレオ
チドを用いた以外は上記と同様にPCR反応させた。そ
して、反応物を常法にしたがって制限酵素NotI及び
SphIにより切断し、NotI切断部位とSphI切
断部位を両端に有する約5,600塩基対の別のDNA
断片を得た。
【0048】次に、常法にしたがって、サイトメガロウ
イルスプロモーター含んでなるインビトロジェン製プラ
スミドベクターpRc/CMVを制限酵素HindII
IとNotIで切断し、得られた約5,500塩基対の
ベクター断片に上記で得られた約5,900塩基対のD
NA断片と約5,600塩基対のDNA断片をそれぞれ
加え、T4 DNAリガーゼを作用させて2種類のDN
A断片をプラスミドベクターpRc/CMVに挿入し
た。得られた組換えDNAを用い、実施例1−1と同様
にして大腸菌JM109株を形質転換した後、コロニー
ハイブリダイゼーション法によりプラスミドベクターp
RC/CMVが導入された形質転換体のコロニーを選別
した。この組換えDNAは『pBGHuGF』と命名さ
れ、この組換えDNAにおいては、図1に示すように、
当該ポリペプチドをコードする染色体DNAである配列
表における配列番号13に示す塩基配列のDNAが制限
酵素HindIIIによる切断部位の下流に連結されて
いた。
【0049】
【実施例3】 〈CHO細胞を宿主とする形質転換体の調製〉常法にし
たがって、チャイニーズ・ハムスター卵巣由来のCHO
−K1細胞(ATCC CCL61)を10%(v/
v)ウシ胎児血清を補足したHam’sF12培地(p
H7.2)に接種し、増殖させた。増殖細胞を採取し、
燐酸緩衝食塩水(以下、「PBS」と略記する。)で洗
浄した後、細胞密度1×107個/mlになるようにP
BSに浮遊させた。
【0050】次に、実施例2の方法により得た組換えD
NA pBGHuGFを10μgとり、上記細胞浮遊液
の0.8mlとともにキュベットにとり、10分間氷冷
した。キュベットをバイオラッド製エレクトロポレーシ
ョン装置『ジーンパルサー』に装着し、放電パルスを1
回印加した後、ただちにキュベットを取外し、10分間
氷冷した。細胞浮遊液をキュベットから取出し、10%
(v/v)ウシ胎児血清を補足したHam’s F12
培地(pH7.2)に接種し、5% CO2 雰囲気下、
37℃で3日間培養した後、培養培地にG−418を最
終濃度400μg/mlになるように加え、同じ条件で
さらに3週間培養した。生成した100個余りのコロニ
ーから48個を選別し、その一部を400μg/ml
G−418を含み、10%(v/v)ウシ胎児血清を補
足したHam’s F12培地(pH7.2)を分注し
ておいた培養プレートに接種し、上記と同様に1週間培
養した。その後、培養プレートの各ウェルに5.1mM
塩化マグネシウム、0.5%(w/v)デオキシコール
酸ナトリウム、1%(w/v)ノニデットP−40、1
0μg/mlアプロチニン及び0.1%(w/v)SD
Sをそれぞれ含む10mMトリス−塩酸緩衝液(pH
8.5)を加えて細胞を溶解した。
【0051】細胞溶解物をそれぞれ50μlとり、グリ
セロールを1ml加え、37℃で1時間インキュベート
した後、SDS−ポリアクリルアミドゲル電気泳動によ
り細胞溶解物中のポリペプチドを分離した。次に、分離
したポリペプチドを常法にしたがってニトロセルロース
膜に移取り、別途調製した、同じ出願人による特開平8
−231598号公報に開示されたハイブリドーマH−
1株の培養上清に1時間浸漬した後、0.05%(v/
v)ツイーン20を含む50mMトリス−塩酸緩衝液
(pH7.5)で洗浄して過剰のモノクローナル抗体を
除去した。そして、ニトロセルロース膜を西洋ワサビ由
来のパーオキシダーゼで標識したウサギ由来の抗マウス
イムノグロブリン抗体を含むPBSに1時間浸漬した
後、0.05%(v/v)ツイーン20を含む50mM
トリス−塩酸緩衝液(pH7.5)で洗浄し、0.00
5%(v/v)過酸化水素と0.3mg/mlジアミノ
ベンジジンを含む50mMトリス−塩酸緩衝液(pH
7.5)に浸漬して発色させた。その発色状況に基づ
き、当該ポリペプチドの産生能が高い形質転換体のクロ
ーンを選別し、『BGHuGF』と命名した。
【0052】
【実施例4】 〈形質転換体によるポリペプチドの製造と理化学的性
質〉
【0053】
【実施例4−1】 〈形質転換体によるポリペプチドの製造〉実施例3の方
法により得られた形質転換体BGHuGFを400μg
/mlG−418を含み、10%(v/v)ウシ胎児血
清を補足したHam’s F12培地(pH7.2)に
接種し、5% CO2 雰囲気下、37℃で1週間培養し
て増殖させた。増殖細胞を採取し、PBSで洗浄した
後、マシュー・ジェー・コスラら『プロシーディングス
・オブ・ナショナル・アカデミー・オブ・サイエンシー
ズ・ユー・エス・エー』、第86巻、5,227乃至
5,231頁(1989年)に記載された方法に準じて
10mM塩化カリウム、0.1mMエチレンジアミン四
酢酸二ナトリウム塩を含む10倍容の氷冷20mMヘペ
ス緩衝液(pH7.4)で洗浄し、3倍容の新鮮な同一
緩衝液中、氷冷下で20分間静置し、−80℃で凍結し
た後、解凍して細胞を破砕し、破砕物を遠心分離し、上
清を採取した。
【0054】別途、ヒト急性単球性白血病由来のTHP
−1細胞(ATCC TIB202)を同様に培養し、
破砕し、遠心分離して得られた上清の適量を上記で得ら
れた形質転換体BGHuGFの上清に加え、37℃で3
時間インキュベートして反応させた。反応物をあらかじ
め10mM燐酸緩衝液(pH6.6)により平衡化して
おいたファルマシア製イオン交換クロマトグラフィー用
ゲル『DEAE−セファロース』のカラムに負加し、カ
ラムを10mM燐酸緩衝液(pH6.6)で洗浄した
後、塩化ナトリウム濃度が0Mから0.5Mまで段階的
に上昇する10mM燐酸緩衝液(pH6.6)を通液
し、塩化ナトリウム濃度が0.2M付近で溶出した画分
を採取した。この画分を10mM燐酸緩衝液(pH6.
8)に対して透析した後、あらかじめ10mM燐酸緩衝
液(pH6.8)により平衡化しておいたトーソー製イ
オン交換クロマトグラフィー用ゲル『DEAE 5P
W』のカラムに負加し、0Mから0.5Mに直線的に上
昇する塩化ナトリウムの濃度勾配下、カラムに10mM
燐酸緩衝液(pH6.8)を通液し、塩化ナトリウム濃
度が0.2乃至0.3M付近で溶出した画分を採取し
た。
【0055】この新たに得られた画分を合一し、PBS
に対して透析する一方、同じ特許出願人による特開平8
−231598号公報に記載された方法にしたがってモ
ノクローナル抗体を用いるイムノアフィニティークロマ
トグラフィー用ゲルを調製し、これをプラスチック製円
筒管内部にカラム状に充填し、PBSで洗浄した後、上
記透析内液をカラムに負加した。カラムに100mMグ
リシン−塩酸緩衝液(pH2.5)を通液し、得られる
溶出画分から免疫担当細胞においてIFN−γの産生を
誘導するポリペプチドを含む画分を採取し、滅菌蒸留水
に対して透析し、膜濾過により濃縮した後、凍結乾燥し
て精製ポリペプチドの固状物を培養物1l当り15mg
の収率で得た。
【0056】
【参考例】
〈大腸菌での発現〉同じ特許出願人による特開平8−1
93098号公報に開示され、宿主としての大腸菌に配
列表に配列番号2に示す塩基配列を含むcDNAを導入
してなる形質転換体pKHuGFをアンピシリンを50
μg/ml含むT−ブロス培地(pH7.2)に接種
し、37℃で18時間通気撹拌培養した。遠心分離によ
り培養物から菌体を採取し、139mM塩化ナトリウム
/7mM燐酸水素ナトリウム/3mM燐酸水素二ナトリ
ウム混液(pH7.2)に浮遊させ、常法にしたがって
超音波を印加して菌体を破砕した。破砕物を遠心分離
し、上清を実施例4−1の方法に準じて精製したとこ
ろ、精製ポリペプチドの固状物が培養物1l当り5mg
の収率で得られた。
【0057】ポリペプチドの収量に着目して本参考例と
実施例4−1を比較すると、当該ポリペプチドをコード
する染色体DNAを哺乳類由来の宿主細胞に導入してな
る形質転換体を用いると、培養物単位量当りのポリペプ
チド産生が著しく高まることを示している。
【0058】
【実施例4−2】 〈ポリペプチドの理化学的性質〉
【0059】
【実施例4−2(a)】 〈生理作用〉ヘパリン加注射器により健常者から血液を
採取し、血清無含有のRPMI−1640培地(pH
7.4)により2倍希釈した。血液をファルマシア製フ
ィコール上に重層し、遠心分離して採取したリンパ球を
10%(v/v)ウシ胎児血清を補足したRPMI−1
640培地(pH7.4)により洗浄した後、新鮮な同
一培地を細胞密度5×106 個/mlになるように浮遊
させ、96ウェルマイクロプレートに0.15ml/ウ
ェルずつ分注した。
【0060】別途、実施例4−1の方法により得たポリ
ペプチドを10%(v/v)ウシ胎児血清を補足したR
PMI−1640培地(pH7.4)により適宜濃度に
希釈して上記マイクロプレートに0.05ml/ウェル
ずつ分注し、2.5μg/mlコンカナバリンAを含む
新鮮な同一培地を0.05ml/ウェル加えた後、5%
CO2 インキュベーター中、37℃で24時間培養し
た。培養後、各ウェルから培養上清を0.1mlずつ採
取し、通常の酵素免疫測定法によりIFN−γを測定し
た。同時に、実施例4−1の方法により得たポリペプチ
ドに代えて参考例の方法により得たポリペプチドを用い
る系と、ポリペプチドを省略する系を設け、両系を上記
と同様に処置して対照とした。結果を表1に示す。な
お、表1中のIFN−γは、米国国立衛生研究所(NI
H)から入手したIFN−γ標準品(Gg23−901
−530)に基づき国際単位(IU)に換算して表示さ
れている。
【0061】
【表1】
【0062】表1の結果は、当該ポリペプチドを作用さ
せると、免疫担当細胞としてのリンパ球がIFN−γを
産生したことを示している。
【0063】さらに注目すべきは、実施例4−1の方法
により得たポリペプチドは、参考例の方法により得たポ
リペプチドと比較して、免疫担当細胞におけるIFN−
γの産生が高いことである。このことと、参考例で述べ
たポリペプチド産生の違いを併せ考えると、同じアミノ
酸配列をコードするという観点からみると実質的に同一
のDNAと見做し得る場合であっても、そのDNAがc
DNAであって、これを宿主微生物に導入してなる形質
転換体と、この発明の染色体DNAを哺乳類由来の宿主
細胞に導入してなる形質転換体とでは、DNAの発現効
率のみならず、宿主内酵素によるDNA発現後の修飾な
どにより、生理作用の有意に相違するポリペプチドが産
生すると推定される。
【0064】
【実施例4−2(b)】 〈分子量〉実施例4−1の方法により得たポリペプチド
をユー・ケー・レムリが『ネイチャー』、第227巻、
680乃至685頁(1970年)に報告している方法
に準じて、還元剤としての2%(w/v)ジチオトレイ
トール存在下でSDS−ポリアクリルアミドゲル電気泳
動したところ、分子量約18,000乃至19,500
ダルトンに相当する位置にIFN−γ誘導能ある蛋白質
の主バンドが観察された。なお、このときの分子量マー
カーは、ウシ血清アルブミン(67,000ダルト
ン)、オボアルブミン(45,000ダルトン)、カー
ボニックアンヒドロラーゼ(30,000ダルトン)、
大豆トリプシンインヒビター(20,100ダルトン)
及びα−ラクトアルブミン(14,000ダルトン)で
あった。
【0065】
【実施例4−2(c)】 〈N末端アミノ酸配列〉パーキン・エルマー製プロテイ
ン・シーケンサー『473A型』を用い、常法にしたが
って分析したところ、実施例4−1の方法により得たポ
リペプチドは、そのN末端に配列表における配列番号1
5に示すアミノ酸配列を有していた。
【0066】この結果と、SDS−ポリアクリルアミド
ゲル電気泳動において分子量約18,000乃至19,
500ダルトンに相当する位置に主たるバンドを示すと
いう知見、さらには、配列表における配列番号1に示す
アミノ酸配列から計算される分子量が18,199ダル
トンであることを総合的に判断すると、実施例4−1の
方法により得たポリペプチドは配列表における配列番号
6に示すアミノ酸配列を有すると結論される。
【0067】
【発明の効果】以上説明したように、この発明は、免疫
担当細胞においてIFN−γの産生を誘導するポリペプ
チドをコードする染色体DNAの発見に基づくものであ
る。この発明の染色体DNAは、哺乳類由来の宿主細胞
に導入すると、当該ポリペプチドを効率的に発現する。
しかも、そのポリペプチドは、cDNAを大腸菌で発現
させて得られるポリペプチドと比較して、生理活性が高
い特徴がある。したがって、この発明の染色体DNA
は、組換えDNA技術により、免疫担当細胞においてI
FN−γの産生を誘導するポリペプチドを製造するのに
極めて有用である。なお、この発明の染色体DNAは、
ウイルス性疾患、細菌感染症、悪性腫瘍及び免疫疾患を
始めとする種々の疾患の遺伝子療法にも有用である。
【0068】この発明は斯くも顕著な効果を奏する発明
であり、斯界に貢献すること誠に多大な、意義のある発
明であると言える。
【0069】
【配列表】
配列番号:1 配列の長さ:157 配列の型:アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド 配列 Tyr Phe Gly Lys Leu Glu Ser Lys Leu Ser Val Ile Arg Asn Leu Asn 1 5 10 15 Asp Gln Val Leu Phe Ile Asp Gln Gly Asn Arg Pro Leu Phe Glu Asp 20 25 30 Met Thr Asp Ser Asp Cys Arg Asp Asn Ala Pro Arg Thr Ile Phe Ile 35 40 45 Ile Ser Met Tyr Lys Asp Ser Gln Pro Arg Gly Met Ala Val Thr Ile 50 55 60 Ser Val Lys Cys Glu Lys Ile Ser Xaa Leu Ser Cys Glu Asn Lys Ile 65 70 75 80 Ile Ser Phe Lys Glu Met Asn Pro Pro Asp Asn Ile Lys Asp Thr Lys 85 90 95 Ser Asp Ile Ile Phe Phe Gln Arg Ser Val Pro Gly His Asp Asn Lys 100 105 110 Met Gln Phe Glu Ser Ser Ser Tyr Glu Gly Tyr Phe Leu Ala Cys Glu 115 120 125 Lys Glu Arg Asp Leu Phe Lys Leu Ile Leu Lys Lys Glu Asp Glu Leu 130 135 140 Gly Asp Arg Ser Ile Met Phe Thr Val Gln Asn Glu Asp 145 150 155
【0070】配列番号:2 配列の長さ:1120 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:cDNA to mRNA ハイポセティカル配列:No アンチセンス:No 起源 生物名:ヒト 組織の種類:肝臓 配列の特徴 特徴を表す記号:5´UTR 存在位置:1..177 特徴を決定した方法:E 特徴を表す記号:leader peptide 存在位置:178..285 特徴を決定した方法:S 特徴を表す記号:mat peptide 存在位置:286..756 特徴を決定した方法:S 特徴を表す記号:3´UTR 存在位置:757..1120 特徴を決定した方法:E 配列 GCCTGGACAG TCAGCAAGGA ATTGTCTCCC AGTGCATTTT GCCCTCCTGG CTGCCAACTC 60 TGGCTGCTAA AGCGGCTGCC ACCTGCTGCA GTCTACACAG CTTCGGGAAG AGGAAAGGAA 120 CCTCAGACCT TCCAGATCGC TTCCTCTCGC AACAAACTAT TTGTCGCAGG AATAAAG 177 ATG GCT GCT GAA CCA GTA GAA GAC AAT TGC ATC AAC TTT GTG GCA ATG 225 Met Ala Ala Glu Pro Val Glu Asp Asn Cys Ile Asn Phe Val Ala Met -35 -30 -25 AAA TTT ATT GAC AAT ACG CTT TAC TTT ATA GCT GAA GAT GAT GAA AAC 273 Lys Phe Ile Asp Asn Thr Leu Tyr Phe Ile Ala Glu Asp Asp Glu Asn -20 -15 -10 -5 CTG GAA TCA GAT TAC TTT GGC AAG CTT GAA TCT AAA TTA TCA GTC ATA 321 Leu Glu Ser Asp Tyr Phe Gly Lys Leu Glu Ser Lys Leu Ser Val Ile 1 5 10 AGA AAT TTG AAT GAC CAA GTT CTC TTC ATT GAC CAA GGA AAT CGG CCT 369 Arg Asn Leu Asn Asp Gln Val Leu Phe Ile Asp Gln Gly Asn Arg Pro 15 20 25 CTA TTT GAA GAT ATG ACT GAT TCT GAC TGT AGA GAT AAT GCA CCC CGG 417 Leu Phe Glu Asp Met Thr Asp Ser Asp Cys Arg Asp Asn Ala Pro Arg 30 35 40 ACC ATA TTT ATT ATA AGT ATG TAT AAA GAT AGC CAG CCT AGA GGT ATG 465 Thr Ile Phe Ile Ile Ser Met Tyr Lys Asp Ser Gln Pro Arg Gly Met 45 50 55 60 GCT GTA ACT ATC TCT GTG AAG TGT GAG AAA ATT TCA AYT CTC TCC TGT 513 Ala Val Thr Ile Ser Val Lys Cys Glu Lys Ile Ser Xaa Leu Ser Cys 65 70 75 GAG AAC AAA ATT ATT TCC TTT AAG GAA ATG AAT CCT CCT GAT AAC ATC 561 Glu Asn Lys Ile Ile Ser Phe Lys Glu Met Asn Pro Pro Asp Asn Ile 80 85 90 AAG GAT ACA AAA AGT GAC ATC ATA TTC TTT CAG AGA AGT GTC CCA GGA 609 Lys Asp Thr Lys Ser Asp Ile Ile Phe Phe Gln Arg Ser Val Pro Gly 95 100 105 CAT GAT AAT AAG ATG CAA TTT GAA TCT TCA TCA TAC GAA GGA TAC TTT 657 His Asp Asn Lys Met Gln Phe Glu Ser Ser Ser Tyr Glu Gly Tyr Phe 110 115 120 CTA GCT TGT GAA AAA GAG AGA GAC CTT TTT AAA CTC ATT TTG AAA AAA 705 Leu Ala Cys Glu Lys Glu Arg Asp Leu Phe Lys Leu Ile Leu Lys Lys 125 130 135 140 GAG GAT GAA TTG GGG GAT AGA TCT ATA ATG TTC ACT GTT CAA AAC GAA 753 Glu Asp Glu Leu Gly Asp Arg Ser Ile Met Phe Thr Val Gln Asn Glu 145 150 155 GAC TAGCTATTAA AATTTCATGC CGGGCGCAGT GGCTCACGCC TGTAATCCCA 806 Asp GCCCTTTGGG AGGCTGAGGC GGGCAGATCA CCAGAGGTCA GGTGTTCAAG ACCAGCCTGA 86 6 CCAACATGGT GAAACCTCAT CTCTACTAAA AATACTAAAA ATTAGCTGAG TGTAGTGACG 92 6 CATGCCCTCA ATCCCAGCTA CTCAAGAGGC TGAGGCAGGA GAATCACTTG CACTCCGGAG 98 6 GTAGAGGTTG TGGTGAGCCG AGATTGCACC ATTGCGCTCT AGCCTGGGCA ACAACAGCAA 104 6 AACTCCATCT CAAAAAATAA AATAAATAAA TAAACAAATA AAAAATTCAT AATGTGAAAA 110 6 AAAAAAAAAA AAAA 112 0
【0071】配列番号:3 配列の長さ:135 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:Genomic DNA 配列の特徴 起源 生物名:ヒト 株名:胎盤 配列の特徴 特徴を表す記号:exon 存在位置:1..135 特徴を決定した方法:S 配列 AA AAC CTG GAA TCA GAT TAC TTT GGC AAG CTT GAA TCT AAA TTA TCA 47 Glu Asn Leu Glu Ser Asp Tyr Phe Gly Lys Leu Glu Ser Lys Leu Ser -5 1 5 10 GTC ATA AGA AAT TTG AAT GAC CAA GTT CTC TTC ATT GAC CAA GGA AAT 95 Val Ile Arg Asn Leu Asn Asp Gln Val Leu Phe Ile Asp Gln Gly Asn 15 20 25 CGG CCT CTA TTT GAA GAT ATG ACT GAT TCT GAC TGT AGA G 135 Arg Pro Leu Phe Glu Asp Met Thr Asp Ser Asp Cys Arg Asp 30 35 40
【0072】配列番号:4 配列の長さ:134 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:Genomic DNA 配列の特徴 起源 生物名:ヒト 株名:胎盤 配列の特徴 特徴を表す記号:exon 存在位置:1..134 特徴を決定した方法:S 配列 AT AAT GCA CCC CGG ACC ATA TTT ATT ATA AGT ATG TAT AAA GAT AGC 47 Asp Asn Ala Pro Arg Thr Ile Phe Ile Ile Ser Met Tyr Lys Asp Ser 40 45 50 55 CAG CCT AGA GGT ATG GCT GTA ACT ATC TCT GTG AAG TGT GAG AAA ATT 95 Gln Pro Arg Gly Met Ala Val Thr Ile Ser Val Lys Cys Glu Lys Ile 60 65 70 TCA ACT CTC TCC TGT GAG AAC AAA ATT ATT TCC TTT AAG 134 Ser Thr Leu Ser Cys Glu Asn Lys Ile Ile Ser Phe Lys 80 85
【0073】配列番号:5 配列の長さ:87 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:Genomic DNA 配列の特徴 起源 生物名:ヒト 株名:胎盤 配列の特徴 特徴を表す記号:exon 存在位置:1..87 特徴を決定した方法:S 配列 GAATAAAG ATG GCT GCT GAA CCA GTA GAA GAC AAT TGC ATC AAC TTT GTG 50 Met Ala Ala Glu Pro Val Glu Asp Asn Cys Ile Asn Phe Val -35 -30 -25 GCA ATG AAA TTT ATT GAC AAT ACG CTT TAC TTT ATA G 87 Ala Met Lys Phe Ile Asp Asn Thr Leu Tyr Phe Ile Ala -20 -15 -10
【0074】配列番号:6 配列の長さ:12 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:Genomic DNA 配列の特徴 起源 生物名:ヒト 株名:胎盤 配列の特徴 特徴を表す記号:exon 存在位置:1..12 特徴を決定した方法:S 配列 CT GAA GAT GAT G 12 Ala Glu Asp Asp Glu -10
【0075】配列番号:7 配列の長さ:2167 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:Genomic DNA 配列の特徴 起源 生物名:ヒト 株名:胎盤 配列の特徴 特徴を表す記号:exon + 3´UTR 存在位置:1..2167 特徴を決定した方法:E 配列 GAA ATG AAT CCT CCT GAT AAC ATC AAG GAT ACA AAA AGT GAC ATC ATA 48 Glu Met Asn Pro Pro Asp Asn Ile Lys Asp Thr Lys Ser Asp Ile Ile 85 90 95 100 TTC TTT CAG AGA AGT GTC CCA GGA CAT GAT AAT AAG ATG CAA TTT GAA 96 Phe Phe Gln Arg Ser Val Pro Gly His Asp Asn Lys Met Gln Phe Glu 105 110 115 TCT TCA TCA TAC GAA GGA TAC TTT CTA GCT TGT GAA AAA GAG AGA GAC 144 Ser Ser Ser Tyr Glu Gly Tyr Phe Leu Ala Cys Glu Lys Glu Arg Asp 120 125 130 CTT TTT AAA CTC ATT TTG AAA AAA GAG GAT GAA TTG GGG GAT AGA TCT 192 Leu Phe Lys Leu Ile Leu Lys Lys Glu Asp Glu Leu Gly Asp Arg Ser 135 140 145 ATA ATG TTC ACT GTT CAA AAC GAA GAC TAGCTAT TAAAATTTCA TGCCGGGCGC 246 Ile Met Phe Thr Val Gln Asn Glu Asp 150 155 AGTGGCTCAC GCCTGTAATC CCAGCCCTTT GGGAGGCTGA GGCGGGCAGA TCACCAGAGG 306 TCAGGTGTTC AAGACCAGCC TGACCAACAT GGTGAAACCT CATCTCTACT AAAAATACAA 366 AAAATTAGCT GAGTGTAGTG ACCCATGCCC TCAATCCCAG CTACTCAAGA GGCTGAGGCA 426 GGAGAATCAC TTGCACTCCG GAGGTGGAGG TTGTGGTGAG CCGAGATTGC ACCATTGCGC 486 TCTAGCCTGG GCAACAACAG CAAAACTCCA TCTCAAAAAA TAAAATAAAT AAATAAACAA 546 ATAAAAAATT CATAATGTGA ACTGTCTGAA TTTTTATGTT TAGAAAGATT ATGAGATTAT 606 TAGTCTATAA TTGTAATGGT GAAATAAAAT AAATACCAGT CTTGAAAAAC ATCATTAAGA 666 AATGAATGAA CTTTCACAAA AGCAAACAAA CAGACTTTCC CTTATTTAAG TGAATAAAAT 726 AAAATAAAAT AAAATAATGT TTAAAAAATT CATAGTTTGA AAACATTCTA CATTGTTAAT 786 TGGCATATTA ATTATACTTA ATATAATTAT TTTTAAATCT TTTGGGTTAT TAGTCCTAAT 846 GACAAAAGAT ATTGATATTT GAACTTTCTA ATTTTTAAGA ATATCGTTAA ACCATCAATA 906 TTTTTATAAG GAGGCCACTT CACTTGACAA ATTTCTGAAT TTCCTCCAAA GTCAGTATAT 966 TTTTAAAATT CAGTTTGATC CTGAATCCAG CAATATATAA AAGGGATTAT ATACTCTGGC 1026 CAACTGACAT TCATCCTAGG AATGCAAAGA TGGTTTAATA TCCTAAAATC AATTAACATA 1086 ACATACTATA TTAATAAAGT ATCAAAACAG TATTCTCATC TTTTTTTCTT TTTTCACAAT 1146 TCCTTGGTTA CACTATCATC TCAATAGATG CAGAAAAAGC ATTTGACAAA ATCCAATTCA 1206 TAATAAAAAT TCTCAAACTT GAAAGAGAAC ATCATAAAGG CATCTATGAA AAACCTACAG 1266 CTAATATCAT ACTTAACGAT GAAAAACTGA ATTATTTTAC CCTAAGATCA AGAATAATGC 1326 AAGCATGTCA GCTCTTGCAA CTTCTATTCA ACATTGTACT GGAGGTTCTA GCCAGAGCAA 1386 CCATACAATA AATAAAAATA AAAGGCACCC AGATTAGAAA GGAAGTCTTT ATTTGCAGAC 1446 AACATGGTTC TTTATGCAGA AAACCGTCAG GAATACACAC ACATGTTAGA ACTAATAAGT 1506 TCAGCAAGGT TGCAGGTTGC AATATCAATA TGCAAAAATA CATTGAAGGC TGGGCTCAGT 1566 GGAGATGGCA TGTACCTTTC GTCCCAGCTA CTTGGGAGGC TGAGGTAGGA GGATCACTTG 1626 AGGTGAGGAG TTTGAGGCTA TAGTGCAATG TGATCTTGCC TGTGAATAGC CACTGCACTC 1686 GAGCCTAGGC AACAAAGTGA GACCCCGTCT CCAAAAAAAA AAATGGTATA TTGGTATTTC 1746 TGTATATGAA CAATGAATGA TCTGAAAACA AGAAAATTCC ATTCACGATG GTATTAAAAA 1806 AATAAAATAC AAATAAATTT AGCAAAATAA TTATAAAACT TGTACATCGA AAATTTCAAA 1866 GCACTCTGAG GGAAATTAAA GATGATCTAA ATAATTGGAG AGACACTCTA TGATCACTGA 1926 TTGGAAAATT CATTCAATAT TGTTAAGATA ACAATTGTCC CCAAATTGAT GCATGCATTC 1986 AATTTAGTCT TCATCAAAAT TCCAGCAGGG TTTTTGCAGA AATTGACAAG CTGTACCCAA 2046 AATGTATATG GAAATGAAAA GACCCAGAAG AGCAAATAAT TTTTTAAAAA CAAAGTTGGA 2106 AAACTTTTAC TTCCTAATTT TAAAACTTAC TATAAACCTA AAGTTATCAA GACCATTTAG 2166 T 2167
【0076】配列番号:8 配列の長さ:1334 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:Genomic DNA 配列の特徴 起源 生物名:ヒト 株名:胎盤 配列の特徴 特徴を表す記号:intron 存在位置:1..1334 特徴を決定した方法:E 配列 GTATTTTTTT TAATTCGCAA ACATAGAAAT GACTAGCTAC TTCTTCCCAT TCTGTTTTAC 60 TGCTTACATT GTTCCGTGCT AGTCCCAATC CTCAGATGAA AAGTCACAGG AGTGACAATA 120 ATTTCACTTA CAGGAAACTT TATAAGGCAT CCACGTTTTT TAGTTGGGGT AAAAAATTGG 180 ATACAATAAG ACATTGCTAG GGGTCATGCC TCTCTGAGCC TGCCTTTGAA TCACCAATCC 240 CTTTATTGTG ATTGCATTAA CTGTTTAAAA CCTCTATAGT TGGATGCTTA ATCCCTGCTT 300 GTTACAGCTG AAAATGCTGA TAGTTTACCA GGTGTGGTGG CATCTATCTG TAATCCTAGC 360 TACTTGGGAG GCTCAAGCAG GAGGATTGCT TGAGGCCAGG ACTTTGAGGC TGTAGTACAC 420 TGTGATCGTA CCTGTGAATA GCCACTGCAC TCCAGCCTGG GTGATATACA GACCTTGTCT 480 CTAAAATTAA AAAAAAAAAA AAAAAAAACC TTAGGAAAGG AAATTGATCA AGTCTACTGT 540 GCCTTCCAAA ACATGAATTC CAAATATCAA AGTTAGGCTG AGTTGAAGCA GTGAATGTGC 600 ATTCTTTAAA AATACTGAAT ACTTACCTTA ACATATATTT TAAATATTTT ATTTAGCATT 660 TAAAAGTTAA AAACAATCTT TTAGAATTCA TATCTTTAAA ATACTCAAAA AAGTTGCAGC 720 GTGTGTGTTG TAATACACAT TAAACTGTGG GGTTGTTTGT TTGTTTGAGA TGCAGTTTCA 780 CTCTGTCACC CAGGCTGAAG TGCAGTGCAG TGCAGTGGTG TGATCTCGGC TCACTACAAC 840 CTCCACCTCC CACGTTCAAG CGATTCTCAT GCCTCAGTCT CCCGAGTAGG TGGGATTACA 900 GGCATGCACC ACTTACACCC GGCTAATTTT TGTATTTTTA GTAGAGCTGG GGTTTCACCA 960 TGTTGGCCAG GCTGGTCTCA AACCCCTAAC CTCAAGTGAT CTGCCTGCCT CAGCCTCCCA 1020 AACAAACAAA CAACCCCACA GTTTAATATG TGTTACAACA CACATGCTGC AACTTTTATG 1080 AGTATTTTAA TGATATAGAT TATAAAAGGT TGTTTTTAAC TTTTAAATGC TGGGATTACA 1140 GGCATGAGCC ACTGTGCCAG GCCTGAACTG TGTTTTTAAA AATGTCTGAC CAGCTGTACA 1200 TAGTCTCCTG CAGACTGGCC AAGTCTCAAA GTGGGAACAG GTGTATTAAG GACTATCCTT 1260 TGGTTAAATT TCCGCAAATG TTCCTGTGCA AGAATTCTTC TAACTAGAGT TCTCATTTAT 1320 TATATTTATT TCAG 1334
【0077】配列番号:9 配列の長さ:4773 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:Genomic DNA 配列の特徴 起源 生物名:ヒト 株名:胎盤 配列の特徴 特徴を表す記号:intron 存在位置:1..4773 特徴を決定した方法:E 配列 GTAAGACTGA GCCTTACTTT GTTTTCAATC ATGTTAATAT AATCAATATA ATTAGAAATA 60 TAACATTATT TCTAATGTTA ATATAAGTAA TGTAATTAGA AAACTCAAAT ATCCTCAGAC 120 CAACCTTTTG TCTAGAACAG AAATAACAAG AAGCAGAGAA CCATTAAAGT GAATACTTAC 180 TAAAAATTAT CAAACTCTTT ACCTATTGTG ATAATGATGG TTTTTCTGAG CCTGTCACAG 240 GGGAAGAGGA GATACAACAC TTGTTTTATG ACCTGCATCT CCTGAACAAT CAGTCTTTAT 300 ACAAATAATA ATGTAGAATA CATATGTGAG TTATACATTT AAGAATAACA TGTGACTTTC 360 CAGAATGAGT TCTGCTATGA AGAATGAAGC TAATTATCCT TCTATATTTC TACACCTTTG 420 TAAATTATGA TAATATTTTA ATCCCTAGTT GTTTTGTTGC TGATCCTTAG CCTAAGTCTT 480 AGACACAAGC TTCAGCTTCC AGTTGATGTA TGTTATTTTT AATGTTAATC TAATTGAATA 540 AAAGTTATGA GATCAGCTGT AAAAGTAATG CTATAATTAT CTTCAAGCCA GGTATAAAGT 600 ATTTCTGGCC TCTACTTTTT CTCTATTATT CTCCATTATT ATTCTCTATT ATTTTTCTCT 660 ATTTCCTCCA TTATTGTTAG ATAAACCACA ATTAACTATA GCTACAGACT GAGCCAGTAA 720 GAGTAGCCAG GGATGCTTAC AAATTGGCAA TGCTTCAGAG GAGAATTCCA TGTCATGAAG 780 ACTCTTTTTG AGTGGAGATT TGCCAATAAA TATCCGCTTT CATGCCCACC CAGTCCCCAC 840 TGAAAGACAG TTAGGATATG ACCTTAGTGA AGGTACCAAG GGGCAACTTG GTAGGGAGAA 900 AAAAGCCACT CTAAAATATA ATCCAAGTAA GAACAGTGCA TATGCAACAG ATACAGCCCC 960 CAGACAAATC CCTCAGCTAT CTCCCTCCAA CCAGAGTGCC ACCCCTTCAG GTGACAATTT 1020 GGAGTCCCCA TTCTAGACCT GACAGGCAGC TTAGTTATCA AAATAGCATA AGAGGCCTGG 1080 GATGGAAGGG TAGGGTGGAA AGGGTTAAGC ATGCTGTTAC TGAACAACAT AATTAGAAGG 1140 GAAGGAGATG GCCAAGCTCA AGCTATGTGG GATAGAGGAA AACTCAGCTG CAGAGGCAGA 1200 TTCAGAAACT GGGATAAGTC CGAACCTACA GGTGGATTCT TGTTGAGGGA GACTGGTGAA 1260 AATGTTAAGA AGATGGAAAT AATGCTTGGC ACTTAGTAGG AACTGGGCAA ATCCATATTT 1320 GGGGGAGCCT GAAGTTTATT CAATTTTGAT GGCCCTTTTA AATAAAAAGA ATGTGGCTGG 1380 GCGTGGTGGC TCACACCTGT AATCCCAGCA CTTTGGGAGG CCGAGGGGGG CGGATCACCT 1440 GAAGTCAGGA GTTCAAGACC AGCCTGACCA ACATGGAGAA ACCCCATCTC TACTAAAAAT 1500 ACAAAATTAG CTGGGCGTGG TGGCATATGC CTGTAATCCC AGCTACTCGG GAGGCTGAGG 1560 CAGGAGAATC TTTTGAACCC GGGAGGCAGA GGTTGCGATG AGCCTAGATC GTGCCATTGC 1620 ACTCCAGCCT GGGCAACAAG AGCAAAACTC GGTCTCAAAA AAAAAAAAAA AAAAGTGAAA 1680 TTAACCAAAG GCATTAGCTT AATAATTTAA TACTGTTTTT AAGTAGGGCG GGGGGTGGCT 1740 GGAAGAGATC TGTGTAAATG AGGGAATCTG ACATTTAAGC TTCATCAGCA TCATAGCAAA 1800 TCTGCTTCTG GAAGGAACTC AATAAATATT AGTTGGAGGG GGGGAGAGAG TGAGGGGTGG 1860 ACTAGGACCA GTTTTAGCCC TTGTCTTTAA TCCCTTTTCC TGCCACTAAT AAGGATCTTA 1920 GCAGTGGTTA TAAAAGTGGC CTAGGTTCTA GATAATAAGA TACAACAGGC CAGGCACAGT 1980 GGCTCATGCC TATAATCCCA GCACTTTGGG AGGGCAAGGC GAGTGTCTCA CTTGAGATCA 2040 GGAGTTCAAG ACCAGCCTGG CCAGCATGGC GATACTCTGT CTCTACTAAA AAAAATACAA 2100 AAATTAGCCA GGCATGGTGG CATGCACCTG TAATCCCAGC TACTCGTGAG CCTGAGGCAG 2160 AAGAATCGCT TGAAACCAGG AGGTGTAGGC TGCAGTGAGC TGAGATCGCA CCACTGCACT 2220 CCAGCCTGGG CGACAGAATG AGACTTTGTC TCAAAAAAAG AAAAAGATAC AACAGGCTAC 2280 CCTTATGTGC TCACCTTTCA CTGTTGATTA CTAGCTATAA AGTCCTATAA AGTTCTTTGG 2340 TCAAGAACCT TGACAACACT AAGAGGGATT TGCTTTGAGA GGTTACTGTC AGAGTCTGTT 2400 TCATATATAT ACATATACAT GTATATATGT ATCTATATCC AGGCTTGGCC AGGGTTCCCT 2460 CAGACTTTCC AGTGCACTTG GGAGATGTTA GGTCAATATC AACTTTCCCT GGATTCAGAT 2520 TCAACCCCTT CTGATGTAAA AAAAAAAAAA AAAAAGAAAG AAATCCCTTT CCCCTTGGAG 2580 CACTCAAGTT TCACCAGGTG GGGCTTTCCA AGTTGGGGGT TCTCCAAGGT CATTGGGATT 2640 GCTTTCACAT CCATTTGCTA TGTACCTTCC CTATGATGGC TGGGAGTGGT CAACATCAAA 2700 ACTAGGAAAG CTACTGCCCA AGGATGTCCT TACCTCTATT CTGAAATGTG CAATAAGTGT 2760 GATTAAAGAG ATTGCCTGTT CTACCTATCC ACACTCTCGC TTTCAACTGT AACTTTCTTT 2820 TTTTCTTTTT TTCTTTTTTT CTTTTTTTTT GAAACGGAGT CTCGCTCTGT CGCCCAGGCT 2880 AGAGTGCAGT GGCACGATCT CAGCTCACTG CAAGCTCTGC CTCCCGGGTT CACGCCATTC 2940 TCCTGCCTCA CCCTCCCAAG CAGCTGGGAC TACAGGCGCC TGCCACCATG CCCAGCTAAT 3000 TTTTTGTATT TTTAGTAGAG ACGGGGTTTC ACCGTGTTAG CCAGGATGGT CTCGATCTCC 3060 TGAACTTGTG ATCCGCCCGC CTCAGCCTCC CAAAGTGCTG GGATTACAGG CGTGAGCCAT 3120 CGCACCCGGC TCAACTGTAA CTTTCTATAC TGGTTCATCT TCCCCTGTAA TGTTACTAGA 3180 GCTTTTGAAG TTTTGGCTAT GGATTATTTC TCATTTATAC ATTAGATTTC AGATTAGTTC 3240 CAAATTGATG CCCACAGCTT AGGGTCTCTT CCTAAATTGT ATATTGTAGA CAGCTGCAGA 3300 AGTGGGTGCC AATAGGGGAA CTAGTTTATA CTTTCATCAA CTTAGGACCC ACACTTGTTG 3360 ATAAAGAACA AAGGTCAAGA GTTATGACTA CTGATTCCAC AACTGATTGA GAAGTTGGAG 3420 ATAACCCCGT GACCTCTGCC ATCCAGAGTC TTTCAGGCAT CTTTGAAGGA TGAAGAAATG 3480 CTATTTTAAT TTTGGAGGTT TCTCTATCAG TGCTTAGGAT CATGGGAATC TGTGCTGCCA 3540 TGAGGCCAAA ATTAAGTCCA AAACATCTAC TGGTTCCAGG ATTAACATGG AAGAACCTTA 3600 GGTGGTGCCC ACATGTTCTG ATCCATCCTG CAAAATAGAC ATGCTGCACT AACAGGAAAA 3660 GTGCAGGCAG CACTACCAGT TGGATAACCT GCAAGATTAT AGTTTCAAGT AATCTAACCA 3720 TTTCTCACAA GGCCCTATTC TGTGACTGAA ACATACAAGA ATCTGCATTT GGCCTTCTAA 3780 GGCAGGGCCC AGCCAAGGAG ACCATATTCA GGACAGAAAT TCAAGACTAC TATGGAACTG 3840 GAGTGCTTGG CAGGGAAGAC AGAGTCAAGG ACTGCCAACT GAGCCAATAC AGCAGGCTTA 3900 CACAGGAACC CAGGGCCTAG CCCTACAACA ATTATTGGGT CTATTCACTG TAAGTTTTAA 3960 TTTCAGGCTC CACTGAAAGA GTAAGCTAAG ATTCCTGGCA CTTTCTGTCT CTCTCACAGT 4020 TGGCTCAGAA ATGAGAACTG GTCAGGCCAG GCATGGTGGC TTACACCTGG AATCCCAGCA 4080 CTTTGGGAGG CCGAAGTGGG AGGGTCACTT GAGGCCAGGA GTTCAGGACC AGCTTAGGCA 4140 ACAAAGTGAG ATACCCCCTG ACCCCTTCTC TACAAAAATA AATTTTAAAA ATTAGCCAAA 4200 TGTGGTGGTG TATACTTACA GTCCCAGCTA CTCAGGAGGC TGAGGCAGGG GGATTGCTTG 4260 AGCCCAGGAA TTCAAGGCTG CAGTGAGCTA TGATTTCACC ACTGCACTTC TGGCTGGGCA 4320 ACAGAGCGAG ACCCTGTCTC AAAGCAAAAA GAAAAAGAAA CTAGAACTAG CCTAAGTTTG 4380 TGGGAGGAGG TCATCATCGT CTTTAGCCGT GAATGGTTAT TATAGAGGAC AGAAATTGAC 4440 ATTAGCCCAA AAAGCTTGTG GTCTTTGCTG GAACTCTACT TAATCTTGAG CAAATGTGGA 4500 CACCACTCAA TGGGAGAGGA GAGAAGTAAG CTGTTTGATG TATAGGGGAA AACTAGAGGC 4560 CTGGAACTGA ATATGCATCC CATGACAGGG AGAATAGGAG ATTCGGAGTT AAGAAGGAGA 4620 GGAGGTCAGT ACTGCTGTTC AGAGATTTTT TTTATGTAAC TCTTGAGAAG CAAAACTACT 4680 TTTGTTCTGT TTGGTAATAT ACTTCAAAAC AAACTTCATA TATTCAAATT GTTCATGTCC 4740 TGAAATAATT AGGTAATGTT TTTTTCTCTA TAG 4773
【0078】配列番号:10 配列の長さ:8835 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:Genomic DNA 配列の特徴 起源 生物名:ヒト 株名:胎盤 配列の特徴 特徴を表す記号:intron 存在位置:1..8835 特徴を決定した方法:E 配列 GTAAGAAATA TCATTCCTCT TTATTTGGAA AGTCAGCCAT GGCAATTAGA GGTAAATAAG 60 CTAGAAAGCA ATTGAGAGGA ATATAAACCA TCTAGCATCA CTACGATGAG CAGTCAGTAT 120 CAACATAAGA AATATAAGCA AAGTCAGAGT AGAATTTTTT TCTTTTATCA GATATGGGAG 180 AGTATCACTT TAGAGGAGAG GTTCTCAAAC TTTTTGCTCT CATGTTCCCT TTACACTAAG 240 CACATCACAT GTTAGCATAA GTAACATTTT TAATTAAAAA TAACTATGTA CTTTTTTAAC 300 AACAAAAAAA AGCATAAAGA GTGACACTTT TTTATTTTTA CAAGTGTTTT AACTGGTTTA 360 ATAGAAGCCA TATAGATCTG CTGGATTCTC ATCTGCTTTG CATTCAGACT ACTGCAATAT 420 TGCACAGAAT GCAGCCTCTG GTAAACTCTG TTGTACACTC ATGAGAGAAT GGGTGAAAAA 480 GACAAATTAC GTCTTAGAAT TATTAGAAAT AGCTTTCACT TTAGGAACTC CCTGAGAATT 540 GCTGCTTTAG AGTGGTAAGA TAAATAAGCT TCTCTTTAAA CGGAATCTCA AGACAGAATC 600 AGTTACATTA AAAGCAAACA AAAAATTTGC CCATGGTTAG TCATCTTGTG AAATCTGCCA 660 CACCTTTGGA CTGGGCTACA ATTGGATAAT ATAGCATTCC CCGAGATAAT TTTCTCTCAC 720 AATTAAGGAA AGGGCTGAAT AAATATCTCT GTTTGAAGTT GAATAACAAA AATTAGGACC 780 CCCTAAATTT TAGGGCTCCT GAAATTCGTC TTTTTGCCTA TATTCAGCTA CTTTACGTTC 840 TATTAAATCT TCTTTCAGGC CAGGTGCACT AGCTCATGCC TAGAATCTCA GGCAGGCCTG 900 AGCCCAGGAA TTTGAGACCA GCCAGGGCAA CACAGTCTCT ACAAAAAAAT AAAAAATTAC 960 CTGGGTGTGT TGGTGCATGC CTGTAGAACT ACTCAGGATG CTGAGGACTG CTTGAGCCCA 1020 GGATAGCCAA ATCTGTGGTG AGTTCAGCCA CTAAACAGAG CGAGACTTTC TCAAAAAAAC 1080 AAACAAAAAA ACAAACAAAC TTCCTTCAAA ATAACTTTTT ATCTGCAATG TTTTCCTATT 1140 GCCTGTGAGA TTAAATTTAC TCTTTTACCT GATTTCCAAA GCCCTCCATA ATCTAATCCG 1200 ACTTTACCTT GTGTTCACTG CAAAATAGCA GGACTGTTCC ACTACAATCC AAAAATCACA 1260 GGTTGGGTGC AGTGGCTCAC TCCTGTAATC CCAACACTTT GGAAGGCCAA GGCAGGTGGA 1320 TTGCTTCAGC TCAGGAGTTC AAGACCAGCC TGGGCAACAT GGCAAAAACC CTGTCTCTCC 1380 AAAACATACA AAAATTAGCC AGATGTGGTA GTATGTGCCT GTAGTCCCAA CTACTCAAAA 1440 GGCTAAGGCA AGAGGATCAC TTGAGCCCAG GAGGTCAAGG CTACAGTGAG CCATGTTTAC 1500 TGTGTCACTG CACTCCAGCC TGGGTGATAG AGCAAGACCA TGTCTCAAAA AAAAAAAAAA 1560 GAAAAGAAAA GAAAAAAACA TCGCTCTATT 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GCCAGAGCCC TTCAGCCTTC TCCCACCCTG 8340 CCTGTACCCT CAGATGGAAG CACTTTTTTA TCATTGTTTC ACCTTTAGCA TTTTGACAAT 8400 GAAGTCACAA ACCTTCAGCC TCTCACCCAT AGGAACCCAC TGGTTGTAAG AGAAGGATGA 8460 AGCCAGTCCT TCCTAAAGGG CACGATTAGA TGTGTTTATG GCATCCTCAG GTGAAACTAT 8520 ATTTATATTG ACAATATATT TATATTTCTC AAGGAATACT AGAATAATGA TTCAGTTCAG 8580 TACTAGGCCA TTTATCTACC CTTTATAATA TTGTTTAATG AGAAAATGCT TTCTATCTTC 8640 CAAATATCTG ATGATTTGTA AGAGAACACT TAAACATGGG TATTCATAAG CTGAAACTTC 8700 TGGCATTTAT TGAATGTCAA GATTGTTCAT CAGTATACTA GGTGATTAAC TGACCACTGA 8760 ACTTGAAGGT AGTATAAAGT AGTAGTAAAA GGTACAATCA TTGTCTCTTA ACAGATGGCT 8820 CTTTGCTTTC ATTAG 8835
【0079】配列番号:11 配列の長さ:1371 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:Genomic DNA 配列の特徴 起源 生物名:ヒト 株名:胎盤 配列の特徴 特徴を表す記号:intron 存在位置:1..1371 特徴を決定した方法:E 配列 GTAAGGCTAA TGCCATAGAA CAAATACCAG GTTCAGATAA ATCTATTCAA TTAGAAAAGA 60 TGTTGTGAGG TGAACTATTA AGTGACTCTT TGTGTCACCA AATTTCACTG TAATATTAAT 120 GGCTCTTAAA AAAATAGTGG ACCTCTAGAA ATTAACCACA ACATGTCCAA GGTCTCAGCA 180 CCTTGTCACA CCACGTGTCC TGGCACTTTA ATCAGCAGTA GCTCACTCTC CAGTTGGCAG 240 TAAGTGCACA TCATGAAAAT CCCAGTTTTC ATGGGAAAAT CCCAGTTTTC ATTGGATTTC 300 CATGGGAAAA ATCCCAGTAC AAAACTGGGT GCATTCAGGA AATACAATTT CCCAAAGCAA 360 ATTGGCAAAT TATGTAAGAG ATTCTCTAAA TTTAGAGTTC CGTGAATTAC ACCATTTTAT 420 GTAAATATGT TTGACAAGTA AAAATTGATT CTTTTTTTTT TTTTCTGTTG CCCAGGCTGG 480 AGTGCAGTGG CACAATCTCT GCTCACTGCA ACCTCCACCT CCTGGGTTCA AGCAATTCTC 540 CTGCCTCAGC CTTCTGAGTA GCTGGGACTA CAGGTGCATC CCGCCATGCC TGGCTAATTT 600 TTGGGTATTT TTACTAGAGA CAGGGTTTTG GCATGTTGTC CAGGCTGGTC TTGGACTCCT 660 GATCTCAGAT GATCCTCCTG GCTCGGGCTC CCAAAGTGCT GGGATTACAG GCATGAACCA 720 CCACACATGG CCTAAAAATT GATTCTTATG ATTAATCTCC TGTGAACAAT TTGGCTTCAT 780 TTGAAAGTTT GCCTTCATTT GAAACCTTCA TTTAAAAGCC TGAGCAACAA AGTGAGACCC 840 CATCTCTACA AAAAACTGCA AAATATCCTG TGGACACCTC CTACCTTCTG TGGAGGCTGA 900 AGCAGGAGGA TCACTTGAGC CTAGGAATTT GAGCCTGCAG TGAGCTATGA TCCCACCCCT 960 ACACTCCAGC CTGCATGACA GTAGACCCTG ACACACACAC ACAAAAAAAA ACCTTCATAA 1020 AAAATTATTA GTTGACTTTT CTTAGGTGAC TTTCCGTTTA AGCAATAAAT TTAAAAGTAA 1080 AATCTCTAAT TTTAGAAAAT TTATTTTTAG TTACATATTG AAATTTTTAA ACCCTAGGTT 1140 TAAGTTTTAT GTCTAAATTA CCTGAGAACA CACTAAGTCT GATAAGCTTC ATTTTATGGG 1200 CCTTTTGGAT GATTATATAA TATTCTGATG AAAGCCAAGA CAGACCCTTA AACCATAAAA 1260 ATAGGAGTTC GAGAAAGAGG AGTAGCAAAA GTAAAAGCTA GAATGAGATT GAATTCTGAG 1320 TCGAAATACA AAATTTTACA TATTCTGTTT CTCTCTTTTT CCCCCTCTTA G 1371
【0080】配列番号:12 配列の長さ:3383 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:Genomic DNA 配列の特徴 起源 生物名:ヒト 株名:胎盤 配列の特徴 特徴を表す記号:intron 存在位置:1..3383 特徴を決定した方法:E 配列 GTAAAGTAGA AATGAATTTA TTTTTCTTTG CAAACTAAGT ATCTGCTTGA GACACATCTA 60 TCTCACCATT GTCAGCTGAG GAAAAAAAAA AATGGTTCTC ATGCTACCAA TCTGCCTTCA 120 AAGAAATGTG GACTCAGTAG CACAGCTTTG GAATGAAGAT GATCATAAGA GATACAAAGA 180 AGAACCTCTA GCAAAAGATG CTTCTCTATG CCTTAAAAAA TTCTCCAGCT CTTAGAATCT 240 ACAAAATAGA CTTTGCCTGT TTCATTGGTC CTAAGATTAG CATGAAGCCA TGGATTCTGT 300 TGTAGGGGGA GCGTTGCATA GGAAAAAGGG ATTGAAGCAT TAGAATTGTC CAAAATCAGT 360 AACACCTCCT CTCAGAAATG CTTTGGGAAG AAGCCTGGAA GGTTCCGGGT TGGTGGTGGG 420 GTGGGGCAGA AAATTCTGGA AGTAGAGGAG ATAGGAATGG GTGGGGCAAG AAGACCACAT 480 TCAGAGGCCA AAAGCTGAAA GAAACCATGG CATTTATGAT GAATTCAGGG TAATTCAGAA 540 TGGAAGTAGA GTAGGAGTAG GAGACTGGTG AGAGGAGCTA GAGTGATAAA CAGGGTGTAG 600 AGCAAGACGT TCTCTCACCC CAAGATGTGA AATTTGGACT TTATCTTGGA GATAATAGGG 660 TTAATTAAGC ACAATATGTA TTAGCTAGGG TAAAGATTAG TTTGTTGTAA CAAAGACATC 720 CAAAGATACA GTAGCTGAAT AAGATAGAGA ATTTTTCTCT CAAAGAAAGT CTAAGTAGGC 780 AGCTCAGAAG TAGTATGGCT GGAAGCAACC TGATGATATT GGGACCCCCA ACCTTCTTCA 840 GTCTTGTACC CATCATCCCC TAGTTGTTGA TCTCACTCAC ATAGTTGAAA ATCATCATAC 900 TTCCTGGGTT CATATCCCAG TTATCAAGAA AGGGTCAAGA GAAGTCAGGC TCATTCCTTT 960 CAAAGACTCT AATTGGAAGT TAAACACATC AATCCCCCTC ATATTCCATT GACTAGAATT 1020 TAATCACATG GCCACACCAA GTGCAAGGAA ATCTGGAAAA TATAATCTTT ATTCCAGGTA 1080 GCCATATGAC TCTTTAAAAT TCAGAAATAA TATATTTTTA AAATATCATT CTGGCTTTGG 1140 TATAAAGAAT TGATGGTGTG GGGTGAGGAG GCCAAAATTA AGGGTTGAGA GCCTATTATT 1200 TTAGTTATTA CAAGAAATGA TGGTGTCATG AATTAAGGTA GACATAGGGG AGTGCTGATG 1260 AGGAGCTGTG AATGGATTTT AGAAACACTT GAGAGAATCA ATAGGACATG ATTTAGGGTT 1320 GGATTTGGAA AGGAGAAGAA AGTAGAAAAG ATGATGCCTA CATTTTTCAC TTAGGCAATT 1380 TGTACCATTC AGTGAAATAG GGAACACAGG AGGAAGAGCA GGTTTTGGTG TATACAAAGA 1440 GGAGGATGGA TGACGCATTT CGTTTTGGAT CTGAGATGTC TGTGGAACGT CCTAGTGGAG 1500 ATGTCCACAA ACTCTTCTAC ATGTGGTTCT GAGTTCAGGA CACAGATTTG GGCTGGAGAT 1560 AGAGATATTG TAGGCTTATA CATAGAAATG GCATTTGAAT CTATAGAGAT AAAAAGACAC 1620 ATCAGAGGAA ATGTGTAAAG TGAGAGAGGA AAAGCCAAGT ACTGTGCTGG GGGGAATACC 1680 TACATTTAAA GGATGCAGTA GAAAGAAGCT AATAAACAAC AGAGAGCAGA CTAACCAAAA 1740 GGGGAGAAGA AAAACCAAGA GAATTCCACC GACTCCCAGG AGAGCATTTC AAGATTGAGG 1800 GGATAGGTGT TGTGTTGAAT TTTGCAGCCT TGAGAATCAA GGGCCAGAAC ACAGCTTTTA 1860 GATTTAGCAA CAAGGAGTTT GGTGATCTCA GTGAAAGCAG CTTGATGGTG AAATGGAGGC 1920 AGAGGCAGAT TGCAATGAGT GAAACAGTGA ATGGGAAGTG AAGAAATGAT ACAGATAATT 1980 CTTGCTAAAA GCTTGGCTGT TAAAAGGAGG AGAGAAACAA GACTAGCTGC AAAGTGAGAT 2040 TGGGTTGATG GAGCAGTTTT AAATCTCAAA ATAAAGAGCT TTGTGCTTTT TTGATTATGA 2100 AAATAATGTG TTAATTGTAA CTAATTGAGG CAATGAAAAA AGATAATAAT ATGAAAGATA 2160 AAAATATAAA AACCACCCAG AAATAATGAT AGCTACCATT TTGATACAAT ATTTCTACAC 2220 TCCTTTCTAT GTATATATAC AGACACAGAA ATGCTTATAT TTTTATTAAA AGGGATTGTA 2280 CTATACCTAA GCTGCTTTTT CTAGTTAGTG ATATATATGG ACATCTCTCC ATGGCAACGA 2340 GTAATTGCAG TTATATTAAG TTCATGATAT TTCACAATAA GGGCATATCT TTGCCCTTTT 2400 TATTTAATCA ATTCTTAATT GGTGAATGTT TGTTTCCAGT TTGTTGTTGT TATTAACAAT 2460 GTTCCCATAA GCATTCCTGT ACACCAATGT TCACACATTT GTCTGATTTT TTCTTCAGGA 2520 TAAAACCCAG GAGGTAGAAT TGCTGGGTTG ATAGAAGAGA AAGGATGATT GCCAAATTAA 2580 AGCTTCAGTA GAGGGTACAT GCCGAGCACA AATGGGATCA GCCCTAGATA CCAGAAATGG 2640 CACTTTCTCA TTTCCCCTTG GGACAAAAGG GAGAGAGGCA ATAACTGTGC TGCCAGAGTT 2700 AAATTTGTAC GTGGAGTAGC AGGAAATCAT TTGCTGAAAA TGAAAACAGA GATGATGTTG 2760 TAGAGGTCCT GAAGAGAGCA AAGAAAATTT GAAATTGCGG CTATCAGCTA TGGAAGAGAG 2820 TGCTGAACTG GAAAACAAAA GAAGTATTGA CAATTGGTAT GCTTGTAATG GCACCGATTT 2880 GAACGCTTGT GCCATTGTTC ACCAGCAGCA CTCAGCAGCC AAGTTTGGAG TTTTGTAGCA 2940 GAAAGACAAA TAAGTTAGGG ATTTAATATC CTGGCCAAAT GGTAGACAAA ATGAACTCTG 3000 AGATCCAGCT GCACAGGGAA GGAAGGGAAG ACGGGAAGAG GTTAGATAGG AAATACAAGA 3060 GTCAGGAGAC TGGAAGATGT TGTGATATTT AAGAACACAT AGAGTTGGAG TAAAAGTGTA 3120 AGAAAACTAG AAGGGTAAGA GACCGGTCAG AAAGTAGGCT ATTTGAAGTT AACACTTCAG 3180 AGGCAGAGTA GTTCTGAATG GTAACAAGAA ATTGAGTGTG CCTTTGAGAG TAGGTTAAAA 3240 AACAATAGGC AACTTTATTG TAGCTACTTC TGGAACAGAA GATTGTCATT AATAGTTTTA 3300 GAAAACTAAA ATATATAGCA TACTTATTTG TCAATTAACA AAGAAACTAT GTATTTTTAA 3360 ATGAGATTTA ATGTTTATTG TAG 3383
【0081】配列番号:13 配列の長さ:11464 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:Genomic DNA 配列の特徴 起源 生物名:ヒト 株名:胎盤 配列の特徴 特徴を表す記号:5´UTR 存在位置:1..3 特徴を決定した方法:E 特徴を表す記号:leader peptide 存在位置:4..82 特徴を決定した方法:S 特徴を表す記号:intron 存在位置:83..1453 特徴を決定した方法:E 特徴を表す記号:leader peptide 存在位置:1454..1465 特徴を決定した方法:S 特徴を表す記号:intron 存在位置:1466..4848 特徴を決定した方法:E 特徴を表す記号:leader peptide 存在位置:4849..4865 特徴を決定した方法:S 特徴を表す記号:mat peptide 存在位置:4866..4983 特徴を決定した方法:S 特徴を表す記号:intron 存在位置:4984..6317 特徴を決定した方法:E 特徴を表す記号:mat peptide 存在位置:6318..6451 特徴を決定した方法:S 特徴を表す記号:intron 存在位置:6452..11224 特徴を決定した方法:E 特徴を表す記号:mat peptide 存在位置:11225..11443 特徴を決定した方法:S 特徴を表す記号:3´UTR 存在位置:11444..11464 特徴を決定した方法:E 配列 AAG ATG GCT GCT GAA CCA GTA GAA GAC AAT TGC ATC AAC TTT GTG GCA 48 Met Ala Ala Glu Pro Val Glu Asp Asn Cys Ile Asn Phe Val Ala -35 -30 -25 ATG AAA TTT ATT GAC AAT ACG CTT TAC TTT ATA G GTAAGG CTAATGCCAT 98 Met Lys Phe Ile Asp Asn Thr Leu Tyr Phe Ile Ala -20 -15 -10 AGAACAAATA CCAGGTTCAG ATAAATCTAT TCAATTAGAA AAGATGTTGT GAGGTGAACT 158 ATTAAGTGAC 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115 TAC GAA GGA TAC TTT CTA GCT TGT GAA AAA GAG AGA GAC CTT TTT AAA 11377 Tyr Glu Gly Tyr Phe Leu Ala Cys Glu Lys Glu Arg Asp Leu Phe Lys 120 125 130 135 CTC ATT TTG AAA AAA GAG GAT GAA TTG GGG GAT AGA TCT ATA ATG TTC 11425 Leu Ile Leu Lys Lys Glu Asp Glu Leu Gly Asp Arg Ser Ile Met Phe 140 145 150 ACT GTT CAA AAC GAA GAC TAGCTATTAA AATTTCATGC C 11464 Thr Val Gln Asn Glu Asp 155
【0082】配列番号:14 配列の長さ:28994 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:Genomic DNA 配列の特徴 起源 生物名:ヒト 株名:胎盤 配列の特徴 特徴を表す記号:5´UTR 存在位置:1..15606 特徴を決定した方法:E 特徴を表す記号:leader peptide 存在位置:15607..15685 特徴を決定した方法:S 特徴を表す記号:intron 存在位置:15686..17056 特徴を決定した方法:E 特徴を表す記号:leader peptide 存在位置:17057..17068 特徴を決定した方法:S 特徴を表す記号:intron 存在位置:17069..20451 特徴を決定した方法:E 特徴を表す記号:leader peptide 存在位置:20452..20468 特徴を決定した方法:S 特徴を表す記号:mat peptide 存在位置:20469..20586 特徴を決定した方法:S 特徴を表す記号:intron 存在位置:20587..21920 特徴を決定した方法:E 特徴を表す記号:mat peptide 存在位置:21921..22054 特徴を決定した方法:S 特徴を表す記号:intron 存在位置:22055..26827 特徴を決定した方法:E 特徴を表す記号:mat peptide 存在位置:26828..27046 特徴を決定した方法:S 特徴を表す記号:3´UTR 存在位置:27047..28994 特徴を決定した方法:E 配列 ACTTGCCTTA AAAGCTTTGC ATAGGTAGAC AACATTAGAT TAATTTCCTT GCTCACATCT 60 GTTCAAGAAA AATCATTTAA GTTATAAAAT ATAACAAACC TTCTGCATTA TAAGACTGAT 120 GTTTAGAAAT ATAAACATTT TATACATCAC CATTTAAATC TTTCTCCAAG GCTTCATCTT 180 TATAAAATAG TCCGGAAATT TCAGAGAAAG ATGAATCTGA TTTTCCAAGA GAGGACAGCT 240 GTGGACTATC TGGCACTGGA GACTAAATAA AGAAAGCAGG 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TACCTATTGT GATAATGATG GTTTTTCTGA 22283 GCCTGTCACA GGGGAAGAGG AGATACAACA CTTGTTTTAT GACCTGCATC TCCTGAACAA 22323 TCAGTCTTTA TACAAATAAT AATGTAGAAT ACATATGTGA GTTATACATT TAAGAATAAC 22403 ATGTGACTTT CCAGAATGAG TTCTGCTATG AAGAATGAAG CTAATTATCC TTCTATATTT 22463 CTACACCTTT GTAAATTATG ATAATATTTT AATCCCTAGT TGTTTTGTTG CTGATCCTTA 22523 GCCTAAGTCT TAGACACAAG CTTCAGCTTC CAGTTGATGT ATGTTATTTT TAATGTTAAT 22583 CTAATTGAAT AAAAGTTATG AGATCAGCTG TAAAAGTAAT GCTATAATTA TCTTCAAGCC 22643 AGGTATAAAG TATTTCTGGC CTCTACTTTT TCTCTATTAT TCTCCATTAT TATTCTCTAT 22703 TATTTTTCTC TATTTCCTCC ATTATTGTTA GATAAACCAC AATTAACTAT AGCTACAGAC 22763 TGAGCCAGTA AGAGTAGCCA GGGATGCTTA CAAATTGGCA ATGCTTCAGA GGAGAATTCC 22823 ATGTCATGAA GACTCTTTTT GAGTGGAGAT TTGCCAATAA ATATCCGCTT TCATGCCCAC 22883 CCAGTCCCCA CTGAAAGACA GTTAGGATAT GACCTTAGTG AAGGTACCAA GGGGCAACTT 22943 GGTAGGGAGA AAAAAGCCAC TCTAAAATAT AATCCAAGTA AGAACAGTGC ATATGCAACA 23003 GATACAGCCC CCAGACAAAT CCCTCAGCTA TCTCCCTCCA ACCAGAGTGC CACCCCTTCA 23063 GGTGACAATT TGGAGTCCCC ATTCTAGACC TGACAGGCAG CTTAGTTATC AAAATAGCAT 23123 AAGAGGCCTG GGATGGAAGG GTAGGGTGGA AAGGGTTAAG CATGCTGTTA CTGAACAACA 23183 TAATTAGAAG GGAAGGAGAT GGCCAAGCTC AAGCTATGTG GGATAGAGGA AAACTCAGCT 23243 GCAGAGGCAG ATTCAGAAAC TGGGATAAGT CCGAACCTAC AGGTGGATTC TTGTTGAGGG 23303 AGACTGGTGA AAATGTTAAG AAGATGGAAA TAATGCTTGG CACTTAGTAG GAACTGGGCA 23363 AATCCATATT TGGGGGAGCC TGAAGTTTAT TCAATTTTGA TGGCCCTTTT AAATAAAAAG 23423 AATGTGGCTG GGCGTGGTGG CTCACACCTG TAATCCCAGC ACTTTGGGAG GCCGAGGGGG 23483 GCGGATCACC TGAAGTCAGG AGTTCAAGAC CAGCCTGACC AACATGGAGA AACCCCATCT 23543 CTACTAAAAA TACAAAATTA GCTGGGCGTG GTGGCATATG CCTGTAATCC CAGCTACTCG 23603 GGAGGCTGAG GCAGGAGAAT CTTTTGAACC CGGGAGGCAG AGGTTGCGAT GAGCCTAGAT 23663 CGTGCCATTG CACTCCAGCC TGGGCAACAA GAGCAAAACT CGGTCTCAAA AAAAAAAAAA 23723 AAAAAGTGAA ATTAACCAAA GGCATTAGCT TAATAATTTA ATACTGTTTT TAAGTAGGGC 23783 GGGGGGTGGC TGGAAGAGAT CTGTGTAAAT GAGGGAATCT GACATTTAAG CTTCATCAGC 23843 ATCATAGCAA ATCTGCTTCT GGAAGGAACT CAATAAATAT TAGTTGGAGG GGGGGAGAGA 23903 GTGAGGGGTG GACTAGGACC AGTTTTAGCC CTTGTCTTTA ATCCCTTTTC CTGCCACTAA 23963 TAAGGATCTT AGCAGTGGTT ATAAAAGTGG CCTAGGTTCT AGATAATAAG ATACAACAGG 24023 CCAGGCACAG TGGCTCATGC CTATAATCCC AGCACTTTGG GAGGGCAAGG CGAGTGTCTC 24083 ACTTGAGATC AGGAGTTCAA GACCAGCCTG GCCAGCATGG CGATACTCTG TCTCTACTAA 24143 AAAAAATACA AAAATTAGCC AGGCATGGTG GCATGCACCT GTAATCCCAG CTACTCGTGA 24203 GCCTGAGGCA GAAGAATCGC TTGAAACCAG GAGGTGTAGG CTGCAGTGAG CTGAGATCGC 24263 ACCACTGCAC TCCAGCCTGG GCGACAGAAT GAGACTTTGT CTCAAAAAAA GAAAAAGATA 24323 CAACAGGCTA CCCTTATGTG CTCACCTTTC ACTGTTGATT ACTAGCTATA AAGTCCTATA 24383 AAGTTCTTTG GTCAAGAACC TTGACAACAC TAAGAGGGAT TTGCTTTGAG AGGTTACTGT 24443 CAGAGTCTGT TTCATATATA TACATATACA TGTATATATG TATCTATATC CAGGCTTGGC 24503 CAGGGTTCCC TCAGACTTTC CAGTGCACTT GGGAGATGTT AGGTCAATAT CAACTTTCCC 24563 TGGATTCAGA TTCAACCCCT TCTGATGTAA AAAAAAAAAA AAAAAAGAAA GAAATCCCTT 24623 TCCCCTTGGA GCACTCAAGT TTCACCAGGT GGGGCTTTCC AAGTTGGGGG TTCTCCAAGG 24683 TCATTGGGAT TGCTTTCACA TCCATTTGCT ATGTACCTTC CCTATGATGG CTGGGAGTGG 24743 TCAACATCAA AACTAGGAAA GCTACTGCCC AAGGATGTCC TTACCTCTAT TCTGAAATGT 24803 GCAATAAGTG TGATTAAAGA GATTGCCTGT TCTACCTATC CACACTCTCG CTTTCAACTG 24863 TAACTTTCTT TTTTTCTTTT TTTCTTTTTT TCTTTTTTTT TGAAACGGAG TCTCGCTCTG 24923 TCGCCCAGGC TAGAGTGCAG TGGCACGATC TCAGCTCACT GCAAGCTCTG CCTCCCGGGT 24983 TCACGCCATT CTCCTGCCTC ACCCTCCCAA GCAGCTGGGA CTACAGGCGC CTGCCACCAT 25043 GCCCAGCTAA TTTTTTGTAT TTTTAGTAGA GACGGGGTTT CACCGTGTTA GCCAGGATGG 25103 TCTCGATCTC CTGAACTTGT GATCCGCCCG CCTCAGCCTC CCAAAGTGCT GGGATTACAG 25163 GCGTGAGCCA TCGCACCCGG CTCAACTGTA ACTTTCTATA CTGGTTCATC TTCCCCTGTA 25223 ATGTTACTAG AGCTTTTGAA GTTTTGGCTA TGGATTATTT CTCATTTATA CATTAGATTT 25283 CAGATTAGTT CCAAATTGAT GCCCACAGCT TAGGGTCTCT TCCTAAATTG TATATTGTAG 25343 ACAGCTGCAG AAGTGGGTGC CAATAGGGGA ACTAGTTTAT ACTTTCATCA ACTTAGGACC 25403 CACACTTGTT GATAAAGAAC AAAGGTCAAG AGTTATGACT ACTGATTCCA CAACTGATTG 25463 AGAAGTTGGA GATAACCCCG TGACCTCTGC CATCCAGAGT CTTTCAGGCA TCTTTGAAGG 25523 ATGAAGAAAT GCTATTTTAA TTTTGGAGGT TTCTCTATCA GTGCTTAGGA TCATGGGAAT 25583 CTGTGCTGCC ATGAGGCCAA AATTAAGTCC AAAACATCTA CTGGTTCCAG GATTAACATG 25643 GAAGAACCTT AGGTGGTGCC CACATGTTCT GATCCATCCT GCAAAATAGA CATGCTGCAC 25703 TAACAGGAAA AGTGCAGGCA GCACTACCAG TTGGATAACC TGCAAGATTA TAGTTTCAAG 25763 TAATCTAACC ATTTCTCACA AGGCCCTATT CTGTGACTGA AACATACAAG AATCTGCATT 25823 TGGCCTTCTA AGGCAGGGCC CAGCCAAGGA GACCATATTC AGGACAGAAA TTCAAGACTA 25883 CTATGGAACT GGAGTGCTTG GCAGGGAAGA CAGAGTCAAG GACTGCCAAC TGAGCCAATA 25943 CAGCAGGCTT ACACAGGAAC CCAGGGCCTA GCCCTACAAC AATTATTGGG TCTATTCACT 26003 GTAAGTTTTA ATTTCAGGCT CCACTGAAAG AGTAAGCTAA GATTCCTGGC ACTTTCTGTC 26063 TCTCTCACAG TTGGCTCAGA AATGAGAACT GGTCAGGCCA GGCATGGTGG CTTACACCTG 26123 GAATCCCAGC ACTTTGGGAG GCCGAAGTGG GAGGGTCACT TGAGGCCAGG AGTTCAGGAC 26183 CAGCTTAGGC AACAAAGTGA GATACCCCCT GACCCCTTCT CTACAAAAAT AAATTTTAAA 26243 AATTAGCCAA ATGTGGTGGT GTATACTTAC AGTCCCAGCT ACTCAGGAGG CTGAGGCAGG 26303 GGGATTGCTT GAGCCCAGGA ATTCAAGGCT GCAGTGAGCT ATGATTTCAC CACTGCACTT 26363 CTGGCTGGGC AACAGAGCGA GACCCTGTCT CAAAGCAAAA AGAAAAAGAA ACTAGAACTA 26423 GCCTAAGTTT GTGGGAGGAG GTCATCATCG TCTTTAGCCG TGAATGGTTA TTATAGAGGA 26483 CAGAAATTGA CATTAGCCCA AAAAGCTTGT GGTCTTTGCT GGAACTCTAC TTAATCTTGA 26543 GCAAATGTGG ACACCACTCA ATGGGAGAGG AGAGAAGTAA GCTGTTTGAT GTATAGGGGA 26603 AAACTAGAGG CCTGGAACTG AATATGCATC CCATGACAGG GAGAATAGGA GATTCGGAGT 26663 TAAGAAGGAG AGGAGGTCAG TACTGCTGTT CAGAGATTTT TTTTATGTAA CTCTTGAGAA 26723 GCAAAACTAC TTTTGTTCTG TTTGGTAATA TACTTCAAAA CAAACTTCAT ATATTCAAAT 26783 TGTTCATGTC CTGAAATAAT TAGGTAATGT TTTTTTCTCT ATAG GAA ATG AAT CCT 26839 Glu Met Asn Pro 85 CCT GAT AAC ATC AAG GAT ACA AAA AGT GAC ATC ATA TTC TTT CAG AGA 26887 Pro Asp Asn Ile Lys Asp Thr Lys Ser Asp Ile Ile Phe Phe Gln Arg 90 95 100 AGT GTC CCA GGA CAT GAT AAT AAG ATG CAA TTT GAA TCT TCA TCA TAC 26935 Ser Val Pro Gly His Asp Asn Lys Met Gln Phe Glu Ser Ser Ser Tyr 105 110 115 120 GAA GGA TAC TTT CTA GCT TGT GAA AAA GAG AGA GAC CTT TTT AAA CTC 26983 Glu Gly Tyr Phe Leu Ala Cys Glu Lys Glu Arg Asp Leu Phe Lys Leu 125 130 135 ATT TTG AAA AAA GAG GAT GAA TTG GGG GAT AGA TCT ATA ATG TTC ACT 27031 Ile Leu Lys Lys Glu Asp Glu Leu Gly Asp Arg Ser Ile Met Phe Thr 140 145 150 GTT CAA AAC GAA GAC T AGCTATTAAA ATTTCATGCC GGGCGCAGTG GCTCACGCCT 27087 Val Gln Asn Glu Asp 155 GTAATCCCAG CCCTTTGGGA GGCTGAGGCG GGCAGATCAC CAGAGGTCAG GTGTTCAAGA 27147 CCAGCCTGAC CAACATGGTG AAACCTCATC TCTACTAAAA ATACAAAAAA TTAGCTGAGT 27207 GTAGTGACCC ATGCCCTCAA TCCCAGCTAC TCAAGAGGCT GAGGCAGGAG AATCACTTGC 27267 ACTCCGGAGG TGGAGGTTGT GGTGAGCCGA GATTGCACCA TTGCGCTCTA GCCTGGGCAA 27327 CAACAGCAAA ACTCCATCTC AAAAAATAAA ATAAATAAAT AAACAAATAA AAAATTCATA 27387 ATGTGAACTG TCTGAATTTT TATGTTTAGA AAGATTATGA GATTATTAGT CTATAATTGT 27447 AATGGTGAAA TAAAATAAAT ACCAGTCTTG AAAAACATCA TTAAGAAATG AATGAACTTT 27507 CACAAAAGCA AACAAACAGA CTTTCCCTTA TTTAAGTGAA TAAAATAAAA TAAAATAAAA 27567 TAATGTTTAA AAAATTCATA GTTTGAAAAC ATTCTACATT GTTAATTGGC ATATTAATTA 27627 TACTTAATAT AATTATTTTT AAATCTTTTG GGTTATTAGT CCTAATGACA AAAGATATTG 27687 ATATTTGAAC TTTCTAATTT TTAAGAATAT CGTTAAACCA TCAATATTTT TATAAGGAGG 27747 CCACTTCACT TGACAAATTT CTGAATTTCC TCCAAAGTCA GTATATTTTT AAAATTCAGT 27807 TTGATCCTGA ATCCAGCAAT ATATAAAAGG GATTATATAC TCTGGCCAAC TGACATTCAT 27867 CCTAGGAATG CAAAGATGGT TTAATATCCT AAAATCAATT AACATAACAT ACTATATTAA 27927 TAAAGTATCA AAACAGTATT CTCATCTTTT TTTCTTTTTT CACAATTCCT TGGTTACACT 27987 ATCATCTCAA TAGATGCAGA AAAAGCATTT GACAAAATCC AATTCATAAT AAAAATTCTC 28047 AAACTTGAAA GAGAACATCA TAAAGGCATC TATGAAAAAC CTACAGCTAA TATCATACTT 28107 AACGATGAAA AACTGAATTA TTTTACCCTA AGATCAAGAA TAATGCAAGC ATGTCAGCTC 28167 TTGCAACTTC TATTCAACAT TGTACTGGAG GTTCTAGCCA GAGCAACCAT ACAATAAATA 28227 AAAATAAAAG GCACCCAGAT TAGAAAGGAA GTCTTTATTT GCAGACAACA TGGTTCTTTA 28287 TGCAGAAAAC CGTCAGGAAT ACACACACAT GTTAGAACTA ATAAGTTCAG CAAGGTTGCA 28347 GGTTGCAATA TCAATATGCA AAAATACATT GAAGGCTGGG CTCAGTGGAG ATGGCATGTA 28407 CCTTTCGTCC CAGCTACTTG GGAGGCTGAG GTAGGAGGAT CACTTGAGGT GAGGAGTTTG 28467 AGGCTATAGT GCAATGTGAT CTTGCCTGTG AATAGCCACT GCACTCGAGC CTAGGCAACA 28527 AAGTGAGACC CCGTCTCCAA AAAAAAAAAT GGTATATTGG TATTTCTGTA TATGAACAAT 28587 GAATGATCTG AAAACAAGAA AATTCCATTC ACGATGGTAT TAAAAAAATA AAATACAAAT 28647 AAATTTAGCA AAATAATTAT AAAACTTGTA CATCGAAAAT TTCAAAGCAC TCTGAGGGAA 28707 ATTAAAGATG ATCTAAATAA TTGGAGAGAC ACTCTATGAT CACTGATTGG AAAATTCATT 28767 CAATATTGTT AAGATAACAA TTGTCCCCAA ATTGATGCAT GCATTCAATT TAGTCTTCAT 28827 CAAAATTCCA GCAGGGTTTT TGCAGAAATT GACAAGCTGT ACCCAAAATG TATATGGAAA 28887 TGAAAAGACC CAGAAGAGCA AATAATTTTT TAAAAACAAA GTTGGAAAAC TTTTACTTCC 28947 TAATTTTAAA ACTTACTATA AACCTAAAGT TATCAAGACC ATTTAGT 28994
【0083】配列番号:15 配列の長さ:10 配列の型:アミノ酸 トポロジー:直鎖状 配列の種類:ペプチド フラグメント型:N末端フラグメント
【図面の簡単な説明】
【図1】この発明の染色体DNAを含む組換えDNAの
制限酵素切断部位を示す図である。
【符合の説明】
Hind III 制限酵素Hind IIIの切
断部位 HuIGIF この発明による染色体DNA
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 C12N 5/10 C12P 21/02 F C12P 21/02 A61K 48/00 ADY // A61K 38/00 ADU ADZ 38/21 ABH C12N 5/00 B 48/00 ADY A61K 37/02 ADU ADZ 37/66 ABH (C12N 1/21 C12R 1:19) (C12N 5/10 C12R 1:91) (C12P 21/02 C12R 1:91) (C12P 21/02 C12R 1:19)

Claims (16)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項1】 配列表における配列番号1に示すアミノ
    酸配列(ただし、符合「Xaa」を付して示したアミノ
    酸は、イソロイシン又はトレオニンを表すものとす
    る。)又はそのアミノ酸配列に相同的なアミノ酸配列を
    有し、免疫担当細胞においてインターフェロン−γの産
    生を誘導するポリペプチドをコードする染色体DNA。
  2. 【請求項2】 2個以上のエクソンを含んでなり、それ
    ぞれのエクソンが配列表における配列番号2に示す塩基
    配列の一部又は全部を有する請求項1に記載の染色体D
    NA。
  3. 【請求項3】 エクソンとして、配列表における配列番
    号3及び4に示す塩基配列を有する請求項1又は2に記
    載の染色体DNA。
  4. 【請求項4】 エクソンとして、配列表における配列番
    号5及び6に示す塩基配列のエクソンをさらに含んでな
    る請求項1、2又は3に記載の染色体DNA。
  5. 【請求項5】 エクソンの一つが配列表における配列番
    号7に示す塩基配列の一部又は全部を有する請求項1、
    2、3又は4に記載の染色体DNA。
  6. 【請求項6】 イントロンとして、配列表における配列
    番号8及び9に示す塩基配列を含んでなる請求項1、
    2、3、4又は5に記載の染色体DNA。
  7. 【請求項7】 イントロンとして、配列表における配列
    番号10乃至12に示す塩基配列をさらに含んでなる請
    求項1、2、3、4、5又は6に記載の染色体DNA。
  8. 【請求項8】 配列表における配列番号13に示す塩基
    配列又はその塩基配列に相補的な塩基配列を有する請求
    項1、2、3、4、5、6又は7に記載の染色体DN
    A。
  9. 【請求項9】 配列表における配列番号14に示す塩基
    配列又はその塩基配列に相補的な塩基配列を含んでなる
    請求項1、2、3、4、5、6、7又は8に記載の染色
    体DNA。
  10. 【請求項10】ヒトに由来する請求項1、2、3、4、
    5、6、7、8又は9に記載の染色体DNA。
  11. 【請求項11】自律複製可能なベクターに挿入された請
    求項1、2、3、4、5、6、7、8、9又は10に記
    載の染色体DNA。
  12. 【請求項12】請求項1乃至11のいずれかに記載の染
    色体DNAを哺乳類由来の宿主細胞に導入してなる形質
    転換体。
  13. 【請求項13】宿主細胞が哺乳類由来の上皮系細胞、間
    質系細胞又は造血系細胞である請求項12に記載の形質
    転換体。
  14. 【請求項14】請求項1乃至11のいずれかに記載の染
    色体DNAを哺乳類由来の宿主細胞に導入してなる形質
    転換体を培養する工程と、培養物から免疫担当細胞にお
    いてインターフェロン−γの産生を誘導するポリペプチ
    ドを採取する工程を含んでなるポリペプチドの製造方
    法。
  15. 【請求項15】ポリペプチドを塩析、透析、濾過、濃
    縮、分別沈澱、イオン交換クロマトグラフィー、ゲル濾
    過クロマトグラフィー、吸着クロマトグラフィー、等電
    点クロマトグラフィー、疎水性クロマトグラフィー、逆
    相クロマトグラフィー、アフィニティークロマトグラフ
    ィー、ゲル電気泳動及び/又は等電点電気泳動により採
    取する請求項14に記載のポリペプチドの製造方法。
  16. 【請求項16】ポリペプチドを採取する工程において、
    モノクローナル抗体によるイムノアフィニティークロマ
    トグラフィーを用いる請求項14又は15に記載のポリ
    ペプチドの製造方法。
JP9187418A 1996-06-27 1997-06-27 免疫担当細胞においてインターフェロン−γの産生を誘導するポリペプチドをコードする染色体DNA Pending JPH1080288A (ja)

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* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US9224487B2 (en) 2010-04-16 2015-12-29 Cypress Semiconductor Corporation Semiconductor memory read and write access

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