JPH1057055A - Identification of microcystis as microorganism causing water-bloom by using monoclonal antibody - Google Patents

Identification of microcystis as microorganism causing water-bloom by using monoclonal antibody

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JPH1057055A
JPH1057055A JP8219977A JP21997796A JPH1057055A JP H1057055 A JPH1057055 A JP H1057055A JP 8219977 A JP8219977 A JP 8219977A JP 21997796 A JP21997796 A JP 21997796A JP H1057055 A JPH1057055 A JP H1057055A
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JP
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microcystis
aeruginosa
monoclonal antibody
cells
identification
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Shingo Hiroishi
伸互 広石
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SHIN NIPPON KISHIYOU KAIYO KK
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Abstract

PROBLEM TO BE SOLVED: To accurately conduct an interspecies identification of Microcystis as microorganisms as a cause of water-bloom even in case of incomplete formation of the microorganims' population, by using a monoclonal antibody capable of specifically identifying only Microcystis aeruginosa f. aeruginosa. SOLUTION: An interspacies identification of Microcystis as microorganisms as a cause of water-bloom by using a monoclonal antibody capable of specifically identifying only Microcystis aeruginosa f. aeruginosa. It is preferable that the reactivity of this monoclonal antibody is assessed by the fluorescent antibody indirect method using Goat anti-mouse immunoglobulin.

Description

【発明の詳細な説明】DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION

【0001】[0001]

【発明の属する技術分野】本発明は、湖沼などの淡水域
におけるアオコ(水の華)を構成する藍藻類のうち、ミ
クロキスティス(Microcystis)属の種間識別をモノク
ローナル抗体を用いて行う方法に関する。
BACKGROUND OF THE INVENTION 1. Field of the Invention The present invention relates to a method for discriminating among species of the genus Microcystis among cyanobacteria constituting blue-green algae (water bloom) in freshwater bodies such as lakes using a monoclonal antibody. .

【0002】[0002]

【従来の技術】近年、河川、湖沼などの淡水域において
は、水質汚染や富栄養化が進み、それに伴ってアオコ
(水の華)の大規模発生がしばしば観察されている。こ
のアオコは、藍藻類であり、ミクロキスティス(Microc
ystis)属、オシラトリア(Osillatoria)属、アナベナ
(Anabeana)属などの微生物をもって構成され、春季か
ら秋季にかけて大量に発生し、河川・湖沼の美観を損な
うだけではなく、悪臭等も発生して不衛生感を与えてい
る。
2. Description of the Related Art In recent years, in freshwater areas such as rivers and lakes, water pollution and eutrophication have progressed, and large-scale occurrence of blue-green algae (water blooms) has often been observed. This blue-green algae is a cyanobacterium, Microcystis (Microctis)
It is composed of microorganisms such as the genus ystis, the genus Osillatoria, and the genus Anabeana. It occurs in large quantities from spring to autumn, and not only impairs the aesthetics of rivers and lakes, but also generates unpleasant odors and is unsanitary Giving a feeling.

【0003】上記したアオコ原因微生物のうち、ミクロ
キスティス(Microcystis)属は代表的な微生物であっ
て、肝臓毒であるミクロシスチンを有する種も存在して
おり、人間や動物への悪影響が懸念されている。このミ
クロキスティス(Microcystis)属は群体を構成する細
胞の大きさ、群体の形態、粘質体の外緑の明瞭性や形状
などの形態学的特徴によって、ミクロキスティスエルギ
ノーザf. エルギノーザ(Microcystis aeruginosa f.
aeruginosa),ミクロキスティスエルギノーザf. フロ
ス−アクエ(Microcystis aeruginosa f. flos-aqua
e),ミクロキスティスビリディス(Microcystis virid
is),ミクロキスティスベーゼンベルギー(Microcysti
s wesenbergii)の4つの種に分類されている。
[0003] Among the above-mentioned microorganisms that cause water bloom, the genus Microcystis is a representative microorganism, and there are species having microcystin, which is a liver poison, and there is a concern that humans and animals may be adversely affected. ing. This genus of Microcystis is characterized by its morphological characteristics such as the size of the cells constituting the colony, the morphology of the colony, the clarity and shape of the outer green of the mucous body, and Microcystis f. Aeruginosa (Microcystis). aeruginosa f.
aeruginosa), Microcystis aeruginosa f. flos-aqua
e), Microcystis virid
is), Microcystis Besen Belgium (Microcysti
s wesenbergii).

【0004】このミクロキスティス(Microcystis)属
を原因とするアオコの実態を把握するためには、検体中
の微生物を分類し、それらを識別することと、それらの
分布状態と消長経過を調査することが必須となる。その
場合、従来の識別方法は、前記したような形態学的特徴
を実態顕微鏡で認識することによって行われているた
め、次のような問題が生じてくる。
[0004] In order to ascertain the actual condition of the blue-green algae caused by the genus Microcystis, it is necessary to classify and identify the microorganisms in the sample, and to investigate their distribution and their progress. Is required. In this case, since the conventional identification method is performed by recognizing the morphological features described above with a stereoscopic microscope, the following problems occur.

【0005】すなわち、形態が類似している種を識別す
る場合、2種以上の近緑種が混在している場合、および
群体を形成する以前あるいは群体の崩壊以後には、種を
正しく分類・識別することが困難になるという問題であ
る。また、従来の識別方法では、特殊な鑑定眼を有する
鑑定者を必要とするので、鑑定者の熟練の有無によって
は不可避的に識別結果に混同を生ずることがしばしば起
こるという問題もある。
[0005] That is, when species having similar morphologies are identified, when two or more species of near green species are mixed, and before the formation of the colony or after the collapse of the colony, the species is correctly classified and classified. The problem is that it becomes difficult to identify. In addition, since the conventional identification method requires an examiner having a special appraisal eye, there is also a problem that the identification result is often inevitably confused depending on the skill of the examiner.

【0006】[0006]

【発明が解決しようとする課題】本発明は、形態学的特
徴の認識に基づいてミクロキスティス(Microcystis)
属の種間識別を行う際に発生する上記の問題を解決し、
後述するモノクローナル抗体を用いることにより、群体
の形成が不完全な場合であっても、アオコ原因微生物で
ある前記ミクロキスティス(Microcystis)属における
種間識別を確実に行うことができる識別方法の提供を目
的とする。
SUMMARY OF THE INVENTION The present invention is based on the recognition of morphological features.
Resolving the above-mentioned problems that occur when performing interspecies identification of genera,
By using a monoclonal antibody described below, it is possible to provide an identification method capable of reliably performing inter-species identification in the genus Microcystis, which is a microorganism that causes blue-green algae, even when colony formation is incomplete. Aim.

【0007】[0007]

【課題を解決するための手段】上記の目的を達成するた
めに、本発明においては、アオコ原因微生物であるミク
ロキスティス(Microcystis)属の種間識別をモノクロ
ーナル抗体を用いて行う識別方法であって、前記モノク
ローナル抗体として、ミクロキスティスエルギノーザ
f. エルギノーザ(Microcystis aeruginosa f. aerugi
nosa)のみを特異的に認識するモノクローナル抗体が用
いられることを特徴とする、アオコ原因微生物のミクロ
キスティス(Microcystis)属をモノクローナル抗体で
識別する方法が提供される。
Means for Solving the Problems In order to achieve the above-mentioned object, the present invention provides a method for discriminating between species of the genus Microcystis, which is a microorganism that causes blue-green algae, using a monoclonal antibody. As the monoclonal antibody, Microcystis aeruginosa f. Aerugi
The present invention provides a method for distinguishing the genus Microcystis, which is a microorganism that causes blue-green algae, with a monoclonal antibody, which comprises using a monoclonal antibody that specifically recognizes nosa) alone.

【0008】[0008]

【発明の実施の形態】本発明において用いるモノクロー
ナル抗体は、ミクロキスティス(Microcystis)属のう
ちの前記したミクロキスティスエルギノーザf.エルギ
ノーザ(Microcystis aeruginosa f. aeruginosa,以
下、M.aeruginosa f. aeruginosaという)に対してのみ
特異的に反応するモノクローナル抗体である。
BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION The monoclonal antibody used in the present invention is the aforementioned Microcystis aeruginosa f. It is a monoclonal antibody that specifically reacts only against alginosa (Microcystis aeruginosa f. Aeruginosa; hereinafter, referred to as M. aeruginosa f. Aeruginosa).

【0009】したがって、このモノクローナル抗体を用
いることにより、検体に対して、ミクロキスティス(Mi
crocystis)属のうち、M.aeruginosa f. aeruginosa
と、他の種、すなわち、ミクロキスティスエルギノーザ
f.フロス−アクエ(Microcystis aeruginosa f. flos
-aque、以下、M.aeruginosa f. flos-aquaeという)、
ミクロキスティスビリディス(Microcystis viridis、
以下、M.viridisという)およびミクロキスティスベー
ゼンベルギー(Microcystis wesenbergii、以下、M.wes
enbergiiという)との識別が可能となる。
[0009] Therefore, by using this monoclonal antibody, microcystis (Mis
crocystis) of the genus M.aeruginosa f. aeruginosa
And other species, namely Microcystis aeruginosa f. Floss-acue (Microcystis aeruginosa f. Flos
-aque, hereinafter referred to as M.aeruginosa f. flos-aquae),
Microcystis viridis,
M. viridis) and Microcystis wesenbergii (hereinafter M. wes)
enbergii).

【0010】このモノクローナル抗体は次のようにして
産生することができる。それを以下に、手順に従って説
明する。 (1)抗原の調製と免疫の工程 National Institute of Environment Science(NIES)
の保存株である例えばM.aeruginosa f. aeruginosa(NI
ES-87)を培養し、得られた培地から、所定の細胞数濃
度の細胞懸濁液を調製し、これを抗原懸濁液とする。
[0010] This monoclonal antibody can be produced as follows. It is described below according to the procedure. (1) Preparation of antigen and immunization process National Institute of Environment Science (NIES)
Strains such as M.aeruginosa f. Aeruginosa (NI
ES-87) is cultured, and a cell suspension having a predetermined cell concentration is prepared from the obtained medium, and this is used as an antigen suspension.

【0011】そして、この抗原懸濁液を例えばマウスに
投与して当該マウスを抗原で免役する。 (2)細胞融合の工程 上記抗原の抗体はマウスの脾臓細胞で産生するが、この
脾臓細胞には増殖能が欠如しているので、上記した工程
(1)に続けて、これにマウスミエローマ細胞(骨髄腫細
胞)を融合させることにより増殖能が付与される。
Then, the antigen suspension is administered to, for example, a mouse to immunize the mouse with the antigen. (2) Cell fusion step The antibody of the above antigen is produced in mouse spleen cells, but since the spleen cells lack the proliferative ability,
Subsequent to (1), a mouse myeloma cell (myeloma cell) is fused with this to provide a proliferation ability.

【0012】この手順としては、「単クローン抗体実験
操作入門」(安東民衛、千葉丈編、講談社発行、1991
年)と、「新生化学実験講座12、分子免疫学1、免疫細
胞・サイトカイン、7、白血球抗原に対するモノクロー
ナル抗体の作り方」(岩木宏之、斎藤昇志、菊池浩吉執
筆、日本化学会編、(株)東京化学同人社出版、1989
年)で詳説されている方法に準拠して進めればよい。
[0012] This procedure is described in "Introduction to Monoclonal Antibody Experimental Procedures" (T. Andoh, Takeshi Chiba, Kodansha Publishing, 1991)
), "New Course on Experimental Chemistry 12, Molecular Immunology 1, Immune Cells / Cytokines, 7, How to Make Monoclonal Antibodies against Leukocyte Antigen" (written by Hiroyuki Iwaki, Shoji Saito, Kokichi Kikuchi, edited by The Chemical Society of Japan, Inc.) Tokyo Chemical Dojinsha Publishing, 1989
Year)).

【0013】このときの細胞融合促進剤としては、例え
ば、分子量4000のポリエチレングリコールが用いら
れる。 (3)融合細胞(ハイブリドーマ)の選択 上記した細胞融合を行ったのちの培養内には、融合細胞
(ハイブリドーマ)の外に、融合が不完全な細胞や全く
融合していない細胞なども混合している。そして、脾臓
細胞は前記したように増殖能を備えていないので1週間
から10日で死滅してしまうが、ミエローマ細胞の場合
は、ハイブリドーマとの間で互いに増殖阻害を起こすこ
とがある。
As the cell fusion promoter at this time, for example, polyethylene glycol having a molecular weight of 4000 is used. (3) Selection of fused cells (hybridoma) In the culture after the above-mentioned cell fusion, in addition to the fused cells (hybridoma), cells with incompletely fused cells or cells that have not been fused at all are mixed. ing. As described above, spleen cells do not have the proliferation ability, and thus die in 1 week to 10 days. In the case of myeloma cells, growth inhibition may occur with hybridomas.

【0014】したがって、この工程においては、不完全
に融合した細胞や全く融合していない細胞(ミエローマ
細胞)を除去して、目的とするハイブリドーマのみを選
択的に増殖させることが行われる。その場合、ミエロー
マ細胞に関する次の知見が利用される。すなわち、ま
ず、細胞には、サルベージ経路と新生経路と呼ばれる2
つの核酸合成経路が存在する。そして、ミエローマ細胞
には、サルベージ経路の核酸合成にとって不可欠な酵
素、すなわち、ヒポキサンチン−グアニンホスホリボシ
ルトランスフェラーゼが欠損しているので、このミエロ
ーマ細胞は新生経路のみで核酸合成が進行していること
になる。
Therefore, in this step, incompletely fused cells or completely unfused cells (myeloma cells) are removed, and only the desired hybridoma is selectively grown. In that case, the following knowledge about myeloma cells is used. That is, first, cells have two pathways called the salvage pathway and the neonatal pathway.
There are two nucleic acid synthesis pathways. Since myeloma cells lack an enzyme essential for nucleic acid synthesis in the salvage pathway, that is, hypoxanthine-guanine phosphoribosyltransferase, the myeloma cells undergo nucleic acid synthesis only through the nascent pathway. Become.

【0015】一方、新生経路の場合、図1で示したよう
に、その経路中には、ジヒドロ葉酸レダクターゼと呼ば
れる酵素が関与する個所が2ヶ所存在する。そして、上
記酵素の機能は、アミノプテリンが結合することによっ
て阻害されることが知られている。したがって、前記し
た細胞融合工程で得られた採取物を、アミノプテリンを
含むHAT(ヒポキサンチン−アミノプテリン−チミジ
ン)培地で培養すると、不完全に融合した細胞や全く融
合していないミエローマ細胞の上記新生経路による核酸
合成は進行しないのでそれらは除去される。そして、脾
臓細胞由来のサルベージ経路を備えるハイブリドーマの
みが増殖することになる。
On the other hand, in the case of the nascent pathway, as shown in FIG. 1, there are two places in the pathway where an enzyme called dihydrofolate reductase is involved. And it is known that the function of the said enzyme is inhibited by the binding of aminopterin. Therefore, when the harvest obtained in the cell fusion step described above is cultured in a HAT (hypoxanthine-aminopterin-thymidine) medium containing aminopterin, incompletely fused cells or myeloma cells not fused at all are obtained. They are removed because nucleic acid synthesis by the nascent pathway does not proceed. Then, only the hybridomas having the salvage pathway derived from spleen cells will proliferate.

【0016】具体的には、細胞融合工程で得られた採取
物を培養皿に撒布し、ここに前記したHAT培地を加えて
10日ほど培養すればよい。そして、ハイブリドーマの
増殖を確認したのちに、アミノプテリンを含まないHT培
地と交換すればよい。この培地交換によって、目的とす
るハイブリドーマ以外の細胞は死滅する。 (4)クローニング工程 前記工程で選択培養されたハイブリドーマには複数種の
クローンの存在することがある。
Specifically, the harvest obtained in the cell fusion step may be spread on a culture dish, and the above-mentioned HAT medium may be added thereto and cultured for about 10 days. Then, after confirming the growth of the hybridoma, the medium may be replaced with an HT medium containing no aminopterin. By exchanging the medium, cells other than the target hybridoma are killed. (4) Cloning Step A plurality of types of clones may exist in the hybridomas selectively cultured in the above step.

【0017】そのため、選択培養されたハイブリドーマ
に対しては、限界希釈法によるクローン化が行われる。
そして、M.aeruginosa f. aeruginosaに対してのみ特異
的に反応するモノクローナル抗体を産生するハイブリド
ーマの単クローンを得る。 (5)ハイブリドーマの培養 前記したクローニングによって得られたハイブリドーマ
を、in vitroまたはinvivoで培養することにより、目的
とするモノクローナル抗体を生産することができる。
Therefore, the hybridomas that have been selectively cultured are cloned by the limiting dilution method.
Then, a monoclonal clone of a hybridoma producing a monoclonal antibody that specifically reacts only with M.aeruginosa f.aeruginosa is obtained. (5) Cultivation of hybridoma The desired monoclonal antibody can be produced by culturing the hybridoma obtained by the above-mentioned cloning in vitro or in vivo.

【0018】in vitro培養の場合には、例えば96穴平
板培養プレートを用い、マウス脾臓細胞を支持細胞とし
て含有する例えばFCS-RPMI 1640培地で培養すればよ
い。このときの培養上清に、目的とするモノクローナル
抗体が分泌、蓄積されることになる。また、in vivo培
養の場合には、例えばマウスの腹腔内に前記ハイブリド
ーマを接種することにより、その腹水に目的とするモノ
クローナル抗体が蓄積されることになる。
In the case of in vitro culture, for example, a 96-well plate culture plate may be used and cultured in, for example, FCS-RPMI 1640 medium containing mouse spleen cells as feeder cells. At this time, the target monoclonal antibody is secreted and accumulated in the culture supernatant. In the case of in vivo culture, for example, by inoculating the hybridoma into the peritoneal cavity of a mouse, the target monoclonal antibody is accumulated in the ascites fluid.

【0019】このようにして生産されたモノクローナル
抗体を用いることによりミクロキスティス(Microcysti
s)属の識別は、次のようにして、Goat anti-mouse imm
unoglobulinを用いた間接蛍光抗体法を適用して行われ
る。すなわち、上記したモノクローナル抗体と、ミクロ
キスティス(Microcystis)属を含む識別対象の検体と
を混合し、その混合液に、例えばフルオレセインイソチ
オシアネート(FITC)のような蛍光色素で標識した二次
抗体Goat anti-mouse IgM+IgGをリン酸緩衝液で希釈し
た溶液を添加して細胞懸濁液を調製し、それを落射蛍光
顕微鏡で観察する。
By using the monoclonal antibody produced in this manner, Microcysti (Microcysti
s) The genus is identified as follows: Goat anti-mouse imm
It is performed by applying an indirect fluorescent antibody method using unoglobulin. That is, the above-described monoclonal antibody is mixed with a specimen to be identified containing the genus Microcystis, and the mixture is mixed with a secondary antibody Goat anti-labeled with a fluorescent dye such as fluorescein isothiocyanate (FITC). -Mouse A solution obtained by diluting IgM + IgG with a phosphate buffer is added to prepare a cell suspension, which is observed with an epifluorescence microscope.

【0020】このモノクローナル抗体は、ミクロキステ
ィス(Microcystis)属のうち、M.aeruginosa f. aerug
inosaに対してのみ特異的に反応し、他の3種に対して
は反応しない。そして、M.aeruginosa f. aeruginosaと
反応した場合には蛍光が観察される。したがって、上記
したようにして落射蛍光顕微鏡による観察時に、蛍光が
認められた場合には、対象とする検体にM.aeruginosa
f. aeruginosaが存在していることになり、この種を識
別することができる。
This monoclonal antibody is a member of the genus Microcystis belonging to the genus M. aeruginosa f. Aerug.
It reacts specifically with inosa only and does not react with the other three species. Then, when reacted with M. aeruginosa f. Aeruginosa, fluorescence is observed. Therefore, when fluorescence is observed during observation with an epi-illumination fluorescence microscope as described above, M. aeruginosa
f. aeruginosa is present and the species can be identified.

【0021】[0021]

【実施例】【Example】

1.モノクローナル抗体の生産 (1)抗原の調製とマウスの免疫 まず、下記組成のMA培地を用意した。 MA培地の組成: Ca(NO3)2・4H2O 50mg KNO3 100mg NaNO3 50mg Na2SO4 40mg MgCl2・6H2O 50mg β-Na2glycerophosphate 100mg MA soln 1ml Bicine 500mg 蒸留水 1l ただし、MA solnは以下の組成である。1. Production of Monoclonal Antibody (1) Preparation of Antigen and Immunization of Mice First, an MA medium having the following composition was prepared. Composition of MA medium: Ca (NO 3 ) 2 .4H 2 O 50 mg KNO 3 100 mg NaNO 3 50 mg Na 2 SO 4 40 mg MgCl 2 .6H 2 O 50 mg β-Na 2 glycerophosphate 100 mg MA soln 1 ml Bicine 500 mg distilled water 1 l MA soln has the following composition:

【0022】MA soln: Na2EDTA 5mg/ml FeCl3・6H2O 0.5mg/ml MnCl2・4H2O 5mg/ml CoCl2・6H2O 5mg/ml NaMoO4・2H2O 0.8mg/ml ZnCl2 0.5mg/ml H3BO3 20mg/ml つぎに、NIESの保存株である4種類の株を用意した。す
なわち、M.aeruginosaf. aeruginosa(NIES-87),M.ae
ruginosa f. flos-aque(NIES-98),M.viridis(NIES-
102),M.wesenberugii(NIES-111)である。
MA soln: Na 2 EDTA 5 mg / ml FeCl 3 .6H 2 O 0.5 mg / ml MnCl 2 .4H 2 O 5 mg / ml CoCl 2 .6H 2 O 5 mg / ml NaMoO 4 .2H 2 O 0.8 mg / ml ZnCl 2 0.5 mg / ml H 3 BO 3 20 mg / ml Next, four strains which are stock strains of NIES were prepared. That is, M.aeruginosaf. Aeruginosa (NIES-87), M.ae
ruginosa f. flos-aque (NIES-98), M.viridis (NIES-
102) and M.wesenberugii (NIES-111).

【0023】これら4種類の株を、前記したMA培地を用
い、温度:25℃、光度:20μE/m2・secの条件下で培
養した。培養中のNIES-87株の細胞数をEKDS血球測定板
(萱垣医理科工業(株)製)で測定したのち、3600rp
mで15分間の遠心分離操作を行ってMA培地を除去し
た。
These four strains were cultured in the above-mentioned MA medium under the conditions of a temperature of 25 ° C. and a luminous intensity of 20 μE / m 2 · sec. The number of cells of the NIES-87 strain in the culture was measured using an EKDS hemocytometer (manufactured by Kayagaki Medical Science Co., Ltd.), and then 3600 rp.
The MA medium was removed by centrifugation at 15 m for 15 minutes.

【0024】ついで、ペレット状の細胞を分散せしめ、
リン酸緩衝液で洗浄し、更に、細胞数が108cell/mlと
なるように前記細胞をリン酸緩衝液に懸濁せしめて細胞
懸濁液を調製した。これを抗原懸濁液とする。この抗原
懸濁液を、BALB/cマウス(6週齢、雌)の腹腔内に1ml
ずつ、隔週で8週間投与してマウスの免疫を行った。
Next, the cells in the form of pellets are dispersed,
After washing with a phosphate buffer, the cells were suspended in a phosphate buffer so that the number of cells became 10 8 cells / ml, to prepare a cell suspension. This is used as an antigen suspension. 1 ml of this antigen suspension was intraperitoneally injected into BALB / c mice (6 weeks old, female).
The mice were immunized every 8 weeks every other week for 8 weeks.

【0025】(2)マウス抗血清中の抗体価の測定 上記したマウスの体内でNIES-87株に対する抗体が産生
されているか否かを判定するために、以下のようにし
て、マウス抗血清中の抗体価を調査した。まず、8週間
免役したマウスの尾部血管を切開して、血液約100μ
lをヘマトクリット管に採取した。ついで、血液をエッ
ペンドルフチューブに移し、1000rpmで10分間の
遠心分離操作を行って血清と血球を分離したのち、得ら
れた上清を別のエッペンドルフチューブに移し、これを
MA培地を用いて25倍に希釈して抗体価検索の試料にし
た。
(2) Measurement of antibody titer in mouse antiserum In order to determine whether or not an antibody against the NIES-87 strain is produced in the above-mentioned mouse body, the mouse antiserum was determined as follows. Was examined for antibody titer. First, the tail vein of a mouse immunized for 8 weeks was incised, and about 100 μM of blood was obtained.
l was collected in hematocrit tubes. Then, the blood was transferred to an Eppendorf tube, centrifuged at 1000 rpm for 10 minutes to separate serum and blood cells, and the obtained supernatant was transferred to another Eppendorf tube.
The sample was diluted 25-fold with MA medium and used for antibody titer search.

【0026】希釈した血清100μlに、NIES-87株,NI
ES-98株,NIES-102株,NIES-111株の各懸濁液100μl
をそれぞれ混合し、各混合液を温度20℃の暗所で2時
間反応させた。更に、蛍光色素フルオレセインイソチオ
シアネート(FITC)で標識した二次抗体Goat anti-mous
e IgG+IgM(Caltag Laboratories社製)を0.01Mリン
酸緩衝液で100倍に希釈した溶液10μlを、前記した各
培養液に添加したのち温度20℃の暗所で2時間反応さ
せた。
In 100 μl of the diluted serum, NIES-87 strain, NI
100 μl of each suspension of ES-98, NIES-102 and NIES-111
Were mixed, and each mixture was reacted in a dark place at a temperature of 20 ° C. for 2 hours. Furthermore, the secondary antibody Goat anti-mous labeled with the fluorescent dye fluorescein isothiocyanate (FITC)
e 10 μl of a solution obtained by diluting IgG + IgM (manufactured by Caltag Laboratories) 100-fold with a 0.01 M phosphate buffer was added to each of the above culture solutions, and the mixture was allowed to react in a dark place at a temperature of 20 ° C. for 2 hours.

【0027】このようにして得られた4種類の細胞懸濁
液につき、落射蛍光顕微鏡(BHS-RFC-A2,OLYMPUS社
製,U励起,G520フィルタ使用)を用いてそれぞれの蛍
光強度を測定した。その結果を表1に示した。
The fluorescence intensities of the four cell suspensions thus obtained were measured using an epi-fluorescence microscope (BHS-RFC-A2, manufactured by OLYMPUS, U excitation, using G520 filter). . The results are shown in Table 1.

【0028】[0028]

【表1】 [Table 1]

【0029】表1から明らかなように、8週間免疫した
マウスの体内には、ミクロキスティス(Microcystis)
属のうち、M.aeruginosaに対しては特異的に反応する抗
体の産生されることが判明した。すなわち、M.aerugino
saを抗原としたマウスへの免疫は可能であり、しかも8
週間の免疫によって充分な免疫効果を得ることができ、
更に、抗体の反応性は、Goat anti-mouse immunoglobul
inを用いた間接蛍光抗体法で判定可能であることが判明
した。
As is apparent from Table 1, mice immunized for 8 weeks contained Microcystis in the body.
Among the genera, it was found that antibodies specifically reacting with M. aeruginosa were produced. That is, M.aerugino
It is possible to immunize mice using sa as an antigen,
Weekly immunization can provide sufficient immunity,
Furthermore, the reactivity of the antibody is determined by Goat anti-mouse immunoglobul
It was found that determination could be made by the indirect fluorescent antibody method using in.

【0030】(3)ハイブリドーマの生産 細胞融合に先立ち、以下のようにして、ミエローマ細胞
の培養を行った。まず、ミエローマ細胞用培地をつぎの
ようにして調製した。すなわち、粉末のRPMI1640(GIBC
O社製)に、蒸留水:1l、NaHCO3:2g、培地中の
グラム陽性菌の繁殖を防止するためにペニシリンG(和
光純薬(株)製):50U/ml、培地中のグラム陰性菌の繁
殖を防止するためにストレプトマイシン(和光純薬(株)
製):100μg/mlを添加して基本培地を調製した。
(3) Production of hybridoma Prior to cell fusion, myeloma cells were cultured as follows. First, a medium for myeloma cells was prepared as follows. That is, the powder RPMI1640 (GIBC
The O-made Co.), distilled water: 1l, NaHCO 3: 2g, manufactured by penicillin G to prevent the growth of Gram-positive bacteria in the culture medium (Wako Pure Chemical (Co.)): 50 U / ml, gram-negative in the medium Streptomycin (Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) to prevent bacterial growth
): 100 µg / ml was added to prepare a basal medium.

【0031】そして、この基本培地に、牛胎児血清(GI
BCO社製,Lot No.37K2043)を10%となるように添加
することにより、ミエローマ細胞用培地を調製した。次
に、温度37℃、炭酸ガス濃度5.0%の炭酸ガス培養器
内において、前記したミエローマ細胞用培地を用い、ま
たミエローマ細胞としてはBALB/cマウス由来のP3/X63-A
g6.5.3を用いてミエローマ細胞の培養を行った。
Then, the basal medium is supplemented with fetal bovine serum (GI
A medium for myeloma cells was prepared by adding 10% of BCO (Lot No. 37K2043). Next, in a carbon dioxide incubator at a temperature of 37 ° C. and a carbon dioxide concentration of 5.0%, the above-mentioned medium for myeloma cells was used, and P3 / X63-A derived from BALB / c mouse was used as myeloma cells.
Myeloma cells were cultured using g6.5.3.

【0032】一方、最終免疫終了後3日目に、免疫した
マウスを解剖して脾臓を摘出し、それを滅菌メッシュの
上にのせて脾臓細胞を分散せしめ、前記した基本培地で
濾過したのち、1600rpm、6分間の遠心分離操作に
よって脾臓細胞を調製し、細胞数を計測した。そして、
培養した前記ミエローマ細胞についても上記したと同様
の処置を行ってミエローマ細胞の細胞数を計測した。
On the other hand, on the third day after the end of the final immunization, the immunized mouse was dissected and the spleen was excised, placed on a sterilized mesh to disperse the spleen cells, and filtered with the above-described basal medium. Spleen cells were prepared by centrifugation at 1600 rpm for 6 minutes, and the number of cells was counted. And
The same treatment as described above was performed on the cultured myeloma cells, and the number of myeloma cells was counted.

【0033】ついで、調製した前記脾臓細胞2×108
個に対し、ミエローマ細胞2×107個の割合で両細胞
を混合し、混合物を1600rpm、6分間の遠心分離操
作によって洗浄し、上清を吸引除去したのちに形成され
た細胞ペレットをほぐし、ここに、予め温度37℃に予
熱しておいたポリエチレングリコール1mlを1分間かけ
て滴下した。
Next, 2 × 10 8 of the prepared spleen cells
The cells were mixed at a ratio of 2 × 10 7 myeloma cells per cell, the mixture was washed by centrifugation at 1600 rpm for 6 minutes, and the cell pellet formed after aspirating and removing the supernatant was loosened. Here, 1 ml of polyethylene glycol, which had been preheated to a temperature of 37 ° C., was added dropwise over 1 minute.

【0034】ピペットを用い、そのピペットの先で細胞
をよく攪拌しながら、前記した基本培地1mlを1分間か
けて滴下し、更に基本培地1mlを1分間かけて静かに滴
下し、最後に基本培地8mlを3分間かけて静かに滴下し
たのち、1000rpmで5分間の遠心分離操作を行い、
上清を除去した。得られたペレットに、前記したミエロ
ーマ細胞用培地18mlを徐々に添加し、その100μl
ずつを、No.1,No.2,No.3と番号付けされた96穴平板
培養プレート3枚の内側の60穴に加え、前記した炭酸
ガス培養器内において同一の条件下で培養した。
Using a pipette, 1 ml of the above-mentioned basic medium is dropped over 1 minute while the cells are well stirred at the tip of the pipette, and 1 ml of the basic medium is gently dropped over 1 minute. After gently dropping 8 ml over 3 minutes, centrifugation was performed at 1000 rpm for 5 minutes.
The supernatant was removed. To the obtained pellet, 18 ml of the above-described medium for myeloma cells was gradually added, and 100 μl of the medium was added.
Each was added to the inner 60 wells of three 96-well plate culture plates numbered No. 1, No. 2, and No. 3, and cultured under the same conditions in the above-described carbon dioxide incubator.

【0035】培養開始後、1日目、3日目、6日目、1
0日目のそれぞれに、前記したミエローマ細胞用培地5
00mlにHAT supplement100X10mlを配合して成るHAT
培地を各穴に100μlに添加した。そして、培養を開
始してから10日後、ハイブリドーマの増殖を確認した
のちに、培地をアミノプテリンが含まれていないHT培地
に交換した。
After the start of the culture, on the first day, the third day, the sixth day,
On each of day 0, the above-mentioned medium 5 for myeloma cells
HAT consisting of 100ml of HAT supplement100X10ml
Medium was added to each well in 100 μl. After 10 days from the start of the culture, after confirming the growth of the hybridoma, the medium was replaced with an HT medium containing no aminopterin.

【0036】(4)クローニング 限界希釈法により、96穴平板培養プレートの1穴に理
論上ハイブリドーマが1個となるように調整し、BALB/c
マウス脾臓細胞懸濁液:10体積%、ブライクローン
(商品名、大日本製薬(株)製の細胞増殖因子含有培
地):10体積%、ピルビン酸:1mMを含むFCS-RPMI16
40培地を用いて培養した。培養は、温度37℃、炭酸ガ
ス濃度5.0%の炭酸ガス培養器内で行った。
(4) Cloning By limiting dilution, one well of a 96-well plate culture plate was theoretically adjusted to contain one hybridoma, and BALB / c
FCS-RPMI16 containing mouse spleen cell suspension: 10% by volume, Briclones (trade name, cell growth factor-containing medium manufactured by Dainippon Pharmaceutical Co., Ltd.): 10% by volume, pyruvate: 1 mM
Culture was performed using 40 media. The cultivation was performed in a carbon dioxide incubator at a temperature of 37 ° C. and a carbon dioxide concentration of 5.0%.

【0037】ハイブリドーマのコロニーを確認したの
ち、培地を、FCS-RPMI1640培地に交換して前記と同じ条
件下で培養を進めた。20日間の培養後に、コロニーが
充分大きく生長したことが確認され、モノクローン15
0株が計測された。 2.ミクロキスティス(Microcystis)属の識別 培養上清を採取し、その100μlに、NIES-87株,NIES
-98株,NIES-102株,NIES-111株の各懸濁液100μlを
混合し、各混合液を温度20℃の暗所で2時間培養し
た。
After confirming the hybridoma colonies, the medium was replaced with FCS-RPMI1640 medium, and the culturing was continued under the same conditions as described above. After culturing for 20 days, it was confirmed that the colony had grown sufficiently large, and
0 strains were measured. 2. Identification of the genus Microcystis The culture supernatant was collected, and 100 µl of the supernatant was added to the NIES-87 strain, NIES
100 μl of each suspension of -98 strain, NIES-102 strain and NIES-111 strain were mixed, and each mixed solution was cultured in a dark place at a temperature of 20 ° C. for 2 hours.

【0038】ついで、蛍光色素フルオレセインチオシア
ネート(FITC)で標識した二次抗体Goat anti-mouse Ig
G+IgM(caltog Labpratories社製)を0.01Mリン酸緩
衝液で100倍に希釈した溶液10μlを前記した各培
養液に添加したのち、更に温度20℃の暗所で2時間反
応させた。このようにして得られた4種類の細胞懸濁液
につき、落射蛍光顕微鏡(BHS-RFC-A2,OLYMPUS社製,U
励起,G520フィルタ使用)を用いてそれぞれの蛍光を測
定した。その結果を表2に示した。
Next, a secondary antibody Goat anti-mouse Ig labeled with a fluorescent dye fluorescein thiocyanate (FITC)
10 μl of a solution obtained by diluting G + IgM (manufactured by caltog Labpratories) 100-fold with a 0.01 M phosphate buffer was added to each of the above culture solutions, and the mixture was further reacted in a dark place at a temperature of 20 ° C. for 2 hours. Using the four types of cell suspensions thus obtained, an epifluorescence microscope (BHS-RFC-A2, manufactured by OLYMPUS, U.S.A.)
Excitation, using a G520 filter). The results are shown in Table 2.

【0039】[0039]

【表2】 [Table 2]

【0040】表2から明らかなように、上記した工程を
経て生産されたハイブリドーマは、4種のミクロキステ
ィス(Microcystis)属のうち、M.aeruginosa f. aerug
inosaにのみ特異的に反応するモノクローナル抗体を産
生していることがわかる。したがって、このモノクロー
ナル抗体を用いることにより、ミクロキスティス(Micr
ocystis)属のうち、M.aeruginosa f. aeruginosaのみ
を確実に分類・識別することが可能である。
As is clear from Table 2, the hybridomas produced through the above-mentioned steps are M. aeruginosa f. Aerug among the four species of Microcystis.
It can be seen that a monoclonal antibody specifically reacting with inosa was produced. Therefore, by using this monoclonal antibody, microcystis (Micr
ocystis), it is possible to reliably classify and identify only M.aeruginosa f.aeruginosa.

【0041】[0041]

【発明の効果】以上の説明で明らかなように、本発明
は、ミクロキスティス(Microcystis)属のうち、M.aer
uginosa f. aeruginosaに対してのみ特異的に反応し、
他の種、すなわち、M.aeruginosa f. flos-aquae,M.vi
ridis,M.wesenbergiiの3種に対しては反応しないモノ
クローナル抗体を用いて前記M.aeruginosa f. aerginos
aを確実に識別することができる。
As is apparent from the above description, the present invention relates to M.aer of the genus Microcystis.
uginosa f. Aeruginosa only reacts specifically,
Other species, namely M. aeruginosa f. Flos-aquae, M. vi
ridis and M. wesenbergii using a monoclonal antibody that does not react with the three species of M. aeruginosa f. aerginos
a can be reliably identified.

【0042】本発明は、上記した特異な抗原−抗体反応
を利用している。したがって、従来の形態学的特徴に基
づいて分類・識別する方法では識別が困難であった群体
の形成が不完全な場合であっても、確実にM.aeruginosa
f. aeruginosaを識別できる。
The present invention utilizes the above-described specific antigen-antibody reaction. Therefore, even if the formation of colonies is incomplete, which was difficult to identify by the conventional method of classification and identification based on morphological features, M.
f. aeruginosa can be identified.

【図面の簡単な説明】[Brief description of the drawings]

【図1】新生経路とアミノプテリンの作用部位を示す概
念図である。
FIG. 1 is a conceptual diagram showing the nascent pathway and the site of action of aminopterin.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 // C12N 5/10 C12N 5/00 B (C12P 21/08 C12R 1:91) ──────────────────────────────────────────────────続 き Continued on the front page (51) Int.Cl. 6 Identification code Agency reference number FI Technical display location // C12N 5/10 C12N 5/00 B (C12P 21/08 C12R 1:91)

Claims (2)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】 アオコ原因微生物であるミクロキスティ
ス(Microcystis)属の種間識別をモノクローナル抗体
を用いて行う識別方法であって、前記モノクローナル抗
体として、ミクロキスティスエルギノーザf. エルギノ
ーザ(Microcystis aeruginosa f. aeruginosa)のみを
特異的に認識するモノクローナル抗体が用いられること
を特徴とする、アオコ原因微生物のミクロキスティス
(Microcystis)属をモノクローナル抗体で識別する方
法。
1. A method for distinguishing between species of the genus Microcystis, which is a microorganism that causes blue-green algae, using a monoclonal antibody, wherein the monoclonal antibody is Microcystis aeruginosa f. aeruginosa), wherein a monoclonal antibody specifically recognizing only aeruginosa is used to identify the genus Microcystis, a microorganism that causes blue-green algae.
【請求項2】 前記モノクローナル抗体の反応性が、Go
at anti-mouse immunoglobulinを用いた間接蛍光抗体法
で判定される請求項1の識別方法。
2. The method according to claim 1, wherein the reactivity of the monoclonal antibody is Go
The identification method according to claim 1, which is determined by an indirect fluorescent antibody method using at anti-mouse immunoglobulin.
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