JPH10313893A - Measurement of saccharified protein - Google Patents
Measurement of saccharified proteinInfo
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- JPH10313893A JPH10313893A JP14351097A JP14351097A JPH10313893A JP H10313893 A JPH10313893 A JP H10313893A JP 14351097 A JP14351097 A JP 14351097A JP 14351097 A JP14351097 A JP 14351097A JP H10313893 A JPH10313893 A JP H10313893A
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Abstract
Description
【0001】[0001]
【発明の属する技術分野】本発明は、糖化たんぱく質を
フルクトシルアミノ酸オキシダーゼを用いた酵素法によ
って測定する糖化たんぱく質の測定方法に関する。更に
詳しくは血液検体がEDTAを添加した採血管に採取さ
れ、検体中にEDTAが含有される場合であっても、反
応阻害を受けずに糖化たんぱく質の測定を行うことがで
きるフルクトシルアミノ酸オキシダーゼを用いた測定方
法に関する発明である。[0001] The present invention relates to a method for measuring a glycated protein by measuring a glycated protein by an enzymatic method using fructosyl amino acid oxidase. More specifically, a blood sample is collected in a blood collection tube to which EDTA has been added, and even when EDTA is contained in the sample, fructosyl amino acid oxidase capable of measuring glycated protein without reaction inhibition is used. This is an invention related to the measurement method used.
【0002】[0002]
【従来の技術】糖化たんぱく質は、たんぱく質を構成す
るアミノ酸のアミノ基と、アルドース等の還元糖のアル
デヒド基が非酵素的に且つ不可逆的に結合して生成され
る物質であり、この非酵素的且つ不可逆的な結合をアマ
ドリ転移と呼ぶことからアマドリ化合物とも言われてい
る。糖化たんぱく質の生成速度は、たんぱく質と還元糖
の濃度、時間、温度に依存しており、還元糖の量が多い
程、たんぱく質と還元糖の接触時間が長い程、たんぱく
質の変性が起きない程度で温度が高い程、糖化たんぱく
質の生成速度は早くなり、生成量が多くなる。生体中で
は糖化されるたんぱく質の半減期によって糖化たんぱく
質の濃度が異なるため、糖化たんぱく質の濃度を測定す
ることによって、様々な情報を入手することができる。
例えば、赤血球中のヘモグロビンが糖化された糖化ヘモ
グロビンや血漿中のアルブミンが糖化された糖化アルブ
ミンの濃度値は、過去の一定期間における平均血糖値を
反映しているため、健康診断におけるスクリーニング検
査や糖尿病の診断及び治療の指標として有用されてい
る。2. Description of the Related Art A saccharified protein is a substance produced by non-enzymatically and irreversibly binding an amino group of an amino acid constituting a protein and an aldehyde group of a reducing sugar such as aldose. In addition, since the irreversible bond is called Amadori transfer, it is also called an Amadori compound. The rate of saccharified protein production depends on the concentration, time, and temperature of the protein and reducing sugar.The higher the amount of reducing sugar, the longer the contact time between the protein and reducing sugar, the less denaturation of the protein occurs. The higher the temperature, the faster the rate of saccharified protein production and the greater the production. In a living body, the concentration of a glycated protein varies depending on the half-life of the protein to be glycated, so that various information can be obtained by measuring the concentration of the glycated protein.
For example, the concentration value of glycated hemoglobin in which erythrocyte hemoglobin is glycated or glycated albumin in which plasma albumin is glycated reflects the average blood glucose level in a certain period in the past, so that screening tests in health examinations and diabetes It has been useful as an indicator for diagnosis and treatment of.
【0003】糖化たんぱく質の測定方法としての従来法
には、高速液体クロマトグラフィを利用する方法[Chro
matogr.Sci.10:659(1979)]、ホウ酸を結合させた担体
をつめたカラムを用いる方法[Clin.Chem.28:2088(198
2)]、電気泳動[ Clin.Chem.26:1598(1980)]、抗原抗
体反応を利用する方法[JJCLA 18:620(1993)、機器・試
薬16: 33-37(1993)]、などが知られているが、高価
な専用機器が必要であったり、測定結果の正確性又は多
数の検体を処理しなければならないといった迅速性に問
題があった。Conventional methods for measuring saccharified proteins include a method using high performance liquid chromatography [Chro.
Sci. 10: 659 (1979)], a method using a column packed with a carrier to which boric acid is bound [Clin. Chem. 28: 2088 (198)
2)], electrophoresis [Clin. Chem. 26: 1598 (1980)], method using antigen-antibody reaction [JJCLA 18: 620 (1993), instrument / reagent 16: 33-37 (1993)], etc. Although known, there were problems with the need for expensive dedicated equipment, the accuracy of the measurement results, or the speed with which a large number of samples had to be processed.
【0004】従来技術の抱える問題点を解決した方法と
して、糖化たんぱく質にフルクトシルアミノ酸オキシダ
ーゼを反応させ、酵素反応によって生成する過酸化水素
又は消費する酸素量を測定することで、糖化たんぱく質
を定量する方法がある。(特公平5−33997号公
報)また、フルクトシルアミノ酸オキシダーゼを用いて
糖化たんぱく質をプロテアーゼによってアミノ酸または
ペプチドまでに消化断片化させた後、糖化たんぱく質を
定量する方法がある。(特開平5−192193号公
報)これら従来から用いられている酵素は、生体試料と
して採取する時の状態、例えば抗凝固剤が及ぼす影響ま
では詳しく調べられていなかった。臨床検査において測
定に用いる生体試料として血液検体は、採血管によって
採取される。採血管は検査項目により異なるが、血清が
必要な場合は、凝固促進剤が添加された採血管を用い、
血漿が必要な場合は、抗凝固剤としてヘパリンが添加さ
れた採血管が用いられる。血糖検査の場合は、ヘパリ
ン、EDTA( EDTA・2Na、 EDTA・2K
)、フッ化ナトリウム等が単独又は複数添加されてい
る採血管が用いられるため、血液検体は数%ではあるが
添加物が含有することになる。そして検査によっては添
加物が測定に大きな影響を与えるため問題になる場合が
多い。また場合によっては他の検査に採血管を流用して
行うこともあり、血液検査で用いられるEDTA添加採
血管を糖化ヘモグロビンの検査に用いる場合もある。よ
って採血管の種類に関わらず測定できる事が望ましい。[0004] As a method for solving the problems of the prior art, a glycated protein is reacted with fructosyl amino acid oxidase, and the amount of hydrogen peroxide generated by the enzymatic reaction or the amount of consumed oxygen is measured to quantify the glycated protein. There is a way. Further, there is a method in which a glycated protein is digested and fragmented into amino acids or peptides with a protease using fructosyl amino acid oxidase, and then the glycated protein is quantified. (Japanese Unexamined Patent Publication (Kokai) No. 5-192193) These conventional enzymes have not been examined in detail in the state when they are collected as biological samples, for example, the effects of anticoagulants. A blood sample is collected by a blood collection tube as a biological sample used for measurement in a clinical test. The blood collection tube varies depending on the test items, but if serum is required, use a blood collection tube with a coagulation accelerator added.
When plasma is required, a blood collection tube to which heparin is added as an anticoagulant is used. In the case of a blood glucose test, heparin, EDTA (EDTA-2Na, EDTA-2K
), A blood collection tube to which sodium fluoride or the like is added singly or plurally is used, so that the blood sample contains an additive although it is several%. In some inspections, additives often have a problem because they have a great influence on the measurement. In some cases, a blood collection tube may be used for another test, and an EDTA-added blood collection tube used in a blood test may be used for glycated hemoglobin. Therefore, it is desirable to be able to measure regardless of the type of blood collection tube.
【0005】[0005]
【発明が解決しようとする課題】生体試料中の糖化たん
ぱく質をフルクトシルアミノ酸オキシダーゼによって測
定する場合に、EDTAを含有する検体であっても反応
阻害が起こらない酵素を用いる糖化たんぱく質の測定方
法が望まれていた。現在は臨床検査における測定装置は
全自動化が進み、測定者は検体をセットするだけで検体
のサンプリングから測定結果を得るまでが非常に簡単に
なった。更に最近では測定装置を検体搬送ラインでつな
いで迅速且つ省力化されている。この様な最新システム
にも適応できる様に用いられる採血管による影響を受け
ない測定方法が必要となる。本発明にある、糖化たんぱ
く質をフルクトシルアミノ酸オキシダーゼを用いた酵素
法によって測定する糖化たんぱく質の測定方法とは、糖
化たんぱく質をプロテアーゼでアミノ酸、ペプチドまで
に消化断片化したものをフルクトシルアミノ酸オキシダ
ーゼで測定する事を言い、プロテアーゼ処理することは
本発明における分野では公知である。When a glycated protein in a biological sample is measured by fructosyl amino acid oxidase, a method for measuring a glycated protein using an enzyme which does not inhibit the reaction even if the sample contains EDTA is desired. Was rare. At present, measurement devices in clinical tests have been fully automated, and a measurer has only to set a sample, and it is very easy to obtain a measurement result from sampling a sample. More recently, the measuring apparatus has been connected to a sample transport line to save time and labor. There is a need for a measurement method that is not affected by the blood collection tube used so as to be adaptable to such advanced systems. The method for measuring a saccharified protein in which the saccharified protein is measured by an enzymatic method using fructosyl amino acid oxidase according to the present invention is a method in which a saccharified protein is digested and fragmented into amino acids and peptides with a protease and measured with fructosyl amino acid oxidase. And treating with a protease is known in the field of the present invention.
【0006】[0006]
【課題を解決するための手段】糖化たんぱく質に特異的
に作用し、且つ通常採血管で使用される含有量の範囲内
でEDTAによる反応阻害の起こらないフルクトシルア
ミノ酸オキシダーゼは、フサリウム属の菌を、フルクト
シルリジン又はフルクトシルNα−Z−リジン(以下F
ZLと記す。)添加培地から精製分離することによって
見いだす事ができた。EDTAによるフルクトシルアミ
ノ酸オキシダーゼの反応阻害を測定するため、フルクト
シルアミノ酸オキシダーゼの基質としてFZLを用い
た。反応はフルクトシルアミノ酸オキシダーゼとEDT
Aを予め混合させた後に基質を添加して、酵素反応によ
って生成する過酸化水素量を比色法により吸光度を測定
した。EDTAを添加した時の吸光度値と添加しない時
の吸光度値を用いて阻害の影響の程度を比較した。SUMMARY OF THE INVENTION Fructosyl amino acid oxidase which specifically acts on glycated proteins and which does not inhibit the reaction by EDTA within the range of the content normally used in blood collection tubes is used to inhibit bacteria of the genus Fusarium. , Fructosyl lysine or fructosyl N α -Z-lysine (hereinafter F
Notated as ZL. ) It could be found by purifying and separating from the supplemented medium. To measure the inhibition of the reaction of fructosyl amino acid oxidase by EDTA, FZL was used as a substrate for fructosyl amino acid oxidase. The reaction is fructosyl amino acid oxidase and EDT
After mixing A in advance, the substrate was added, and the amount of hydrogen peroxide generated by the enzymatic reaction was measured for absorbance by a colorimetric method. The degree of the effect of inhibition was compared using the absorbance value when EDTA was added and the absorbance value without EDTA.
【0007】フルクトシルリジン及びFZL含有培地
は、グルコースとリジン又はNα−Z−リジンとを10
0〜150℃の温度で3〜60分間高温加圧することで
得ることができる。フルクトシルリジン及びFZL含有
培地を用いて菌の培養を行うことにより、菌が生産する
フルクトシルアミノ酸オキシダーゼはフルクトシルリジ
ン及びFZLに特異性の高い酵素を得ることができる。[0007] The medium containing fructosyl lysine and FZL contains 10% glucose and lysine or N α -Z-lysine.
It can be obtained by pressing at a high temperature of 0 to 150 ° C. for 3 to 60 minutes. By culturing bacteria using a medium containing fructosyl lysine and FZL, an enzyme having high specificity for fructosyl lysine and FZL can be obtained from the fructosyl amino acid oxidase produced by the bacteria.
【0008】フルクトシルリジン及びFZL含有培地を
用いて土壌中の微生物をスクリーニングしたところフサ
リウム属の菌として、フサリウム・オキシスポラムS−
1F4(Fusarium oxysporum S−1F4)(FER
M BP−5010)を得ることができた。When microorganisms in soil were screened using a medium containing fructosyl lysine and FZL, Fusarium oxysporum S-
1F4 ( Fusarium oxysporum S-1F4) (FER
MBP-5010) could be obtained.
【0009】フルクトシルリジン又はFZLの作製方法
を以下に述べる。グルコース0.01〜50重量%とリ
ジン又はNα−Z−リジンを0.01〜20重量%を含
む水溶液を作製して、100〜150℃の温度において
3〜60分間高温加圧処理することによって0.01〜
0.5%のフルクトシルリジン又はFZLを得ることが
できる。好ましくはグルコース200g、リジン又はN
α−Z−リジン10gを1000mlの水溶液として、
120℃、20分間高温加圧処理する。続いて逆相クロ
マトグラフィ又はイオン交換クロマトグラフィで精製す
ることによりフルクトシルリジン又はFZLを得ること
ができる。フルクトシルリジン又はFZL含有培地は、
精製したフルクトシルリジン又はFZLを培地に添加す
ることによって得られる。The method for producing fructosyl lysine or FZL is described below. Glucose 0.01 to 50% by weight and lysine or N alpha -Z- lysine to prepare an aqueous solution containing 0.01 to 20 wt%, to hot pressing treatment 3-60 minutes at a temperature of 100 to 150 ° C. 0.01 ~
0.5% fructosyl lysine or FZL can be obtained. Preferably 200 g glucose, lysine or N
10 g of α- Z-lysine as a 1000 ml aqueous solution,
A high temperature and pressure treatment is performed at 120 ° C. for 20 minutes. Subsequently, purification by reverse phase chromatography or ion exchange chromatography can yield fructosyl lysine or FZL. Fructosyl lysine or FZL containing medium
It is obtained by adding purified fructosyl lysine or FZL to the medium.
【0010】フルクトシルリジン又はFZLを添加する
培地としては、炭素源、窒素源、無機物、その他栄養源
を含有する通常の培地を用いることができる。炭素源と
しては、グルコース、キシロース、グリセリン等、窒素
源としては、ペプトン、カゼイン消化物、酵母エキス等
を用いることができる。無機物としてはナトリウム、カ
リウム、カルシウム、マンガン、マグネシウム、コバル
ト等通常の培地に含有されるものを用いることができ
る。培養は25〜37℃であって、好ましくは28℃で
培養されるのが良い。培地のpHは4.0〜8.0の範
囲内であって、好ましくは5.5〜6.0である。フサ
リウム・オキシスポラムS−1F4を同条件下で20〜
40時間、好ましくは24時間培養すると、フルクトシ
ルアミノ酸オキシダーゼを得ることができるが、24時
間による培養が最も効率の良い培養時間である。この様
にして得られた培養物は核酸や細胞壁を除去して酵素の
精製品を得ることが可能である。通常、酵素は菌体内に
蓄積されるので、培養物中の菌を破砕し、酵素を抽出す
る。菌細胞の破砕は、物理的手段又は溶媒を利用した溶
解手段、凍結処理、超音波処理、加圧などの方法があ
る。酵素の分離精製法は硫安等による塩析、エタノール
等の有機溶媒による沈殿、イオン交換クロマトグラフィ
やゲルろ過、アフィニティークロマトグラフィなどを適
宜組み合わせて行う。例えば、培養物を遠心又は吸引ろ
過して菌糸体を集め洗浄後、0.1M Tris−HCL緩衝
液(pH8.5)に懸濁し、ダイノミルによって菌糸体
を破砕する。次いで、遠心分離した上清を硫安分画、D
EAE−セファセルイオン交換クロマトグラフィで処理
することにより精製する。この様に培養液から分離して
精製された酵素をFAOD−Sと呼称して以下説明を続
ける。As a medium to which fructosyl lysine or FZL is added, a normal medium containing a carbon source, a nitrogen source, an inorganic substance and other nutrients can be used. Glucose, xylose, glycerin and the like can be used as the carbon source, and peptone, casein digest, yeast extract and the like can be used as the nitrogen source. As the inorganic substances, those contained in ordinary culture media such as sodium, potassium, calcium, manganese, magnesium, cobalt and the like can be used. The cultivation is performed at 25 to 37 ° C, preferably at 28 ° C. The pH of the medium is in the range of 4.0 to 8.0, preferably 5.5 to 6.0. Fusarium oxysporum S-1F4 under the same conditions
After culturing for 40 hours, preferably for 24 hours, fructosyl amino acid oxidase can be obtained, but culturing for 24 hours is the most efficient culturing time. From the culture thus obtained, it is possible to obtain a purified enzyme product by removing nucleic acids and cell walls. Usually, the enzyme is accumulated in the cells, so the bacteria in the culture are crushed and the enzyme is extracted. The disruption of bacterial cells includes physical means or a dissolving means using a solvent, freezing treatment, ultrasonic treatment, pressurization and the like. The enzyme is separated and purified by appropriately combining salting out with ammonium sulfate or the like, precipitation with an organic solvent such as ethanol, ion exchange chromatography, gel filtration, affinity chromatography and the like. For example, the culture is collected by centrifugation or suction filtration to collect mycelium, washed, suspended in a 0.1 M Tris-HCL buffer (pH 8.5), and crushed with a dynomill. Then, the centrifuged supernatant was fractionated with ammonium sulfate,
Purify by treatment with EAE-Sephacel ion exchange chromatography. The enzyme thus separated from the culture solution and purified is referred to as FAOD-S, and the description will be continued below.
【0011】フサリウム・オキシスポラムS−1F4に
よって生成される酵素は下記の特性を有する。酵素の存
在下でアマドリ化合物を酸化し、α−ケトアルデヒド、
アミン誘導体及び過酸化水素を生成する反応を触媒し;
安定pH4.0〜12.0、至適pHは8.0であり;
安定温度は約20〜55℃、至適温度は45℃であり;
セファクリルS−200カラムを用いたゲルろ過法で測
定した場合、分子量は約45000(45kDa)であ
る。The enzyme produced by Fusarium oxysporum S-1F4 has the following properties: Amadori compound is oxidized in the presence of an enzyme, α-ketoaldehyde,
Catalyze a reaction to produce an amine derivative and hydrogen peroxide;
Stable pH 4.0-12.0, optimal pH 8.0;
Stable temperature is about 20-55 ° C, optimal temperature is 45 ° C;
The molecular weight is about 45000 (45 kDa) as measured by a gel filtration method using a Sephacryl S-200 column.
【0012】本発明のFAOD−Sを生成する菌であ
る、フサリウム・オキシスポラムS−1F4は本発明者
らが土壌中より単離したものであり、菌学的特性はは以
下の通りである。菌の分類はブース著「ザ・ジーナス・
フサリウム(The Genus Fusarium)」(CMI.1971)の記
述に準拠した。 培地における生育状況 PDA培地、ポテト・シュクロース寒天培地、オートミ
ール培地における生育はいずれの培地でも非常に良好で
あった。25℃で7日間の培養によって、菌体はフェル
ト状に培養容器全体に広がって白色ないし薄い紫色を呈
する。 分類学的性質 分離した菌の同定は、微生物をオートミール培地で培養
し、分生子(conidia)や(conidiophor)などの顕微鏡
下の形態観察から行った。その結果、コロニーの色は白
色ないし薄い紫色であり、ミクロコロニディア(microc
onidia)とマクロコニデア(macroconidia)及び厚膜胞
子を多数形成する。マクロコニディアの形状が三日月型
であり、3〜5の隔壁を有していること、ミクロコニデ
ィアの形状が卵型ないし長円系形であり、小型分生胞子
を擬頭状に形成することから、フサリウム・オキシスポ
ラム(Fusarium oxysporum)と同定された。本菌は、工
業技術院生命工学工業技術研究所に、受託番号FERM
BP-5010(寄託日:平成6年2月24日)の下で
寄託されている。Fusarium oxysporum S-1F4, a bacterium that produces FAOD-S of the present invention, was isolated from the soil by the present inventors, and has the following mycological properties. For the classification of bacteria, see The Genus
Fusarium (The Genus Fusarium) "(CMI. 1971). Growth in culture medium Growth in PDA medium, potato sucrose agar medium and oatmeal medium was very good in any medium. After culturing at 25 ° C. for 7 days, the cells spread in a felt-like manner over the entire culture vessel and exhibit a white or pale purple color. Taxonomic properties The isolated bacteria were identified by culturing the microorganisms in an oatmeal medium and observing morphology under a microscope such as conidia and (conidiophor). As a result, the color of the colony is white to pale purple, and microcolonia (microc
onidia), macroconidia, and chlamydospores. Macroconidia has a crescent shape, 3 to 5 partitions, and microconidia has an oval or elliptical shape, forming small conidiospores in a pseudohead shape. Therefore, it was identified as Fusarium oxysporum. This bacterium was provided to the National Institute of Bioscience and Biotechnology by the National Institute of Advanced Industrial Science and Technology
Deposited under BP-5010 (Deposit date: February 24, 1994).
【0013】フサリウム・オキシスポラムS−1F4が
生成したFAOD−Sの特性を詳細に説明する。 一般的な誘導特性 FAOD−Sはフルクトシルリジン又はFZLによって
誘導される誘導酵素であり、フルクトシルリジン又はF
ZLの存在下でフサリウム・オキシスポラムS−1F4
を培養することにより得ることができる。FAOD−S
は、グルコースとリジン又はグルコースとNα−Z−リ
ジンを別個に調製した培地によっては酵素を誘導するこ
とが出来ない。The characteristics of FAOD-S produced by Fusarium oxysporum S-1F4 will be described in detail. General Inducing Properties FAOD-S is an inducing enzyme induced by fructosyl lysine or FZL,
Fusarium oxysporum S-1F4 in the presence of ZL
Can be obtained by culturing. FAOD-S
Is unable to induce enzyme by a separately prepared medium glucose and lysine or glucose and N alpha -Z- lysine.
【0014】反応特異性及び基質特異性 FAOD−Sは、 R1−CO−CH2+O2+H2O→ R1−CO−CHO+R2−NH+H2O2 (式中、 R1はアルドース残基、 R2はタンパク質残基
を表す)で示される反応における触媒作用をする。本発
明によるFAOD−Sは、上述した反応を示し特にフル
クトシルリジン又はFZLに対して高い特異性を示し
た。精製酵素は、フサリウム・オキシスポラムS−1F
4を24時間培養した後、培養物を吸引ろ過して菌糸体
を集めて洗浄した後、0.1MTris-HCl緩衝液(pH
8.5)に懸濁させダイノミルにより菌糸体を破砕し、
上清を硫安分画、DEAE−セファセルイオン交換クロ
マトグラフィで精製した。Reaction specificity and substrate specificity FAOD-S is represented by R 1 -CO-CH 2 + O 2 + H 2 O → R 1 -CO-CHO + R 2 -NH + H 2 O 2 (where R 1 is an aldose residue , R 2 represents a protein residue). FAOD-S according to the present invention showed the above-mentioned reaction, and particularly showed high specificity for fructosyl lysine or FZL. The purified enzyme was Fusarium oxysporum S-1F
4 was cultured for 24 hours, the culture was filtered by suction, and the mycelium was collected and washed, and then 0.1 M Tris-HCl buffer (pH
8.5) The suspension was suspended in mycelium by Dynomill,
The supernatant was purified by ammonium sulfate fractionation and DEAE-Sephacel ion exchange chromatography.
【0015】pH及び温度の条件 pH条件の測定 0.1M酢酸、リン酸カルシウム(K−P)、Tris-
HCl及びグリシン−NaOH緩衝液(pH4.0〜1
2.0)にFAOD−Sを加え30℃10分間インキュ
ベートした後、通常の条件(30℃、pH8.0)で活
性を測定した。 温度条件の測定 0.1M Tris−HCl緩衝液(pH8.0)中で
25〜60℃の温度条件にFAOD−Sを加え、10分
間インキュベートした後、通常の条件で活性を測定し
た。上述した方法によって測定を行った結果、FAOD
−Sの安定なpH域は、pH4.0〜12.0であって
好ましくは8.0である。また、安定な温度域は20〜
55℃であり、30℃以上で徐々に失活する。また、酵
素反応は30〜50℃、好ましくは40〜50℃、より
好ましくは45℃で効率良く進行する。PH and temperature conditions Measurement of pH conditions 0.1 M acetic acid, calcium phosphate (KP), Tris-
HCl and glycine-NaOH buffer (pH 4.0-1
2.0), FAOD-S was added, and the mixture was incubated at 30 ° C. for 10 minutes. Then, the activity was measured under normal conditions (30 ° C., pH 8.0). Measurement of Temperature Conditions FAOD-S was added to a temperature condition of 25 to 60 ° C. in a 0.1 M Tris-HCl buffer (pH 8.0), incubated for 10 minutes, and then the activity was measured under normal conditions. As a result of measurement by the method described above, FAOD
The stable pH range of -S is pH 4.0 to 12.0, and preferably 8.0. The stable temperature range is 20 ~
55 ° C. and gradually deactivates above 30 ° C. Further, the enzymatic reaction proceeds efficiently at 30 to 50 ° C, preferably 40 to 50 ° C, more preferably 45 ° C.
【0016】[0016]
【発明の実施の形態】上述した方法によって得られた酵
素を用いて、解糖阻止剤としてEDTAが及ぼす影響の
程度を確認した。EDTA・2Naの溶液を作製し、基
質としてFZLを用いてフルクトシルアミノ酸オキシダ
ーゼによって発生する過酸化水素をペルオキシダーゼに
よる定量法を用いて測定を行った。BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION Using the enzyme obtained by the above-mentioned method, the degree of the effect of EDTA as a glycolytic inhibitor was confirmed. A solution of EDTA · 2Na was prepared, and hydrogen peroxide generated by fructosyl amino acid oxidase was measured using FZL as a substrate by a quantitative method using peroxidase.
【0017】測定は、まず下記のEDTAおよびフルク
トシルアミノ酸オキシダーゼを添加して混合した後に3
7℃で10分間インキュベーションを行う。 10mM EDTA・2Na 100μl 6U/ml FAOD−S 10μl 次に下記に示した基質溶液を含む発色溶液を添加して、 10mM 糖化Nα−Z−リジン 100μl 3mM 4−アミノアンチピリン 30μl 3mM N−エチル−N−(2−ハイドロキシ−3−スルホプロピル) −3−メチルアラニン 30μl 60U/ml ペルオキシダーゼ 30μl 0.1M トリス−塩酸緩衝液(pH8) 500μl これらを混合して37℃で30分間インキュベーション
を行った後、555nmにおける吸光度を測定した。E
DTA・2Naの代わりに水を同量添加した対照サンプ
ルを用意して同様に測定を行いEDTA・2Naの影響
の程度を比較した。また、 EDTA・2Naに阻害を
受けることが分かっているジベレラ属由来のフルクトシ
ルアミノ酸オキシダーゼ(以下FAOD−Gと記す)に
ついても同様に測定を行った。First, the following EDTA and fructosyl amino acid oxidase were added and mixed.
Incubate at 7 ° C for 10 minutes. By adding color solution containing 10mM EDTA · 2Na 100μl 6U / ml FAOD-S 10μl then substrate solution shown below, 10 mM glycated N alpha -Z- lysine 100 [mu] l 3 mM 4-aminoantipyrine 30 [mu] l 3 mM N-ethyl -N -(2-Hydroxy-3-sulfopropyl) -3-methylalanine 30 μl 60 U / ml peroxidase 30 μl 0.1 M Tris-HCl buffer (pH 8) 500 μl These were mixed and incubated at 37 ° C. for 30 minutes. The absorbance at 555 nm was measured. E
A control sample to which the same amount of water was added instead of DTA · 2Na was prepared and measured in the same manner to compare the degree of influence of EDTA · 2Na. In addition, measurement was similarly performed for fructosyl amino acid oxidase derived from Gibberella genus known to be inhibited by EDTA · 2Na (hereinafter referred to as FAOD-G).
【0018】EDTAの代わりに水を添加した時の吸光
度は、1.75であった。この数値を参考にして各FA
ODのEDTAによる影響を見てみると、FAOD−S
の吸光度は1.78で全く影響が見られなかったが、F
AOD−Gでは吸光度が1.05で酵素反応がEDTA
によって40%も阻害されていることが分かった。この
ことからFAOD−SはEDTA・2Naによって阻害
を受けないことが判明した。The absorbance when water was added instead of EDTA was 1.75. Refer to this numerical value for each FA
Looking at the influence of EDTA on OD, FAOD-S
Had no absorbance at 1.78, but F
In AOD-G, the absorbance is 1.05 and the enzyme reaction is EDTA.
Was found to be inhibited by as much as 40%. This proved that FAOD-S was not inhibited by EDTA · 2Na.
【0019】[0019]
【発明の効果】本発明によれば、フサリウム・オキシス
ポラム由来のフルクトシルアミノ酸オキシダーゼを用い
ることにより、検体に抗凝固剤としてEDTAが含有さ
れていても酵素反応が阻害を受けずに糖化たんぱく質を
正確に測定することが可能となった。According to the present invention, by using fructosyl amino acid oxidase derived from Fusarium oxysporum, even if EDTA is contained in the sample, the glycated protein can be accurately detected without inhibiting the enzyme reaction. It became possible to measure.
【0020】[0020]
【図1】 FAOD−SおよびFAOD−GのEDTA
による影響を示す。FIG. 1. EDTA of FAOD-S and FAOD-G
The effect of
【手続補正書】[Procedure amendment]
【提出日】平成9年7月4日[Submission date] July 4, 1997
【手続補正1】[Procedure amendment 1]
【補正対象書類名】図面[Document name to be amended] Drawing
【補正対象項目名】全面[Correction target item name] All
【補正方法】追加[Correction method] Added
【補正内容】[Correction contents]
【図1】 FIG.
Claims (2)
アミノ酸オキシダーゼによって測定する場合において、
該試料がEDTAを含有する検体を用いて測定する事を
特徴とする糖化たんぱく質の測定方法。(1) When glycated protein in a sample is measured by fructosyl amino acid oxidase,
A method for measuring a glycated protein, wherein the sample is measured using a sample containing EDTA.
成する菌がフサリウム・オキシスポラムS−1F4(Fu
sarium oxysporum S−1F4)(FERMBP−50
10)である請求項1に記載する糖化たんぱく質の測定
方法。2. A bacterium that produces fructosyl amino acid oxidase is Fusarium oxysporum S-1F4 (Fu
sarium oxysporum S-1F4) (FERMBP-50)
The method for measuring a saccharified protein according to claim 1, which is 10).
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP14351097A JPH10313893A (en) | 1997-05-16 | 1997-05-16 | Measurement of saccharified protein |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
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JP14351097A JPH10313893A (en) | 1997-05-16 | 1997-05-16 | Measurement of saccharified protein |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
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JPH10313893A true JPH10313893A (en) | 1998-12-02 |
Family
ID=15340419
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
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JP14351097A Pending JPH10313893A (en) | 1997-05-16 | 1997-05-16 | Measurement of saccharified protein |
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Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH10313893A (en) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2003064683A1 (en) * | 2002-01-31 | 2003-08-07 | Arkray, Inc. | Method of quantifying glycosylated protein using redox reaction and quantification kit |
US20150140029A1 (en) * | 2012-03-13 | 2015-05-21 | University of Macau, Av. Padre Tomas Pereira Taipa | Extracts from fusarium oxysporums and use thereof |
-
1997
- 1997-05-16 JP JP14351097A patent/JPH10313893A/en active Pending
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2003064683A1 (en) * | 2002-01-31 | 2003-08-07 | Arkray, Inc. | Method of quantifying glycosylated protein using redox reaction and quantification kit |
US8026078B2 (en) | 2002-01-31 | 2011-09-27 | Arkray Inc. | Method of quantifying glycosylated protein using redox reaction and quantification kit |
US20150140029A1 (en) * | 2012-03-13 | 2015-05-21 | University of Macau, Av. Padre Tomas Pereira Taipa | Extracts from fusarium oxysporums and use thereof |
US9950020B2 (en) * | 2012-03-13 | 2018-04-24 | University Of Macau | Extracts from fusarium oxysporum and use thereof |
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