【発明の詳細な説明】
酵素的抗菌組成物 技術分野
本発明は、酵素的抗菌組成物(enzymatic antimicrobia
l composition)及びその使用に関する。より具体的に言えば、本発
明は、バナジウムハロペルオキシダーゼ、過酸化水素源及びハロゲン化物源を含
む酵素的抗菌組成物に関する。本発明はさらに、組換えDNA技術を用いた、酵
素的抗菌組成物に用い得るバナジウムハロペルオキシダーゼの製造に関する。背景及び従来技術
当業界において種々の酵素的抗菌組成物が公知である。例えば、WO−A−9
4/04217号は、抗菌的に有効な濃度の次亜チオシアン酸イオン(OSCN-
)を生成し得る安定化歯磨き組成物を開示している。該組成物は、過酸化水素
を産生するオキシドレダクターゼ及び通常唾液中に存在するチオシアン酸イオン
を抗菌性次亜チオシアン酸イオン(OSCN-)に酸化し得るペルオキシダーゼ
酵素を含んでいる。適当なペルオキシダーゼには、ラクトペルオキシダーゼ、ミ
エロペルオキシダーゼ、唾液ペルオキシ
ダーゼ及びクロロペルオキシダーゼが含まれる。
ハロペルオキシダーゼを含む酵素的抗菌組成物は、EP−A−500387号
(Exoxemis)にも開示されている。ハロペルオキシダーゼは、過酸化物
及びハロゲン化物の存在下、選択的に標的微生物に結合して、その増殖を阻止す
ると記載されている。EP−A−500387号は、適当なハロペルオキシダー
ゼとして、ミエロペルオキシダーゼ(MPO)、好酸球オキシダーゼ(EPO)
、ラクトペルオキシダーゼ(LPO)及びクロロペルオキシダーゼ(CPO)を
記載している。ハロゲン化物と過酸化水素の比率がハロペルオキシダーゼの安定
性及び機能性に関する重要な因子であると報告された。過酸化水素は、極く低比
率であってもハロペルオキシダーゼ機能を阻害し得るのに対し、ハロゲン化物は
極めて高比率で酵素反応を阻止し得る。該比率は広い範囲内で変動し得るが、約
50以上に保つのが好ましい。
過酸化水素の望ましくない副反応のために、抗菌組成物中の過酸化水素の実際
の濃度は予測値より低いと考えられる。従って、本出願人は、抗菌組成物に、慣
用量のハロゲン化物と組み合わせて、高出発濃度の過酸化水素を用い得
るようにするのがより望ましいことを見いだした。
さらに、公知の酵素的抗菌組成物とは異なる抗菌活性スペクトルを有する酵素
的抗菌組成物に対する要望がある。該組成物は、撲滅困難な微生物、例えば、S
treptococcus faecalisに対する抗菌活性を有し得るのが
好ましい。他の状況下では、食品を腐敗させ得ることから、非病原性微生物をも
撲滅するのが望ましい。
従って、本発明の目的は、上記欠点の一つ以上を排除する酵素的抗菌組成物を
提供することである。
驚くべきことには、本出願人は、バナジウムハロペルオキシダーゼを用いると
、特に有効な酵素的抗菌組成物を処方し得ることを見いだした。
上記従来技術には、抗菌組成物に用いるための多様なハロペルオキシダーゼが
含まれるが、これまで、バナジウムハロペルオキシダーゼ種は特に注目されてい
なかった。
バナジウムハロペルオキシダーゼは、該酵素中の補欠分子族がバナジン酸(バ
ナジウム V)に類似の構造特性を有しているのに対し、他のハロペルオキシダ
ーゼはヘムペルオキシダーゼであるという点で、他のハロペルオキシダーゼと異
なっている。
本発明の他の目的は、バナジウムハロペルオキシダーゼをコードする遺伝子を
クローン化し、その配列を決定して増殖により好都合な他の微生物中で該造伝子
を発現させ、且つ組換えDNA技術を用いて産生され得る酵素の量を増大させる
ことである。
ある種のバナジウムブロモペルオキシダーゼは、海草表面に天然に見いだされ
る(Weverら,1991)。海水中の健全な植物では、バナジウムブロモペ
ルオキシダーゼは、加えられた基質に接近可能であり、過酸化水素を添加すると
HOBrを放出し得る。該酵素の役割は末だ解明されていないが、海水中での高
度に酸化性のHOBrの形成は、植物表面上の微生物又は菌類の増殖を阻止する
植物の防御システムの一部であると考えられる。
海草Ascophyllum nodosumから非ヘムバナジウムブロモペ
ルオキシダーゼが発見されて以来、多数の他の海草種もこれらの酵素を含んでい
ることが示された。特に、A.nodosumから得られるブロモペルオキシダ
ーゼについては広範な研究が行われ、特性が決定された(総説については参考文
献2−3を参照されたい)。これらの酵素中の補欠分子族は、バナジン酸(バナ
ジウム
V)に類似の構造特性を有している。該酵素に対して誘導された触媒機構におい
て、過酸化水素が該酵素と反応して過酸化水素/酵素複合体を形成し、その後で
、臭化物及びプロトンが該複合体と反応して、酵素/HOBr複合体を形成する
。該複合体が崩壊すると、酵素とHOBrを生ずることが示された(De Bo
erら,1988)。これらのバナジウムブロモペルオキシダーゼは、水性及び
有機媒体中で高い操作安定性を有することも示された(De Boerら,198
8)。例えば、これらの酵素は、代謝回転条件下に3週間安定であったし、有機
溶媒、例えば、アセトン、メタノール、エタノール(最大60v/v%まで存在
する)及び1−プロパノール中で、活性を失なうことなく1ケ月以上保存可能で
あった。しかし、該酵素は、臭化物が存在するか又は添加される潜在的用途や、
海草から得られるこれらのブロモペルオキシダーゼをコードする遺伝子をクロー
ン化して、そのアミノ酸配列を決定しようとする試みはうまくいかない、という
欠点を有している。
Caldariomyces fumagoから得られる現存の公知ヘム含有
クロロペルオキシダーゼは、その固有の不安定性及び2.75という低い最適p
Hのために、
その用途が大いに制限され、酵素的抗菌組成物の製造にはあまり適していない。
同様な理由から、HOClを発生し得るヒト白血球由来酵素ミエロペルオキシダ
ーゼ(MPO)の使用が妨げられる(A.R.J.Bakkenistら,19
80)。
デマチウム科ヒホミケス(hyphomyctes)類が極めて安定にハロペ
ルオキシダーゼを分泌するという論文(参考文献7、8参照)が既に発表されて
いる。特に、陸生真菌類Curvularia inaequalisが、塩化
物に対して高親和性を有し、約pH5.5という塩素化反応に最適なpHを有す
るバナジウムクロロペルオキシダーゼを分泌することが示された(J.W.P.
M.Van Schijndelら,1993)。海草から得られるブロモペル
オキシダーゼの場合と同様に、クロロペルオキシダーゼ中の補欠分子族は、バナ
ジン酸(バナジウムV)に類似の構造特性を有している。その後のより詳細な研
究(J.W.P.M.Van Schijndelら,1994)において、過
酸化水素による塩化物酸化の酵素反応速度が海草A.nodosumから得られ
るバナジウムブロモペルオキシダーゼのものと類似していることが示さ
れた。さらに、3種の異なる方法により、該酵素が反応生成物として酸化塩素種
(HOCl)を産生し、それ自体該産物に対する耐性を有していることが示され
た。該酵素は、高い熱安定性(Tm 90℃)を有し、40%メタノール、エタ
ノール及びプロパノールのような有機溶媒中で高安定性を示す。発明の定義
本発明は、第1の態様において、バナジウムハロペルオキシダーゼ、ハロゲン
化物源及び過酸化水素又は過酸化水素源を含む酵素的抗菌組成物に関する。
本発明は、第2の態様により、複製起源、転写・終結調節配列、及びバナジウ
ムハロペルオキシダーゼをコードするDNA配列の少なくとも一部を含む発現ベ
クターを用いて適当な宿主を形質転換し、該宿主を、構造遺伝子を発現させ得る
条件下に培養し、バナジウムハロペルオキシダーゼを単離することによる、バナ
ジウムハロペルオキシダーゼの製造に関する。発明の詳細な説明
(a)バナジウムハロペルオキシダーゼ
本発明の酵素的抗菌組成物は、第1成分としてバナジウ
ムハロペルオキシダーゼを含む。バナジウムハロペルオキシダーゼは、原則とし
て、当業界において開示されている種々のバナジウムハロペルオキシダーゼから
選択し得る。例えば、US−A−4707466号に記載のようなCurvul
aria inaequalisから産生されたバナジウム(非ヘム)ハロペル
オキシダーゼを用いてよい。あるいは、J.W.P.M.Van Schijn
delら(1993)の方法に従って、Curvularia inaequa
lis(CBS 102.42)からクロロペルオキシダーゼを単離・精製して
もよい。
他のバナジウムハロペルオキシダーゼ源には、Drechslera bis
eptata(CBS 371.72)、Drechslera fugax(CBS
509.77)、Drechslera nicotiae(CBS 655.74)
、Drechslera subpapendorfii(656.74)、E
mbelisia hyacinthi(416.71)、Embelisia
didymospora(CBS 766)、Ulocladium char
tarum(200.67)及びUlocladium botrytis(4
52.72)が含まれる。
あるいは、複製起源、転写及び終結調節配列、並びにバナジウムハロペルオキ
シダーゼをコードするDNA配列を含む発現ベクターを用いて適当な宿主を形質
転換し、該宿主を構造遺伝子を発現させ得る条件下に培養し、バナジウムハロペ
ルオキシダーゼを単離することによる組換えDNA技術を用いて、バナジウムハ
ロペルオキシダーゼを製造し得る。これは、後述の実施例に詳細に記載する。
(b)ハロゲン化物イオン源
本発明の衛生組成物の第2成分はハロゲン化物イオン源である。これらはいず
れのハロゲン化物イオンであってもよいが、最も有効であるという理由でヨウ化
物又は塩化物イオンが好ましい。塩化ナトリウムが最も好ましいハロゲン化物イ
オン源である。ハロゲン化物を本発明の酵素的抗菌組成物に加えてもよいし、水
道水中に天然に存在し、通常2〜5mMのオーダーであるハロゲン化物を用いて
もよい。
(c)過酸化水素源
本発明の衛生組成物は、過酸化水素源又は過酸化水素発生系をさらに含む。適
当な過酸化水素発生系の例は、過ホウ酸塩又は過炭酸塩、好ましくは過炭酸ナト
リウム又は過
ホウ酸ナトリウムである。
過酸化水素は、酵素的過酸化水素発生系によっても供給され得る。酵素的過酸
化水素発生系は、原則として、当業界において開示されている種々の酵素的過酸
化水素発生系から選択してよい。例えば、アミンオキシダーゼとアミン、アミノ
酸オキシダーゼとアミノ酸、乳酸オキシダーゼと乳酸塩、コレステロールオキシ
ダーゼとコレステロール、尿酸オキシダーゼと尿酸、又はキサンチンオキシダー
ゼとキサンチンを用い得る。しかし、好ましいのは、グルコースオキシダーゼと
グルコースの組合わせである。
グルコースオキシダーゼの量は、その比活性及び存在し得る残留カタラーゼの
活性に依存するが、例えば、一般に本発明の洗剤組成物は、該組成物1g又は1
ml当たり、10〜1000、好ましくは、20〜500単位のグルコースオキ
シダーゼを含むと言える。酵素活性の1単位は、標準条件下に、1分間に1μm
olの基質を変換するに要する量と定義されている。
(d)他の成分
本発明の酵素的抗菌組成物は一般に、0.01〜50重量%、好ましくは、0
.1〜5.0重量%の1種以上の界
面活性剤又は湿潤剤を含んでいる。適当な界面活性剤又は洗浄活性化合物は、セ
ッケン又は非セッケンアニオン界面活性剤、非イオン界面活性剤、カチオン界面
活性剤、両性若しくは双性イオン化合物である。界面活性剤系は通常、1種以上
のアニオン界面活性剤及び1種以上の非イオン界面活性剤を含んでいる。界面活
性剤系は、両性又は双性イオン界面活性剤化合物をさらに含んでいてもよいが、
該化合物が比較的高価であるために普通は望ましくない。
一般に、界面活性剤系の非イオン及びアニオン界面活性剤は、Schwart
z及びPerryによる“Surface Active Agents”第1巻
、Schwartz、Perry及びBerchによるInterscienc
e 1949,第2巻、Interscience 1958、Manufact
uring Confectioners社により出版された“McCutche
on’s Emulsifiers and Detergents”の最新版、
又は“Tenside−Taschenbuch”,H.Stache,第2巻,
Carl Hauser Verlag,1981に記載の界面活性剤から選択し
得る。
使用し得る適当な非イオン洗剤化合物には、特に、疎水性基及び反応性水素原
子を有する化合物、例えば、脂肪族アルコール、酸、アミド又はアルキルフェノ
ールと、アルキレンオキシド、特にエチレンオキシドのみ若しくはプロピレンオ
キシドを含むエチレンオキシドとの反応生成物が含まれる。特定の非イオン洗剤
化合物は、一般に5〜25EO、即ち、1分子当たり5〜25単位のエチレンオ
キシドのC6−C22アルキルフェノール/エチレンオキシド縮合物、及び脂肪族
C8−C18第1級若しくは第2級直鎖若しくは分枝鎖アルコールと一般に5−4
0EOのエチレンオキシドとの縮合物である。
使用し得る適当なアニオン洗剤化合物は、通常、約8〜約22個の炭素原子を
含むアルキル基を有する水溶性有機硫酸及びスルホン酸アルカリ金属塩であって
よい。アルキルという用語は、高級アシル基のアルキル部分を含むものとして用
いられている。適当な合成アニオン洗剤化合物の例は、アルキル硫酸ナトリウム
及びカリウム、特に、例えば、牛脂又はヤシ油から産生された高級C8−C18ア
ルコールを硫酸化して得られたもの、アルキルC9−C20ベンゼンスルホン酸ナ
トリウム及びカリウム、特に、線状第2
級アルキルC10−C15ベンゼンスルホン酸ナトリウム;並びに、牛脂又はヤシ油
から誘導された高級アルコールエーテル及び石油から誘導された合成アルコール
である。好ましいアニオン洗剤化合物は、C11−C15アルキルベンゼンスルホン
酸ナトリウム及びC12−C18アルキル硫酸ナトリウムである。
さらに使用可能なものは、EP−A−328177号(Unilever)に
記載のもののような塩析耐性を示す界面活性剤、EP−A−070074号に記
載のアルキルポリグリコシド界面活性剤、及びアルキルモノグリコシドである。
好ましい界面活性剤系は、アニオン洗浄活性物質と非イオン洗浄活性物質との
混合物、特に、EP−A−346995号(Unilever)に記載のアニオ
ン界面活性剤と非イオン界面活性剤群及びその例である。特に好ましいのは、C16
−C18第1級アルコール硫酸アルカリ金属塩とC12−C15第1級アルコール3
−7EOエトキシレートとの混合物である界面活性剤系である。
非イオン洗剤が、界面活性剤系の10重量%を超える量、例えば、25〜90
重量%の量で存在するのが好ましい。
アニオン界面活性剤は、例えば、界面活性剤系の約5〜約40重量%の範囲の量
で存在してよい。
本発明の酵素的洗剤組成物は、増粘剤のような抗菌組成物に通常用いられてい
る他の成分を含んでいてもよい。この点で特に有用なのは、EP−A−3142
32号(Unilever)に開示されている界面活性剤組合わせであり、該組
合わせは、水に溶解すると増粘ゲルとなる。
本発明の抗菌組成物を用いると、硬質表面の洗浄及び繊維製品の洗浄に対する
衛生上の利点が得られるだけでなく、病院のような産業/施設における衛生及び
洗浄、並びに医療器具の洗浄及び消毒という利点も得られる。他の用途は、乳業
における搾乳装置の消毒用である。該抗菌組成物は、異臭の原因となる細菌を撲
滅する能力を有するために、脱臭剤に用いても好結果を得ることができる。
本発明の抗菌組成物は、使用前に水に溶かす粉末形態で使用し得るが、液体製
品又はゲルとして処方してもよい。該製品形態においては、組成物を使用する時
まで次亜ハロゲン酸塩(hypohalite)の生成が開始されないことが重
要である。これは、例えば、周知の方法で酵素をカプセル封入して、酵素とその
基質とを物理的に分離する
ことにより達成し得る。
本発明の酵素的抗菌組成物を用いる場合、水を添加して該組成物を5〜100
倍に希釈すると、有効な抗菌活性を有する媒体が得られる。次いで、該媒体を消
毒すべき表面に接触させる。
以下の非限定的実施例により、本発明を詳細に説明する。実施例1 次亜塩素酸塩の最小発育阻止濃度(MIC) 材料
:
この実施例に用いた細菌株は、Escherichia coli NCTC
900、Pseudomonas aeruginosa ATCC 15442
、Staphylococcus aureus ATCC 13565、Str
eptococcus faecalis NCTC 1092及びLister
ia innocua ATCC 33090 血清型 6Bであった。細菌を、ブ
レインハートインフュージョン(BHI)ブロス培地中30℃で15〜18時間
増殖させた。培養後、クエン酸緩衝液pH5.5(20mM Na3クエン酸/N
aOH緩衝液+10mMNaCl)中で細菌株を2回洗浄した。細菌懸濁液をエ
ッペンドルフ遠心分離機で遠心(14,000rpmで5分)し、次いで、上清
を除去した後、細菌ペレットをクエン酸緩衝液に再懸濁した。次いで、各細菌懸
濁液に対してこの洗浄手順をもう一度繰り返した。次いで、2回洗浄した細菌懸
濁液をクエン酸緩衝液pH5.5で希釈して、約107
細菌/mlの懸濁液を得る。洗浄段階の間、細胞を氷上に維持した。緩衝液及
びBSA溶液(クエン酸緩衝液pH5.5中1%w/v)をフィルター殺菌し、
4℃で貯蔵した。貯蔵溶液(107,000ppm)を無菌脱イオン水で希釈し
て次亜塩素酸塩溶液を調製した。方法
:
無菌法(sterile technique)を用い、クエン酸緩衝液pH
5.5中約107細菌/mlの懸濁液を調製した。該懸濁液からの1.9mlア
リコートを無菌管に加えた。次いで、次亜塩素酸塩の希釈範囲を得るように、該
管に種々の濃度の冷次亜塩素酸塩溶液0.1mlを加えた。該管を磁気攪拌機で
連続的に攪拌した。さらに、次亜塩素酸塩溶液の代わりに無菌緩衝液のみを加え
たブランク測定も行った。試料を30℃できっかり5分間インキュベートした。
インキュベーション後、反応混合物から1mlを採取し、9mlの冷BSA(1
%w/v)溶液に加え、直ちに氷上に置いた。これで、次亜塩素酸塩と微生物と
の反応を停止した。試料を10-1〜10-5に希釈し、種々の希釈液からの100
μl試料を標識BHI−寒天プレートにのせて、1ml当たりのコロニー形成単
位(CF
U)としての生存率を測定した。次いで、プレートを30℃で15〜18時間イ
ンキュベートした。このインキュベーション期間後に検出可能なCFUが存在し
なかった場合には、プレートを30℃でさらに24時間インキュベートする。定義
:最小発育阻止濃度(MIC値)は、本明細書では、用いた実験条件下に、
テストした特定の微生物のコロニー形成単位を少なくともlog6減少させる次
亜塩素酸塩の濃度と定義する。
得られた結果を表Iに示す。検出された値は文献記載のものと同一範囲にある
。
実施例2 次亜塩素酸塩及び、Curvularia inaequa lis由来バナジウムクロロペルオキシダーゼ(V−CPO)により酵素的に産 生させた次亜塩素酸塩の最小発育阻止濃度
この実施例では、次亜塩素酸塩の殺菌作用を、Curvularia ina
equalisから得られたバナジウムクロロペルオキシダーゼ(V−CPO)
により酵素的に産生させた次亜塩素酸塩の殺菌作用と比較する。比較を可能にす
るために、マイクロポンプを用いた。これは、実験の間の次亜塩素酸塩の濃度を
、次亜塩素酸塩を酵素的に産生させる状況と同じプロフィールにするために行っ
た。さらに、実験の各時点に存在する次亜塩素酸塩の量を知るために、実験条件
下にV−CPO活性を極めて慎重に測定した。材料
:
この実施例に用いた細菌株は、Escherichia coli NCTC
900、Pseudomonas aeruginosa ATCC 15442
、Staphylococcus aureus ATCC 13565、Str
eptococcus faecalis NCTC 1092及びLister
ia innocua ATCC
33090血清型 6Bであった。細菌を、ブレインハートインフュージョン(
BHI)ブロス培地中30℃で15〜18時間増殖させた。培養後、クエン酸緩
衝液pH5.5(20mM Na3クエン酸/NaOH緩衝液+10mMNaCl
)中で細菌株を2回洗浄した。細菌懸濁液をエッペンドルフ遠心分離機で遠心(
14,000rpmで5分)し、次いで、上清を除去した後、細菌ペレットをク
エン酸緩衝液に再懸濁した。次いで、各細菌懸濁液に対してこの洗浄手順をもう
一度繰り返した。次いで、2回洗浄した細菌懸濁液をクエン酸緩衝液pH5.5
で希釈して、約107細菌/mlの懸濁液を得た。洗浄段階の間、細胞を氷上に
維持した。緩衝液及びBSA溶液(クエン酸緩衝液pH5.5中1%w/v)を
フィルター殺菌し、4℃で貯蔵した。貯蔵溶液(107,000ppm)を無菌
脱イオン水で希釈して次亜塩素酸塩溶液を調製した。30%貯蔵溶液を無菌脱イ
オン水で希釈してH2O2溶液を調製した。Difcoからカシトーン(casi
tone)を得た。Van Schijndelら(1993)に従って、Cu
rvularia inaequalisからクロロペルオキシダーゼを精製し
た。分光光度計を用い、20mM クエ
ン酸ナトリウム緩衝液pH5.5、10mM NaCl、100μM H2O2、5
0μM モノクロロジメドン中30℃で、モノクロロジメドン(e 290nm=
20.2mM-1.cm-1)からジクロロジメドン(e 290nm=0.2mM- 1
.cm-1)への変換を経過観察して、Cl-からHOClへの変換におけるクロ
ロペルオキシダーゼ活性を測定した。1単位のクロロペルオキシダーゼを、1分
当たりに1μmolのモノクロロジメドン(Sigma)を変換する酵素の量と
定義する。方法
:
無菌法を用い、クエン酸緩衝液pH5.5中約107細菌/mlの懸濁液を調
製した。該懸濁液からの1.8mlアリコートを無菌反応容器に加え、これを、
実験期間中磁気攪拌機で連続的に攪拌した。次いで、V−CPOの希釈範囲を得
るように、該反応容器に種々の濃度(計算については、以下参照)のV−CPO
溶液0.2mlを加えた。また、0.2mlのV−CPO溶液の代わりに0.2
mlの無菌緩衝液を加えたブランク測定も行った。反応容器を30℃でインキュ
ベートし、次いで、0.5mlのH2O2貯蔵溶液を加えてV−CPO反応を開始
した。用いたH2
O2貯蔵溶液濃度は、生成される次亜塩素酸塩濃度に依存し、H2O2の最終濃度
(フラックスの終わりの)が次亜塩素酸塩の最終濃度に対して5倍モル過剰にな
るように選択した。試料を30℃できっかり5分間インキュベートした。インキ
ュベーション後、1mlの反応混合物を取り出し、9mlの冷BSA(1%w/
v)溶液に加え、直ちに氷上に置いた。これで、次亜塩素酸塩と微生物との反応
を停止した。試料を10-1〜10-5に希釈し、種々の希釈液からの100μl試
料を標識BHI−寒天プレートにのせて、1ml当たりのコロニー形成単位(C
FU)としての生存率を測定した。次いで、プレートを30℃で15〜18時間
インキュベートした。このインキュベーション期間後に検出可能なCFUが存在
しなかった場合には、プレートを30℃でさらに24時間インキュベートする。
マイクロポンプを用い、得られたMIC値を同量の次亜塩素酸塩を加えたとき
に得られたMIC値と比較した。これは、以下のように行った。
無菌法を用い、クエン酸緩衝液pH5.5中約107細菌/mlの懸濁液を調
製した。この懸濁液からの1.8mlアリコートを無菌反応容器に加え、これを
、実験期間中
磁気攪拌機で連続的に攪拌した。反応容器を30℃でインキュベートし、次いで
、0.2mlのH2O2貯蔵溶液を加えた。用いたH2O2貯蔵溶液濃度は、生成さ
れる次亜塩素酸塩濃度に依存し、H2O2の最終濃度(フラックスの終わりの)が
、次亜塩素酸塩の最終濃度に対して5倍モル過剰になるように選択した。次いで
、0.5mlの既知濃度の次亜塩素酸塩溶液のフラックスを30℃で5分かけて
(流速:0.1ml/分)加えた。それぞれ異なる濃度の種々の次亜塩素酸塩溶
液を用いて一連の実験を行い、次亜塩素酸塩の最終濃度範囲を得た(計算につい
ては、以下参照)。5分間インキュベートした後、1mlの反応混合物を取り出
し、9mlの冷BSA(1%w/v)溶液に加え、直ちに氷上に置いた。これで
、次亜塩素酸塩と微生物との反応を停止した。試料を10-1〜10-5に希釈し、
種々の希釈液からの100μl試料を標識BHI−寒天プレートにのせて、1m
l当たりのコロニー形成単位(CFU)としての生存率を測定した。次いで、プ
レートを30℃で15〜18時間インキュベートした。このインキュベーション
期間後に検出可能なCFUが存在しなかった場合には、プレートを30℃でさら
に24時間インキュベートする。
分光光度計に組み込んだ同一の実験設定(ブランク実験の場合には、微生物を
加えない)を用い、一定時間内の次亜塩素酸塩濃度を、モノクロロジメドン(e
290nm=20.2mM-1・cm-1)からジクロロジメドン(e 290nm
=0.2mM-1・cm-1)への変換を利用して290nmで経過観察することに
より、それぞれV−CPO及び貯蔵溶液からの次亜塩素酸塩を用いて上記実験で
得られた次亜塩素酸塩プロフィールの類似性を確認した。計算
:
V−CPOにより産生された次亜塩素酸塩の最終濃度を以下のように計算した
:
0.01U/mlのV−CPOを用いた場合、2.0mlの初期量に加えた0
.5mlのフラックスの希釈作用により、5分当たり0.05μmol 次亜塩
素酸塩/mlに相当する0.01μmol 次亜塩素酸塩/ml/分が産生される
。5分後の最終濃度は、(2.0/2.5)*0.05μmol/ml=5分後
の0.04μmol 次亜塩素酸塩/mlである。次いで、この濃度を、0.0
4μmol次亜塩素酸塩/ml=0.04*52.5ppm次亜塩素酸塩=2.
10ppm次亜塩素酸塩と表し得る。V−C
PO濃度を増減して、他の次亜塩素酸塩の最終濃度を得た。加えた次亜塩素酸塩
の最終濃度を以下のように計算した:
2.0mlの反応容量に0.5mlのフラックスを加えるので、最終容量は2
.5mlとなり、これは、5倍希釈に相当する。2.10ppmの次亜塩素酸塩
最終濃度を得るために、10.50ppmの貯蔵溶液を用いた。次亜塩素酸塩貯
蔵溶液を増減して他の次亜塩素酸塩濃度を得た。定義
:最小発育阻止濃度(MIC値)は、本明細書では、用いた実験条件下に、
テストした特定の微生物のコロニー形成単位を少なくともlog6減少させる次
亜塩素酸塩の濃度と定義する。
結果を表IIに示す。V−CPOによって産生されるか、又は次亜塩素酸塩フラ
ックスの終わりに産生された種々の最終濃度の次亜塩素酸塩の殺菌作用を比較す
る。表IIから結論し得るように、既にV−CPOにより酵素的に産生された次亜
塩素酸塩は、0.4ppm程度の低い次亜塩素酸塩濃度でStaphyloco
ccus aureus以外のテストした全ての微生物の増殖を完全に阻止する
のに対し、Staphylococcus aureusでは、同様な増殖の阻
止を得るには2ppmの次亜塩素酸塩を必
要とする。これらの結果は、バナジウム含有ハロペルオキシダーゼが、その次亜
塩素酸塩産生能だけから予測されたもの以上の有効な衛生成分であることを示し
ている。さらに、V−CPOが、病原性であれ非病原性であれ、テストした全て
の微生物を殺菌するのに対し、ヘム含有ハロペルオキシダーゼは、病原性細菌の
みを効率的に殺菌するに過ぎないことは明らかである(EP−A−500387
号参照)。
実施例3 次亜塩素酸塩及び、タンパク質水解物の存在下にV−CPOにより酵素的に産生 された次亜塩素酸塩の殺菌効率
衛生を得るためには、実際に遭遇する状況下において、次亜塩素酸塩の過剰投
与が必要であることは公知である。
というのは、該反応性分子は微生物と反応するだけでなく、存在する他の化合物
とも反応するからである。従って、例えば、タンパク質水解物を含む液体中のバ
ナジウム含有ハロペルオキシダーゼの挙動をテストすることが重要であった。材料
:
この実施例に用いた細菌株は、Escherichia coli NCTC
900であった。細菌を、ブレインハートインフュージョン(BHI)ブロス培
地中30℃で15〜18時間増殖させた。培養後、クエン酸緩衝液pH5.5(
20mM Na3クエン酸/NaOH緩衝液+10mMNaCl)中で細菌株を2
回洗浄した。細菌懸濁液をエッペンドルフ遠心分離機で遠心(14,000rp
mで5分)し、次いで、上清を除去した後、細菌ペレットをクエン酸緩衝液に再
懸濁した。次いで、各細菌懸濁液に対してこの洗浄手順をもう一度繰り返した。
次いで、2回洗浄した細菌懸濁液をクエン酸緩衝液pH5.5で希釈して、約1
08細菌/mlの懸濁液を得た。洗浄段階の間、細胞を氷上に維持した。緩衝液
及びBSA溶液(クエン酸緩衝液pH5.5中1%w/v)をフィルター殺菌し
、4℃で貯蔵し
た。貯蔵溶液(107,000ppm)を無菌脱イオン水で希釈して次亜塩素酸
塩溶液を調製した。30%貯蔵溶液を無菌脱イオン水で希釈してH2O2溶液を調
製した。Difcoからカシトーンを得た。Van Schijndelら,19
93に従ってCurvularia inaequalisからクロロペルオキ
シダーゼを単離・精製した。方法
:
無菌法を用い、クエン酸緩衝液pH5.5中約108細菌/mlの懸濁液を調
製した。該懸濁液からの1.3mlアリコートを無菌反応容器に加え、これを、
実験期間中磁気攪拌機で連続的に攪拌した。次いで、0.5mlの0.5mg/
mlカシトーン(クエン酸緩衝液pH5.5中)溶液及び0.5mlのクエン酸
緩衝液pH5.5を加えた。次いで、3.2ppm又は6.5ppmの次亜塩素
酸塩の最終濃度が得られるように、種々の濃度(計算については実施例2参照)
のV−CPO溶液0.2mlを反応容器に加えた。また、0.2mlのV−CP
O溶液の代わりに0.2mlの無菌緩衝液を加えたブランク測定も行った。反応
容器を30℃でインキュベートし、次いで、0.5mlのH2O2貯蔵溶液(5倍
モル過剰の過酸化水素がフラックス
の終わりに得られるように濃度を選択した)を加え、V−CPO反応を開始した
。試料を30℃できっかり5分間インキュベートした。インキュベーション後、
1mlの反応混合物を取り出し、9mlの冷BSA(1%w/v)溶液に加え、
直ちに氷上に置いた。これで、次亜塩素酸塩と微生物との反応を停止した。試料
を10-1〜10-6に希釈し、種々の希釈液からの100μl試料を標識BHI−
寒天プレートにのせて、1ml当たりのコロニー形成単位(CFU)としての生
存率を測定した。次いで、プレートを30℃で15〜18時間インキュベートし
た。このインキュベーション期間後に検出可能なCFUが存在しなかった場合に
は、プレートを30℃でさらに24時間インキュベートする。
マイクロポンプを用い、得られた殺菌効率を同量の次亜塩素酸塩を加えたとき
に得られた殺菌効率と比較した。これは、以下のように行った。
無菌法を用い、クエン酸緩衝液pH5.5中約108細菌/mlの懸濁液を調
製した。この懸濁液からの1.3mlアリコートを無菌反応容器に加え、これを
実験期間中磁気攪拌機で連続的に攪拌した。次いで、0.5mlの0.
5mg/mlカシトーン溶液(クエン酸緩衝液pH5.5中)及び0.5mlの
クエン酸緩衝液pH5.5を加えた。次いで、0.2mlの無菌クエン酸緩衝液
pH5.5を加えた。反応容器を30℃でインキュベートし、次いで、それぞれ
3.2ppm及び6.5ppmの次亜塩素酸塩の最終濃度(濃度の計算について
は、実施例2を参照)を得るように、0.5mlの次亜塩素酸塩溶液のフラック
スを30℃で5分かけて(流速:毎分0.1ml)加えた。5分間インキュベー
トした後、1mlの反応混合物を取り出し、9mlの冷BSA(1%w/v)溶
液に加え、直ちに氷上に置いた。これで、次亜塩素酸塩と微生物との反応を停止
した。試料を10-1〜10-6に希釈し、種々の希釈液の100μl試料を標識B
HI−寒天プレートにのせて、1ml当たりのコロニー形成単位(CFU)とし
ての生存率を測定した。次いで、プレートを30℃で15〜18時間インキュベ
ートした。このインキュベーション期間後に検出可能なCFUが存在しなかった
場合には、プレートを30℃でさらに24時間インキュベートする。結果を表II
Iに示す。
実施例4 バナジウム含有ハロペルオキシダーゼとヘム含有ハロペルオキシダーゼの殺菌効 率の比較 材料
:
この実施例に用いた細菌株は、Escherichia coli NCTC
900、Streptococcus faecalis NCTC 1092及
びListeria innocua ATCC 33090 血清型 6Bであっ
た。細菌を、ブレインハートインフュージョン(BHI)ブロス培地中30℃で
15〜18時間増殖させた。培養後、クエン酸緩衝液pH5.5(20mM Na3
クエン酸/NaOH緩衝液+10mM NaCl)中で細菌株を2回洗浄した。
細菌懸濁液をエッペンドルフ遠心分離機で遠
心(14,000rpmで5分)し、次いで、上清を除去した後、細菌ペレット
をクエン酸緩衝液に再懸濁した。次いで、各細菌懸濁液に対してこの洗浄手順を
もう一度繰り返した。次いで、2回洗浄した細菌懸濁液をクエン酸緩衝液pH5
.5で希釈して、約107細菌/mlの懸濁液を得た。洗浄段階の間、細胞を氷
上に維持した。緩衝液及びBSA溶液(クエン酸緩衝液pH5.5中1%w/v
)をフィルター殺菌し、4℃で貯蔵した。
Van Schijndelら(1993)に従って、Curvularia
inaequalisからクロロペルオキシダーゼを精製した。ヘム含有クロロ
ペルオキシダーゼをSigma(Caldariomyces fumago由
来)から得た。分光光度計で、20mM クエン酸ナトリウム緩衝液pH5.5
、10mM NaCl、100μM H2O2、50μM モノクロロジメドン中3
0℃で、モノクロロジメドン(e 290nm=20.2mM-1・cm-1)から
ジクロロジメドン(e 290nm=0.2mM-1/cm-1)への変換を経過観
察して、Cl-からHOClへの変換におけるクロロペルオキシダーゼ活性を測
定した。1単位のクロロペルオキシダーゼは、1分当た
りにモノクロロジメドン(Sigma)1μmolを変換する酵素の量と定義す
る。等活性の2種の酵素を投与し得るように、両酵素に対して同一アッセイ(及
び活性の定義)を用いた。方法
:
無菌法を用い、20mM クエン酸ナトリウム緩衝液pH5.5、10mM N
aCl中約107細菌/mlの懸濁液を調製した。該懸濁液からの1.9mlア
リコートを無菌管に加えた。次いで、それぞれバナジウム含有クロロペルオキシ
ダーゼ及びヘム含有クロロペルオキシダーゼの貯蔵溶液から0.1mlを該管に
加えて、両酵素についての希釈液範囲を得た。また、酵素貯蔵溶液の代わりに無
菌緩衝液のみを加えたブランク測定も行った。次いで、0.5mlの25mM
H2O2貯蔵溶液を加えた。試料を30℃できっかり5分間インキュベートした。
インキュベーション後、1mlの反応混合物を取り出し、9mlの冷BSA(1
%w/v)溶液に加え、直ちに氷上に置いた。試料を10-1〜10-5に希釈し、
種々の希釈液からの100μl試料を標識BHI−寒天プレートにのせて、1m
l当たりのコロニー形成単位(CFU)としての生存率を測定し
た。次いで、プレートを30℃で15〜18時間インキュベートした。このイン
キュベーション期間後に検出可能なCFUが存在しなかった場合には、プレート
を30℃でさらに24時間インキュベートする。
結果を表IVに示す。該データは、バナジウム含有クロロペルオキシダーゼが、
等活性で投与されても、ヘム含有クロロペルオキシダーゼよりはるかに有効な衛
生系を提供することを明らかに示している。
実施例5 V−CPOの阻止作用に対する種々の過酸化水素源の効果
これまでの実施例では、V−CPO反応における基質の1つである過酸化水素
を貯蔵溶液から加えたが、この実施例では、他の過酸化水素源を用いた場合の効
果を記載する。緩衝液としてクエン酸緩衝液pH5.5(20mM Na3クエン
酸/NaOH緩衝液+10mM NaCl)を用い、酸素消費をモニターする生
物学的酸素モニター(Biological Oxygen Monitor)Y
SIモデル5300(酸素チャンバーモデル5301)中30℃でオキシダーゼ
をアッセイした。緩衝液を30℃で空気で飽和した。グルコースオキシダーゼ用
の基質として、15g.1-1(最終濃度)のグルコースを用いた。この実施例で
用いた細菌株は、Escherichia coli NCTC 900であった
。細菌を、ブレインハートインフュージョン(BHI)ブロス培地中30℃で1
5〜18時間増殖させた。培養後、クエン酸緩衝液pH5.5(20mM Na3
クエン酸/NaOH緩衝液+10mM NaCl)中で細菌株を2回洗浄した。
細菌懸濁液をエッペンドルフ遠心
分離機で遠心(14,000rpmで5分)し、次いで、上清を除去した後、細
菌ペレットをクエン酸緩衝液に再懸濁した。次いで、各細菌懸濁液に対してこの
洗浄手順をもう一度繰り返した。次いで、2回洗浄した細菌懸濁液をクエン酸緩
衝液pH5.5で希釈して、約108細菌/mlの懸濁液を得た。洗浄段階の間
、細胞を氷上に維持した。緩衝液及びBSA溶液(クエン酸緩衝液pH5.5中
1%w/v)をフィルター殺菌し、4℃で貯蔵した。貯蔵溶液(107,000
ppm)を無菌脱イオン水で希釈して次亜塩素酸塩溶液を調製した。30%貯蔵
溶液を無菌脱イオン水で希釈して、H2O2溶液を調製した。Difcoからカシ
トーンを得た。Van Schijndelら(1993)に従って、Curv
ularia inaequalisからクロロペルオキシダーゼを単離・精製
した。Aspergillus niger由来のグルコースオキシダーゼをS
igmaから得た。方法
:
無菌法を用い、クエン酸緩衝液pH5.5中、約108細菌/mlの懸濁液を
調製した。該懸濁液からの1.3mlアリコートを無菌反応容器に加え、これを
、実験期間中
磁気攪拌機で連続的に撹拌した。次いで、0.5mlの0.5mg/mlカシト
ーン溶液(クエン酸緩衝液pH5.5中)を加えた。次いで、反応容器に0.2
mlのV−CPO溶液を加えて、最終濃度6.5ppmの次亜塩素酸塩を得た。
また、0.2mlのV−CPO溶液の代わりに0.2mlの無菌緩衝液を加えた
ブランク測定も行った。反応容器を30℃でインキュベートし、次いで、以下の
3種の過酸化水素発生系の中の1種を0.5ml加えた:
1.3mM 貯蔵溶液からのH2O2;
2.3mM 貯蔵溶液からの過炭酸ナトリウム;
3.グルコースオキシダーゼ(0.39単位/ml)と75mg/mlのグルコ
ースの混合物。
試料を30℃できっかり5分間インキュベートした。インキュベーション後、
1mlの反応混合物を取り出し、9mlの冷BSA(1%w/v)溶液に加え、
直ちに氷上に置いた。これで、次亜塩素酸塩と微生物の反応を停止した。試料を
10-1〜10-6に希釈し、種々の希釈液からの100μl試料を標識BHI−寒
天プレートにのせて、1ml当たりのコロニー形成単位(CFU)としての生存
率を測定した。次いで、プレートを30℃で15〜18時間イ
ンキュベートした。このインキュベーション期間後に検出可能なCFUが存在し
なかった場合には、プレートを30℃でさらに24時間インキュベートする。マ
イクロポンプを用い、得られた値を全く同量の次亜塩素酸塩を加えたときに得ら
れたMIC値と比較した。これは、以下のようにおこなった。
無菌法を用い、クエン酸緩衝液pH5.5中、約108細菌/mlの懸濁液を
調製した。該懸濁液からの1.3mlアリコートを無菌反応容器に加え、これを
、実験期間中磁気攪拌機で連続的に攪拌した。次いで、0.5mlのカシトーン
溶液(クエン酸緩衝液pH5.5中0.5mg/ml)を加えた。次いで、0.
2mlの無菌クエン酸緩衝液pH5.5を加えた。反応容器を30℃でインキュ
ベートした。次いで、32.5ppmの次亜塩素酸塩溶液0.5mlのフラック
スを30℃で5分かけて(流速:毎分0.1ml)加えた。5分間インキュベー
トした後、1mlの反応混合物を取り出し、9mlの冷BSA(1%w/v)溶
液に加え、直ちに氷上に置いた。これで、次亜塩素酸塩と微生物の反応を停止し
た。試料を10-1〜10-6に希釈し、種々の希釈液からの100μl試料を標識
BHI−
寒天プレートにのせて、1ml当たりのコロニー形成単位(CFU)としての生
存率を測定した。次いで、プレートを30℃で15〜18時間インキュベートし
た。このインキュベーション期間後に検出可能なCFUが存在しなかった場合に
は、プレートを30℃でさらに24時間インキュベートする。結果を表Vに示す
。
実施例6 クロロペルオキシダーゼ遺伝子(cDNA)及びCurvularia ina equalis(Centraal Bureau voor Schimmel cultures,the Netherlands,菌株番号 102. 42)から得た遺伝子並びに可能な発現系のコード配列を決定する方法
Van Schijndelら(1993)により記載のC.inaequa
lisの液体培養体からクロロペルオキシダーゼを単離・精製したが、但し、D
EAEクロマトグラフィーの後で、FPLC系(Pharmacia LKB)
を用いて、2段階の追加精製を実施した。先ず、フェニルセファロースCl−4
B疎水性相互作用カラムを用い、2M NaClの存在下に50mM Tris−
HCl(pH8.3)中で酵素を結合し、次いで、50mM Tris−HCl
(pH8.3)中の2M NaClから下降勾配で溶離した。最終精製として、
MonoQ HR 5/5アニオン交換カラム(Pharmacia LKB製)
を用いて酵素を結合し、次いで、20mM ピペラジン−HCl(pH5.4)
中0M→0.5M NaCl勾配で溶離した。その後、回転蒸発法(rotat
ion evaporation)を用いて酵素を濃縮し、次いで、50mM T
ris−SO4緩衝液(pH8)に対し透析した。当業界において公知の標準手
順に従い、精製されたクロロペルオキシダーゼをそれぞれプロテアーゼStap
hylococcu
s V8及びトリプシンで酵素的に消化するか、又はCNBr〔Gross,E
.(1967)、Methods Enzymology 11,238−255
〕で化学的に切断した。Laemmli〔Laemmli,U.K.(1970
)Nature 227,680−685〕に従ってSDS−PAGEを用いる
か、又はSchagger及びVon Jagow(1987)に従ってトリシ
ンゲル上で、得られたペプチドを単離した後、Matsudaira(1987
)により記載のCAPS転移緩衝液(transfer buffer)(10
mM 3−[シクロヘキシルアミノ]−1−プロパンスルホン酸,10%メタノ
ール,pH11)を用い、PVDF膜(Millipore製Immobilo
n−P)に移した。電気泳動溶離した後、膜を脱イオン水で5分間すすぎ、50
%メタノール中0.1%のクーマシーブルー R−250で5分間染色、50%
メタノール、10%酢酸中室温で10分間脱色して、風乾した。ペプチドバンド
を、Porton LF 3000タンパク質配列決定装置(Beckman I
nstruments,Inc.,USA)上の全自動Edmannシークエン
シングにかけた。アミノ酸配列決定の結果を図1に要約する。
ペプチドのアミノ酸配列に基づいて、全ての縮重オリゴヌクレオチドを設計し
た(表VII参照)。これらの縮重プライマーを、鋳型として第1鎖cDNAを用
いるポリメラーゼ連鎖反応(PCR)に用いた。第1鎖cDNAを以下のように
作製した:
RNAを単離するために、C.inaequalisの胞子を、1リットル当
たり4gの酵母抽出物及び2mlの微量成分溶液(Van Schijndel
ら,1993)を含む発酵培地に接種した。数日増殖させた後、菌糸体を濾過し
て収穫し、凍結乾燥した。凍結乾燥C.inaequalis菌糸体を液体窒素
下に粉砕した。RNA抽出緩衝液(42mM クエン酸ナトリウムpH7、0.
83% N−ラウリルサルコシン、50mM β−メルカプトエタノール、1%ト
リトン X−100及び4M グアニジンイソチオシアネート)を加えてRNAを
抽出し、室温で1時間インキュベートした。0.1容の2M 酢酸ナトリウム(
pH4)及び1容のフェノール:クロロホルム:イソアミルアルコール(25:
24:1)を加え、混合物を氷上に15分間置いた。10,000×g(4℃)
で10分間遠心した後、水相を捕集し、1容の無水アルコールを加え、混合
物を−20℃で1時間インキュベートし、次いで、10,000×gで軽く遠心
した。ペレットを適量のRNA抽出緩衝液に再懸濁し、塩化セシウム勾配(Sa
mbrookら,1989)中での超遠心により分画した。ペレットを慎重に洗
浄し、75%エタノール溶液中に−70℃で保存した。mRNAを単離するため
に、RNAを沈降させ、RNAseを含まない水に再懸濁した後、PolyAt
ract mRNA単離キット(Promega Corporation,US
A)を用いてmRNAを抽出した。Pharamacia第1鎖cDNA合成キ
ット(Pharmacia Biotech)を用い、C.inaequali
sから単離したmRNA上で第1鎖cDNA合成を行った。クロロペルオキシダ
ーゼペプチドのアミノ酸配列(表VIIも参照)に基づいて、4個の20マー縮重
オリゴヌクレオチドを設計し、鋳型としてC.inaequalisから得た第
1鎖cDNAを用いるポリメラーゼ連鎖反応におけるプライマーとして用いた。
サーモサイクラー(エッペンドルフマスターサイクラー5330)及びTaqポリ
メラーゼ(Promega Corporation)を用いてポリメラーゼ連
鎖反応を実施した。縮重プライマーを用
いてクロロペルオキシダーゼをコードするcDNAの最適増幅を得るために、ポ
リメラーゼ連鎖反応を46℃で(アニーリング段階)30サイクル実施した。得
られた2つの特定のフラグメントをpUC18ベクターに連結し、クローン化し
て、両方の鎖から配列決定した。DNA配列の結果に基づいて、以下の2つの特
定のプライマーを設計した:
及び
これら2つのプライマーを、鋳型として第1鎖cDNAを用いるポリメラーゼ
連鎖反応に用いた。このようにして、2つの既知DNA配列と結合する遺伝子特
異的DNAフラグメントを得た。このフラグメントをpUC18ベクターにクロ
ーン化した後、配列決定した。クロロペルオキシダーゼをコードするmRNAの
5′領域を得るために、5′−Amplifinder RACEキット(Cl
onetech Corporation)を用いた。C.inaequali
sからゲノムクロロペルオキシダーゼ遺伝子を以下のように単離した:
C.inaequalisゲノムDNAを凍結乾燥菌糸体から単離し、液体窒
素下に粉砕、適量の抽出緩衝液(200mM Tris−HCl,pH8.5,
25mM EDTA,250mM NaCl,1% SDS及び0.2mg/ml
プロテイナーゼK)で抽出した。室温で一晩インキュベートした後、0.7容の
フェノールと0.3容のクロロホルムを加え、激しく攪拌した。管を10,00
0×gで遠心し、水相を清浄な管に移した。2容の無水エタノールでゲノムDN
Aを沈降させた。5,000×gで5分間遠心した後、ペレットを、2mlの1
0mM Tris−HCl,pH8.0及び1mM EDTAに再懸濁し、製造業
者の推奨に従ってRNAse(Boehringer Mannheim)で処理
した。ゲノムDNA含有溶液をフェノール:クロロホルム:イソアミルアルコー
ル(25:24:1)で抽出し、エタノールで沈降させた後、最後に、適量の1
0mM Tris−HCl pH8、1mM EDTA緩衝液に溶解した。ゲノム
DNAのサザーン分析を実施するために、DNAを、数種の制限酵素組合わせで
消化し、アガロースゲル電気泳動後にニトロセルロース膜にブロットした(Sa
mbrookら,1989)。
α−32P標識dATP(Sambrookら,1989)を用いるランダムプ
ライミングによって作製した、(上記2個の特異的プライマーを用いて増幅した)
放射性標識遺伝子特異的フラグメントを用いてハイブリダイゼーションを実施し
た。得られた結果に基づき、Pst Iで消化し、ベクターpUC18に挿入し
たゲノムDNAを用いてミニライブラリーを作製した。該ライブラリーをサザー
ンブロット法について記載したものと同じプローブを用いてスクリーニングした
。陽性クローンを単離し、さらに両方の鎖から部分的に配列決定して、cDNA
配列結果を確認した。C.inaequalisクロロペルオキシダーゼをコー
ドする遺伝子及びその推定遺伝子産物を図2に示す。
以下のように、Saccharomyces cerevisiaeにおける
クロロペルオキシダーゼ産生系を作製した。
S.cerevisiae野生型GAL1遺伝子(Molecular an
d Cellular Biology 10,4757−4769,1990)
からEcoRI−BamHIフラグメントとして、周知のGAL1誘導性酵母プ
ロモーターを得、これを、それぞれプラスミドYC
plac33及びYEplac95〔Gietz及びSugino(1988)
Gene 74,527−534〕のEcoRI−BamH1部位にクローン化
した。得られたプラスミドをそれぞれTNT1、TNT2と名付けた。pUC1
8にサブクローン化したC.inaequalisクロロペルオキシダーゼ遺伝
子のPstI EcoRI5′フラグメントを鋳型として、またプライマーとし
てM13/pUC22マー逆方向配列プライマー及び以下のプライマー:
を用いてPCR実験を行い、C.inaequalisクロロペルオキシダーゼ
遺伝子の5′開始部位の前に、BamHI制限部位を形成した。
増幅したフラグメントをBamHI及びEcoRIで消化した。C.inae
qualisクロロペルオキシダーゼ遺伝子からその3′部分を含むEcoRI
−PvuIIフラグメントを、EcoRI SmaI消化pUC18にサブクロ
ーン化した。このクローンをEcoRI及びXbaIで消化した後、該クローン
からC.inaequalisクロロペルオキシダーゼ遺伝子の3′部分を含む
フラグ
メントを精製した。
それぞれBamHI及びXbaIで消化したTNT1又はTNT2、並びに5
′BamHI−EcoRIフラグメント及び3′EcoRI−XbaIフラグメ
ントからなる3つの部分の連結反応を実施した。連結・クローン化後、得られた
プラスミドの同定を行った。このようにして得られたプラスミドをそれぞれTN
T3(TNT1由来)及びTNT4(TNT2由来)と名付けた。
当業界において公知の手順に従い、酵母株BJ1991をプラスミドTNT3
及びTNT4で形質転換し、ura+ 形質転換体について選択した。ura+
形質転換体をグルコース(2%)又はガラクトース(2%)を含むYP−プレー
トに複製した。増殖後、該プレートから数個の細胞を取り出し、200μlの2
0mM Tris−HClpH8.1に再懸濁した。5分間インキュベートした
後、該溶液から10μlを採取し、ニトロセルロースフィルター上にスポットし
た。ニトロセルロースフィルターを100mM 酢酸ナトリウム緩衝液(pH5
.5)、1mM オルトジアニシジン、100mM KBr及び2mM H2O2中
でインキュベートした。透明な色の形成がガラクトース
増殖酵母由来の全ての斑点に認められたのに対し、グルコース増殖酵母には認め
られなかった。これは、酵母Saccharomyces cerevisia
e中にCurvularia inaequalisクロロペルオキシダーゼ遺
伝子のガラクトース誘導性産生系が構築されたことを示している。100mM
リン酸カリウム緩衝液(pH6.5)、100mM KBr、1mM H2O2及び
40μM フェノールレッド(BDH)を用いた同様なアッセイにおいて、ガラ
クトース増殖酵母から得た溶液には青紫色が形成されたのに対し、グルコース増
殖酵母から得た溶液には色の変化が生じなかったことが明らかに示された。酵母
中の異種クロロペルオキシダーゼ遺伝子発現系が、C.inaequalisク
ロロペルオキシダーゼと同じ機能性を有するC.inaequalisクロロペ
ルオキシダーゼを産生させたことをさらに確認するために、ガラクトース誘導T
NT3又はTNT4で形質転換した酵母株から組換え酵素を精製した。ガラクト
ース含有培地中で増殖させた後、酵母細胞を収穫し、20mM Tris−HC
l(pH8.1)に再懸濁した。次いで無菌ガラスビーズを加え、懸濁液を激し
く振盪した。10,000×gで15分間遠
心した後、上清を取り、DEAEカラムに加え、野生型C.inaequali
s酵素(上記参照)の場合と実質的に同じ精製プロトコルを用いて組換え酵素を
精製した。精製後、22U/mg タンパク質の比活性(100mM 酢酸ナトリ
ウム緩衝液pH5.0、1mM H2O2、5mM 塩化カリウム及び50μM M
CD中で測定、Van Schijndelら,1993も参照)を有する組換
えクロロペルオキシダーゼを得た。該活性は、C.inaequalis自体か
ら精製された(上記参照)クロロペルオキシダーゼを用いて得られた比活性 約
20U/mg タンパク質と極めて類似している。野生型クロロペルオキシダー
ゼと酵母から誘導された組換えクロロペルオキシダーゼのpH活性プロフィール
を図3に示す。図3は、組換え酵母産生酵素が野生型酵素と同じ機能性を有して
いることをさらに実証している。実施例7 他の微生物中の適当なハロペルオキシダーゼのスクリーニング
この実施例に用いた微生物は、Curvularia inaequalis
(CBS 102.42)、Drech
slera biseptata(CBS 371.72)、Drechsler
a fugax(CBS 509.77)、Drechslera nicoti
ae(CBS 655.74)、Drechslera subpapendor
fii(656.74)、Embelisia hyacinthi(416.
71)、Embelisia didymospora(CBS 766)、Ul
ocladium chartarum(200.67)及びUlocladi
um botrytis(452.72)である。種々の菌類を寒天プレート上
で増殖させる。増殖が完了したら、細胞外タンパク質を、予め50mM Tri
s−HCl緩衝液(pH8.3)中で湿潤させておいたニトロセルロースフィル
ターに移す(レプリカブロットする)。寒天プレート上で15分間インキュベー
ションした後、0.1M 臭化カリウムの存在又は不在下に、100mM 酢酸ナ
トリウム(pH5.5)又はリン酸カリウム(pH6.5及び7.5)、1mM
オルトジアニシジン、2mM 過酸化水素中にフィルターを浸漬させて、ハロペ
ルオキシダーゼ活性についてフィルターをテストした。このようにして、ブロモ
ペルオキシダーゼ及び/又はクロロペルオキシダーゼの産
生を検出し得る。産生されたハロペルオキシダーゼがバナジウム含有ハロペルオ
キシダーゼであるかどうかをテストするために、10μM及び100μM バナ
ジン酸ナトリウムの存在及び不在下に上記テストを繰り返した。バナジウム含有
ハロペルオキシダーゼの場合には、バナジン酸塩を追加するとシグナルの増加が
認められた。同定されたクロロペルオキシダーゼが実際にC.inaequal
isから得られたバナジウムハロペルオキシダーゼに類似しているかどうかをテ
ストするために、Ulocladium chartarum、Embelis
ia didymospora及びDrechslera Subpapendo
rfiiから少量のクロロペルオキシダーゼを精製した(Van Schijn
delら,1993による記載と実質的に同様に)。これらの酵素の最適pHは
、pH4.5〜5.5の範囲で変動した。該酵素の塩素化活性はバナジン酸塩を
添加すると増大したが、これは、該酵素が実際にバナジウムハロペルオキシダー
ゼであることを明瞭に示している。同定された酵素とC.inaequalis
バナジウムクロロペルオキシダーゼとの類似性をさらにテストするために、同定
されたハロペルオキシダーゼの中の1種
をさらに特性決定した。このために、真菌類Drechs lera bisep
tata(CBS 371.72)により産生されたクロロペルオキシダーゼを
選択した。該クロロペルオキシダーゼは、高い熱安定性及びその基質に対して高
親和性を有するCurvularia inaequalis由来クロロペルオ
キシダーゼに類似の特性を有している。さらに、精製された酵素のEPRスペク
トルも記録した。他のバナジウムハロペルオキシダーゼ(de Boerら,1
988;Weverら,1988)については、酸化酵素は観察されるEPRス
ペクトルを全く示さないが、亜ジチオン酸ナトリウムで還元すると、典型的なバ
ナジルEPRスペクトルが認められた(データは示さず)。g0が1.969で
、A0が9.0mTの等方性EPRパラメーターは、C.inaequalis
(Weverら,1985)由来の酵素に認められたものと殆ど同じであった。
さらに、プロテアーゼ及び臭化シアンを用いて、精製された酵素をペプチドに分
離した。ペプチドマップは同一パターンを示し、これは、これら2種の酵素が高
い配列相同性を有していることを示唆している。これは実際に、プロテアーゼで
処理して得られ且つ精製さ
れた酵素の2つの別々のペプチドが配列決定されたということである。これらの
配列は極めて高い相同性を示し、従って、これら2種の酵素は極めて類似してい
ると結論し得る。
C.inaequalis由来ペプチドのアミノ酸配列:
(asp)−leu−arg−gln−pro−tyr−asp−pro−th
r−ala−pro−ile−glu−asp−gln−pro−gly−il
e−val−arg−thr−
D.biseptataから得た類似ペプチドのアミノ酸配列:
asp−leu−arg−gln−pro−tyr−asp−pro−thr−
ala−pro−ile−glu−glu−gln−pro−gly−ile−
val−arg−thr−
従って、適当なバナジウム含有ハロペルオキシダーゼは、バナジン酸塩添加後
の活性の増大をテストするレプリカ法を用いて及び/又は酵素を(部分的に)精
製してバナジン酸塩添加後の活性の増大を調べることにより同定し得る。実施例8 抗体を用いた、他の微生物中の適当なクロロペルオキシダーゼのさらなるスクリ ーニング
この実施例で用いた株は、Curvularia inaequalis(C
BS 102.42)、Drechslera biseptata(CBS 3
71.72)、Drechslera subpapendorfii(CBS
656.74)、Embellissia didymospora(CBS 7
66.79)及びUlocladium chartarum(CBS200.
67)である。
微生物を2段階で増殖させた。第1段階では、50mlの無菌発芽培地(Va
n Schijndelら,1993に記載)に微生物の胞子団を接種した。2
3℃で3日間振盪した後、培養体を、1リットルの発酵培地〔脱イオン水1リッ
トル中、5gのカゼイン水解物(Gibco BRL)、3gの酵母抽出物及び
1gのフルクトース〕を含む3リットル三角フラスコに移した。23℃で振盪し
た培地を14〜17日後に捕集し、濾過して、実質的にVan Schijnd
elら(1994)に従ってクロロペルオキシダーゼを精製した。(2ケ月齢の
メス)ウサギ中で、C
urvularia inaequalisから精製した(Van Schijn
delら,1994)クロロペルオキシダーゼに対してポリクローナル抗体を産
生させた(最初の注射にはフロイントの完全アジュバントを用い、免疫追加注射
にはフロイントの不完全アジュバントを用いた)。最後の追加免疫注射の6日後
にウサギから出血させた。56℃で30分間血清を加熱して補体を不活化し、次
いで遠心した。上清を取り出した。それぞれ精製クロロペルオキシダーゼ及びA
scophylum nodosum由来ブロモペルオキシダーゼ(Wever
ら,1985に従って精製した)から、50μlの各タンパク質(約0.1mg
/ml)から出発する希釈系列を調製し、各試料を逐次2倍希釈した。ドットブ
ロット装置(Bio−Rad)を用い、ニトロセルロースフィルター上に希釈液
をスポットし、2%BSAで洗浄して、順次、ウサギ抗クロロペルオキシダーゼ
抗血清(希釈率1:800)、ビオチニル化ヤギ抗ウサギ(希釈率1:3000
)、アルカリホスファターゼ結合ストレプトアビジン(希釈率1:2000)及
び発色剤〔5−ブロモ−4−クロロ−3−インドリルホスフェート、4−Nit
roBlue Tetrazolium
クロリド(Boehringer Mannheim)〕と共にインキュベート
した。全ての段階を標準プロトコルに従って実施した。得られた結果を表VIに示
す。
表VIに示されている結果に基づき、C.inaequalisクロロペルオキ
シダーゼに対して産生された抗体を用いたイムノアッセイは、他の適当なバナジ
ウム含有ハロペルオキシダーゼの同定に適していると結論し得る。これらのハロ
ペルオキシダーゼは粗製形態であっても、部分的又は完全に精製された形態であ
ってもよい。精製法は、ゲル濾過、イオン交換クロマトグラフィー、疎水性相互
作用クロマトグラフィー、沈降法、(限外)濾過法、アフィニ
ティークロマトグラフィー、ゲル電気泳動などのような当業界において公知のい
ずれの方法であってもよい。実施例9 他の微生物中の適当なクロロペルオキシダーゼのさらなるスクリーニング
この実施例では、Curvularia inaequalis由来クロロペ
ルオキシダーゼ遺伝子から誘導された放射性プローブを用いて他の微生物中の同
種遺伝子を検出する方法を記載する。これは以下のようにして行った。
C.inaequalis(CBS 102.42)、Embelissia
didymospora(CBS 766.79)及びDrechslera b
iseptata(CBS 371.72)由来の染色体DNAを、実質的にC
.inaequalis染色体DNAについての記載と同様に(実施例6に記載
のように)精製した。ゲノムDNAのサザーン分析をするために、DNAを数種
の制限酵素組合わせで消化し、アガロースゲル電気泳動後に、ニトロセルロース
膜(Sambrookら,1989)にブロットした。α−32P標識dATPを
用いたランダムプライミング(Sambrookら,1989)により作製した
放射性標識遺伝子特異的フラグメントを用いてハイブリダイゼーションを実施し
た。用いた遺伝子特異的フラグメントを、鋳型として第1鎖cDNA(実施例6
参照)を用い、以下のプライマー:
を利用して、ポリメラーゼ連鎖反応で増幅した(放射性標識する前に)。
ハイブリダイゼーション条件は以下の通りであった。
予備ハイブリダイゼーション及びハイブリダイゼーションにおいて、6*SS
PE、5*Denhardts、0.5%SDS及び10mgのサケ精子DNA
を緩衝液として用いた。55℃で1時間予備ハイブリダイゼーションを行い、次
いで、放射性プローブを1分間煮沸し、そのまま加えた。その後で、ハイブリダ
イゼーションを一晩継続した。Curvularia inaequalis及
びDrechlera biseptataのDNAを用いて得られたオートラ
ジオグラフを図4に示す。該図において、レーン1:λDNA;レーン2:非消
化C.inaequalisゲノムDNA;レーン3:EcoRIで消化した該
DNA;レーン4:BanHiで消化した該DNA;レーン5:EcoRI及び
BamHIで消化した該DNA;レーン6:XbaIで消化した該DNA;レー
ン7:PstIで消化した該DNA;レーン8:XbaI及びPstIで消化し
た該DNA;レーン9〜14:D.biseptatataを用いた前述と同様
なものである。該図に見られるように、Drechslera bisepta
taから得た染色体DNAで陽性シグナルが得られるが、これは、両遺伝子の高
度の類似性を示している。Embellisia didymosporaから
得たDNAでも同様な結果が得られた。従って、該遺伝子から誘導されたクロロ
ペルオキシダーゼ遺伝子若しくはその一部又はC.inaequalisクロロ
ペルオキシダーゼ遺伝子配列をベースとするプローブを用いて、他の微生物から
の適当なバナジウムハロペルオキシダーゼを検出することが可能であると結論し
得る。
Detailed Description of the Invention
Enzymatic antibacterial composition Technical field
The present invention provides an enzymatic antimicrobial composition (enzymatic antimicrobial).
l composition) and its use. More specifically,
Ming contains vanadium haloperoxidase, hydrogen peroxide source and halide source.
The present invention relates to an enzymatic antibacterial composition. The present invention further provides for the fermentation using recombinant DNA technology.
It relates to the production of vanadium haloperoxidase which can be used in elementary antibacterial compositions.Background and prior art
Various enzymatic antimicrobial compositions are known in the art. For example, WO-A-9
4/04217 is an antibacterial effective concentration of hypothiocyanate (OSCN).-
) Is disclosed which discloses a stabilized toothpaste composition. The composition is hydrogen peroxide
-Producing oxidoreductase and thiocyanate ion normally present in saliva
Antibacterial hypothiocyanite (OSCN-) Peroxidase
Contains enzymes. Suitable peroxidases include lactoperoxidase,
Eloperoxidase, saliva peroxy
Includes dases and chloroperoxidase.
An enzymatic antibacterial composition containing haloperoxidase is disclosed in EP-A-5003877.
(Exoxemis). Haloperoxidase is a peroxide
And selectively binds to the target microorganism in the presence of a halide to prevent its growth
It is stated that. EP-A-500387 is a suitable haloperoxider.
As myeloperoxidase (MPO), eosinophil oxidase (EPO)
, Lactoperoxidase (LPO) and chloroperoxidase (CPO)
It has been described. Stabilization of haloperoxidase by the ratio of halide to hydrogen peroxide
It was reported to be an important factor regarding sex and functionality. Hydrogen peroxide has a very low ratio
Rate can inhibit haloperoxidase function, whereas halides
It can block enzymatic reactions at extremely high rates. The ratio can vary within wide limits,
It is preferable to keep it at 50 or more.
The practice of hydrogen peroxide in antimicrobial compositions due to the undesirable side reactions of hydrogen peroxide
The concentration of is expected to be lower than expected. Accordingly, Applicants have found that antibacterial compositions are customary.
High starting concentrations of hydrogen peroxide can be used in combination with a dose of halide
I found it more desirable to do so.
Furthermore, an enzyme having a spectrum of antibacterial activity different from known enzymatic antibacterial compositions
There is a need for a specific antibacterial composition. The composition comprises microorganisms that are difficult to eradicate, such as S
It may have antibacterial activity against Treptococcus faecalis
preferable. Under other circumstances, it can also spoil foods and, as a result, also cause non-pathogenic microorganisms.
It is desirable to eradicate it.
Accordingly, it is an object of the present invention to provide an enzymatic antimicrobial composition that eliminates one or more of the above drawbacks.
Is to provide.
Surprisingly, the Applicant has found that with vanadium haloperoxidase
Have found that a particularly effective enzymatic antimicrobial composition can be formulated.
The above-mentioned prior art includes various haloperoxidases for use in antibacterial compositions.
However, to date, vanadium haloperoxidase species have received particular attention.
Did not.
In vanadium haloperoxidase, the prosthetic group in the enzyme is vanadic acid (vanadium).
It has similar structural properties to Nadium V), while other haloperoxidas
Is different from other haloperoxidases in that it is a heme peroxidase.
Has become.
Another object of the present invention is to identify the gene encoding vanadium haloperoxidase.
The gene is cloned in another microorganism that is cloned and sequenced to favor growth.
And increase the amount of enzyme that can be produced using recombinant DNA technology
That is.
Certain vanadium bromoperoxidases are naturally found on seaweed surfaces.
(Wever et al., 1991). In healthy plants in seawater, vanadium bromope
Luoxidase is accessible to the added substrate and upon addition of hydrogen peroxide
HOBr can be released. Although the role of the enzyme has not been elucidated, it has a high level in seawater.
Formation of highly oxidative HOBr inhibits the growth of microorganisms or fungi on the surface of plants
It is considered to be part of the plant's defense system.
Non-heme vanadium bromope from the seaweed Ascophyllum nodosum
Many other seagrass species have also contained these enzymes since the discovery of luoxidase.
Rukoto has been shown. In particular, A. Bromoperoxida obtained from nodosum
Extensive research has been carried out on these cases to determine their characteristics.
See pages 2-3). The prosthetic group in these enzymes is vanadic acid (vanadium).
Dium
It has structural properties similar to V). The catalytic mechanism induced for the enzyme
Hydrogen peroxide reacts with the enzyme to form a hydrogen peroxide / enzyme complex, after which
, Bromide and protons react with the complex to form an enzyme / HOBr complex
. It was shown that when the complex collapses, it produces an enzyme and HOBr (De Bo
er et al., 1988). These vanadium bromoperoxidases are aqueous and
It has also been shown to have high operational stability in organic media (De Boer et al., 198).
8). For example, these enzymes were stable for 3 weeks under turnover conditions and
Solvents such as acetone, methanol, ethanol (maximum 60v / v% present
It can be stored for 1 month or more without losing its activity in 1-propanol and 1-propanol.
there were. However, the enzyme has potential applications where bromide is present or added,
The genes encoding these bromoperoxidases obtained from seaweed are cloned.
And the attempt to determine its amino acid sequence will not work.
It has drawbacks.
Existing known heme-containing from Caldariomyces fumago
Chloroperoxidase has an inherent instability and a low optimal p of 2.75.
For H,
Its use is very limited and not well suited for the production of enzymatic antibacterial compositions.
For the same reason, human leukocyte-derived enzyme myeloperoxida capable of generating HOCl
The use of nuclease (MPO) is prevented (ARJ Bakkenist et al., 19).
80).
Hypomyctes, a family of Dematium, are extremely stable.
The paper that secretes luoxidase (see references 7 and 8) has already been published.
I have. In particular, the terrestrial fungus Curvularia inaequalis
It has a high affinity for substances and has an optimum pH of about 5.5 for chlorination reactions.
It has been shown to secrete vanadium chloroperoxidase (J.W.P.
M. Van Schijndel et al., 1993). Bromoper obtained from seaweed
As with oxidases, the prosthetic group in chloroperoxidase is vanadium.
It has structural properties similar to diacid (vanadium V). More detailed research after that
(JWPM Van Sijjndel et al., 1994).
The enzymatic reaction rate of chloride oxidation by hydrogen oxide was determined by seaweed A. obtained from nodosum
Is shown to be similar to that of vanadium bromoperoxidase.
Was. Furthermore, by three different methods, the enzyme reacts with chlorine oxide species as a reaction product.
Produced (HOCl) and was shown to be resistant to the product itself
Was. The enzyme has high thermostability (Tm 90 ° C.), 40% methanol, ethanol
It exhibits high stability in organic solvents such as nor and propanol.Definition of invention
The present invention provides, in a first aspect, a vanadium haloperoxidase, a halogen
And an enzymatic antibacterial composition comprising hydrogen peroxide or a hydrogen peroxide source.
The present invention provides, according to a second aspect, an origin of replication, a transcription / termination regulatory sequence, and vanadium
An expression vector containing at least a portion of the DNA sequence encoding muhaloperoxidase.
A suitable host can be transformed with a vector to express a structural gene
By culturing under conditions and isolating vanadium haloperoxidase,
It relates to the production of haloperoxidase.Detailed description of the invention
(A)Vanadium haloperoxidase
The enzymatic antibacterial composition of the present invention comprises vanadiu as the first component.
Contains muhaloperoxidase. As a rule, vanadium haloperoxidase
From various vanadium haloperoxidases disclosed in the art.
You can choose. For example, Curvul as described in US-A-4707466.
Vanadium (non-heme) haloper produced from aria inaequalis
An oxidase may be used. Alternatively, J. W. P. M. Van Schijn
Curvularia inaequa according to the method of del et al. (1993).
Isolation and purification of chloroperoxidase from lis (CBS 102.42)
Good.
Other sources of vanadium haloperoxidase include Drechslera bis
eptata (CBS 371.72), Drechslera fugas (CBS)
509.77), Drechslera nicotiae (CBS 655.74).
, Drechslera subpapendorfii (656.74), E
mbelisia hyacinthi (416.71), Embelisia
didymospora (CBS 766), Ulocladium char
tarum (200.67) and Ulocladium botrytis (4
52.72) are included.
Alternatively, the origin of replication, transcriptional and termination regulatory sequences, and vanadium haloperoxynucleotides.
An expression vector containing a DNA sequence encoding a sidase is used to transform a suitable host.
After transformation, the host is cultured under conditions that allow expression of the structural gene, and vanadium haloperoxide is added.
Recombinant DNA technology by isolating oxidase
Loperoxidase can be produced. This is described in detail in the examples below.
(B)Halide ion source
The second component of the hygiene composition of the present invention is a source of halide ions. These are
These halide ions may be used, but iodide is used because it is the most effective.
Or chloride ions are preferred. Most preferred halide is sodium chloride
On source. Halides may be added to the enzymatic antimicrobial composition of the present invention and water may be added.
Using halides that naturally occur in water and are usually on the order of 2-5 mM
Good.
(C)Hydrogen peroxide source
The hygiene composition of the present invention further comprises a source of hydrogen peroxide or a hydrogen peroxide generating system. Suitable
Examples of such hydrogen peroxide generating systems are perborates or percarbonates, preferably sodium percarbonate.
Rium or excess
It is sodium borate.
Hydrogen peroxide can also be supplied by an enzymatic hydrogen peroxide generating system. Enzymatic peracid
As a general rule, the hydride generation system is based on various enzymatic peracids disclosed in the art.
It may be selected from hydrogen fluoride generating systems. For example, amine oxidase and amine, amino
Acid oxidase and amino acid, lactate oxidase and lactate, cholesterol oxy
Dose and cholesterol, urate oxidase and uric acid, or xanthine oxidase
Zeze and xanthine can be used. However, preferred is glucose oxidase
It is a combination of glucose.
The amount of glucose oxidase depends on its specific activity and possible residual catalase.
Depending on the activity, for example, generally the detergent composition of the present invention comprises 1 g or 1 g of the composition.
10 to 1000, preferably 20 to 500 units of glucose per ml
It can be said that it contains sidase. One unit of enzyme activity is 1 μm per minute under standard conditions
It is defined as the amount required to convert ol substrate.
(D)Other ingredients
The enzymatic antimicrobial composition of the present invention is generally 0.01 to 50% by weight, preferably 0.
. 1 to 5.0% by weight of one or more fields
It contains a surface-active agent or a wetting agent. Suitable surfactants or cleaning active compounds are
Soken or non-soap anionic surfactant, nonionic surfactant, cationic interface
Activators, zwitterionic or zwitterionic compounds. Surfactant system is usually one or more
Of anionic surfactants and one or more nonionic surfactants. Interactivity
The activator system may further comprise an amphoteric or zwitterionic surfactant compound,
It is usually undesirable because the compounds are relatively expensive.
Generally, surfactant-based nonionic and anionic surfactants are commercially available from Schwart.
Volume 1 of "Surface Active Agents" by z and Perry
, Schwartz, Perry and Berch Interscience
e 1949, Volume 2, Interscience 1958, Manufact.
"McCutche" published by Uring Configurations.
The latest version of on's Emulsifiers and Detergents ”,
Or "Tenside-Taschenbuch", H.M. Stage, Volume 2,
Selected from the surfactants described by Carl Hauser Verlag, 1981.
obtain.
Suitable nonionic detergent compounds that can be used include, among others, hydrophobic groups and reactive hydrogen sources.
Compounds having offspring, such as aliphatic alcohols, acids, amides or alkylphenos
And alkylene oxide, especially ethylene oxide alone or propylene oxide.
Included are reaction products with ethylene oxide, including xides. Specific non-ionic detergent
The compounds are generally 5 to 25 EO, ie 5 to 25 units of ethylene oxide per molecule.
Cide of Cide6-Ctwenty twoAlkylphenol / ethylene oxide condensate, and aliphatic
C8-C18Primary or secondary straight or branched chain alcohols and generally 5-4
It is a condensation product of 0EO with ethylene oxide.
Suitable anionic detergent compounds that can be used typically contain from about 8 to about 22 carbon atoms.
Water-soluble organic sulfuric acid and sulfonic acid alkali metal salt having an alkyl group containing
Good. The term alkyl is used to include the alkyl portion of higher acyl groups.
It has been. An example of a suitable synthetic anionic detergent compound is sodium alkylsulfate.
And potassium, especially higher C produced, for example, from beef tallow or coconut oil8-C18A
Alkyl C, obtained by sulfolating rucor9-C20Benzenesulfonic acid
Thorium and potassium, especially linear second
Grade alkyl CTen-CFifteenSodium benzene sulfonate; and beef tallow or coconut oil
Higher alcohol ethers derived from petroleum and synthetic alcohols derived from petroleum
It is. Preferred anionic detergent compounds are C11-CFifteenAlkyl benzene sulfone
Sodium acid and C12-C18It is sodium alkylsulfate.
Further usable one is EP-A-328177 (Univer).
Surfactants exhibiting salting-out resistance such as those described, EP-A-070074.
The listed alkyl polyglycoside surfactants and alkyl monoglycosides.
A preferred surfactant system is a combination of anionic and nonionic detersive actives.
Mixtures, in particular the anios described in EP-A-346995 (Unilever).
And nonionic surfactants and examples thereof. Particularly preferred is C16
-C18Primary alcohol Alkali metal sulfate and C12-CFifteenPrimary alcohol 3
-7 is a surfactant system that is a mixture with EO ethoxylates.
The nonionic detergent is in an amount greater than 10% by weight of the surfactant system, eg 25-90.
It is preferably present in an amount of% by weight.
The anionic surfactant is, for example, in an amount ranging from about 5 to about 40% by weight of the surfactant system.
May exist.
The enzymatic detergent compositions of the present invention are commonly used in antimicrobial compositions such as thickeners.
Other components may be included. Particularly useful in this regard is EP-A-3142.
No. 32 (Unilever), which is a combination of surfactants,
The combination becomes a thickened gel when dissolved in water.
Use of the antimicrobial composition of the present invention for cleaning hard surfaces and cleaning textiles.
Not only does it provide hygiene benefits, but also hygiene and
The benefits of cleaning as well as cleaning and disinfection of medical devices are also obtained. Other uses are dairy
For disinfection of milking equipment in. The antibacterial composition is capable of combating bacteria that cause an offensive odor.
Due to its ability to destroy, it can also be used successfully in deodorants.
The antibacterial composition of the present invention may be used in the form of a powder that is dissolved in water before use
It may be formulated as a product or gel. In the product form, when using the composition
It is important that the production of hypohalite does not start until
It is important. This is done, for example, by encapsulating the enzyme in a known manner,
Physically separate from the substrate
Can be achieved by
When using the enzymatic antibacterial composition of the present invention, water is added to adjust the composition to 5-100.
Diluting twice gives a medium with effective antimicrobial activity. Then erase the medium
Touch the surface to be poisoned.
The invention is illustrated in detail by the following non-limiting examples.Example 1 Minimum inhibitory concentration (MIC) of hypochlorite material
:
The bacterial strain used in this example was Escherichia coli NCTC.
900, Pseudomonas aeruginosa ATCC 15442
, Staphylococcus aureus ATCC 13565, Str
eptococcus faecalis NCTC 1092 and Lister
ia innocua ATCC 33090 serotype 6B. Bacteria
Rain Heart Infusion (BHI) Broth Medium at 30 ° C for 15-18 hours
Propagated. After culturing, citrate buffer pH 5.5 (20 mM NaThreeCitric acid / N
The bacterial strain was washed twice in aOH buffer + 10 mM NaCl). Bacterial suspension
Centrifuge (14,000 rpm for 5 minutes) in a Schoendorf centrifuge and then the supernatant
After removal of the bacteria, the bacterial pellet was resuspended in citrate buffer. Then each bacterial suspension
This washing procedure was repeated once for the suspension. Then, the bacteria suspension washed twice
Dilute the suspension with citrate buffer pH 5.5 to about 107
A suspension of bacteria / ml is obtained. Cells were kept on ice during the wash steps. Buffer solution
And BSA solution (1% w / v in citrate buffer pH 5.5) by filter sterilization,
Stored at 4 ° C. Dilute the stock solution (107,000 ppm) with sterile deionized water
To prepare a hypochlorite solution.Method
:
Using sterile technique, citrate buffer pH
About 10 out of 5.57A suspension of bacteria / ml was prepared. 1.9 ml aliquot from the suspension
The recoat was added to a sterile tube. Then, to obtain the dilution range of hypochlorite,
To the tube was added 0.1 ml of cold hypochlorite solution of various concentrations. The tube with a magnetic stirrer
It was continuously stirred. In addition, add only sterile buffer instead of the hypochlorite solution.
A blank measurement was also performed. The sample was incubated at 30 ° C. for exactly 5 minutes.
After the incubation, 1 ml was taken from the reaction mixture and 9 ml of cold BSA (1
% W / v) solution and immediately placed on ice. Now with hypochlorite and microbes
Stopped the reaction. 10 samples-1-10-FiveDiluted to 100 from various dilutions
The μl sample was placed on a labeled BHI-agar plate and colony-forming single cells per ml were formed.
Rank (CF
The survival rate as U) was measured. The plate is then incubated at 30 ° C for 15-18 hours.
Incubated. There is no detectable CFU after this incubation period
If not, the plates are incubated at 30 ° C for an additional 24 hours.Definition
: The minimum inhibitory concentration (MIC value) is as used herein under the experimental conditions used.
Reduce at least log 6 colony forming units of the particular microorganism tested
It is defined as the concentration of chlorite.
The results obtained are shown in Table I. Detected values are in the same range as described in the literature
.
Example 2 Hypochlorite and Curvularia inaequa enzymatically produced by vanadium chloroperoxidase (V-CPO) from lis Minimum inhibitory concentration of grown hypochlorite
In this example, the bactericidal action of hypochlorite was determined by Curvularia ina.
vanadium chloroperoxidase (V-CPO) obtained from Equalis
To compare with the bactericidal action of hypochlorite produced enzymatically. Enable comparison
For this, a micropump was used. This determines the concentration of hypochlorite during the experiment.
, To achieve the same profile as the situation in which hypochlorite is produced enzymatically.
Was. In addition, in order to know the amount of hypochlorite present at each point in the experiment, the experimental conditions
The V-CPO activity was measured very carefully below.material
:
The bacterial strain used in this example was Escherichia coli NCTC.
900, Pseudomonas aeruginosa ATCC 15442
, Staphylococcus aureus ATCC 13565, Str
eptococcus faecalis NCTC 1092 and Lister
ia innocua ATCC
It was 33090 serotype 6B. Bacteria, Brain Heart Infusion (
BHI) Broth medium was grown at 30 ° C. for 15-18 hours. After culturing, relax citric acid
Buffer pH 5.5 (20 mM NaThreeCitric acid / NaOH buffer + 10 mM NaCl
), The bacterial strain was washed twice. Centrifuge the bacterial suspension in an Eppendorf centrifuge (
(14,000 rpm for 5 minutes), then remove the supernatant and then cleave the bacterial pellet.
Resuspended in enoic acid buffer. Then repeat this washing procedure for each bacterial suspension.
Repeated once. The bacterial suspension washed twice was then citrate buffer pH 5.5.
Diluted with about 107A suspension of bacteria / ml was obtained. Keep cells on ice during the wash step
Maintained. Buffer and BSA solution (1% w / v in citrate buffer pH 5.5)
Filter sterilized and stored at 4 ° C. Aseptic stock solution (107,000 ppm)
A hypochlorite solution was prepared by diluting with deionized water. Aseptically remove 30% stock solution
Dilute with on-water H2O2A solution was prepared. From Difco to Cassitone
got one). According to Van Schijndel et al. (1993), Cu
Purification of chloroperoxidase from Rvularia inaequalis
Was. Using a spectrophotometer,
Sodium phosphate buffer pH 5.5, 10 mM NaCl, 100 μM H2O2, 5
Monochlorodimedone (e 290 nm = 0 μM monochlorodimedone at 30 ° C.)
20.2 mM-1. cm-1) To dichlorodimedone (e 290 nm = 0.2 mM- 1
. cm-1) To Cl,-To HOCl conversion
Loperoxidase activity was measured. 1 unit of chloroperoxidase for 1 minute
The amount of enzyme that converts 1 μmol of monochlorodimedone (Sigma) per
Define.Method
:
About 10 in citrate buffer pH 5.5 using aseptic method7Prepare a suspension of bacteria / ml
Made. A 1.8 ml aliquot from the suspension was added to a sterile reaction vessel, which was
The magnetic stirrer was continuously stirred for the duration of the experiment. Then obtain the dilution range of V-CPO
To the reaction vessel at various concentrations (see below for calculation) of V-CPO.
0.2 ml of solution was added. Also, instead of 0.2 ml of V-CPO solution, 0.2
Blank measurements were also performed with the addition of ml of sterile buffer. Incubate the reaction vessel at 30 ° C.
Bate, then 0.5 ml H2O2Initiate V-CPO reaction by adding stock solution
did. Used H2
O2Stock solution concentration depends on the concentration of hypochlorite produced, H2O2Final concentration of
There is a 5-fold molar excess (at the end of the flux) with respect to the final concentration of hypochlorite.
Selected to. The sample was incubated at 30 ° C. for exactly 5 minutes. ink
After incubation, 1 ml of reaction mixture was removed and 9 ml of cold BSA (1% w /
v) Added to the solution and immediately placed on ice. Now, the reaction between hypochlorite and microorganisms
Stopped. 10 samples-1-10-FiveTo 100 μl from various dilutions.
Material on labeled BHI-agar plates and colony forming units (C
The survival rate as FU) was measured. Then plate at 30 ° C. for 15-18 hours
Incubated. There is detectable CFU after this incubation period
If not, the plates are incubated at 30 ° C for an additional 24 hours.
When using a micropump and adding the same amount of hypochlorite to the obtained MIC value
It was compared with the MIC value obtained in. This was done as follows.
About 10 in citrate buffer pH 5.5 using aseptic method7Prepare a suspension of bacteria / ml
Made. Add a 1.8 ml aliquot from this suspension to a sterile reaction vessel and add
During the experiment
Stir continuously with a magnetic stirrer. Incubate the reaction vessel at 30 ° C, then
, 0.2 ml H2O2Stock solution was added. Used H2O2Stock solution concentration is
H depends on the hypochlorite concentration2O2The final concentration of (at the end of the flux) is
, A 5-fold molar excess with respect to the final concentration of hypochlorite. Then
, 0.5 ml of a flux of hypochlorite solution of known concentration at 30 ° C over 5 minutes
(Flow rate: 0.1 ml / min). Various hypochlorite solutions with different concentrations
A series of experiments were performed using the solution to obtain the final concentration range of hypochlorite (for calculation
See below). After incubating for 5 minutes, remove 1 ml of reaction mixture
It was then added to 9 ml of cold BSA (1% w / v) solution and immediately placed on ice. with this
, The reaction between the hypochlorite and the microorganism was stopped. 10 samples-1-10-FiveDiluted to
100 μl samples from various dilutions were loaded onto labeled BHI-agar plates for 1 m
Viability as colony forming units (CFU) per liter was measured. Then,
The rates were incubated at 30 ° C for 15-18 hours. This incubation
If no detectable CFU was present after the period, plate at 30 ° C.
Incubate for 24 hours.
Identical experimental setup incorporated into the spectrophotometer (in the case of blank experiments,
(Not added), the hypochlorite concentration within a certain period of time
290nm = 20.2mM-1・ Cm-1) To dichlorodimedone (e 290 nm
= 0.2 mM-1・ Cm-1) To observe at 290 nm
From V-CPO and hypochlorite from stock solutions, respectively, in the above experiment.
The similarity of the resulting hypochlorite profiles was confirmed.Calculation
:
The final concentration of hypochlorite produced by V-CPO was calculated as follows:
:
When 0.01 U / ml V-CPO was used, 0 added to the initial volume of 2.0 ml.
. 0.05 μmol hyposulfite per 5 minutes due to the dilution effect of 5 ml of flux
0.01 μmol hypochlorite / ml / min is produced corresponding to chlorate / ml
. The final concentration after 5 minutes is (2.0 / 2.5) * 0.05 μmol / ml = after 5 minutes
0.04 μmol of hypochlorite / ml. This concentration is then adjusted to 0.0
4 μmol hypochlorite / ml = 0.04 * 52.5 ppm hypochlorite = 2.
It can be expressed as 10 ppm hypochlorite. V-C
The PO concentration was increased or decreased to obtain final concentrations of other hypochlorites. Added hypochlorite
The final concentration of was calculated as follows:
Since 0.5 ml of flux is added to 2.0 ml of reaction volume, the final volume is 2
. 5 ml, which corresponds to a 5-fold dilution. 2.10 ppm hypochlorite
A stock solution of 10.50 ppm was used to obtain the final concentration. Hypochlorite storage
Other hypochlorite concentrations were obtained by increasing or decreasing the stock solution.Definition
: The minimum inhibitory concentration (MIC value) is as used herein under the experimental conditions used.
Reduce at least log 6 colony forming units of the particular microorganism tested
It is defined as the concentration of chlorite.
The results are shown in Table II. Produced by V-CPO or hypochlorite flakes
To compare the bactericidal activity of different final concentrations of hypochlorite produced at the end of
You. As we can conclude from Table II, hypothalias already enzymatically produced by V-CPO.
The chlorate has a low hypochlorite concentration of about 0.4 ppm, and thus Staphyloco
Completely inhibits the growth of all tested microorganisms except ccus aureus
In contrast, in Staphylococcus aureus, similar growth inhibition was observed.
2ppm hypochlorite is required to obtain
I need it. These results indicate that vanadium-containing haloperoxidase
Demonstrated to be a more effective hygiene ingredient than predicted from chlorate production alone
ing. Furthermore, all tested V-CPO, whether pathogenic or non-pathogenic
Heme-containing haloperoxidase, which kills microorganisms in
It is clear that it only sterilizes only the rice efficiently (EP-A-500387).
No.).
Example 3 Enzymatically produced by V-CPO in the presence of hypochlorite and protein hydrolysates Of sterilized hypochlorite
To obtain hygiene, under actual circumstances, under-dosing hypochlorite
It is known that giving is necessary.
This is because the reactive molecule not only reacts with the microorganism, but also with other compounds present.
Because it reacts with. Thus, for example, the bar in a liquid containing protein hydrolyzate
It was important to test the behavior of nadium-containing haloperoxidase.material
:
The bacterial strain used in this example was Escherichia coli NCTC.
It was 900. Brain Heart Infusion (BHI) Broth Culture
It was grown at 30 ° C. in the ground for 15 to 18 hours. After culturing, citrate buffer pH 5.5 (
20 mM NaThree2 bacterial strains in citric acid / NaOH buffer + 10 mM NaCl)
Washed twice. Centrifuge the bacterial suspension in an Eppendorf centrifuge (14,000 rp
m) for 5 minutes, and then, after removing the supernatant, the bacterial pellet was resuspended in citrate buffer.
Suspended. This washing procedure was then repeated once for each bacterial suspension.
The twice-washed bacterial suspension was then diluted with citrate buffer pH 5.5 to about 1
08A suspension of bacteria / ml was obtained. Cells were kept on ice during the wash steps. Buffer
And BSA solution (1% w / v in citrate buffer pH 5.5) by filter sterilization
Store at 4 ° C
Was. Stock solution (107,000ppm) was diluted with sterile deionized water to prepare hypochlorous acid.
A salt solution was prepared. Dilute a 30% stock solution with sterile deionized water to remove H2O2Prepare the solution
Made. Cassitone was obtained from Difco. Van Sijjndel et al., 19
According to 93 from Chlorvularia inaequalis
The sidase was isolated and purified.Method
:
About 10 in citrate buffer pH 5.5 using aseptic method8Prepare a suspension of bacteria / ml
Made. A 1.3 ml aliquot from the suspension was added to a sterile reaction vessel, which was
The magnetic stirrer was continuously stirred for the duration of the experiment. Then 0.5 ml of 0.5 mg /
ml Cassitone (in citrate buffer pH 5.5) solution and 0.5 ml citric acid
Buffer pH 5.5 was added. Then, 3.2 ppm or 6.5 ppm of hypochlorous acid
Different concentrations (see Example 2 for calculations) to obtain the final concentration of acid salt.
0.2 ml of the V-CPO solution of was added to the reaction vessel. Also, 0.2 ml of V-CP
A blank measurement was also performed in which 0.2 ml of sterile buffer was added instead of the O solution. reaction
Incubate the container at 30 ° C., then add 0.5 ml H 22O2Stock solution (5 times
Flux is a molar excess of hydrogen peroxide
The concentration was chosen so that it was obtained at the end of the) and the V-CPO reaction was initiated.
. The sample was incubated at 30 ° C. for exactly 5 minutes. After incubation,
1 ml of reaction mixture was removed and added to 9 ml of cold BSA (1% w / v) solution,
Immediately placed on ice. This stopped the reaction between the hypochlorite and the microorganism. sample
10-1-10-6100 μl samples from various dilutions are labeled BHI-
Plate as a colony forming unit (CFU) per ml on agar plates
The survival rate was measured. The plates were then incubated at 30 ° C for 15-18 hours
Was. If there was no detectable CFU after this incubation period
Incubate the plate at 30 ° C. for an additional 24 hours.
When the same amount of hypochlorite was added to the obtained sterilization efficiency using a micropump
It was compared with the sterilization efficiency obtained in. This was done as follows.
About 10 in citrate buffer pH 5.5 using aseptic method8Prepare a suspension of bacteria / ml
Made. Add a 1.3 ml aliquot from this suspension to a sterile reaction vessel and add this
The magnetic stirrer was continuously stirred for the duration of the experiment. Then 0.5 ml of 0.
5 mg / ml Cassitone solution (in citrate buffer pH 5.5) and 0.5 ml
Citrate buffer pH 5.5 was added. Then 0.2 ml of sterile citrate buffer
pH 5.5 was added. The reaction vessels were incubated at 30 ° C and then each
Final concentration of hypochlorite of 3.2ppm and 6.5ppm (concentration calculation
To obtain a mixture of 0.5 ml of hypochlorite solution,
Was added at 30 ° C. over 5 minutes (flow rate: 0.1 ml / min). Incubate for 5 minutes
1 ml of reaction mixture was taken out and dissolved in 9 ml of cold BSA (1% w / v).
It was added to the liquid and immediately placed on ice. This stops the reaction between hypochlorite and microorganisms
did. 10 samples-1-10-6100 μl samples of various dilutions are labeled B
Place on HI-agar plate to make colony forming units (CFU) per ml
The survival rate was measured. The plate is then incubated at 30 ° C for 15-18 hours.
I started. There was no detectable CFU after this incubation period
In some cases, plates are incubated at 30 ° C. for an additional 24 hours. The results are shown in Table II.
Shown in I.
Example 4 Bactericidal efficacy of vanadium-containing haloperoxidase and heme-containing haloperoxidase Rate comparison material
:
The bacterial strain used in this example was Escherichia coli NCTC.
900, Streptococcus faecalis NCTC 1092 and
And Listeria innocua ATCC 33090 serotype 6B.
Was. Bacteria in Brain Heart Infusion (BHI) Broth at 30 ° C
Allowed to grow for 15-18 hours. After culturing, citrate buffer pH 5.5 (20 mM NaThree
Bacterial strains were washed twice in citrate / NaOH buffer + 10 mM NaCl).
Centrifuge the bacterial suspension using an Eppendorf centrifuge.
Bacterial pellet after hearting (5 min at 14,000 rpm) and then removing the supernatant
Was resuspended in citrate buffer. This washing procedure is then carried out for each bacterial suspension.
Repeated once more. The bacterial suspension washed twice was then citrate buffer pH 5
. Dilute with 5 to about 107A suspension of bacteria / ml was obtained. Ice cells during the wash step
Kept on. Buffer and BSA solution (1% w / v in citrate buffer pH 5.5)
) Was filter sterilized and stored at 4 ° C.
Curvularia according to Van Schijndel et al. (1993).
Chloroperoxidase was purified from inaequalis. Heme-containing chloro
Peroxidase was added to Sigma (Caldariomyces fumago)
I came from). Spectrophotometer, 20 mM sodium citrate buffer pH 5.5
10 mM NaCl, 100 μM H2O2, 50 μM 3 in monochlorodimedone
Monochlorodimedone (e 290 nm = 20.2 mM at 0 ° C)-1・ Cm-1) From
Dichlorodimedone (e 290 nm = 0.2 mM-1/ Cm-1) To the conversion
Guess Cl-Of chloroperoxidase activity in the conversion of HO to HOCl
Specified. 1 unit of chloroperoxidase hits for 1 minute
Defined as the amount of enzyme that converts 1 μmol of monochlorodimedone (Sigma)
You. The same assay for both enzymes (and so that the two enzymes with equal activity can be administered)
And the definition of activity) were used.Method
:
Using aseptic method, 20 mM sodium citrate buffer pH 5.5, 10 mM N
About 10 in aCl7A suspension of bacteria / ml was prepared. 1.9 ml aliquot from the suspension
The recoat was added to a sterile tube. Then, each vanadium-containing chloroperoxy
Add 0.1 ml from stock solution of chloroperoxidase containing dase and heme to the tube
In addition, a dilution range was obtained for both enzymes. Also, instead of the enzyme stock solution,
A blank measurement in which only the bacterial buffer was added was also performed. Then 0.5 ml of 25 mM
H2O2Stock solution was added. The sample was incubated at 30 ° C. for exactly 5 minutes.
After incubation, 1 ml of reaction mixture was removed and 9 ml of cold BSA (1
% W / v) solution and immediately placed on ice. 10 samples-1-10-FiveDiluted to
100 μl samples from various dilutions were loaded onto labeled BHI-agar plates for 1 m
Viability was measured as colony forming units (CFU) per liter
Was. The plates were then incubated at 30 ° C for 15-18 hours. This inn
If no detectable CFU was present after the cubation period, plate
Are incubated at 30 ° C. for a further 24 hours.
The results are shown in Table IV. The data show that vanadium-containing chloroperoxidase
It is far more effective than heme-containing chloroperoxidase even when administered isocratically.
It clearly shows that it provides a living system.
Example 5 Effect of various hydrogen peroxide sources on the blocking action of V-CPO
In the examples so far, hydrogen peroxide, which is one of the substrates in the V-CPO reaction, is used.
Was added from a stock solution, but in this example the effect of using other hydrogen peroxide sources was
Describe the fruit. Citrate buffer pH 5.5 (20 mM Na as a buffer)ThreeQuen
Acid / NaOH buffer + 10 mM NaCl) to monitor oxygen consumption.
Physical Oxygen Monitor (Biological Oxygen Monitor) Y
Oxidase in SI model 5300 (oxygen chamber model 5301) at 30 ° C
Was assayed. The buffer was saturated with air at 30 ° C. For glucose oxidase
As a substrate of 15 g. 1-1(Final concentration) glucose was used. In this example
The bacterial strain used was Escherichia coli NCTC 900.
. Bacteria were incubated in Brain Heart Infusion (BHI) Broth medium at 30 ° C for 1 hour.
Allowed to grow for 5-18 hours. After culturing, citrate buffer pH 5.5 (20 mM NaThree
Bacterial strains were washed twice in citrate / NaOH buffer + 10 mM NaCl).
Eppendorf centrifugation of bacterial suspension
Centrifuge in a separator (14,000 rpm for 5 minutes), then remove the supernatant and
The bacterial pellet was resuspended in citrate buffer. Then for each bacterial suspension
The washing procedure was repeated once. The bacterial suspension, which had been washed twice, was then washed with citric acid.
Approximately 10 after diluting with a pH 5.58A suspension of bacteria / ml was obtained. During the cleaning phase
, Cells were kept on ice. Buffer and BSA solution (in citrate buffer pH 5.5)
1% w / v) was filter sterilized and stored at 4 ° C. Stock solution (107,000)
ppm) was diluted with sterile deionized water to prepare a hypochlorite solution. 30% storage
Dilute the solution with sterile deionized water and add H2O2A solution was prepared. Oak from Difco
Got the tone. Curv according to Van Schijndel et al. (1993).
Isolation and purification of chloroperoxidase from ularia inaequalis
did. Glucose oxidase derived from Aspergillus niger
Obtained from igma.Method
:
Aseptic method, about 10 in citrate buffer pH 5.58Bacteria / ml suspension
Prepared. Add a 1.3 ml aliquot from the suspension to a sterile reaction vessel and add
During the experiment
Stir continuously with a magnetic stirrer. Then 0.5 ml of 0.5 mg / ml casito
Solution (in citrate buffer pH 5.5) was added. Then add 0.2 to the reaction vessel.
ml of V-CPO solution was added to give a final concentration of 6.5 ppm hypochlorite.
Also, 0.2 ml of sterile buffer solution was added instead of 0.2 ml of V-CPO solution.
A blank measurement was also performed. The reaction vessel was incubated at 30 ° C and then
0.5 ml of one of the three hydrogen peroxide generating systems was added:
H from 1.3 mM stock solution2O2;
Sodium percarbonate from a 2.3 mM stock solution;
3. Glucose oxidase (0.39 units / ml) and 75 mg / ml gluco
A mixture of sugars.
The sample was incubated at 30 ° C. for exactly 5 minutes. After incubation,
1 ml of reaction mixture was removed and added to 9 ml of cold BSA (1% w / v) solution,
Immediately placed on ice. This stopped the reaction between the hypochlorite and the microorganism. Sample
10-1-10-6100 μl samples from various dilutions are labeled BHI-cold.
Survival as colony forming units (CFU) per ml on top plates
The rate was measured. The plate is then incubated at 30 ° C for 15-18 hours.
Incubated. There is no detectable CFU after this incubation period
If not, the plates are incubated at 30 ° C for an additional 24 hours. Ma
The value obtained was measured using an icro pump when exactly the same amount of hypochlorite was added.
It was compared with the MIC value obtained. This was done as follows.
Aseptic method, about 10 in citrate buffer pH 5.58Bacteria / ml suspension
Prepared. Add a 1.3 ml aliquot from the suspension to a sterile reaction vessel and add
The magnetic stirrer was continuously stirred during the experiment. Then 0.5 ml of Kasitone
A solution (0.5 mg / ml in citrate buffer pH 5.5) was added. Then, 0.
2 ml of sterile citrate buffer pH 5.5 was added. Incubate the reaction vessel at 30 ° C.
I got it. Then 32.5 ppm hypochlorite solution 0.5 ml flack
Was added at 30 ° C. over 5 minutes (flow rate: 0.1 ml / min). Incubate for 5 minutes
1 ml of reaction mixture was taken out and dissolved in 9 ml of cold BSA (1% w / v).
It was added to the liquid and immediately placed on ice. This will stop the reaction between the hypochlorite and the microorganisms.
Was. 10 samples-1-10-6Label 100 μl samples from various dilutions
BHI-
Plate as a colony forming unit (CFU) per ml on agar plates
The survival rate was measured. The plates were then incubated at 30 ° C for 15-18 hours
Was. If there was no detectable CFU after this incubation period
Incubate the plate at 30 ° C. for an additional 24 hours. The results are shown in Table V.
.
Example 6 Chloroperoxidase gene (cDNA) and Curvularia ina equalis (Central Bureau voor Simmel cultures, the Netherlands, strain no. 102. 42) Method for determining the coding sequence of the gene obtained as well as possible expression systems
C. V. Schijndel et al. (1993). inaequa
Chloroperoxidase was isolated and purified from a liquid culture of Lis, except that D
After EAE chromatography, FPLC system (Pharmacia LKB)
Was used to perform a two-step additional purification. First, phenyl sepharose Cl-4
Using a B hydrophobic interaction column, 50 mM Tris- in the presence of 2M NaCl.
Enzyme was bound in HCl (pH 8.3), then 50 mM Tris-HCl.
Elution with a decreasing gradient from 2M NaCl in (pH 8.3). As final purification,
MonoQ HR 5/5 anion exchange column (Pharmacia LKB)
To bind the enzyme, then 20 mM piperazine-HCl (pH 5.4)
Eluted with a 0 M to 0.5 M NaCl gradient in. Then, the rotary evaporation method (rotat
Ion evaporation) to concentrate the enzyme, then 50 mM T
ris-SOFourIt was dialyzed against a buffer solution (pH 8). Standard hands known in the art
According to the order, purified chloroperoxidase was added to protease Stap
hylococcu
enzymatically digested with sV8 and trypsin, or CNBr [Gross, E
. (1967), Methods Enzymology 11, 238-255.
], It chemically cut. Laemmli [Laemmli, U .; K. (1970
) Nature 227, 680-685], using SDS-PAGE.
Or according to Schagger and Von Jagow (1987).
After isolation of the resulting peptide on a gel, Matsudoira (1987)
), The CAPS transfer buffer (10).
mM 3- [cyclohexylamino] -1-propanesulfonic acid, 10% methano
PVDF membrane (Millipore Immobilo)
n-P). After electrophoretic elution, the membrane is rinsed with deionized water for 5 minutes, 50
Stained with 0.1% Coomassie Blue R-250 in 5% methanol for 5 minutes, 50%
It was decolorized in methanol, 10% acetic acid at room temperature for 10 minutes and air dried. Peptide band
And a Porton LF 3000 protein sequencer (Beckman I
nstruments, Inc. , USA) Fully automatic Edmann sequence
I went to Thing. The results of the amino acid sequencing are summarized in Figure 1.
Design all degenerate oligonucleotides based on the amino acid sequence of the peptide
(See Table VII). Use these degenerate primers as the template for the first strand cDNA
It was used for polymerase chain reaction (PCR). The first strand cDNA is as follows
Created:
To isolate RNA, C.I. 1 liter of spores of inaequalis
4 g of yeast extract and 2 ml of a trace ingredient solution (Van Schijndel
Et al., 1993). After a few days of growth, the mycelium was filtered
Harvested and freeze dried. Lyophilized C.I. inaequalis mycelium in liquid nitrogen
Ground down. RNA extraction buffer (42 mM sodium citrate pH 7, 0.
83% N-lauryl sarcosine, 50 mM β-mercaptoethanol, 1%
Riton X-100 and 4M guanidine isothiocyanate) was added to
Extracted and incubated at room temperature for 1 hour. 0.1 volume of 2M sodium acetate (
pH 4) and 1 volume of phenol: chloroform: isoamyl alcohol (25:
24: 1) was added and the mixture was placed on ice for 15 minutes. 10,000 × g (4 ℃)
After centrifuging at 10 minutes, collect the aqueous phase, add 1 volume of anhydrous alcohol and mix.
Incubate for 1 hour at -20 ° C, then centrifuge briefly at 10,000 xg
did. The pellet was resuspended in an appropriate amount of RNA extraction buffer and a cesium chloride gradient (Sa
Fractionation by ultracentrifugation in mbrook et al., 1989). Wash pellets carefully
It was purified and stored in 75% ethanol solution at -70 ° C. to isolate mRNA
RNA was then precipitated, resuspended in RNAse-free water, and then PolyAt
ract mRNA isolation kit (Promega Corporation, US
MRNA was extracted using A). Pharamacia First Strand cDNA Synthesis Key
(Pharmacia Biotech) and C.I. inaequali
First-strand cDNA synthesis was performed on mRNA isolated from s. Chloroperoxida
4 20-mer degeneracy based on the amino acid sequence of the enzyme peptide (see also Table VII).
An oligonucleotide was designed and used as a template for C.I. No. obtained from inaequalis
It was used as a primer in the polymerase chain reaction using single-stranded cDNA.
Thermo Cycler (Eppendorf Master Cycler 5330) and Taq Poly
Polymerase sequence using merase (Promega Corporation)
The chain reaction was carried out. Use degenerate primer
To obtain optimal amplification of the cDNA encoding chloroperoxidase.
Limerase chain reaction was carried out at 46 ° C. (annealing step) for 30 cycles. Profit
The two specific fragments obtained were ligated into the pUC18 vector, cloned and
And sequenced from both strands. Based on the results of the DNA sequence, the following two features are
Designed constant primers:
as well as
Polymerase using these two primers and first strand cDNA as template
Used for chain reaction. In this way, gene features that bind to two known DNA sequences
A foreign DNA fragment was obtained. This fragment was cloned into pUC18 vector.
After sequencing, it was sequenced. Of the mRNA encoding chloroperoxidase
To obtain the 5'region, the 5'-Amplifier RACE kit (Cl
Onetech Corporation) was used. C. inaequali
The genomic chloroperoxidase gene was isolated from s as follows:
C. inaequalis genomic DNA was isolated from freeze-dried mycelium and
Grinding under a vacuum, a proper amount of extraction buffer (200 mM Tris-HCl, pH 8.5,
25 mM EDTA, 250 mM NaCl, 1% SDS and 0.2 mg / ml
Extracted with proteinase K). After overnight incubation at room temperature,
Phenol and 0.3 volume of chloroform were added and vigorously stirred. Tube for 10,000
Centrifuge at 0xg and transfer the aqueous phase to a clean tube. Genomic DN with 2 volumes of absolute ethanol
A was allowed to settle. After centrifugation at 5,000 xg for 5 minutes, the pellet is resuspended in 2 ml of 1 ml.
Resuspended in 0 mM Tris-HCl, pH 8.0 and 1 mM EDTA for manufacturing
With RNAse (Boehringer Mannheim) according to the recommendation
did. A solution containing genomic DNA is phenol: chloroform: isoamyl alcohol.
(25: 24: 1) and precipitated with ethanol.
It was dissolved in 0 mM Tris-HCl pH 8, 1 mM EDTA buffer. genome
To carry out a Southern analysis of DNA, the DNA was combined with several restriction enzyme combinations.
Digested and blotted on nitrocellulose membrane after agarose gel electrophoresis (Sa
mbrook et al., 1989).
α-32Random Plot Using P-Labeled dATP (Sambrook et al., 1989)
Created by liming (amplified using the above two specific primers)
Hybridization was performed using a radiolabeled gene-specific fragment.
Was. Based on the results obtained, it was digested with Pst I and inserted into the vector pUC18
A mini library was prepared using the genomic DNA. Suther the library
Screened with the same probes as described for immunoblotting
. Positive clones were isolated and partially sequenced from both strands to obtain cDNA
The sequence results were confirmed. C. inaequalis chloroperoxidase
The gene to be cloned and its putative gene product are shown in FIG.
In Saccharomyces cerevisiae as follows
A chloroperoxidase production system was created.
S. cerevisiae wild type GAL1 gene (Molecular an
d Cellular Biology 10, 4757-4769, 1990).
As an EcoRI-BamHI fragment from the well-known GAL1-inducible yeast plasmid.
Obtained the lomotor and designated it as plasmid YC
plac33 and YEplac95 [Gietz and Sugino (1988)
Gene 74,527-534] at the EcoRI-BamH1 site.
did. The obtained plasmids were named TNT1 and TNT2, respectively. pUC1
Subcloned into C. inaequalis chloroperoxidase inheritance
Using the PstI EcoRI 5'fragment of the offspring as a template and as a primer
M13 / pUC22mer reverse sequence primer and the following primers:
PCR experiments were performed using C. inaequalis chloroperoxidase
A BamHI restriction site was formed before the 5'start site of the gene.
The amplified fragment was digested with BamHI and EcoRI. C. inae
EcoRI containing the 3'portion from the qualis chloroperoxidase gene
-The PvuII fragment was subcloned into EcoRI SmaI digested pUC18.
It has become After digesting this clone with EcoRI and XbaI, the clone
To C. inaequalis contains the 3'portion of the chloroperoxidase gene
flag
The menthol was purified.
TNT1 or TNT2 digested with BamHI and XbaI, respectively, and 5
'BamHI-EcoRI fragment and 3'EcoRI-XbaI fragment
A three-part ligation reaction was performed. Obtained after ligation and cloning
The plasmid was identified. Each of the thus obtained plasmids was TN
They were named T3 (derived from TNT1) and TNT4 (derived from TNT2).
Yeast strain BJ1991 was transformed into plasmid TNT3 according to procedures known in the art.
And TNT4 and selected for ura + transformants. ura +
YP-prey containing transformants containing glucose (2%) or galactose (2%)
Duplicated. After growth, a few cells were removed from the plate and 200 μl of 2
Resuspended in 0 mM Tris-HCl pH 8.1. Incubated for 5 minutes
After that, 10 μl was taken from the solution and spotted on a nitrocellulose filter.
Was. Use a nitrocellulose filter with 100 mM sodium acetate buffer (pH 5).
. 5) 1 mM orthodianisidine, 100 mM KBr and 2 mM H2O2During ~
Incubated at. Galactose forms a transparent color
It was found in all spots derived from growing yeast, whereas it was found in glucose-producing yeast.
I couldn't. This is the yeast Saccharomyces cerevisia
Curvularia inaequalis chloroperoxidase
It shows that a galactose-inducible production system of genes has been constructed. 100 mM
Potassium phosphate buffer (pH 6.5), 100 mM KBr, 1 mM H2O2as well as
In a similar assay with 40 μM Phenol Red (BDH)
A blue-purple color was formed in the solution obtained from the yeast that grew with the glucose, whereas glucose
It was clearly shown that the solution obtained from the cultured yeast did not undergo a color change. yeast
Heterologous chloroperoxidase gene expression system in C. inaequalis
C. which has the same functionality as loroperoxidase. inaequalis chlorope
In order to further confirm that it produced ruoxidase, galactose-induced T
Recombinant enzymes were purified from yeast strains transformed with NT3 or TNT4. Galacto
Yeast cells were harvested after growth in medium containing glucose and 20 mM Tris-HC
1 (pH 8.1). Then add sterile glass beads and intensify the suspension.
It was shaken. 15 minutes at 10,000 xg
After the preparation, the supernatant was taken and added to the DEAE column, and wild type C. inaequali
recombinant enzyme using substantially the same purification protocol as for the s enzyme (see above).
Purified. After purification, the specific activity of 22 U / mg protein (100 mM sodium acetate
Um buffer pH 5.0, 1 mM H2O25 mM potassium chloride and 50 μM M
Recombinant with measurements in CD, see also Van Schijndel et al., 1993)
Obtained chloroperoxidase. The activity is C. inaequalis itself
Specific activity obtained with chloroperoxidase purified from
Very similar to 20 U / mg protein. Wild type chloroperoxider
PH activity profile of recombinant chloroperoxidase derived from zebrafish and yeast
Is shown in FIG. FIG. 3 shows that the recombinant yeast-produced enzyme has the same functionality as the wild-type enzyme.
Further demonstrates thatExample 7 Screening for suitable haloperoxidases in other microorganisms
The microorganism used in this example was Curvularia inaequalis.
(CBS 102.42), Drech
slera biseptata (CBS 371.72), Drechsler
a fugax (CBS 509.77), Drechslera nicoti
ae (CBS 655.74), Drechslera subpapendor
fii (656.74), Embelisia hyacinthi (416.
71), Embelisia didymospora (CBS 766), Ul.
ocladium chartarum (200.67) and Ulocladi
um botrytis (452.72). Various fungi on agar plate
Propagate with. When the growth is completed, the extracellular protein is added to 50 mM Tri in advance.
Nitrocellulose fill moistened in s-HCl buffer (pH 8.3)
Transfer to the target (replica blotting). Incubate for 15 minutes on agar plate
And 100 mM sodium acetate in the presence or absence of 0.1 M potassium bromide.
Thorium (pH 5.5) or potassium phosphate (pH 6.5 and 7.5), 1 mM
Dip the filter in orthodianisidine, 2 mM hydrogen peroxide, and
The filters were tested for luoxidase activity. In this way, bromo
Production of peroxidase and / or chloroperoxidase
Raw can be detected. The haloperoxidase produced was vanadium-containing haloperoxidase.
To test for oxidase, 10 μM and 100 μM vana
The above test was repeated in the presence and absence of sodium dinate. Contains vanadium
In the case of haloperoxidase, the addition of vanadate increases the signal.
Admitted. The identified chloroperoxidase is actually C.I. inaequal
Test for similarity to vanadium haloperoxidase obtained from is.
To strike, Ulocladium chartarum, Embelis
ia didymospora and Drechslera Subpapendo
A small amount of chloroperoxidase was purified from rfii (Van Schijn
(substantially the same as described by del et al., 1993). The optimum pH for these enzymes is
, PH fluctuated in the range of 4.5 to 5.5. The chlorinating activity of the enzyme
It increased with the addition of the enzyme because the enzyme was actually a vanadium haloperoxide.
It is clearly shown that it is ZE. The identified enzyme and C.I. inaequalis
Identification to further test its similarity to vanadium chloroperoxidase
Type of haloperoxidase
Was further characterized. For this purpose, the fungus Drechs lera bisep
chloroperoxidase produced by Tata (CBS 371.72)
Selected. The chloroperoxidase is highly thermostable and highly stable to its substrate.
Chloroperioa from Curvularia inaequalis with affinity
It has similar properties to xydase. In addition, the EPR spectrum of the purified enzyme
Toll was also recorded. Other vanadium haloperoxidases (de Boer et al., 1
988; Wever et al., 1988), oxidases are observed in EPR strains.
It does not show any vector, but when reduced with sodium dithionite, it shows typical
A Nazil EPR spectrum was observed (data not shown). g0Is 1.969
, A0Is 9.0 mT isotropic EPR parameter is C.I. inaequalis
(Wever et al., 1985).
In addition, the purified enzyme was separated into peptides using protease and cyanogen bromide.
Released. The peptide maps show the same pattern, which indicates that these two enzymes
It suggests that the two have high sequence homology. This is actually a protease
Processed and purified
That is, two separate peptides of the isolated enzyme were sequenced. these
The sequences show very high homology, so these two enzymes are very similar.
Can be concluded.
C. Amino acid sequence of the peptide derived from inaequalis:
(Asp) -leu-arg-gln-pro-tyr-asp-pro-th
r-ala-pro-ile-glu-asp-gln-pro-gly-il
e-val-arg-thr-
D. Amino acid sequence of a similar peptide obtained from biseptata:
asp-leu-arg-gln-pro-tyr-asp-pro-thr-
ala-pro-ile-glu-glu-gln-pro-gly-ile-
val-arg-thr-
Therefore, a suitable vanadium-containing haloperoxidase is suitable after addition of vanadate.
And / or (partially) purifying the enzyme using a replica method to test for increased activity of
Can be identified by making and examining the increase in activity after addition of vanadate.Example 8 Further screening of suitable chloroperoxidases in other microorganisms using antibodies. Earning
The strain used in this example was Curvularia inaequalis (C
BS 102.42), Drechsler biseptata (CBS 3
71.72), Drechslera subpapendorfii (CBS
656.74), Embellissia didymospora (CBS 7).
66.79) and Ulocladium chartarum (CBS200.
67).
The microorganism was grown in two stages. In the first stage, 50 ml of sterile germination medium (Va
n Schijndel et al., 1993) was inoculated with a spore population of the microorganism. 2
After shaking at 3 ° C. for 3 days, the culture was treated with 1 liter of fermentation medium [1 liter of deionized water.
In tor, 5 g casein hydrolyzate (Gibco BRL), 3 g yeast extract and
1 g of fructose] was transferred to a 3 liter Erlenmeyer flask. Shake at 23 ° C
The collected medium was collected after 14 to 17 days, filtered, and substantially Van Schijnd.
Chloroperoxidase was purified according to el et al. (1994). (2 months old
Female) in a rabbit, C
purified from Urvularia inaequalis (Van Schijn
del et al., 1994) produced polyclonal antibodies against chloroperoxidase.
Born (Freund's complete adjuvant for the first injection, booster injection
Used Freund's incomplete adjuvant). 6 days after the last booster injection
I bled the rabbit. Heat serum at 56 ° C for 30 minutes to inactivate complement, then
I centrifuge. The supernatant was removed. Purified chloroperoxidase and A, respectively
Bromoperoxidase from Scophylum nodosum (Weber
Et al., 1985), 50 μl of each protein (about 0.1 mg
/ Ml) was prepared and each sample was serially diluted 2-fold. Dot
Diluted solution on a nitrocellulose filter using a lot machine (Bio-Rad)
Spots, wash with 2% BSA, and then sequentially extract rabbit anti-chloroperoxidase.
Antiserum (dilution ratio 1: 800), biotinylated goat anti-rabbit (dilution ratio 1: 3000)
), Alkaline phosphatase-conjugated streptavidin (dilution ratio 1: 2000) and
And color formers [5-bromo-4-chloro-3-indolyl phosphate, 4-Nit
roBlue Tetrazolium
Chloride (Boehringer Mannheim)]
did. All steps were performed according to standard protocols. The results obtained are shown in Table VI.
You.
Based on the results shown in Table VI, C.I. inaequalis Chloroperoki
Immunoassays using antibodies raised against sidase have been performed with other suitable vanadies.
It can be concluded that it is suitable for the identification of halo-containing haloperoxidases. These halos
Peroxidase may be in crude or partially or fully purified form.
You may. Purification methods include gel filtration, ion exchange chromatography, hydrophobic
Action chromatography, sedimentation method, (ultra) filtration method, Affini
No known in the art such as T-chromatography, gel electrophoresis etc.
The offset method may be used.Example 9 Further screening for suitable chloroperoxidases in other microorganisms
In this example, the chlorope from Curvularia inaequalis
Of other microorganisms using radioactive probes derived from the
A method for detecting a seed gene is described. This was done as follows.
C. inaequalis (CBS 102.42), Embelissia
didymospora (CBS 766.79) and Drechslera b
The chromosomal DNA from iseptata (CBS 371.72) is substantially
. inaequalis as described for chromosomal DNA (see Example 6).
Purified). Several types of DNA for Southern analysis of genomic DNA
Digested with a combination of restriction enzymes and subjected to agarose gel electrophoresis, followed by nitrocellulose
Membranes (Sambrook et al., 1989) were blotted. α-32P-labeled dATP
Produced by random priming used (Sambrook et al., 1989)
Hybridization was performed using a radiolabeled gene-specific fragment.
Was. The gene-specific fragment used was used as a template for the first-strand cDNA (Example 6).
See below) and use the following primers:
Was amplified by polymerase chain reaction (before radiolabeling).
Hybridization conditions were as follows.
6 * SS in prehybridization and hybridization
PE, 5 * Denhardts, 0.5% SDS and 10 mg salmon sperm DNA
Was used as a buffer. Pre-hybridize at 55 ° C for 1 hour and then
Then, the radioactive probe was boiled for 1 minute and added as it was. After that, the hybrid
The iza- tion continued overnight. Curvularia inaequalis and
And the autora obtained using the DNA of Drechler biseptata
The geograph is shown in FIG. In the figure, lane 1: λDNA; lane 2: non-quenched
C. inaequalis genomic DNA; lane 3: the digested with EcoRI
DNA; lane 4: said DNA digested with BanHi; lane 5: EcoRI and
BamHI digested DNA; Lane 6: XbaI digested DNA;
7: the DNA digested with PstI; lane 8: digested with XbaI and PstI
Lanes 9 to 14: D. Same as above using biseptata
It is something. As can be seen in the figure, Drechslera bisepta
A chromosomal DNA from ta gives a positive signal, which is high in both genes.
The degree of similarity is shown. From Embellisia didymospora
Similar results were obtained with the obtained DNA. Therefore, the chloro derived from the gene
Peroxidase gene or part thereof or C.I. inaequalis chloro
From other microorganisms using a probe based on the peroxidase gene sequence
It was concluded that it was possible to detect the appropriate vanadium haloperoxidase in
obtain.
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DK,ES,FR,GB,GR,IE,IT,LU,M
C,NL,PT,SE),OA(BF,BJ,CF,CG
,CI,CM,GA,GN,ML,MR,NE,SN,
TD,TG),AP(KE,MW,SD,SZ,UG),
AM,AT,AU,BB,BG,BR,BY,CA,C
H,CN,CZ,DE,DK,EE,ES,FI,GB
,GE,HU,IS,JP,KE,KG,KP,KR,
KZ,LK,LR,LT,LU,LV,MD,MG,M
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オランダ国、1183・カー・ハー・アムステ
ルフエーン、カメラ・オツプスクララー
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ンド
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ケルフエルハールデ・5
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オランダ国、1622・ハー・ヘー・ホーン、
ホウツアーヒモレン・62─────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of front page (51) Int.Cl. 6 Identification number Office reference number FI // (C12N 15/09 ZNA C12R 1: 645) (81) Designated country EP (AT, BE, CH, DE, DK, ES, FR, GB, GR, IE, IT, LU, MC, NL, PT, SE), OA (BF, BJ, CF, CG, CI, CM, GA, GN, ML, MR, NE, SN, TD, TG), AP (KE, MW, SD, SZ, UG), AM, AT, AU, BB, BG, BR, BY, CA, CH, CN, CZ, DE, DK, EE, ES , FI, GB, GE, HU, IS, JP, KE, KG, KP, KR, KZ, LK, LR, LT, LU, LV, MD, MG, MN, MW, MX, NL, NO NZ, PL, PT, RO, RU, SD, SE, SG, SI, SK, TJ, TM, TT, UA, UG, US, UZ, VN (72) Inventor Simmons, Lambertus Henricus Netherlands, 1183. Kerr Ha Amstelveen, Camera Opps Claran 368 (72) Inventor Tel Steff, Peter Huerdinand The Netherlands, 2803 El Her Gouda, Kerf El Harde 5 (72) Inventor Weber, Ronald The Netherlands, 1622 Har Hae Horn, Hout Tour Himlen 62