JPH09322769A - Improved enzymatic substrate - Google Patents

Improved enzymatic substrate

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JPH09322769A
JPH09322769A JP14006796A JP14006796A JPH09322769A JP H09322769 A JPH09322769 A JP H09322769A JP 14006796 A JP14006796 A JP 14006796A JP 14006796 A JP14006796 A JP 14006796A JP H09322769 A JPH09322769 A JP H09322769A
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JP
Japan
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substrate
solution
chromium
enzyme
added
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Pending
Application number
JP14006796A
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Japanese (ja)
Inventor
Norio Hagi
規男 萩
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Tosoh Corp
Original Assignee
Tosoh Corp
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Publication date
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  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Abstract

PROBLEM TO BE SOLVED: To obtain an enzymatic substrate improved in long-term preservability and useful for enzyme activity measurement and enzyme immunoassay, etc., by making chromium coexistent with 4-methyl umbelliferonephosphate as a substrate for hydrolase such as alkaline phosphatase. SOLUTION: First, 2-amino-2-methyl-1-propanol and sodium azide are weighed and put into a vessel. Secondly, purified water is added to them to prepare an aqueous solution followed by adding concentrated hydrochloric acid to the aqueous solution while monitoring the solution with a pH meter to adjust the aqueous solution to pH10, and then, further purified water is added to the resultant aqueous solution to regulate its volume. Thirdly, 4-methyl umbelliferonephosphate(4MU), a substrate for hydrolase such as alkaline phosphatase, is added to the resultant solution to make into an 1mM 4MU solution. Finally, a chromium solution is added to the 4MU solution so as to have 0.1-300ppm of chromium concentration, thus obtaining the objective enzymatic substrate improved in stability after preserved for a long period and prevented from quality deterioration.

Description

【発明の詳細な説明】Detailed Description of the Invention

【0001】[0001]

【発明の属する技術分野】本発明は、改良された酵素基
質、改良された酵素基質の製造方法、更には改良された
酵素基質を含んでなる酵素活性測定用の試薬キットに関
するものであり、例えば酵素免疫測定方法等に使用可能
な、安定性の向上した、優れた酵素基質等を提供するも
のである。
TECHNICAL FIELD The present invention relates to an improved enzyme substrate, a method for producing the improved enzyme substrate, and a reagent kit for measuring an enzyme activity, which comprises the improved enzyme substrate. The present invention provides an excellent enzyme substrate, etc., which has improved stability and can be used in enzyme immunoassays and the like.

【0002】[0002]

【従来の技術】近年、血清、尿等の生体試料中の微量蛋
白質等の含有量等は、抗体や抗原を利用した酵素免疫測
定を実施することで知ることが可能である。即ち、例え
ばサンドイッチ法と呼ばれる方法においては、測定され
るべき蛋白質等に対する固相化モノクローナル抗体(固
相化抗体)と、測定されるべき蛋白質等に対する、前記
モノクローナル抗体とは異なるモノクローナル抗体であ
って酵素と結合させた抗体(標識抗体)とを使用し、測
定されるべき蛋白質等の量に相関した(固相化抗体−蛋
白質等−標識抗体)とのサンドイッチ複合体を形成さ
せ、このようなサンドイッチ複合体を形成していない標
識抗体を分離した後、サンドイッチ複合体中の酵素量を
その活性を基に測定して前記測定されるべき蛋白質等の
量を推定するのである。
2. Description of the Related Art In recent years, the contents of trace proteins and the like in biological samples such as serum and urine can be known by carrying out enzyme immunoassay using antibodies and antigens. That is, for example, in the method called the sandwich method, a solid-phased monoclonal antibody against a protein to be measured (solid-phased antibody) and a monoclonal antibody different from the monoclonal antibody against the protein to be measured An enzyme bound antibody (labeled antibody) is used to form a sandwich complex with (immobilized antibody-protein etc.-labeled antibody) that correlates with the amount of protein or the like to be measured. After separating the labeled antibody that does not form a sandwich complex, the amount of the enzyme in the sandwich complex is measured based on its activity to estimate the amount of the protein or the like to be measured.

【0003】酵素反応に使用する酵素基質は、溶液とし
て又は凍結乾燥等した粉末状態で提供されることが多
い。実際に酵素反応を行うに際しては、この溶液を希釈
又は希釈することなしに使用し、或いはこの粉末に水等
を加えて溶液としてから使用するが、提供された溶液や
粉末状態の酵素基質が劣化していた場合、再現性等、酵
素活性の測定結果に与える影響は大きい。従って、酵素
基質を提供する側から言えば、より長時間に渡って安定
で酵素との反応性等が変化しない酵素基質を提供するこ
とが必要である。
[0003] Enzyme substrates used in enzymatic reactions are often provided as solutions or in the form of lyophilized powders. When actually performing an enzyme reaction, this solution is used without dilution, or it is used after adding water etc. to this powder as a solution, but the provided solution or the enzyme substrate in powder state deteriorates. If so, reproducibility or the like has a great influence on the measurement result of the enzyme activity. Therefore, from the side of providing the enzyme substrate, it is necessary to provide the enzyme substrate which is stable for a long time and whose reactivity with the enzyme does not change.

【0004】以上に説明した酵素免疫測定では、酵素は
目的とする抗原等を測定するための標識として使用され
るが、このような場合以外にも、例えば体液中の酵素含
有量を、その酵素活性を測定することで知る方法も頻繁
に実施されている。
[0004] In the enzyme immunoassay described above, the enzyme is used as a label for measuring a target antigen or the like. In other cases, for example, the enzyme content in a body fluid is determined by measuring the enzyme content. A method of knowing the activity by measuring it is frequently practiced.

【0005】[0005]

【発明が解決しようとする課題】例えば特開平2−18
8578号公報には、酵素基質をアルカリ条件下におく
ことで安定化させることが記載されている。しかし、各
種酵素には活性発現に際して最適pHが存在するため、
このようにアルカリ条件下で安定化された酵素基質をそ
のまま使用した場合、当該pHが活性を測定しようとす
る酵素の最適pHと一致しない場合には測定されるべき
酵素活性自体が小さくなってしまい、測定精度が低下す
るという課題を生じる。一方、このようにアルカリ条件
下で安定化された酵素溶液のpHを酵素の最適pHに調
整することも可能ではあるが、酵素活性測定に先立って
pH調整という工程が付加されることになる。
SUMMARY OF THE INVENTION For example, JP-A-2-18
No. 8578 describes stabilization by placing an enzyme substrate under alkaline conditions. However, since various enzymes have an optimum pH for expressing the activity,
When the enzyme substrate thus stabilized under alkaline conditions is used as it is, when the pH does not match the optimum pH of the enzyme whose activity is to be measured, the enzyme activity itself to be measured becomes small. However, there arises a problem that the measurement accuracy is lowered. On the other hand, although it is possible to adjust the pH of the enzyme solution thus stabilized under alkaline conditions to the optimum pH of the enzyme, a step of pH adjustment is added prior to measuring the enzyme activity.

【0006】また例えば米国特第5143825号公報
には、酵素基質溶液へEDTAやEGTA等の金属キレ
ート剤を添加することで、酵素溶液を安定化させること
が記載されている。しかし、例えば免疫測定に頻繁に使
用されるアルカリ性フォスファターゼ等の、その活性の
発現に金属が必要とされる酵素の場合、キレート剤が共
存下では酵素活性が阻害される恐れもあり、使用に先立
ってキレート剤を除去する等の操作が付加されることに
なる。
Further, for example, US Pat. No. 5,143,825 describes stabilizing an enzyme solution by adding a metal chelating agent such as EDTA or EGTA to the enzyme substrate solution. However, in the case of an enzyme such as alkaline phosphatase frequently used for immunoassays, which requires a metal to express its activity, the enzyme activity may be inhibited in the presence of a chelating agent, and therefore, prior to use. Therefore, operations such as removing the chelating agent will be added.

【0007】前述のように、酵素基質を凍結乾燥等する
ことにより、溶液として保存等する場合に比べて安定性
を向上させることが可能である。しかし、このような凍
結乾燥処理を行う場合であっても、より長期間、安定的
に品質を保持し得る酵素基質が要求されている。また当
然のことであるが、凍結乾燥等された酵素基質は使用に
先立って適当な溶液に溶解されることが多く、溶解され
た後の保存安定性の良好なものが要求される。
As described above, the stability can be improved by freeze-drying the enzyme substrate as compared with the case of storing it as a solution. However, even when such a freeze-drying treatment is performed, there is a demand for an enzyme substrate that can stably maintain the quality for a longer period of time. In addition, as a matter of course, the enzyme substrate freeze-dried or the like is often dissolved in an appropriate solution before use, and it is required to have good storage stability after being dissolved.

【0008】[0008]

【課題を解決するための手段】本発明者は、より安定な
酵素基質を提供すべく鋭意研究を行った結果、クロムを
共存させることにより、免疫測定等の分野において標識
物質として頻繁に使用されているアルカリ性フォスファ
ターゼに代表される加水分解酵素の基質、例えば4メチ
ルウンベリフェロンリン酸を安定化し得ることを見出
し、本発明を完成するに至った。即ち本発明は、クロム
とアルカリ性フォスファターゼ等の加水分解酵素の基
質、例えば4メチルウンベリフェロンリン酸又はその
塩、からなる組成物である。
Means for Solving the Problems As a result of earnest studies to provide a more stable enzyme substrate, the present inventor has found that coexistence of chromium causes it to be frequently used as a labeling substance in the field of immunoassay and the like. The inventors have found that a substrate for a hydrolase typified by alkaline phosphatase, such as 4-methylumbelliferone phosphate, can be stabilized, and completed the present invention. That is, the present invention is a composition comprising chromium and a substrate for a hydrolase such as alkaline phosphatase, such as 4-methylumbelliferone phosphate or a salt thereof.

【0009】また本発明は、この組成物を含んでなる酵
素活性測定用試薬セット、特にこの組成物を含んでな
る、アルカリ性フォスファターゼ等の酵素を標識物質と
して用いる免疫測定用試薬セットである。
The present invention also provides a reagent set for measuring enzyme activity, which comprises this composition, and more particularly, a reagent set for immunoassay, which comprises this composition and uses an enzyme such as alkaline phosphatase as a labeling substance.

【0010】更に本発明は、この組成物のアルカリ性フ
ォスファターゼ等の酵素活性の測定への使用、クロムを
共存させることによるアルカリ性フォスファターゼに代
表される加水分解酵素の基質、例えば4メチルウンベリ
フェロンリン酸又はその塩の安定化方法である。
Furthermore, the present invention uses this composition for the measurement of enzyme activity of alkaline phosphatase and the like, a substrate for a hydrolase typified by alkaline phosphatase by coexistence of chromium, such as 4-methylumbelliferone phosphate. Alternatively, it is a method of stabilizing the salt.

【0011】そして本発明は、クロムを添加することを
特徴とする安定化されたアルカリ性ホスファターゼ等の
加水分解酵素基質の製造方法である。以下、本発明を詳
細に説明する。
The present invention is also a method for producing a stabilized hydrolase substrate such as alkaline phosphatase, which is characterized by adding chromium. Hereinafter, the present invention will be described in detail.

【0012】クロムは、酵素基質が非酵素的に加水分解
され、保存中に品質などが劣化するの抑制する効果を有
する。クロムの共存は、加水分解酵素、例えばアルカリ
性フォスファターゼ等の基質である4−メチルウンベリ
フェロンリン酸又はその塩の安定化効果的であるが、こ
の事実は4−メチルウンベリフェロンリン酸又はその塩
等の加水分解酵素の基質が溶液中で非酵素的に加水分解
され易い性質を有していることに起因するものと考えら
れる。
[0012] Chromium has an effect of suppressing non-enzymatic hydrolysis of the enzyme substrate and deterioration of quality during storage. The coexistence of chromium is effective for stabilizing 4-methylumbelliferone phosphate or its salt, which is a substrate for hydrolases such as alkaline phosphatase, but this fact indicates that 4-methylumbelliferone phosphate or its salt is stable. It is considered that this is due to the fact that the substrate of hydrolase such as salt has the property of being easily hydrolyzed non-enzymatically in a solution.

【0013】クロムは、例えば4−メチルウンベリフェ
ロンリン酸又はその塩等の加水分解酵素の基質を長期保
存するのに先だって添加する等することが最も効果的で
あるが、酵素基質の使用に先だって添加されていれば特
に制限はない。例えば、4−メチルウンベリフェロンリ
ン酸又はその塩の原液の調製後や4−メチルウンベリフ
ェロンリン酸又はその塩を凍結乾燥する場合における凍
結乾燥処理前が特に好ましいが、酵素活性の測定に先だ
つ添加であれば良い。
Chromium is most effectively added prior to long-term storage of a substrate for a hydrolase such as 4-methylumbelliferone phosphate or its salt, but it is most effective to use the enzyme substrate. There is no particular limitation as long as it is added in advance. For example, it is particularly preferable to prepare a stock solution of 4-methylumbelliferone phosphate or a salt thereof or before freeze-drying treatment when freeze-drying 4-methylumbelliferone phosphate or a salt thereof, but to measure enzyme activity. Any early addition is sufficient.

【0014】酵素基質に添加し、共存させるクロムの量
については特に制限されないが、通常0.1〜300p
pmが良く、特に1〜100ppmが好ましい。
The amount of chromium added to and coexisting with the enzyme substrate is not particularly limited, but is usually 0.1 to 300 p.
pm is good, and particularly preferably 1 to 100 ppm.

【0015】本発明者の知見によれば、後の実施例から
も明らかではあるが、クロムを共存させても加水分解酵
素とその基質の反応性等は変化せず、酵素活性の測定に
影響を与えることはない。従って、このようにして製造
された4−メチルウンベリフェロンリン酸又はその塩等
の加水分解酵素の基質を、例えば酵素免疫測定法等の酵
素活性測定用試薬キットの一構成試薬として使用するこ
とで、全体として高い品質を有する試薬キットを提供す
ることが可能である。
According to the knowledge of the present inventor, although it is clear from the later examples, coexistence of chromium does not change the reactivity of the hydrolase and its substrate, etc., and affects the measurement of enzyme activity. Never give. Therefore, using the substrate for hydrolase such as 4-methylumbelliferone phosphate or a salt thereof produced in this manner as a component of a reagent kit for enzyme activity measurement such as enzyme immunoassay Therefore, it is possible to provide a reagent kit having high quality as a whole.

【0016】[0016]

【発明の効果】本発明により、酵素基質の安定性を従来
と比較して向上することが可能である。この結果、従来
安定性を向上させるために凍結乾燥品として提供されて
いた4−メチルウンベリフェロンリン酸又はその塩等の
加水分解酵素の基質を、同等の安定性を達成しつつ溶液
状態で提供することも可能である。従って本発明によれ
ば、凍結乾燥のような煩雑で各工程での制御が厳しい操
作を省くことも可能となる。むろん、本発明は本発明に
よって製造された4−メチルウンベリフェロンリン酸又
はその塩等の加水分解酵素の基質溶液を凍結乾燥等する
ことを排除するものではない。
According to the present invention, it is possible to improve the stability of the enzyme substrate as compared with the conventional one. As a result, a substrate for a hydrolase such as 4-methylumbelliferone phosphate or its salt, which was conventionally provided as a lyophilized product in order to improve stability, is maintained in a solution state while achieving equivalent stability. It is also possible to provide. Therefore, according to the present invention, it is possible to omit a complicated operation such as freeze-drying, which is strictly controlled in each step. Of course, the present invention does not exclude freeze-drying or the like of a substrate solution of a hydrolase such as 4-methylumbelliferone phosphate or its salt produced by the present invention.

【0017】本発明は、特に酵素免疫測定法で頻繁に使
用されるアルカリ性フォスファターゼに代表される加水
分解酵素の酵素活性測定について効果的であり、酵素免
疫測定の分野における試薬の長期安定性向上のために有
効である。
The present invention is particularly effective for measuring the enzyme activity of a hydrolase typified by alkaline phosphatase which is frequently used in enzyme immunoassays, and improves the long-term stability of reagents in the field of enzyme immunoassay. Is effective for.

【0018】本発明によれば、溶液状態の基質であって
も長期間安定的に保存することが可能である。これによ
り、酵素基質溶液を必要時に必要量調製して使用すると
いう、不便さを解消することも可能である。
According to the present invention, even a substrate in a solution state can be stably stored for a long period of time. This makes it possible to eliminate the inconvenience of preparing and using the enzyme substrate solution in the required amount when needed.

【0019】[0019]

【発明の実施の形態】以下に本発明を更に詳細に説明す
るために代表的な加水分解酵素であるアルカリ性フォス
ファターゼについて実施例を記載するが、本発明はこれ
ら実施例に限定されるものではない。
BEST MODE FOR CARRYING OUT THE INVENTION In order to explain the present invention in more detail, examples of alkaline phosphatase which is a typical hydrolase will be described below, but the present invention is not limited to these examples. .

【0020】実施例1 4MUPの加水分解速度に与え
るクロム(クロムイオン)の効果 (酵素基質の製造)2−アミノ−2−メチル−1−プロ
パノール(ナカライ化学(株)製)44.46g及びア
ジ化ナトリウム(ナカライ化学(株)製)1gを容器に
秤りとり、これに精製水を加えて約900mlとした。
この溶液をpHメーターでモニターしながら濃塩酸を加
え、pH10に調整した後、更に精製水を加え液量を1
リットルにした。
Example 1 Effect of Chromium (Chromium Ion) on Hydrolysis Rate of 4MUP (Production of Enzyme Substrate) 44.46 g of 2-amino-2-methyl-1-propanol (produced by Nacalai Chemical Co., Ltd.) and horse mackerel 1 g of sodium iodide (manufactured by Nakarai Chemical Co., Ltd.) was weighed in a container, and purified water was added to the container to make about 900 ml.
Concentrated hydrochloric acid was added to this solution while monitoring it with a pH meter to adjust the pH to 10, and then purified water was further added to adjust the liquid volume to 1.
I made it to liters.

【0021】以上のようにして調製した溶液に4−メチ
ルウンベリフェロンリン酸(米国JBL社製、以下4M
UPという)256.2mg加え、1mMの4MUP溶
液とした(以下この溶液をベース基質という)。
4-Methylumbelliferone phosphate (manufactured by JBL, USA, 4M below) was added to the solution prepared as described above.
256.2 mg was added to obtain a 1 M 4M UP solution (hereinafter, this solution is referred to as a base substrate).

【0022】ベース基質へクロム溶液(ナカライ化学
(株)製)を最終濃度1、10、100ppmとなるよ
うに添加し、対照溶液とした。
A chromium solution (manufactured by Nakarai Kagaku Co., Ltd.) was added to the base substrate so that the final concentrations were 1, 10, and 100 ppm, to prepare a control solution.

【0023】(基質の安定性の測定)前記のようにして
調製した溶液を4、25、35、45℃の保温器へ入
れ、一定時間毎に取り出し、蛍光分光光度計(日立F2
000型、1cmガラス角セル使用)にて測定した。蛍
光分光光度計による測定は、励起波長363nm(バン
ドパス5nm)、蛍光波長447nm(バンドパス5n
m)で室温にて実施し、4MUPが加水分解されて生じ
る4MU濃度測定のため既知濃度の4MU(希釈液
(0.14Mリン酸緩衝液、0.1MEDTA(ナカラ
イ化学(株)製、2ナトリウム・2水和物)、0.1%
アジ化ナトリウム、pH9.1)により希釈系列を作
製)を測定したものとの相対蛍光強度の比較にて計算し
た。
(Measurement of Stability of Substrate) The solution prepared as described above was placed in an incubator at 4, 25, 35 and 45 ° C. and taken out at regular intervals, and a fluorescence spectrophotometer (Hitachi F2
000 type, 1 cm glass square cell was used). The measurement using a fluorescence spectrophotometer was conducted with an excitation wavelength of 363 nm (bandpass 5 nm) and a fluorescence wavelength of 447 nm (bandpass 5 n).
m) at room temperature to measure 4MU concentration produced by hydrolysis of 4MUP. 4MU of known concentration (diluent (0.14M phosphate buffer, 0.1M EDTA (Nacalai Chemical Co., Ltd., 2 sodium・ Dihydrate), 0.1%
It was calculated by comparing the relative fluorescence intensity with that obtained by measuring a dilution series prepared with sodium azide, pH 9.1).

【0024】結果を図1〜4に示す。これらの結果か
ら、ベース基質と比較して対照溶液では4MUの生成が
少ないこと、即ちクロムの共存により4MUPが安定化
されることが分かる。
The results are shown in FIGS. These results show that the control solution produced less 4MU than the base substrate, that is, 4MUP was stabilized by the coexistence of chromium.

【0025】実施例2 TSHの酵素免疫測定 (抗体固定化固相ビーズの調製)ウォーターストランド
法により得た平均直径1.4mm、平均長さ1.5mm
のエチレン−酢酸ビニル共重合体(EVA)ペレット
(東ソー(株)製)を特願昭61−38279号公報に
記載された方法に従って真球化し、フェライト(東ソー
(株)製)熱融着させ、更にグリシジルメタアクリレー
ト(GMA)でポリマーコーティングした。得られたポ
リマーコーティングビーズを苛性ソーダ・メタノール溶
液で処理して表面層のエポキシ基を開環させジオールに
した。
Example 2 Enzyme immunoassay of TSH (Preparation of antibody-immobilized solid phase beads) Average diameter 1.4 mm, average length 1.5 mm obtained by water strand method
Of the ethylene-vinyl acetate copolymer (EVA) pellets (manufactured by Tosoh Corporation) were spheroidized according to the method described in Japanese Patent Application No. 61-38279 and heat-bonded to ferrite (manufactured by Tosoh Corporation). Further, it was polymer-coated with glycidyl methacrylate (GMA). The obtained polymer-coated beads were treated with a solution of caustic soda / methanol to open the epoxy groups on the surface layer to form a diol.

【0026】以上のようにして得られたビーズに、以下
に示すようにマウス抗ヒトTSH(甲状腺刺激ホルモ
ン)モノクローナル抗体(抗体1)を固定化した。まず
ビーズ100000個に対し、特願昭61−38279
号公報に記載された方法に従って500mgのN,N ’
−カルボニルジイミダゾール(CDI:東京化成工業
(株)製)を含む乾燥アセトン25mlを窒素雰囲気
下、室温下で30分間激しく撹拌して活性化処理を行っ
た。この活性化されたビーズを洗浄後、2.5mg/2
0mlのマウス抗ヒトTSHモノクローナル抗体を加
え、室温にて4時間振とうして抗体を粒子に結合させ
た。
Mouse anti-human TSH (thyroid stimulating hormone) monoclonal antibody (antibody 1) was immobilized on the beads obtained as described above, as shown below. First, for 100,000 beads, Japanese Patent Application No. 61-38279
500 mg of N, N 'according to the method described in the publication.
An activation treatment was carried out by vigorously stirring 25 ml of dry acetone containing carbonyldiimidazole (CDI: manufactured by Tokyo Chemical Industry Co., Ltd.) under a nitrogen atmosphere at room temperature for 30 minutes. 2.5 mg / 2 after washing the activated beads
0 ml of mouse anti-human TSH monoclonal antibody was added and shaken at room temperature for 4 hours to bind the antibody to the particles.

【0027】ビーズを洗浄後、1.0%の牛血清アルブ
ミン(BSA)を含むリン酸緩衝液(pH7.0)を加
えブロッキング処理を行った。
After washing the beads, a phosphate buffer (pH 7.0) containing 1.0% bovine serum albumin (BSA) was added for blocking treatment.

【0028】標識に用いる酵素としてはウシ小腸由来の
アルカリ性フォスファターゼを使用し、これを常法に従
って抗人TSHモノクローナル抗体(抗体2)と結合し
た。調製した抗体固定化ビーズを用いて、ヒトTSHの
酵素免疫測定を行なった。まず抗体固定化ビーズ12個
をプラスチック製カップに入れ、これに50μlの標識
抗体(抗体2)を加えたものを用意した。これを下部に
磁石を有する測定装置(AIA−1200、東ソー
(株)製)にセットし、抗原溶液として、0又は48μ
IU/ml濃度のTSH溶液100μlを添加して酵素
免疫反応を開始した。TSHの抗原抗体反応を進行させ
るために37℃にて40分間、下部の磁石を約83スト
ローク/分にて振とうさせながらインキュベートし、そ
の後、反応容器を洗浄液にて洗浄した(B/F分離)。
As an enzyme used for labeling, alkaline phosphatase derived from bovine small intestine was used, and this was combined with an anti-human TSH monoclonal antibody (antibody 2) according to a conventional method. Using the prepared antibody-immobilized beads, enzyme immunoassay of human TSH was performed. First, 12 antibody-immobilized beads were placed in a plastic cup, and 50 μl of the labeled antibody (antibody 2) was added thereto to prepare a solution. This was set in a measuring device (AIA-1200, manufactured by Tosoh Corporation) having a magnet at the bottom, and 0 or 48 μ was used as an antigen solution.
The enzyme immunoreaction was started by adding 100 μl of ISH / ml TSH solution. In order to proceed the antigen-antibody reaction of TSH, the mixture was incubated at 37 ° C. for 40 minutes while shaking the lower magnet at about 83 strokes / minute, and then the reaction vessel was washed with a washing solution (B / F separation). ).

【0029】洗浄終了後、実施例1で調製した4MUP
を含む溶液100μlを分注して酵素反応を実施した。
反応は、37℃にて3、6、10分間、下部の磁石を約
83ストローク/分にて振とうさせながらインキュベー
トさせて実施した。酵素反応停止液である希釈液(0.
14Mリン酸緩衝液、0.1MEDTA、0.1%アジ
化ナトリウム、pH9.1)500μlを添加して酵素
反応を停止させた後、反応が停止された反応用液を希釈
液にて希釈し、実施例1で実施した方法と同じ方法で蛍
光量を測定した。
After washing, 4MUP prepared in Example 1
The enzyme reaction was carried out by dispensing 100 μl of a solution containing
The reaction was carried out by incubating at 37 ° C. for 3, 6 and 10 minutes while shaking the lower magnet at about 83 strokes / minute. Dilution solution (0.
The enzyme reaction was stopped by adding 500 μl of 14 M phosphate buffer, 0.1 M EDTA, 0.1% sodium azide, pH 9.1, and the reaction solution in which the reaction was stopped was diluted with a diluent. The amount of fluorescence was measured by the same method as that used in Example 1.

【0030】結果を図5及び6に示す。その結果、クロ
ムを添加していないベース基質とクロムを添加した対照
溶液についてほぼ同じ蛍光量(4MU量)が得られ、ク
ロムの共存が酵素活性に影響を及ぼすことがないことが
分かる。
The results are shown in FIGS. 5 and 6. As a result, almost the same fluorescence amount (4 MU amount) was obtained for the base substrate to which chromium was not added and the control solution to which chromium was added, and it can be seen that coexistence of chromium does not affect the enzyme activity.

【0031】実施例3 クロムと4MUP組成物の蛍光
スペクトルの測定 実施例1で調製した4MUP溶液のうち、ベース基質と
クロムを10ppm添加した対照基質を45℃で96時
間保温した後、蛍光分光光度計を用いてそのスペクトル
を測定した。
Example 3 Measurement of Fluorescence Spectra of Chromium and 4MUP Composition Of the 4MUP solution prepared in Example 1, a base substrate and a control substrate containing 10 ppm of chromium were incubated at 45 ° C. for 96 hours and then subjected to fluorescence spectrophotometry. The spectrum was measured using a meter.

【0032】測定条件は、(1)ベース基質について励
起波長を220〜450nmまで変化させ、447nm
で蛍光測定、(2)ベース基質について励起波長を36
3nmとし、320〜550nmで蛍光測定、(3)対
照基質について励起波長を220〜450nmまで変化
させ、447nmで蛍光測定、(2)ベース基質につい
て励起波長を363nmとし、320〜550nmで蛍
光測定、である。
The measurement conditions are as follows: (1) For the base substrate, the excitation wavelength is changed from 220 to 450 nm and 447 nm.
Fluorescence measurement with (2) Excitation wavelength of 36 for the base substrate
3 nm, fluorescence measurement at 320-550 nm, (3) change excitation wavelength to 220-450 nm for control substrate, 447 nm fluorescence measurement, (2) make excitation wavelength for base substrate 363 nm, fluorescence measurement at 320-550 nm, Is.

【0033】この結果、ベース基質と対照基質では蛍光
スペクトルが異なっており、クロムの共存により4MU
Pに構造変化が生じ、それにより構造安定化が起こった
ことが示唆された。
As a result, the fluorescence spectra of the base substrate and the control substrate are different from each other, and the presence of chromium causes 4 MU.
It was suggested that a structural change occurred in P, which resulted in structural stabilization.

【0034】以上のことから、酵素免疫測定等における
酵素活性の測定等については、4MUP等にクロムを共
存させることにより、酵素の活性阻害を生じることなく
その安定性を向上させ得ることが分かる。
From the above, it can be seen that in the measurement of enzyme activity in enzyme immunoassay and the like, coexistence of chromium in 4MUP or the like can improve the stability of the enzyme activity without inhibiting the activity of the enzyme.

【図面の簡単な説明】[Brief description of drawings]

【図1】図1は実施例1の結果中、4℃で保温した場合
の結果を示すものである。縦軸は4MUの濃度(nM)
を、横軸は4℃での保存時間(時間)を示し、図中の白
丸、黒丸、黒三角及び黒四角は、それぞれベース基質、
1ppmのクロムを添加した対照溶液、10ppmのク
ロムを添加した対照溶液そして100ppmのクロムを
添加した対照溶液を示す。
FIG. 1 shows the result of Example 1 when the temperature was kept at 4 ° C. The vertical axis shows the concentration of 4 MU (nM)
The horizontal axis indicates the storage time (hours) at 4 ° C., and the white circles, black circles, black triangles and black squares in the figure represent the base substrate,
The control solution with 1 ppm chromium added, the control solution with 10 ppm chromium and the control solution with 100 ppm chromium are shown.

【図2】図2は実施例1の結果中、25℃で保温した場
合の結果を示すものである。縦軸は4MUの濃度(n
M)を、横軸は25℃での保存時間(時間)を示し、図
中の白丸、黒丸、黒三角及び黒四角は、それぞれベース
基質、1ppmのクロムを添加した対照溶液、10pp
mのクロムを添加した対照溶液そして100ppmのク
ロムを添加した対照溶液を示す。
FIG. 2 shows the result of Example 1 when the temperature was kept at 25 ° C. The vertical axis represents the concentration of 4MU (n
M), the horizontal axis shows the storage time (hours) at 25 ° C., and the white circles, black circles, black triangles and black squares in the figure represent the base substrate, the control solution containing 1 ppm of chromium, and 10 pp, respectively.
Figure 3 shows a control solution with m chromium added and a control solution with 100 ppm chromium added.

【図3】図3は実施例1の結果中、35℃で保温した場
合の結果を示すものである。縦軸は4MUの濃度(n
M)を、横軸は35℃での保存時間(時間)を示し、図
中の白丸、黒丸、黒三角及び黒四角は、それぞれベース
基質、1ppmのクロムを添加した対照溶液、10pp
mのクロムを添加した対照溶液そして100ppmのク
ロムを添加した対照溶液を示す。
FIG. 3 shows the results of Example 1 when the temperature was kept at 35 ° C. The vertical axis represents the concentration of 4MU (n
M), the horizontal axis shows the storage time (hours) at 35 ° C., and the white circles, black circles, black triangles and black squares in the figure respectively represent the base substrate, a control solution containing 1 ppm of chromium, and 10 pp.
Figure 3 shows a control solution with m chromium added and a control solution with 100 ppm chromium added.

【図4】図4は実施例1の結果中、45℃で保温した場
合の結果を示すものである。縦軸は4MUの濃度(n
M)を、横軸は45℃での保存時間(時間)を示し、図
中の白丸、黒丸、黒三角及び黒四角は、それぞれベース
基質、1ppmのクロムを添加した対照溶液、10pp
mのクロムを添加した対照溶液そして100ppmのク
ロムを添加した対照溶液を示す。
FIG. 4 shows the result of Example 1 when the temperature was kept at 45 ° C. The vertical axis represents the concentration of 4MU (n
M), the horizontal axis indicates the storage time (hours) at 45 ° C., and the white circles, black circles, black triangles and black squares in the figure represent the base substrate, the control solution containing 1 ppm of chromium, and 10 pp, respectively.
Figure 3 shows a control solution with m chromium added and a control solution with 100 ppm chromium added.

【図5】図5は実施例2の結果中、0μIU/mlのT
SH溶液について測定した結果を示すものである。縦軸
は4MUの濃度(nM)を、横軸は酵素反応時間(分)
を示し、図中の白丸、黒丸、黒三角及び黒四角は、それ
ぞれベース基質、1ppmのクロムを添加した対照溶
液、10ppmのクロムを添加した対照溶液そして10
0ppmのクロムを添加した対照溶液を示す。
FIG. 5 shows the results of Example 2 with 0 μIU / ml of T
It shows the result of measurement for the SH solution. The vertical axis shows the concentration of 4MU (nM), the horizontal axis shows the enzyme reaction time (minutes).
In the figure, white circles, black circles, black triangles, and black squares represent the base substrate, the control solution containing 1 ppm of chromium, the control solution containing 10 ppm of chromium, and 10
A control solution with 0 ppm chromium added is shown.

【図6】図6は実施例2の結果中、48μIU/mlの
TSH溶液について測定した結果を示すものである。縦
軸は4MUの濃度(nM)を、横軸は酵素反応時間
(分)を示し、図中の白丸、黒丸、黒三角及び黒四角
は、それぞれベース基質、1ppmのクロムを添加した
対照溶液、10ppmのクロムを添加した対照溶液そし
て100ppmのクロムを添加した対照溶液を示す。
FIG. 6 shows the results of measurement of a TSH solution of 48 μIU / ml among the results of Example 2. The vertical axis shows the concentration of 4 MU (nM), the horizontal axis shows the enzyme reaction time (minutes), white circles, black circles, black triangles and black squares in the figure are the base substrate, the control solution containing 1 ppm of chromium, A control solution with 10 ppm chromium and a control solution with 100 ppm chromium are shown.

Claims (18)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】クロムと加水分解酵素の基質からなる組成
物。
1. A composition comprising chromium and a substrate for a hydrolase.
【請求項2】基質がアルカリ性フォスファターゼの基質
であることを特徴とする請求項1の組成物。
2. The composition according to claim 1, wherein the substrate is a substrate for alkaline phosphatase.
【請求項3】基質が4メチルウンベリフェロンリン酸又
はその塩である請求項2の組成物。
3. The composition according to claim 2, wherein the substrate is 4-methylumbelliferone phosphate or its salt.
【請求項4】クロム含有量が0.1〜300ppmであ
ることを特徴とする請求項1乃至3いずれかの項に記載
の組成物。
4. The composition according to claim 1, wherein the chromium content is 0.1 to 300 ppm.
【請求項5】水溶液である請求項1乃至4いずれかの項
に記載の組成物。
5. The composition according to claim 1, which is an aqueous solution.
【請求項6】乾燥物であることを特徴とする請求項1乃
至4いずれかの項に記載の組成物。
6. The composition according to any one of claims 1 to 4, which is a dried product.
【請求項7】請求項1乃至6いずれかの項に記載の組成
物を含んでなる酵素活性測定用試薬セット。
7. A reagent set for measuring enzyme activity, which comprises the composition according to any one of claims 1 to 6.
【請求項8】酵素活性を測定するための請求項1乃至6
いずれかの項に記載の組成物の使用。
8. The method according to any one of claims 1 to 6 for measuring enzyme activity.
Use of the composition according to any of the sections.
【請求項9】請求項1乃至6いずれかの項に記載の組成
物を含んでなる、酵素を標識物質として用いる免疫測定
用試薬セット。
9. An immunoassay reagent set comprising an enzyme as a labeling substance, which comprises the composition according to any one of claims 1 to 6.
【請求項10】免疫測定がアルカリ性フォスファターゼ
を標識物質として用いるものであることを特徴とする請
求項8の試薬セット。
10. The reagent set according to claim 8, wherein the immunoassay uses alkaline phosphatase as a labeling substance.
【請求項11】クロムを共存させることを特徴とする加
水分解酵素の基質の安定化法。
11. A method for stabilizing a substrate for a hydrolase, which comprises coexisting with chromium.
【請求項12】基質がアルカリ性フォスファターゼの基
質のであることを特徴とする請求項11の安定化法。
12. The stabilization method according to claim 11, wherein the substrate is a substrate for alkaline phosphatase.
【請求項13】基質が4メチルウンベリフェロンリン酸
又はその塩であることを特徴とする請求項12の安定化
法。
13. The stabilizing method according to claim 12, wherein the substrate is 4-methylumbelliferone phosphate or a salt thereof.
【請求項14】クロム共存量が0.1〜300ppmで
あることを特徴とする請求項11乃至13いずれかの項
に記載の安定化法。
14. The stabilizing method according to claim 11, wherein the coexisting amount of chromium is 0.1 to 300 ppm.
【請求項15】クロムを添加することを特徴とする安定
化された加水分解酵素基質の製造方法。
15. A method for producing a stabilized hydrolase substrate, which comprises adding chromium.
【請求項16】基質がアルカリ性フォスファターゼの基
質であることを特徴とする請求項15の製造方法。
16. The method according to claim 15, wherein the substrate is a substrate for alkaline phosphatase.
【請求項17】基質が4メチルウンベリフェロンリン酸
又はその塩であることを特徴とする請求項16の製造方
法。
17. The method according to claim 16, wherein the substrate is 4-methylumbelliferone phosphate or a salt thereof.
【請求項18】クロムの添加量が0.1〜300ppm
であることを特徴とする請求項15乃至17いずれかの
項に記載の製造方法。
18. The amount of chromium added is 0.1 to 300 ppm.
The manufacturing method according to any one of claims 15 to 17, wherein:
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Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN104391110A (en) * 2014-11-28 2015-03-04 天津华信康达科技有限公司 Dual-wavelength enzyme-immunization chemiluminescent substrate and application thereof

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