JPH08160049A - Potassium ion measuring reagent composition and test piece - Google Patents

Potassium ion measuring reagent composition and test piece

Info

Publication number
JPH08160049A
JPH08160049A JP30470894A JP30470894A JPH08160049A JP H08160049 A JPH08160049 A JP H08160049A JP 30470894 A JP30470894 A JP 30470894A JP 30470894 A JP30470894 A JP 30470894A JP H08160049 A JPH08160049 A JP H08160049A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
ion
potassium ion
adenine dinucleotide
test piece
potassium
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
JP30470894A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JP3493411B2 (en
Inventor
Hisashi Ashida
久 芦田
Kenji Yamamoto
健次 山元
Satoshi Yonehara
聡 米原
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Arkray Inc
Original Assignee
KDK Corp
Kyoto Daiichi Kagaku KK
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by KDK Corp, Kyoto Daiichi Kagaku KK filed Critical KDK Corp
Priority to JP30470894A priority Critical patent/JP3493411B2/en
Publication of JPH08160049A publication Critical patent/JPH08160049A/en
Application granted granted Critical
Publication of JP3493411B2 publication Critical patent/JP3493411B2/en
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Fee Related legal-status Critical Current

Links

Landscapes

  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

PURPOSE: To quantitatively determine potassium ion at least in the range of 0-50mmol/l, with no dilution operation and binder agent, by using nicotinamide adenine dinucleotide synthesized enzyme. CONSTITUTION: This reagent composition is a composition for measuring potassium ions in a sample liquid, oxidation nicotinamide adenine dinucleotide synthesized enzyme[EC6. 3. 5. 1.], adenosine triphosphate, bivalent metal ion, deamide nicotinamide adenine dinucleotide, amino group donator, dehydrogenase and matrix corresponding to it, tetrazolium salt and diaphorase are contained.

Description

【発明の詳細な説明】Detailed Description of the Invention

【0001】[0001]

【産業上の利用分野】本発明は、カリウムイオン測定用
組成物およびその組成物を含有するカリウムイオン測定
用試験片に関し、更に詳しくは、例えば臨床検査におい
て、体液中、特に血清、血漿または尿に含まれるカリウ
ムイオンを測定する為の試薬組成物およびそれを含有す
る乾式試験片に関する。
BACKGROUND OF THE INVENTION 1. Field of the Invention The present invention relates to a composition for measuring potassium ion and a test piece for measuring potassium ion containing the composition, more specifically, for example, in a clinical test, in a body fluid, particularly serum, plasma or urine. The present invention relates to a reagent composition for measuring potassium ion contained in and a dry test piece containing the same.

【0002】[0002]

【従来の技術】カリウムイオン等の電解質に含まれるイ
オンを測定することは、生体の恒常性を判断する上で重
要なことであり、特に臨床検査において測定される体液
中のカリウムイオンは、体内臓器の働き、例えば腎機能
を知る上で非常に有用な手掛かりを与える。
2. Description of the Related Art Measuring ions contained in electrolytes such as potassium ions is important for judging the homeostasis of a living body. Especially, potassium ions in body fluid measured in clinical tests are It gives very useful clues to know the function of organs, such as renal function.

【0003】これまでに知られているイオン測定法に
は、炎光光度法、原子吸光光度法、イオン選択電極法な
どがある。また近年、測定対象であるイオンの存在下で
イオン濃度依存的に活性化される酵素の酵素反応を利用
する、いわゆる「酵素法」が注目されている。酵素法の
例としては、測定目的イオンがカリウムの場合、クリニ
カル・ケミストリー(Clin.Chem.)、35/5、8
17−820(1989)にはピルベートキナーゼを利
用する方法が、また欧州特許EP−B−0 286 03
9にはピルベートキナーゼ、グリセロールデヒドロゲナ
ーゼまたはアセトアルデヒドデヒドロゲナーゼを利用す
る方法が記載されている。
Known ion measuring methods include a flame photometric method, an atomic absorption photometric method, and an ion selective electrode method. Further, in recent years, a so-called “enzyme method”, which utilizes an enzymatic reaction of an enzyme that is activated in an ion concentration-dependent manner in the presence of an ion to be measured, has been attracting attention. As an example of the enzymatic method, when the target ion for measurement is potassium, clinical chemistry (Clin. Chem.), 35/5, 8
17-820 (1989), a method utilizing pyruvate kinase is also described in European Patent EP-B-0 286 03.
9 describes a method utilizing pyruvate kinase, glycerol dehydrogenase or acetaldehyde dehydrogenase.

【0004】[0004]

【発明が解決しようとする課題】炎光光度法や原子吸光
光度法は、精度の点では優れているものの、大型の専用
測定機を必要とし、試薬や検体試料の前処理に非常に手
間がかかり、その上分析にも時間がかかるので、多数の
検体を処理するのには不向きである。また、イオン選択
電極法は、電極自体の取扱いは簡便であるが、電解質測
定専用の電極測定装置が必要であり、その測定装置では
電解質しか測れない。例えばグルコースや蛋白質といっ
た発色度をみる多項目検査の試験片に、イオン選択性電
極法を組み合わせることはできない。
Although the flame photometric method and the atomic absorption photometric method are excellent in terms of accuracy, they require a large-scale dedicated measuring instrument and are very laborious for pretreatment of reagents and specimen samples. It is not suitable for processing a large number of specimens because it takes much time and the analysis takes time. Further, although the ion-selective electrode method is easy to handle the electrode itself, an electrode measuring device dedicated to electrolyte measurement is required, and only the electrolyte can be measured by the measuring device. For example, the ion-selective electrode method cannot be combined with a test piece for multi-item inspection for checking the degree of color development such as glucose or protein.

【0005】液系での酵素法によるカリウムイオン測定
法には、ピルベートキナーゼ法、グリセロールデヒドロ
ゲナーゼ法、アセトアルデヒドデヒドロゲナーゼ法など
が知られているが、いずれも、共存イオン、例えばナト
リウムイオンの影響を受ける、すなわち干渉される。そ
のため、種々の結合剤、例えばクリプタント、コロラン
ド、ポダント、クラウンエーテル、スフェランド、ヘミ
スフェランド、カリキサレン、およびこれらの組み合わ
せ、天然産イオノフォア、環状ペプチド、コンプレクソ
ン、キレート剤およびそれらの誘導体を添加して、干渉
を起こす共存イオンの影響を回避しなければならず、方
法は非常に面倒になる。
Known methods for measuring potassium ions by an enzyme method in a liquid system include a pyruvate kinase method, a glycerol dehydrogenase method, an acetaldehyde dehydrogenase method and the like, all of which are affected by coexisting ions such as sodium ions. That is, it is interfered. Therefore, various binders such as cryptant, coroland, podanto, crown ether, spherand, hemispherand, calixarene, and combinations thereof, naturally occurring ionophores, cyclic peptides, complexons, chelating agents and their derivatives are added, The effect of coexisting co-existing ions has to be avoided and the method is very cumbersome.

【0006】酵素法を用いた測定法では、測定対象物は
液体で、多くの場合、希釈されていない尿、血液などの
体液であり、例えば健常人の血清中には、カリウムイオ
ンが約4mmol/l含まれている。ところが、上記の酵素
では、このようなカリウムイオン濃度では濃すぎるの
で、酵素の活性が飽和されてしまい、定量性がなくなっ
てしまう。それを回避するために、また目的とするカリ
ウムイオンの測定範囲を広げるためにも、液系の反応で
は、結合剤が添加される。
[0006] In the measuring method using the enzyme method, the object to be measured is a liquid, and in most cases is undiluted body fluid such as urine or blood. For example, about 4 mmol of potassium ion is contained in the serum of a healthy person. / L included. However, the above-mentioned enzyme is too concentrated at such a potassium ion concentration, so that the activity of the enzyme is saturated and the quantitative property is lost. In order to avoid this and to widen the target measurement range of potassium ion, a binder is added in the reaction of the liquid system.

【0007】酵素を含む種々の成分を乾式組成物として
調製しようとする場合、酵素に結合剤を共存させて活性
化イオンを取り除くと、一般に、酵素の安定性は著しく
低下するので、種々の乾燥工程を必要とする乾式組成物
の調製は非常に困難である。さらに検出感度も、酵素の
濃度および結合剤の濃度の変化の故に、安定に保つこと
は難しくなる。この様に、上記酵素を結合剤と共に、安
定性を保ちつつ乾式組成物へ応用することはほとんど不
可能といってよい。
When various components including an enzyme are to be prepared as a dry composition, the stability of the enzyme is generally remarkably lowered when the activating ion is removed by making the enzyme coexist with a binder, so that various drying methods are required. The preparation of a dry composition requiring steps is very difficult. Furthermore, it is difficult to keep the detection sensitivity stable because of changes in the enzyme concentration and the binder concentration. Thus, it can be said that it is almost impossible to apply the above enzyme together with the binder to the dry composition while maintaining the stability.

【0008】カリウムイオンを測定する際の干渉イオン
は主にナトリウムイオンであるが、ピルベートキナーゼ
はアンモニウムイオンによっても活性化されるので、ア
ンモニウムイオンの影響の排除も必要である。クリニカ
ル・ケミストリー、35/5、817−820(198
9)では、グルタミン酸デヒドロゲナーゼ[EC1.
4.1.4]を利用して内因性のアンモニウムイオンを
消去する方法を採用している。
Interfering ions when measuring potassium ions are mainly sodium ions, but pyruvate kinase is also activated by ammonium ions, so it is necessary to eliminate the influence of ammonium ions. Clinical Chemistry, 35/5, 817-820 (198)
In 9), glutamate dehydrogenase [EC1.
4.1.4] is used to eliminate the endogenous ammonium ion.

【0009】酵素法によるカリウムイオン定量方法を乾
式組成物に応用する場合、乾式組成物で常用される天然
ポリマーが多量のカリウムを含んでいるので、酵素がそ
のカリウムの影響を受け、測定結果の悪化させる。
When the method for determining potassium ion by the enzyme method is applied to a dry composition, since the natural polymer commonly used in the dry composition contains a large amount of potassium, the enzyme is affected by the potassium and the measurement results make worse.

【0010】[0010]

【課題を解決するための手段】上記のような従来技術の
欠点に鑑み、より簡便な方法を開発すべく鋭意研究した
結果、ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド(NA
D)合成酵素は、カリウムイオン定量用乾式組成物に適
用する際、欧州特許EP−B−0 286 039に開示
されているピルベートキナーゼ、グリセロールデヒドロ
ゲナーゼまたはアセトアルデヒドデヒドロゲナーゼより
も、はるかに適していることを見い出し、本発明を完成
した。
In view of the above-mentioned drawbacks of the prior art, as a result of earnest research to develop a simpler method, nicotinamide adenine dinucleotide (NA
D) The synthase is far more suitable than pyruvate kinase, glycerol dehydrogenase or acetaldehyde dehydrogenase disclosed in European Patent EP-B-0 286 039 when applied to a dry composition for determination of potassium ion. The inventors have found out and completed the present invention.

【0011】本発明は、第1の要旨によれば、試料液中
のカリウムイオンを測定するための組成物であって、酸
化型NAD合成酵素[EC6.3.5.1.]、アデノシ
ン三リン酸(ATP)、2価の金属イオン、デアミドN
AD、アミノ基供与体、デヒドロゲナーゼとそれに対応
する基質、テトラゾリウム塩およびジアホラーゼを含有
してなる、カリウムイオン測定用試薬組成物を提供し、
第2の要旨によれば、支持体、その上に形成された試薬
層及び該試薬層の上に形成された展開層を有して成り、
該試薬層および該展開層のいずれかに、酸化型NAD合
成酵素[EC6.3.5.1.]、ATP、2価の金属イ
オン、デアミドNAD、アミノ基供与体、デヒドロゲナ
ーゼとそれに対応する基質、テトラゾリウム塩、ジアホ
ラーゼ、高分子ポリマーおよび緩衝剤を含有するカリウ
ムイオン測定用試験片を提供する。
According to the first aspect of the present invention, there is provided a composition for measuring potassium ion in a sample solution, which comprises an oxidized NAD synthase [EC6.3.5.1. ], Adenosine triphosphate (ATP), divalent metal ion, deamide N
Provided is a reagent composition for measuring potassium ion, which comprises AD, an amino group donor, a dehydrogenase and a substrate corresponding thereto, a tetrazolium salt and diaphorase.
According to a second aspect, it comprises a support, a reagent layer formed thereon, and a spreading layer formed on the reagent layer,
The oxidized NAD synthase [EC 6.3.5.1. ], ATP, divalent metal ion, deamidated NAD, amino group donor, dehydrogenase and its corresponding substrate, tetrazolium salt, diaphorase, high molecular polymer and buffer for measuring potassium ion.

【0012】本発明におけるカリウムイオンの定量は、
下記の一連の反応系によって行われる。 以上の反応系から理解される様に、NAD合成酵素は
(1)の反応を触媒する。
The determination of potassium ion in the present invention is as follows.
It is carried out by the following series of reaction systems. As can be understood from the above reaction system, NAD synthase
It catalyzes the reaction of (1).

【0013】NAD合成酵素[EC6.3.5.1]と
しては、バクテリアや酵母由来のもの、更には高等動物
由来のものが知られている。本発明にはいずれの由来の
酵素でも使用できるが、耐熱性にすぐれたバチルス・ス
テアロサーモフィラス(Bacillus stearothermophilu
s)由来のNAD合成酵素が好ましい。
As the NAD synthase [EC6.3.5.1], those derived from bacteria or yeast, and those derived from higher animals are known. The enzyme of any origin can be used in the present invention, but Bacillus stearothermophilu is excellent in heat resistance.
NAD synthase derived from s) is preferred.

【0014】アミノ基供与体は、アミノ酸や種々のアン
モニウム塩など、NAD合成酵素が基質として利用でき
るものであればいずれでもよい。好ましくは、グリシ
ン、塩化アンモニウムまたは硫酸アンモニウムである。
反応系の酵素反応に至適な環境pH値は、8.0〜1
0.0、好ましくは9.0付近であるが、乾式試験片の
場合、アンモニウム塩はアルカリ性下では蒸散してしま
うので、アンモニウム塩を含有する層ではpHを中性付
近に保つ必要がある。アミノ基供与体の量は、十分な
量、例えばNAD合成酵素のアミノ基供与体に対するK
m値の20倍以上の濃度であればよい。この様にアンモ
ニウムイオンは必須成分であるので当初から反応系に含
まれ、既に十分量が添加されており、試料液中の共存ア
ンモニウムイオン濃度の変動によっては、本発明の組成
物を用いたカリウムイオンの検出は全く影響を受けな
い。
The amino group donor may be any amino acid or various ammonium salts as long as NAD synthase can be used as a substrate. Preferred are glycine, ammonium chloride or ammonium sulfate.
The optimum environmental pH value for the enzymatic reaction of the reaction system is 8.0 to 1
Although it is around 0.0, preferably around 9.0, in the case of a dry test piece, since the ammonium salt evaporates under alkaline conditions, it is necessary to keep the pH near neutral in the layer containing the ammonium salt. The amount of amino group donor is sufficient, for example, K relative to the amino group donor of NAD synthase.
The density may be 20 times or more the m value. As described above, ammonium ion is contained in the reaction system from the beginning because it is an essential component, and a sufficient amount of ammonium ion has already been added. Ion detection is not affected at all.

【0015】2価の金属イオンは、NAD合成酵素の活
性化成分として作用する。NAD合成酵素は、2価の金
属イオンがなければ作動しない。2価の金属イオンの例
としては、マグネシウムイオン、カルシウムイオンが挙
げられる。
The divalent metal ion acts as an activating component of NAD synthase. NAD synthase does not work without divalent metal ions. Examples of the divalent metal ion include magnesium ion and calcium ion.

【0016】ATP、2価の金属イオン、アミノ基供与
体およびデアミドNADは、上記酵素反応(1)に必要
の成分である。NAD合成酵素はこれらが存在しないと
不活性化するが、NAD合成酵素とこれらの全部を試験
片の同一層に存在させると、混入する微量のカリウムイ
オンにより、試薬調製中および保存中に反応が起こり、
測定値に悪影響を及ぼす。この問題は、NAD合成酵素
とATP、2価の金属イオン、アミノ基供与体およびデ
アミドNADの少なくとも1つを試験片の層間で分離す
ることにより、保存中には実質的に不活性な形で酵素を
存在させることで解決できる。具体的には、ATP、2
価の金属イオン、アミノ基供与体、デアミドNADのう
ちの少なくとも1つを展開層に存在させることにより、
NAD合成酵素を保存中には実質的に不活性な状態で試
薬層に存在させることが可能である。これにより試験片
の保存中の着色が全くない安定性にすぐれた試験片を作
製することができる。
ATP, a divalent metal ion, an amino group donor and a deamide NAD are components necessary for the enzyme reaction (1). NAD synthase is inactivated in the absence of these, but when NAD synthase and all of them are present in the same layer of the test piece, a trace amount of potassium ion contaminating causes the reaction during reagent preparation and storage. Happened,
It adversely affects the measured value. The problem is that NAD synthase and at least one of ATP, a divalent metal ion, an amino group donor and a deamidated NAD are separated between the layers of the test piece, and thus become substantially inactive during storage. It can be solved by the presence of the enzyme. Specifically, ATP, 2
The presence of at least one of a valent metal ion, an amino group donor, and a deamide NAD in the spreading layer
The NAD synthase can be present in the reagent layer in a substantially inactive state during storage. As a result, it is possible to produce a test piece which is not colored at all during storage and has excellent stability.

【0017】反応(2)は、反応(1)で生成されたNAD
(酸化型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド)をN
ADH(還元型ニコチンアミドアデニンジヌクレオチ
ド)に変換する反応である。この反応を触媒する酵素と
しては種々のデヒドロゲナーゼが知られており、そのい
ずれを使用してもよく、酵素とともにその基質を十分
量、例えばNAD合成酵素のアミノ基供与体に対するK
m値の20倍以上の濃度です。添加しておけばよい。好
ましい酵素と基質の組み合わせは、3α−ヒドロキシス
テロイドデヒドロゲナーゼとその基質であるコール酸ナ
トリウム、イソクエン酸デヒドロゲナーゼとイソクエン
酸の組み合わせである。
The reaction (2) is the NAD produced in the reaction (1).
(Oxidized nicotinamide adenine dinucleotide)
It is a reaction for converting to ADH (reduced nicotinamide adenine dinucleotide). Various dehydrogenases are known as enzymes that catalyze this reaction, and any of them may be used. A sufficient amount of the substrate together with the enzyme, for example, K for the amino group donor of NAD synthase is used.
The concentration is more than 20 times the m value. Just add it. A preferred combination of enzyme and substrate is a combination of 3α-hydroxysteroid dehydrogenase and its substrates sodium cholate, and isocitrate dehydrogenase and isocitrate.

【0018】反応(3)は、反応(2)で生じたNADHと
テトラゾリウム塩からホルマザン色素を生成する反応で
ある。テトラゾリウム塩としては、ニトロテトラゾリウ
ムブルー、テトラゾリウムブルー、テトラゾリウムヴァ
イオレットなど、多種多様なものが市販されており、そ
のいずれを使用してもよい。好ましくは、溶解性にすぐ
れ、試料中に含まれる還元剤や、外部からの光などに対
して安定性の高いテトラゾリウムヴァイオレットを使用
する。
The reaction (3) is a reaction for forming a formazan dye from the NADH produced in the reaction (2) and a tetrazolium salt. A wide variety of tetrazolium salts are commercially available, such as nitrotetrazolium blue, tetrazolium blue, and tetrazolium violet, and any of them may be used. It is preferable to use tetrazolium violet, which has excellent solubility and is highly stable against a reducing agent contained in a sample and light from the outside.

【0019】ジアホラーゼは水素伝達物質として作用す
る。ジアホラーゼもまた多くの種類が市販されている
が、NADHに作用するものであればよい。ジアホラー
ゼは、トリトン(Triton)X−100、トゥイーン
(Tween)20、ブリジ(Brij)−58など種々の非
イオン性界面活性剤により活性化されるので、これら界
面活性剤を0.1〜0.5%程度を添加しておくことが
好ましいが、入れなくてもよい。
Diaphorase acts as a hydrogen messenger. Many kinds of diaphorase are also commercially available, but any one that acts on NADH may be used. Diaphorase is activated by various nonionic surfactants such as Triton X-100, Tween 20, Brij-58, etc. It is preferable to add about 5%, but it may not be added.

【0020】これらの反応系を簡単にまとめると、以下
の様になる。 (A) ATPと2価の金属イオンの存在下、デアミドN
ADとアミノ基供与体から、NAD合成酵素によりNA
Dが生成される際に、共存するカリウムイオンにより特
異的かつ濃度依存的に酵素反応が活性化される反応系。 (B) (A)で生成したNADをNADHに変換させる種
々のデヒドロゲナーゼと、生じたNADHとテトラゾリ
ウム塩からホルマザン色素を生成させるジアホラーゼを
含む酵素サイクリング反応系。
A brief summary of these reaction systems is as follows. (A) Deamide N in the presence of ATP and a divalent metal ion
NA from AD and amino group donor by NAD synthase
A reaction system in which an enzymatic reaction is specifically and concentration-dependently activated by coexisting potassium ions when D is produced. (B) An enzyme cycling reaction system containing various dehydrogenases for converting the NAD produced in (A) into NADH and a diaphorase for producing a formazan dye from the produced NADH and a tetrazolium salt.

【0021】本発明の組成物を含む乾式試験片は、支持
体上にNAD合成酵素と場合により他の成分の一部を含
有させた試薬層を有し、更に該試薬層の上に、試薬の上
記の残りを含有させた展開層を有している。
The dry test strip containing the composition of the present invention has a reagent layer containing NAD synthase and optionally a part of other components on a support, and further has a reagent layer on the reagent layer. The developing layer containing the rest of the above.

【0022】この試薬層は、ポリマーバインダーとして
の親水性ポリマー中に、酵素および試薬類が実質的に均
一に溶解または分散された液を、支持体表面に一定の厚
さに塗工した後、乾燥して形成される。試薬層の厚さ
は、測定に差し支えない適当な厚さ、例えば50〜30
0mmに設定すればよい。塗工および乾燥の方法は既知
の手法で行われる。
This reagent layer is prepared by applying a liquid, in which an enzyme and reagents are substantially uniformly dissolved or dispersed in a hydrophilic polymer as a polymer binder, on the surface of a support to give a constant thickness. It is formed by drying. The thickness of the reagent layer is an appropriate thickness that does not interfere with the measurement, for example, 50 to 30.
It may be set to 0 mm. The coating and drying methods are performed by known methods.

【0023】試薬層に用いるポリマーは、カリウム含量
の少ないものでなければならないが、具体的にはポリビ
ニルピロリドン、ポリビニルアルコールなどの合成ポリ
マーがこの条件を満たす。これらを単独もしくは2種以
上を混合して使用する。
The polymer used in the reagent layer must have a low potassium content, and specifically, synthetic polymers such as polyvinylpyrrolidone and polyvinyl alcohol satisfy this condition. These are used alone or in combination of two or more.

【0024】酵素反応に至適な環境pH値は、8.0〜
10.0、好ましくは9.0付近であるので、このpH
を保持する緩衝剤を、既知の緩衝剤から適宜選択して、
層中に含有させるとよい。
The optimum environmental pH value for the enzymatic reaction is 8.0 to
Since it is around 10.0, preferably around 9.0, this pH
The buffering agent that retains is appropriately selected from known buffering agents,
It may be contained in the layer.

【0025】展開層としては、繊維生地を水洗して使用
する。繊維生地に試薬の一部を含有する水溶液を含浸し
て乾燥し、乾いた状態又は再度湿らした状態で試薬層上
に圧着させることによりラミネートする。
As the spreading layer, a textile material is used after being washed with water. The fibrous material is impregnated with an aqueous solution containing a part of the reagent, dried, and then pressed or laminated on the reagent layer in a dry state or in a wet state again.

【0026】支持体としては、この種の乾式試験片を製
作する際に通常用いられる樹脂、例えばポリエチレンテ
レフタレート等をストリップの形状に加工したものを用
いればよい。
As the support, a resin which is usually used when producing a dry test piece of this type, for example, polyethylene terephthalate or the like processed into a strip shape may be used.

【0027】試料液を試験片の展開層に適用した後のカ
リウムイオンの定量分析は、ホルマザンの極大吸収波長
における反射率の変化速度を測定し、既知濃度のカリウ
ム溶液の測定結果より作成した検量線を用いて算出す
る。
Quantitative analysis of potassium ions after applying the sample solution to the spreading layer of the test piece was carried out by measuring the rate of change of reflectance at the maximum absorption wavelength of formazan, and calibrating from the measurement result of potassium solution of known concentration. Calculate using the line.

【0028】[0028]

【発明の効果】NAD合成酵素がカリウムイオンにより
活性化されることは、文献等で既に知られている[ジャ
ーナル・オブ・バイオロジカル・ケミストリー(J.B
iol.Chem.)247、4794−4802(197
2)など)。本発明者らが更に詳細に研究、検討したと
ころ、NAD合成酵素には「カリウムイオン濃度に比例
して定量的に活性化される性質」はもちろんのこと、意
外にも「(1)カリウムイオンに対して非常に高い特異性
を有する性質、(2)カリウムイオン濃度が非常に高くて
も比例的に活性化される性質、(3)PKでは干渉イオン
であるアンモニウムイオンがNAD合成酵素では必須成
分であり、多量に存在しても影響を受けない性質」を持
つことが分かった。
EFFECT OF THE INVENTION It is already known in the literature that NAD synthase is activated by potassium ions [Journal of Biological Chemistry (J. B.
iol. Chem. ) 247, 4794-4802 (197)
2) etc.). The inventors of the present invention have studied and examined it in more detail. As a result, NAD synthase has not only the property of being quantitatively activated in proportion to the concentration of potassium ion, but also surprisingly "(1) Potassium ion Has very high specificity for (2) the property of being proportionally activated even if the potassium ion concentration is very high, (3) the ammonium ion which is an interference ion in PK is essential for NAD synthase It is a component and has the property of not being affected even if it is present in a large amount. "

【0029】これら性質の故に、NAD合成酵素を使用
すれば、欧州特許EP−B−0 286 039の発明で
使用されている様なクリプタントやキレート剤などの結
合剤を使用する必要はなくなる。カリウムへの高度な特
異性の故に、共存する他のイオン(主にナトリウムイオ
ン)の影響を容易に回避できる。また、アンモニウムイ
オンが本発明の反応系では必須成分なので、ナトリウム
イオンの他にアンモニウムイオンの存在も考慮する必要
がない。
Because of these properties, the use of NAD synthase eliminates the need for binders such as cryptants and chelating agents as used in the invention of European Patent EP-B-0 286 039. Due to its high specificity for potassium, the effects of other coexisting ions (mainly sodium ions) can be easily avoided. Further, since ammonium ion is an essential component in the reaction system of the present invention, it is not necessary to consider the presence of ammonium ion in addition to sodium ion.

【0030】また、結合剤を添加せずとも、少なくとも
0〜50mmol/lの範囲の非常に高濃度のカリウムイオ
ンを定量できるので、高濃度でカリウムイオンを含む血
清、血漿、尿はおろか、それ以外の液体においても、希
釈することなしに、或いは結合剤を添加することなし
に、カリウムイオン濃度を測定することが可能である。
試料を希釈する必要がないので、乾式組成物への応用も
非常に簡単である。また、ATP、2価の金属イオン、
アミノ基供与体、デアミドNADの少なくとも1つをN
AD合成酵素と分離させることにより、著しく保存安定
性にすぐれた乾式試験片を提供することができる。
Further, since a very high concentration of potassium ion in the range of at least 0 to 50 mmol / l can be quantified without adding a binder, serum, plasma, urine containing high concentration of potassium ion, let alone With other liquids, it is possible to measure the potassium ion concentration without diluting or adding a binder.
The application to dry compositions is also very simple, as there is no need to dilute the sample. In addition, ATP, divalent metal ion,
N-containing at least one of the amino group donor and the deamidated NAD
By separating from the AD synthase, it is possible to provide a dry test strip having excellent storage stability.

【0031】乾式試験片を製造する際には、バインダー
として種々のポリマーが使用されるが、天然ポリマー中
には多量のカリウムイオンが混在しており、測定結果へ
悪影響を及ぼしてしまう。この問題点は、カリウムイオ
ンを含まない合成ポリマーを使用することにより解決さ
れ、バックグラウンド着色のない試験片の作製が可能で
ある。結果的に、例えばグルコースや蛋白質といった発
色度をみる多項目検査の試験片と同一の試験片に組み込
むことができる。
Various polymers are used as binders in the production of dry test pieces, but a large amount of potassium ions are mixed in the natural polymer, which adversely affects the measurement results. This problem is solved by using a synthetic polymer containing no potassium ion, and it is possible to prepare a test piece having no background coloration. As a result, it can be incorporated in the same test piece as the test piece of the multi-item test for checking the degree of color development such as glucose and protein.

【0032】[0032]

【実施例】以下に実施例を挙げて本発明を具体的に説明
するが、本発明はこれら実施例に限定されるものではな
い。実施例1 本実施例では、以下の成分を用いた。
EXAMPLES The present invention will be specifically described below with reference to examples, but the present invention is not limited to these examples. Example 1 The following components were used in this example.

【0033】カリウム測定試験片処方試薬層塗工液成分 トリス塩酸緩衝液(pH9.0) 50mmol/l イソクエン酸3ナトリウム塩(ナカライテスク) 30mmol/l ATP 5mmol/l MgCl2 1mmol/l トリトンX−100 0.2%(W/V) NAD合成酵素(旭化成) 15KU/l イソクエン酸脱水素酵素(オリエンタル酵母) 100KU/l ジアホラーゼ(旭化成) 20KU/l コリドン(Kollidone)90F(BASF) 8%(W/V) (水酸化ナトリウム溶液でpH9.0に調整) Potassium test specimen formulation : Reagent layer coating liquid component Tris-HCl buffer (pH 9.0) 50 mmol / l Isocitrate trisodium salt (Nacalai Tesque) 30 mmol / l ATP 5 mmol / l MgCl 2 1 mmol / l Triton X -100 0.2% (W / V) NAD synthase (Asahi Kasei) 15 KU / l Isocitrate dehydrogenase (Oriental yeast) 100 KU / l Diaphorase (Asahi Kasei) 20 KU / l Kollidone 90F (BASF) 8% ( W / V) (adjusted to pH 9.0 with sodium hydroxide solution)

【0034】 展開層含浸液成分 トリス塩酸緩衝液(pH7.5) 10mmol/l テトラゾリウムヴァイオレット(シグマ) 60mmol/l デアミドNAD(旭化成) 30mmol/l (NH4)2SO4 60mmol/l トリトンX−100 0.2%(W/V) コリドン90F 8%(W/V) (水酸化ナトリウム溶液でpH7.5に調製) Development layer impregnating solution component Tris-hydrochloric acid buffer solution (pH 7.5) 10 mmol / l tetrazolium violet (Sigma) 60 mmol / l Deamid NAD (Asahi Kasei) 30 mmol / l (NH 4 ) 2 SO 4 60 mmol / l Triton X-100 0.2% (W / V) Kollidon 90F 8% (W / V) (adjusted to pH 7.5 with sodium hydroxide solution)

【0035】上記試薬層塗工液成分を混合した後、支持
体(ポリエチレンテレフタレート白色フィルム。厚さ1
25μm。)上に150μmの厚さ(湿潤厚さ)に塗工
し、50℃で15分間乾燥させた。展開層成分の混合液
は、別の支持体上に50μmの厚さに塗工し、その塗膜
の上に塗膜が濡れた状態で繊維生地をのせ、成分を繊維
生地に吸収させた後、50℃で15分間乾燥させた。乾
燥させた試料保持層を支持体よりはがし、精製水を1m2
あたり20ml含浸させ、試薬層上に圧着した後、50℃
で10分間乾燥させた。
After mixing the above-mentioned reagent layer coating liquid components, a support (polyethylene terephthalate white film. Thickness 1
25 μm. ) Was coated on the above to a thickness of 150 μm (wet thickness) and dried at 50 ° C. for 15 minutes. The mixed solution of the components of the spreading layer is coated on another support to a thickness of 50 μm, and the fiber material is placed on the coating film while the coating film is wet, and the components are absorbed by the fiber material. And dried at 50 ° C. for 15 minutes. Peel off the dried sample holding layer from the support and remove purified water to 1 m 2
Impregnate 20 ml per unit and press-bond on the reagent layer, then 50 ℃
And dried for 10 minutes.

【0036】試薬層と展開層をラミネートした支持体
を、裁断機で試験片部分が5×7mmになるよう裁断して
5×70mm、厚さ0.25mmのスティック状の白色ポリ
エチレンテレフタレートプレートに貼り付け測定用試験
片を作成した。スポットケムSP−4410(株式会社
京都第一科学製)を用いて、 試料:KCl水溶液(濃度は図1参照) 試料量:7μl 反応温度:37℃ 測定波長:550nm の条件で、展開層側から反射率を測定した。反射率はク
ベルカ−ムンク(Kubelka−Munk)の式に従ってK/
S値に換算し、その5〜10分間の増加量(△K/S)を
求めた。結果を図1に示す。この曲線を検量線とした。
The support laminated with the reagent layer and the spreading layer was cut with a cutting machine so that the test piece portion became 5 × 7 mm, and stuck to a stick-shaped white polyethylene terephthalate plate having a size of 5 × 70 mm and a thickness of 0.25 mm. A test piece for attachment measurement was prepared. Using Spotchem SP-4410 (manufactured by Kyoto Daiichi Kagaku Co., Ltd.), sample: KCl aqueous solution (see FIG. 1 for concentration) Sample amount: 7 μl Reaction temperature: 37 ° C. Measurement wavelength: 550 nm from the development layer side The reflectance was measured. The reflectance is K / according to the Kubelka-Munk equation.
The value was converted into an S value and the amount of increase (ΔK / S) for 5 to 10 minutes was determined. The results are shown in Fig. 1. This curve was used as a calibration curve.

【0037】実施例2 ヒトプール血清を試料とし、試料量7μl、反応温度3
7℃、測定波長550nm、測定時間5〜10分の条件で
実施例1と同様に測定を行い、得られたΔK/Sを、図
1の検量線によりカリウムイオン濃度に換算したとこ
ろ、4.2mmol/lの値が得られた。これは、イオン選
択性電極法で測定した結果と良好に一致した(使用機
器:スポットケムSE−1510。株式会社京都第一科
学製)。
Example 2 Using human pool serum as a sample, sample amount 7 μl, reaction temperature 3
Measurement was carried out in the same manner as in Example 1 under the conditions of 7 ° C., measurement wavelength of 550 nm, and measurement time of 5 to 10 minutes, and the obtained ΔK / S was converted into potassium ion concentration by the calibration curve of FIG. A value of 2 mmol / l was obtained. This was in good agreement with the result measured by the ion-selective electrode method (apparatus used: Spotchem SE-1510, manufactured by Kyoto Daiichi Kagaku Co., Ltd.).

【0038】実施例3 ヒトプール尿を試料とし、試料量7μl、反応温度37
℃、測定波長550nm、測定時間5〜10分の条件で実
施例1と同様に測定を行い、得られたΔK/Sを、図1
の検量線によりカリウムイオン濃度に換算したところ、
28.2mmol/lの値が得られた。これは、イオン選択
性電極法で測定した結果と良好に一致した(使用機器:
スポットケムSE−1510。株式会社京都第一科学
製)。
Example 3 Using human pool urine as a sample, sample amount 7 μl, reaction temperature 37
Measurement was carried out in the same manner as in Example 1 under the conditions of ℃, measurement wavelength of 550 nm and measurement time of 5 to 10 minutes, and the obtained ΔK / S is shown in FIG.
When converted to potassium ion concentration by the calibration curve of
A value of 28.2 mmol / l was obtained. This is in good agreement with the result measured by the ion selective electrode method (apparatus used:
Spot Chem SE-1510. Made by Kyoto Daiichi Kagaku Co., Ltd.).

【0039】実施例4 本発明に基づくカリウムイオン濃度測定用乾式試験片に
対するナトリウムイオンの影響を調べた。血清中へ、塩
化ナトリウムを0、10、20、30、40または50
mmol/lの濃度になる様に添加して、実施例1と同様に
カリウムイオン濃度を得た。結果を図2に示す。
Example 4 The effect of sodium ions on the dry test piece for measuring potassium ion concentration according to the present invention was investigated. 0, 10, 20, 30, 40 or 50 sodium chloride in serum
The potassium ion concentration was obtained in the same manner as in Example 1 by adding to a concentration of mmol / l. The results are shown in Figure 2.

【0040】血清中には、健常人で約140mmol/lの
濃度でナトリウムイオンが含まれる。もしNAD合成酵
素がナトリウムイオンでも活性化されるならば、発色は
4.0mmol/lの一定を示さず、ナトリウムの添加量が
増加するに従って直線は右上がりになる。ナトリウムで
飽和してもΔK/S値はほぼ水平は直線に乗るが、その
場合には約4.0mmol/l(健常人の血清カリウム濃
度)に対応する発色は示さずに、それ以上に濃い発色を
呈し、測定不能になる筈である。本実施例では、ナトリ
ウムの添加量が増加しても、発色度は変化せず、カリウ
ム濃度は約4.0mmol/lでほぼ一定の値を示した。こ
のことから、NAD合成酵素はナトリウムイオンの影響
を全く受けず、カリウムのみの影響を受けることが分か
る。
Serum contains sodium ions at a concentration of about 140 mmol / l in a healthy person. If the NAD synthase is also activated by sodium ion, the color development does not show a constant of 4.0 mmol / l and the straight line rises to the right as the amount of sodium added increases. Even if saturated with sodium, the ΔK / S value goes on a straight line almost horizontally, but in that case, the coloration corresponding to about 4.0 mmol / l (serum potassium concentration of healthy person) is not shown, but it is darker than that. It should develop color and become impossible to measure. In this example, even if the amount of sodium added was increased, the degree of color development did not change, and the potassium concentration was about 4.0 mmol / l, which was a substantially constant value. From this, it can be seen that NAD synthase is not affected by sodium ions at all, but is affected by potassium alone.

【0041】この様に、NAD合成酵素を用いれば、少
なくとも0〜50mmol/lの範囲のカリウムイオンを、
希釈操作や結合剤なしで定量できる。よって、グルコー
スや蛋白質といった発色度をみる多項目検査の試験片と
同一の試験片に組み込むことができる。
Thus, when NAD synthase is used, potassium ions in the range of at least 0 to 50 mmol / l are
It can be quantified without any dilution procedure or binder. Therefore, it can be incorporated in the same test piece as the test piece of the multi-item test for checking the degree of color development such as glucose and protein.

【図面の簡単な説明】[Brief description of drawings]

【図1】 実施例1における塩化カリウム濃度0〜10
mmol/l検量線。
FIG. 1 is a potassium chloride concentration of 0 to 10 in Example 1.
mmol / l calibration curve.

【図2】 実施例4におけるヒトプール血清中のカリウ
ムイオン測定時のナトリウム添加の影響を表すグラフ。
FIG. 2 is a graph showing the effect of sodium addition when measuring potassium ion in human pool serum in Example 4.

Claims (4)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】 試料液中のカリウムイオンを測定するた
めの組成物であって、酸化型ニコチンアミドアデニンジ
ヌクレオチド合成酵素[EC6.3.5.1.]、アデノ
シン三リン酸、2価の金属イオン、デアミドニコチンア
ミドアデニンジヌクレオチド、アミノ基供与体、デヒド
ロゲナーゼとそれに対応する基質、テトラゾリウム塩お
よびジアホラーゼを含有してなる、カリウムイオン測定
用試薬組成物。
1. A composition for measuring potassium ion in a sample solution, which comprises oxidized nicotinamide adenine dinucleotide synthase [EC 6.3.5.1. ], Adenosine triphosphate, divalent metal ion, deamidonicotinamide adenine dinucleotide, amino group donor, dehydrogenase and its corresponding substrate, tetrazolium salt and diaphorase reagent composition for potassium ion measurement .
【請求項2】 支持体、その上に形成された試薬層及び
該試薬層の上に形成された展開層を有して成り、該試薬
層および該展開層のいずれかに、酸化型ニコチンアミド
アデニンジヌクレオチド合成酵素[EC6.3.5.
1.]、アデノシン三リン酸、2価の金属イオン、デア
ミドニコチンアミドアデニンジヌクレオチド、アミノ基
供与体、デヒドロゲナーゼとそれに対応する基質、テト
ラゾリウム塩、ジアホラーゼ、高分子ポリマーおよび緩
衝剤を含有するカリウムイオン測定用試験片。
2. A support, a reagent layer formed on the support, and a spreading layer formed on the reagent layer, wherein any one of the reagent layer and the spreading layer is oxidized nicotinamide. Adenine dinucleotide synthase [EC 6.3.5.
1. ], Adenosine triphosphate, divalent metal ion, deamidonicotinamide adenine dinucleotide, amino group donor, dehydrogenase and its corresponding substrate, tetrazolium salt, diaphorase, high molecular weight polymer and buffer containing potassium ion Test piece.
【請求項3】 試薬層および/または展開層中に含有さ
れる高分子ポリマーが合成高分子ポリマーである請求項
2に記載のカリウムイオン測定用試験片。
3. The test piece for measuring potassium ion according to claim 2, wherein the high molecular polymer contained in the reagent layer and / or the spreading layer is a synthetic high molecular polymer.
【請求項4】 酸化型ニコチンアミドアデニンジヌクレ
オチド合成酵素が試薬層に含まれ、アデノシン三リン
酸、2価の金属イオン、デアミドニコチンアミドアデニ
ンジヌクレオチドおよびアミノ基供与体の少なくとも1
つが展開層に含まれるが試薬層には含まれない、請求項
2に記載のカリウムイオン測定用試験片。
4. An oxidized nicotinamide adenine dinucleotide synthase is contained in a reagent layer, and at least one of adenosine triphosphate, a divalent metal ion, deamidonicotinamide adenine dinucleotide and an amino group donor is used.
The test piece for potassium ion measurement according to claim 2, wherein one is included in the spreading layer but not included in the reagent layer.
JP30470894A 1994-12-08 1994-12-08 Reagent composition for potassium ion measurement and test piece Expired - Fee Related JP3493411B2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP30470894A JP3493411B2 (en) 1994-12-08 1994-12-08 Reagent composition for potassium ion measurement and test piece

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP30470894A JP3493411B2 (en) 1994-12-08 1994-12-08 Reagent composition for potassium ion measurement and test piece

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JPH08160049A true JPH08160049A (en) 1996-06-21
JP3493411B2 JP3493411B2 (en) 2004-02-03

Family

ID=17936261

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP30470894A Expired - Fee Related JP3493411B2 (en) 1994-12-08 1994-12-08 Reagent composition for potassium ion measurement and test piece

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JP3493411B2 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2002025262A1 (en) * 2000-09-25 2002-03-28 Asahi Kasei Kabushiki Kaisha Enzyme electrode

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2002025262A1 (en) * 2000-09-25 2002-03-28 Asahi Kasei Kabushiki Kaisha Enzyme electrode
JPWO2002025262A1 (en) * 2000-09-25 2004-01-29 旭化成株式会社 Enzyme electrode
US7169273B2 (en) 2000-09-25 2007-01-30 Asahi Kasei Kabushiki Kaisha Enzyme electrode
JP4721618B2 (en) * 2000-09-25 2011-07-13 旭化成株式会社 Enzyme electrode

Also Published As

Publication number Publication date
JP3493411B2 (en) 2004-02-03

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US6586199B2 (en) Stabilized tetrazolium reagent compositions and methods for using the same
US6939685B2 (en) Stabilized tetrazolium phenazine reagent compositions and methods for using the same
US4713327A (en) Determination of total creatine kinase or an isoenzyme with a multilayer analytical element
JPH0687793B2 (en) Method and reagent for colorimetric determination of analyte by enzymatic oxidation, and reductive chromogenic electron acceptor therefor
JPH04637B2 (en)
JPH0550275B2 (en)
JPH0555119B2 (en)
Fossati et al. A step forward in enzymatic measurement of creatinine
AU754237B2 (en) Uric acid assay device with stabilized uricase reagent composition
JP3493411B2 (en) Reagent composition for potassium ion measurement and test piece
US6753159B1 (en) Uric acid assay device with stabilized uricase reagent composition
EP0200541B1 (en) Immunochemical method and analytical composition and element for determination of creatine kinase-mb
JP3034988B2 (en) Highly sensitive method for determination of isocitrate or α-ketoglutaric acid and composition for determination
EP0989190B1 (en) Dry analytical element for quantitative analysis of creatine kinase MB isozyme
EP0989191B1 (en) Dry analytical element for quantitative analysis of creatine kinase or its MB isozyme
JPH03133396A (en) Reagent composition for ammonia analysis and one-body type multilayer analyzing element containing thereof
JP3894236B2 (en) Copper ion measuring method and reagent composition thereof
US5998158A (en) Glucose free, stable dry analytical element for quantitative analysis of creatine kinase MB isozyme
JPH0636757B2 (en) Method for measuring components contained in body fluid and reagent used therefor
JPS63116700A (en) Analytical method for trace substance
Panteghini et al. Evaluation of a new commercial assay kit for quantification of lactate dehydrogenase isoenzyme 1 in serum
JPH02145196A (en) Method for determining magnesium
JPH0533999B2 (en)
JPS62272994A (en) Production of test paper for measuring bile acid
JPH04187098A (en) Reagent for determination of calcium ion

Legal Events

Date Code Title Description
R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

FPAY Renewal fee payment (prs date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20081121

Year of fee payment: 5

FPAY Renewal fee payment (prs date is renewal date of database)

Year of fee payment: 5

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20081121

FPAY Renewal fee payment (prs date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20091121

Year of fee payment: 6

FPAY Renewal fee payment (prs date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20091121

Year of fee payment: 6

FPAY Renewal fee payment (prs date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20101121

Year of fee payment: 7

LAPS Cancellation because of no payment of annual fees