JPH0775558B2 - Method for quantifying inorganic phosphorus in biological fluid and reagent for quantifying the same - Google Patents

Method for quantifying inorganic phosphorus in biological fluid and reagent for quantifying the same

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JPH0775558B2
JPH0775558B2 JP11290087A JP11290087A JPH0775558B2 JP H0775558 B2 JPH0775558 B2 JP H0775558B2 JP 11290087 A JP11290087 A JP 11290087A JP 11290087 A JP11290087 A JP 11290087A JP H0775558 B2 JPH0775558 B2 JP H0775558B2
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reagent
inorganic phosphorus
quantifying
biological fluid
enzyme reaction
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Inventor
善章 片山
喜明 兼田
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国際試薬株式会社
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Description

【発明の詳細な説明】 〔産業上の利用分野〕 本発明は、主として臨床検査の分野での利用を目的とし
た生体液中の無機リンの定量方法およびその定量用試薬
に関する。
TECHNICAL FIELD The present invention relates to a method for quantifying inorganic phosphorus in biological fluids and a reagent for quantifying the same, which is mainly used in the field of clinical examination.

〔従来の技術〕[Conventional technology]

リンはカルシウムとともに骨を形成しているが、生体内
でリンは有機化合物代謝に関与するものとして知られて
いる。血清中ではリンは通常、無機リン酸、有機リン酸
エステル及びリン脂質等として存在しているが、なかで
も無機リンは臨床検査の分野において副甲状腺機能検査
や腎炎、骨軟化症等の診断に重要な役割を果たしてい
る。
Phosphorus forms bone with calcium, but phosphorus is known to be involved in the metabolism of organic compounds in vivo. Phosphorus is usually present in serum as inorganic phosphate, organic phosphates, phospholipids, etc. Among them, inorganic phosphorus is used for the diagnosis of parathyroid function test, nephritis, osteomalacia, etc. in the field of clinical examination. Plays an important role.

無機リンの測定法には古くからマグネシウムとアンモニ
アとの反応により、リン酸マグネシウムアンモニウムと
して沈澱させてその重量を測定する方法があるが、操作
が繁雑なため現在ではそれに代わって、酸性下でモリブ
デン酸との反応によって生じたリンモリブデン酸塩を還
元させて発色したときの吸光度を測定する方法が最もよ
く用いられている。その代表的なものとしてFiske−Sub
ba Raw法がある。
The method of measuring inorganic phosphorus has long been a method of precipitating it as magnesium ammonium phosphate by the reaction of magnesium with ammonia and measuring its weight. However, due to the complicated operation, it is currently replaced by molybdenum under acidic conditions. The most commonly used method is to reduce the phosphomolybdate generated by the reaction with an acid and measure the absorbance when the color is developed. Fiske-Sub is a typical example.
There is ba Raw method.

これとは別に酵素反応による無機リンの定量方法も報告
されている。その第一の例としては、イノシンとリンを
基質にするプリヌクレオシドホスフォリラーゼ(PNP)
の酵素反応にキサンチンオキシターゼの酵素反応及びペ
ルオキシターゼ(POD)の酵素反応を組合せた共役反応
により生成されるキノン色素を測定する方法がある。ま
た酵素反応による無機リンの定量法の第二の例として
は、グリセロアルデヒド−3−リン酸(GAP)とニコチ
ンアミドアデニンジヌクレオチド酸化型(NAD)および
リンを基質にするグリセロアルデヒド−3−リン酸脱水
素酵素(GAPDH)の酵素反応により紫外部域波長での吸
光度を測定する方法がある。
Apart from this, a method for quantifying inorganic phosphorus by an enzymatic reaction has also been reported. The first example is purine nucleoside phosphorylase (PNP) that uses inosine and phosphorus as substrates.
There is a method for measuring a quinone dye produced by a coupling reaction in which the enzymatic reaction of xanthine oxidase and the enzymatic reaction of peroxidase (POD) are combined with the enzymatic reaction of 1. As a second example of the method for quantifying inorganic phosphorus by enzymatic reaction, glyceroaldehyde-3-phosphate (GAP) and nicotinamide adenine dinucleotide oxidized form (NAD) and glyceroaldehyde-3-phosphorus using phosphorus as a substrate. There is a method of measuring the absorbance at ultraviolet wavelength by the enzymatic reaction of acid dehydrogenase (GAPDH).

〔発明が解決しようとする問題点〕[Problems to be solved by the invention]

このような従来の方法のうち、最も一般的なモリブデン
酸との反応による方法は発色の感度が低いという欠点に
加え、試薬に強酸を用いなければならないため、操作上
の安全性の点からも問題となっている。一方、近年酵素
反応についての研究がすすめられるに従い試薬組成が穏
和なことと、操作が簡便で自動化しやすい点から酵素反
応による方法は臨床検査でも広く用いられるようになっ
た。しかし酵素反応は温度、時間、pHなどの条件により
変動を受けやすい上、反応系に存在する干渉因子による
影響等の問題についても考えておく必要がある。また酵
素を用いた定量方法においては、一つの酵素反応では直
接計測できる指示物質がないために測定できない場合は
更に酵素反応を組合せ、適切な指示物質を有する共役酵
素反応に展開させることが多い。しかしこの共役酵素反
応の場合、それぞれの酵素反応には異なった至適条件が
あり、例えばpHや緩衝液の種類、濃度の相違等によりそ
れぞれの酵素反応を同時に一液下ですすめる際には問題
をひき起こすことがある。また組合せとして選択した共
役酵素の非特異性のためかえって性能が劣化することも
あり、更に反応の平衡が完全に生成物側に偏っていない
場合などでみられる反応速度の低下等、共役酵素反応で
はこのようにより問題が複雑化することに対して十分な
注意を払う必要がある。特に臨床検査で用いる試料であ
る血液、尿その他の生体液中には、測定対象以外に前述
のような干渉因子となる成分が種々混在していたり、ま
た共役酵素反応系と何らかの反応性を示す成分も存在し
ていることが多い。この他測定するための試薬にした場
合、不純物が混在する例もしばしば問題になっている。
Of these conventional methods, the most general method by reaction with molybdic acid has the drawback of low color development sensitivity, and since a strong acid must be used as a reagent, it is also safe in operation. It's a problem. On the other hand, as researches on enzyme reactions have been promoted in recent years, the method by enzyme reaction has come to be widely used in clinical tests because of its mild composition of reagents and its simple operation and easy automation. However, the enzyme reaction is susceptible to fluctuations due to conditions such as temperature, time, and pH, and it is necessary to consider problems such as the influence of interfering factors existing in the reaction system. In addition, in a quantification method using an enzyme, when there is no indicator substance that can be directly measured in one enzyme reaction and therefore it is not possible to measure, an enzyme reaction is often further combined to develop a coupled enzyme reaction having an appropriate indicator substance. However, in the case of this coupled enzyme reaction, there are different optimum conditions for each enzyme reaction, and there are problems when performing each enzyme reaction in one solution at the same time due to differences in pH, buffer type, concentration, etc. May cause In addition, the non-specificity of the coupled enzyme selected as a combination may rather deteriorate the performance.In addition, the reaction rate may decrease, such as when the reaction equilibrium is not completely biased toward the product side. It is necessary to pay sufficient attention to such complicated problems. In particular, blood, urine, and other biological fluids used in clinical tests contain various components that act as interference factors other than those to be measured, and also show some reactivity with the coupled enzyme reaction system. Often components are also present. In addition to this, when a reagent for measurement is used, an example in which impurities are mixed is often a problem.

このような背景から酵素反応による従来の無機リンの定
量方法をみると、まず前述の第一の例である酵素PNPを
用いた方法では、共役酵素のPODの非特異性のため、生
体液中に干渉因子として共存する種々の還元性物質の影
響を受けるという問題があり、それについて特別な対策
が必要となる。このような還元性物質としては、ビリル
ビン、アスコルビン酸、尿酸、グルタチオン、タンパク
質などの種々のものが指摘されている。次に第二の例で
ある酵素GAPDHを用いた方法では、基質であるGAPが不純
物としてリンを含むという欠点があり、更にGAPはそれ
自体が不安定でグリセロアルデヒドとリンに分解されや
すいということもあり、試薬にした場合には問題があ
る。
From this background, looking at the conventional method for quantifying inorganic phosphorus by enzymatic reaction, first, in the method using the enzyme PNP, which is the first example described above, the POD of the coupling enzyme is non-specific, so However, there is a problem that it is affected by various reducing substances that coexist as an interfering factor, and special measures are required for it. As such reducing substances, various substances such as bilirubin, ascorbic acid, uric acid, glutathione and proteins have been pointed out. Next, the method using the enzyme GAPDH, which is the second example, has the drawback that the substrate GAP contains phosphorus as an impurity, and that GAP itself is unstable and easily decomposed into glyceroaldehyde and phosphorus. There is also a problem when used as a reagent.

本発明の目的は、上述の欠点を除去し臨床検査の分野で
用いることができる生体液中の無機リンを定量する方法
と、その定量用試薬を提供することにある。
It is an object of the present invention to provide a method for quantifying inorganic phosphorus in a biological fluid, which can be used in the field of clinical tests by eliminating the above-mentioned drawbacks, and a reagent for quantifying the same.

〔問題を解決するための手段〕[Means for solving problems]

本発明者らは、このような問題を解決し上述の目的を達
成するため鋭意研究をすすめた結果、ポリヌクレオチド
ホスフォリラーゼ(Polynucleotide phosphorylase)に
よる酵素反応と、ピルビン酸キナーゼ〔Pyruvate kinas
e,E C2.7.1.40(PK)〕による酵素反応と、乳酸脱水酵
素〔Lactate de−hydrogenase(LDH)〕による酵素反応
を組合せることにより、上述の如き共役酵素反応系にみ
られる欠点なく、高感度に生体液中の無機リンが定量で
きることを見い出し、さらに研究を重ねた結果本発明を
完成した。
As a result of intensive studies to solve these problems and achieve the above-mentioned object, the present inventors have found that an enzymatic reaction by a polynucleotide phosphorylase and a pyruvate kinase [Pyruvate kinas]
e, E C2.7.1.40 (PK)] and the enzymatic reaction of lactate dehydrogenase (Lactate de-hydrogenase (LDH)) are combined to eliminate the drawbacks of the above-mentioned coupled enzyme reaction system. The inventors have found that inorganic phosphorus in biological fluids can be quantified with high sensitivity, and further researches have completed the present invention.

本発明は (1)生体液試料をPKによる酵素反応系とLDHによる酵
素反応系からなる試薬と反応させ、次にポリヌクレオチ
ドホスフォリラーゼによる酵素反応系からなる試薬と反
応させることを特徴とする生体液中の無機リンの定量方
法、 (2)PKによる酵素反応系とLDHによる酵素反応系から
なる試薬、およびポリヌクレオチドホスフォリラーゼに
よる酵素反応系からなる試薬よりなることを特徴とする
生体液中の無機リンの定量用試薬に関する。
The present invention is characterized in that (1) a biological fluid sample is reacted with a reagent comprising an enzyme reaction system based on PK and an enzyme reaction system based on LDH, and then reacted with a reagent comprising an enzyme reaction system based on polynucleotide phosphorylase. Method for quantifying inorganic phosphorus in biological fluid, (2) biological fluid characterized by comprising a reagent comprising an enzymatic reaction system by PK and an LDH, and a reagent comprising an enzymatic reaction system by polynucleotide phosphorylase The present invention relates to a reagent for quantifying inorganic phosphorus in a product.

即ち、本発明は次式(1)、(2)および(3) (1)ポリヌクレオチドホスフォリラーゼによる酵素反
応: ポリアデニル酸(RNA)n+1+0−リン酸 (RNA)n+アデノシン−5′−二リン酸(ADP) (2)PKによる酵素反応: ADP+ホスフォエノールピルビン酸(PEP) アデニシン−5′−三リン酸(ATP)+ピルビン酸 (3)LDHによる酵素反応: ピルビン酸 +ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド還元型(NAD
H) +H乳酸 +ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド酸化型(NA
D) 以上の3つの酵素反応を組合せた共役酵素反応を用いる
ことを特徴とする生体液中の無機リンを定量する方法
と、その定量用試薬に関するものである。
That is, the present invention relates to the following formulas (1), (2) and (3) (1) Enzymatic reaction with polynucleotide phosphorylase: polyadenylic acid (RNA) n +1 + 0-phosphate (RNA) n + adenosine-5 ′ -Diphosphate (ADP) (2) PK enzymatic reaction: ADP + phosphoenolpyruvate (PEP) Adenisin-5'-triphosphate (ATP) + pyruvate (3) LDH enzymatic reaction: pyruvate + nicotine Amidoadenine dinucleotide reduced form (NAD
H) + H lactic acid + nicotinamide adenine dinucleotide oxidized form (NA
D) The present invention relates to a method for quantifying inorganic phosphorus in a biological fluid, which uses a coupled enzyme reaction in which the above three enzymatic reactions are combined, and a reagent for quantifying the same.

本発明において、定量される生体液は、無機リンを含有
するものであれば特に制限はなく、たとえば血液(特
に、血清)、尿、髄液などであり、動物の由来には特に
制限はない。
In the present invention, the biological fluid to be quantified is not particularly limited as long as it contains inorganic phosphorus, and examples thereof include blood (especially serum), urine, and cerebrospinal fluid, and the origin of the animal is not particularly limited. .

本発明では上記共役酵素反応で0−リン酸の代わりに生
体液中の無機リンが基質となって反応がすすみ、指示物
質であるNADHの減少量を測定することによって生体液中
の無機リンが定量できる。ここでNADHは一般に共役酵素
反応における指示物質として広く知られているもので、
紫外部域とりわけ340nmの波長における吸光度を計測す
ることによって容易に測定ができる。
In the present invention, in the above-mentioned coupled enzyme reaction, the inorganic phosphorus in the biological fluid is used as a substrate in place of 0-phosphate and the reaction proceeds, and the inorganic phosphorus in the biological fluid is measured by measuring the decrease amount of NADH which is an indicator. Can be quantified. NADH is a widely known indicator substance in coupled enzyme reactions.
It can be easily measured by measuring the absorbance in the ultraviolet region, especially at a wavelength of 340 nm.

本発明で用いる共役酵素反応は前述のPODによる酵素反
応のような干渉因子として還元性物質の影響を受けるこ
とはほとんどない。またこの共役酵素反応では、生体液
中に共存するADPとピルビン酸も基質となり同時に反応
してしまうことが予測できるが、本発明では生体液試料
をあらかじめPKによる酵素反応系とLDHによる酵素反応
系からなる試薬に混和し、反応させることによりADPと
ピルビン酸は消去できるので、これらによる干渉の影響
は回避できる。更に本発明ではNADHの減少速度を測定す
るため酵素反応を停止させる必要がなく、従って反応停
止液を加える操作ステップが省略できる。このNADHの減
少速度は高感度に測定することができるため、試料を微
量化することができる。
The coupled enzyme reaction used in the present invention is hardly affected by the reducing substance as an interfering factor like the enzyme reaction by POD described above. Further, in this coupled enzyme reaction, it can be predicted that ADP and pyruvic acid coexisting in the biological fluid will also react simultaneously as substrates, but in the present invention, the biological fluid sample is preliminarily analyzed by PK and the enzyme reaction system by LDH. Since ADP and pyruvic acid can be eliminated by mixing with a reagent consisting of and reacting with them, the influence of interference by these can be avoided. Furthermore, in the present invention, it is not necessary to stop the enzymatic reaction because the rate of decrease of NADH is measured, and therefore the operation step of adding the reaction stop solution can be omitted. Since the rate of decrease of NADH can be measured with high sensitivity, the amount of sample can be reduced.

このような知見から本発明は構成されているが、本発明
による生体液中の無機リンの定量方法は次のように要約
できる。まず、生体液試料をPKによる酵素反応系とLDH
による酵素反応系からなる第1試薬に混和して反応さ
せ、次にポリヌクレオチドホスフォリラーゼによる酵素
反応系からなる第2試薬を加えて反応させて紫外部域波
長での吸光度変化量を測定する。このとき、生体液試料
の代わりに既知濃度の無機リンを含む標準液を試料とし
て同様に測定しておき、これと比較することによって生
体液中の無機リンが定量できる。なお、この測定に際し
ては精製水を試料として測定したものをブランクとす
る。
Although the present invention is constituted from such findings, the method for quantifying inorganic phosphorus in a biological fluid according to the present invention can be summarized as follows. First, a biological fluid sample is used for the enzymatic reaction system with PK and LDH.
Is mixed with the first reagent consisting of the enzyme reaction system to react, and then the second reagent consisting of the enzyme reaction system consisting of polynucleotide phosphorylase is added and reacted to measure the amount of change in absorbance at ultraviolet wavelengths. . At this time, instead of the biological fluid sample, a standard solution containing a known concentration of inorganic phosphorus is similarly measured as a sample, and the inorganic phosphorus in the biological fluid can be quantified by comparing with this. In addition, in this measurement, what was measured using purified water as a sample is used as a blank.

第1試薬においてPKは0.05〜500U/ml、好ましくは0.2〜
15U/mlの量で、LDHは0.05〜50U/ml、好ましくは0.2〜20
U/mlで配合される。第1試薬には、この外PEP、NADH、
無機塩(たとえば、マグネシウム塩、カリウム塩など)
を配合してもよく、さらに緩衝剤等が配合される。マグ
ネシウム塩としては、たとえば塩化マグネシウムなど
が、カリウム塩としては、たとえば塩化カリウムなどが
例示される。マグネシウム塩は通常0.2〜50mM、好まし
くは1〜10mM配合することが、カリウム塩は通常2〜50
0mM、好ましくは10〜100mM配合することが好ましい。緩
衝剤の例としては、たとえばトリエタノールアミン緩衝
液が例示され、その配合量は通常10〜500mM、好ましく
は50〜200mMであり、またpH7.4〜7.8であることが好ま
しい。
PK in the first reagent is 0.05 to 500 U / ml, preferably 0.2 to
LDH in an amount of 15 U / ml is 0.05-50 U / ml, preferably 0.2-20
It is blended in U / ml. The first reagent contains PEP, NADH,
Inorganic salts (eg magnesium salt, potassium salt, etc.)
May be blended, and a buffering agent and the like are further blended. Examples of magnesium salts include magnesium chloride, and examples of potassium salts include potassium chloride. The magnesium salt is usually 0.2 to 50 mM, preferably 1 to 10 mM, and the potassium salt is usually 2 to 50 mM.
It is preferable to add 0 mM, preferably 10 to 100 mM. An example of the buffering agent is, for example, a triethanolamine buffer solution, and the compounding amount thereof is usually 10 to 500 mM, preferably 50 to 200 mM, and pH 7.4 to 7.8 is preferable.

また、第2試薬はポリヌクレオチドホスフォリラーゼを
含み、さらに無機塩(たとえば、マグネシウム塩、カリ
ウム塩など)を配合してもよく、また緩衝剤等が配合さ
れる。マグネシウム塩としては、たとえば塩化マグネシ
ウムなどが、カリウム塩としては、たとえば塩化カリウ
ムなどが例示される。マグネシウム塩は通常0.2〜50m
M、好ましくは1〜10mM配合することが、カリウム塩は
通常〜500mM、好ましくは10〜100mM配合することが好ま
しい。緩衝液としては、第1試薬において例示したと同
様のものが例示され、その配合量は通常10〜500mM、好
ましくは50〜200mMである。ポリヌクレオチドホスフォ
リラーゼは、酵素の由来によって適宜その分量を選択す
ればよく、たとえばM.lysodeiktiscus由来の場合は通常
2〜500U/ml、特に10〜200U/ml、大腸菌(E.coli)由来
の場合は通常0.5〜200U/ml、特に2〜50U/mlを含有させ
ることが好ましい。
The second reagent contains a polynucleotide phosphorylase, and may further contain an inorganic salt (eg, magnesium salt, potassium salt, etc.), or a buffering agent or the like. Examples of magnesium salts include magnesium chloride, and examples of potassium salts include potassium chloride. Magnesium salt is usually 0.2-50m
It is preferable to add M, preferably 1 to 10 mM, and the potassium salt is usually to add 500 mM, preferably 10 to 100 mM. As the buffer solution, those similar to those exemplified in the first reagent are exemplified, and the blending amount thereof is usually 10 to 500 mM, preferably 50 to 200 mM. The amount of the polynucleotide phosphorylase may be appropriately selected depending on the origin of the enzyme. For example, in the case of M.lysodeiktiscus, it is usually 2 to 500 U / ml, particularly 10 to 200 U / ml, and E. coli-derived. In this case, it is usually preferable to contain 0.5 to 200 U / ml, particularly 2 to 50 U / ml.

なお、初反応の基質であるポリアデニル酸は第1試薬又
は第2試薬のいずれに含有させても良い。これは第2試
薬を第1試薬に混合させたときに本発明に用いた共役酵
素反応が進行するためである。たとえば第1試薬に含有
させた場合のポリアデニル酸の分量の例としては0.2〜1
0mMであり、第2試薬に含有させた場合のポリアデニル
酸の分量の例としては0.2〜10mMである。
The substrate for the initial reaction, polyadenylic acid, may be contained in either the first reagent or the second reagent. This is because the coupling enzyme reaction used in the present invention proceeds when the second reagent is mixed with the first reagent. For example, when the amount of polyadenylic acid contained in the first reagent is 0.2 to 1
An example of the amount of polyadenylic acid when it is contained in the second reagent is 0.2 to 10 mM.

上記第1試薬および第2試薬における各成分の配合量な
いしは配合割合は上記の量に限定されるものではなく、
上記の配合量は好ましい態様を例示したに過ぎないもの
であり、上記の量比の範囲外でもよく、また上記量の割
合で各成分の量比を増減してもよいことはいうまでもな
い。
The blending amount or blending ratio of each component in the first reagent and the second reagent is not limited to the above amount,
It is needless to say that the above blending amount is merely an example of a preferred embodiment, and may be out of the above range of the amount ratio, or the amount ratio of each component may be increased or decreased in the ratio of the above amount. .

本発明の方法は臨床検査で実施する場合、使用条件によ
り操作方法が異なるが、その例をあげると、まず試料を
0.1〜0.02mlとり、それにPKによる酵素反応系とLDHによ
る酵素反応系からなる第1試薬を2.0〜0.5ml加えて混合
して25〜37℃で2〜10分間反応させ、次にポリヌクレオ
チドホスフォリラーゼによる酵素反応系からなる第2試
薬を0.5〜0.05mlを加えて25〜37℃で加温して反応さ
せ、水を対照に反応後1〜3分後と4〜7分後、波長34
0nmまたは波長340nmを主波長とする2波長での吸光度を
測定し、時間あたりの吸光度変化量を求める。なお、こ
れは吸光度変化量を自動計測してもよい。ここで試料と
しては生体液試料(Sとする)、既知濃度の無機リンを
含む標準液(STとする)、および精製水(Bとする)に
ついてそれぞれ測定し、(S−B)/(ST−B)×(標
準液の濃度)によって生体液中の無機リンの濃度を算出
する。なお、これはBを対照にSとSTを自動計測しても
良い。このようにして本発明の方法により生体液中の無
機リンが定量できる。
When the method of the present invention is carried out in a clinical test, the operating method differs depending on the use conditions.
Take 0.1-0.02 ml, add 2.0-0.5 ml of the first reagent consisting of PK-based enzyme reaction system and LDH-based enzyme reaction system, mix and react at 25-37 ° C for 2-10 minutes, then Add 0.5 to 0.05 ml of the second reagent consisting of the enzyme reaction system with folylase and heat it at 25 to 37 ° C to react it. After 1 to 3 minutes and 4 to 7 minutes after reacting with water, the wavelength 34
The absorbance at two wavelengths having a main wavelength of 0 nm or a wavelength of 340 nm is measured, and the change in absorbance over time is obtained. Note that this may automatically measure the amount of change in absorbance. Here, as a sample, a biological fluid sample (referred to as S), a standard solution containing inorganic phosphorus with a known concentration (referred to as ST), and purified water (referred to as B) were measured, respectively, and (SB) / (ST -The concentration of inorganic phosphorus in the biological fluid is calculated by (B) x (concentration of standard solution). In this case, S and ST may be automatically measured against B. In this way, inorganic phosphorus in biological fluid can be quantified by the method of the present invention.

本発明は、また生体液中の無機リンを定量する試薬に関
する。本発明による試薬は前記第1試薬および第2試薬
よりなるものであり、通常は当該2種の試薬に、さらに
既知濃度の無機リンを含む標準液と、精度管理用のコン
トロール等を加えキットとすることが好ましい。
The present invention also relates to reagents for quantifying inorganic phosphorus in biological fluids. The reagent according to the present invention is composed of the first reagent and the second reagent, and is usually a kit in which a standard solution containing a known concentration of inorganic phosphorus and a control for quality control are added to the two reagents. Preferably.

〔発明の作用・効果〕[Operation and effect of invention]

本発明である生体液中の無機リンの定量方法は、前述の
ような共役酵素反応に起こりがちな種々の問題が解消さ
れ、生体液という特殊な試薬に対して優れた効果を発揮
するものである。さらにこの方法は操作ステップが少な
く反応時間も短いため近年臨床検査で増加している自動
分析装置へも応用することができるという利点がある。
The method for quantifying inorganic phosphorus in a biological fluid according to the present invention eliminates various problems that are likely to occur in the above-described coupled enzyme reaction, and exhibits excellent effects on a special reagent called biological fluid. is there. Furthermore, this method has an advantage that it can be applied to an automatic analyzer, which has been increasing in clinical examinations in recent years, because it has a small number of operation steps and a short reaction time.

また、本発明である生体液中の無機リンの定量用試薬
は、それ自体測定に影響を与えるような不純物を含むこ
とがなく、本発明の方法を実施するための具象物として
日常の臨床検査で使用できるものである。さらにこの試
薬は使用者の保存を考えると、たとえば凍結乾燥のよう
に長期間保存できるような形態にすることが可能なた
め、この試薬を製品として供給する道も開かれている。
Further, the reagent for quantifying inorganic phosphorus in a biological fluid according to the present invention does not contain impurities that itself influence the measurement, and is used as a concrete object for carrying out the method of the present invention in daily clinical tests. It can be used in. Further, in consideration of preservation by the user, this reagent can be made into a form that can be preserved for a long period of time, such as freeze-drying, so that a way to supply this reagent as a product is also open.

このように本発明は臨床検査の分野において有用なもの
として供することができる。
Thus, the present invention can be provided as being useful in the field of clinical examination.

〔実施例〕〔Example〕

以下に本発明の実施例を示すが、本発明はこれらに限定
されるものではない。
Examples of the present invention will be shown below, but the present invention is not limited thereto.

(実施例1) 本発明による2種類の試薬は次の組成により調製した。Example 1 Two types of reagents according to the present invention were prepared according to the following compositions.

第1試薬 PK 0.9 U/ml LDH 8.0 U/ml PEP 0.87mM NADH 0.21mM ポリアデニル酸 1.2 mM 塩化マグネシウム 5.0 mM 塩化カリウム 50 mM トリエタノールアミン緩衝液 100 mM(pH
7.6) 第2試薬 ポリヌクレオチドホスフォリラーゼ M.lysodeiktiscus(由来) 50 U/ml 塩化マグネシウム 5.0mM 塩化カリウム 50 mM トリエタノールアミン緩衝液 100 mM(pH7.
6) (実施例2) 実施例1で調製した試薬を用いて次のような操作方法に
より生体液中の無機リンを定量した。
First reagent PK 0.9 U / ml LDH 8.0 U / ml PEP 0.87 mM NADH 0.21 mM Polyadenylic acid 1.2 mM Magnesium chloride 5.0 mM Potassium chloride 50 mM Triethanolamine buffer 100 mM (pH
7.6) Second reagent Polynucleotide phosphorylase M.lysodeiktiscus (derived) 50 U / ml Magnesium chloride 5.0 mM Potassium chloride 50 mM Triethanolamine buffer 100 mM (pH 7.
6) (Example 2) Using the reagents prepared in Example 1, the inorganic phosphorus in the biological fluid was quantified by the following operating method.

試料として血清50μをとり第1試薬0.9mlを加えて37
℃で5分間反応させ、次に第2試薬0.1mlを加え37℃で
反応させた。そして水を対照に3分後と5分後について
波長340nmでの吸光度を測定し2分間あたりの吸光度変
化量を求めた(これをSとする)。更に試料として5.0m
g/dlの無機リンを含む標準液、及び精製水について同様
に2分間あたりの吸光度変化量を求めた(それぞれST,B
とする)。
Take 50 μm of serum as a sample and add 0.9 ml of the first reagent 37
The reaction was carried out at ℃ for 5 minutes, then 0.1 ml of the second reagent was added and the reaction was carried out at 37 ℃. Then, the absorbance at a wavelength of 340 nm was measured after 3 minutes and 5 minutes with water as a control, and the amount of change in absorbance per 2 minutes was obtained (this is designated as S). 5.0m as a sample
Similarly, the amount of change in absorbance per 2 minutes was calculated for the standard solution containing g / dl of inorganic phosphorus and purified water (ST and B, respectively).
And).

血清の無機リンの濃度は下式により算出した。The concentration of inorganic phosphorus in serum was calculated by the following formula.

無機リン(mg/dl)=(S−B)/(ST−B)×5.0 このとき血清を1/5段階毎に希釈し、それぞれの希釈率
に対する無機リンの濃度をプロットしたところ第1図に
示すように血清の希釈率に対し無機リンの濃度が比例し
ていることがわかった。
Inorganic phosphorus (mg / dl) = (SB) / (ST-B) × 5.0 At this time, the serum was diluted in 1/5 steps, and the concentration of inorganic phosphorus was plotted against each dilution rate. As shown in, it was found that the concentration of inorganic phosphorus was proportional to the dilution ratio of serum.

(実施例3) 実施例1の第2試薬中のポリヌクレオチドホスフォリラ
ーゼを大腸菌由来のものに代え、その分量を10U/mlとし
たところ、実施例2と同様に生体液中の無機リンが定量
できることがわかった。またこのとき標準液の濃度をか
えて検量線を作成したところ、第2図に示すような良好
な直線性が得られた。
(Example 3) When the polynucleotide phosphorylase in the second reagent of Example 1 was replaced with that derived from Escherichia coli and the amount thereof was set to 10 U / ml, inorganic phosphorus in the biological fluid was changed as in Example 2. It turned out that it can be quantified. At this time, when a calibration curve was prepared by changing the concentration of the standard solution, good linearity as shown in FIG. 2 was obtained.

(実施例4) 本発明の方法によるポリヌクレオチドホスフォリラーゼ
の無機リンに対する反応性をみるため、Km値を測定し
た。測定条件は試薬組成が実施例1の第1試薬と第2試
薬を実施例2の比率で混和したものと同様である。その
結果Km=1.3×10-3Mが得られた。このKm値は本発明を実
施する上で低濃度の無機リンを含む試料に対しても反応
性が優れていることを示している。
(Example 4) In order to examine the reactivity of the polynucleotide phosphorylase by the method of the present invention with inorganic phosphorus, the Km value was measured. The measurement conditions are the same as those of the reagent composition in which the first reagent and the second reagent of Example 1 were mixed in the ratio of Example 2. As a result, Km = 1.3 × 10 −3 M was obtained. This Km value shows that the reactivity is excellent even for the sample containing a low concentration of inorganic phosphorus in carrying out the present invention.

【図面の簡単な説明】[Brief description of drawings]

第1図は実施例2で得られた希釈した血清の無機リンの
濃度を表したもので、縦軸に無機リンの濃度を、横軸に
血清の希釈率をとっている。 第2図は実施例3で得られた検量線を表したもので、縦
軸に2分間あたりの吸光度変化量を、横軸に標準液の濃
度をとっている。
FIG. 1 shows the concentration of inorganic phosphorus in the diluted serum obtained in Example 2, in which the vertical axis represents the concentration of inorganic phosphorus and the horizontal axis represents the serum dilution rate. FIG. 2 shows the calibration curve obtained in Example 3, in which the vertical axis represents the amount of change in absorbance per 2 minutes and the horizontal axis represents the concentration of the standard solution.

Claims (2)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】生体液試料をピルビン酸キナーゼによる酵
素反応系と乳酸脱水素酵素による酵素反応系からなる試
薬と反応させ、次にポリヌクレオチドホスフォリラーゼ
による酵素反応系からなる試薬と反応させることを特徴
とする生体液中の無機リンの定量方法。
1. A biological fluid sample is reacted with a reagent consisting of an enzyme reaction system based on pyruvate kinase and an enzyme reaction system based on lactate dehydrogenase, and then reacted with a reagent composed of an enzyme reaction system based on polynucleotide phosphorylase. A method for quantifying inorganic phosphorus in a biological fluid, which comprises:
【請求項2】ピルビン酸キナーゼによる酵素反応系と乳
酸脱水素酵素による酵素反応系からなる試薬、およびポ
リヌクレオチドホスフォリラーゼによる酵素反応系から
なる試薬よりなることを特徴とする生体液中の無機リン
の定量用試薬。
2. An inorganic substance in a biological fluid, which comprises a reagent comprising an enzyme reaction system based on pyruvate kinase and an enzyme reaction system based on lactate dehydrogenase, and a reagent composed of an enzyme reaction system based on polynucleotide phosphorylase. Reagent for quantitative determination of phosphorus.
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