JPH0761950B2 - Antitumor agent - Google Patents

Antitumor agent

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JPH0761950B2
JPH0761950B2 JP61248122A JP24812286A JPH0761950B2 JP H0761950 B2 JPH0761950 B2 JP H0761950B2 JP 61248122 A JP61248122 A JP 61248122A JP 24812286 A JP24812286 A JP 24812286A JP H0761950 B2 JPH0761950 B2 JP H0761950B2
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cells
mycoplasma
solution
units
ifnα
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賀津子 宇野
繁 村松
喬郎 小西
茂忠 飛鷹
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Shionogi and Co Ltd
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Shionogi and Co Ltd
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Description

【発明の詳細な説明】 産業上の利用分野 本発明はマイコプラズマを有効成分とする抗腫瘍剤、お
よび、更にインターフェロンを含有する抗腫瘍剤に関す
る。
TECHNICAL FIELD The present invention relates to an antitumor agent containing mycoplasma as an active ingredient, and an antitumor agent further containing interferon.

先行技術 種々の細菌体および菌体成分が免疫賦活物質として働
き、抗腫瘍能を有することは公知の事実で、近年これを
用いて腫瘍の治療を行なおうとする研究がなされてい
る。例えば、BCG(Bacillus Calmette Guerin)菌やコ
リネバクテリウム・バルバム(Corynebacterium parvu
m)、ストレプトコッカス・ヘモリティクス(Streptoco
ccus hemolyticus)等が代表的なものである。一方、マ
イコプラズマの研究の歴史は比較的新しく、近年それら
の分類学的、生態学的あるいは病原学的研究が進み、動
物対マイコプラズマの関係が次第に解明されつつある。
マイコプラズマは一般的に宿主特異性が強く、種を越え
て感染することはほとんどない。さらに、多くのマイコ
プラズマは病原性が比較的弱く、通常正常菌叢として健
康動物から分離されることが多く、その毒性も比較的弱
いと考えられる。またリンパ球に対してマイトジェニッ
クに働くという報告もなされており(Y.Mizushima et a
l,Infect.Immun.Vol.tg,636−645,1985)宿主の免疫機
能へ影響を与えることが予想される。
2. Description of the Related Art It is a known fact that various bacterial cells and bacterial cell components act as immunostimulators and have antitumor activity, and in recent years, studies have been conducted to treat tumors using them. For example, BCG (Bacillus Calmette Guerin) and Corynebacterium parvu
m), Streptococcus haemolytics (Streptoco
ccus hemolyticus) is a typical one. On the other hand, the history of mycoplasma research is relatively new, and in recent years, taxonomic, ecological or pathological studies have progressed, and the relationship between animals and mycoplasma has been gradually elucidated.
Mycoplasma are generally highly host specific and rarely infect across species. Furthermore, many mycoplasmas have relatively weak pathogenicity, are often isolated from healthy animals as normal flora, and their toxicity is considered to be relatively weak. It has also been reported that it acts mitogenically on lymphocytes (Y. Mizushima et a
I, Infect. Immun. Vol. tg, 636-645, 1985) It is expected to affect the immune function of the host.

インターフェロン(IFN)は、リンパ球や線維芽細胞な
ど種々の細胞が産生する生理活性蛋白質で、抗ウイルス
作用や抗癌作用などを示す。IFNにはα、β、γのサブ
タイプがあり、αは多少のアミノ酸配列の違い、それに
伴う抗ウイルス作用の違いにより、さらに少なくとも14
種以上に分類される。これらIFNは、近年の遺伝子組換
え技術や大量細胞培養技術によって工業的に生産され、
抗ウイルス剤や抗癌剤として臨床上で応用されつつあ
る。またこれらの天然のIFNのみならず、遺伝子組換え
技術によって、上記のIFNのアミノ酸配列を一部置換し
たり、各IFNの配列を組み合わせるなどして、新規な人
工的IFNも生産されている。
Interferon (IFN) is a physiologically active protein produced by various cells such as lymphocytes and fibroblasts, and exhibits antiviral action and anticancer action. There are α, β, and γ subtypes of IFN, and α is at least 14 due to a slight difference in amino acid sequence and accompanying difference in antiviral action.
Classified into more than species. These IFNs are industrially produced by recent gene recombination technology and mass cell culture technology,
It is being clinically applied as an antiviral agent and an anticancer agent. In addition to these natural IFNs, novel artificial IFNs have also been produced by partially substituting the amino acid sequences of the above IFNs or combining the sequences of each IFN by gene recombination techniques.

発明が解決しようとする問題点 上記の様にマイコプラズマが免疫賦活作用を有すること
は良く知られていたが、癌治療に有効であるとの知見は
全く得られていなかった。
Problems to be Solved by the Invention Although it has been well known that mycoplasma has an immunostimulating action as described above, no finding has been obtained that it is effective for cancer treatment.

また、IFNとその他の抗癌剤、例えばTNF、IL2、ダカル
バジン、ACNC(商品名ニドラン)等との併用に関しても
様々な試みが成されているが、マイコプラズマ菌体処理
物との併用に関する知見は全く無く、新規であり、IFN
単独投与の場合より、腫瘍治療に非常に有効な剤形を与
える。
In addition, various attempts have been made to combine IFN with other anticancer agents such as TNF, IL2, dacarbazine, ACNC (trade name Nidoran), etc., but there are no findings regarding the combination with treated Mycoplasma cells. , New and IFN
It provides a dosage form that is much more effective in treating tumors than when administered alone.

問題点を解決するための手段 本発明はマイコプラズマ菌体処理物を有効成分とする抗
腫瘍剤、さらにIFNを含む抗腫瘍剤を提供する。
Means for Solving the Problems The present invention provides an antitumor agent containing a treated product of Mycoplasma cells as an active ingredient, and an antitumor agent containing IFN.

本発明に用い得るマイコプラズマの種としては、ガリセ
プチクム(gallisepticum)、ハイオライニス(hyorhin
is)、オラーレ(orale)、ファーメンタンス(ferment
ans)、ホミニス(hominis)、ミコイデス(mycoide
s)、ファリンジス(pharyngis)、ニューモニエ(pneu
moniae)、サリバリウム(salivarium)などが挙げられ
るが、これらに限定されるものではなく、免疫賦活活性
をを有するマイコプラズマであれば全て用いることがで
き、これらの種を組み合わせて用いてもよい。
The species of mycoplasma that can be used in the present invention include gallisepticum and hyorhinis.
is, orale, fermentance
ans), hominis, mycoide
s), Pharringis (paryngis), Pneumoniae (pneu)
moniae), salivarium, etc., but not limited to these, and any mycoplasmas having immunostimulatory activity can be used, and these species may be used in combination.

上記のようなマイコプラズマは常法に従って培養でき
る。すなわち、一般に用いられる倍地、例えば、PPLO培
地、Freyの培地、Hayflick培地、ハンクス液、Chanock
らの液体培地、ハート・インフュージョン培地などに、
常法どおり牛、馬、豚、ウサギなどの血清や酵母エキス
などを加えた液体培地で、約30〜39℃、好ましくは37℃
で2〜10日間静置培養すればよい。場合によっては、培
養器にゴム栓をしたり5〜10%炭酸ガス雰囲気下で培養
するのが好ましいこともある。培養された菌体は、遠心
分離などによって分離し、生理食塩水などで洗浄し、滅
菌する。得られたマイコプラズマ菌体処理物は、所望に
より濃縮または凍結乾燥しても良い。該菌体処理物は、
冷凍保存しておくことが望ましい。
The mycoplasma as described above can be cultured according to a conventional method. That is, commonly used medium such as PPLO medium, Frey's medium, Hayflick medium, Hank's solution, Chanock
Such as liquid medium and heart infusion medium,
Liquid medium containing serum, yeast extract, etc. of cattle, horses, pigs, rabbits, etc. as usual, about 30-39 ° C, preferably 37 ° C.
Static culture for 2 to 10 days. In some cases, it may be preferable to put a rubber stopper on the incubator or to perform the culture in a 5 to 10% carbon dioxide gas atmosphere. The cultured cells are separated by centrifugation or the like, washed with physiological saline or the like, and sterilized. The obtained mycoplasma cell-treated product may be concentrated or lyophilized, if desired. The treated cells are
It is desirable to keep it frozen.

これ以外にも、マイコプラズマに感染した細胞を培養
し、その培養上清からマイコプラズマを調整してもよ
い。
Alternatively, cells infected with mycoplasma may be cultured and mycoplasma may be prepared from the culture supernatant.

得られたマイコプラズマ菌体処理物は、単独で投与して
も著しい抗癌作用を有するが、さらにIFNを含有させて
投与すれば、さらに優れた抗癌作用を示す。本発明で用
いることができるIFNは特定のIFNに限らず、IFNαおよ
びそのサブタイプ、IFNβ、IFNγなど天然または人工の
IFN全て使用可能である。ただし、IFNが種特異性を有す
る場合には、投与の対象に応じたIFNを使用すべきであ
る。各種のインターフェロンは既に市販されており(例
えば、LEE Biomolecular Research Laboratories,Incな
どより)、これらの市販品を用いることができる。これ
らのIFNは単独でも組み合わせても使用できる。
The obtained treated product of mycoplasma cells has a remarkable anti-cancer effect even when it is administered alone, but when it is further administered with IFN, it exhibits a more excellent anti-cancer effect. The IFN that can be used in the present invention is not limited to a specific IFN, and it may be natural or artificial such as IFNα and its subtypes, IFNβ and IFNγ.
All IFNs can be used. However, if the IFN is species-specific, it should be used according to the subject of administration. Various interferons are already commercially available (for example, from LEE Biomolecular Research Laboratories, Inc.), and these commercially available products can be used. These IFNs can be used alone or in combination.

得られたマイコプラズマ菌体処理物は、一般に注射剤に
使用される生理食塩水、注射用蒸留水などで希釈または
溶解して、ヒトおよび動物の静脈、筋肉、腹腔または皮
下に投与し得る。ヒトに投与する場合は、症状、年齢、
性別等によって異なるが、通常約108〜1011個/Kg/日の
投与で効果があると考えられる。また、該製剤中にIFN
を含有させ、約10〜1000万単位/日となるよう投与すれ
ば、さらなる抗癌作用が期待できる。該注射剤には、通
常製薬上許容される防腐剤、安定化剤、保存剤を含有し
ていてもよく、また所望によりプロカイン等の局麻剤を
含んでいても良い。
The obtained treated product of mycoplasma cells may be diluted or dissolved with physiological saline, which is generally used for injections, distilled water for injection, etc., and then administered to humans and animals intravenously, intramuscularly, intraperitoneally or subcutaneously. When administered to humans, symptoms, age,
Although it depends on the sex and the like, it is usually considered that the administration of about 10 8 to 10 11 cells / Kg / day is effective. In addition, IFN
Further anti-cancer effect can be expected if the drug is added to the drug and administered at about 10 to 10 million units / day. The injection may contain a pharmaceutically acceptable preservative, stabilizer, preservative, and optionally a local anesthetic such as procaine.

発明の作用 本発明の抗腫瘍剤は、マイコプラズマさらにIFNからな
り、マイコプラズマのマクロファージ等に対する免疫賦
活作用さらにIFNの抗腫瘍作用との相乗作用によって、
優れた延命効果および癌細胞増殖抑制効果を有する。
Effect of the Invention The antitumor agent of the present invention comprises mycoplasma and IFN, and an immunostimulatory effect of mycoplasma on macrophages and the like, and a synergistic effect with the antitumor effect of IFN,
It has an excellent life prolonging effect and a cancer cell growth suppressing effect.

実施例 実施例1 癌細胞(MethA−R1株)の調製 MethA−R1細胞はBalb/cマウス由来のメチルコランスレ
ン誘発繊維肉腫で、マウス・インターフェロンα、βお
よびγに対する抵抗性株として宇野らにより株化された
ものである(K.Uno et al,1985,Cancer Res.45:1320−1
327)。
Examples Example 1 Preparation of Cancer Cells (MethA-R1 Strain) MethA-R1 cells are methylcholanthrene-induced fibrosarcoma derived from Balb / c mice, and were used by Uno et al. As a resistant strain to mouse interferons α, β and γ. It is a strain (K. Uno et al, 1985, Cancer Res. 45: 1320-1).
327).

2×106個のMethA−R1細胞をBalb/cマウスの腹腔内に移
植し、10日後に腹腔より回収する。回収は、注射筒で10
mlのハンクス液(Hanks、日水)をマウス腹腔内に注入
して、腹腔内にたまった液を再び注射筒で採取すること
により行なった。回収した液は、50mlの大遠沈管(Falc
on)に入れて、1000rpm、10分間遠心後、上清を捨て、
再びハンクス液に懸濁した。この細胞浮遊液を実験に使
用した。
2 × 10 6 MethA-R1 cells were intraperitoneally transplanted into Balb / c mice, and 10 days later, they were collected from the peritoneal cavity. 10 syringes to collect
It was performed by injecting ml of Hank's solution (Hanks, Nissui) into the abdominal cavity of the mouse and recollecting the fluid accumulated in the abdominal cavity with a syringe. Collect the collected solution in a 50 ml centrifuge tube (Falc
on), centrifuge at 1000 rpm for 10 minutes, discard the supernatant,
It was suspended again in Hanks' solution. This cell suspension was used for the experiment.

マイコプラズマの調整(その1) マイコプラズマ・ガリセプティクム(Mycoplasma galli
septicum、S−6株;以下MGと略記)は、以下の方法で
培養し、調整した。ニワトリPPLO培地(栄研製:牛心臓
浸出液100g、ペプトン10g、塩化ナトリウム5g、ブドウ
糖1g、酢酸タリウム0.25gを水1Lに溶解し、pH7.8とした
もの)に馬血清(濾過滅菌を行なってMGフリーとしたも
の)を12%の割合に添加した培地(以下、馬血清添加培
地とする)で、37℃下、2日間培養した菌液(50ml、菌
数約108CFU/ml、CFU=Colony Forming Unit)を元培養
菌液とした。本菌液をさらに約2Lの馬血清添加培地(3L
容の3角フラスコ使用)に接種し、37℃で7日間静置培
養を行なった。この培養液を8000rpm、30分間遠心して
上清を捨てた後、沈殿した菌体を生理食塩水で懸濁し
て、16000rpm、20分間遠心を行なった。この操作を3回
繰り返して菌体を洗浄し、最後に100倍に濃縮した菌液
約18ml(2×1010個/ml)を得た。該菌液は120℃20分間
滅菌して、−20℃で保存する。
Adjustment of Mycoplasma (Part 1) Mycoplasma gallicepticum
septicum, S-6 strain; hereinafter abbreviated as MG) was cultured and adjusted by the following method. Chicken serum PPLO medium (manufactured by Eiken: 100 g of bovine heart exudate, 10 g of peptone, 5 g of sodium chloride, 1 g of glucose, 0.25 g of thallium acetate dissolved in 1 L of water and adjusted to pH 7.8) with horse serum (sterilized by filtration to MG) Bacterial fluid (50 ml, number of bacteria approx. 10 8 CFU / ml, CFU =), which was cultivated at 37 ° C for 2 days, in a medium (hereinafter referred to as horse serum supplemented medium) supplemented with 12% Colony Forming Unit) was used as the original culture solution. This bacterial solution was further added to approximately 2 L of horse serum-containing medium (3 L
(A triangular flask was used), and static culture was carried out at 37 ° C for 7 days. This culture solution was centrifuged at 8,000 rpm for 30 minutes, the supernatant was discarded, and the precipitated bacterial cells were suspended in physiological saline, followed by centrifugation at 16000 rpm for 20 minutes. This operation was repeated 3 times to wash the cells, and finally about 18 ml (2 × 10 10 cells / ml) of a 100 times concentrated bacterial solution was obtained. The bacterial solution is sterilized at 120 ° C for 20 minutes and stored at -20 ° C.

マイコプラズマの調整(その2) 上記の方法で作成し、100倍に濃縮した菌液を以下の手
順で凍結乾燥した。即ち、MG菌液をガラス瓶(直径3c
m、高さ6cm)に3ml充填した後、凍結乾燥(真空凍結乾
燥機、Freezvac−4c−100S型、東西通商株式会社製を使
用)を行なった。MG菌が入ったサンプル瓶をドライアイ
ス・メタノールで予備凍結(−50℃、約20分)を行なっ
た後、凍結乾燥機に装着し、真空度×10-2torrで約6時
間運転し、サンプルが粉状となったことを確認して、凍
結乾燥を終了した。乾燥済みのサンプルは0.2mg当り109
個のMG菌を含んでいた。
Preparation of Mycoplasma (Part 2) The bacterial solution prepared by the above method and concentrated 100 times was lyophilized by the following procedure. That is, the MG bacterial solution was put in a glass bottle (diameter 3c
After filling 3 ml in m, height 6 cm), freeze-drying (vacuum freeze-dryer, Freezvac-4c-100S type, manufactured by Tozai Tsusho Co., Ltd.) was performed. After pre-freezing the sample bottle containing MG bacteria with dry ice / methanol (-50 ° C, about 20 minutes), attach it to the freeze dryer and operate it for about 6 hours at a vacuum degree of 10 -2 torr. After confirming that the sample became powdery, freeze drying was completed. 10 9 per 0.2 mg of dried sample
It contained one MG strain.

インターフェロンの調整 マウスに特異性を有するIFNα(180万単位含有)を生理
食塩水に溶解し9mlとし、IFNα溶液(20万単位/ml)を
調整した。
Preparation of interferon IFNα (containing 1.8 million units) having mouse specificity was dissolved in physiological saline to make 9 ml, and an IFNα solution (200,000 units / ml) was prepared.

マウス遺伝子組換えインターフェロンγ(以下、IFNγ
と略記)は、渡部らによって確立された、ConAで誘導さ
れたT細胞の産生株B5株(Y.Watanabe et al,Character
ization of mouse IFNγ form a cloned T cell line,i
n the Biology of the Interferon System,1983(eds.
E.DcMaeyer and H.Schellekens),p.143〜)からクロー
ニングされたmRNAを用いて得られたものである。1mlの
元の標品には1mgのIFNγ、100μgのマウス血清アルブ
ミンを含んでいる。この抗ウイルス活性は1×107単位
である。該IFNγ標品0.1mlを生理食塩水に溶解し10mlと
して、IFNγ溶液(10万単位/ml)を調整した。
Mouse recombinant interferon γ (hereinafter, IFNγ
Is a ConA-induced T cell producing strain B5 strain (Y. Watanabe et al, Character) established by Watanabe et al.
ization of mouse IFNγ form a cloned T cell line, i
n the Biology of the Interferon System, 1983 (eds.
E.DcMaeyer and H.Schellekens), p.143-). 1 ml of the original preparation contains 1 mg IFNγ, 100 μg mouse serum albumin. This antiviral activity is 1 × 10 7 units. An IFNγ solution (100,000 units / ml) was prepared by dissolving 0.1 ml of the IFNγ preparation in physiological saline to make 10 ml.

実験方法と結果 上記の方法で回収したMethA−R1細胞を、4×106個/ml
となるように希釈し、23G針付きの2.5ml注射筒を用いて
Balb/cマウスに1匹当り2×106個を腹腔内に移植す
る。前述のMG菌(調整その1)又はその凍結乾燥品(調
整その2)を1匹当り109個を、あるいは2万単位のIFN
γまたは5万単位のIFNαを、それぞれ単独に投与する
か、あるいはMG菌とインターフェロンを混合して投与す
る。
Experimental method and results MethA-R1 cells collected by the above method were 4 × 10 6 cells / ml.
Diluted with a 2.5 ml syringe with a 23G needle
Balb / c mice are intraperitoneally implanted with 2 × 10 6 mice per mouse. 10 9 of the above-mentioned MG bacterium (Adjustment 1) or its freeze-dried product (Adjustment 2), or 20,000 units of IFN
γ or 50,000 units of IFNα is administered alone, or MG bacteria and interferon are mixed and administered.

・MG溶液の調整(その1) 調整その1で得られた菌液(2×1010個/ml)2mlを生理
食塩水で希釈して10ml(4×109個/ml)とする。該MG溶
液を等量の生理食塩水と混合した(1×109個/0.5m
l)。
-Preparation of MG solution (1) Dilute 2 ml of the bacterial solution (2 x 10 10 cells / ml) obtained in Preparation 1 with physiological saline to make 10 ml (4 x 10 9 cells / ml). The MG solution was mixed with an equal volume of physiological saline (1 × 10 9 pieces / 0.5 m
l).

・MG溶液の調整(その2) 調整その2で得られた菌凍結乾燥品(5×109個/mg)8m
gを生理食塩水で希釈して10ml(4×109個/ml)とす
る。該MG溶液を等量の生理食塩水と混合した(1×109/
0.5ml)。
・ Preparation of MG solution (Part 2) 8 m of freeze-dried product of bacteria (5 × 10 9 cells / mg) prepared in Preparation part 2
Dilute g with physiological saline to make 10 ml (4 × 10 9 cells / ml). The MG solution was mixed with an equal volume of saline (1 x 10 9 /
0.5 ml).

・IFN含有MG溶液の調整 上記のIFNの調整で得られたIFNα溶液(20万単位/ml)
またはIFNγ溶液(10万単位/ml)を等量の上記MG溶液
(4×109個/ml)と混合し、IFNα(5万単位/0.5ml)
またはIFNγ(2.5万単位/0.5ml)とMG(1×109個/0.5m
l)を含む溶液を調整した。
・ Preparation of MG solution containing IFN IFNα solution (200,000 units / ml) obtained by the above preparation of IFN
Or IFNγ solution (100,000 units / ml) is mixed with an equal volume of the above MG solution (4 × 10 9 pieces / ml), and IFNα (50,000 units / 0.5 ml)
Or IFNγ (25,000 units / 0.5ml) and MG (1 × 10 9 pieces / 0.5m)
The solution containing l) was prepared.

・IFN溶液の調整 上記のIFNの調整で得られたIFNα溶液(20万単位/ml)
またはIFNγ溶液(10万単位/ml)を等量の生理食塩水と
混合し、IFNα(5万単位/0.5ml)またはIFNγ(2.5万
単位/0.5ml)を含む溶液を調整した。
・ Preparation of IFN solution IFNα solution (200,000 units / ml) obtained by the above-mentioned preparation of IFN
Alternatively, an IFNγ solution (100,000 units / ml) was mixed with an equal amount of physiological saline to prepare a solution containing IFNα (50,000 units / 0.5 ml) or IFNγ (25,000 units / 0.5 ml).

投与は、3日後により隔日毎に、上記のMG及び/又はIF
NγあるいはIFNαを懸濁した液を1匹当り0.5ml、23G針
付きの2.5ml注射筒を用いてマウスの腹腔内に注入し
た。
Administration was carried out every 3 days after 3 days, with the above MG and / or IF.
A solution in which Nγ or IFNα was suspended was injected into the abdominal cavity of mice using 0.5 ml per mouse and a 2.5 ml syringe with a 23G needle.

Balb/cマウスは各群6〜15匹とした。10回目のMG菌又は
インターフェロンの投与を終わった後は、そのまま飼育
を続け、生残状況を観察した。
Balb / c mice were 6 to 15 in each group. After the 10th administration of MG bacterium or interferon was completed, the animals were kept in the same state and the survival condition was observed.

試験終了時(35日)までの生残率と共に、平均生存日数
を計算により求めた。平均生存日数は各個体毎の生存日
数の逆数の算術平均値と偏差値を計算して、さらにその
逆数とした値である。これらの結果を表1に示す。
The average survival time was calculated along with the survival rate until the end of the test (35 days). The average number of days to live is a value obtained by calculating the arithmetic mean value and the deviation value of the reciprocal of the number of days to live of each individual, and then calculating the reciprocal thereof. The results are shown in Table 1.

IFNαの5万単位の投与では充分な効果が得られなかっ
たが、MG109個の投与で、大幅な延命効果が認められ
た。MG菌109個とIFNαの5万単位の同時投与により、MG
の単独投与よりも、さらに著しい延命効果が認められ
た。また、IFNγの2.5万単位投与で、ある程度の延命効
果があり、MGの109個の組合わせで、全例治癒という、
優れた抗腫瘍効果が得られた。
A sufficient effect was not obtained by the administration of 50,000 units of IFNα, but a significant life-prolonging effect was observed with the administration of 9 MG10 9 units. By simultaneous administration of 10 9 MG bacteria and 50,000 units of IFNα,
An even more significant life-prolonging effect was observed as compared to the single administration of. Also, IFNγ administration of 25,000 units has a life-prolonging effect to some extent, and a combination of 10 9 MG's can cure all cases.
An excellent antitumor effect was obtained.

以上の結果より、MG単独投与でも延命効果があり、IFN
α又はIFNγとの組合わせによって、さらに著しい抗腫
瘍効果を示すことが証明された。
From the above results, even if MG alone is administered, there is a life-prolonging effect, and IFN
It was proved that the combination with α or IFNγ showed a more significant antitumor effect.

実施例2 癌細胞は実施例1と同じ方法で調整した。マイコプラズ
マは、実施例1に記載した調整(その1)で作成したMG
菌の他に、以下に記載する方法で作成したものを使用し
た。
Example 2 Cancer cells were prepared in the same manner as in Example 1. Mycoplasma was prepared by the adjustment (No. 1) described in Example 1.
In addition to the bacteria, those produced by the method described below were used.

マイコプラズマの調整(その3) マイコプラズマ・ハイオライニス(Mycoplasma hyorhin
is、BTS−7株、以下MHと略記)をBHL培地(組成は以下
に記載)に約10%の割合(使用した保存菌液はBHL培地
で継代し、−70℃で保存していたもの)に加え、37℃で
3日間培養後、さらに培地で2倍に希釈して培養し菌液
20mlを得た。この菌液を、2000mlのBHL培地(3L容の3
角フラスコを使用)に加え、ゴム栓をして37℃でマグネ
チック・スターラーで撹拌しながら培養した。培養3日
後、8000rpmで30分間冷却遠心して菌体を集め、滅菌PBS
(NaH2PO4・H2O 0.23g、Na2HPO4・12H2O 1.19g、NaCl
8.5g、蒸留水1000ml、pH6.8)で再浮游して15000rpmで2
0分間遠心を行なった。この操作を3回繰り返して洗浄
した後、120℃で20分間蒸気滅菌処理して、−20℃で保
存した。該菌液の濃度は2×1010個/mlである。
Adjustment of Mycoplasma (3) Mycoplasma hyorhin
About 10% of is, BTS-7 strain, abbreviated as MH hereinafter to BHL medium (composition described below) was used (passage of the preserved bacterial solution used in BHL medium was preserved at -70 ° C) Cell culture solution, after culturing at 37 ° C for 3 days, further diluting the culture medium twice and culturing
20 ml was obtained. 2000 ml of BHL medium (3 L volume of 3
(A square flask was used), a rubber stopper was added, and the mixture was incubated at 37 ° C. with stirring with a magnetic stirrer. After 3 days of culturing, the cells were collected by centrifuging at 8000 rpm for 30 minutes while cooling and sterilized with PBS.
(NaH 2 PO 4・ H 2 O 0.23g, Na 2 HPO 4・ 12H 2 O 1.19g, NaCl
Re-float with 8.5 g, distilled water 1000 ml, pH 6.8) 2 at 15000 rpm
Centrifugation was performed for 0 minutes. This operation was repeated 3 times for washing, then, steam sterilization treatment was carried out at 120 ° C for 20 minutes and storage at -20 ° C. The concentration of the bacterial solution is 2 × 10 10 cells / ml.

BHL培地 BHL基礎培地a) 750ml 豚血清b) 100ml 馬血清b) 100ml 25%イースト抽出液c) 50ml 5%炭酸ナトリウムでpH7.8に修正 a)BHL基礎培地(115℃、15分オートクレーブで滅菌) ブルセラ・ブロス(Gibco) 11.6g ラクトアルブミン水解物 4.0g 塩類液(×10) 100 ml 蒸留水 1400 ml b)血清(濾過滅菌済みのもの) 豚血清(Flow Lab.) 馬血清(阪大微研) c)イースト抽出液 ドライ・イースト(ニッケン) 500g 蒸留水 1500ml 沸騰水中20分間加熱後、7000〜8000rpmで20分間遠心
し、その上清を4%水酸化ナトリウムでpH7.6とし、濾
過滅菌する # 塩類液(×10) NaCl 80.0g KCl 4.0g Na2HPO4・12H2O 1.2g KH2PO4 0.6g グルコース 20.0g 0.5%フェノール・レッド40.0ml蒸留水で1000mlとし、1
15℃で10分間オートクレーブで滅菌 マイコプラズマの調整(その4) MHあるいはマイコプラズマ・オラーレ(Mycoplasma ora
le)に感染したMethA−R1細胞2.5×105個を10mlの培養
液[RPMI−1640(日水)に10%牛胎児血清(ハイクロー
レ社)を加え、さらに炭酸水素ナトリウムを1Lにつき1.
3g、HEPESを1.2g加えたもの]に懸濁し、プラスチック
シャーレ(直径10cm)に入れ、これを20枚調整する。3
日間培養後、培養液を細胞と共に回収し、1000rpmで5
分間遠心して細胞を除く。さらに、その上清を30000rp
m、30分間超遠心する。上清にはマイコプラズマ由来成
分が、沈渣にはマイコプラズマ菌体が含まれる。沈渣は
さらに生理食塩水で3回洗った後、懸濁し菌体数を数え
て120℃10分間蒸気滅菌をして、−70℃で保存した。該
菌液は1010個/mlの菌体を含む。
BHL medium BHL basal medium a) 750 ml pig serum b) 100 ml horse serum b) 100 ml 25% yeast extract c) 50 ml 5% sodium carbonate pH 7.8 corrected a) BHL basal medium (115 ℃, sterilized by autoclave for 15 minutes) ) Brucella broth (Gibco) 11.6g Lactalbumin hydrolyzate 4.0g Salt solution (× 10) # 100 ml Distilled water 1400 ml b) Serum (filter sterilized) Porcine serum (Flow Lab.) Horse serum (Osaka Univ.) (Ciken) c) Yeast extract liquid Dry yeast (Nicken) 500g Distilled water 1500ml After heating in boiling water for 20 minutes, centrifuge at 7,000-8000 rpm for 20 minutes, and the supernatant was adjusted to pH 7.6 with 4% sodium hydroxide and filtered. sterilization is # a 1000ml with saline (× 10) NaCl 80.0g KCl 4.0g Na 2 HPO 4 · 12H 2 O 1.2g KH 2 PO 4 0.6g glucose 20.0 g 0.5% phenol red 40.0ml distilled water, 1
Sterilization by autoclave for 10 minutes at 15 ℃ Preparation of Mycoplasma (Part 4) MH or Mycoplasma olere
leth) -infected MethA-R1 cells 2.5 × 10 5 cells were added to 10 ml of culture medium [RPMI-1640 (Nissui), 10% fetal bovine serum (Hyklorele) was added, and sodium bicarbonate was added to 1 L per 1 L.
3g, 1.2g of HEPES was added], and put in a plastic Petri dish (10cm in diameter) to prepare 20 pieces. Three
After culturing for a day, the culture solution was collected together with the cells, and the culture was performed at 1000 rpm for
Centrifuge for minutes to remove cells. Further, add the supernatant to 30000rp
Ultracentrifuge for 30 minutes at m. Mycoplasma-derived components are contained in the supernatant, and mycoplasma cells are contained in the sediment. The precipitate was further washed with physiological saline three times, suspended, counted, sterilized by steam at 120 ° C for 10 minutes, and stored at -70 ° C. The bacterial solution contains 10 10 cells / ml.

実験方法と結果 4×106個/mlとなるように希釈したMethA−R1細胞を23G
針付注射筒で、Balb/cマウスの腹腔内に、1匹当り2×
106個を移植する。3日後より隔日毎に、MG[調整(そ
の1)]2×108個、あるいはMH[調整(その3)また
は(その4)]2×108個を、23G針付注射筒にて0.5ml
ずつ腹腔内投与し、8日後に腹腔内の全MethA−R1細胞
数を計数した。MGまたはMHの調整は実施例1と同様に生
理食塩水で希釈して調整した。
Experimental method and results 23G of MethA-R1 cells diluted to 4 × 10 6 cells / ml
2x per mouse in the abdominal cavity of Balb / c mice with a syringe with needle
Transplant 10 6 . Every 3 days after every 2 days, MG [adjustment (1)] 2 x 10 8 pieces or MH [adjustment (3) or (4)] 2 x 10 8 pieces in 0.5 g with a syringe with a 23G needle ml
Each was intraperitoneally administered, and 8 days later, the total number of MethA-R1 cells in the abdominal cavity was counted. The MG or MH was adjusted by diluting with physiological saline as in Example 1.

MethA−R1細胞の計数 脛動脈を切って放血したマウスの腹腔に、20G針付注射
筒を用いてハンクス液10mlを注入した後、再び同じ注射
筒を用いて可能な限り液を回収し、トーマ血球計算板を
用いて1ml当りの癌細胞数を計数し、ハンクス液10ml中
のマウス腹腔内の全細胞数を算出した。腹水がたまって
いて回収された液が9mlを越えるときには、回収された
量に1mlをプラスし、それにml当りの癌細胞数をかけて
全細胞数とした。結果を表2に示す。8日目の時点では
MG、MHの種に関係なく、また、MHの調整法に関係なく、
マイコプラズマの投与によって有意にMethA−R1細胞の
増殖が抑制された。
Counting MethA-R1 cells After injecting 10 ml of Hank's solution using a syringe with a 20G needle into the abdominal cavity of a mouse exsanguinated from the tibial artery, collect the solution as much as possible using the same syringe again, and use the The number of cancer cells per 1 ml was counted using a hemocytometer, and the total number of cells in mouse abdominal cavity in 10 ml of Hanks' solution was calculated. When ascites accumulated and the collected liquid exceeded 9 ml, 1 ml was added to the collected amount, and the number of cancer cells per ml was added to obtain the total cell number. The results are shown in Table 2. As of the 8th day
Regardless of the type of MG, MH, or the adjustment method of MH,
Administration of mycoplasma significantly suppressed the growth of MethA-R1 cells.

実施例3 癌細胞(MethA−R1)とIFNαの調整法は実施例1と同様
である。マイコプラズマは実施例2に示したマイコプラ
ズマの調製法(その4)により調整したMHとM.oraleを
用いた。
Example 3 The method for adjusting cancer cells (MethA-R1) and IFNα is the same as in Example 1. As the mycoplasma, MH and M. orale prepared by the preparation method (4) of the mycoplasma shown in Example 2 were used.

実験方法と結果 MethA−R1細胞をハンクス液で4×107個/mlに希釈懸濁
し、Balb/cマウスの後足蹠に25μl(106個の細胞)ず
つ、100μlのマイクロシリンジを用いて注射する。3
日後から隔日毎に癌細胞を移植した足蹠に、MH2×10
8個、M.orale2×108個、IFNα1万単位を単独あるいは
組み合わせて27Gマント針付の1ml注射筒で注入した。注
入液量は50μlである。足蹠の腫張は、ノギス(ダイア
ルキャリパー)で測定した足蹠の厚さで示した。計測は
隔日毎に注射を行なう前に行なった。その結果を第1図
に示す。ここに示したデータは6匹分の足蹠厚の平均値
である。実際のMethA−R1細胞の増殖による固型癌の大
きさは、足蹠厚の約3乗の値に匹敵する。
Experimental Method and Results MethA-R1 cells were diluted and suspended in Hanks' solution at 4 × 10 7 cells / ml, and 25 μl (10 6 cells) each was put into the hind footpad of Balb / c mice using 100 μl microsyringe. Give an injection. Three
MH2 × 10 on the foot pads transplanted with cancer cells every other day
Eight , M. orale 2 × 10 8 and 10,000 units of IFNα were used alone or in combination in a 1 ml syringe with a 27G cloak needle. The injection volume is 50 μl. Swelling of the footpad was indicated by the thickness of the footpad measured with a caliper (dial caliper). Measurements were made every other day before injection. The results are shown in FIG. The data shown here are the average values of the footpad thickness of 6 animals. The size of the solid cancer due to the actual proliferation of MethA-R1 cells is comparable to the value of the third power of the footpad thickness.

固型癌においても、MH、M.orale共に単独で有効であっ
た。IFNα 1万単位の単独投与でも多少の効果がみられ
た。IFNαとMHまたはM.oraleと組み合わせて投与するこ
とにより、顕著に癌細胞の増殖が抑制された。
MH and M. orale were also effective alone in solid cancer. Some effects were observed even when 10,000 units of IFNα were administered alone. Administration of IFNα in combination with MH or M. orale markedly suppressed the growth of cancer cells.

マイコプラズマ・ガリセプチカム(MG)とIFNα併用に
よる安全性 安全性試験は、マウスの尾静脈内接種法を用いて実施し
た。試験方法は、4週令のdds系マウス(雌、体重18〜2
0g)の尾静脈に、MGとIFNαを下記の配合比率で混合し
たものを、1匹当り0.4ml接種した(1群5匹使用)。
接種に用いた注射筒は、1mlの注射器にルアー針1/5静脈
針をセットしたものを使用した。MGとIFNαの配合比率
は次の通りである。
Safety with Mycoplasma gallisepticum (MG) in combination with IFNα Safety studies were conducted using the tail vein inoculation method in mice. The test method was 4 weeks old dds mice (female, body weight 18-2
Into the tail vein of 0 g), 0.4 ml per animal was inoculated with a mixture of MG and IFNα in the following mixing ratio (5 animals per group were used).
The syringe used for inoculation was a 1 ml syringe with a luer needle 1/5 vein needle set. The mixing ratio of MG and IFNα is as follows.

1.MG 0.2mg+IFNα 5万単位/0.4ml/マウス 2.MG 2mg+IFNα 50万単位/0.4ml/マウス 3.MG 10mg+IFNα 250万単位/0.4ml/マウス 4.滅菌生理食塩水0.4ml/マウス MG菌は、凍結乾燥(マイコプラズマの調整(その2)、
109個/0.2mgを含む)したサンプルを滅菌生理食塩水に
溶解して、必要濃度となるように調整して用いた。
1.MG 0.2mg + IFNα 50,000 units / 0.4ml / mouse 2.MG 2mg + IFNα 500,000 units / 0.4ml / mouse 3.MG 10mg + IFNα 2.5 million units / 0.4ml / mouse 4. Sterile saline 0.4ml / mouse , Freeze-drying (adjustment of mycoplasma (2),
Samples (containing 10 9 cells / 0.2 mg) were dissolved in sterilized physiological saline and adjusted to a required concentration for use.

結果:各群は、接種後12日目まで死亡するマウス及び副
作用(食欲不振、立毛等)が認められなかった。
Results: In each group, mice dying until the 12th day after the inoculation and side effects (anorexia, piloerection, etc.) were not observed.

発明の効果 本発明の抗腫瘍剤は、マウスを用いた実験において、著
しい延命効果および癌細胞抑制作用を示し、ヒトおよび
動物に対して有効な抗腫瘍剤である。
EFFECTS OF THE INVENTION The antitumor agent of the present invention shows a remarkable life-prolonging effect and cancer cell inhibitory effect in experiments using mice, and is an effective antitumor agent for humans and animals.

【図面の簡単な説明】[Brief description of drawings]

第1図はMethA−R1細胞を移植したマウス足蹠に、IFNお
よび/またはマイコプラズマ菌体処理物を投与した際
の、足蹠厚の変化を示す。
FIG. 1 shows changes in footpad thickness when IFN and / or mycoplasma cells-treated products were administered to mouse footpads transplanted with MethA-R1 cells.

Claims (4)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】マイコプラズマ菌体処理物を有効成分とす
る抗腫瘍剤。
1. An antitumor agent comprising a treated product of mycoplasma cells as an active ingredient.
【請求項2】該マイコプラズマが、マイコプラズマ・ガ
リセプティクム、マイコプラズマ・ハイオライニスおよ
び/またはマイコプラズマ・オラーレである特許請求の
範囲第1項に記載の抗腫瘍剤。
2. The antitumor agent according to claim 1, wherein the mycoplasma is Mycoplasma gallisepticum, Mycoplasma hyorhinis and / or Mycoplasma olere.
【請求項3】さらにインターフェロンを有効成分として
含む特許請求の範囲第1項に記載の抗腫瘍剤。
3. The antitumor agent according to claim 1, further comprising interferon as an active ingredient.
【請求項4】該インターフェロンがインターフェロンα
および/またはインターフェロンγである特許請求の範
囲第3項に記載の抗腫瘍剤。
4. The interferon is interferon α
And / or interferon γ, The antitumor agent according to claim 3.
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