JPH0754323B2 - Immunoassays and immunoassay reagents - Google Patents

Immunoassays and immunoassay reagents

Info

Publication number
JPH0754323B2
JPH0754323B2 JP63290977A JP29097788A JPH0754323B2 JP H0754323 B2 JPH0754323 B2 JP H0754323B2 JP 63290977 A JP63290977 A JP 63290977A JP 29097788 A JP29097788 A JP 29097788A JP H0754323 B2 JPH0754323 B2 JP H0754323B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
antibody
measured
substance
monoclonal antibody
labeled
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Lifetime
Application number
JP63290977A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JPH03179264A (en
Inventor
一登 坂田
順一郎 菊竹
正和 杉浦
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Sanyo Chemical Industries Ltd
Original Assignee
Sanyo Chemical Industries Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Priority claimed from JP26093088A external-priority patent/JPH02107967A/en
Application filed by Sanyo Chemical Industries Ltd filed Critical Sanyo Chemical Industries Ltd
Priority to JP63290977A priority Critical patent/JPH0754323B2/en
Priority to EP19890311660 priority patent/EP0368674A3/en
Publication of JPH03179264A publication Critical patent/JPH03179264A/en
Publication of JPH0754323B2 publication Critical patent/JPH0754323B2/en
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Description

【発明の詳細な説明】 [産業上の利用分野] 本発明は、被測定物質の測定法および免疫測定試薬に関
する。さらに詳しくは、被検試料液中の被測定物質を被
測定物質と特異的に結合するモノクローナル抗体などの
抗体およびこの抗体のFc部分を認識する抗体を使用した
測定法により測定する方法および免疫測定試薬に関し、
種々の身体的疾患に伴う、例えば血清もしくは他の体液
中の被測定物質の検出および/または濃度を測定するこ
とができる方法および測定試薬に関するものである。
TECHNICAL FIELD The present invention relates to a method for measuring a substance to be measured and an immunoassay reagent. More specifically, a method and an immunoassay in which the substance to be measured in the test sample solution is measured by an assay method using an antibody such as a monoclonal antibody that specifically binds to the substance to be measured and an antibody that recognizes the Fc portion of the antibody. Regarding reagents,
The present invention relates to a method and a measuring reagent that can detect and / or measure the concentration of a substance to be measured in serum or other body fluids associated with various physical diseases.

[従来の技術] 従来、モノクローナル抗体のような被測定物質と特異的
に結合する抗体を使用した免疫測定法としては、不溶性
固体に結合したモノクローナル抗体、抗原性物質、標識
モノクローナル抗体を結合させて得た免疫複合体におけ
る標識物質量を測定する方法などが知られている(たと
えば、特開昭57−86051号公報、特開昭57−118159号公
報、特開昭57−79455号公報)。
[Prior Art] Conventionally, as an immunoassay using an antibody that specifically binds to a substance to be measured such as a monoclonal antibody, a monoclonal antibody bound to an insoluble solid, an antigenic substance, and a labeled monoclonal antibody are bound. Methods for measuring the amount of labeling substance in the obtained immune complex are known (for example, JP-A-57-86051, JP-A-57-118159, and JP-A-57-79455).

[発明が解決しようとする課題] しかしながら、従来の測定法は、被測定物質と抗体との
親和力が弱い場合、十分な感度が得られないなどの問題
点がある。
[Problems to be Solved by the Invention] However, the conventional measurement methods have a problem that sufficient sensitivity cannot be obtained when the affinity between the substance to be measured and the antibody is weak.

[課題を解決するための手段] 本発明者らは、上記問題点に鑑みて、モノクローナル抗
体のような被測定物質と特異的に結合する抗体の親和力
にかかわらず、十分な感度を持つ測定法を得るべく鋭意
検討した結果、本発明に到達した。
[Means for Solving the Problems] In view of the above problems, the present inventors have proposed a measurement method with sufficient sensitivity regardless of the affinity of an antibody that specifically binds to a substance to be measured such as a monoclonal antibody. As a result of earnest studies to achieve the above, the present invention has been achieved.

すなわち、本発明は、 被測定物質、被測定物質と特異的に結合する抗体(第
一抗体)、不溶性固体上の第一抗体のFc部分を切断除去
した抗体(第二抗体)、および第一抗体のFc部分を認識
する標識抗体(標識抗体)を結合させて得た免疫複合体
における標識物質量を測定することにより、該被測定物
質を測定することを特徴とする被測定物質の免疫測定
法; 被測定抗原性物質、被測定抗原性物質を認識するモノ
クローナル抗体(第一抗体)、不溶性固体上の第一抗体
のFc部分を切断除去したモノクローナル抗体(第二抗
体)、および第一抗体のFc部分を認識する標識抗体(第
三抗体)を結合させて得た免疫複合体における標識物質
量を測定することにより、該被測定抗原性物質を測定す
ることを特徴とする抗原性物質の免疫測定法; 被測定物質と特異的に結合する抗体(第一抗体)、不
溶性固体上の第一抗体のFc部分を切断除去した抗体(第
二抗体)、および第一抗体のFc部分を認識する標識抗体
(標識抗体)を必須構成成分とすることを特徴とする免
疫測定試薬;並びに、 被測定抗原性物質を認識するモノクローナル抗体(第
一抗体)、不溶性固体上の第一抗体のFc部分を切断除去
したモノクローナル抗体(第二抗体)、および第一抗体
のFc部分を認識する標識抗体(第三抗体)を必須構成成
分とすることを特徴とする免疫測定試薬である。
That is, the present invention provides a substance to be measured, an antibody that specifically binds to the substance to be measured (first antibody), an antibody obtained by cleaving off the Fc portion of the first antibody on an insoluble solid (second antibody), and a first antibody. Immunoassay for a substance to be measured, characterized in that the substance to be measured is measured by measuring the amount of the substance to be labeled in an immune complex obtained by binding a labeled antibody (labeled antibody) that recognizes the Fc portion of the antibody. Method: antigenic substance to be measured, monoclonal antibody (first antibody) that recognizes the antigenic substance to be measured, monoclonal antibody obtained by cleaving off the Fc portion of the first antibody on the insoluble solid (second antibody), and first antibody Of the antigenic substance characterized by measuring the antigenic substance to be measured by measuring the amount of the labeled substance in the immune complex obtained by binding the labeled antibody (third antibody) that recognizes the Fc portion of Immunoassay method: DUT An antibody that specifically binds to (first antibody), an antibody obtained by cleaving off the Fc portion of the first antibody on an insoluble solid (second antibody), and a labeled antibody that recognizes the Fc portion of the first antibody (labeled antibody) An immunoassay reagent characterized by including as an essential component; a monoclonal antibody that recognizes an antigenic substance to be measured (first antibody); a monoclonal antibody obtained by cleaving off the Fc portion of the first antibody on an insoluble solid ( The second antibody) and a labeled antibody (third antibody) that recognizes the Fc portion of the first antibody are essential constituents.

本発明における被測定抗原性物質または被測定物質とし
ては、ホルモン(インシュリン、HCG−β、成長ホルモ
ン、TSH、サイロキシン、トリヨードサイロニン、ガス
トリン、グルカゴン、ソマトスタチンなど)、酵素(エ
ラスターゼ、アミラーゼ、プロテアーゼ、リパーゼ、リ
ボヌクレアーゼなど)、血清タンパク質(IgG、IgA、Ig
M、IgE、IgD、糖タンパク質、β−マイクログロブリ
ン、TBG、糖脂質など)、腫瘍関連抗原(CEA、α−フェ
トプロテイン、フェリチン、POA、CA19−9、CA125な
ど)、DNA結合性タンパク質因子、サイトカイン(イン
ターフェロン、インターロイキン1、インターロイキン
2など)または種々の細菌、ウイルス、原虫(真菌、連
鎖球菌、肝炎ウイルス、ヘルペスウイルス、エイズウイ
ルス、トキソプラズマ原虫、マラリア原虫、赤痢アメー
バーなど)などがあげられる。これらのうち、好ましく
は、特に高感度の測定系が要求されるホルモンおよび腫
瘍関連抗原である。
As the antigenic substance or substance to be measured in the present invention, hormones (insulin, HCG-β, growth hormone, TSH, thyroxine, triiodothyronine, gastrin, glucagon, somatostatin, etc.), enzymes (elastase, amylase, protease) , Lipase, ribonuclease, etc.), serum proteins (IgG, IgA, Ig
M, IgE, IgD, glycoprotein, β 2 -microglobulin, TBG, glycolipid, etc.), tumor-associated antigen (CEA, α-fetoprotein, ferritin, POA, CA19-9, CA125, etc.), DNA binding protein factor, Cytokines (interferon, interleukin 1, interleukin 2, etc.) or various bacteria, viruses, protozoa (fungus, streptococcus, hepatitis virus, herpes virus, AIDS virus, Toxoplasma gondii, malaria parasite, dysentery amoeba etc.), etc. . Of these, hormones and tumor-associated antigens, which require particularly sensitive measurement systems, are preferred.

第一抗体としては、被測定物質と特異的に結合するモノ
クローナル抗体、ポリクロナール抗体を用いることがで
きる。このうち好ましくは、特異性に優れているモノク
ローナル抗体である。モノクローナル抗体は、ミエロー
マ細胞を文献に記載の方法[たとえば、ジー・ケラー、
シー・ミルスタイン;ネイチャー(G.Kohler,C.Milstei
n;Natur)Vol.256,PP.495(1975)]によって融合させ
た細胞由来の抗体であり、同一クローンの抗体産生細胞
から産生された抗体であるので、その抗体は完全に同一
であり、被測定抗原性物質に対する特異性も完全に同一
であるという特徴をもつことが知られている。
As the first antibody, a monoclonal antibody or a polyclonal antibody that specifically binds to the substance to be measured can be used. Of these, a monoclonal antibody having excellent specificity is preferable. Monoclonal antibodies can be prepared by using methods described in the literature for myeloma cells [eg, Gie Keller,
Sea Milstein; Nature (G.Kohler, C.Miltei
n; Natur) Vol.256, PP.495 (1975)], which is a cell-derived antibody, and is an antibody produced from antibody-producing cells of the same clone, the antibody is completely the same, It is known that the specificity for the antigenic substance to be measured is also completely the same.

第二抗体としては、第一抗体をプロテアーゼ(ペプシ
ン、パパイン、トリプシン、プラスミンなど)を用いる
方法[たとえば続生化学実験講座5免疫生化学研究法P8
9〜P101]によりFc部分を切断した後、ゲルろ過クロマ
トグラフィー法あるいはプロテインA−アフィニティー
クロマトグラフィー[たとえば続生化学講座5免疫生化
学研究法P100]により該Fc部分を除去した抗体を用いる
ことができる。
As the second antibody, a method of using a protease (pepsin, papain, trypsin, plasmin, etc.) for the first antibody [eg, Second Biochemistry Experimental Course 5 Immunobiochemistry Research Method P8
9-P101], and then an antibody from which the Fc portion has been removed by gel filtration chromatography or protein A-affinity chromatography [eg, Zokusei Kagaku Kogaku 5 Immunobiochemistry Research Method P100] is used. it can.

不溶性固体としては、ケイ酸質無機担体[ガラス(ポー
ラス、ツヤ消しガラスなど)、シリカゲル、ベントナイ
トなど]、磁性体、および有機担体(プラスチック、デ
キストラン、ロ紙など)があげられる。これらのうち、
好ましくは、簡便かつ安定して抗体が結合でき、さら
に、取扱いが容易なガラス(ガラスビーズおよびガラス
試験管)、およびプラスチック(プラスチックチューブ
およびプラスチックトレイ)である。
Examples of insoluble solids include siliceous inorganic carriers [glass (porous, matte glass, etc.), silica gel, bentonite, etc.], magnetic materials, and organic carriers (plastic, dextran, paper, etc.). Of these,
Preferred are glass (glass beads and glass test tubes) and plastic (plastic tubes and plastic trays), which are simple and stable to which antibodies can be bound, and which are easy to handle.

不溶性固体上に第二抗体を結合させる方法としては、ガ
ラスと抗体を化学的に結合させる(シランカップリング
剤および必要により架橋剤をもちいて)、または物理吸
着させる方法[たとえば、米国特許第4280992号明細書
および同第3652761号明細書記載の方法]あるいは、プ
ラスチックに抗体を物理吸着させる方法[たとえば、イ
ー・エングバール、ジェー・ジョンソン、ピー・パール
マン;バイオキム.バイオフィス.アクタ(E.Engvall,
J.Jons−son,P.Parlmann;Biochim.Biopys.Acta),251
(1971)427〜434記載の方法]がある。
As a method for binding the second antibody onto the insoluble solid, a glass and the antibody are chemically bound (using a silane coupling agent and optionally a cross-linking agent) or physically adsorbed [eg, US Pat. No. 4,280,992]. Or the method described in Japanese Patent No. 3652761] or a method in which an antibody is physically adsorbed to a plastic [eg, E. Engval, J. Johnson, P. Perlman; Biokim. Buy office. Actor (E. Engvall,
J. Jons-son, P. Parlmann; Biochim. Biopys. Acta), 251.
(1971) 427 to 434].

標識抗体又は第三抗体に用いる抗体としては、第一抗体
のFc部分を特異的に認識する抗体[たとえば、第一抗体
がマウスIgGモノクローナル抗体で切断除去部分がFc部
分なら抗マウスIgG Fc抗体、あるいは第一結合タンパク
質がマウスIgAモノクローナル抗体で切断除去部分がFc
部分なら抗マウスIgA Fc抗体など]があげられる。
As the antibody used for the labeled antibody or the third antibody, an antibody that specifically recognizes the Fc portion of the first antibody [eg, an anti-mouse IgG Fc antibody if the first antibody is a mouse IgG monoclonal antibody and the cleavage removal portion is the Fc portion, Alternatively, the first binding protein is a mouse IgA monoclonal antibody and the cleavage-elimination part is Fc.
If it is a part, anti-mouse IgA Fc antibody etc.] can be mentioned.

標識抗体又は第三抗体に標識する標識物質としては、酵
素(ペルオキシダーゼ、アルカリフォスファターゼ、お
よびβ−ガラクトシダーゼなど)、放射線同位元素
3H、125Iなど)、蛍光物質(フルオレセインイソチオ
シアネート、ローダミンなど)、化学発光物質(イソル
ミノール誘導体、N−メチルアクリジウム誘導体など)
などがあげられる。好ましくは、抗体標識が容易で、か
つ高い感度が得られるペルオキシダーゼおよび125Iであ
る。
As the labeling substance for labeling the labeled antibody or the third antibody, enzymes (peroxidase, alkaline phosphatase, β-galactosidase, etc.), radioisotopes ( 3 H, 125 I, etc.), fluorescent substances (fluorescein isothiocyanate, rhodamine, etc.) , Chemiluminescent substances (isoluminol derivatives, N-methylacridinium derivatives, etc.)
And so on. Preferred are peroxidase and 125 I, which are easily labeled with an antibody and have high sensitivity.

請求項1記載の免疫複合体は、(1)不溶性固体上の第
二抗体と被結合物質を結合させたのち、洗浄し、この被
測定物質と第一抗体を結合させたのち、再び洗浄し、さ
らにこの第一抗体と標識抗体を結合させる方法、(2)
第一抗体、被測定物質、不溶性固体上の第二抗体を同時
に結合させたのち、洗浄し、さらにこの第一抗体と標識
抗体を結合させる方法、(3)第一抗体、被測定物質、
不溶性固体上の第二抗体、標識抗体を同時に結合させる
方法、および、(4)不溶性固体上の第二抗体と被測定
物質を結合させたのち、洗浄し、この被測定物質と第一
抗体、標識抗体を同時に結合させる方法によって得るこ
とができる。たとえば、(1)第二抗体を結合させた不
溶性固体、および被測定物質を緩衝液中でインキュベー
ション(たとえば、5〜50℃、5分〜2日)し結合させ
たのち、不溶性固体を洗浄する。次に第一抗体を含む緩
衝液中に不溶性固体を移し、インキュベーション(たと
えば、5〜50℃、5分〜2日)し結合させたのち、再び
不溶性固体を洗浄する。さらに標識抗体を含む緩衝液中
に不溶性固体を移し、インキュベーション(たとえば、
5〜50℃、5分〜2日)し結合させることにより免疫複
合体を得る。(2)第一抗体、被測定物質、第二抗体を
結合させた不溶性固体を緩衝液中でインキュベート(た
とえば、5〜50℃、5分〜2日)し結合させたのち、不
溶性固体を洗浄する。次に、標識抗体を含む緩衝液中に
不溶性固体を移し、インキュベート(たとえば、5〜50
℃、5分〜2日)し結合させることにより免疫複合体を
得る。(3)第一抗体、被測定物質、第二抗体を結合さ
せた不溶性固体、標識抗体を緩衝溶液中でインキュベー
ト(たとえば、5〜50℃、5分〜2日)し結合させるこ
とにより免疫複合体を得る。または、(4)第二抗体を
結合させた不溶性固体、および被測定物質を緩衝液中で
インキュベーション(たとえば、5〜50℃、5分〜2
日)し結合させたのち、不溶性固体を洗浄する。次に第
一抗体、標識抗体を含む緩衝液中に不溶性固体を移し、
インキュベーション(たとえば、5〜50℃、5分〜2
日)し結合させることにより免疫複合体を得ることがで
きる。
The immune complex according to claim 1, wherein (1) the second antibody on the insoluble solid is bound to the substance to be bound, and then washed, and the substance to be measured is bound to the first antibody, and then washed again. And a method of further binding the first antibody and the labeled antibody, (2)
A method of simultaneously binding a first antibody, a substance to be measured, and a second antibody on an insoluble solid, followed by washing, and further binding the first antibody and a labeled antibody, (3) the first antibody, the substance to be measured,
A method of simultaneously binding the second antibody on the insoluble solid and the labeled antibody, and (4) binding the second antibody on the insoluble solid and the substance to be measured, followed by washing, and the substance to be measured and the first antibody, It can be obtained by a method of simultaneously binding labeled antibodies. For example, (1) the insoluble solid bound with the second antibody and the substance to be measured are incubated in a buffer solution (for example, 5 to 50 ° C. for 5 minutes to 2 days) to be bound, and then the insoluble solid is washed. . Next, the insoluble solid is transferred to a buffer solution containing the first antibody, incubated (for example, 5 to 50 ° C., 5 minutes to 2 days) to be bound, and then the insoluble solid is washed again. Further transfer the insoluble solid to a buffer containing labeled antibody and incubate (eg,
An immune complex is obtained by binding at 5 to 50 ° C. for 5 minutes to 2 days). (2) Incubating the insoluble solid to which the first antibody, the substance to be measured, and the second antibody are bound in a buffer solution (for example, 5 to 50 ° C., 5 minutes to 2 days) to allow binding, and then washing the insoluble solid To do. The insoluble solid is then transferred to a buffer containing labeled antibody and incubated (eg, 5-50
The immunocomplex is obtained by binding at 5 ° C for 5 minutes to 2 days). (3) Immune complex by incubating the first antibody, the substance to be measured, the insoluble solid to which the second antibody is bound, and the labeled antibody in a buffer solution (for example, 5 to 50 ° C., 5 minutes to 2 days) and binding Get the body. Alternatively, (4) the insoluble solid bound with the second antibody and the substance to be measured are incubated in a buffer (for example, 5 to 50 ° C., 5 minutes to 2 minutes).
(Day), and after binding, the insoluble solid is washed. Then transfer the insoluble solid to a buffer containing the first antibody and the labeled antibody,
Incubation (eg 5 to 50 ° C, 5 minutes to 2
Then, an immune complex can be obtained by conjugating them.

免疫複合体の標識物質量の測定は、標識物質に応じて酵
素量を酵素活性の測定により測定する方法、放射線同位
元素量を放射線測定装置を用いて測定する方法、蛍光物
質量を蛍光光度計により測定する方法、化学発光物質量
を酵素を用いた化学発光により測定する方法などにより
行うことができる。たとえば、標識物質にペルオキシダ
ーゼを用いた場合、オルト−フェニレンジアミンと過酸
化水素溶液、4−アミノアンチピリンと過酸化水素溶液
などの発色基質溶液中で免疫複合体をインキュベート
(たとえば、5〜50℃、5分〜2日)した後分光光度計
を用いて発色量を測定することによりペルオキシダーゼ
活性を測定する方法などをあげることができる。
The amount of the labeled substance in the immune complex is measured by measuring the enzyme amount by measuring the enzyme activity according to the labeled substance, measuring the radioisotope amount by using a radiation measuring device, and measuring the fluorescent substance amount by a fluorometer. And a method for measuring the amount of chemiluminescent substance by chemiluminescence using an enzyme. For example, when peroxidase is used as the labeling substance, the immune complex is incubated in a chromogenic substrate solution such as ortho-phenylenediamine and hydrogen peroxide solution or 4-aminoantipyrine and hydrogen peroxide solution (for example, 5 to 50 ° C, After 5 minutes to 2 days), the peroxidase activity can be measured by measuring the amount of color development using a spectrophotometer.

請求項3および4記載の免疫測定試薬は必須構成成分以
外に、この免疫測定試薬の使用を便ならしめるために種
々の補助剤を包含させることができる。第一抗体、標識
抗体または第三抗体が固体状である場合にはそれらを溶
解させるための溶解剤、免疫複合体を得る工程で不溶化
固体を洗浄するための洗浄液、標識物質が酵素である場
合にその酵素活性を測定するための基質、および酵素反
応を停止するための反応停止剤などを任意の組合せで包
含させることができる。
In addition to the essential components, the immunoassay reagents according to claims 3 and 4 can include various auxiliary agents for facilitating the use of the immunoassay reagent. When the first antibody, the labeled antibody or the third antibody is in a solid state, a lysing agent for dissolving them, a washing solution for washing the insolubilized solid in the step of obtaining an immune complex, and a case where the labeling substance is an enzyme A substrate for measuring its enzyme activity, a reaction terminator for terminating the enzymatic reaction, and the like can be included in any combination.

[実施例] 以下、実施例および比較例により、本発明を更に説明す
るが、本発明はこれに限定されるものではない。
[Examples] Hereinafter, the present invention will be further described with reference to Examples and Comparative Examples, but the present invention is not limited thereto.

実施例1 CA19−9の測定 a) 抗CA19−9モノクローナル抗体の製造 CA19−9に対するモノクローナル抗体は、文献[ヒラリ
ー・コプロスキー、ゼノン・ステプルスキー、ケネット
・ミッチェル、ミーンハード・ヘリン;ソマチック セ
ル ジェネッティックス(Hilary Koprowski,Zenon Ste
plewski,Kenneth Mitchell,Meenhard Helyn;Somatic Ce
ll Genetics)Vol.5,No6,1979,pp.957−972]に記載の
方法に従って製造した。
Example 1 Measurement of CA19-9 a) Production of anti-CA19-9 monoclonal antibody Monoclonal antibody against CA19-9 was prepared according to the literature [Hillary Koproski, Zenon Stepulski, Kennet Mitchell, Meinhard Herrin; Somatic Cell Jeger. Netix (Hilary Koprowski, Zenon Ste
plewski, Kenneth Mitchell, Meenhard Helyn; Somatic Ce
ll Genetics) Vol. 5, No6, 1979, pp. 957-972].

簡単には、SW1116細胞(大日本製薬社から入手可能)1x
106個をBALB/cマウスの静脈内に投与し免疫した。1ケ
月後に再びSW1116細胞1x106個を投与し3日後に脾臓を
摘出して脾細胞を採取した。RPM1640培地にて洗浄した
後、脾細胞全量を2x107個のマウスミエローマ細胞(P3
−NS1/1−Ag4.1)と混ぜ、37℃の42.5%ポリエチレング
リコール1540および7.5%ジメチルスルフォキシドを含
むRPMI1640倍地1ml中で1分間融合させた。1分後にそ
の細胞懸濁物をRPMI1640倍地5mlで徐々に希釈した。そ
れらの細胞を遠心分離し、洗浄した後、HAT倍地(ヒポ
キサンチン、アミノプテリン、チミジン、10%牛胎児血
清を含むRPMI1640培地)を20mlになるように加えて、96
ウェル マイクロプレートに0.2mlずつ分注して2週間
培養した後、増殖したウェル中の培養上清の抗体活性を
測定した。
Briefly, SW1116 cells (available from Dainippon Pharma) 1x
10 6 cells were intravenously administered to BALB / c mice for immunization. One month later, 1 × 10 6 SW1116 cells were administered again, and three days later, the spleen was extracted and splenocytes were collected. After washing with RPM1640 medium, the total amount of splenocytes was 2x10 7 mouse myeloma cells (P3
-NS1 / 1-Ag4.1) and fused at 37 ° C for 1 minute in 1 ml of RPMI1640 medium containing 42.5% polyethylene glycol 1540 and 7.5% dimethylsulfoxide. After 1 minute, the cell suspension was gradually diluted with 5 ml of RPMI1640 medium. After centrifuging and washing the cells, HAT medium (hypoxanthine, aminopterin, thymidine, RPMI1640 medium containing 10% fetal calf serum) was added to 20 ml, and 96
After 0.2 ml each was dispensed into a well microplate and cultured for 2 weeks, the antibody activity of the culture supernatant in the grown well was measured.

次に、活性の認められたウェルの細胞を限界希釈法を使
用して繰り返してクローン化した。クローン化した細胞
をマウスの腹腔内に投与し腹水腫瘍として成長させた
後、腹水を採取した。この腹水中モノクローナル抗体を
アフィ・ゲル・プロテインA MAPSキット(バイオラッド
社)を用いて精製単離し、以下の検討に用いた。
Then, cells in wells in which activity was observed were repeatedly cloned using the limiting dilution method. The cloned cells were intraperitoneally administered to mice to grow as ascites tumor, and then ascites was collected. This ascitic fluid monoclonal antibody was purified and isolated using an Affi-Gel Protein A MAPS kit (Bio-Rad) and used for the following studies.

b) 抗CA19−9モノクローナル抗体のFc部分の切断除
去 抗CA19−9モノクローナル抗体20mgを0.1M NaCl−0.1M
酢酸ナトリウム緩衝液(pH4.5)で透析した。透析後、
0.4mgペプシン(ベーリンガー マンハイム社)を加
え、37℃で6時間インキュベートした。次に、この溶液
に0.1M水酸化ナトリウム水溶液を加えpHを7に合わせた
のち、ウルトロゲルAcA44(エルケイビー ファルマシ
ア社)カラム(1.5cmx90cm)でゲルろ過を行いFc部分を
含む分画を除いた。さらに、アフィ・ゲル・プロテイン
A MAPSキットを用いて未消化のモノクローナル抗体を
除去し、モノクローナル抗体F(ab′)分画を得た。
b) Cleavage and removal of Fc portion of anti-CA19-9 monoclonal antibody 20 mg of anti-CA19-9 monoclonal antibody was added to 0.1M NaCl-0.1M.
It was dialyzed against a sodium acetate buffer (pH 4.5). After dialysis,
0.4 mg pepsin (Boehringer Mannheim) was added, and the mixture was incubated at 37 ° C for 6 hours. Next, a 0.1 M sodium hydroxide aqueous solution was added to this solution to adjust the pH to 7, and then gel filtration was performed using a Ultrogel AcA44 (LCB Pharmacia) column (1.5 cm × 90 cm) to remove a fraction containing an Fc portion. Further, undigested monoclonal antibody was removed using an Affi-Gel Protein A MAPS kit to obtain a monoclonal antibody F (ab ') 2 fraction.

c) Fc部分を切断除去した抗CA19−9モノクローナル
抗体結合ガラスビーズの作製 米国特許第652761号明細書の方法に従い、ガラスビーズ
の表面にFc部分切断除去抗CA19−9モノクローナル抗体
をコーティングした。
c) Preparation of anti-CA19-9 monoclonal antibody-bound glass beads cleaved and removed from Fc portion According to the method described in US Pat. No. 6,527,61, the surface of glass beads was coated with an anti-CA19-9 monoclonal antibody to which Fc portion was cleaved and removed.

d) ペルオキシダーゼ標識抗マウスIgG Fc抗体の作製 抗マウスIgG Fc抗体(バインディングサイト社)を文献
[エス・ヨシタケ、エム・イマガワ、イー・イシカワ、
エトール;ジェイ.バイオケム(S.YOSHITAKE,M.IMAGAW
A,E.ISHIKAWA,et.al.;J.Biochem.,Vol.92(1982)1413
−1424]に記載の方法にてペルオキシダーゼと結合し、
ペルオキシダーゼ標識抗マウスIgG Fc抗体を得た。この
試薬は通常1%牛血清アルブミン含有緩衝液で10〜5000
倍に希釈して使用した。
d) Preparation of peroxidase-labeled anti-mouse IgG Fc antibody Anti-mouse IgG Fc antibody (Binding Site) was used as a reference [S Yoshitake, M Imagawa, E Ishikawa,
Etol; Jay. Biochem (S.YOSHITAKE, M.IMAGAW
A, E.ISHIKAWA, et.al .; J. Biochem., Vol.92 (1982) 1413
−1424] and binds to peroxidase by the method described in
A peroxidase-labeled anti-mouse IgG Fc antibody was obtained. This reagent is usually 10 to 5000 in a buffer containing 1% bovine serum albumin.
It was used after diluting it twice.

e) CA19−9標準溶液の調整 SW−1116細胞を10%牛胎児血清含有RPMI1640培地で培養
し、培養上清液を採取した。培養上清液中のCA19−9濃
度をイムノクロンCA19−9(富士レビオ社)を用いて測
定し、濃度が30,60,120,240unit/mlなるように1%牛血
清アルブミン含有緩衝液で希釈し標準溶液とした。
e) Preparation of CA19-9 standard solution SW-1116 cells were cultured in RPMI1640 medium containing 10% fetal bovine serum, and the culture supernatant was collected. The concentration of CA19-9 in the culture supernatant was measured using Immunoclon CA19-9 (Fujirebio), and the standard solution was diluted with 1% bovine serum albumin-containing buffer to a concentration of 30,60,120,240 unit / ml. And

f) CA19−9測定試薬の製造 Fc部分切断除去抗CA19−9モノクローナル抗体結合ガラ
スビーズ100個、抗CA19−9モノクローナル抗体10μg/m
l含有0.02Mリン酸緩衝液12ml、ペルオキシダーゼ標識抗
マウスIgG Fc抗体含有0.02Mリン酸緩衝液60ml、1%牛
血清アルブミン含有0.02Mリン酸緩衝液40ml、CA19−9
標準溶液30,60,120,240unit/mlを各1ml、生理食塩水100
0ml、基質溶液(過酸化水素含有オルト−フェニレンジ
アミン溶液)60ml、および1.5規定硫酸水溶液350mlを別
々の容器に充填した後密栓して、CA19−9測定試薬を製
造した。
f) Preparation of CA19-9 measuring reagent Fc partial cleavage removal anti-CA19-9 monoclonal antibody-bonded glass beads 100, anti-CA19-9 monoclonal antibody 10 μg / m
l containing 0.02M phosphate buffer 12ml, peroxidase-labeled anti-mouse IgG Fc antibody containing 0.02M phosphate buffer 60ml, 1% bovine serum albumin containing 0.02M phosphate buffer 40ml, CA19-9
Standard solution 30, 60, 120, 240 unit / ml 1 ml each, saline 100
0 ml, 60 ml of a substrate solution (ortho-phenylenediamine solution containing hydrogen peroxide), and 350 ml of a 1.5N sulfuric acid aqueous solution were filled in separate containers and then sealed up to prepare a CA19-9 measuring reagent.

g) CA19−9標準溶液の測定 CA19−9 240unit/mlを含む標準溶液50μl,抗CA19−9モ
ノクローナル抗体10μg/ml含有0.02Mリン酸緩衝液100μ
lおよび1%牛血清アルブミン含有0.02Mリン酸緩衝液3
00μlを入れた試験管にFc部分切断除去抗CA19−9モノ
クローナル抗体結合ガラスビーズを1個入れインキュベ
ーション(37℃,15分間)したのち、生理食塩水にてビ
ーズを洗浄した。次に、ペルオキシダーゼ標識抗マウス
IgG Fc抗体含有0.02Mリン酸緩衝液500μl中にビーズを
移し、インキュベーション(37℃,15分間)した。再
度、生理食塩水にてビーズを洗浄したのち、ビーズを基
質溶液(過酸化水素含有オルト−フェニレンジアミン溶
液)500μl中に移し、インキュベーション(37℃,15分
間)したのち、1.5規定硫酸水溶液3mlを加えて反応を停
止した。この液の492nmの吸光度を測定し、ビーズに結
合した酵素の酵素活性を測定した。
g) Measurement of CA19-9 standard solution 50 μl of standard solution containing 240 units / ml of CA19-9, 0.02 M phosphate buffer 100 μ containing 10 μg / ml of anti-CA19-9 monoclonal antibody
l and 1% bovine serum albumin in 0.02M phosphate buffer 3
One Fc partially cleaved and removed anti-CA19-9 monoclonal antibody-bonded glass beads were placed in a test tube containing 00 μl and incubated (37 ° C., 15 minutes), and then the beads were washed with physiological saline. Next, peroxidase-labeled anti-mouse
The beads were transferred into 500 μl of 0.02 M phosphate buffer containing IgG Fc antibody, and incubated (37 ° C., 15 minutes). After washing the beads again with physiological saline, transfer the beads to 500 μl of the substrate solution (hydrogen peroxide-containing ortho-phenylenediamine solution) and incubate (37 ° C, 15 minutes), then add 3 ml of 1.5 N sulfuric acid aqueous solution. In addition, the reaction was stopped. The absorbance of this solution at 492 nm was measured to measure the enzyme activity of the enzyme bound to the beads.

同様に、CA19−9標準溶液30,60,120unit/mlおよび0ブ
ランクの測定も行った。
Similarly, the CA19-9 standard solution of 30, 60, 120 unit / ml and 0 blank was also measured.

第1図に本測定法によるCA19−9標準溶液の測定結果を
示した。
Fig. 1 shows the measurement results of CA19-9 standard solution by this measurement method.

比較例1 サンドウィッチ法EIAによるCA19−9の測定 実施例1と比較するため、抗CA19−9モノクローナル抗
体を用いたサンドウィッチ法酵素免疫測定法(EIA)に
よりCA19−9の測定を行った。
Comparative Example 1 Measurement of CA19-9 by sandwich method EIA For comparison with Example 1, CA19-9 was measured by a sandwich enzyme immunoassay (EIA) using an anti-CA19-9 monoclonal antibody.

a) 抗CA19−9モノクローナル抗体の製造 実施例1.a)に準じた。a) Production of anti-CA19-9 monoclonal antibody Same as in Example 1.a).

b) 抗CA19−9モノクローナル抗体結合ガラスビーズ
の作製 米国特許第652761号明細書の方法に従い、ガラスビーズ
の表面に抗CA19−9モノクローナル抗体をコーティング
した。
b) Preparation of anti-CA19-9 monoclonal antibody-bound glass beads According to the method of US Pat. No. 6,527,61, the surface of the glass beads was coated with anti-CA19-9 monoclonal antibody.

c) ペルオキシダーゼ標識抗CA19−9モノクローナル
抗体の作製 抗CA19−9モノクローナル抗体を文献[エス・ヨシタ
ケ、エム・イマガワ、イー・イシカワ、エトール;ジェ
イ.バイオケム(S.YOSHITAKE,M.IMAGAWA,E.ISHIKAWA,e
t.al.;J.Biochem.,Vol.92(1982)1413−1424]記載の
方法にてペルオキシダーゼと結合し、ペルオキシダーゼ
標識抗CA19−9モノクローナル抗体を得た。この試薬は
通常1%牛血清アルブミン含有緩衝液で10〜5000倍に希
釈して使用した。
c) Preparation of Peroxidase-Labeled Anti-CA19-9 Monoclonal Antibody Anti-CA19-9 monoclonal antibody was prepared according to the literature [S. Yoshitake, M. Imagawa, E. Ishikawa, Etol; Jay. Biochem (S.YOSHITAKE, M.IMAGAWA, E.ISHIKAWA, e
t.al .; J. Biochem., Vol. 92 (1982) 1413-1424] was used to bind to peroxidase to obtain a peroxidase-labeled anti-CA19-9 monoclonal antibody. This reagent was usually diluted with a buffer containing 1% bovine serum albumin 10 to 5000 times before use.

d) CA19−9標準溶液の調整 実施例1.e)に準じた。d) Preparation of CA19-9 standard solution According to Example 1.e).

e) CA19−9標準溶液の測定 CA19−9 240unit/mlを含む標準溶液50μlおよび1%牛
血清アルブミン含有0.02Mリン酸緩衝液400μlを入れた
試験管に抗CA19−9モノクローナル抗体結合ガラスビー
ズを1個入れインキュベーション(37℃,15分間)した
のち、生理食塩水にてビーズを洗浄した。次に、ペルオ
キシダーゼ標識抗CA19−9モノクローナル抗体含有0.02
Mリン酸緩衝液500μl中にビーズを移し、インキュベー
ション(37℃,15分間)した。再度、生理食塩水にてビ
ーズを洗浄したのち、ビーズを基質溶液(過酸化水素含
有オルト−フェニレンジアミン溶液)500μl中に移
し、インキュベーション(37℃,15分間)したのち、1.5
規定硫酸水溶液3mlを加えて反応を停止した。この液の4
92nmの吸光度を測定し、ビーズに結合した酵素の酵素活
性を測定した。
e) Measurement of CA19-9 standard solution Anti-CA19-9 monoclonal antibody-bound glass beads were placed in a test tube containing 50 μl of standard solution containing 240 unit / ml of CA19-9 and 400 μl of 0.02M phosphate buffer containing 1% bovine serum albumin. After one incubation (37 ° C., 15 minutes), the beads were washed with physiological saline. Next, 0.02 containing anti-CA19-9 monoclonal antibody labeled with peroxidase
The beads were transferred into 500 μl of M phosphate buffer and incubated (37 ° C., 15 minutes). After washing the beads again with physiological saline, the beads were transferred to 500 μl of the substrate solution (hydrogen peroxide-containing ortho-phenylenediamine solution) and incubated (37 ° C., 15 minutes), then 1.5
The reaction was stopped by adding 3 ml of a normal sulfuric acid aqueous solution. 4 of this liquid
The absorbance at 92 nm was measured, and the enzyme activity of the enzyme bound to the beads was measured.

同様に、CA19−9標準溶液30,60,120unit/mlおよび0ブ
ランクの測定も行った。
Similarly, the CA19-9 standard solution of 30, 60, 120 unit / ml and 0 blank was also measured.

第1図に本測定法によるCA19−9標準溶液の測定結果を
示した。
Fig. 1 shows the measurement results of CA19-9 standard solution by this measurement method.

実施例2 a) 抗HBsモノクローナル抗体の製造 HBsに対するモノクローナル抗体は文献[ケイ・クニト
モ、エス・ヤハラ、エイチ・サジ、ティー・ホソイ;ボ
ックス サンジーニス(K.Kunitomo,S.Yahara,H.Saji,
T.Hosoi;Vox Sanguinis)Vol.45,No.2,1983,pp.104−11
1]に記載の方法に従って製造した。
Example 2 a) Production of anti-HBs monoclonal antibody Monoclonal antibodies against HBs are described in the literature [K. Kunitomo, S. Yahara, H. Saji, H. Saji, Box Sangenis.
T.Hosoi; Vox Sanguinis) Vol.45, No.2,1983, pp.104-11
It was manufactured according to the method described in [1].

簡単には、HBs抗原500μg(ミドリ十字社製)をフロイ
ントの完全アジュバントとともにBALB/cマウスの腹腔内
に投与し免疫した。10日後に再びHBs抗原100μgを静脈
内に投与し3日後に脾臓を摘出して脾細胞を採取した。
RPMI1640培地にて洗浄した後、脾細胞全量を2x107個の
マウスミエローマ細胞(P3−NS1/1−Ag 4.1)と混ぜ、3
7℃の42.5%ポリエチレングリコール1540および7.5%ジ
メチルスルフォキシドを含むRPMI1640培地1ml中で1分
間融合させた。1分後にその細胞懸濁物をRPMI1640培地
5mlで徐々に希釈した。それらの細胞を遠心分離し、洗
浄した後、HAT培地(ヒポキサンチン、アミノプテリ
ン、チミジン、10%牛胎児血清を含むRPMI1640培地)を
20mlになるように加えて、96ウェルマイクロプレートに
0.2mlずつ分注して2週間培養した後、増殖したウェル
中の培養上清の抗体活性を測定した。
Briefly, 500 μg of HBs antigen (Midori Cross) was intraperitoneally administered to BALB / c mice together with Freund's complete adjuvant for immunization. After 10 days, 100 μg of HBs antigen was intravenously administered again, and 3 days later, the spleen was extracted and splenocytes were collected.
After washing with RPMI1640 medium, the total amount of splenocytes was mixed with 2x10 7 mouse myeloma cells (P3-NS1 / 1-Ag 4.1),
The fusion was carried out for 1 minute in 1 ml of RPMI1640 medium containing 42.5% polyethylene glycol 1540 and 7.5% dimethylsulfoxide at 7 ° C. After 1 minute, the cell suspension was added to RPMI1640 medium.
Dilute slowly with 5 ml. After centrifuging and washing the cells, HAT medium (RPMI1640 medium containing hypoxanthine, aminopterin, thymidine, and 10% fetal bovine serum) was used.
Add to 20 ml and add to 96-well microplate.
Each 0.2 ml was dispensed and cultured for 2 weeks, and then the antibody activity of the culture supernatant in the grown well was measured.

次に、活性の認められたウェルの細胞を限界希釈法を使
用して繰り返してクローン化した。クローン化した細胞
をマウスの腹腔内に投与し腹水腫瘍として成長させた
後、腹水を採取した。この腹水中モノクローナル抗体を
アフィ・ゲル・プロテインA MAPSキット(バイオラッ
ド社)を用いて精製単離し、以下の検討に用いた。
Then, cells in wells in which activity was observed were repeatedly cloned using the limiting dilution method. The cloned cells were intraperitoneally administered to mice to grow as ascites tumor, and then ascites was collected. The ascites monoclonal antibody was purified and isolated using an Affi-Gel Protein A MAPS kit (Bio-Rad) and used for the following studies.

b) 抗HBsモノクローナル抗体のFc部分の切断除去抗H
Bsモノクローナル抗体20mgを0.1M NaCl−0.1M酢酸ナト
リウム緩衝液(pH4.5)で透析した。透析後、0.4mgペプ
シン(ベーリンガー マンハイム社)を加え、37℃で6
時間インキュベートした。次に、この溶液に0.1M水酸化
ナトリウム水溶液を加えpHを7に合わせたのち、ウルト
ロゲルAcA44カラム(1.5cmx90cm)でゲルろ過を行いFc
部分を含む分画を除いた。さらに、アフィ・ゲル・プロ
テインA MSPSキットを用いて未消化のモノクローナル抗
体を除去し、モノクローナル抗体F(ab′)分画を得
た。
b) Anti-H that cleaves and removes the Fc portion of anti-HBs monoclonal antibody
20 mg of Bs monoclonal antibody was dialyzed against 0.1M NaCl-0.1M sodium acetate buffer (pH 4.5). After dialysis, 0.4 mg pepsin (Boehringer Mannheim) was added, and the mixture was mixed at 37 ° C for 6 hours.
Incubated for hours. Next, to this solution was added 0.1 M sodium hydroxide aqueous solution to adjust the pH to 7, and then gel filtration was performed using an Ultrogel AcA44 column (1.5 cm x 90 cm) to obtain Fc.
The fraction containing the part was removed. Further, undigested monoclonal antibody was removed using Affi-Gel Protein A MSPS kit to obtain a monoclonal antibody F (ab ') 2 fraction.

c) Fc部分を切断除去した抗HBsモノクローナル抗体
結合ガラスビーズの作製 米国特許第652761号明細書の方法に従い、ガラスビーズ
の表面にFc部分切断除去抗HBsモノクローナル抗体をコ
ーティングした。
c) Preparation of Anti-HBs Monoclonal Antibody-Binding Glass Beads with Cleavage of Fc Portion According to the method of US Pat. No. 6,527,61, the surface of glass beads was coated with an anti-HBs monoclonal antibody with Cleavage of Fc segment.

d) 125I標識抗マウスIgG Fc抗体の作製 抗マウスIgG Fc抗体(バインディングサイト社)を文献
[バーバラ・ビー・ミッシェル、スタンレイ・エム・ジ
ギ;セレクティッド メソッズ イン セルラー イム
ノロジー(Barbara B.Mishell Stanley M.Shigi;SELECT
ED METHODS IN CELLULAR IMMUNOLOGY)PP.315−316,198
0]に記載の方法にて125Iと結合し、125I標識抗マウスI
gG Fc抗体を得た。この試薬は通常1%牛血清アルブミ
ン含有緩衝液で10〜5000倍に希釈して使用した。
d) Preparation of 125 I-labeled anti-mouse IgG Fc antibody An anti-mouse IgG Fc antibody (Binding Site) was used as a reference [Barbara B. Michel, Stanley M. Jigi; Selected Methods in Cellular Immunology (Barbara B. Mishell Stanley M. Shigi; SELECT
ED METHODS IN CELLULAR IMMUNOLOGY) PP.315−316,198
By the method described in 0] combined with 125 I, 125 I-labeled anti-mouse I
A gG Fc antibody was obtained. This reagent was usually diluted with a buffer containing 1% bovine serum albumin 10 to 5000 times before use.

e) HBs標準溶液の調整 ミドリ十字社から入手したHBs抗原(40μg/バイアル)
を0.02Mりん酸緩衝液で希釈し、濃度が0.5,1,2.5,5,10n
g/mlとなるようにHBs標準溶液を調製した。
e) Preparation of HBs standard solution HBs antigen (40 μg / vial) obtained from Midori-Cross
Diluted with 0.02M phosphate buffer to a concentration of 0.5,1,2.5,5,10n
A HBs standard solution was prepared so as to have g / ml.

f) HBs測定試薬の製造 Fc部分切断除去抗HBsモノクローナル抗体結合ガラスビ
ーズ100個,抗HBsモノクローナル抗体10μg/ml含有0.02
Mリン酸緩衝液12ml、125I標識抗マウスIgG Fc抗体含有
0.02Mリン酸緩衝液60ml、1%牛血清アルブミン含有0.0
2Mリン酸緩衝液40ml、HBs標準溶液0.5,1,2.5,5,10ng/ml
を各1ml、および生理食塩水1000mlを別々の容器に充填
した後密栓して、HBs測定試薬を製造した。
f) Preparation of HBs measurement reagent Fc partial cleavage removal 100 anti-HBs monoclonal antibody-bonded glass beads, anti-HBs monoclonal antibody 10 μg / ml included 0.02
12 ml of M phosphate buffer containing 125 I-labeled anti-mouse IgG Fc antibody
0.02M phosphate buffer 60ml, containing 1% bovine serum albumin 0.0
2M phosphate buffer 40ml, HBs standard solution 0.5,1,2.5,5,10ng / ml
1 ml of each and 1000 ml of physiological saline were filled in separate containers and then sealed, to prepare a reagent for measuring HBs.

g) HBs標準溶液の測定 HBs 10ng/mlを含む標準溶液50μl,抗HBsモノクローナル
抗体10μg/ml含有0.02Mリン酸緩衝液100μlおよび1%
牛血清アルブミン含有0.02Mリン酸緩衝液300μlを入れ
た試験管にFc部分切断除去抗HBsモノクローナル抗体結
合ガラスビーズを1個入れインキュベーション(37℃,1
5分間)したのち、生理食塩水にてビーズを洗浄した。
次に、125I標識抗マウスIgG Fc抗体含有0.02Mリン酸緩
衝液500μl中にビーズを移し、インキュベーション(3
7℃,15分間)した。再度、生理食塩水にてビーズを洗浄
したのち、ビーズに結合した125Iの量をγ線カウンター
で測定した。
g) Measurement of HBs standard solution 50 μl of standard solution containing 10 ng / ml of HBs, 100 μl of 0.02M phosphate buffer containing 10 μg / ml of anti-HBs monoclonal antibody and 1%
Incubate (37 ° C, 1 ° C, 1 glass beads with anti-HBs monoclonal antibody bound for removal of Fc partial cleavage into a test tube containing 300 μl of 0.02 M phosphate buffer containing bovine serum albumin)
After 5 minutes), the beads were washed with physiological saline.
Next, the beads were transferred to 500 μl of 0.02 M phosphate buffer containing 125 I-labeled anti-mouse IgG Fc antibody and incubated (3
7 ° C, 15 minutes). After washing the beads again with physiological saline, the amount of 125 I bound to the beads was measured with a γ-ray counter.

同様に、HBs標準溶液0.5,1,2.5,5ng/mlおよび0ブラン
クの測定も行った。
Similarly, HBs standard solutions of 0.5, 1, 2.5, 5 ng / ml and 0 blank were also measured.

第2図に本測定法によるHBs標準溶液の測定結果を示し
た。
Fig. 2 shows the measurement results of HBs standard solution by this measurement method.

比較例2 実施例2と比較するため、抗HBsモノクローナル抗体を
用いたサンドウィッチ法放射線免疫測定法(RIA)によ
りHBs抗原の測定を行った。
Comparative Example 2 For comparison with Example 2, HBs antigen was measured by a sandwich radioimmunoassay (RIA) using an anti-HBs monoclonal antibody.

a) 抗HBsモノクローナル抗体の製造 実施例2.a)に準じた。a) Production of anti-HBs monoclonal antibody Same as in Example 2.a).

b)抗HBsモノクローナル抗体結合ガラスビーズの作製 米国特許第652761号明細書の方法に従い、ガラスビーズ
の表面に抗HBsモノクローナル抗体をコーティングし
た。
b) Preparation of anti-HBs monoclonal antibody-bound glass beads According to the method of US Pat. No. 6,527,61, the surface of the glass beads was coated with anti-HBs monoclonal antibody.

c) 125I標識抗HBsモノクローナル抗体の作製 抗HBsモノクローナル抗体を文献[バーバラ・ビー・ミ
ッシェル、スタンレイ・エム・ジギ;セレクティッド
メソッズ イン セルラー イムノロジー(Barbara B.
Mishell Stanley M.Shigi;SELECTED METHODS IN CELLUL
AR IMMUNOLOGY)PP.315−316,1980]に記載の方法にて
125Iと結合し、125I標識抗HBsモノクローナル抗体を得
た。この試薬は通常1%牛血清アルブミン含有緩衝液で
10〜5000倍に希釈して使用した。
c) Preparation of 125 I-labeled anti-HBs monoclonal antibody The anti-HBs monoclonal antibody was prepared according to the literature [Barbara B. Michel, Stanley M. Jigi; Selected.
Methodes in Cellular Immunology (Barbara B.
Mishell Stanley M. Shigi; SELECTED METHODS IN CELLUL
AR IMMUNOLOGY) PP.315-316, 1980]
By binding with 125 I, 125 I-labeled anti-HBs monoclonal antibody was obtained. This reagent is usually a buffer containing 1% bovine serum albumin
It was used after being diluted 10 to 5000 times.

d) HBs標準溶液の調整 実施例2.e)に準じた。d) Preparation of HBs standard solution Same as in Example 2.e).

e) HBs標準溶液の測定 HBs10ng/mlを含む標準溶液50μlおよび1%牛血清アル
ブミン含有0.02Mリン酸緩衝液400μlを入れた試験管に
抗HBsモノクローナル抗体結合ガラスビーズを1個入れ
インキュベーション(37℃,15分間)したのち、生理食
塩水にてビーズを洗浄した。次に、125I標識抗HBsモノ
クローナル抗体含有0.02Mリン酸緩衝液500μl中にビー
ズを移し、インキュベーション(37℃,15分間)した。
再度、生理食塩水にてビーズを洗浄したのち、ビーズに
結合した125Iの量をγ線カウンターで測定した。
e) Measurement of HBs standard solution One tube of anti-HBs monoclonal antibody-bonded glass beads was placed in a test tube containing 50 μl of standard solution containing 10 ng / ml HBs and 400 μl of 0.02M phosphate buffer containing 1% bovine serum albumin and incubated (37 ° C). For 15 minutes), the beads were washed with physiological saline. Next, the beads were transferred to 500 μl of 0.02 M phosphate buffer containing 125 I-labeled anti-HBs monoclonal antibody and incubated (37 ° C., 15 minutes).
After washing the beads again with physiological saline, the amount of 125 I bound to the beads was measured with a γ-ray counter.

同様に、HBs標準溶液0.5,1,2.5,5,10ng/mlおよび0ブラ
ンクの測定も行った。
Similarly, HBs standard solutions of 0.5, 1, 2.5, 5, 10 ng / ml and 0 blank were also measured.

第2図に本測定法によるHBs標準溶液の測定結果を示し
た。
Fig. 2 shows the measurement results of HBs standard solution by this measurement method.

[発明の効果] 本発明の測定方法におよび免疫測定試薬よれば、従来の
免疫測定方法に比較して高感度な測定が可能となる。特
に、請求項2記載発明の測定方法および請求項4記載の
免疫測定試薬によれば、従来のモノクローナル抗体を用
いた測定方法に比較して高感度な測定が可能となる。従
来のモノクローナル抗体を用いた測定方法は測定精度は
優れているが測定感度が低いという問題点があったが、
本発明の測定方法および免疫測定試薬によれば測定精度
を低下させることなく測定感度を向上させることができ
る。更に、高感度の測定方法を検査薬に応用した場合測
定感度が向上するために測定時間の大幅な短縮が可能で
ある。
[Effects of the Invention] According to the assay method of the present invention and the immunoassay reagent, highly sensitive assay is possible as compared with the conventional immunoassay method. In particular, according to the measuring method of the present invention as defined in claim 2 and the immunoassay reagent as defined in claim 4, it is possible to carry out highly sensitive measurement as compared with the conventional measuring method using monoclonal antibodies. The conventional measuring method using a monoclonal antibody has a problem that the measuring accuracy is excellent but the measuring sensitivity is low.
According to the measuring method and immunoassay reagent of the present invention, the measuring sensitivity can be improved without lowering the measuring accuracy. Furthermore, when a high-sensitivity measurement method is applied to a test drug, the measurement sensitivity is improved, so that the measurement time can be greatly shortened.

以上の点から、本発明は、特に高感度の測定が要求され
る血清またはその他の体液中に極微量含まれている腫瘍
関連抗原、ホルモン、ウイルスなどの検出に応用でき、
かつ、これらの検出時間を短縮することができる。
From the above points, the present invention can be applied to the detection of tumor-associated antigens, hormones, viruses, etc., which are contained in trace amounts in serum or other body fluids that require particularly high sensitivity measurement,
In addition, the detection time of these can be shortened.

【図面の簡単な説明】[Brief description of drawings]

第1図は実施例1および比較例1のCA19−9の測定検量
線、第2図は実施例2および比較例2のHBs抗原の測定
検量線である。
FIG. 1 is a measurement calibration curve of CA19-9 of Example 1 and Comparative Example 1, and FIG. 2 is a measurement calibration curve of HBs antigen of Example 2 and Comparative Example 2.

Claims (4)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】被測定物質、被測定物質と特異的に結合す
る抗体(第一抗体)、不溶性固体上の第一抗体のFc部分
を切断除去した抗体(第二抗体)、および第一抗体のFc
部分を認識する標識抗体(標識抗体)を結合させて得た
免疫複合体における標識物質量を測定することにより、
該被測定物質を測定することを特徴とする被測定物質の
免疫測定法。
1. A substance to be measured, an antibody that specifically binds to the substance to be measured (first antibody), an antibody obtained by cleaving off the Fc portion of the first antibody on an insoluble solid (second antibody), and a first antibody. Fc
By measuring the amount of the labeling substance in the immune complex obtained by binding the labeled antibody recognizing the portion (labeled antibody),
An immunoassay method for a substance to be measured, which comprises measuring the substance to be measured.
【請求項2】被測定抗原性物質、被測定抗原性物質を認
識するモノクローナル抗体(第一抗体)、不溶性固体上
の第一抗体のFc部分を切断除去したモノクローナル抗体
(第二抗体)、および第一抗体のFc部分を認識する標識
抗体(第三抗体)を結合させて得た免疫複合体における
標識物質量を測定することにより、該被測定抗原性物質
を測定することを特徴とする抗原性物質の免疫測定法。
2. An antigenic substance to be measured, a monoclonal antibody that recognizes the antigenic substance to be measured (first antibody), a monoclonal antibody obtained by cleaving off the Fc portion of the first antibody on an insoluble solid (second antibody), and An antigen characterized by measuring the antigenic substance to be measured by measuring the amount of a labeling substance in an immune complex obtained by binding a labeled antibody (third antibody) that recognizes the Fc portion of the first antibody Immunoassay for sexual substances.
【請求項3】被測定物質と特異的に結合する抗体(第一
抗体)、不溶性固体上の第一抗体のFc部分を切断除去し
た抗体(第二抗体)、および第一抗体のFc部分を認識す
る標識抗体(標識抗体)を必須構成成分とすることを特
徴とする免疫測定試薬。
3. An antibody that specifically binds to a substance to be measured (first antibody), an antibody obtained by cleaving off the Fc portion of the first antibody on an insoluble solid (second antibody), and an Fc portion of the first antibody. An immunoassay reagent comprising a labeled antibody that recognizes (labeled antibody) as an essential component.
【請求項4】被測定抗原性物質を認識するモノクローナ
ル抗体(第一抗体)、不溶性固体上の第一抗体のFc部分
を切断除去したモノクローナル抗体(第二抗体)、およ
び第一抗体のFc部分を認識する標識抗体(第三抗体)を
必須構成成分とすることを特徴とする免疫測定試薬。
4. A monoclonal antibody (first antibody) that recognizes an antigenic substance to be measured, a monoclonal antibody (second antibody) obtained by cleaving off the Fc portion of the first antibody on an insoluble solid, and the Fc portion of the first antibody. An immunoassay reagent comprising a labeled antibody (third antibody) that recognizes as an essential component.
JP63290977A 1988-10-17 1988-11-16 Immunoassays and immunoassay reagents Expired - Lifetime JPH0754323B2 (en)

Priority Applications (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP63290977A JPH0754323B2 (en) 1988-10-17 1988-11-16 Immunoassays and immunoassay reagents
EP19890311660 EP0368674A3 (en) 1988-11-11 1989-11-10 Immunoassay and test kits therefor

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP26093088A JPH02107967A (en) 1988-10-17 1988-10-17 Immunoassay
JP63-260930 1988-10-17
JP63290977A JPH0754323B2 (en) 1988-10-17 1988-11-16 Immunoassays and immunoassay reagents

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JPH03179264A JPH03179264A (en) 1991-08-05
JPH0754323B2 true JPH0754323B2 (en) 1995-06-07

Family

ID=26544824

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP63290977A Expired - Lifetime JPH0754323B2 (en) 1988-10-17 1988-11-16 Immunoassays and immunoassay reagents

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JPH0754323B2 (en)

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US10690670B2 (en) * 2013-01-20 2020-06-23 Dyax Corp. Assays for determining levels of plasma protease C1 inhibitor
KR20210153097A (en) 2019-04-16 2021-12-16 다케다 파머수티컬 컴패니 리미티드 Method for quantification of functional C1 esterase inhibitors (FC1-INH)

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
IL75020A (en) * 1984-05-10 1988-10-31 Abbott Lab Biotin-antibiotin immunoassay for the detection of ligands

Also Published As

Publication number Publication date
JPH03179264A (en) 1991-08-05

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4536479A (en) Use of anti-idiotype antibodies in immunoassays
US4737453A (en) Sandwich immunoassay utilizing a separation specific binding substance
US5011771A (en) Multiepitopic immunometric assay
US5262296A (en) Freeze-dried composition containing enzyme-labeled anti-human interferon-β antibody and enzyme immunoassay kit containing the composition
EP0158973B1 (en) Multisite immunometric assay
JPH0340341B2 (en)
KR101366353B1 (en) Insulin measurement method
WO2022193980A1 (en) Antibody or antigen-binding fragment thereof for novel coronavirus nucleocapsid protein, and application thereof
NO159620B (en) IMMUNOLOGICAL DETERMINATION METHOD.
GB2095831A (en) Monoclonal antibody reagent and method for immunological assay
JPH0736016B2 (en) Immunoglobulin quantification method
EP0062892A1 (en) Single incubation immunochemical assay for creatin phosphokinase MB
JPH081438B2 (en) Enzyme immunoassay
US5415998A (en) Enzyme-containing quaternary immunocomplex homogeneous assay
JPH0754323B2 (en) Immunoassays and immunoassay reagents
JP2736058B2 (en) Manufacturing method of immunoassay device
CA2281262C (en) Anti-human medullasin monoclonal antibody, process for producing the same and immunoassay using the same
JP4377602B2 (en) Method for producing conjugate of colloidal gold and antibody
JP4458622B2 (en) Immunological measurement method and reagent for measurement
JPS63501982A (en) Creatine kinase MB quantitative method
JPH03503566A (en) Immunoassay using monoclonal antibodies against natural binding proteins
JPH02107967A (en) Immunoassay
JPH02205774A (en) Method and reagent for immunoassay
JPH02130473A (en) Immunoassay of antigenic substance and reagent for immunoassay thereof
AU7218000A (en) Immunoassay of human medullasin and diagnosis of multiple sclerosis using the same