JPH07505179A - Oligosaccharides with growth factor binding affinity - Google Patents

Oligosaccharides with growth factor binding affinity

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JPH07505179A JP5516393A JP51639393A JPH07505179A JP H07505179 A JPH07505179 A JP H07505179A JP 5516393 A JP5516393 A JP 5516393A JP 51639393 A JP51639393 A JP 51639393A JP H07505179 A JPH07505179 A JP H07505179A
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ガルア、ジョン トーマス
タンブル、ジェレミー イワン
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    • CCHEMISTRY; METALLURGY
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。 (57) [Summary] This bulletin contains application data before electronic filing, so abstract data is not recorded.

Description

【発明の詳細な説明】 成艮因翌二夏糖類 本発明は生化学および医薬の分野に関する。一層詳しくは、本発明は、生体系に 存在する成る種の生理活性タンパク質またはポリペプチド、特に、線雄弁細胞成 長因子(FGF)のような成る種の成長因子またはサイトカインに対して特別の 結合親和性を有する成る種の新規なオリゴ糖製品およびその製法に関する。また 、本発明はこのようなオリゴ糖製品の、特に医薬での使用に関する。[Detailed description of the invention] The following two summer sugars The present invention relates to the fields of biochemistry and medicine. More specifically, the present invention applies to biological systems. Any biologically active protein or polypeptide that exists, especially the eloquent cell complex. specific growth factors or cytokines such as long-term growth factor (FGF). The present invention relates to a class of novel oligosaccharide products with binding affinity and methods for their preparation. Also , the present invention relates to the use of such oligosaccharide products, especially in medicine.

背量 複雑な多細胞生体、たとえばヒトその他の動物では、細胞発生、移行、成長、増 殖の、成る場合には細胞相互作用を伴う種々の局面は、普通には成長因子と呼ば れ、関連した組織の細胞の分泌する一般的に特殊化した可溶性タンパク質または ポリペプチドである種々の細胞外メゾイエイタまたはサイトカインの制御の下に あることが多い。すなわち、それによって調整されることが多い。weight In complex multicellular organisms, such as humans and other animals, cell development, migration, growth, and proliferation are Various aspects of reproduction, sometimes involving cell interactions, are commonly referred to as growth factors. generally specialized soluble proteins secreted by cells of related tissues or Under the control of various extracellular mesoietors or cytokines that are polypeptides There are many cases. In other words, it is often adjusted accordingly.

これらの成長因子(その多くは既にDNA再結合技術を用いて隔離され、次いで 合成されている)は、種々のメカニズムを介して作用すると考えられるが、一般 的には、その効果は標的細胞の表面上の特殊な受容体あるいは結合部位との初期 相互作用から生じ、標的細胞がそれによって活性化されて細胞内生化学事象の連 鎖またはシーケンスをもたらすように思われている。These growth factors, many of which have already been isolated using DNA recombination techniques and then (synthesized) are thought to act through various mechanisms, but in general Typically, the effect is due to the initial interaction with specialized receptors or binding sites on the surface of target cells. result from the interaction and the target cell is thereby activated to initiate a chain of intracellular biochemical events. Seems to give rise to chains or sequences.

これらのタンパク質成長因子の成るものは(とりわけ、ヘパリンに対する高い結 合親和性を特徴とするもの)は一般的な用語の線雄弁細胞成長因子(FGF)と 呼ばれ、そのうち、部分アミノ酸配列同一性を有するが、異なった等電点を有す る2つの主要な形としては、酸性線雄弁細胞成長因子(aFGF)と塩基性線雄 弁細胞成長因子(brGF)とが認められている。FGFは、広範囲にわたる哺 乳動物組織内に存在するが、細胞成長および分化の調節に伴う重要な信号発生分 子として正常な生理的状態でも疾病した生理的状態でも機能すると思われ、成る 範囲の細胞タイプに対して増殖を刺激する効力のあるミトゲンとして作用する、 FGFの形質および性状のうちのいくつかについての、D Gospodaro wiczによる再吟味がCe1l Biology Reviews f199 1) 亜」鼓、 305−314に見出される。These protein growth factors consist of (particularly high binding to heparin) (characterized by compatibility) is referred to in the general term eloquent cell growth factor (FGF). called, among them, have partial amino acid sequence identity but different isoelectric points The two main forms of FGF are acidic and basic cell growth factor (aFGF). Valve cell growth factor (brGF) has been recognized. FGF is widely used in mammals. Located in mammalian tissues, it is an important signal generator involved in the regulation of cell growth and differentiation. It is thought to function and consist of both normal and diseased physiological conditions as children. Acts as a potent mitogen to stimulate proliferation on a range of cell types, D. Gospodaro on some of the traits and properties of FGF. Ce1l Biology Reviews f199 by wicz 1) Found in "A" Tsuzumi, 305-314.

特に、塩基性線雄弁細胞成長因子(bFGF)は、胚発生、創傷治癒および腫瘍 成長のようなプロセスで重要な役割を持っているように思われ、細胞増殖を伴う 種々の疾患あるいは変性状態(たとえば、糖尿病性u!I膜症、白内障手術後の 水晶溝混濁化、血管形成術後回狭窄、llff1瘍血管形成および種々の形態の 慢性炎症を含む)に直接係っていると特に考えられていた。それは、特殊な細胞 表面チロシンキナーゼ受容体IKa 1O−5(10pM)、たとえば、遺伝子 figの発現産生物であり、細胞内信号を発生する受容体と結合することによ− って細胞に信号を与える。しかしながら、b F G Fおよび類似の成長因子 すなわちサイトカインの作用モードは複雑であり、哺乳動物細胞の表面上または その細胞外基質内のヘパラン硫酸プロテオグリカン(HSPG) [K−5−5 0nilのヘパラン硫酸成分との相互作用も伴うと思われる。最近の研究では、 たとえば、ヘパラン硫酸(HS)合成が不充分である細胞では、fig受容体が bFGFに反応することはないが、ヘパリンまたはヘパラン硫酸(HS)を添加 して反応性を回復できることがわかった。少なくとも多くの場合、このような成 長因子がその生物学的効果を発揮する前に活性化されることが必要であるのは明 らかであるように思える。HSやヘパリンのような多糖類が相互作用の相手のb FGFのような成長因子に構造変化を誘発し、これが信号導入受容体に結合する ための前提条件であるということも示唆されている。In particular, basic eloquent cell growth factor (bFGF) is involved in embryonic development, wound healing and tumor development. appears to have an important role in processes such as growth and involves cell proliferation various diseases or degenerative conditions (e.g., diabetic u!I membrane disease, post-cataract surgery) crystalline groove opacification, post-angioplasty gyral stenosis, llff1 tumor angiogenesis and various forms of In particular, it was thought to be directly involved in inflammation (including chronic inflammation). It's a special cell Surface tyrosine kinase receptor IKa 1O-5 (10pM), e.g. is an expression product of fig, and by binding to a receptor that generates an intracellular signal. gives signals to cells. However, bFGF and similar growth factors That is, the mode of action of cytokines is complex, and they can be found on the surface of mammalian cells or Heparan sulfate proteoglycan (HSPG) in the extracellular matrix [K-5-5 It is thought that interaction with the heparan sulfate component of 0nil is also involved. In recent research, For example, in cells with insufficient heparan sulfate (HS) synthesis, fig receptors Does not react with bFGF, but adds heparin or heparan sulfate (HS) It was found that reactivity could be restored by At least in many cases, such It is clear that long-term factors need to be activated before they can exert their biological effects. It seems to be easy. Polysaccharides such as HS and heparin are interacting partners b. induces structural changes in growth factors such as FGF, which bind to signal transduction receptors It has also been suggested that this is a prerequisite for

したがって、これに則って、少なくともbFGFの作用についての二重受容体メ カニズムを伴うモデルが提案された。しかしながら、従来、HSの仮定のbFG F結合部位の性質は完全には明らかではない。HSは、おそらくは、N−1O− 硫酸塩群に豊富な規則的ドメイン配列を有する線形多糖類連鎖からなる最も複雑 な哺乳動物グリコサミノグリカン(GAG)であり、そこでは、塩基性2糖類反 復単位は、N−アセチル化2糖類(G]、cA−GlcNAc)が優勢な低硫酸 化領域分だけ隔たったN−硫酸化グルコサミン(すなわち、GlcA/IdoA −GlcNSOm )に結合したグルクロン酸またはイズロン酸からなる。bF GFがヘパリン結合成長因子であるから、成る種の「ヘパリン様」領域を含む硫 酸化ドメインはbFGF結合部位の最もありそうな位置を与えると予想される。Therefore, in accordance with this, at least a dual receptor mechanism for the action of bFGF is proposed. A model with a mechanism was proposed. However, conventionally, the bFG of the HS assumption The nature of the F binding site is not completely clear. HS is probably N-1O- The most complex consisting of linear polysaccharide chains with a regular domain arrangement rich in sulfate groups is a major mammalian glycosaminoglycan (GAG), in which basic disaccharide The repeating unit is a low sulfate compound dominated by N-acetylated disaccharide (G), cA-GlcNAc). N-sulfated glucosamine (i.e., GlcA/IdoA) separated by the -GlcNSOm), consisting of glucuronic acid or iduronic acid bound to GlcNSOm. bF Since GF is a heparin-binding growth factor, sulfur containing a species of "heparin-like" region consisting of The oxidized domain is expected to provide the most likely location of the bFGF binding site.

一方、これらのドメインのサイズ、それらの硫酸化パターンおよびそれらのイズ ロン酸含量はかなり変化するので、bFGFとの強い相互作用が、抗トロンビン IIIについて高い親和性を持つことがわかっているヘパリンにおける特殊な5 糖類シーケンスに類似した方法で特殊化結合ドメインを与える厳しく定められた 硫酸化単糖類異性体シーケンスを必要とする可能性が生じる。内皮細胞誘導HS はbFGFに強く結合することが親和性クロマトグラフ法によって既に証明され ており、Engelbreth Ho1m Svarm (EHS)腫瘍からの HSとのより弱い相互作用も報告されているが、このような相互作用に対する構 造上の全要件はまだ知られていない。On the other hand, the size of these domains, their sulfation patterns and their size As the ronic acid content varies considerably, a strong interaction with bFGF may result in antithrombin A special 5 in heparin known to have high affinity for III Tightly defined binding domains confer specialized binding domains in a manner similar to saccharide sequences The possibility arises that a sulfated monosaccharide isomer sequence is required. Endothelial cell induced HS It has already been proven by affinity chromatography that it binds strongly to bFGF. from Engelbreth Ho1m Swarm (EHS) tumor. Weaker interactions with HS have also been reported, but the structure for such interactions is unknown. The full architectural requirements are not yet known.

bFGFに比べて、酸性線雄弁細胞成長因子(aFGF)は一般には効力が低い と思われているが、それにもかかわらず、広範囲にわたる細胞(特に中胚葉誘導 細胞タイプ)に対する活性ミトゲン・分化因子として知られている。酸性線雄弁 細胞成長因子は、種々の組織内に存在し、はぼ同じ親和性を持っbFGFのよう な同じ細胞表面受容体に結合し、エバリン、細胞表面のヘパラン硫酸塩または細 胞外基質△、バラン硫酸プロテオグリカンに強く結合する。相互作用のメカニズ ムはbFGFと同じであることは明らかであろう。多数の他の成長因子すなわち サイトカインもヘパラン硫酸あるいは細胞外基質の同様の硫酸化グリコサミノグ リカンあるいは細胞表面プロテオグリカンに結合し、ここで再び、これは生理学 的条件の下での生物学的活性について必要な前提要件であるかも知れない。Compared to bFGF, acidic cell growth factor (aFGF) is generally less potent. However, despite this, a wide range of cells (particularly mesoderm-derived It is known as an active mitogen and differentiation factor for cell types). acid line eloquence Cell growth factors are present in various tissues and have approximately the same affinity, such as bFGF. evarin, cell surface heparan sulfate or Strongly binds to extracellular matrix Δ, balan sulfate proteoglycan. Mechanism of interaction It will be clear that the molecule is the same as bFGF. Numerous other growth factors viz. Cytokines also contain heparan sulfate or similar sulfated glycosaminoglycans in the extracellular matrix. lycans or cell surface proteoglycans, here again this is a physiological This may be a necessary prerequisite for biological activity under normal conditions.

これらの成長因子すなわちFGFのようなサイトカインが正常な生理学的状態を 維持または復元するようにあるいは成る種の疾患状態を促進するように反応する 細胞プロセスを制御あるいは調節する際に重要な広範囲にわたる役割を持つと考 えられるので、治療処置の目的でそれらの活性度を制御あるいは変更することが できるという考えは魅力的である。こうして、たとえば、細胞表面信号導入結合 受容体をブロックして成長因子の活動を抑制する薬剤の開発、使用が既に考えら れており、成る場合には、これはたとえば創傷治療であり、成長因子の活性度が 高まった方が有利である場合には、治療薬として外来性成長因子の使用および投 与が考えられている。活性をブロックするあるいは活性度を低下させる別の可能 性としては、拮抗薬あるいは作動薬として作用する薬剤の使用が考えられ、これ はこのような成長因子とプロテオグリカンあるいはグリコサミノグリカン(たと えば、ヘパラン硫酸)の間の予備的な結合相互作用を妨げる。この予備的結合作 用は、細胞表面信号導入受容体への結合が生じる前に必要であると思われる。These growth factors, cytokines such as FGF, maintain normal physiological conditions. react in a manner that maintains or restores or promotes a disease state considered to have an important widespread role in controlling or regulating cellular processes. therefore, it is possible to control or modify their activity for the purpose of therapeutic treatment. The idea that it can be done is appealing. Thus, for example, cell surface signal transduction binding The development and use of drugs that suppress growth factor activity by blocking receptors is already being considered. If this is the case, for example in wound treatment, the activity of growth factors Use and administration of exogenous growth factors as therapeutic agents when increased giving is considered. Other possibilities to block activity or reduce activity In terms of gender, it is possible to use drugs that act as antagonists or agonists; is a combination of such growth factors and proteoglycans or glycosaminoglycans (and for example, heparan sulfate). This preliminary combination This appears to be necessary before binding to cell surface signal transducing receptors can occur.

また、この目的のために、拮抗阻害剤として作用するヘパリンの使用および投与 の可能性も、少なくとも原則として、考えられる。しかしながら、ヘパリン(ま たはヘパラン硫酸それ自体)はこの状況で薬剤として使用するには特に不適であ る。これは、特に、その複雑さ、分子組成としての多種類の2糖類シーケンスと の異質性の故に、他の望ましくない副作用を与える多重活性を持つ可能性があり 、特異性を欠(であろうからである。薬剤として用いるのに必要なものは、投薬 に便利であり、予想できないかあるいは歓迎できない副作用を促進するリスクが 低い状態で、当該成長因子の特定のグリコサミノグリカンに結合する非常に高度 の特異性を有する公知の組成物の比較的小さい分子化合物の高純度のあるいはほ ぼ均質な薬剤である。換言すれば、高い特殊な結合親和性あるいは結合親和性ま たは生物学的活性度対サイズの高い比率と矛盾しない最小サイズの分子を持つこ とが最も望ましいであろう。このような薬剤は、それ故、細胞表面信号導入受容 体への後の結合をブロックあるいは楚止し、成長因子活性度を低下させる価値の 成る調節治療剤となり得るか、あるいは、成る場合には、細胞表面信号導入受容 体への後の成長因子結合を促進することによって成長因子活性度を刺激するよう に作用するかも知れない。また、治療目的で外来性成長因子を投与したい場合、 たとえば、おそらくは創傷治療または種々の他の組織修復用途では、投与時にこ のような成長因子を比較的小さい分子化合物の形をした保護剤または活性化剤と 合成すると有利であるかも知れない。こうすれば、成長因子と一緒に投与できる し、高度の特異性を持って成長因子のグリコサミノグリカン結合部位に結合でき よう。Also for this purpose, the use and administration of heparin, which acts as a competitive inhibitor The possibility of this is also conceivable, at least in principle. However, heparin or heparan sulfate itself) are particularly unsuitable for use as drugs in this situation. Ru. This is especially true due to its complexity and the large number of disaccharide sequences in its molecular composition. Due to the heterogeneity of This is because it lacks specificity.What is necessary for use as a drug is convenient and without the risk of promoting unexpected or unwelcome side effects. At low levels, a very high degree of binding to specific glycosaminoglycans of the growth factor High purity or near-purity of relatively small molecular compounds of known composition with specificity of It is a nearly homogeneous drug. In other words, high specific binding affinities or or having the smallest molecule size consistent with a high ratio of biological activity to size. would be most desirable. Such agents therefore of value that blocks or prevents subsequent binding to the body and reduces growth factor activity. or, if so, cell surface signal transduction receptors. to stimulate growth factor activity by promoting subsequent growth factor binding to the body It might work. In addition, if you want to administer exogenous growth factors for therapeutic purposes, For example, perhaps in wound treatment or various other tissue repair applications, this may be the case during administration. Growth factors, such as It may be advantageous to synthesize them. This way, it can be administered together with growth factors. can bind to the glycosaminoglycan binding site of growth factors with a high degree of specificity. Good morning.

親分子と同様に、少なくとも成る種のヘパラン硫酸断片もFGG成長因子に対す る成る特異な結合親和性を持つと予想でき、ヘパラン硫酸が選択的切断試薬(た とえば、ヘバリナーゼ、ヘパリチナーゼのような酵素)によって部分的に解重合 され、比較的短いオリゴ糖類の薬剤を産生ずることは知られているが、このよう なオリゴ糖類薬剤は、一般に、広範囲にわたる種々の組成、サイズを有する種々 の分子種の複雑な混合物からなる。したがって、これらの薬剤は、ヘパリン硫酸 自体あるいはヘパリンよりも薬剤として使用するのには適していない。このよう なオリゴ糖類薬剤または混合物の種々の分別および部分純化が実験で行われたが 、FGF成長因子に対する高い特異性の結合親和性を与える特殊な構造上の形質 についてのより詳しい知識の欠如が問題となっており、これがより良く定められ たオリゴ糖類製品あるいは最適な効率を有し、薬剤あるいは治療薬としての可能 性のある医学的用途により良く適した薬剤の開発を遅らせている。Similar to the parent molecule, heparan sulfate fragments of at least one species are also sensitive to FGG growth factors. It can be expected that heparan sulfate has a specific binding affinity consisting of partially depolymerized by enzymes such as hebarinase, heparitinase) It is known that oligosaccharide drugs are produced using relatively short oligosaccharides. Oligosaccharide drugs are generally available in a wide range of different compositions and sizes. consists of a complex mixture of molecular species. Therefore, these drugs are heparin sulfate It is less suitable for use on its own or as a drug than heparin. like this Various fractionations and partial purifications of oligosaccharide drugs or mixtures have been carried out in experiments. , a special structural trait that confers high specificity binding affinity for FGF growth factors. The problem is a lack of more detailed knowledge about the Oligosaccharide products with optimal efficiency and potential as drugs or therapeutic agents This has delayed the development of drugs better suited for certain medical uses.

本発明は、ヒトの皮膚の綿雄弁細胞ヘパラン硫酸を研究し、FGFおよび同様の ヘパリンまたはヘパラン硫酸結合成長因子に対する特異な結合親和性を有する明 確なオリゴ糖類構造の隔離および特性付けを行った実験中になされた。その結果 、本発明は、医学的用途において、特に上述の種々の状態の処置と関連したFG F成長因子変調剤としての用途では、従来公知のいかなるオリゴ糖類薬剤よりも 適しているオリゴ糖類製品を調製することができる。The present invention studies human skin cotton eloquent cells heparan sulfate, FGF and similar A clear protein with specific binding affinity for heparin or heparan sulfate-binding growth factors. This was done during an experiment in which the precise oligosaccharide structure was isolated and characterized. the result , the present invention provides FG in medical use, particularly in connection with the treatment of the various conditions mentioned above. For use as an F growth factor modulator, it is more effective than any previously known oligosaccharide drug. Suitable oligosaccharide products can be prepared.

省略形 本明細書(請求の範囲を含む)を通じて、以下の省略形を用いる。Abbreviation Throughout the specification, including the claims, the following abbreviations are used:

GAG −グリコサミノグリカン; HS −ヘパラン硫酸; HS P G −ヘパラン硫酸・プロテオグリカン;bFGF −塩基性線雄弁 細胞成長因子;aFGF −酸性線雄弁細胞成長因子;dp −重合度(たとえ ば、2頭類の場合、dp=2など);GlcA −D−グルクロン酸; IdoA −L−イズロン酸; IdoA (2S) −L−イズロン酸 2−硫酸塩;GlcNAc −N−ア セチル D−グルコサミン;GlcNSOs N−硫酸化 D−グルコサミン; GlcNSOz (6S) −N−硫酸化 D−グルコサミン 6−硫酸塩;G lcA(2S) D−グルクロン酸 2−硫酸塩;nHexA −不飽和ウロン 酸残留物 nG1cA −当初のポリマー連鎖における飽和残留物GicAから誘導される ことが考えられるという根拠に基づいて、たとえば、ヘパリチナーゼ切断(後述 する)の公知の特異性に基づいて、GlcAで示す不飽和へクスロネート残留物 ;aMan++−端末2.5−アンヒドロマンノーゼのN a B H4での還 元によって形成された2、5−アンヒドロ−D−マンニトールここで用いた記号 (n)は当該単糖類残留物が不飽和であるかないかを示し、記号(±63)は0 6位置で残留物が硫酸化され得るかされ得ないかを示す。GAG - glycosaminoglycan; HS - heparan sulfate; HS PG - heparan sulfate proteoglycan; bFGF - basic line eloquence Cell growth factor; aFGF - acidic eloquent cell growth factor; dp - degree of polymerization (for example For example, in the case of dimorphs, dp=2, etc.); GlcA-D-glucuronic acid; IdoA-L-iduronic acid; IdoA (2S)-L-iduronic acid 2-sulfate; GlcNAc-N-a Cetyl D-glucosamine; GlcNSOs N-sulfated D-glucosamine; GlcNSOz (6S) -N-sulfated D-glucosamine 6-sulfate; G lcA (2S) D-glucuronic acid 2-sulfate; nHexA - unsaturated uron acid residue nG1cA - derived from the saturated residue GicA in the original polymer chain For example, heparitinase cleavage (described below) Based on the known specificity of ;aMan++-terminal 2.5-anhydromannose reduction with N a B H4 2,5-Anhydro-D-mannitol formed by the symbol used here (n) indicates whether the monosaccharide residue is unsaturated or not, and the symbol (±63) is 0 Indicates whether the residue can or cannot be sulfated at the 6 position.

光用Ω概皿 上述したように、本発明は、概括的には、特異性の高いタンパク質またはポリペ プチド結合親和性、特に、FGFのような成長因子によって代表されるHS−結 合タンパク質またはポリペプチドに関して特異性の高いタンパク質またはポリペ プチド結合親和性を有する新規なオリゴ糖類製品を提供する。Omega plate for light As mentioned above, the present invention generally relates to highly specific proteins or polypeptides. peptide binding affinity, especially HS-binding typified by growth factors such as FGF. Proteins or polypeptides with high specificity for synthetic proteins or polypeptides Novel oligosaccharide products with peptide binding affinity are provided.

一層詳しくは、−局面によれば、本発明は、線雄弁細胞成長因子(FGF)に対 し一〇特殊な結合親和性を有するオリゴ糖類製品であって、特に、本質的に、F GF結合親和性に関してほぼ均質であり、好ましくは連続シーケンスで配列され ている硫酸化2糖類ユニツトを含む少なくとも4つ、好ましくは、6つの2糖類 ユニツトを含み、それぞれN−硫酸化グルコサミン残留物(±6S)と2−〇− 硫酸化イズロン酸残留物とからなるオリゴ糖類連鎖からなることを特徴とするオ リゴ糖類製品を提供する。More particularly, - according to an aspect, the present invention provides a method for treating fibrillar cell growth factor (FGF). - Oligosaccharide products with special binding affinities, especially essentially approximately homogeneous with respect to GF binding affinity and preferably arranged in a continuous sequence. at least 4, preferably 6 disaccharide units containing sulfated disaccharide units containing N-sulfated glucosamine residues (±6S) and 2-〇- An oligosaccharide chain consisting of sulfated iduronic acid residues. Provides ligosaccharide products.

また、前記硫酸化2糖類ユニツトの各々はIdoA (2S)−C1,4−Gl c N S Oaであると好ましく、またさらに、オリゴ糖類連鎖が全部で10 個未満の2糖類ユニツトのシーケンスからなることが好ましい。好ましい具体例 では、これらのオリゴ糖類連鎖は、全部で6つの2糖類ユニツトのシーケンスか らなり、そのうちの4つが硫酸化2糖類ユニツトの前記の連続シーケンスに含ま れるものであってもよいが、最も好ましい具体例では、全部で7つの2糖類ユニ ツトがあり、そのうちの少な(とも5つが前記硫酸化2糖類ユニツト連続シーケ ンスに含まれる。Furthermore, each of the sulfated disaccharide units is IdoA (2S)-C1,4-Gl c N S Oa, and furthermore, the oligosaccharide chain is 10 in total. Preferably, it consists of a sequence of less than two disaccharide units. Preferred specific example So, are these oligosaccharide chains a sequence of six disaccharide units in total? four of which are included in the above continuous sequence of sulfated disaccharide units. However, in the most preferred embodiment, a total of seven disaccharide units may be used. There are a number of included in the

また、オリゴ糖類連鎖の優勢な大部分はすべて同じ長さであり、C6でO硫酸化 されたグルコサミン残留物の含量(もしあるとして)が20%未満であり、より 好ましくは5%未満であることが好ましい。本発明によるオリゴ糖類は、全般的 には、ヘパリチナーゼによる解重合にはほぼ完全な耐性を有するが、ヘバリナー ゼによる解重合には耐性がない。そして、これはヒトの線雄弁細胞ヘパラン硫酸 ・プロテオグリカン(HSPG)のヘパラン硫酸(HS)から得ることができ、 そのために、最大範囲までヘパリチナーゼと酵素の部分解重合を行ってから、た とえばゲル濾過サイズ排除クロマトグラフィーを用いてサイズ分化を行い、次い で、サイズ分化ステージから回収した選定分留分に関して固定化リガンドとして FGF成長因子を用いて親和性クロマトグラフィーを行ってFGF結合断片を分 離し、次いで、塩濃度勾配、有利には逐次段階的な成分の下に成る塩濃度範囲に わたって選択的に溶離してFGF結合親和性に関して前記断片を分割し、最も強 く結合している断片を回収し、オプションとして、さらに上述した方法を用いて 回収製品のサイズ分化および選定の段階を少なくとも1回追加する。Also, the predominant majority of oligosaccharide chains are all of the same length and are O-sulfated at C6. The glucosamine residue content (if any) is less than 20% and more Preferably it is less than 5%. The oligosaccharides according to the invention are generally has almost complete resistance to depolymerization by heparitinase; It is not resistant to depolymerization by enzymes. And this is human line eloquent cell heparan sulfate ・Can be obtained from the proteoglycan (HSPG) heparan sulfate (HS), For this purpose, partial depolymerization of heparitinase and enzymes to the maximum extent is carried out, and then Size differentiation is performed using e.g. gel filtration size exclusion chromatography and then As an immobilized ligand for selected fractions collected from the size differentiation stage, FGF binding fragments were separated by affinity chromatography using FGF growth factor. and then into a salt concentration range that falls under a salt concentration gradient, advantageously sequentially stepwise components. The fragments were separated with respect to FGF binding affinity by selective elution over Recover the fragments that are bound together and optionally further use the methods described above. Add at least one step of size differentiation and selection of recovered product.

あるいは、本発明による、線雄弁細胞成長因子(FGF)に対して特異な結合親 和性を有するオリゴ糖類製品は次の特徴を持つものと定義してもよい。すなわち 、 (aHi勢的に以下の分子種からなる。Alternatively, a binding parent specific for eloquent cell growth factor (FGF) according to the invention Compatible oligosaccharide products may be defined as having the following characteristics: i.e. , (aHi consists of the following molecular species.

XはnHexA GlcNSOa (±6S)であり、YはIdoA (2S) −GlcNSO−(±63)であり、ZはIdoA−GlcR(±63)または IdoA (2S)−GlcR(±63)であり、ここで、RはN5Osまたは NAcであり、nは4〜7の範囲にある。X is nHexA GlcNSOa (±6S), Y is IdoA (2S) -GlcNSO- (±63), and Z is IdoA-GlcR (±63) or IdoA (2S)-GlcR (±63), where R is N5Os or NAc, where n is in the range of 4-7.

(b)もしあるとして、6−〇−硫酸基を有する単糖類残留物の含量が20%未 満である。(b) the content of monosaccharide residues with 6-0-sulfate groups, if any, is less than 20%; It is full.

(c)ヘパラン硫酸をヘパリチナーゼで消化してその部分解重合を最大範囲まで 行い、次いで、生成したオリゴ糖類混合物をたとえばゲル濾過サイズ排除クロマ トグラフィーを用いてサイズ分解し、12〜18の単糖類残留物の範囲内ある。(c) Digesting heparan sulfate with heparitinase to achieve its partial depolymerization to the maximum extent. and then the resulting oligosaccharide mixture is subjected to e.g. gel filtration size exclusion chromatography. The size was resolved using chromatography and ranged from 12 to 18 monosaccharide residues.

好ましくは、このオリゴ糖類製品はさらに以下の特徴を有する。Preferably, the oligosaccharide product further has the following characteristics:

YはもっばらIdoA (2S)−GlcNSOsであり、nは5または6であ り、全部で7つの2@類コ一二・ソトカイある力)、あるl/’+4よ、4以下 のものから選ばれる。Y is mostly IdoA (2S)-GlcNSOs, and n is 5 or 6. ri, a total of 7 2@class 12/sotokai certain powers), a l/'+4, 4 or less selected from.

[rtl GlcA−GlcNSO,−(IdoA[2Sl−GlcNSO,] 、−IdoA−GlcR。[rtl GlcA-GlcNSO, -(IdoA[2Sl-GlcNSO,] , -IdoA-GlcR.

ここで、RはNSO,またはNAcである。Here, R is NSO or NAc.

本発明によるオリゴ糖類は、特に、以下の2糖類シーケンスを有するオリゴ糖類 製品または薬剤(以後、オリゴ−IIと呼ぶ)の主成分を包含する。Oligosaccharides according to the invention are in particular oligosaccharides having the following disaccharide sequence: It includes the main component of the product or drug (hereinafter referred to as Oligo-II).

nGlcA−β】、4−GlcNSOa−C1,4−[1doA 12S) − a 1.4−GlcNSO3) s−al、4−Id。nGlcA-β], 4-GlcNSOa-C1,4-[1doA 12S)- a1.4-GlcNSO3) s-al, 4-Id.

A−al、4−G1.cRまたは nG]、cA−01,4−[GlcNSO,−al、4−IdoA (2S)  ] a−a l、4−GlcRここで、Ri、tNAcまたはNSO,である。A-al, 4-G1. cR or nG], cA-01,4-[GlcNSO,-al, 4-IdoA (2S) ] a-a l, 4-GlcR where Ri, tNAc or NSO.

そして、その小変更は少なくともb F G Fに対する特異結合親和性が同じ であり、比較的高い。And, the small change has at least the same specific binding affinity for bFG and is relatively high.

本発明によるオリゴPi類は、また、bFGFに対して結合親和性が弱いが、な お充分であるオリゴ糖類薬剤(以後、オリゴ−Mおよびオリゴ−Lと呼ぶ)の主 成分からなるような関連した高度に硫酸化されたオリゴ糖類も包む。これら、少 なくともオリゴ−Mは以下のシーケンスを有するオリゴ糖類連鎖を含む。Although the oligo Pis according to the present invention also have a weak binding affinity for bFGF, The main oligosaccharide drugs (hereinafter referred to as oligo-M and oligo-L) that are It also encompasses related highly sulfated oligosaccharides such as the constituents. These are few At least Oligo-M contains an oligosaccharide chain having the following sequence:

nGlcA−GlcNSO−[±6Sl −[IdoA f2s) −GlcN SOs] 4−IdoA−GlcR(±6S)ここで、Rは一般的にはNAcで あるが、NSO!であってもよい。nGlcA-GlcNSO-[±6Sl-[IdoA f2s)-GlcN SOs] 4-IdoA-GlcR (±6S) where R is generally NAc Yes, but NSO! It may be.

オリゴ−Lの主成分は以下のシーケンスからなると考えられる。The main component of Oligo-L is thought to consist of the following sequence.

nGlcA−GlcNSO,−IdoA−GlcNAc (6S) −GlcA −GlcNSOs (6S) −[1doA (2S1−GlcNSO,] 、 −1doA−C1cR(±6S)および n GlcA−GlcNSO,−IdoA f2S) −GlcNSO,−1d oA−GlcNAc (6S) −GlcA−G1.cNSQ、(6S)−Id oAf2S)−GlcNSOs−1doA−GlcR(±EIS)ここで、Rは 一般的にはNAcであるが、NSO,であってもよい。nGlcA-GlcNSO, -IdoA-GlcNAc (6S) -GlcA -GlcNSOs (6S) - [1doA (2S1-GlcNSO,], -1doA-C1cR (±6S) and n GlcA-GlcNSO, -IdoA f2S) -GlcNSO, -1d oA-GlcNAc (6S)-GlcA-G1. cNSQ, (6S)-Id oAf2S)-GlcNSOs-1doA-GlcR(±EIS) where R is Generally, it is NAc, but it may also be NSO.

本発明によるオリゴ糖類製品は、天然源から分離してもよいし、合成してもよい 。Oligosaccharide products according to the invention may be isolated from natural sources or synthesized. .

天然源からの分離に関し、て、広義では、本発明は、さらに、ヘパラン硫酸のよ うなグリコサミノグリカンから純化された比較的均質な状態で、前記グリコサミ ノグリカンあるいは多細胞生体系における対応するプロテオグリカンに結合する 選定した生理活性タンパク質またはポリペプチドに対して特異な結合親和性を有 するオリゴ糖類を分離する方法であって、にサイズ分割を行い、そこから選択的 に、10個未満の2糖類ユニツトからなるオリゴ糖類を含むと思われる留分を収 集する段階と、(d、) 段階(a)からの親和性クロマトグラフィー基質また は基体を、4ないし9の範囲の特殊な数の2糖類ユニツトを含む段階(C)から の選定留分あるいは選定留分セットと接触させて、固定化クンバク質またはポリ ペプチドに対して少なくとも若干の結合親和性をもするグリコサミノグリカンの サイズ選定オリゴ糖類断片を抽出し、前記基質または基体上に保持する段階と、 (e) 徐々に塩濃度または塩1度勾配を高めながら親和性クロマトグラフィー 基質または基体を溶離する段階と、 (f) 選定した最大の滴離塩濃度範囲でオリゴ糖類断片を含む留分または留分 セットを回収する段階と、そして、オプションとして、(g) 段階(f)から の選定留分または留分セットの製品を段階(b)から得た反応混合物の代わりに 段階(f)で回収した前記選定留分または留分セットを用いて段階(c)を選択 的に繰り返し、また、オプションとして、段階(d)、 (e)および(f)を 繰り返すことによってさらに純化する段階と のどころで脱アミノ離層を生じさせる化学方法によってグリコサミノグリカンの 部分解重合を実施するとよい。With respect to isolation from natural sources, the present invention further relates to the isolation of heparan sulfate, In a relatively homogeneous state purified from eel glycosaminoglycan, the glycosaminoglycan Binds to noglycan or corresponding proteoglycan in multicellular biological systems have specific binding affinity for the selected bioactive protein or polypeptide. This is a method for separating oligosaccharides that are Collect a fraction that is thought to contain oligosaccharides consisting of less than 10 disaccharide units. (d.) the affinity chromatography substrate from step (a) or prepares the substrate from step (C) containing a particular number of disaccharide units ranging from 4 to 9. A selected fraction or a set of selected fractions is contacted with the immobilized kumbaku substance or poly of glycosaminoglycans that also have at least some binding affinity for the peptide extracting and retaining sized oligosaccharide fragments on said substrate or substrate; (e) Affinity chromatography while gradually increasing salt concentration or salt gradient eluting the substrate or substrate; (f) Fraction or distillate containing oligosaccharide fragments in the selected maximum dripping salt concentration range and, optionally, (g) from step (f). of a selected fraction or set of fractions in place of the reaction mixture obtained from step (b). Selecting step (c) using the selected fraction or set of fractions collected in step (f) and optionally repeat steps (d), (e) and (f). The stage of further purification through repetition. glycosaminoglycans by a chemical method that causes deamination in situ. Partial depolymerization may be carried out.

しかしながら、少なくともヘパリン硫酸の場合、好ましい選択切断試薬は多糖類 リアーゼ酵素へバリチナーゼである。これは、東京のSeikagaku Co rporationがr)Ieparinase IJ という名称で市販して おり、あるいは、Sigma Chemical Co。However, at least in the case of heparin sulfate, the preferred selective cleavage reagent is polysaccharide The lyase enzyme is baritinase. This is Seikagaku Co. in Tokyo. Rporation is commercially available under the name r) Ieparinase IJ. Or, Sigma Chemical Co.

がrHeparinase IIIJという名称で市販しており、EC分類では 4.2.2.8である。この酵素は、GicA含有2糖類の非還元側で、たとえ ば、低硫酸化領域に存在するGlcNAc−C1,4−G]、cAにおいてグリ コシド結合を選択的に分離することになるが、一般には、L−イズロン酸または 2−硫酸化し一イズロン酸(すなわち、IdoAまたはIdoA (2’S)) を含有する硫酸化2糖類の結合を分離することはない。このことは、2−硫酸化 L−イズロン酸を含有する2糖類の間のグリコシド結合を分離するヘパリン硫酸 (EC4,2,2,7)として知ら担る酵素と対照的である〔これらの酵素の再 吟味を望むならば、RJ Linhardt et、 al f19901 B iochemistry ’29.2611−2671を参照されたい)、いく つかのへパリチナーゼ酵素が知られており、これらはほぼ同じ結合特異性を有す るが、たとえば、基体分子のサイズに従って解重合効率は変化する。しかしなが ら、一般的に言って、請求の範囲を含む本明細書を通じて、他の言及がない限り 、「ヘパリチナーゼ」という用語は、rHeparitinase IJとして Seikagaku (:orporationの配給する酵素または同じグリ コシド結合特異性を有する任意化の均等な酵素を示すのに用いられる。is commercially available under the name rHeparinase IIIJ, and according to the EC classification 4.2.2.8. This enzyme works on the non-reducing side of GicA-containing disaccharides, even if For example, GlcNAc-C1,4-G present in the low sulfation region], The cosidic bond will be selectively separated, but generally L-iduronic acid or 2-sulfated monoiduronic acid (i.e., IdoA or IdoA (2'S)) It does not separate the bonds of sulfated disaccharides containing . This means that 2-sulfation Heparin sulfate to separate glycosidic bonds between disaccharides containing L-iduronic acid (EC4, 2, 2, 7). If you want a closer look, check out RJ Linhardt et al f19901B iochemistry '29.2611-2671), A few heparitinase enzymes are known, and these have approximately the same binding specificity. However, the depolymerization efficiency varies depending on, for example, the size of the substrate molecule. But long Generally speaking, throughout this specification, including the claims, unless otherwise stated, , the term "heparitinase" is used as rHeparitinase IJ Seikagaku (: Enzymes distributed by the organization or the same glycerin Used to indicate any equivalent enzyme with cosidic binding specificity.

多糖類またはオリゴ糖類グリコシド結合、たとえば、1.4結合の、ヘパリチナ ーゼおよびヘパリン硫酸のような酵素による切断に関連して、ついでに了解して 貰いたいことは、1つの断片では、切断された結合部にすぐ隣接する非還元端の ところの単糖類残留物が一般的にC4とC5の間に形成された二重結合部を持っ て不飽和となるということである。しかしながら、この不飽和は当該断片の成長 因子結合親和性に多少とも影響を与えそうもなく、おそらくは分子の安定性に影 響を与えるかも知れない。polysaccharide or oligosaccharide glycosidic linkages, e.g. 1.4 linkages, heparitina In connection with enzymatic cleavage, such as heparinase and heparin sulfate, What you want to get is that in one fragment, the non-reducing end immediately adjacent to the broken bond However, monosaccharide residues generally have a double bond formed between C4 and C5. This means that it becomes unsaturated. However, this unsaturation It is unlikely to affect factor binding affinity in any way and probably affects the stability of the molecule. It might make an impact.

本発明によるオリゴ糖類またはオリゴ糖類製品は、一般的に、よ(定められた組 成を有し、必要に応じて容易にさらなる純化を行うことができる。またそれらの サイズ、特異な成長因子結合親和性を考えると、医薬分野でがなりの潜在性を開 発するのに、たとえば、成長因子抑制剤または活性剤および可動化剤として使用 するのに非常によく適している。したがって、本発明によるオリゴ糖類またはオ リゴ糖類製品は、FGF、特にbFGFの活性度を制御または調節するための治 療藁として特に価値があると予想される。このことは、たとえば、糖尿病性網膜 症、血管形成術後回狭窄、水晶嚢混濁化、増殖硝子体網膜症、関節炎その他の慢 性炎症状態、ガン細胞成長、腫瘍血管形成、中庸の筋ジストロフイ症、アルツハ イマー症および種々のウィルス感染症(たとえば、)lerpes SimpL ex type 1)のような症状の臨床処置においてFGF依存性細胞成長あ るいは増殖を制御あるいは抑制する必要がある場合に問題どなる可能性がある。Oligosaccharides or oligosaccharide products according to the invention generally have a defined composition. It has a complex structure and can easily be further purified if necessary. Also those Given its size and unique growth factor binding affinity, it has great potential in the pharmaceutical field. used as growth factor inhibitors or activators and mobilizers, e.g. very well suited to. Therefore, the oligosaccharides or oligosaccharides according to the invention Ligosaccharide products may be used as therapeutic agents to control or modulate the activity of FGF, especially bFGF. It is expected to be particularly valuable as a medical therapy. This applies, for example, to diabetic retina. symptoms, post-angioplasty ilestenosis, lens capsule opacification, proliferative vitreoretinopathy, arthritis and other chronic inflammatory conditions, cancer cell growth, tumor angiogenesis, moderate muscular dystrophy, Alzheimer's disease Immerosis and various viral infections (for example) lerpes SimpL In the clinical treatment of symptoms such as ex type 1), FGF-dependent cell growth This can become a problem when there is a need to control or suppress proliferation.

このことは、また、たとえば、創傷治療、骨折治療、神経再生、十二指腸潰瘍ま たは静脈性潰瘍、種々の眼球、網膜疾患、アテローム性動脈硬化症、退行性筋肉 疾患、虚血のような症状の臨床処置における治療または組織修復を促進するため に、あるいは、放射線治療中の厳しい損傷から組織を保護するために内因性FG Fを刺激したり、外来性FGFを投与して活性化する必要が成る場合にも問題と なる可能性がある。これらの目的のために、本オリゴ糖類製品(またはその薬学 的に許容可能な塩)は、必要に応じて、薬剤として作ることができ、このような 用途も発明の範囲内に入る。This also applies, for example, to wound treatment, fracture treatment, nerve regeneration, duodenal ulcers or or venous ulcers, various ocular and retinal diseases, atherosclerosis, degenerative muscles. To promote treatment or tissue repair in the clinical treatment of diseases, conditions such as ischemia or endogenous FG to protect tissue from severe damage during radiotherapy. Problems also arise when it is necessary to stimulate FGF or administer exogenous FGF for activation. There is a possibility that it will happen. For these purposes, the present oligosaccharide product (or its pharmaceutical (acceptable salts) can be made as pharmaceuticals if necessary; such Uses also fall within the scope of the invention.

当業者が発明の性質をより容易に理解でき、容易に実施できるようにさらに説明 するために、以下に、本発明を、発明者等が実施した背景となる実験作業の若干 とその種々の実際的な詳細を含めてより充分に説明する。この説明に関連して、 添付図面を参照なければならない。Further description to enable those skilled in the art to more easily understand the nature of the invention and enable it to be practiced more easily. In order to achieve this, the following describes some of the background experimental work carried out by the inventors of the present invention. and its various practical details. In connection with this explanation, Reference must be made to the attached drawings.

図面の固ヱな返肌 第1図:この図は実験におけるbFGF−親和性カラム上での天然、部分解重合 したH Sの分割を示しており、これらの実験では、H3J鎖(対照−パネルA )またはヘパリン硫酸で処理したHS(パネルB)またはへバリチナーゼで処理 したHS(パネルC)の3H標識のサンプルを後述するようにbFGF親和性親 和性カラ針上した。結合物質は、パネルAC破線)に示すように塩化ナトリウム の段階的濃度勾配で溶離した。bFGFについて高度の親和性を保持している耐 ヘパリチナーゼ・オリゴ糖類(パネルC,1〜1.5M NaC1で溶融する物 質、留分22−35を参照されたい)をプールしてから透析しく5pectra por 71000−Mr cut−off、 Spectrum UK) 、 凍結乾燥した。次に、それらのサイズを、0.5MNH,HCO,内で4n+l /時の流量でBlo−Ge1 P6カラム(IX120cm)上でゲル濾過によ って確定した。The hard surface of the drawing Figure 1: This figure shows native, partially depolymerized bFGF on an experimental bFGF-affinity column. In these experiments, the H3J chain (control-panel A ) or HS treated with heparin sulfate (panel B) or treated with hebaritinase. A sample of 3H-labeled HS (panel C) was labeled with a bFGF affinity parent as described below. The Japanese color needle was raised. The binding substance is sodium chloride as shown in panel AC (dashed line). It was eluted with a stepwise gradient of . A compound that retains a high affinity for bFGF. Heparitinase oligosaccharide (panel C, 1-1.5M, soluble in NaCl) (see fractions 22-35) and then dialyzed with 5pectra por 71000-Mr cut-off, Spectrum UK), Lyophilized. Next, their size is 4n+l in 0.5MNH,HCO, by gel filtration on a Blo-Ge1 P6 column (IX120 cm) at a flow rate of /h. It was confirmed.

第2図:この図は実験におけるbFGFについてのHSオリゴ糖類の親和性への 一\バリナーゼの効果を示しており、これらの実験において、3H標識のH3連 鎖をますへバリチナーゼで処理し、Blo−Ge1 P6クロマトグラフイーに よってサイズ分割した。サイズdp14およびd p i 4の副へバリチナー ゼ・オリゴ糖類の留分をプールし、次にbFGF親和性親和性クロマトフグラフ イーて分割した。0゜75M、 1.0Mおよび21.25MのNaC1で溶離 する3つの主要留分を得た。これらは、それぞれ、オリゴ−しく低)、オリゴ− M(中)、オリゴH(高)親和性クロマトグラフィーで示しである。これらのb FGFに対する親和性を、そのままの状態(実線)、ヘパリナーゼ処置後(破線 )に親和性カラムへ再適用し、塩化ナトリウムの段階的な濃度勾配で(容離する (パネルA、破、IJl)によってテストした第3図:この図は実験におけるb FGFに対する種々の親和性を有するHSオリゴ糖類のBlo−Ge1 P6グ ロマトグフラフイーの結果を示し、これらの実験において、bFGFに対して比 較的低い親和性(オリゴ−し)、中位の親和性(オリゴ−M)および高い親和性 (オリゴ−H)を持っHSオリゴ糖類(dpi2−14)を第2図と関連して説 明したように調製した。これらのサイズ分布は、そのままの状態(実線)とヘパ リナーゼ処理後の状態(破線)でBlo−Ge1 P6クロマトグフラフイーに よって確定した。Figure 2: This figure shows the relationship between the affinity of HS oligosaccharides for bFGF in the experiment. In these experiments, the 3H-labeled H3 chain The strands were treated with baritinase and subjected to Blo-Ge1 P6 chromatography. Therefore, it was divided into sizes. Vice hebaritiner of size dp14 and dpi 4 The oligosaccharide fractions were pooled and then subjected to bFGF affinity affinity chromatography. I split it up. Elute with 0°75M, 1.0M and 21.25M NaCl Three main fractions were obtained. These are, respectively, Shown by M (medium) and oligo H (high) affinity chromatography. These b Affinity for FGF was determined as is (solid line) and after heparinase treatment (dashed line). ) and reapply to the affinity column (with a stepwise concentration gradient of sodium chloride). Figure 3 tested by (panel A, broken, IJl): This figure shows the experimental b Blo-Ge1 P6 group of HS oligosaccharides with different affinities for FGF romatography results are shown, and in these experiments the relative Relatively low affinity (Oligo-S), medium affinity (Oligo-M) and high affinity The HS oligosaccharide (dpi2-14) with (oligo-H) is explained in relation to Figure 2. Prepared as described. These size distributions are shown in the as-is state (solid line) and in the hepatic state. Blo-Ge1 P6 chromatography after linease treatment (dashed line) Therefore, it was confirmed.

第4図:この図は実験において脱アミノ酸切断を行ったbFGF結合HSオリゴ 糖類のBlo−Ge1 P6クロマトグフラフイーの結果を示す。これらの実験 において、第2図に関連して説明したように調製したbFGFに対して低親和性 (オリゴ−し)、中親和性(オリゴ−M)、高親和性(オリゴ−H)を持っHS オリゴ糖類を亜硝酸で処理し、Blo−Ge1 P6クロマトグフラフイーによ って分割した。これらの2糖類(dp2)を部分的に重硫酸化種(主ピーク)お よび非硫酸化種に溶解させた。Figure 4: This figure shows the bFGF-conjugated HS oligo that was deaminoated in the experiment. The results of Blo-Ge1 P6 chromatography of saccharides are shown. These experiments , low affinity for bFGF prepared as described in connection with FIG. (Oligo-shi), medium affinity (Oligo-M), and high affinity (Oligo-H). Oligosaccharides were treated with nitrous acid and analyzed using Blo-Ge1 P6 chromatography. I divided it. These disaccharides (dp2) are partially bisulfated species (main peak) and and unsulfated species.

第5図:この図はへバリヂナーゼIV解重合を行った後のbFGF結合オリゴ糖 類(オリゴ−Hおよびオリゴ−M)のBlo−Ge1 P6クロマトグフラフイ ーの結果を示す。Figure 5: This figure shows bFGF-conjugated oligosaccharides after hebaridinase IV depolymerization. (Oligo-H and Oligo-M) Blo-Ge1 P6 chromatography - show the results.

第6図:この図はBlo−Ge1 P6ゲル濾過によって調製した後のdp=2 〜dp=14の種々のサイズについての耐ヘパリチナーゼ・オリゴ糖類のbFG F親和性クロマトグラフィーの結果を示す。Figure 6: This figure shows dp=2 after preparation by Blo-Ge1 P6 gel filtration. bFG of heparitinase-resistant oligosaccharides for various sizes of ~dp=14 The results of F affinity chromatography are shown.

第7図:この図は、それぞれ、bFGG、aFGFについて、成長因子活性化に 関連したH3結合オリゴ糖類および結合親和性の効果およびサイズを示すグラフ である。Figure 7: This figure shows growth factor activation for bFGG and aFGF, respectively. Graph showing the effect and size of related H3-binding oligosaccharides and binding affinities It is.

第8図;この図は、以下に説明する実施例において言及するように、bFGF親 和性クロマトグラフィーに先立つ3H標識の線雄弁細胞H3のへパリチナーゼ消 化物のBlo−Ge1 P6ゲル濾過の代表的な結果を示す。FIG. 8; This figure shows the bFGF parent as mentioned in the examples described below. Heparitinase quenching of 3H-labeled line eloquent cells H3 prior to affinity chromatography. Representative results of Blo-Ge1 P6 gel filtration of compounds are shown.

踵縄望説肌ヱ実廊例 本発明を導いた初期の背景実験作業では、ヒトの皮膚の綿雄弁細胞とヒトの組み 替え型bFGFから誘導したヘパラン硫酸を原材料として調査を行った。Heel rope wish theory skin ヱjiro example Initial background experimental work that led to the present invention involved human skin cotton eloquent cells and human tissue. An investigation was conducted using heparan sulfate derived from alternative bFGF as a raw material.

ヒトの組み替え型bFGFは、酸性FGFについてKe、 Y、 et al、  (19901Bi。Human recombinant bFGF is produced by Ke, Y, et al. (19901Bi.

chem Biophys、 Res、 Comm、 171.963−971 に記載されている方法と同様の方法で調製した。藺草に言えば、組み替え型bF GFは、ヘパリン・セファロース・クロマトグラフィーおよびバクテリア細胞の 溶解産物からの逆相または陽イオン交換HPLCによって純化し、ヒトbFGF のアミノ酸1−155 (Abraham、 J、 Aet al、 t198 6] EMBOJ、 ”2.2523−2528参照)を符号化しているPKK  233−2−bFGF構造物(A+nann、 E et al、 f198 5) Gene、 40.183−190 t3照)をハーバ−処理して5DS −PAGE上にMK 17kDaのシングルコンパウンドを生成した。アミノ酸 シーケンスはヒトbFGFのそれと一致し、組み替え型タンパク質は完全な生物 活性を持っていた。chem Biophys, Res, Comm, 171.963-971 It was prepared in a manner similar to that described in . In other words, recombinant bF GF can be detected by heparin sepharose chromatography and bacterial cell chromatography. Purified by reverse phase or cation exchange HPLC from lysate, human bFGF Amino acids 1-155 (Abraham, J, Aet al, t198 6] PKK encoding EMBOJ (see “2.2523-2528) 233-2-bFGF construct (A+nann, E et al, f198 5) Gene, 40.183-190 t3 reference) and 5DS - Generated a single compound of MK 17 kDa on PAGE. amino acid The sequence matches that of human bFGF, and the recombinant protein is derived from the complete organism. It had activity.

″H−グルコサミンを生合成放射#l標識付けしたHSPGおよびHS連鎖を、 Turnbull & Gallagherの論文(Turnbull、 J、 E、 et al、 f1991) Biochem、 JA 273 、553−559 参照)に記載されているように成人のヒトの皮膚線雄弁細胞 の融合培養株から調製した。この論文の内容は参考資料として援用する。``H-glucosamine biosynthetic radiolabeled HSPG and HS chain, Turnbull & Gallagher's paper (Turnbull, J. E, et al, f1991) Biochem, JA 273 , 553-559). was prepared from a fusion culture of. The content of this paper is incorporated as reference material.

使用した実験技術のうち、H3連鎖のへパリチナーゼでの解重合、ヘパリナーゼ または低p )−1亜硝酸およびBlo−Ge1 P6またはP2でのオリゴ糖 類のゲル・クロマトグラフィーを、Turnbull J、E、 et、 al 、(19911Biochem、 J、 277、297−303の上記の論文 に記載されているように実施した。また、Inoue & Nagasawa  (Inoue、 Y、 eLal (1,976) Carbohydrate  Res、 46.87−95参照)に記載されているように、化学的なN−d esul、phaLion/re−N−acetylationを実施した。Among the experimental techniques used, depolymerization of H3 chains with heparitinase; or low p)-1 nitrite and oligosaccharides at P6 or P2 of Blo-Ge1 Similar gel chromatography was performed by Turnbull J, E, et al. , (19911 Biochem, J, 277, 297-303) It was carried out as described. Also, Inoue & Nagasawa (Inoue, Y, eLal (1,976) Carbohydrate Res, 46.87-95), the chemical N-d esul, phaLion/re-N-acetylation was performed.

また、この作業では、親和性クロマトグラフィーおよび2M!類の強アニオン交 換HPLCを用い、親和性クロマトグラフィーではbFGF−Affi−Ge1 10親和性基質を使用した。この親和性基質を調製するために、Bio−Rad ラボラトリからの1mlのパックしたAffi−Gel 10”’活性化親和性 ゲルを、1分間に800gで遠心力を用いながら二重蒸留水の5ボリユームで4 回洗浄した。ヘパリン(500u g)をbFGF (500gg in 3I nl O,6M NaC1,25miJ Na、HPO4,pH6,6)に添加 し、4°Cで夜通し洗浄し、パックした1mlのAffi−Gel 10と混合 した、2m1の4M Tris−HCL pH8,0を添加してゲル上の未反応 グループをブロックした。5mgのヘパリンを添加して結合したbFGFと保存 剤としての465μmの20%(w / v ) N a N zを安定化した 。ゲルを10mM Tris−H(:1、pH6,5内で2MNaC1の10ボ リユームで洗浄した。逆相HPLCによっては、洗浄液中にbFGFは検出され ず、これは高度の結合効率を示している。This work also involved affinity chromatography and 2M! strong anion exchange of bFGF-Affi-Ge1 was used for affinity chromatography. 10 affinity substrates were used. To prepare this affinity substrate, Bio-Rad 1ml packed Affi-Gel 10”’activation affinity from the laboratory The gel was washed with 5 volumes of double distilled water using centrifugal force at 800 g for 1 min. Washed twice. Heparin (500u g) was mixed with bFGF (500 g in 3I Added to nl O, 6M NaCl, 25miJ Na, HPO4, pH 6, 6) and mixed with 1 ml of packed Affi-Gel 10, washed overnight at 4°C. Add 2ml of 4M Tris-HCL pH 8.0 to remove any unreacted material on the gel. I blocked the group. Add 5 mg of heparin to bind bFGF and store Stabilized 20% (w / v) N a N z of 465 μm as an agent . The gel was diluted with 10 bottles of 2M NaCl in 10mM Tris-H (:1, pH 6.5). Washed with Rium. bFGF was not detected in the wash solution by reverse-phase HPLC. First, this indicates a high degree of coupling efficiency.

親和性クロマトグラフィーを次の通りに実施した。Affinity chromatography was performed as follows.

約1mlのbFGF−Affi−Gel 10親和性基質をガラスカラム内にパ ックした〔ベッド寸法6mmx35mm)、0.25m1/分の流量で、10m M Tris−HCI、pH6,5内でカラム上にサンプルを装填した。未結合 物質を5つの1ml留分を収集することによって溶離した。結合物質は0.5m 1/分の流量で塩化ナトリウムの段階的濃度勾配(0,25M段階においてカラ ムバッファ内に0−2M NaC1)を用いて溶離した。5つの1ml留分は各 濃度で収集した。カラムは、10Mg/m1ヘパリン(Sigmal 、0.0 1%(w/v)アジ化ナトリウムおよび0゜2M NaC1を含有する運転バッ ファ内に4℃で保存した。Pump approximately 1 ml of bFGF-Affi-Gel 10 affinity substrate into the glass column. [Bed size 6mm x 35mm], flow rate of 0.25ml/min, 10m Samples were loaded onto the column in M Tris-HCI, pH 6,5. unbound The material was eluted by collecting five 1 ml fractions. The bonding material is 0.5m Stepwise concentration gradient of sodium chloride (color in 0,25M step) at a flow rate of 1/min. Elution was performed using 0-2M NaCl in buffer. Five 1 ml fractions each Collected at concentrations. The column was filled with 10 Mg/ml heparin (Sigmal, 0.0 A running bag containing 1% (w/v) sodium azide and 0°2M NaCl It was stored in a refrigerator at 4°C.

HSオリゴ糖類の2糖順組成を分析するために、HSオリゴ糖類をヘパリチナー ゼ、ヘパリチナーゼIIおよびヘパリンの混合物(日本国東京、Seikaga ku K。In order to analyze the disaccharide composition of HS oligosaccharides, HS oligosaccharides were treated with heparitinase. A mixture of enzyme, heparitinase II and heparin (Seikaga, Tokyo, Japan) ku K.

gyo Co、から得た)で完全に酵素解重合した。2糖類をBlo−Ge1  P2”“クロマトグラフィーで回収し、Propac PAI分析カラム(4X 250mm; Dionex、 UKi上でHPLCによって分離した。1ml /分で移動相(HCIでpH3,5に調節した二重蒸留水)内で平衡化を行った 後、サンプルを注入し、2糖類を同じ移動相において線形濃度勾配の塩化ナトリ ウム〔45分間にわたってO−LM)で溶離した。(obtained from GYO Co.) was completely enzymatically depolymerized. Blo-Ge1 disaccharide Collected by P2"" chromatography and loaded onto a Propac PAI analytical column (4X 250 mm; separated by HPLC on Dionex, UKi. 1ml Equilibration was carried out in the mobile phase (double-distilled water adjusted to pH 3,5 with HCI) at /min. After injecting the sample, the disaccharide was added to a linear concentration gradient of sodium chloride in the same mobile phase. Eluted with O-LM (O-LM over 45 minutes).

溶離液を、紫外線吸収度について(無標識2糖順についてはA2.、 )および 放射能について(Radiomatic Flo−one/Beta A−20 0detector)インラインでモニタした。亜硝酸処理で放出された2糖類 を、先に述べたように(Pejler、 G、 et al、 (19871B iochem、 J、 248.67−69およびBienkowski、 M 、J、 et al、 Biochem、 J、 Q6几 356−365参照)、HPLCで分離した。The eluent was evaluated for UV absorbance (A2. for unlabeled disaccharide order) and About radioactivity (Radiomatic Flo-one/Beta A-20 0detector) was monitored inline. Disaccharides released by nitrite treatment As mentioned earlier (Pijler, G. et al. (19871B) iochem, J., 248.67-69 and Bienkowski, M. , J, et al, Biochem, J, Q6几 356-365), separated by HPLC.

初期の実験において、’H−グルコサミンで代謝性の標識を付けたHSPGをヒ ト皮膚線雄弁の培地から純化した。H3連鎖をHSPGのプロナーゼ処理によっ て調製し、上述したようにヒト組み替え型bFGFで調製した親和性カラムに装 填した。結合物質を0.25M1’U階で0.25Mから2.0Mの範囲にある Nacl濃度で段階的に溶離した。HSの大部分はbFGFに強く結合し、主ビ ーク溶離は1.25M NaC1であった(第1A図参照)。同様の溶離分布を なんらの処理もしていないHSPG (結果は示さず)について得た。このこと は、ヘパラン硫酸(HS)連鎖がbFGFへのプロテオグリカン結合の主要な決 定因子であることを示している。ヒアルロン酸はbFGFカラムおよび線維芽誘 導コンドロイチンに結合せず、デルマタン硫酸がO−0,5M NaC1の範囲 で溶離した。しかしながら、市販のヘパリンは主として1.25M、1.5M  NaC1で溶離した(データは示さない)。これらの結果はbFGFのN−硫酸 化多糖類との特異な相互作用を示している。N−硫酸基の重要性は、亜硝酸での 脱アミノ酸切断あるいはHSのN−desulphation/re−N−ac etylationが高度の親和性相互作用を停止したという発見で確認された (結果は示さず)。In early experiments, HSPG metabolically labeled with 'H-glucosamine was It was purified from the culture medium of the dermatophyte. The H3 chain is mediated by pronase treatment of HSPG. and loaded onto an affinity column prepared with human recombinant bFGF as described above. Filled. Combined substances range from 0.25M to 2.0M in 1’U floor. Elution was performed stepwise with NaCl concentration. The majority of HS binds strongly to bFGF, and the main The peak elution was 1.25M NaCl (see Figure 1A). Similar elution distribution Obtained for HSPG without any treatment (results not shown). this thing showed that heparan sulfate (HS) linkages are the major determinants of proteoglycan binding to bFGF. This shows that it is a constant factor. Hyaluronic acid is a bFGF column and fibroblast inducer. Does not bind to chondroitin and dermatan sulfate is in the range of O-0.5M NaCl It was eluted with However, commercially available heparin is mainly 1.25M, 1.5M Eluted with NaCl (data not shown). These results indicate that bFGF N-sulfate This shows a unique interaction with chemical polysaccharides. The importance of the N-sulfate group in nitrous acid is Deamino acid cleavage or N-desulfation/re-N-ac of HS Confirmed by the finding that etylation terminated high affinity interactions (Results not shown).

H3内のbFGF結合ドメインを識別する問題は、種々の構造ドメインにおける 多糖類を選択的に切断する酵素ヘバリナーゼ、ヘパリチナーゼを用いて処理した 。既に述べたように、ヘバリナーゼはN−硫酸化領域において作用し、2−0− 硫酸化イズロン塩、すなわち、GlcNSOi (±6S) −a l、4−I doA (2S)を含む2糖類を特に切断する。主生成物は9−10kDaのオ リゴ糖類である。これに反して、ヘパリチナーゼは低硫酸化領域に存在するGl cA含有2糖類、原則的には、GlcNAc−al、4−GlcAを切断するが 、タイプJGJ、cNSOs (±6S1− a L、4−IdoA(±25) ]、。The problem of identifying the bFGF-binding domain within H3 is Treated with heparitinase, an enzyme that selectively cleaves polysaccharides. . As already mentioned, hevarinases act on the N-sulfated region and the 2-0- Sulfated iduron salt, i.e. GlcNSOi (±6S)-al, 4-I It specifically cleaves disaccharides including doA (2S). The main product is 9-10 kDa It is a oligosaccharide. On the contrary, heparitinase is a Gl cA-containing disaccharide, in principle, cleaves GlcNAc-al, 4-GlcA, but , type JGJ, cNSOs (±6S1-aL, 4-IdoA (±25) ],.

のN−硫N−硫酸ケン−ケン撃することはない。N-sulfuric acid and N-sulfuric acid will not be attacked.

l]Sのヘバリナーゼ切断は、bFGFについての親和性がかなり減った製品を 生じ、0.25−0.75M NaClの範囲で溶離が生じた(第1B図1.l i&、)。ヘパリチナーゼ消化の効果はもっと著しく、この物質の大部分はカラ ムに結合し損なうか、あるいは、0.25−0.75M NaC1で溶離した( 第1C図参照)。しかしながら、ヘパリチナーゼ消化物内のオリゴ糖類の小部分 はbFGFに対して親和性を示し、これは未処理H3(1、O−1,5M Na C1範囲で溶離)に匹敵する。 Blo−Ge1 P6についてのゲル濾過サイ ズ排除クロマトグラフィーは、これら高い親和性の生成物が、6つおよび7つの 2糖類ユニツトに等しいサイズで優先的にdpi2、dp14の2つのオリゴ糖 類留分からなることを示した。これらの留分はヒト皮膚線雄弁細胞H3のへバリ チナーゼ消化物内に有意の量で存在する最大の留分である。このデータは、H, Sにおける拡張されたN−硫酸化シーケンスがbFGFに対する最高の親和性結 合部位を含み、IdoA f2s)が相互作用に対して重要な貢献をなすことを 示している。Hebarinase cleavage of S] produces a product with significantly reduced affinity for bFGF. and elution occurred in the range of 0.25-0.75M NaCl (Figure 1B, 1.1). i&,). The effect of heparitinase digestion is even more pronounced; most of this material is Either it failed to bind to the system or eluted with 0.25-0.75M NaCl ( (See Figure 1C). However, a small fraction of oligosaccharides within the heparitinase digest shows affinity for bFGF, which is associated with untreated H3 (1,O-1,5M Na (eluting in the C1 range). Gel filtration size for Blo-Ge1 P6 Exclusion chromatography shows that these high affinity products are present in six and seven Preferentially two oligosaccharides, dpi2 and dp14, with a size equal to the disaccharide unit. It was shown that it consists of class fractions. These fractions are derived from human skin line eloquent cells H3. It is the largest fraction present in significant amounts within the Chinase digest. This data is H, The extended N-sulfation sequence in S has the highest affinity for bFGF. contains a binding site and that IdoA (f2s) makes an important contribution to the interaction. It shows.

オリゴ糖類の結合特異性 オリゴ糖類相互作用の特異性をより詳しく検討し、また、それに伴う構造上の特 徴を検討するために、いくつかの急の副ヘパリチナーゼオリゴ糖類をBlo−G e1P6ゲル濾過サイズ排除クロマトグラフイーのへパリチナーゼ消化物から直 接調製した。サイズdpL2、dp141 (全生成物の12.5%)の選定し た構成要素はプールしてから再びbFGF親和性クロマトグラフィーで分割した 。075M、1.0M、1.25M NaC1で溶離し、オリゴ−しく低)、オ リゴ−M(中)、オリゴ−H(高)の親和性のオリゴ糖類で示される3つの主要 な留分が識別された。これらの留分のカラムへの再適用により、bFGFについ ての異なった親和性が確認された(第2図参照)。サイズdp14のオリゴ糖類 は主としてオリゴ−H留分内に存在し、オリゴ−M、オリゴ−L留分は優勢的に dpi2内に存在した(第3図参照)。Binding specificity of oligosaccharides We will examine the specificity of oligosaccharide interactions in more detail and investigate the associated structural features. To study the symptoms, some acute heparitinase oligosaccharides were added to Blo-G. Directly from the heparitinase digest of e1P6 gel filtration size exclusion chromatography It was prepared in close contact. Selection of size dpL2, dp141 (12.5% of total product) The components were pooled and resolved again by bFGF affinity chromatography. . Elutes with 075M, 1.0M, 1.25M NaCl, oligo-low), Three major oligosaccharides with affinity for oligo-M (medium) and oligo-H (high) fractions were identified. Reapplication of these fractions to the column allows for bFGF to be Different affinities were confirmed (see Figure 2). Oligosaccharides of size dp14 is mainly present in the oligo-H fraction, and the oligo-M and oligo-L fractions are predominantly dpi2 (see Figure 3).

ヘバリナ〜ゼ処理では、これらのオリゴ糖類のbFGFへの結合の著しい低下が 生じた(第2図参照)。解重合の程度(第3図)が親和性の損失に密接に関係し ていた。サイズdp4、(IP6の主要生成物(第3図)の存在は内部結合の切 断を示す。Hevalinase treatment significantly reduces the binding of these oligosaccharides to bFGF. (See Figure 2). The degree of depolymerization (Figure 3) is closely related to the loss of affinity. was. The presence of the major product (Fig. 3) of size dp4 (IP6) is due to the cleavage of internal bonds. Indicates a decision.

オリゴ糖類の2糖類組成 1−1、M、Lオリゴ糖類の2糖類組成(表1参昭)を、先に述べたように、多 糖類リアーゼ解重合と強いアニオン交換HP L Cによって評価した。計算し たモル比を表2に示す。この分析の最も目立った特徴はタイプロHeyJi ( 2S)−C1,4−GlcNSO,の2硫酸化2糖類、特にオリゴ−H、オリゴ −M(それぞれ、2Fl類ユニツトの約74%、60%)における2硫酸化2糖 類の高い含有量であった。これらの留分のヘバリナーゼ感度(第2.3図)は、 2硫酸化HexA残留物の大部分がそれらのグリコシド結合の切断前に当初はI doA (2S)であり、不飽和となることが示した。天然H3内のIdoA  (2S)−2糖類の含量が約10−12%であるから、これらの結果は、これら の残留物がオリゴ−Hでは約7倍、オリゴ−Mでは約6倍豊富であることを示し ている。nHexA(2Sl−al、4−GICNSO3の全体の濃度はH,M 、Lのオリゴ糖類の種々のbFGF親和性と強い関連がある(表1および第2図 参照)。これと逆に、6−0−硫酸化誘導体nHexA−α1.4−GlcNA c (6S)とnHexA−crl、4−GlcNSO−(6S)の含量では結 合強さは著しい逆関係を示した。これらはオリゴ−しての2糖類の26%を占め るが、オリゴ−Hでは少量の成分となっている(表1.2)。N−アセチル化2 糖1nHexA−C1,4GlcNAcの量はオリゴ糖類薬剤の各々で同じであ り、約1/断片に相当する(表1.2)。Disaccharide composition of oligosaccharides The disaccharide composition of 1-1, M, and L oligosaccharides (see Table 1) was It was evaluated by saccharide lyase depolymerization and strong anion exchange HPLC. calculate The molar ratios are shown in Table 2. The most striking feature of this analysis is the Type Pro HeyJi ( 2S)-C1,4-GlcNSO, disulfated disaccharides, especially oligo-H, oligo - Disulfated disaccharide in M (approximately 74% and 60% of 2Fl units, respectively) The content was high. The hebarinase sensitivity (Figure 2.3) of these fractions is: Most of the disulfated HexA residues are initially I prior to cleavage of their glycosidic bonds. doA (2S) and was shown to be unsaturated. IdoA in natural H3 Since the content of (2S)-disaccharides is about 10-12%, these results The residues were found to be about 7 times more abundant in Oligo-H and about 6 times more abundant in Oligo-M. ing. The total concentration of nHexA (2Sl-al, 4-GICNSO3 is H,M , is strongly associated with the various bFGF affinities of oligosaccharides of L (Table 1 and Fig. 2 reference). Conversely, the 6-0-sulfated derivative nHexA-α1.4-GlcNA c (6S), nHexA-crl, and 4-GlcNSO-(6S). The joint strength showed a significant inverse relationship. These account for 26% of oligo disaccharides. However, it is a minor component in Oligo-H (Table 1.2). N-acetylation 2 The amount of sugar 1nHexA-C1,4GlcNAc is the same for each oligosaccharide drug. This corresponds to approximately 1/fragment (Table 1.2).

低pH亜硝酸での脱アミノ酸切断は、はとんど独占的にオリゴ−H、オリゴ−M 留分を持つ2@類生成物を作った(第4A、4B図参照;それぞれ、99%、9 5%)。それに対して、2糖類(76%)と4糖類〔24%〕は、共に、オリゴ −L留分からの主要生成物である(第4C図)。したがって、H,M留分におけ るオリゴ糖類内の実質的にすべての内部へギソサミニグーゼ結合はGlcNSO ,残留物を伴い、N−アセチル化ユニットは断片の還元端にあるのが明らかであ る(以下を参照)。このことは、結果がオリゴ糖類について大きな割合(60− 70%)での内部N−アセチルグルコサミンの存在を示すオリゴ−Lとは逆であ る。Deamino acid cleavage at low pH nitrite almost exclusively involves oligo-H, oligo-M 2@ class products were made with fractions (see Figures 4A and 4B; 99% and 9%, respectively). 5%). In contrast, both disaccharides (76%) and tetrasaccharides [24%] - is the major product from the L fraction (Figure 4C). Therefore, in H and M fractions Virtually all internal gysosaminigose bonds within oligosaccharides are GlcNSO. , with a residue, the N-acetylation unit is clearly at the reducing end of the fragment. (see below). This means that the results show a large proportion for oligosaccharides (60- 70%), which shows the presence of internal N-acetylglucosamine. Ru.

亜硝酸によってH,M、L留分から放出された2糖類は、また、強いアニオン交 換によって検査し、成分ウロン酸残留物の同一性を定めた。オリゴ−Hは標準の IdoA (2S)−aMa、n++の位置で溶離する標識付き生成物を71% 産土産生。残りの標識付き生成物は、nGlcA−aManRおよびIdoA− GlcNAcに対応して非硫酸化ピークとして溶離した。オリゴ−Mおよびオリ ゴ−しは、IdoA、(2S)−aManRとして、それぞれ、61%、37% を産生した。したがって、各留分における2糖類IdoA (2S)−aMan ++の含量はリアーゼ解重合によって確定されたnHexA(2S1−C1,4 −GlcNSO3のそれとよく間尺よ りFGFに対して なった 口 を つHSオリゴ糖賽の2.、類且bFGFに 対して低低オリゴ−L)、中(9オリゴ−M)、高(オリゴ−H)親和性を持つ HSオリゴ糖類(dp12−14)を第2図に関連して説明したように調製した 。上述したように強いアニオン交換HPLCによって2糖類組成を2糖類 オリ ゴ−L オリゴ−M オリゴ−HnHexA−GIcNAc i3.6 16. 0 11.3nl+exA−GlcNAc f6sl 12.4 2.6 0. 9nHexA−GlcNSO,27,311,37,5nHexA−GlcNS Oa(6S) 14.0 4.5 1.4nHexA f2s) −GlcNS O−31,059,874,2n HexA (2Sl −GlcNSO,(6 S) 0.6 2.2 1.02糖類歩留り% 98.9 96.4 96.3 表λ bFGFに・して なった輩 口・生を つHSオリゴ枦)の】 2F の ″ ″′′ 揄比表はHSオリゴ糖類の成分2糖類の平均相対モル比(表1の2糖類組成デー タに基づく)と、す。これらのオリゴ糖類の優勢平均サイズとを示す。The disaccharides released from the H, M, and L fractions by nitrous acid also undergo strong anion exchange. The identity of the component uronic acid residues was determined by chromatography. Oligo-H is standard IdoA (2S)-aMa, 71% labeled product eluting at n++ position Souvenir production. The remaining labeled products are nGlcA-aManR and IdoA- It eluted as a non-sulfated peak corresponding to GlcNAc. Oligo-M and Oligo-M The goals were 61% and 37% for IdoA and (2S)-aManR, respectively. was produced. Therefore, the disaccharide IdoA (2S)-aMan in each fraction The content of ++ was determined by lyase depolymerization of nHexA (2S1-C1,4 - Same size as that of GlcNSO3 2. Place the HS oligosaccharide dice in a bowl that has become resistant to FGF. , similar to bFGF has low (low oligo-L), medium (9 oligo-M), and high (oligo-H) affinity for HS oligosaccharides (dp12-14) were prepared as described in connection with Figure 2. . As mentioned above, the disaccharide composition was determined by strong anion exchange HPLC. Go-L Oligo-M Oligo-HnHexA-GIcNAc i3.6 16. 0 11.3nl+exA-GlcNAc f6sl 12.4 2.6 0. 9nHexA-GlcNSO, 27,311,37,5nHexA-GlcNS Oa(6S) 14.0 4.5 1.4nHexA f2s)-GlcNS O-31,059,874,2n HexA (2Sl-GlcNSO, (6 S) 0.6 2.2 1.02 Saccharide yield % 98.9 96.4 96.3 Table λ 2nd floor of HS Oligosushi who became bFGF and became a student. ″′′ The ratio table shows the average relative molar ratio of component disaccharides in HS oligosaccharides (disaccharide composition data in Table 1). (based on data). The predominant average size of these oligosaccharides is shown.

2糖類 オリゴ−L オリゴ−M オリゴ−I]nHexA−GlcNAc O ,8?、 1.00 0.820HexA−GlcNAc f6s) [1,7 50,160,07nHexA−GlcNSO,1,650,700,55nH exA−GlcNSOx f6s) 0.85 0.28 0.10nHexA  [2S) −GlcNSOa i、 aa 3.72 5.39n HexA  (2S) −GlcNSOa f6s) 0.04 0.14 0.07(モ ル1モルオリゴ糖類) 6 6 7新規な酵素、ヘパリチナーゼI V (Se ikagaku Koygo Coから入手)を用いてこれらのオリゴ糖類のシ ーケンスを特徴付けた。この酵素はヘバリナーゼ[すなわち、GlcNSO3[ ±6Sl −a (1−41−IdoA f2sl lに対して類似の結合特異 性を有するが、敏感な結合を含む小さい基体(たとえば、4糖類および6糖類) を切断する際にかなり効率的である。Disaccharide Oligo-L Oligo-M Oligo-I] nHexA-GlcNAc O ,8? , 1.00 0.820HexA-GlcNAc f6s) [1,7 50,160,07nHexA-GlcNSO,1,650,700,55nH exA-GlcNSOx f6s) 0.85 0.28 0.10nHexA [2S)-GlcNSOa i, aa 3.72 5.39n HexA (2S) - GlcNSOa f6s) 0.04 0.14 0.07 (Mo 1 mol oligosaccharide) 6 6 7 A novel enzyme, heparitinase IV (Se These oligosaccharides were synthesized using - characterized Kens. This enzyme is a hevarinase [i.e., GlcNSO3[ ±6Sl-a (similar binding specificity for 1-41-IdoA f2sl small substrates containing sensitive bonds (e.g., tetrasaccharides and hexasaccharides) It is quite efficient in cutting.

酵素ヘパリチナーゼIVでのオリゴ−I(の処理により、高度の解重合が行われ 、2糖類、4糖類製品(第5図に示すように、それぞれ、″Hレベルの69%、 31%)を与える。これらの結果は、オリゴ−Hについて提案された優先シーケ ンスに基づく予想比(5:1)との良好な一致を示す、2糖類対4糖類の数の比 4.5:1を示す。Treatment of oligo-I with the enzyme heparitinase IV results in a high degree of depolymerization. , disaccharide, and tetrasaccharide products (as shown in Figure 5, 69% of the H level, 31%). These results support the proposed priority sequence for Oligo-H. The ratio of the number of disaccharides to tetrasaccharides shows good agreement with the expected ratio (5:1) based on 4.5:1 is shown.

ヘパリチナーゼIVによるオリゴ−Mの処理もまた、高度の解重合を生じさせ、 主として2糖類および4糖類槽品をあたえるが、いくつかの6糖類(それぞれ、 ”)(う’(ルの51%、36%、13%−第5図も参照)も与える。これらの 結果は、オリゴ−Mについて提案された優先シーケンスに基づく予想比(4:  1 :0)と正当な一致を見る、2.4.6糖順についての4: 1.4:0. 3のモル比を示す。Treatment of oligo-M with heparitinase IV also results in a high degree of depolymerization, Mainly disaccharides and tetrasaccharides, but some hexasaccharides (respectively, ”) The results show that the expected ratio (4: 1:0) and 4:1.4:0 for the 2.4.6 sugar order. The molar ratio of 3 is shown.

上述の実験作業は、線雄弁細胞H3における硫酸化オリゴ糖類留分(オリゴ−H )がbFGFに対して特に強(結合する7つの2糖類のシーケンスからなること を示した。このオリゴ糖類における優先的な構造ユニットはIdoA (2Sl −al、4−GlcNSOs (2糖類の74%;表1)であり、2−〇−硫酸 基およびN−硫酸基の両方が結合活性にとって必須であるように思える。脱アミ ノ酸切断に続く2糖類組成の分析では、この2糖類のウロン酸成分の正体がnH exA−C1,4−GlcNso、とnHexA−al、4−GlcNAcであ ることが確認された。The above-mentioned experimental work was performed on the sulfated oligosaccharide fraction (oligo-H ) is particularly strong against bFGF (consisting of a sequence of seven disaccharides that bind) showed that. The preferential structural unit in this oligosaccharide is IdoA (2Sl -al, 4-GlcNSOs (74% of disaccharides; Table 1), and 2-〇-sulfate Both the group and the N-sulfate group appear to be essential for binding activity. deamidation Analysis of the disaccharide composition following cleavage revealed that the identity of the uronic acid component of this disaccharide was nH. exA-C1,4-GlcNso, and nHexA-al, 4-GlcNAc. It was confirmed that

オリゴ−Hがへパリチナーゼ消化物の生成物であるため、主要なまたは最も優勢 なオリゴ糖類成分(単数または複数)のシーケンスは次の通りであると推測され た。Because oligo-H is the product of heparitinase digest, it is the major or most The sequence of oligosaccharide component(s) is estimated to be as follows: Ta.

1’1GlcA−β1.4−GlcNSOi−al、4− [IdoA (2S l −a 1.4−GlcNSOsJs−al、4−Ido`−al、 −GlcR あるいは、 nGlcA−al、4−[GICNSO3−al、4(doA[2S)]a−a l、4−GlcRここで、Rは一般的にはNAcであるが、N5Oaでもよい。1'1GlcA-β1.4-GlcNSOi-al, 4-[IdoA (2S l-a 1.4-GlcNSOsJs-al, 4-Ido`-al, -GlcR or, nGlcA-al, 4-[GICNSO3-al, 4(doA[2S)]a-a 1,4-GlcR where R is generally NAc, but may also be N5Oa.

これらの構造は順次に確認されたが、特異性結合親和性に有意に影響することな くアミノ糖(たとえば、GlcNAc (6S)を含有する2糖類の1・51表 1参照)のいずれかに6−〇−硫酸基のたまたま存在することによってさらに小 変化が生じ得る。これらのシーケンスの多糖類リアーゼ解重合は、表1に示すも のに極めて一致するオリゴ−Hについての2糖類組成を生じさせることになり、 G1cNAc残留物がシーケンスの還元端(位置4)におかれているという事実 はほぼすべての内部結合部が脱アミノ酸切断に敏感であるという事実(第4A図 )と相関関係があり、これはN−硫酸化2糖類の単一の連続したシーケンスの存 在を示す。もしGlcNAcがシーケンスのどこか他の位置、たとえば位置2に でも置かれていたならば、脱アミノ酸切断は2糖順に加えて4糖類生成物の有為 な留分も生じさせるであろう(たとえば、第4C図、オリゴ−して観察した場合 )オリゴ−Mの場合、主要なまたは優勢なオリゴ糖類連鎖は次のシーケンスを持 つということが確かめられた。These structures were confirmed sequentially, but without significantly affecting specificity binding affinity. Table 1.51 of disaccharides containing GlcNAc (6S) The presence of a 6-〇-sulfate group in either of the Changes can occur. Polysaccharide lyase depolymerization of these sequences is shown in Table 1. resulting in a disaccharide composition for oligo-H that closely matches that of The fact that the G1cNAc residue is placed at the reducing end of the sequence (position 4) is sensitive to deamino acid cleavage (Fig. 4A). ), which indicates the existence of a single continuous sequence of N-sulfated disaccharides. Indicates presence. If GlcNAc is placed somewhere else in the sequence, e.g. position 2 However, if placed, deamino acid cleavage would result in a disaccharide order plus a tetrasaccharide product. (e.g., Fig. 4C, when observed as an oligomer) ) For oligo-M, the main or predominant oligosaccharide linkage has the following sequence: It was confirmed that there was one.

nGlcA−GlcNSOs l±6S1− [IdoA (2S) −Glc NSO,] 、−IdoA−GlcR(±6S)ここで、Rは一般的にはNAc であるが、NSO@であってもよい。nGlcA-GlcNSOs l±6S1-[IdoA (2S)-Glc NSO, ], -IdoA-GlcR (±6S) where R is generally NAc However, it may also be NSO@.

これはIdoA (2Sl−C1,4−GlcNSOsユニットの拡張連続シー ケンスがHS内に識別された最初であると考えられる。6−〇−硫酸基の驚くほ ど低い含量は、明らかに、GlcNSOs残留物がしばしばC6で硫酸化される 、すなわち、[IdoA (2Sl−C1,4−GlcNSO−(6Sl ]n となるヘパリンにおける代表的なN−硫酸化シーケンスからこのオリゴ糖類を区 別する。ここで確認されたオリゴ−Hシーケンスは必ずしもbFGFに対して最 適な結合のための最小限のシーケンスを表わすとは限らず、bFGFの全活性度 (f l g受容体に結合する能力によって測る)がオリゴ−Hとほぼ同じサイ ズ(すなわち、dp14−dp16)のヘパリン断片を必要とするということは 注目すべきことに思える。関係したサイトカイン酸FGFも、このサイズ範囲に おいてヘパリンオリゴ糖類によって強(活性化され、ここに示す種類のオリゴ糖 類に結合することもわかった。This is an extended continuous sequence of IdoA (2Sl-C1,4-GlcNSOs units). It is believed that this is the first time that the cans have been identified within the HS. 6-〇-Surprising effect of sulfate group It is clear that the GlcNSOs residues are often sulfated with C6. , that is, [IdoA (2Sl-C1,4-GlcNSO-(6Sl)]n This oligosaccharide was distinguished from the typical N-sulfation sequence in heparin. Separate. The oligo-H sequence confirmed here is not necessarily the best for bFGF. It does not necessarily represent the minimal sequence for proper binding and may represent the total activity of bFGF. (measured by its ability to bind to flg receptors) is about the same size as oligo-H. (i.e., dp14-dp16) That seems noteworthy. The related cytokine acid FGF also falls within this size range. is activated by heparin oligosaccharides, and the types of oligosaccharides shown here are It was also found that they combine with the class.

bFGFとの最適な高親和性相互作用についての構造上の要件は、オリゴ−Hの 組成をbFGFに対する中位および低位の親和性を示すオリゴ糖類と比較するこ とによって示され得る。これらのオリゴ糖類も、ヘパリチナーゼ消化物に抵抗力 のあるオリゴ糖類生成物として、 IdoA−GlcNSOsの同じ基礎的な2 糖類反復を含む。オリゴ−Hおよびオリゴ−Mは、同じ程度の硫酸化(それぞれ 、1.6.1.5の硫酸塩/2糖類)を有するが、オリゴ−Mは、オリゴ−Hに 置ける74%に比べて、IdoA (2Sl −a l、4−GlcNSO−の かたちで約60%の21類を含有する。The structural requirements for optimal high-affinity interaction with bFGF are Comparing the composition with oligosaccharides showing intermediate and low affinity for bFGF It can be indicated by These oligosaccharides are also resistant to heparitinase digests. As certain oligosaccharide products, the same basic 2 of IdoA-GlcNSOs Contains saccharide repeats. Oligo-H and Oligo-M have similar degrees of sulfation (respectively , 1.6.1.5 sulfate/disaccharide), but Oligo-M has oligo-H compared to 74% of IdoA (2Sl-al, 4-GlcNSO-). Contains about 60% of type 21 in form.

オリゴ−M内の約10%のアミノ糖は6−0−硫酸化され(表1)、全体の硫酸 化により、より低い濃度のIdoA (2S)に大きくオフセットする。2つの 留分の他の検出可能な差異は、サイズだけであり、オリゴ−Mはオリゴ−Hに置 ける7に比べて優勢的に6つの2糖類を含有する(第3図)。断片サイズおよび 工doA (2S)の豊富さの組み合わせ効果がbFGFとのオリゴ−Hのより 強い相互作用を容易にする重要な性質であると考えられる。IdoA (2S) の重要性は低い親和性断片オリゴ−しについての分析データによって強調され、 ここにおいて、はんの3%の2糖類がこの成分を含有し、シーケンス内で連続し 得るし得ないに係らず、2つ以下の基本的なIdoA−GlcNso、2糖類反 復ユニットであると思われる。しかしながら、オリゴ−Lは、GlcNSOs  (6S)およびGlcNAc (6S)のより高い含量の故に(表1)、なお高 度に硫酸化される(1.3硫酸塩/2@類)。また、オリゴ−しは、若干の特異 なりFGF結合活性を有し、その前述のシーケンスを有する主オリゴ糖類成分は 若干の有用性を持ち得る。Approximately 10% of the amino sugars within Oligo-M are 6-0-sulfated (Table 1), with total sulfate ion, there is a large offset to the lower concentration of IdoA (2S). two The only other detectable difference in the fractions is size, with oligo-M replacing oligo-H. It contains predominantly 6 disaccharides compared to 7 (Figure 3). Fragment size and The combined effect of the abundance of oligo-doA (2S) is greater than that of oligo-H with bFGF. This is considered to be an important property that facilitates strong interactions. IdoA (2S) The importance of Here, 3% of the disaccharides in the star contain this component and are consecutive in the sequence. Whether or not it is possible to obtain two or fewer basic IdoA-GlcNso, disaccharide reactions. It appears to be a recovery unit. However, oligo-L is GlcNSOs (6S) and GlcNAc (6S) (Table 1), even higher It is frequently sulfated (1.3 sulfates/2@). In addition, oligomers have some peculiarities. The main oligosaccharide component that has FGF binding activity and has the above-mentioned sequence is May have some utility.

こうして得られたデータはHSの構造異質性に若干関係のある識見を与える。The data thus obtained provide some relevant insight into the structural heterogeneity of HS.

大きなN−硫酸化オリゴ糖類の〇−硫酸化差はH3生合成の複雑なメカニズムに 反映し、2−および6−スルホトランスフェラーゼを独立して調節できる。Gl c N S OsおよびIdoA (2S)からなる特殊なシーケンスはbFG Fに対する強い結合を持っているように思えるが、異なった硫酸化パターンを持 つシーケンス、特に2−16−硫酸異性体の混合物を持つシーケンスは他のH3 結合タンパク質と相互作用する可能性があり、FGFファミリの他のメンバーが bFGFによって優先的に認識されるものとやや異なるHSシーケンスと優先的 に結合する可能性があると考えられる。したがって、同じ基本的な形質を保持し ながらも、ある種の構造変化について余裕があることは明らかである。特に、b FGF (またはa F G、F )にとっても、より高い比率の6硫酸化グル コサミン残留物は結合親和性に対してかなり有害であるように思えるし、また、 オリゴ−Mやオリゴ−しに類似するシーケンスでも、有用な程度の特異な結合親 和性を有するオリゴ糖類を与えるが、オリゴ−Hはど高くはない。Differences in 〇-sulfation of large N-sulfated oligosaccharides contribute to the complex mechanism of H3 biosynthesis. As a result, 2- and 6-sulfotransferases can be regulated independently. Gl c A special sequence consisting of N S Os and IdoA (2S) is bFG Although it seems to have strong binding to F, it has a different sulfation pattern. sequences, especially those with a mixture of 2-16-sulfate isomers, are may interact with binding proteins and other members of the FGF family HS sequences that are somewhat different from those preferentially recognized by bFGF and It is thought that there is a possibility of binding to thus retaining the same basic traits However, it is clear that there is room for certain structural changes. In particular, b For FGF (or aF G, F), a higher proportion of hexasulfated glucose Cosamine residues appear to be quite detrimental to binding affinity and also Oligo-M and sequences similar to oligo-M also have a useful degree of specific binding parentage. gives oligosaccharides with compatibility, but oligo-H is not very expensive.

グリコサミンオグリカン(GAG)における特異結合シーケンスの識別はこれら の生物学的留分の理解に重要である。ヘパリンにおけるアンチトロンビン−II I結合領域のシーケンスはこの分野での主たる進歩である(Lindahl、  198)。Identification of specific binding sequences in glycosamineoglycans (GAGs) is important for understanding biological fractions. Antithrombin-II in heparin The sequence of the I-binding region is a major advance in this field (Lindahl, 198).

相互作用は特異であり、比較的特異でない静電気力によって主として決定される よりもむしろ、個別の糖シーケンスおよび硫酸化パターンを必要とする。アンチ ロンビン−IIIはbFGFのHS/ヘパリン活性に類似する方法でヘパリンに よって活性化される。こうして、GAGとの特異な相互作用は潜伏性のタンパク 質を活性形態に変換することができ、本発明者等は、本発明のオリゴ糖類もFG F、たとえば、bFGFを活性化するのに効果があるということを示す証拠を得 た。しかしながら、活性化能力は、6未満の2糖類ユニツトからなるオリゴ糖類 には、少なくとも有意な程度で存在するようには思えない。HSに対するタンパ ク質リガンドまたは同様のGAGが既知であるとき、本発明に従ってここに開示 した方法(特異多糖類切断およびサイズ分割を親和性クロマトグラフィーによっ て追跡する)も、これら他の場合におけるタンパク質結合ドメインを分離し、特 徴付けるのに有用であると考えるべきである。Interactions are singular and determined primarily by relatively non-singular electrostatic forces Rather, it requires distinct sugar sequences and sulfation patterns. anti Thrombin-III acts on heparin in a manner similar to the HS/heparin activity of bFGF. Therefore, it is activated. Thus, the unique interaction with GAGs is a latent protein. The oligosaccharides of the present invention can also be converted into active forms. F, for example, has evidence that it is effective in activating bFGF. Ta. However, the activation ability is limited to oligosaccharides consisting of less than 6 disaccharide units. does not seem to exist, at least not to a significant extent. Tampa against HS When a protein ligand or similar GAG is known, it is disclosed herein in accordance with the present invention. method (specific polysaccharide cleavage and size partitioning by affinity chromatography) ) can also isolate protein-binding domains in these other cases and It should be considered useful for marking.

生物学的活性度 耐ヘパリチナーゼ・オリゴ糖類の生物学的活性度に関連して、FGF刺激性有糸 分裂誘発のHS依存式生物学的試験法を用いて、aFGFおよびbFGFのオリ ゴ糖類親和性、活性度の関係についてさらに研究を行った。この試験法は、化学 的塩素酸ナトリウム(多糖類硫酸化を抑制する)の存在の下に成長した3T3線 維芽細胞がaFGFまたはbFGFには応答しないが、培地にHSまたはヘパリ ン(1−1ong/mlはども少ない)を添加することによって応答性 (”H −サイミジンの取り込みによって測定したもの)が回復するという事実に基づい たものである。こうすることによって、FGFを活性化する外来性HSオリゴ糖 類の能力をテストすることができる。成る範囲の構造を有するオリゴ糖類の数お よびFGFに対する親和性を、特に、サイズdp6.8.10.12.14.1 6およびそれ以上のサイズ(ブタの粘膜細胞H3からのもの)の耐ヘパリチナー ゼ・オリゴ糖類について、この試験法を用いて研究した。bFGF、aFGFの 両方についての予備結果を第7図に示す。これは、dpi2より大きいオリゴ糖 類に活性があるのに対して、ctpioより小さいものが不活性であることを示 している。このことは、ヘパリチナーゼによってHSから切り取られた成る特定 の構造の大きい方のオリゴ糖類(およびここに記載したものに類似した構造と思 われるもの)のみがFGFを完全に生物学的に活性化することができ、小さい方 の構造は、たとえそれらが成る程度の結合親和性を持っているとしても、これら の成長因子を活性化しないということを示唆している。biological activity In relation to the biological activity of heparitinase-resistant oligosaccharides, FGF-stimulated mitosis Using a mitogenic HS-dependent biological assay, we determined the origin of aFGF and bFGF. Further research was conducted on the relationship between gosaccharide affinity and activity. This test method is 3T3 lines grown in the presence of sodium chlorate (which inhibits polysaccharide sulfation) Although fibroblasts do not respond to aFGF or bFGF, they do not respond to HS or heparin in the culture medium. The responsiveness ("H - based on the fact that thymidine uptake) is restored. It is something that By doing this, exogenous HS oligosaccharide that activates FGF You can test your abilities. The number of oligosaccharides with structures ranging from and affinity for FGF, especially size dp6.8.10.12.14.1 6 and larger size (from porcine mucosal cells H3) resistance to heparitin Zeoligosaccharides were studied using this test method. bFGF, aFGF Preliminary results for both are shown in FIG. This is an oligosaccharide larger than dpi2 This indicates that those smaller than ctpio are inactive, whereas those smaller than ctpio are active. are doing. This indicates that the specific Oligosaccharides with larger structures (and structures similar to those described here) only those that can fully biologically activate FGF, and the smaller structures, even though they have binding affinities of This suggests that it does not activate growth factors.

調製 実際に、本発明のオリゴ糖類を、研究実験作業に関連してここに説明したゲル濾 過クロマトグラフィーおよびFGF親和性クロマトグラフィーの技術を用いて、 純化した硫酸ヘパリン(天然、組み替えの両方)から調製できると便利であるが 、一般的には硫酸ヘパリンは純粋な調製目的のためには放射能ラベル付けする必 要はない。ヘパリチナーゼ切断によって誘導したオリゴ糖類は、紫外線領域(最 大232 nm)において強い吸収性を示す不飽和端末ウロン酸残留物によって 容易にモニタすることができる。preparation Indeed, the oligosaccharides of the present invention can be used in gel filtration as described herein in connection with research experimental work. Using techniques of perchromatography and FGF affinity chromatography, It would be convenient if it could be prepared from purified heparin sulfate (both natural and recombinant). , generally heparin sulfate does not need to be radioactively labeled for pure preparative purposes. There's no need. Oligosaccharides derived by heparitinase cleavage are due to unsaturated terminal uronic acid residues that exhibit strong absorption at 232 nm). Can be easily monitored.

本発明を実施し、本発明に従ってbFGFに対する比較的高い親和性を有するオ リゴ糖類製品を調製する好ましい方法の特殊な実施例を以下により詳しく説明す る。ここでは、硫酸ヘパラン・ソース物質の予備純化から開始する。Practicing the present invention, and according to the present invention, an agent having a relatively high affinity for bFGF Specific examples of preferred methods of preparing oligosaccharide products are described in more detail below. Ru. Here we begin with a preliminary purification of the heparan sulfate source material.

衷施例 旦旦の予備純化 PGおよびGACの抽出および純化のための一般的に適用できる手順は結合組織 および培養細胞の両方についての方法をカバーする2つの詳細な論文(Hein egard lk Sommarin、 1987. Methods in  Enzymology、 144.319−372; Yanag≠唐■奄狽= @et al、 1987. Methods in Enzymology、 138 .279−2891に記載されているが、この実施例の目的にとって好ましい手 順は培地で成長させた皮膚線雄弁細胞からのHSの純化について以下に説明する 。Compliance example Preliminary purification of Dandan A commonly applicable procedure for extraction and purification of PG and GAC is connective tissue Two detailed papers covering the method both for cultured cells (Hein et al. egard lk Sommarin, 1987. Methods in Enzymology, 144.319-372; Yanag≠Tang■Amaga= @et al., 1987. Methods in Enzymology, 138 .. 279-2891, but the preferred approach for the purposes of this example is The following describes the purification of HS from skin line eloquent cells grown in culture medium. .

線雄弁細胞の融合培養株をEagleの最小必須培地内で37℃[CO□/ai r、 1:19)に保持する。この培地には、15%(v/v) ドナー−仔ウ シ血清、2mM−グルタミン、1mM−ピルビン酸ナトリウム、非必須アミノ酸 、ペニシリン(100u口its/mll、ストレプトマイシンf100ug/ ml)を添加しである。A fused culture of eloquent cells was grown in Eagle's minimum essential medium at 37°C [CO□/ai r, 1:19). This medium contains 15% (v/v) donor-calf Citrus serum, 2mM-glutamine, 1mM-sodium pyruvate, non-essential amino acids , penicillin (100uits/ml, streptomycin f100ug/ml) ml) was added.

必要に応じて生合成放射能レベル付けを行った後に細胞を融合部で収穫できる[ Na”5O4(たとえば、10−50 uci/mlで)または[3H1グルコ サミン(たとえば、10−20 LL(:i/mllで]あるいはこれら両方で 72時間培養することによって]。HSは培地、細胞層の両方から抽出できる。Cells can be harvested at the fusion site after biosynthetic radioactivity leveling if necessary [ Na”5O4 (e.g. at 10-50 uci/ml) or [3H1 gluco Samin (for example, 10-20 LL (:i/ml)) or both by culturing for 72 hours]. HS can be extracted from both the culture medium and the cell layer.

培地を除去してから、細胞層を暖かい(37℃)のリン酸緩衝生理食塩水(PB S)で二回洗った。この混合溶液を遠心分離器にかけ(200xg、10分間) 、細胞その他のデブリをペレット状にし、こうしてできた上澄み液が培地抽出物 となる。HSは、0.05%(w/v) トリプシンで37℃のPBS内で30 分間処理することによって細胞層から効率よく抽出することができる。こうして できた上澄み細胞を上記と同様に遠心分離し、上澄み液を注意深く取り除く。ペ レットをPBSで二回洗浄した後、混合上澄み液は細胞層トリプシン抽出物とな る。After removing the medium, the cell layer was soaked in warm (37°C) phosphate-buffered saline (PB). Washed twice with S). Centrifuge this mixed solution (200xg, 10 minutes) , cells and other debris are pelleted, and the resulting supernatant is used as a medium extract. becomes. HS was incubated with 0.05% (w/v) trypsin for 30 min in PBS at 37°C. It can be efficiently extracted from the cell layer by processing for minutes. thus Centrifuge the resulting supernatant cells as above, and carefully remove the supernatant. Pe After washing the cells twice with PBS, the combined supernatant was used as a tryptic extract of the cell layer. Ru.

粗原料の可溶性抽出物をアニオン交換クロマトグラフィーによって初期純化する 。PBS内のサンプルをDEAE−3ephacelカラム(1cmx5cm) 上に装填し、20mMリン酸緩(1液内の0.3M NaC1,pH6,8で洗 浄し、汚染物質としてのタンパク質およびヒアルロン酸を溶離する。結合したま まのPGおよびGAGを20mMリン酸緩衝液内の成る濃度勾配、0.3−1. 0MのNaC1で溶離する。HSに相当する留分(代表的には約0.53M N aC1で溶離する)を収集し、プールし、溶離剤としての蒸留水で5ephad ex G−25カラム(2,5cmx40cm)上で脱塩し、凍結乾燥させる。Initial purification of the soluble extract of the crude material by anion exchange chromatography . Transfer the sample in PBS to a DEAE-3ephacel column (1cm x 5cm) Wash with 20mM phosphoric acid (0.3M NaCl in 1 solution, pH 6,8). to elute proteins and hyaluronic acid as contaminants. combined A concentration gradient of PG and GAG in 20 mM phosphate buffer, 0.3-1. Elute with 0M NaCl. A fraction corresponding to HS (typically about 0.53MN aC1) were collected, pooled and eluted for 5 ephads with distilled water as eluent. Desalt on ex G-25 column (2.5 cm x 40 cm) and lyophilize.

混入GAG (たとえば、硫酸コンドロイチンや硫酸デルマタン)の痕跡は、3 7℃で3−4に対してクロンドロイチナーゼABCの1ユニツトによって処理す ることによって除去できる。Traces of contaminated GAGs (for example, chondroitin sulfate and dermatan sulfate) are Treated with 1 unit of clondroitinase ABC for 3-4 at 7°C. It can be removed by

HSPGのタンパク質コアを次に除去するには、コンドロイチナーゼABCニブ ロナーゼ(5mg/ml最終濃度)と酢酸カルシウムを添加し、37℃で24時 間消化させればよい。H3連鎖は、0.3NaC1で汚染物を溶離下後にIMN aClでDEAE−3ephacelからの段階的溶離によって修復する。HS を含有する留分を次に100℃で10分間加熱し、次いで、蒸留水での透析(S pectrapor 7高純度透析膜を使用)を行うか、あるいは、上述の5e pbadex G−25カラム上で脱塩するかしてから凍結乾燥する。The protein core of the HSPG is then removed using chondroitinase ABC nibs. Add lonase (5 mg/ml final concentration) and calcium acetate for 24 hours at 37°C. Just let it digest for a while. The H3 chain was removed by IMN after eluting contaminants with 0.3NaCl. Repair by stepwise elution from DEAE-3ephacel with aCl. H.S. The fraction containing S is then heated at 100°C for 10 min and then subjected to dialysis (S pectrapor 7 high purity dialysis membrane) or the above 5e Desalt on a pbadex G-25 column and lyophilize.

1、イオリゴ糖類を選択的に製造するためのHSの解重A上記のように純化した 生合成で3Hまたは”SO4あるいはこれら両方をラベル付けしたH3連鎖をヘ パリチナーゼたとえば、東京のSeikagaku Kogya Co、の販売 するヘパリチナーゼI (E、C,4,2,2,81で処理し、比較的低い硫酸 化の領域内で切断を行い、N−1〇−硫酸基およびイズロン酸残留物内に豊富な より高度に硫酸化されたドメインをそのまま残す。一層詳しく言えば、凍結乾燥 したHSのサンプル(7X10’ dpm ’川を、0.2mMの酢酸カルシウ ムを含有するpH7,0の20(’)LLlの100mM酢酸ナトリウム内にお いて37℃で16時間へバリチナーゼT (5ミリユニツト)によって処理し、 次いでさらなる一定量の5ミリユニツトのヘパリチナーゼを添加し、37℃で1 時間培養する。消化は、普通は、3−4時間で完了するが、通常は、16時間続 けてすべてのへバリチナーゼ高感度結合部の完全な切断を行わなければならない 。この反応の進行状況は、未ラベル付きHSの場合、消化生成物の非還元端での 4.5−不飽和ヘクスローネ残留物の形成による282nmでの吸光度の増加を 測定することによってモニタできる。100℃で2分間加熱することによって消 化は終了する。1. Depolymerization of HS for selective production of ioligosaccharides A. Purified as above. In biosynthesis, H3 chains labeled with 3H or SO4 or both are Paritinase, for example, sold by Seikagaku Kogya Co. in Tokyo. Heparitinase I (E, C, 4, 2, 2, 81 treated with relatively low sulfuric acid) The cleavage is carried out within the region of Leaving the more highly sulfated domains intact. More specifically, freeze-drying A sample of HS (7 x 10'dpm) was diluted with 0.2mM calcium acetate. in 20(')LLl of 100mM sodium acetate at pH 7.0 containing and treated with baritinase T (5 milliunits) for 16 hours at 37°C. A further aliquot of 5 milliunits of heparitinase was then added and incubated at 37°C for 1 hour. Incubate for hours. Digestion is usually complete in 3-4 hours, but usually lasts 16 hours. complete cleavage of all hebaritinase-sensitive junctions must be performed. . The progress of this reaction is shown in the case of unlabeled HS at the non-reducing end of the digestion products. 4.5 - Increase in absorbance at 282 nm due to formation of unsaturated hexrone residue Can be monitored by measuring. Extinguish by heating at 100℃ for 2 minutes. The process ends.

HSからの硫酸化ドメインの選択的な調製を行う別の化学的な方法は、多糖類を 特別にde−N−acetylateシてから、生じたN−未置換グルコサミン 残留物で特殊な切断を行うことである。方法論的な詳細は既に詳しく説明されて いる(311akleeand Conrad (19841,Biochem 、J、217. 187−197; Guo and Conrad (198 91CAna lytical Biochemistry、 176、96−104)。簡単 に言えば、de−N−acetylationは、1%(W/V)ヒドラジン硫 酸を含有する70%(W/V)水様ヒドラジン内において約4時間96℃でサン プルを加熱することによってヒドラジン分解で実施する。空気流の中で乾燥した 後、500mM硫酸を添加することによって混合物を中性化する。次に、サンプ ルをpH4,0で脱アミノ酸切断し、そうしてできたN−未置換グルコサミン残 留物で特異切断する。この方法は、非還元端でそのままのへキスロネート残留物 で終りかつ還元端で2.5−アンヒドロマンノーゼ残留物で終るという点で、ヘ パリチナーゼ処理によって調製したものとは異なるオリゴ糖類を生成する。2. 5−アンヒドロマンノーゼ残留物は、通常、NaBH4放射能ラベルで還元する ことによって2、Erannhydro−D−mannitol誘導物に変換さ れ、この段階で必要に応じて、還元剤としてNal1″lLを用いてオリゴ糖類 へ導入できる。Another chemical method for selective preparation of sulfated domains from HS is to convert polysaccharides into After special de-N-acetylation, the resulting N-unsubstituted glucosamine It involves making special cuts with the residue. The methodological details have already been explained in detail. (311akleand Conrad (19841, Biochem , J, 217. 187-197; Guo and Conrad (198 91CAna Lytical Biochemistry, 176, 96-104). easy In other words, de-N-acetylation is 1% (W/V) hydrazine sulfate. Sanated at 96°C for approximately 4 hours in 70% (w/v) aqueous hydrazine containing acid. Perform hydrazinolysis by heating the pull. dried in an air stream Afterwards, the mixture is neutralized by adding 500mM sulfuric acid. Then the sump The N-unsubstituted glucosamine residue produced by deamino acid cleavage at pH 4.0 Special cleavage with distillate. This method produces intact hexuronate residues at the non-reducing end. and a 2,5-anhydromannose residue at the reducing end. It produces oligosaccharides different from those prepared by palitinase treatment. 2. 5-Anhydromannose residues are usually reduced with NaBH4 radiolabel 2, converted into an Erannhydro-D-mannitol derivative. At this stage, if necessary, oligosaccharides are added using Nal 1″lL as a reducing agent. Can be introduced to

ゲル濾過によるオリゴ糖、の′割 ヘパリチナーゼはたは化学的)処理法のオリゴ@類生成物は、ゲル濾過クロマト グラフィーによりサーrズに基づいて部分的に溶解し、その結果、個々のビーり が定まった数の2糖類ユニツトからなるオリゴ糖類の開部合物からなり、サイズ が2糖類から上方の範囲に入り、それぞれが1つの完全な2糖類ユニツトのサイ ズの増加分だけ次のものから異なる。分析の目的(たとえば、サンプルを約10 mgまで充填する目的)には、Blo−Ge1 PGまたは13io−Gel  PIO(Biarad Ltd、から市販されている)でパックしたカラム(1 x120cmまたはIX240cm)が適当であるが、より大きな量の分離のた めには、カラムの直径を適当に大きくしてスケールアップを行うとよい。サンプ ルはゲルの頂部に装填し、4ml/時の流量で500m1JのNILIICO, によって溶離する。1mlの留分を収集し、HSがラベル付きである場合に液体 シ〉′チレーション計数を行うためにそれぞれの留分から少量ずつ採取する。あ るいは、個々の留分の232nm吸光度を測定するかあるいは紫外線モニタで連 続的に232nm吸光度を測定するかすることによって未′ラベル付きHSオリ ゴ糖類を検出する。定まったサイズ(標準値で予め較正することによって決定さ れる)のオリゴ糖類ビークに対応する留分をプールし、凍結乾燥する。第8図は 上述した3Hラベル付き線雄弁細胞H3のへバリチナーゼ消化物のBlo−Ge 1 PGのゲル濾過についての代表的な結果を示す。Oligosaccharides by gel filtration, Oligo@ products of heparitinase or chemical treatment methods are purified by gel filtration chromatography. Partially dissolved based on the surms by graphography, resulting in individual bead formation. It consists of an open compound of oligosaccharides consisting of a fixed number of disaccharide units, and the size ranges upward from disaccharides, each containing one complete disaccharide unit. differs from the following by an increment of . the purpose of the analysis (e.g., sample approximately 10 For filling up to mg), use Blo-Ge1 PG or 13io-Gel A column (1 x 120 cm or IX 240 cm) are suitable, but for separation of larger volumes For this purpose, it is recommended to scale up the column by appropriately increasing the diameter of the column. sump The gel was loaded on top of the gel, and the NILIICO was loaded at a flow rate of 4 ml/h to 500 ml/J. Elute by Collect 1 ml of fractions and add liquid if HS is labeled. A small sample is taken from each fraction for stilation counting. a Alternatively, measure the absorbance of individual fractions at 232 nm or monitor them continuously with a UV monitor. Unlabeled HS ori Detects gosaccharides. Fixed size (determined by pre-calibration with standard values) The fractions corresponding to the oligosaccharide peaks (reduced) are pooled and lyophilized. Figure 8 is Blo-Ge of the hebaritinase digest of the 3H-labeled linear eloquent cells H3 described above. 1 Representative results for gel filtration of PG are shown.

bFGFI ロ クロマトグラフ −による第1ゴ糖 の 旬定まった量の2糖 類ユニツトからなるオリゴ糖類混合物を含有する個々のピークを、bFGFに対 する親和性に基づいてさらに分割する。Affi−Gel 10上に固定化され たbFGFを含有する分析スケールの親和性基質の調製は先に説明した。調製ス ケールで用いるために、同様の手順を実施するが、結合したbFGFの量および ゲル量は必要なサンプル・キャパシティによって決まる。以下、この特別の実施 例の線雄弁細胞H3かもの3Hラベル付きHSオリゴ糖類の分離のためにbFG F−Af f i −Ge 110を使用した場合を説明する。Determined amount of disaccharide of primary gosaccharide by bFGFI chromatography Individual peaks containing oligosaccharide mixtures consisting of similar units were compared to bFGF. further split based on affinity. Immobilized on Affi-Gel 10 The preparation of analytical scale affinity substrates containing bFGF was previously described. Preparation For use in Kale, a similar procedure is carried out, but the amount of bFGF bound and The amount of gel depends on the required sample capacity. Below, this special implementation Example of line eloquent cell H3 or bFG for isolation of 3H labeled HS oligosaccharides A case where F-Af f i -Ge 110 is used will be explained.

約1mlのbFGF−Affi−Gel 10親和性基質をガラスカラム(ベッ ド直径6mmx35mm)にパックする。10mM)リスHCI内において0゜ 25m1/分の流量でカラム上にサンプルを装填する。未結合物質を溶離するた めに、1ml留分を5つ集める。結合物質は、0.5ml/分の流量で成る濃度 勾配の塩化ナトリウム(カラムバッファ内で0−2M NaC1)によって溶離 する。これは、不連続の段階的な濃度勾配(たとえば、250mM NaC1の ステップまたは他の適当な増分でNaC1の濃度を増大させる)ことによってお こうなうと便利である。各濃度で、1ml留分を5回ずつ収集する。あるいは、 結合断片を溶離し、1mlの留分を集めるために、線形の連続した濃度勾配(た とえば、50rnlの全体積の場合)を用いるとよい。液体シンデレージョン計 数(または、紫外線吸光度検出)のために各留分から少量ずつ採取する。Approximately 1 ml of bFGF-Affi-Gel 10 affinity substrate was added to the glass column. 6mm in diameter x 35mm). 10mM) 0° in squirrel HCI Load the sample onto the column at a flow rate of 25 ml/min. to elute unbound material. Collect five 1 ml fractions. The binding substance is concentrated at a flow rate of 0.5 ml/min. Elute with a gradient of sodium chloride (0-2M NaCl in column buffer) do. This can be achieved by using a discrete stepwise concentration gradient (e.g. 250mM NaCl). step or other suitable increments). This is convenient. Five 1 ml fractions are collected at each concentration. or, To elute the bound fragments and collect 1 ml fractions, a linear continuous concentration gradient ( For example, in the case of a total volume of 50 rnl) may be used. liquid cinderosis meter Sample a small amount from each fraction for counting (or UV absorbance detection).

第6図はBlo−Ge1 P6ゲル濾過によって調製した異なったサイズ(dp 2−dp14)の耐ヘパリチナーゼ・オリゴ糖類ビークのbFGF親和性クロマ トグラフィーの代表的な結果を示す。bFGFに対して同じ親和性を有するオリ ゴ糖類を含有する選定留分をプール]ノ、5pectrapor 710100 O−cut−off membrane (Pierce Ltdlを用いて蒸 留水に対して透析を行うか、あるいは、10m1/時の流量で500mM NH ,HCO,によって溶離したBlo−Ge1 P2カラム上で再度ゲル濾過を行 うかすることによって脱塩し、凍結乾燥する。特に興味のある留分はdi)=1 2、dp=14についてのものである。Figure 6 shows different sizes (dp) prepared by Blo-Ge1 P6 gel filtration. bFGF affinity chroma of heparitinase-resistant oligosaccharide peak of 2-dp14) Representative results of tography are shown. Ori with the same affinity for bFGF Pool selected fractions containing gosaccharides] 5 pectrapor 710100 O-cut-off membrane (evaporated using Pierce Ltd. Perform dialysis against distilled water or 500mM NH at a flow rate of 10ml/hour. Gel filtration was performed again on the Blo-Ge1 P2 column eluted with ,HCO, Desalt by drying and lyophilize. The fraction of particular interest is di) = 1 2, dp=14.

付加的久粧化: bFGFに対する選定された特異な親和性を持つオリゴ糖類の付加的な純化は、 ゲル濾過クロマトグラフィーおよびbFGF親和性クロマトグラフィーのさらな るステップによって達成できる。これは、たとえば、予備的実験において実施さ れた。この予備実験に関しては、第2図が、親和性カラムへの二回目の付与に続 (bFGF親和性ステップによる低(750mM留分)、中(1000mM留分 )および高(≧1250mM留分)について選定されたオリゴ糖類のbFGF親 和性分布を示している。さらに、また、所望に応じて、2つの付加的な技術、す なわち、主としてアニオン交換性に従って分離する強アニオン交換(SAX)H PLCと、優先的に分子サイズに従って分離する濃度勾配ポリアクリルアミド・ ゲル電気泳動(PAGE)との適用によって見かけ上駒質な状態までオリゴ糖類 なさらに純化することもできる。Additional cosmetics: Additional purification of oligosaccharides with selected specific affinities for bFGF Further analysis of gel filtration chromatography and bFGF affinity chromatography This can be achieved by following steps. This has been done, for example, in preliminary experiments. It was. For this preliminary experiment, Figure 2 shows that following the second application to the affinity column. (low (750mM fraction), medium (1000mM fraction) by bFGF affinity step bFGF parent of oligosaccharides selected for ) and high (≧1250mM fraction) It shows a compatibility distribution. Additionally, if desired, two additional techniques can also be used: That is, strong anion exchange (SAX) H which separates mainly according to anion exchangeability PLC and concentration gradient polyacrylamide that preferentially separates according to molecular size. By applying gel electrophoresis (PAGE), oligosaccharides can be reduced to an apparently solid state. Moreover, it can be further purified.

こうして、SAX HPLCクロマトグラフィーによって結合オリゴ糖類の純度 を高めるために、ProPac PALカラム(Dionex Ltd製)、分 析用カラム(4X250mm)あるいは半調製用カラム(9x 250mm)に ついて分離を行う。1ml/分で可動層(HCIでp)(3,5まで調節した二 重蒸留水)において均衡させた後、ザンブルを注入し、オリゴ糖類を同じ可動層 において塩化ナトリウムの線形濃度勾配〔8分以上でO−2M)で溶離する。溶 離液は未ラベル付きオリゴ糖類の検出のためには紫外線吸光度(A、、、)につ いてインラインでモニタするか、または、放射能について(たとえば、(:an berra Packard LtdのRadiomaticFlo−one/ Beta A−200detectorのようなインライン・モニタを使用して )モニタする。Thus, the purity of the bound oligosaccharides can be determined by SAX HPLC chromatography. In order to increase the For analytical columns (4 x 250 mm) or semi-preparative columns (9 x 250 mm) and separate it. Mobile phase (p with HCI) (adjusted to 3,5) at 1 ml/min. After equilibration in double-distilled water), inject the Zamble and transfer the oligosaccharides to the same mobile layer. Elute with a linear gradient of sodium chloride (0-2M over 8 minutes) at . melt Syneresis is useful for detecting unlabeled oligosaccharides using ultraviolet absorbance (A,...). or monitor inline for radioactivity (e.g. (:an Radiomatic Flo-one by berra Packard Ltd. Using an inline monitor like the Beta A-200detector ) to monitor.

濃度勾配PAGE法は、先行刊行物〔たとえば、J、E、 & Gallagh er、 J、T、 (19881Biochem、 J、 251.597−6 08; Turnbull、 J、E、 & Gallagher、 J、T、 (19X0) Bi ochem、 J、 265.715−724; Turnbull et a l (19931、”Approaches to the@5truct ural analysis of GAGS’ in Extracellu lar Matrix Macromolecules: ` Practic al Approach、 0xford University Press ; Turnbull [1993)、 ”Oligosaモモ■≠窒奄р■ mapping and 5equence analysis of GAG s”、 in Methods in Mo1ecular@Biology: Membrane Methods、 Hummans Press、 Cha pter 24)に詳しく記載されている。この方法論は見かけ上駒質なシング ルスペシーに大きなオリゴ糖類の鎖部合物を溶解するための非常に強力な技術を 提供し、これは、適当な装置を用いてゲルから直接溶離するか、あるいは、正荷 電のナイロン膜にゲルから電気移送させ、上記の参考文献に記載されているよう に塩での溶離によって膜から回収するかすることによって大量のオリゴ糖類の分 離のために調製スケールに適用することができるこれらの技術の種々の組み合わ せは本発明によるよ(定まったオリゴ糖類生成物(特異なシーケンスおよびbF GFのような成長因子に対して定まった親和性を有する)の均質調製の最終純化 を非常に高度に行うことを可能とする。The concentration gradient PAGE method has been described in previous publications [e.g., J.E. & Gallagh er, J, T, (19881Biochem, J, 251.597-6 08; Turnbull, J.E. & Gallagher, J.T. (19X0) Bi ochem, J, 265.715-724; Turnbull et a l (19931, “Approaches to the@5truct ural analysis of GAGS' in Extracellu lar Matrix Macromolecules: ` Practic al Approach, 0xford University Press ; Turnbull [1993), “Oligosa momo mapping and 5 sequence analysis of GAG s”, in Methods in Mo1ecular@Biology: Membrane Methods, Humans Press, Cha pter 24). This methodology is a seemingly simple thing. Luspecie is a very powerful technique for dissolving large oligosaccharide chain compounds. This can be eluted directly from the gel using suitable equipment or Electrotransfer from the gel to a nylon membrane as described in the above references. Large amounts of oligosaccharides can be recovered from the membrane by elution with salt or Various combinations of these techniques can be applied to the preparation scale for separation. according to the present invention (defined oligosaccharide products (specific sequences and bF Final purification of homogeneous preparations with defined affinities for growth factors such as GF can be carried out to a very high degree.

オリゴ糖類シーケンスの基本的な特徴が識別され、特異なFGF結合親和性(オ リゴ−Hの場合、ヘパラン硫酸と同じオーダーであり得る)を生じることを特徴 とする限り、この知識がこれらのオリゴ糖類および同様の結合親和性を持つ類似 物を合成するのも可能とし、普通の合成方法を用いる要件に適うように「テーラ −メイド」とすることができることは了解されたい。たとえば、これらの化合物 が3タイプの主2糖類ユニットを構築するように関係できる限り、これらのユ「 −−] ロー]「−一コ ニットの先駆体はIg、Ig、6で示され、これらが−メチルクロロアセI−ニ ル(OMCA)保護端末基、たとえば、できる。MCAOおよびOAC基は、選 択的に、たとえば、それぞれピリジン、ヒドラジンによって−OH基に変換でき 、必要数のBユニットを最初に相互に結合させ、次いで、必要な端末ユニットを 選択的に結合させて連鎖を構築することが可能であり、また、こうしてできた構 造物に必要に応じて脱アシレーション、〇−硫酸化、水素化分解、N硫酸化を行 うことができる。それによって、最終製品を得ることができる。合成方法につい ての一般的な説明は、D、A、 Lane & V、 Lindahlの編集に なるrHeparinJ 、第51頁以降を参照されたい。Basic features of oligosaccharide sequences have been identified and unique FGF binding affinities ( In the case of Rigo-H, it is characterized by producing As far as this knowledge is concerned, these oligosaccharides and similar It is also possible to synthesize objects, and to meet the requirements of using ordinary synthesis methods, "tailoring" is possible. - Please understand that it is possible to say "maid". For example, these compounds These units can be related to construct three types of main disaccharide units. −-] Low] “-one piece Precursors of nits are designated as Ig, Ig, 6, and these are -methylchloroacetyl-ni (OMCA) protected terminal group, e.g. MCAO and OAC groups are selected Alternatively, it can be converted into an -OH group by, for example, pyridine or hydrazine, respectively. , the required number of B units are first coupled together, and then the required terminal units are connected to each other. It is possible to build chains by selectively combining them, and the structures created in this way can Perform deacylation, 〇-sulfation, hydrogenolysis, and N-sulfation as necessary for the product. I can. Thereby, a final product can be obtained. About the synthesis method A general explanation of See rHeparin J, pages 51 et seq.

塗原里途 一般に、本発明のオリゴ糖類製品の治療用途および治療の必要性からの哺乳動物 への投与のためには、有効成長因子結合量の活性オリゴ糖類(薬学的に強できる 塩の形であり得る)は、任意適当な要領、たとえば、経口的、非経口的(皮下的 、筋肉内的、静脈内的を含む)、局所的、あるいは、移植のための遅速放出投与 装置で投与するための準備が整った薬学的な製剤として構成されることになる。Rito Nurihara In general, mammals from therapeutic uses and therapeutic needs of the oligosaccharide products of the present invention. For administration to patients, an effective growth factor-binding amount of active oligosaccharides (pharmaceutically potent salt form) may be administered in any suitable manner, e.g., orally, parenterally (subcutaneously). (including intramuscular, intravenous), topical, or slow-release administration for implantation. It will be configured as a pharmaceutical formulation ready for administration by the device.

このような製剤は単位投薬形態で与えてもよいし、薬学分野ではよく知られた方 法のうちの任意のものによって調製した薬学組成物からなるものであってもよく 、その場合、活性オリゴ糖類成分(単数または複数)は匹敵する薬学的に許容で きるキャリヤ、稀釈剤または添加剤となる少なくとも1つの他の成分と緊密に組 み合っているか混合している。あるいは、このような製剤は匹敵するあるいは比 較的不活性の薬学的に許容できる物質の保護エンベロープを包含し、このエンベ ロープ内に任意の他の成分と組み合わせたり、混合したりすることの有無に係ら ず活性オリゴ糖類成分(単数または複数)を収容してもよい。Such preparations may be given in unit dosage form and may be provided by those well known in the pharmaceutical field. may consist of a pharmaceutical composition prepared by any of the methods , in which case the active oligosaccharide component(s) is a comparable pharmaceutically acceptable component. in intimate association with at least one other component that serves as a carrier, diluent or additive. Matched or mixed. Alternatively, such formulations may be comparable or comparable. Contains a protective envelope of relatively inert pharmaceutically acceptable substances; whether or not combined or mixed with any other ingredients within the rope. The active oligosaccharide component(s) may also be included.

ここで、薬学的用途のために、本発明のオリゴ糖類をヘパリチナーゼ切断で得ら れるように非還元端を不飽和とする形とすると好ましいことに注目されたい。Here, for pharmaceutical use, the oligosaccharides of the present invention can be obtained by heparitinase cleavage. It should be noted that it is preferable to make the non-reducing end unsaturated, as shown in FIG.

これは、この形が効果を低下させる可能性のあるバイオ変態により大きな耐性を 持ち得る成る種の証拠があるからである。しかしながら、これはすべての用途に とって必須であるわけではない。This means that this form is more resistant to biometamorphosis, which can reduce effectiveness. This is because there is a wealth of evidence that can be held. However, this is not true for all applications. It's not necessarily necessary.

口径投与に適する本発明の製剤は、たとえば、カプセル、カシェ剤、錠剤または トローチ剤のような個別の単位で与えることができる。各単位に所定量の活性成 分を収容する。カプセルが最も効果的な経口投与手段を与える好ましいタイプの 製剤である。非経口投与のためには、製剤は使用準備の整った密封アンプルに収 容した所定量の活性オリゴ糖類の滅菌液状薬剤であるとよい。Formulations of the invention suitable for oral administration are, for example, capsules, cachets, tablets or It can be presented in discrete units such as lozenges. Each unit has a predetermined amount of active ingredient. Accommodate minutes. The preferred type is that capsules provide the most effective means of oral administration. It is a formulation. For parenteral administration, the formulation should be packaged in sealed ampoules ready for use. The active oligosaccharide may be a sterile liquid drug containing a predetermined amount of the active oligosaccharide.

本発明のオリゴ糖類製品の量および有効な治療用途に必要な投与生活規制はもち ろん種々であり、最終的には各特定の用途で哺乳動物を治療する医学あるいは獣 医学の施術者の判断による。このような施術者、たとえば、内科医によって考慮 されるべき因子は、治療されつつある特定の疾患(および成長因子刺激あるいは 成長因子抑制が必要かどうか)のみならず、薬学的な薬剤の投与ルートおよびタ イプ、すなわち、哺乳動物の体重、表面積、年齢および一般的な状態も含んでい る。しカルながら、たとえば、抗腫瘍治療に適した有効bFGF抑制投与量は、 おそらくは、体重1キログラムあたり約1.0から75mgの範囲であり、好ま しくは約5〜40 m gであり、最も適当な投与量は10〜30mg/kgの 範囲にある。たとえば、毎日の治療の際には、全−日投与量は、単回投与量、多 回投与量、たとえば、−日当たり2回から6回、あるいは、任意選定した期間に 静脈注入によって与えることができる。たとえば、75kgの哺乳動物の場合、 投与量範囲は、おそらくは、−日あたり約75〜loomgであり、代表的な投 与量は、普通、−日あたり約100mgであろう。個別の多回投与量が示される 場合には、代表的には、処置は前述したように50mgのオリゴ糖類製品を錠剤 、カプセル、液体(たとえば、シロップ)あるいは注射の形で一日あたり4回与 え得ことになるかも知れない。The amount of oligosaccharide products of the present invention and the dosage regimen necessary for effective therapeutic use are limited. There are many different types of medical or veterinary medicine that ultimately treat mammals for each specific use. At the discretion of the medical practitioner. Considered by such practitioners, e.g. The factors to be treated are specific to the specific disease being treated (and growth factor stimulation or whether growth factor suppression is necessary) as well as the route and type of administration of the pharmaceutical agent. It also includes the type, i.e., weight, surface area, age and general condition of the mammal. Ru. However, for example, an effective bFGF-suppressing dose suitable for antitumor therapy is Probably in the range of about 1.0 to 75 mg per kilogram of body weight, which is preferred. or about 5-40 mg, and the most suitable dose is 10-30 mg/kg. in range. For example, for daily treatment, the total daily dose may be a single dose, multiple doses, in multiple doses, e.g. - 2 to 6 times per day, or for any selected period of time. Can be given by intravenous infusion. For example, for a 75 kg mammal, The dosage range is likely to be about 75 to loomg per day, with a typical The dosage will normally be about 100 mg per day. Individual multiple doses indicated In this case, treatment typically involves administering 50 mg of the oligosaccharide product as a tablet as described above. , given 4 times per day in capsule, liquid (e.g. syrup) or injection form. It might turn out to be a good thing.

先に指摘したように、必要な処置がbFGFのような成長因子を投与して、たと えば、創傷治療の用途におけるように組織の修復を促進することを必要とする場 合には、活性オリゴ糖類成分を成長因子と一緒に投与してもよい。As pointed out earlier, the necessary treatment is to administer growth factors such as bFGF and For example, when it is necessary to promote tissue repair, such as in wound treatment applications. In some cases, the active oligosaccharide component may be administered together with growth factors.

創傷治療用途および成長因子活性度を増大あるいは刺激するのが望ましい場合の 他の医学的用途、たとえば、骨折治療、神経再生、十二指腸潰瘍、静脈性潰瘍、 種々の眼球、網膜疾患、アンプローム性tjj脈硬化症、退行性筋肉疾患、虚血 、の治療用途、あるいは、放射線治療中の激しい損傷から組織を保護するための 用途と関連しての用途とは別に、本発明のオリゴ糖類成分または製品の医学用途 は、おそらくは、成長因子活性の抑制に的を絞ることが最も多く、これらのオリ ゴ糖類を含む薬剤または組成物は、先に述べたように、有害な成長または細胞増 殖を促進する成長因子の活性度の結果として生じるまたは悪化させられる症状、 たとえば、糖尿病性m膜症、水晶嚢混濁、増殖性硝子体網膜症、腫瘍血管形成、 ガン細胞成長、ガン細胞転移、リュウマチ様動脈炎、穏やかな筋ジス1〜ロフイ ー症、アルツハイマー症、種々のウィルス性感染症(たとえば、Herpes  Simpley、 typel)あるいは血管形成術その他の慢性炎に続く再狭 窄のような症状を処置するのに特に有用であると予想される。For wound treatment applications and where it is desired to increase or stimulate growth factor activity. Other medical uses, such as fracture treatment, nerve regeneration, duodenal ulcer, venous ulcer, Various ocular and retinal diseases, amploic TJJ artery sclerosis, degenerative muscle diseases, ischemia , therapeutic applications, or to protect tissue from severe damage during radiation therapy. Medical uses of the oligosaccharide components or products of the invention, apart from their uses in connection with their uses. are probably most often focused on inhibiting growth factor activity, and these Drugs or compositions containing gosaccharides may cause harmful growth or cell proliferation, as discussed above. symptoms that result from or are exacerbated by the activity of growth factors that promote reproduction; For example, diabetic membrane disease, capsular opacity, proliferative vitreoretinopathy, tumor angiogenesis, Cancer cell growth, cancer cell metastasis, rheumatoid arteritis, mild muscular dystrophy Alzheimer's disease, various viral infections (e.g. Herpes Simple, type) or re-stenosis following angioplasty or other chronic inflammation. It is expected to be particularly useful in treating conditions such as stenosis.

既にわかっているように、本発明は多数の異なった局面を提供し、−M的には、 ここに明確にあるいは暗黙裡に開示した、新規な成分を含む新規で進歩性のある 特徴および局面のすべてを単独であるいは互いに組み合わせて含むものである。As already understood, the present invention provides a number of different aspects, including: Novel and inventive materials containing novel ingredients, expressly or implicitly disclosed herein; It includes all features and aspects singly or in combination with each other.

さらに、本発明の範囲は例示した実施例によっであるいはここで説明のためにの み用いた用語および表現によって制限されるものではない。Furthermore, the scope of the invention may be determined by the illustrated embodiments or by way of explanation herein. It is not intended to be limited by the terms and expressions used.

留分量 留分量 +0 50 60 70 80 90 留分量 留分量 留分量 (iml ] = 10 15 20 25 :o 35留分子fi (Lml) 010020030040口5aO (何、血) !ロロ:り0300MAjロロ (n(、mll Oフ 補正書の翻訳文提出書 (特許法第184条の8) 1、特許出願の表示 PCT/GB931005973、特許出願人 住 所 イギリス国 ロンドン エヌダブリュ14ジエイエルレージエンツ パ ーク ケンブリッジ テラス 6−10ケンブリツジ ハウス 名 称 カンサー リサーチ キャンペーン テクノロジー4、代理人〒107 住 所 東京都港区赤坂2丁目2番21号(1) 補正書の翻訳文 1通 逍但犯凶I弧塚匹 12 線雄弁細胞成長因子(FGF)に対する特異な結合親和性を有するオリゴ 糖類生成物であり、ヘパラン硫酸のヘパリチナーゼによる解重合によって得るこ とができ、FGF結合親和性に関してほぼ均質であり、また、本質的に、連続シ ーケンスの硫酸化2糖類ユニツトを包含する少なくとも6つの2糖類ユニツトを 含有する非ヘパリン・オリゴ糖類がらなり、これら硫酸化211Wlユニツ)・ の各々がI\1−硫酸化グルコサミン残留物(±63)と2−0−硫酸化イズロ ン酸残留物とからなり、C6で〇−硫酸化されたオリゴ糖類連鎖内のグルコサミ ン残留物の含量(もしあるとして)が20%未満であることを特徴とするオリゴ 糖類生成物。Distillate amount Distillate amount +0 50 60 70 80 90 Distillate amount Distillate amount Distillate amount (iml) = 10 15 20 25: o 35 fraction molecule fi (Lml) 0100200300405aO (What, blood) ! Rolo: Ri0300MAj Rolo (n(, mll Ofu Submission of translation of written amendment (Article 184-8 of the Patent Act) 1. Indication of patent application PCT/GB931005973, patent applicant Address: London, United Kingdom, NL 14, PA Cambridge Terrace 6-10 Cambridge House Name: Cancer Research Campaign Technology 4, Agent: 107 Address: 2-2-21 Akasaka, Minato-ku, Tokyo (1) 1 translation of the written amendment Shodan-kun Ikuzuka-Ryo 12 Oligos with unique binding affinity for eloquent cell growth factor (FGF) It is a sugar product obtained by the depolymerization of heparan sulfate by heparitinase. are nearly homogeneous with respect to FGF binding affinity, and are essentially continuous series. at least six disaccharide units including sulfated disaccharide units of Contains non-heparin oligosaccharides, these sulfated 211 Wl units). each of I\1-sulfated glucosamine residue (±63) and 2-0-sulfated glucosamine residue (±63) Glucosamines in oligosaccharide chains that are 0-sulfated at C6 and consist of acid residues. Oligos characterized in that the content of carbon residues (if any) is less than 20%. Sugar products.

2、 請求の範囲第1項記載のオリゴ糖類生成物において、前記硫酸化2@類ユ ニツトの各々がIdoA (2Sl−αI、4−GICNSO3であることを特 徴とするオリゴ糖類生成物。2. In the oligosaccharide product according to claim 1, the sulfated 2@ class Each of the nits is IdoA (2Sl-αI, 4-GICNSO3). Characteristic oligosaccharide products.

3、 請求の範囲第1項または第2記載のオリゴ糖類生成物において、前記オリ ゴ糖類連鎖が10未満の2糖類ユニツトのシーケンスからなることを特徴とする オリゴ糖類生成物。3. In the oligosaccharide product according to claim 1 or 2, the oligosaccharide product according to claim 1 or 2, characterized in that the gosaccharide chain consists of a sequence of less than 10 disaccharide units Oligosaccharide products.

4、 請求の範囲第1項から第3項のうちいずれが1つに記載のオリゴ糖類生成 物において、ヘパリチナーゼによる解重合に対してはほぼ完全な抵抗を示すが、 ヘパリナーゼによる解重合には示さないことを特徴とするオリゴ糖類生成物5、  請求の範囲第1項から第4項のうちいずれが1つに記載のオリゴ糖類生成物に おいて、前記オリゴ糖類連鎖の少なくとも優先的な大部分すべてが同じ長さであ ることを特徴とするオリゴ糖類生成物。4. Oligosaccharide production according to any one of claims 1 to 3 It shows almost complete resistance to depolymerization by heparitinase, but Oligosaccharide products 5 characterized in that they are not susceptible to depolymerization by heparinase; Any one of claims 1 to 4 may include an oligosaccharide product according to one of claims 1 to 4. in which at least a preferential majority of said oligosaccharide chains are all of the same length. An oligosaccharide product characterized by:

6、 請求の範囲第1項空第5項のうちいずれか1つに記載のオリゴ糖類生成物 において、前記オリゴ糖類連鎖のほぼすべてが6つの2@類ユニットのシーケン スからなることを特徴とするオリゴ糖類生成物。6. Oligosaccharide product according to any one of Claims 1 to 5 In this case, almost all of the oligosaccharide chains have a sequence of six 2@ class units. An oligosaccharide product characterized in that it consists of

7、 請求の範囲第1項から第6項のうちいずれか1つに記載のオリゴ糖類生成 物において、oij記オリゴ糖類連鎖が少なくとも4つの前記硫酸化2糖類ユニ ツトの連続シーケンスを包含することを特徴とするオリゴ糖類生成物。7. Oligosaccharide production according to any one of claims 1 to 6 in which the oij oligosaccharide chain comprises at least four of the sulfated disaccharide units. An oligosaccharide product characterized in that it contains a continuous sequence of .

8、 請求の範囲第1項空第4項のうちいずれか1つに記載のオリゴ糖類生成物 において、はぼすべてのオリゴ糖類連鎖が7つの2糖類ユニツトのシーケンスか らなり、これらの2糖類ユニットのうちの少なくとも5つが前記の硫酸化2糖類 ユニツトの連続シーケンスに含まれていることを特徴とするオリゴ糖類生成物。8. Oligosaccharide product according to any one of claims 1 to 4 In this case, almost all oligosaccharide chains are sequences of seven disaccharide units. and at least five of these disaccharide units are the aforementioned sulfated disaccharide units. An oligosaccharide product characterized in that it is comprised in a continuous sequence of units.

94 請求の範囲第1項から第8項のうちいずれか1つに記載のオリゴ糖類生成 物において、オリゴ糖類連鎖内の(もしあるとすれば)、C6で〇−硫酸化され たグルコサミン残留物の含量がグルコサミン残留物の全数の20%未満であるこ とを特徴とするオリゴ糖類生成物。94 Oligosaccharide production according to any one of claims 1 to 8 〇-sulfated at C6 in the oligosaccharide chain (if any) in The content of glucosamine residues added is less than 20% of the total number of glucosamine residues. An oligosaccharide product characterized by:

10、請求の範囲第9項記載のオリゴ糖類生成物において、(もしあるとして) C6で〇−硫酸化されたオリゴ糖類連鎖内のグルコサミン残留物の含量がグルコ サミン残留物の全数の5%未満であることを特徴とするオリゴ糖類生成物。10. In the oligosaccharide product according to claim 9, (if any) The content of glucosamine residue in the oligosaccharide chain 〇-sulfated at C6 is An oligosaccharide product characterized in that it contains less than 5% of the total number of samin residues.

11、請求の範囲第1項から第10項のうちいずれか1つに記載のオリゴ糖類生 成物において、ヘパリチナーゼで最大範囲まで酵素部分解重合を行ってからたと えばゲル濾過サイズ排除クロマトグラフィーを用いてサイズ分割し、次いでサイ ズ分割段階から回収した選定留分(単数または複数)に関して、固定化リガンド としてFGF成長因子を用いて親和性クロマトグラフィーを行ってFGF結合断 片を分離し、次に成る塩濃度勾配、有利には、逐次段階的な濃度勾配の下に成る 範囲の塩濃度にわたって選択的に溶離を行い、前記断片をFGF結合親和性に関 して分割し、最も強い結合の断片を回収し、オプションとして、さらに回収生成 物のサイズ分割および選択の少なくとも1つの付加的な段階を実施することによ って回収生成物をさらに純化することによりヒトの線雄弁細胞ヘパラン硫酸プロ テオグリカン(H3PG)のヘパラン硫酸(HS)から得ることができることを 特徴とするオリゴ糖類生成物。11. Oligosaccharide raw material according to any one of claims 1 to 10 The product was subjected to enzymatic partial depolymerization to the maximum extent with heparitinase and then size separation using, for example, gel filtration size exclusion chromatography and then sizing. For the selected fraction(s) recovered from the fractionation step, the immobilized ligand FGF binding was cleaved by affinity chromatography using FGF growth factor. The pieces are separated and then subjected to a salt concentration gradient, advantageously successive stepwise concentration gradients. Selective elution was performed over a range of salt concentrations and the fragments were analyzed for FGF binding affinity. to collect the strongest bonded fragments and optionally generate further collections. by performing at least one additional step of object sizing and selection. By further purifying the recovered product, human eloquent cell heparan sulfate protein was purified. Theoglycan (H3PG) can be obtained from heparan sulfate (HS). Characterized oligosaccharide products.

12、 ll維雄弁胞成長因子(FGF)に対する特異な結合親和性を有するオ リゴ糖類生成物であり、 (a)優勢的に以下の分子種からなり、XはnHexA−GlcNSOs (± 63)であり、YはIdoA(2S)−GlcNSOs (±6S)であり、Z はIdoA−GlcR(±65)またはIdoA (2S)−GlcR(±6S )であり、ここで、RはN50MまたはNAcであり、nは4〜7の範囲にあり 。12. An ointment with a unique binding affinity for fibrosal vesicle growth factor (FGF) is a oligosaccharide product; (a) Predominantly consists of the following molecular species, where X is nHexA-GlcNSOs (± 63), Y is IdoA(2S)-GlcNSOs (±6S), and Z is IdoA-GlcR (±65) or IdoA (2S)-GlcR (±6S ), where R is N50M or NAc and n ranges from 4 to 7. .

(b)もしあるとして、6−〇−硫酸基を有する単糖類残留物の含量が20%未 満であり、 (C)ヘパラン硫酸をヘパリチナーゼで消化してその部分解重合を最大範囲まで 行い、次いで、生成したオリゴ糖類混合物をたとえばゲル濾過サイズ排除クロマ トグラフィーを用いてサイズ分解し、12〜18の単糖類残留物の範囲内で選定 した成る特定のサイズを有するオリゴ糖類連鎖を含む留分を収集し、この選定し た留分に固定化FGFリガンドを用いて親和性クロマトグラフィーを行い、成る 塩濃度範囲にわたる塩濃度勾配の下に溶離することによってより強<FGF結合 している成分を回収し、最高塩濃度でのみ分離する結合物質を含む選定留分を回 収することからなるプロセスによって得ることができることを特徴とするオリゴ 糖類生成物。(b) the content of monosaccharide residues with 6-0-sulfate groups, if any, is less than 20%; full, (C) Heparan sulfate is digested with heparitinase to achieve its partial depolymerization to the maximum extent. and then the resulting oligosaccharide mixture is subjected to e.g. gel filtration size exclusion chromatography. Size-resolved using totography and selected within the range of 12-18 monosaccharide residues Collect the fraction containing oligosaccharide chains with a specific size and select this The obtained fraction was subjected to affinity chromatography using immobilized FGF ligand. Stronger <FGF binding by elution under a salt gradient over a range of salt concentrations Select fractions containing bound substances that separate only at the highest salt concentration are recycled. Oligos characterized in that they can be obtained by a process consisting of Sugar products.

13、請求の範囲第12項記載のオリゴ糖類生成物において、YがもっばらId oAf2s)−GlcNSO,であることを特徴とするオリゴ@類生成物。13. In the oligosaccharide product according to claim 12, Y is predominantly Id oAf2s)-GlcNSO.

14、請求の範囲第12項または第13項に記載のオリゴ糖類生成物において、 nが5または6であることを特徴とするオリゴ糖類生成物。14. In the oligosaccharide product according to claim 12 or 13, An oligosaccharide product characterized in that n is 5 or 6.

15、請求の範囲第14項記載のオリゴ糖類生成物において、前記分子種が全部 で7つの2@類ユニツトからなることを特徴とするオリゴ糖類生成物。15. The oligosaccharide product according to claim 14, wherein all of the molecular species are An oligosaccharide product characterized in that it consists of seven 2@ class units.

16、請求の範囲第12項または第13項記載のオリゴ糖類生成物において、n が4であり、前記分子種の2糖類ユニツトの全数が6であることを特徴とするオ リゴ糖類生成物。16. In the oligosaccharide product according to claim 12 or 13, n is 4, and the total number of disaccharide units of the molecular species is 6. Ligosaccharide products.

17、請求の範囲第12項から第16項のうちいずれか1つに記載のオリゴ糖類 生成物において、もしあるとして、6−0−硫酸基を有する残留物の含量が単糖 類残留物の全数の5%未満であることを特徴とするオリゴ糖類生成物。17. Oligosaccharide according to any one of claims 12 to 16 In the product, the content of residues with 6-0-sulfate groups, if any, is An oligosaccharide product characterized in that it contains less than 5% of the total number of oligosaccharide residues.

18、線雄弁細胞成長因子(FGF)に対する特異な結合親和性を有し、はとん どすべてがオリゴ糖類連鎖からなり、これらオリゴ糖類連鎖が長さが14個の単 糖類残留物であり、各々がGlcNSOs [±6S+残留物に結合したIdo A (2Sl残留物からなる5または6の2糖類ユニツトの一体連続シーケンス を含有し、20%未満のグルコサミン残留物(端末あるいは内部)が6−〇−硫 酸化されていることを特徴とするオリゴ糖類生成物。18, has a unique binding affinity for filamentous cell growth factor (FGF), All are composed of oligosaccharide chains, and these oligosaccharide chains are 14 monomers in length. sugar residues, each containing GlcNSOs [±6S+Ido bound to the residues. A (an integral continuous sequence of 5 or 6 disaccharide units consisting of 2Sl residues) containing less than 20% glucosamine residue (terminal or internal) Oligosaccharide products characterized by being oxidized.

19、請求の範囲第18項記載のオリゴ糖類生成物において、オリゴ糖類連ln l GlcA−GlcNSOa−[IdoA(2S)−GlcNSOsls−I doA−GlcRlおよび (nl GlcA−[GlcNSO,−IdoA(2Sl]a−GlcRから選 定されたものであり、ここでRがNSO,またはNAcであることを特徴とする オリゴ糖類生成物。19. The oligosaccharide product according to claim 18, wherein the oligosaccharide series ln l GlcA-GlcNSOa-[IdoA(2S)-GlcNSOsls-I doA-GlcRl and (selected from nl GlcA-[GlcNSO, -IdoA(2Sl]a-GlcR) characterized in that R is NSO or NAc. Oligosaccharide products.

20、線雄弁細胞成長因子(FGF)に対する特異な結合親和性を有するオリゴ 糖類生成物であり、はとんどすべてが長さが12個の単糖類残留物であるオリゴ 糖類連鎖からなり、4つの2糖類ユニツトの一体連続シーケンスを含有し、各2 糖類湯がGlcNSO,(±6S)残留物に結合したl5oA (2S)からな り、20%未満のグルコサミン残留物(端末または内部)が6−0−硫酸化され ていることを特徴とするオリゴ糖類生成物。20. Oligos with unique binding affinity for filamentous cell growth factor (FGF) oligosaccharide products, which are almost all monosaccharide residues 12 in length. It consists of a saccharide chain, containing an integral continuous sequence of four disaccharide units, each containing two The saccharide is composed of 15oA (2S) bound to GlcNSO, (±6S) residue. less than 20% glucosamine residue (terminal or internal) is 6-0-sulfated. An oligosaccharide product characterized by:

2、特許請求の範囲第20項記載のオリゴ糖類生成物において、優先的なオリゴ 糖類連鎖シーケンスが (nl GlcA−GlcNSO−(±6Sl −[1doA (2S)−Gl cNSO,)4−IdoA−GlcR(±6Slであり、ここでRがNSO3ま たはNAcであることを特徴とするオリゴ糖類生成物。2. In the oligosaccharide product according to claim 20, preferential oligosaccharides The sugar linkage sequence (nl GlcA-GlcNSO-(±6Sl-[1doA (2S)-Gl cNSO,)4-IdoA-GlcR (±6Sl, where R is NSO3 or or NAc.

22、基本的な線雄弁細胞成長因子(bFGF)に対して比較的高い特異な結合 親和性を有し、実質的に以下の2糖類シーケンスを有するオリゴ糖類連鎖からな ることを特徴とするオリゴ糖類生成物。22. Relatively high specific binding to basic eloquent cell growth factor (bFGF) consisting of an oligosaccharide chain having a disaccharide sequence substantially as follows: An oligosaccharide product characterized by:

nGlcA−β】、4−GlcNSO−al、4−[IdoAf2S)−al、  4−GlcNSOsls−al、4−Id。nGlcA-β], 4-GlcNSO-al, 4-[IdoAf2S)-al, 4-GlcNSOsls-al, 4-Id.

A−al、4−GlcRまたは nGlcA−[GlcNSOs −IdoA (2Sl ] a−GlcRここ で、RはNSO,またはNAcであり、または、その小変化が少な(ともbFG Fに対する同じ比較的高い特異な結合親和性を有する ことを特徴とするオリゴ糖類生成物。A-al, 4-GlcR or nGlcA-[GlcNSOs-IdoA (2Sl)] a-GlcR here In this case, R is NSO or NAc, or its small change is small (both bFG have the same relatively high specific binding affinity for F. An oligosaccharide product characterized by:

23、ヘパラン硫酸のようなグリコサミノグリカンから請求の範囲第1項から第 22項までのいずれか1つに記載のオリゴ糖類生成物を分離する方法であって、 このオリゴ糖類性が純化された比較的均質な状態で小さいオリゴ糖類からなり、 これらのオリゴ糖類が、前記グリコサミノグリカンに結合するかあるいは多細胞 生体系における対応するプロテオグリカンに結合する線雄弁細胞成長因子((a ) 固定化した親和性リガンドとして前記線雄弁細胞成長因子のサンプルを含有 する親和性クロマトグラフィー基質または基体を作成する段階と、 (b) 選択切断試薬で前記グリコサミノグリカンを処理して、比較的低い硫酸 化領域において選択的にその多糖類連鎖を断ち切る段階と、(C) たとえばゲ ル濾過サイズ排除クロマトグラフィーで段階(b)の製品にサイズ分割を行い、 そこから選択的に、10個未満の2糖類ユニツトからなるオリゴ糖類を含むと思 われる留分を収集する段階と、(d) 段階(a)からの親和性クロマトグラフ ィー基質または基体を、4ないし9の範囲の特殊な数の2糖類ユニツトを含む段 階(C)からの選定留分あるいは選定留分セットと接触させて、固定化線雄弁細 胞成長因子に対して少なくとも若干の結合親和性を有するグリコサミノグリカン のサイズ選定オリゴ糖類断片を抽出し、前記基質または基体上に保持する段階と 、 (e) 徐々に塩濃度または塩濃度勾配を高めながら親和性クロマトグラフィー 基質または基体を溶離する段階と、 (f) 選定した最大の溶離塩濃度範囲で溶離するオリゴ糖類断片を含む留分ま たは留分セットを回収する段階と、そして、オプションとして、(g) 段階( f)からの選定留分または留分セットの製品を段階(b)から得た反応混合物の 代わりに段階(f)で回収した前記選定留分または留分セットを用いて段階(c )を選択的に繰り返し、また、オプションとして、段階(d)、 (e)および (f)を繰り返すことによってさらに純化する段諧と を包含することを特徴とする方法。23. From glycosaminoglycans such as heparan sulfate, 23. A method for separating oligosaccharide products according to any one of clauses 22 to 22, comprising: This oligosaccharide property is purified and consists of small oligosaccharides in a relatively homogeneous state, These oligosaccharides bind to the glycosaminoglycans or Linear cell growth factors ((a) that bind to the corresponding proteoglycans in biological systems ) Containing a sample of the linear cell growth factor as an immobilized affinity ligand creating an affinity chromatography substrate or substrate for (b) Treating the glycosaminoglycan with a selective cleavage reagent to achieve relatively low sulfuric acid (C) selectively severing the polysaccharide chain in the polysaccharide region; and (C) for example, size separation of the product of step (b) by filtration size exclusion chromatography; Selectively, it is thought to contain oligosaccharides consisting of less than 10 disaccharide units. (d) collecting the fraction from step (a); and (d) affinity chromatography from step (a). The substrate or substrate is modified to contain a specific number of disaccharide units ranging from 4 to 9. In contact with the selected fraction or selected fraction set from floor (C), the fixed wire eloquent fine Glycosaminoglycans that have at least some binding affinity for cell growth factors extracting and retaining the sized oligosaccharide fragments on said substrate or substrate; , (e) Affinity chromatography while gradually increasing salt concentration or salt concentration gradient eluting the substrate or substrate; (f) Fractions containing oligosaccharide fragments that elute within the selected maximum eluting salt concentration range. and, optionally, step (g) ( f) of the reaction mixture obtained from step (b). Alternatively, the selected fraction or set of fractions recovered in step (f) may be used to carry out step (c). ) and optionally repeat steps (d), (e) and Steps that are further refined by repeating (f) A method characterized by comprising:

2、特許請求の範囲第23項記載の方法において、グリコサミノグリカンが哺乳 動物の細胞のヘパラン硫酸プロテオグリカンから誘導したヘパラン硫酸であり、 線雄弁細胞成長因子が、生理学的条件の下に活性化されたときに補乳動物細胞の 表面にある信号伝送受容体との結合相互作用によって哺乳動物細胞を刺激するサ イトカインであることを特徴とする方法。2. In the method according to claim 23, the glycosaminoglycan is Heparan sulfate derived from heparan sulfate proteoglycan of animal cells, The eloquent cell growth factor of mammalian cells when activated under physiological conditions A substance that stimulates mammalian cells through binding interactions with signal-transmitting receptors on their surface. A method characterized by being an itkine.

2、特許請求の範囲第24項記載の方法において、選択的切断試薬がヘパリチナ ーゼであり、ヘパラン硫酸がヘパリチナーゼ選択結合部の切断が完了するまで消 化することによって最大範囲まで部分的に解重合されることを特徴とする方法2 、特許請求の範囲第24項記載の方法において、選択的切断試薬が亜硝酸であり 、これがヘパラン硫酸のN−説アセチル化剤での先立った処理の後に約pH4で 多pi類と反応してそれを遊離アミン基のところで切断することを特徴どする方 法。2. The method according to claim 24, wherein the selective cleavage reagent is heparitina Heparan sulfate is quenched until cleavage of the heparitinase-selective bond is completed. Process 2 characterized in that partial depolymerization is achieved to the greatest extent by , the method according to claim 24, wherein the selective cleavage reagent is nitrous acid. , which after prior treatment of heparan sulfate with an N-type acetylating agent at a pH of about 4. A method characterized by reacting with a polypi compound and cleaving it at a free amine group. Law.

2、特許請求の範囲第23項から第26項までのうちいずれか1つに記載の方法 おいて、線雄弁細胞成長因子が基本線雄弁細胞成長因子(bFGF)であること を特徴とする方法。2. The method according to any one of claims 23 to 26 In this case, the line eloquent cell growth factor is the basic line eloquent cell growth factor (bFGF). A method characterized by:

2、特許請求の範囲第23項から第27項までのうちいずれか1つに記載の方法 おいて、サイズ分割段階から収集した留分が7つの2糖類ユニツトからなるオリ ゴ糖類を含有すると思われるものであることを特徴とする方法。2. The method according to any one of claims 23 to 27 In this case, the fraction collected from the size separation step was divided into an ori- um consisting of seven disaccharide units. A method characterized in that the product is believed to contain gosaccharides.

2、特許請求の範囲第23項から第27項までのうちいずれか1つに記載の方法 おいて、サイズ分割段階から収集された留分が6つの2糖類ユニツトからなるオ リゴ糖類を含有する思われるものであることを特徴とする方法。2. The method according to any one of claims 23 to 27 In this case, the fraction collected from the size-splitting step is divided into olefins consisting of six disaccharide units. A method characterized in that the product is believed to contain oligosaccharides.

30、 請求の範囲第1項から第22項のうちいずれか1つに記載のオリゴ糖類 生成物であって、たとえば、創傷治療、骨折治療、神経再生、十二指腸潰瘍、静 脈性潰瘍、種々の眼球、網膜疾患、アンチローム性動脈硬化症、虚血の症状にお いであるいは放射線治療中の激しい損傷から組織を保護するために治療を必要と している哺乳動物の治療の際に治療または組織修復を促進するための活性FGF 活性刺激剤として治療に用いられることを特徴とするオリゴ糖類生成物。30. Oligosaccharide according to any one of claims 1 to 22 products, such as wound treatment, fracture treatment, nerve regeneration, duodenal ulcers, static For pulsatile ulcers, various ocular and retinal diseases, antiromantic arteriosclerosis, and ischemic symptoms. treatment is required to protect tissue from severe damage during radiation therapy or radiation therapy. active FGF for promoting therapy or tissue repair in the treatment of mammals with An oligosaccharide product characterized in that it is used therapeutically as an active stimulant.

31、請求の範囲第30項のオリゴ糖類生成物がらなり、それを上述の治療を実 施する際に共に投与する外来性FGF成長因子と組み合わせたことを特徴とする 医学組成物。31, comprising the oligosaccharide product of claim 30, which is used to carry out the above treatment. It is characterized in that it is combined with an exogenous FGF growth factor that is administered together with the treatment. Medical composition.

32、特許請求の範囲第1項から第22項までのいずれか1つに記載のオリゴ糖 類生成物であり、たとえば、糖尿病性網膜症、水晶嚢混濁、増殖性硝子体網膜症 、腫瘍血管形成、ガン細胞成長、ガン細胞転移、リュウマチ様動脈炎、穏やかな 筋ジストロフィー症、アルツハイマー症、種々のウィルス性感染症〔たとえば、 11erpes Simplex type liあるいは血管形成術後書狭窄 のような症状に関連して治療を必要とする哺乳動物を治療する際に細胞成長また は細胞増殖を制御または低減するための活性FGF活性抑制剤として治療に用い ることを特徴とするオリゴ糖類生成物。32, the oligosaccharide according to any one of claims 1 to 22 For example, diabetic retinopathy, capsular opacity, proliferative vitreoretinopathy. , tumor angiogenesis, cancer cell growth, cancer cell metastasis, rheumatoid arteritis, mild Muscular dystrophy, Alzheimer's disease, various viral infections [e.g. 11erpes Simplex type li or post-angioplasty stenosis cell growth or is used therapeutically as an active FGF activity inhibitor to control or reduce cell proliferation. An oligosaccharide product characterized by:

33、請求の範囲第1項空第22項のうちのいずれか1つに記載したオリゴ糖類 生成物あるいはその薬学的に許容できる塩と、薬学的に許容できるキャリヤまた はビイヒクルとからなるF G F活性変調剤を治療上有効な無毒員を包含する 医学用途のための薬剤または薬学組成物。33. Oligosaccharides according to any one of Claims 1 and 22 The product or a pharmaceutically acceptable salt thereof and a pharmaceutically acceptable carrier or includes a therapeutically effective non-toxic agent comprising a vehicle and a FGF activity modulator. A drug or pharmaceutical composition for medical use.

34、請求の範囲第1項から第22項のうちのいずれか1つに記載のオリゴ糖類 生成物を、糖尿病性網膜症、水晶嚢混濁、増殖性硝子体w4膜症、腫瘍血管形成 、ガン細胞成長、ガン細胞転移、リュウマチ様動脈炎、穏やかな筋ジストロフィ ー症、アルツハイマー症、種々のウィルス性感染症〔たとえば、Herpes  Simplex type l)あるいは血管形成術後書狭窄の治療に用いるた め、あるいは、創傷治療、骨折治療、神経再生、十二指腸潰瘍、種々の眼球、網 膜疾患、アンチローム性動脈硬化症、退行性筋肉疾患、虚血のような症状の治療 に用いるため、または放射線治療中の激しい損傷から組織を保護するために損傷 した組織の修復を促進する際に用いるためのオリゴ糖類生成物。34, the oligosaccharide according to any one of claims 1 to 22 The product can be used to treat diabetic retinopathy, lens capsule opacity, proliferative vitreous W4 membrane disease, and tumor angiogenesis. , cancer cell growth, cancer cell metastasis, rheumatoid arteritis, mild muscular dystrophy Alzheimer's disease, various viral infections [e.g. Herpes disease] Simplex type l) or for use in the treatment of stenosis after angioplasty. or for wound treatment, fracture treatment, nerve regeneration, duodenal ulcers, various ocular and ocular Treatment of conditions such as membranous disease, antiloamic atherosclerosis, degenerative muscle disease, and ischemia. damaged to protect tissue from severe damage during radiotherapy or to protect tissue from severe damage during radiation therapy. Oligosaccharide products for use in promoting repair of damaged tissues.

35、線雄弁細胞成長因子(FGF)に対して特異な結合親和性を有し、本質的 に、オリゴ糖類連鎖からなり、これらのオリゴ糖類連鎖がFGF結合親和性に関 してほぼ均質であり、端末残留物の間に複数の硫酸化2糖類ユニツトを包含する 10未満の2糖類ユニツトのシーケンスを含有し、各硫酸化2糖類ユニツトがN −硫酸化グルコサミン残留物(±63)と2−0−硫酸化イズロン酸残留物とか らなり、5%未満の前記グルコサミン残留物が6−0−硫酸基を有することを特 徴とするオリゴ糖類生成物。35, has a unique binding affinity for filamentous cell growth factor (FGF) and is essentially It consists of oligosaccharide chains, and these oligosaccharide chains are related to FGF binding affinity. It is almost homogeneous and contains multiple sulfated disaccharide units between the terminal residues. Contains a sequence of less than 10 disaccharide units, each sulfated disaccharide unit being N -Sulfated glucosamine residue (±63) and 2-0-sulfated iduronic acid residue etc. and less than 5% of said glucosamine residue has 6-0-sulfate groups. Characteristic oligosaccharide products.

36、補乳動物の線雄弁細胞成長因子の活性度を制御するのに用いる薬学組成物 または薬剤であり、疾患の治療において組織の修復を促進したり、または、細胞 成長または血管形成を抑制したりするためのものであり、請求の範囲第35項記 載の本質的に純粋なオリゴ糖類生成物を治療上有効な量包含することを特徴とす る薬学組成物または薬剤。36. Pharmaceutical composition used to control the activity of eloquent cell growth factor in mammalian mammals or drugs that promote tissue repair or cell therapy in the treatment of diseases. It is for suppressing growth or angiogenesis, and is defined in claim 35. characterized in that it contains a therapeutically effective amount of an essentially pure oligosaccharide product of A pharmaceutical composition or drug.

37、創傷、十二指腸潰瘍、静脈性潰瘍、種々の眼球、網膜疾患、または虚血の 場合に治癒または組織修復を促進するために、あるいは、骨折治癒を促進するた めに、あるいは、放射線処置中の激しい損傷から組織を保護するために哺乳動物 を治療する方法であって、このような処置を必要とする哺乳動物に、請求の範囲 第35項あるいは第1項から第22項のうちいずれか1つに記載の本質的に純粋 なオリゴ糖類生成物を有効量投与することからなる方法。37. Wounds, duodenal ulcers, venous ulcers, various ocular, retinal diseases, or ischemia. or to promote healing or tissue repair in cases of fracture healing. or to protect tissues from severe damage during radiation procedures. a method of treating a mammal in need of such treatment; Essentially pure as described in paragraph 35 or any one of paragraphs 1 to 22 a method comprising administering an effective amount of an oligosaccharide product.

38、請求の範囲第37項記載の方法であって、オリゴ糖類生成物がbFGFの 薬剤と一緒に投与されることを特徴とする方法。38. The method of claim 37, wherein the oligosaccharide product is bFGF. A method characterized in that it is administered together with a drug.

39、 FGF成長因子活性度を抑制することによって補乳動物における糖尿病 性網膜症、水晶嚢混濁、増殖性硝子体網膜症、腫瘍血管形成、ガン細胞成長、ガ ン細胞転移、リュウマチ様動脈炎、穏やかな筋ジストロフィー症、アルツハイマ ー症、種々のウィルス性感染症(たとえば、Herpes Simplex t ype l)または血管形成術後書狭窄を治療する方法であって、請求の範囲第 35項または請求の範囲第1項から第22項までのいずれか1つの項に記載の本 質的に純粋なオリゴ糖類生成物の有効量を治療を必要とする哺乳動物に投与する ことからなる方法。39. Diabetes in dairy animals by suppressing FGF growth factor activity sexual retinopathy, capsular opacity, proliferative vitreoretinopathy, tumor angiogenesis, cancer cell growth, cancer cell metastasis, rheumatoid arteritis, mild muscular dystrophy, Alzheimer's disease infections, various viral infections (e.g., Herpes Simplex ype l) or post-angioplasty stenosis, comprising: The book described in item 35 or any one of claims 1 to 22 administering an effective amount of a qualitatively pure oligosaccharide product to a mammal in need of treatment; A method consisting of things.

国際調査報告 11.111.陶 PCT/(至)93100597フロントページの続き (72)発明者 タンブル、ジエレミー イワンイギリス国 マンチェスター  エム211ワイジー、チョールトンーカムーハーディ、キルディア ロード 7international search report 11.111. Pottery PCT/(to) 93100597 Continuation of front page (72) Inventor Tumble, Jeremy Ivan Manchester, United Kingdom M211 Wysey, Chorlton-Cumoohardy, Killdeer Road 7

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1.線維芽細胞成長因子(FGF)に対する特異な結合親和性を有するオリゴ糖 類生成物であり、本質的にオリゴ糖類連鎖からなり、これらのオリゴ糖類連鎖が FGF結合親和性に関してほぼ均質であり、また、少なくとも6つの2糖類ユニ ットを含有し、これら2糖類ユニットが硫酸化2糖類ユニットの連続シーケンス を包含し、これら硫酸化2糖類ユニットの各々がN−硫酸化グルコサミン残留物 (±6S)と2−O−硫酸化イズロン酸残留物とからなることを特徴とするオリ ゴ糖類生成物。 2.請求の範囲第1項記載のオリゴ糖類生成物において、前記硫酸化2糖類ユニ ットの各々がIdoA(2S)−α1、4−GlcNSO3であることを特徴と するオリゴ糖類生成物。 3.請求の範囲第1項または第2記載のオリゴ糖類生成物において、前記オリゴ 糖類連鎖が10未満の2糖類ユニットのシーケンスからなることを特徴とするオ リゴ糖類生成物。 4.請求の範囲第1項から第3項のうちいずれか1つに記載のオリゴ糖類生成物 において、ヘパリチナーゼによる解重合に対してはほぼ完全な抵抗を示すが、ヘ パリナーゼによる解重合には示さないことを特徴とするオリゴ糖類生成物5.請 求の範囲第1項から第4項のうちいずれか1つに記載のオリゴ糖類生成物におい て、前記オリゴ糖類連鎖の少なくとも優先する大部分がすべて同じ長さであるこ とを特徴とするオリゴ糖類生成物。 6.請求の範囲第1項空第5項のうちいずれか1つに記載のオリゴ糖類生成物に おいて、前記オリゴ糖類連鎖のほぼすべてが6つの2糖類ユニットのシーケンス からなることを特徴とするオリゴ糖類生成物。 7.請求の範囲第1項から第6項のうちいずれか1つに記載のオリゴ糖類生成物 において、前記オリゴ糖類連鎖が少なくとも4つの前記硫酸化2糖類ユニットの 連続シーケンスを包含することを特徴とするオリゴ糖類生成物。 8.請求の範囲第1項空第4項のうちいずれか1つに記載のオリゴ糖類生成物に おいて、ほぼすべてのオリゴ糖類連鎖が7つの2糖類ユニットのシーケンスから なり、これらの2糖類ユニットのうちの少なくとも5つが前記の硫酸化2糖類ユ ニットの連続シーケンスに含まれていることを特徴とするオリゴ糖類生成物。 9.請求の範囲第1項から第8項のうちいずれか1つに記載のオリゴ糖類生成物 において、オリゴ糖類連鎖内の(もしあるとすれば)、C6でO−硫酸化された グルコサミン残留物の含量が20%未満であることを特徴とするオリゴ糖類生成 物。 10.請求の範囲第9項記載のオリゴ糖類生成物おいて、(もしあるとして)、 C6でO−硫酸化されたオリゴ糖類連鎖内のグルコサミン残留物の含量が5%未 満であることを特徴とするオリゴ糖類生成物。 11.請求の範囲第1項から第10項のうちいずれか1つに記載のオリゴ糖類生 成物において、ヘパリチナーゼで最大範囲まで酵素部分解重合を行ってからたと えばゲル濾過サイズ排除クロマトグラフィーを用いてサイズ分割し、次いでサイ ズ分割段階から回収した選定留分(単数または複数)に関して、固定化リガンド としてFGF成長因子を用いて親和性クロマトグラフィーを行ってFGF結合断 片を分離し、次に或る壇濃度勾配、有利には、逐次段階的な濃度勾配の下に或る 範囲の塩濃度にわたって選択的に溶離を行い、前記断片をFGF結合親和性に関 して分割し、最も強い結合の断片を回収し、オプションとして、さらに回収生成 物のサイズ分割および選択の少なくとも1つの付加的な段階を実施することによ って回収生成物をさらに純化することによりヒトの線維芽細胞ヘパラン硫酸ブロ テオクリカン(HSPG)のヘパラン硫酸(HS)から得ることができることを 特徴とするオリゴ糖類生成物。 12.線維芽細胞成長因子(FGF)に対する特異な結合親和性を有するオリゴ 糖類生成物であり、 (a)優勢的に以下の分子種からなり、▲数式、化学式、表等があります▲ ここで、 Xは∩HexA−GlcNSO3(±6S)であり、YはIdoA(2S)−G lcNSO3(±6S)であり、ZはIdoA−GlcR(±6S)またはId oA(2S)−GlcR(±6S)であり、ここで、RはNSO3またはNAc であり、nは4〜7の範囲にあり、 (b)もしあるとして、6−O−硫酸基を有する単糖類残留物の含量が20%未 満であり、 (c)ヘパラン硫酸をへパリチナーゼで消化してその部分解重合を最大範囲まで 行い、次いで、生成したオリゴ糖類混合物をたとえばゲル濾過サイズ排除クロマ トグラフィーを用いてサイズ分解し、12〜18の単糖類残留物の範囲内で選定 した或る特定のサイズを有するオリゴ糖類連鎖を含む留分を収集し、この選定し た留分に固定化FGFリガンドを用いて親和性クロマトグラフィーを行い、或る 塩濃度範囲にわたる塩濃度勾配の下に溶離することによってより強くFGF結合 している成分を回収し、最高塩濃度でのみ分離する結合物質を含む選定留分を回 収することからなるプロセスによって得ることができることを特徴とするオリゴ 糖類生成物。 13.請求の範囲第12項記載のオリゴ糖類生成物において、YがもっぱらId oA(2S)−GlcNSO3であることを特徴とするオリゴ糖類生成物。 14.請求の範囲第12項または第13項に記載のオリゴ糖類生成物において、 nが5または6であることを特徴とするオリゴ糖類生成物。 15.請求の範囲第14項記載のオリゴ糖類生成物において、前記分子種が全部 で7つの2糖類ユニットからなることを特徴とするオリゴ糖類生成物。 16.請求の範囲第12項または第13項記載のオリゴ糖類生成物において、n が4であり、前記分子種の2糖類ユニットの全数が6であることを特徴とするオ リゴ糖類生成物。 17.請求の範囲第12項から第16項のうちいずれか1つに記載のオリゴ糖類 生成物において、もしあるとして、6−O−硫酸基を有する残留物の含量が5% 未満であることを特徴とするオリゴ糖類生成物。 18.線維芽細胞成長因子(FGF)に対する特異な結合親和性を有し、ほとん どすべてがオリゴ糖類連鎖からなり、これらオリゴ糖類連鎖が長さが14個の単 糖類残留物であり、各々がGlcNSO3(±6S)残留物に結合したIdoA (2S)残留物からなる5または6の2糖類ユニットの一体連続シーケンスを含 有し、20%未満のグルコサミン残留物(端末あるいは内部)が6−O−硫酸化 されていることを特徴とするオリゴ糖類生成物。 19.請求の範囲第18項記載のオリゴ糖類生成物において、オリゴ糖類連鎖が (∩)GlcA−GlcNSO3−[IdoA(2S)−GlcNSO3]5− IdoA−GlcR、および (∩)GlcA−[GlcNSO3−IdoA(2S)]6−GlcR、選定さ れた生物活性のタンパク質またはポリペプチドが、生理学的条件の下に活性化さ れたときに哺乳動物細胞の表面にある信号伝送受容体との結合相互作用によって 哺乳動物細胞を刺激するサイトカインまたは成長因子であることを特徴とする方 法。 25.請求の範囲第24項記載の方法において、選択的切断試薬がヘパリチナー ゼであり、ヘパラン硫酸がヘパリチナーゼ選択結合部の切断が完了するまで消化 することによって最大範囲まで部分的に解重合されることを特徴とする方法。 26.請求の範囲第24項記載の方法において、選択的切断試薬が亜硝酸であり 、これがヘパラン硫酸のN−脱アセチル化剤での先立った処理の後に約pH4で 多糖類と反応してそれを遊離アミノ基のところで切断することを特徴とする方法 。 27.請求の範囲第23項から第26項までのうちいずれか1つに記載の方法お いて、選定された生物活性タンパク質またはポリペプチドが線維芽細胞成長因子 (FGF)であることを特徴とする方法。 28.請求の範囲第23項から第26項までのうちいずれか1つに記載の方法お いて、選定された生物活性タンパク質またはポリペプチドが基本線維芽細胞成長 因子(bFGF)であることを特徴とする方法。 29.請求の範囲第23項から第28項までのうちいずれか1つに記載の方法お いて、サイズ分割段階から収集した留分が7つの2糖類ユニットからなるオリゴ 糖類を含有すると思われるものであることを特徴とする方法。 30.請求の範囲第23項から第28項までのうちいずれか1つに記載の方法お いて、サイズ分割段階から収集された留分が6つの2糖類ユニットからなるオリ ゴ糖類を含有する思われるものであることを特徴とする方法。 31.請求の範囲第1項から第22項のうちいずれか1つに記載のオリゴ糖類生 成物であって、たとえば、創傷治療、骨折治療、神経再生、十二指腸潰瘍、静脈 性潰瘍、種々の眼球、網膜疾患、アンテローム性動脈硬化症、虚血の症状におい てあるいは放射線治療中の激しい損傷から組織を保護するために治療を必要とし ている哺乳動物の治療の際に治療または組織修復を促進するための活性FGF活 性刺激剤として治療に用いられることを特徴とするオリゴ糖類生成物。 32.請求の範囲第31項のオリゴ糖類生成物からなり、それを上述の治療を実 施する際に共に投与する外来性FGF成長因子と組み合わせたことを特徴とする 医学組成物。 33.請求の範囲第1項から第22項までのいずれか1つに記載のオリゴ糖類生 成物であり、たとえば、糖尿病性網膜症、水晶嚢混濁、増殖性硝子体網膜症、腫 瘍血管形成、ガン細胞成長、ガン細胞転移、リュウマチ様動脈炎、穏やかな筋ジ ストロフィー症、アルツハイマー症、種々のウィルス性感染症(たとえば、He rpes Simplex type 1)あるいは血管形成術後再狭窄のよう な症状に関連して治療を必要とする哺乳動物を治療する際に細胞成長または細胞 増殖を制御または低減するための活性FGF活性抑制剤として治療に用いること を特徴とするオリゴ糖類生成物。 34.請求の範囲第1項空第22項のうちのいずれか1つに記載したオリゴ糖類 生成物あるいはその薬学的に許容できる塩と、薬学的に許容できるキャリヤまた はビイヒクルとからなるFGF活性変調剤を治療上有効な無毒量を包含する医学 用途のための薬剤または薬学組成物。 35.請求の範囲第1項から第22項のうちのいずれか1つに記載のオリゴ糖類 生成物を、糖尿病性網膜症、水晶嚢混濁、増殖性硝子体網膜症、腫瘍血管形成、 ガン細胞成長、ガン細胞転移、リュウマチ様動脈炎、穏やかな筋ジストロフィー 症、アルツハイマー症、種々のウィルス性感染症(たとえば、Herpes S implextype1)あるいは血管形成術後再狭窄の治療に用いるため、あ るいは、創傷治療、骨折治療、神経再生、十二指腸潰瘍、種々の眼球、網膜疾患 、アンチローム性動脈硬化症、退行性筋肉疾患、虚血のような症状の治療に用い るため、または放射線治療中の激しい損傷から組織を保護するために損傷した組 織の修復を促進する際に用いるためのオリゴ糖類生成物。 36.線維芽細胞成長因子(FGF)に対して特異な結合親和性を有し、本質的 に、オリゴ糖類連鎖からなり、これらのオリゴ糖類連鎖がFGF結合親和性に関 してほぼ均質であり、端末残留物の間に複数の硫酸化2糖類ユニットを包含する 10未満の2糖類ユニットのシーケンスを含有し、各硫酸化2糖類ユニットがN −硫酸化グルコサミン残留物(±6S)と2−O−硫酸化イズロン酸残留物とか らなることを特徴とするオリゴ糖類生成物。 37.哺乳動物の線維芽細胞成長因子の活性度を制御するのに用いる薬学組成物 または薬剤であり、疾患の治療において組織の修復を促進したり、または、細胞 成長または血管形成を抑制したりするためのものであり、請求の範囲第36項記 載の本質的に純粋なオリゴ糖類生成物を治療上有効な量包含することを特徴とす る薬学組成物または薬剤。 38.創傷、十二指腸潰瘍、静脈性潰瘍、種々の眼球、網膜疾患、または虚血の 場合に治癒または組織修復を促進するために、あるいは、骨折治癒を促進するた めに、あるいは、放射線処置中の激しい損傷から組織を保護するために哺乳動物 を治療する方法であって、このような処置を必要とする哺乳動物に、請求の範囲 第36項あるいは第1項から第22項のうちいずれか1つに記載の本質的に純粋 なオリゴ糖類生成物を有効量投与することからなる方法。 39.請求の範囲第38項記載の方法であって、オリゴ糖類生成物がbFGFの 薬剤と一緒に投与されることを特徴とする方法。 40.FGF成長因子活性度を抑制することによって哺乳動物における糖尿病性 網膜症、水晶嚢混濁、増殖性硝子体網膜症、腫瘍血管形成、ガン細胞成長、ガン 細胞転移、リュウマチ様動脈炎、穏やかな筋ジストロフィー症、アルツハイマー 症、種々のウィルス性感染症(たとえば、Herpes Simplex ty pe1)または血管形成術後再狭窄を治療する方法であって、請求の範囲第36 項または請求の範囲第1項から第22項までのいずれか1つの項に記載の本質的 に純粋なオリゴ糖類生成物の有効量を治療を必要とする哺乳動物に投与すること からなる方法。[Claims] 1. Oligosaccharide with unique binding affinity for fibroblast growth factor (FGF) It is a product consisting essentially of oligosaccharide chains, and these oligosaccharide chains are Almost homogeneous in terms of FGF binding affinity and at least six disaccharide units These disaccharide units form a continuous sequence of sulfated disaccharide units. and each of these sulfated disaccharide units is an N-sulfated glucosamine residue. (±6S) and 2-O-sulfated iduronic acid residue. Gosaccharide products. 2. The oligosaccharide product of claim 1, wherein the sulfated disaccharide unit Each of the cuts is IdoA(2S)-α1,4-GlcNSO3. oligosaccharide products. 3. An oligosaccharide product according to claim 1 or 2, wherein the oligosaccharide product is an ointment characterized in that the saccharide linkage consists of a sequence of less than 10 disaccharide units; Ligosaccharide products. 4. An oligosaccharide product according to any one of claims 1 to 3. shows almost complete resistance to depolymerization by heparitinase; 5. Oligosaccharide products characterized in that they are not subject to depolymerization by parinase. request In the oligosaccharide product according to any one of claims 1 to 4, and that at least a preferential majority of said oligosaccharide chains are all of the same length. An oligosaccharide product characterized by: 6. An oligosaccharide product according to any one of claims 1 to 5. , almost all of the oligosaccharide chains are sequences of six disaccharide units. An oligosaccharide product characterized in that it consists of: 7. An oligosaccharide product according to any one of claims 1 to 6. wherein the oligosaccharide linkage comprises at least four of the sulfated disaccharide units. An oligosaccharide product characterized in that it contains a continuous sequence. 8. An oligosaccharide product according to any one of claims 1 to 4. , almost all oligosaccharide chains are formed from a sequence of seven disaccharide units. and at least five of these disaccharide units are the sulfated disaccharide units. An oligosaccharide product characterized by being comprised in a continuous sequence of knits. 9. An oligosaccharide product according to any one of claims 1 to 8. , O-sulfated at C6 within the oligosaccharide chain (if any) Oligosaccharide production characterized in that the content of glucosamine residues is less than 20% thing. 10. In the oligosaccharide product of claim 9, (if any): The content of glucosamine residues in the oligosaccharide chain O-sulfated at C6 is less than 5%. An oligosaccharide product characterized in that it is full. 11. Oligosaccharide raw material according to any one of claims 1 to 10 The product was subjected to enzymatic partial depolymerization to the maximum extent with heparitinase and then size separation using, for example, gel filtration size exclusion chromatography and then sizing. For the selected fraction(s) recovered from the fractionation step, the immobilized ligand FGF binding was cleaved by affinity chromatography using FGF growth factor. The pieces are separated and then subjected to a stepwise concentration gradient, advantageously a stepwise concentration gradient. Selective elution was performed over a range of salt concentrations and the fragments were analyzed for FGF binding affinity. to collect the strongest bonded fragments and optionally generate further collections. by performing at least one additional step of object sizing and selection. By further purifying the recovered product, human fibroblast heparan sulfate was purified. Theocrican (HSPG) can be obtained from heparan sulfate (HS). Characterized oligosaccharide products. 12. Oligos with specific binding affinity for fibroblast growth factor (FGF) is a sugar product; (a) Predominantly consists of the following molecular species, ▲There are mathematical formulas, chemical formulas, tables, etc.▲ here, X is ∩HexA-GlcNSO3 (±6S), Y is IdoA (2S)-G lcNSO3 (±6S) and Z is IdoA-GlcR (±6S) or Id oA(2S)-GlcR(±6S), where R is NSO3 or NAc , n is in the range of 4 to 7, (b) the content of monosaccharide residues with 6-O-sulfate groups, if any, is less than 20%; full, (c) Digesting heparan sulfate with heparitinase to achieve its partial depolymerization to the maximum extent. and then the resulting oligosaccharide mixture is subjected to e.g. gel filtration size exclusion chromatography. Size-resolved using totography and selected within the range of 12-18 monosaccharide residues Collect fractions containing oligosaccharide chains with a certain size and select Affinity chromatography was performed on the fraction using immobilized FGF ligand, and a certain Stronger FGF binding by elution down a salt gradient over a range of salt concentrations Select fractions containing bound substances that separate only at the highest salt concentration are recycled. Oligos characterized in that they can be obtained by a process consisting of Sugar products. 13. In the oligosaccharide product of claim 12, Y is exclusively Id An oligosaccharide product characterized in that it is oA(2S)-GlcNSO3. 14. In the oligosaccharide product according to claim 12 or 13, An oligosaccharide product characterized in that n is 5 or 6. 15. 15. The oligosaccharide product of claim 14, wherein all of the molecular species are An oligosaccharide product characterized in that it consists of seven disaccharide units. 16. In the oligosaccharide product according to claim 12 or 13, n is 4, and the total number of disaccharide units of the molecular species is 6. Ligosaccharide products. 17. Oligosaccharide according to any one of claims 12 to 16 In the product, the content of residues with 6-O-sulfate groups, if any, is 5%. An oligosaccharide product characterized in that it is less than or equal to 18. It has a unique binding affinity for fibroblast growth factor (FGF), and most All are composed of oligosaccharide chains, and these oligosaccharide chains are 14 monomers in length. sugar residues, each bound to a GlcNSO3(±6S) residue. (2S) Contains an integral continuous sequence of 5 or 6 disaccharide units consisting of residues. with less than 20% glucosamine residue (terminal or internal) 6-O-sulfated An oligosaccharide product characterized by: 19. The oligosaccharide product according to claim 18, wherein the oligosaccharide linkage is (∩)GlcA-GlcNSO3-[IdoA(2S)-GlcNSO3]5- IdoA-GlcR, and (∩)GlcA-[GlcNSO3-IdoA(2S)]6-GlcR, selected biologically active protein or polypeptide that is activated under physiological conditions. by binding interaction with signal-transmitting receptors on the surface of mammalian cells when Cytokines or growth factors that stimulate mammalian cells Law. 25. 25. The method of claim 24, wherein the selective cleavage reagent is heparitinar. Heparan sulfate is digested until cleavage of heparitinase-selective bonds is complete. A process characterized in that partial depolymerization is achieved to the greatest extent by. 26. The method of claim 24, wherein the selective cleavage reagent is nitrous acid. , which after prior treatment of heparan sulfate with an N-deacetylating agent at a pH of about 4. A process characterized by reacting with a polysaccharide to cleave it at a free amino group . 27. The method according to any one of claims 23 to 26 The selected bioactive protein or polypeptide is a fibroblast growth factor. (FGF). 28. The method according to any one of claims 23 to 26 selected bioactive proteins or polypeptides to enhance basal fibroblast growth. A method characterized in that it is a factor (bFGF). 29. The method according to any one of claims 23 to 28 The fraction collected from the size-splitting step is converted into an oligomer consisting of seven disaccharide units. A method characterized in that the product is believed to contain sugars. 30. The method according to any one of claims 23 to 28 The fraction collected from the size-splitting step is divided into an ori- um consisting of six disaccharide units. A method characterized in that the product is believed to contain gosaccharides. 31. Oligosaccharide raw material according to any one of claims 1 to 22 For example, wound treatment, fracture treatment, nerve regeneration, duodenal ulcers, veins, etc. In the symptoms of sexual ulcers, various ocular and retinal diseases, atherosclerosis, and ischemia. treatment is required to protect tissue from severe damage during radiation therapy or radiotherapy. activation of active FGF to promote therapy or tissue repair during the treatment of mammals with An oligosaccharide product characterized in that it is used therapeutically as a sexual stimulant. 32. comprising the oligosaccharide product of claim 31, which is used to carry out the treatment described above. It is characterized in that it is combined with an exogenous FGF growth factor that is administered together with the treatment. Medical composition. 33. Oligosaccharide raw material according to any one of claims 1 to 22 For example, diabetic retinopathy, capsular opacification, proliferative vitreoretinopathy, and tumor Tumor angiogenesis, cancer cell growth, cancer cell metastasis, rheumatoid arteritis, mild muscle stiffness stroke disease, Alzheimer's disease, various viral infections (e.g. He rpes Simplex type 1) or restenosis after angioplasty cell growth or cell growth when treating mammals in need of treatment in connection with For therapeutic use as an active FGF activity inhibitor to control or reduce proliferation An oligosaccharide product characterized by: 34. Oligosaccharide according to any one of Claims 1 to 22 The product or a pharmaceutically acceptable salt thereof and a pharmaceutically acceptable carrier or is a medical drug comprising a vehicle and a therapeutically effective non-toxic amount of an FGF activity modulator. A drug or pharmaceutical composition for use. 35. Oligosaccharide according to any one of claims 1 to 22 The product can be used to treat diabetic retinopathy, capsular opacity, proliferative vitreoretinopathy, tumor angiogenesis, Cancer cell growth, cancer cell metastasis, rheumatoid arteritis, mild muscular dystrophy disease, Alzheimer's disease, and various viral infections (e.g., Herpes S. complex type 1) or for the treatment of restenosis after angioplasty. Or, wound treatment, fracture treatment, nerve regeneration, duodenal ulcer, various eyeball and retinal diseases. , used to treat conditions such as anti-inflammatory arteriosclerosis, degenerative muscle disease, and ischemia. damaged tissue to protect the tissue from severe damage during radiation therapy. Oligosaccharide products for use in promoting tissue repair. 36. It has a specific binding affinity for fibroblast growth factor (FGF) and is essentially It consists of oligosaccharide chains, and these oligosaccharide chains are related to FGF binding affinity. is nearly homogeneous and contains multiple sulfated disaccharide units between the terminal residues. Contains a sequence of less than 10 disaccharide units, each sulfated disaccharide unit being N - Sulfated glucosamine residue (±6S) and 2-O-sulfated iduronic acid residue, etc. An oligosaccharide product characterized by: 37. Pharmaceutical compositions used to control the activity of mammalian fibroblast growth factors or drugs that promote tissue repair or cell therapy in the treatment of diseases. It is for suppressing growth or angiogenesis, and is for the purpose of suppressing growth or angiogenesis, and as set forth in claim 36. characterized in that it contains a therapeutically effective amount of an essentially pure oligosaccharide product of A pharmaceutical composition or drug. 38. wounds, duodenal ulcers, venous ulcers, various ocular, retinal diseases, or ischemia. or to promote healing or tissue repair in cases of fracture healing. or to protect tissues from severe damage during radiation procedures. a method of treating a mammal in need of such treatment; Essentially pure as described in paragraph 36 or any one of paragraphs 1 to 22 a method comprising administering an effective amount of an oligosaccharide product. 39. 39. The method of claim 38, wherein the oligosaccharide product is bFGF. A method characterized in that it is administered together with a drug. 40. diabetes in mammals by suppressing FGF growth factor activity. Retinopathy, lens capsule opacification, proliferative vitreoretinopathy, tumor angiogenesis, cancer cell growth, cancer Cell metastasis, rheumatoid arteritis, mild muscular dystrophy, Alzheimer's disease infections, various viral infections (e.g., Herpes Simplex ty pe1) or a method for treating restenosis after angioplasty, comprising: The essential elements according to any one of claims 1 to 22 administering an effective amount of the pure oligosaccharide product to a mammal in need of treatment. A method consisting of
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