JPH07128332A - Method for determining variation in basic sequence - Google Patents

Method for determining variation in basic sequence

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JPH07128332A
JPH07128332A JP5294741A JP29474193A JPH07128332A JP H07128332 A JPH07128332 A JP H07128332A JP 5294741 A JP5294741 A JP 5294741A JP 29474193 A JP29474193 A JP 29474193A JP H07128332 A JPH07128332 A JP H07128332A
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JP
Japan
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sample
base
prepared
samples
dna
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JP5294741A
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Japanese (ja)
Inventor
Hideyuki Ikematsu
秀之 池松
Hideji Fujiwake
秀司 藤分
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Shimadzu Corp
Original Assignee
Shimadzu Corp
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Abstract

PURPOSE:To enhance the capacity for determining the variation with respect to the base by preparing a DNA fragmental sample having terminal bases of three kinds or less through Sanger reaction, subjecting the sample to electrophoretic analysis, and then comparing an electrophoretic pattern thus obtained with a normal basic sequence. CONSTITUTION:DNA fragmental samples are prepared by Sanger reaction for 1 to 3 kinds of terminal bases among adenine(A) guanine(G), thymine (T), and cytosine(C). The samples are labeled with fluorescent elements or radioisotopes, subjected to electrophoretic analysis, and the electrophoretic pattern is compared with a normal basic sequence. Consequently, it can be determined at which position a base T has varied to a base C and at which position a base C has varied to base T. Since each sample requires a fragmental sample for only one kind of base, manhour and cost are reduced to 1/4 and the processing capacity is enhanced significantly.

Description

【発明の詳細な説明】Detailed Description of the Invention

【0001】[0001]

【産業上の利用分野】本発明は臨床医学の分野で染色体
の塩基配列の変異を決定するなど、種々のDNAの塩基
配列の変異を決定する方法に関するものである。
BACKGROUND OF THE INVENTION 1. Field of the Invention The present invention relates to a method for determining mutations in various nucleotide sequences of DNA, such as determining mutations in chromosome nucleotide sequences in the field of clinical medicine.

【0002】[0002]

【従来の技術】病気や異常を遺伝子やウイルスの塩基配
列から解明する試みがなされており、そのために塩基配
列の変異を調べることが重要になっている。塩基配列中
の変異を決定する方法としては、試料DNAの全塩基配
列を決定する方法と、PCR−SSCP法により変異を
推定する方法が行なわれている。
2. Description of the Related Art Attempts have been made to elucidate diseases and abnormalities from the nucleotide sequences of genes and viruses, and for this reason, it is important to investigate mutations in the nucleotide sequences. As a method for determining the mutation in the base sequence, a method for determining the entire base sequence of the sample DNA and a method for estimating the mutation by the PCR-SSCP method are used.

【0003】全塩基配列を決定する方法では、サンガー
法によって末端塩基がA(アデニン)、G(グアニ
ン)、T(チミン)又はC(シトシン)である4種類の
DNA断片試料を作成する。それらを電気泳動分析して
塩基配列を決定するが、例えば標識として螢光物質を化
学結合させた蛍光プライマーを用いてサンガー法でDN
A断片試料を作成し、末端塩基別に別々の泳動レーンで
電気泳動させてオンラインで泳動パターンを読取るか、
あるいは放射性同位元素を標識として用い、泳動パター
ンを写真処理して塩基配列を決定することが行なわれて
いる。
In the method for determining the entire base sequence, four kinds of DNA fragment samples whose terminal bases are A (adenine), G (guanine), T (thymine) or C (cytosine) are prepared by the Sanger method. The base sequence is determined by subjecting them to electrophoretic analysis. For example, DN is detected by the Sanger method using a fluorescent primer chemically bound with a fluorescent substance as a label.
A fragment sample is prepared and electrophoresed in separate migration lanes for each end base, and the migration pattern is read online, or
Alternatively, a radioisotope is used as a label, and the migration pattern is photographically processed to determine the base sequence.

【0004】末端塩基別の4種類のDNA断片試料を電
気泳動させて決定した全塩基配列を既知の正常な塩基配
列と比較することによって、何番目の塩基が何から何に
変異したかを決定することができる。例えば試料の全塩
基配列がACGT……というように決定されたとする
と、この試料の正常な塩基配列がAGGT……であった
場合には、2番目の塩基GがCに変異したことがわか
る。PCR−SSCP法では変異の有無による泳動速度
の違いを利用して変異の有無を推定する。
[0004] By comparing the total base sequence determined by electrophoresing four types of DNA fragment samples for each end base with a known normal base sequence, it is determined what number base changed from what to what. can do. For example, if the entire base sequence of the sample is determined as ACGT ... If the normal base sequence of this sample is AGGT ..., it can be seen that the second base G has been mutated to C. In the PCR-SSCP method, the presence / absence of a mutation is estimated by utilizing the difference in migration speed depending on the presence / absence of a mutation.

【0005】[0005]

【発明が解決しようとする課題】末端塩基の異なる4種
類のDNA断片試料をサンガー反応によって作成する方
法では、サンガー反応による試料作成の工数が多くな
り、コスト高を招く。また、電気泳動法により塩基配列
を決定する場合、1試料について末端塩基A,G,C,
T別に4つのレーンを使用しなければならず、一度に泳
動できる試料の数がそれだけ少なくなる問題がある。P
CR−SSCP法は変異を推定する方法であり、信頼度
に問題がある。
In the method of preparing four kinds of DNA fragment samples having different terminal bases by the Sanger reaction, the number of man-hours for preparing the sample by the Sanger reaction is increased, resulting in high cost. When the base sequence is determined by electrophoresis, the end bases A, G, C, and
Since four lanes must be used for each T, there is a problem that the number of samples that can be run at one time is reduced. P
The CR-SSCP method is a method of estimating a mutation and has a problem in reliability.

【0006】本発明は電気泳動法により試料DNAの塩
基配列を決定して正常な塩基配列と比較することによっ
て変異を決定する方法であるが、電気泳動用のDNA断
片試料作成の工数を減らしてコストを低減し、電気泳動
の際に必要なレーンの数を減らすことによって処理能力
を高めることを目的とするものである。
The present invention is a method for determining a mutation by determining the base sequence of a sample DNA by electrophoresis and comparing it with a normal base sequence. However, the number of steps for preparing a DNA fragment sample for electrophoresis can be reduced. It is intended to reduce the cost and increase the throughput by reducing the number of lanes required for electrophoresis.

【0007】[0007]

【課題を解決するための手段】本発明では、正常な塩基
配列が既知の試料DNAについて、4種類の塩基のうち
の3種類以下の塩基を末端にもつ末端塩基別のDNA断
片試料をサンガー反応により作成し、そのDNA断片試
料を電気泳動分析して得られた泳動パターンを正常な塩
基配列と比較することにより、試料を作成した末端塩基
の種類の塩基に関する変異を決定してその試料に関する
データとする。
In the present invention, with respect to a sample DNA of which a normal base sequence is known, a Sanger reaction is carried out on a DNA fragment sample having terminal bases having 3 or less bases out of 4 bases at the ends. The DNA fragment sample prepared by the above method was compared with the normal base sequence of the electrophoretic pattern obtained by the electrophoretic analysis to determine the mutation related to the base of the type of terminal base for which the sample was prepared, and the data related to the sample. And

【0008】染色体やウイルスの正常な塩基配列はこれ
までのデータの積み重ねによって確定されている。発症
した人の染色体DNAや異常なウイルスのDNAの塩基
配列を決定する場合、症例や異常などと塩基配列の変異
箇所及び変異の種類との間には因果関係があり、その知
見も臨床データの積み重ねによって得られている。試料
DNAについては全ての塩基の変異を決定しなくても、
症例や異常などと関連の深い1〜3種類の塩基の変異に
ついて決定すれば、症例や異常との相関関係を決定する
ことができる。
Normal nucleotide sequences of chromosomes and viruses have been determined by accumulating data so far. When determining the nucleotide sequence of the chromosomal DNA of an affected person or the DNA of an abnormal virus, there is a causal relationship between the case or abnormality and the mutation site of the nucleotide sequence and the type of mutation. It is obtained by stacking. Even if you do not determine all the base mutations in the sample DNA,
By determining the mutations of 1 to 3 types of bases that are closely related to cases and abnormalities, it is possible to determine the correlation with the cases and abnormalities.

【0009】本発明では、そのような知見に基づき、サ
ンガー反応により1〜3種類の末端塩基別のDNA断片
試料を作成する。そのDNA断片試料は蛍光や放射性同
位元素によって標識化しておき、電気泳動により分析を
行なって、その1〜3種類の塩基に関する泳動パターン
を求める。その泳動パターンを正常な塩基配列と比較す
ることによりそれらの塩基に関する変異を決定する。
In the present invention, based on such knowledge, 1 to 3 types of DNA fragment samples for each terminal base are prepared by the Sanger reaction. The DNA fragment sample is labeled with fluorescence or a radioisotope and analyzed by electrophoresis to obtain migration patterns for the 1 to 3 types of bases. Mutations relating to those bases are determined by comparing the migration pattern with the normal base sequence.

【0010】図1は従来の方法により4種類の塩基に関
してサンガー法でDNA断片試料を作成し、オンライン
式の電気泳動法により泳動パターンを検出した例を示し
たものである。A,G,C,Tはそれぞれ種類のことな
る線により表示されている。塩基Tに注目すると、これ
までの臨床データの知見から、実線の矢印で示された位
置の塩基Tは変異しないことが知られており、破線の矢
印で示された塩基Tは変異が起こりうることが知られて
いる。
FIG. 1 shows an example in which a DNA fragment sample was prepared by the Sanger method for four types of bases by the conventional method, and the migration pattern was detected by the online electrophoresis method. A, G, C, and T are displayed by different lines. Focusing on the base T, it is known from the knowledge of clinical data to date that the base T at the position shown by the solid arrow does not mutate, and the base T shown by the broken arrow may mutate. It is known.

【0011】図2はこのDNAの正常と考えられる塩基
配列(CONSEN)と、従来の電気泳動法により全塩基配列
を決定した5種類の試料の変異を示したものである。各
試料は同じDNAであるが、症状や異常により異なる箇
所で塩基が変異していることを示しており、試料により
変異の箇所と種類が異なっている。
FIG. 2 shows the nucleotide sequence (CONSEN) of this DNA which is considered to be normal, and the mutations of five types of samples whose total nucleotide sequences were determined by the conventional electrophoresis method. Although each sample has the same DNA, it shows that the base is mutated at different locations depending on the condition or abnormality, and the location and type of mutation differ depending on the sample.

【0012】図2から、下の3種類の試料28c5,1
08c,622c7については塩基Tに関する変異のみ
を決定すれば、その試料がどの種類に属するかを識別す
ることができる。図2中の試料351c4については塩
基Aについての変異を決定すればよく、試料284c3
については塩基Cについての変異を決定すればよいこと
が分かる。したがって、試料28c5,108c,62
2c7については塩基Tを末端にもつDNA断片試料を
作成すればよく、試料351c4については塩基Aを末
端にもつDNA断片試料を作成すればよく、試料284
c3については塩基Cを末端にもつDNA断片試料を作
成すればよいことがわかる。
From FIG. 2, the following three types of samples 28c5, 1
For 08c and 622c7, it is possible to identify which type the sample belongs to by determining only the mutation relating to the base T. For the sample 351c4 in FIG. 2, the mutation for the base A may be determined.
For, it is understood that the mutation for the base C may be determined. Therefore, the samples 28c5, 108c, 62
For 2c7, a DNA fragment sample having a base T at the end may be prepared, and for sample 351c4, a DNA fragment sample having a base A at the end may be prepared.
It can be seen that for c3, a DNA fragment sample having the base C at the end should be prepared.

【0013】[0013]

【実施例】図3は本発明においてサンガー法により作成
されたDNA断片試料を電気泳動分析するのに用いる装
置の一例を示したものである。2はスラブ状泳動ゲルで
あり、ポリアクリルアミドゲルが使用されている。泳動
ゲル2の両端は電極層4,6に浸され、電極層4,6に
は電解液が収容されている。電極層4,6の間には泳動
電源8によって泳動電圧が印加される。
EXAMPLE FIG. 3 shows an example of an apparatus used for electrophoretic analysis of a DNA fragment sample prepared by the Sanger method in the present invention. 2 is a slab-like migration gel, and polyacrylamide gel is used. Both ends of the electrophoretic gel 2 are immersed in the electrode layers 4 and 6, and the electrode layers 4 and 6 contain an electrolytic solution. A migration voltage is applied between the electrode layers 4 and 6 by a migration power supply 8.

【0014】泳動ゲル2の一端には試料を注入するため
の試料投入スロット10が設けられており、試料投入ス
ロット10の各々の所定の場所に試料が投入される。試
料は蛍光物質であるFITCにより既知の方法で標識化
され、サンガー法により試料に応じて末端に塩基A,
G,T,Cのいずれかがくるように処理されたDNA断
片試料である。FITCは488nmの波長のアルゴン
レーザで励起され、520nmの波長の蛍光を発する。
泳動電源8が印加されると、試料は泳動バンド16とな
って泳動方向14に時間とともに泳動ゲル2中を泳動し
て分離されていき、測定部に達する。
A sample loading slot 10 for injecting a sample is provided at one end of the electrophoretic gel 2, and the sample is loaded into each predetermined place of the sample loading slot 10. The sample is labeled with a known method by FITC which is a fluorescent substance, and the base A is added to the end depending on the sample by the Sanger method.
It is a DNA fragment sample treated so that any of G, T, and C comes. FITC is excited by an argon laser with a wavelength of 488 nm and emits fluorescence with a wavelength of 520 nm.
When the migration power source 8 is applied, the sample becomes a migration band 16 and migrates in the migration direction 14 in the migration gel 2 over time to be separated, and reaches the measurement section.

【0015】測定部には488nmのレーザ光を発する
アルゴンレーザ18からの励起光を集光レンズ20とミ
ラー21によって照射する励起系と、その励起光ビーム
が当たった所に泳動バンド16があればその泳動バンド
16の蛍光物質から発せられた蛍光を対物レンズ22で
集め、520nmの干渉フィルタ24、集光レンズ26
から光ファイバ束27を経て光電子増倍管28で検出す
る検出系とが設けられている。集光レンズ20、ミラー
21、対物レンズ22、干渉フィルタ24、集光レンズ
26及び光ファイバ束27を含む励起・検出系には、励
起光ビーム照射位置が泳動方向14と直交する方向(走
査方向29)の測定ライン上を一定時間ごとに走査する
ように機械的に移動する走査ステージ30が備えられて
いる。
If there is an excitation system for irradiating excitation light from an argon laser 18 which emits a laser beam of 488 nm with a condenser lens 20 and a mirror 21, and a migration band 16 where the excitation light beam hits, The fluorescence emitted from the fluorescent substance of the migration band 16 is collected by the objective lens 22, and the 520 nm interference filter 24 and the condenser lens 26 are collected.
To a photomultiplier tube 28 through the optical fiber bundle 27 and a detection system. In the excitation / detection system including the condenser lens 20, the mirror 21, the objective lens 22, the interference filter 24, the condenser lens 26 and the optical fiber bundle 27, the excitation light beam irradiation position is in a direction orthogonal to the migration direction 14 (scanning direction). 29) A scanning stage 30 is provided that moves mechanically so as to scan the measurement line at regular intervals.

【0016】光電子増倍管28の検出信号(蛍光信号)
は増幅器及びA/D変換器32を経てデータ処理装置で
ある信号処理マイクロコンピュータ31に取り込まれ
る。マイクロコンピュータ31にはまた、励起光ビーム
が泳動ゲル2上の測定部を照射するときに、その照射部
の位置に対応した信号が走査データとして取り込まれ
る。このようにして、走査方向に走査して得られた全蛍
光信号が場所情報とともにマイクロコンピュータ31に
取り込まれる。スラブ状泳動ゲル2の上端の試料投入ス
ロット10には各試料ごとに1種類の末端塩基別にサン
ガー法で調整された試料を投入する。
Detection signal of the photomultiplier tube 28 (fluorescence signal)
Is taken into a signal processing microcomputer 31 which is a data processing device through an amplifier and an A / D converter 32. When the excitation light beam irradiates the measurement section on the electrophoretic gel 2, the microcomputer 31 also captures a signal corresponding to the position of the irradiation section as scanning data. In this way, all the fluorescence signals obtained by scanning in the scanning direction are taken into the microcomputer 31 together with the location information. A sample prepared by the Sanger method is loaded into the sample loading slot 10 at the upper end of the slab-like electrophoretic gel 2 for each type of terminal base.

【0017】このようにして得られた末端塩基がTの3
種類の試料についての泳動パターンを図4から図6に示
す。これらのパターンを既知の正常な塩基配列と比較す
ることによってどの位置の塩基Tが塩基Cに変異した
か、またどの位置の塩基Cが塩基Tに変異したかが分か
る。実施例では各試料について1種類の塩基についての
みサンガー法によりDNA断片試料を調製すればよいの
で、従来のように4種類の塩基の種類についてサンガー
法で試料を作成するのに比べて工数やコストは1/4で
すむ。また電気泳動を行なう際、従来の方法に比べて必
要な泳動レーンの数は1/4ですむので、分析可能な試
料数が4倍になり、処理能力が向上する。1種類の塩基
の変異の決定では十分ではないと判断したは、2種類又
は3種類の塩基について試料を作成し、それぞれを電気
泳動させればよい。
The terminal base thus obtained is T 3
The migration patterns for the various types of samples are shown in FIGS. 4 to 6. By comparing these patterns with a known normal base sequence, it is possible to know at which position the base T was mutated to the base C, and at which position the base C was mutated to the base T. In the embodiment, since the DNA fragment sample needs to be prepared by the Sanger method for only one type of base for each sample, the number of steps and the cost are reduced as compared with the conventional case where the sample is prepared by the Sanger method for four types of bases. Is 1/4. In addition, when performing electrophoresis, the number of migration lanes required is 1/4 as compared with the conventional method, so the number of samples that can be analyzed is quadrupled, and the processing capacity is improved. Although it was judged that the determination of mutation of one type of base was not sufficient, it is sufficient to prepare samples for two or three types of bases and subject each to electrophoresis.

【0018】[0018]

【発明の効果】本発明によれば各試料についてサンガー
法により末端塩基別の3種類以下のDNA断片試料を調
製すればよい。その試料の電気泳動パターンを正常な塩
基配列と比較することにより、変異の有無はピークの有
無により明確に判別できる。そしてPCR−SSCP法
のような不確実性がない。本発明は末端塩基別の3種類
以下のDNA断片試料を作成するだけでよいので、従来
のようにサンガー法で4種類のDNA断片試料を作成す
るのに比べて工数やコストは少なくてすむ。また電気泳
動を行なう際、従来の方法に比べて必要な泳動レーンの
数も少なくてすむので、分析可能な試料数が増え、処理
能力が向上する。
INDUSTRIAL APPLICABILITY According to the present invention, three or less kinds of DNA fragment samples for each terminal base may be prepared by the Sanger method for each sample. By comparing the electrophoretic pattern of the sample with a normal nucleotide sequence, the presence or absence of mutation can be clearly discriminated by the presence or absence of a peak. And there is no uncertainty as in the PCR-SSCP method. In the present invention, since it is only necessary to prepare three or less kinds of DNA fragment samples for each end base, the number of steps and costs are smaller than those of the conventional preparation of four kinds of DNA fragment samples by the Sanger method. Further, when performing electrophoresis, the number of migration lanes required is smaller than that in the conventional method, so that the number of samples that can be analyzed is increased and the throughput is improved.

【図面の簡単な説明】[Brief description of drawings]

【図1】従来の方法により全塩基配列を決定するための
電気泳動パターンの例を示す図である。
FIG. 1 is a diagram showing an example of an electrophoretic pattern for determining the entire base sequence by a conventional method.

【図2】正常な全塩基配列の例と同種類の試料の変異の
例を示す図である。
FIG. 2 is a diagram showing an example of mutation of a sample of the same type as an example of a normal entire nucleotide sequence.

【図3】本発明に用いる電気泳動装置の一例を示す概略
斜視図である。
FIG. 3 is a schematic perspective view showing an example of an electrophoretic device used in the present invention.

【図4】第1の試料について末端塩基Tの試料を作成し
電気泳動したときの泳動パターンを示す図である。
FIG. 4 is a diagram showing a migration pattern when a sample having a terminal base T is prepared and electrophoresed with respect to the first sample.

【図5】第2の試料について末端塩基Tの試料を作成し
電気泳動したときの泳動パターンを示す図である。
FIG. 5 is a diagram showing a migration pattern when a sample having a terminal base T is prepared and electrophoresed with respect to a second sample.

【図6】第3の試料について末端塩基Tの試料を作成し
電気泳動したときの泳動パターンを示す図である。
FIG. 6 is a diagram showing a migration pattern when a sample having a terminal base T is prepared and electrophoresed with respect to a third sample.

Claims (1)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】 正常な塩基配列が既知の試料DNAにつ
いて、4種類の塩基のうちの3種類以下の塩基を末端に
もつ末端塩基別のDNA断片試料をサンガー反応により
作成し、そのDNA断片試料を電気泳動分析して得られ
た泳動パターンを正常な塩基配列と比較することによ
り、試料を作成した末端塩基の種類の塩基に関する変異
を決定してその試料に関するデータとする変異決定方
法。
1. A DNA fragment sample for which a normal base sequence is known, is prepared by Sanger reaction, and a DNA fragment sample for each terminal base having 3 or less of four types of bases at the ends is prepared by the Sanger reaction. By comparing the migration pattern obtained by electrophoretic analysis with that of a normal base sequence to determine the mutation relating to the base of the type of the terminal base from which the sample was prepared, and use this as the data regarding the sample.
JP5294741A 1993-10-29 1993-10-29 Method for determining variation in basic sequence Pending JPH07128332A (en)

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Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2002350401A (en) * 2000-10-26 2002-12-04 Inst Of Physical & Chemical Res Analytical program of genome dna

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