JPH0640926A - Method for removing hepatitis c virus - Google Patents

Method for removing hepatitis c virus

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JPH0640926A
JPH0640926A JP4218496A JP21849692A JPH0640926A JP H0640926 A JPH0640926 A JP H0640926A JP 4218496 A JP4218496 A JP 4218496A JP 21849692 A JP21849692 A JP 21849692A JP H0640926 A JPH0640926 A JP H0640926A
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JP
Japan
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hcv
sulfate
serum
hepatitis
virus
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Withdrawn
Application number
JP4218496A
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Japanese (ja)
Inventor
Kazuhiro Shionaga
一寛 塩永
Kazumi Yokomizo
和美 横溝
Eitetsu Kobayashi
英哲 小林
Noriaki Aoyama
紀昭 青山
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Chemo Sero Therapeutic Research Institute Kaketsuken
Original Assignee
Chemo Sero Therapeutic Research Institute Kaketsuken
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Abstract

PURPOSE:To obtain a method for removing hepatitis C virus (HCV) from blood plasma or blood serum. CONSTITUTION:The method for readily removing HCV is to add bivalent metallic ions to blood plasma or blood serum, add a polyanionic compound thereto, stir the prepared mixture and remove the resultant precipitate.

Description

【発明の詳細な説明】Detailed Description of the Invention

【0001】[0001]

【産業上の利用分野】本発明は、血漿または血清からの
C型肝炎ウイルス(HCV)の除去方法に関するもので
ある。
FIELD OF THE INVENTION The present invention relates to a method for removing hepatitis C virus (HCV) from plasma or serum.

【0002】[0002]

【発明の背景と従来技術】ウイルス性肝炎には、飲料水
など経口的に感染するもの(A型肝炎及びE型肝炎)
と、輸血や性交渉などを通じて感染するもの(B型肝炎
及びC型肝炎)のタイプがある。後者の輸血で感染する
タイプは特に輸血後肝炎と呼ばれ、慢性化しやすく肝細
胞ガンの危険因子となりやすいことから注目を集めてき
た。この原因ウイルスと見られるのがB型肝炎ウイルス
(HBV)とC型肝炎ウイルス(HCV)である。B型
肝炎は、その原因ウイルスであるHBVについて、早く
からウイルス粒子が確認され、ワクチンも実用化してい
る。また、献血時の検査体制もいち早く完成をみてい
る。一方、C型肝炎についてはつい最近まで、病原体が
不明であったため、その抗原及び抗体の検出法として
は、非A非B型肝炎として除外診断に頼らざるを得なか
った。しかしながら、米国Chiron社のChooら
(Science, 244, p359, (1989))によりHCVのcDN
Aが分離されて以来、HC及びHCVに関する研究が急
速に進み、多くの知見が集積されつつある。
BACKGROUND OF THE INVENTION and Prior Art Viral hepatitis is orally infected with drinking water (hepatitis A and hepatitis E).
There are types of infection (hepatitis B and hepatitis C) through blood transfusion and sexual intercourse. The latter type, which is infected by blood transfusion, is called post-transfusion hepatitis, and has been attracting attention because it tends to become chronic and is a risk factor for hepatocellular carcinoma. The causative viruses are hepatitis B virus (HBV) and hepatitis C virus (HCV). Regarding hepatitis B, HBV, which is the causative virus, has been confirmed to have virus particles from an early stage, and a vaccine has been put to practical use. Also, the inspection system at the time of blood donation is being completed soon. On the other hand, for hepatitis C, until recently, the pathogen was unknown, so that the detection method of the antigen and the antibody had to rely on exclusion diagnosis as non-A non-B hepatitis. However, the HCV cDNA was determined by Choo et al. Of Chiron, USA (Science, 244, p359, (1989)).
Since the separation of A, research on HC and HCV has progressed rapidly, and many findings are being accumulated.

【0003】HCV−RNAからイムノスクリーニング
法で得られた種々のエピトープから遺伝子組換えまたは
化学合成により得られたペプチドを用いたHCV抗体検
出系が開発され、その一部は実用に供されている。日本
赤十字社では1989年11月よりC100−3抗原を
用いたOrtho社のHC抗体検出用キットによる輸血
用血液のスクリーニングを世界に先駆けて開始した。1
990年11月までの供血者約800万人の検体を対象
に測定した結果、HCV抗体陽性者の比率は1.15%であ
り、高齢者ほど陽性率は高かった。この成績から年齢構
成による修正を行なうと、国内のHCV陽性者数は約1
70万人、国民の1.41%と推定されている。
An HCV antibody detection system using peptides obtained by gene recombination or chemical synthesis from various epitopes obtained by immunoscreening from HCV-RNA has been developed, and part of them has been put to practical use. . Since November 1989, the Japanese Red Cross Society has been the first in the world to screen blood for transfusion using an Ortho HC antibody detection kit using the C100-3 antigen. 1
As a result of measuring the samples of about 8 million blood donors until November 990, the ratio of HCV antibody-positive people was 1.15%, and the older the elderly, the higher the positive rate. If the results are revised according to the age structure, the number of HCV-positive persons in Japan is about 1
It is estimated that 700,000 people, 1.41% of the population.

【0004】当該スクリーニングによりHCV抗体陽性
と判定された血液は、輸血用としてはもとより、血液製
剤の原料としても使用することが禁じられている。しか
しながら、日本と米国で流行している株間に抗原性の差
異があるため、当該HC抗体検出用キットでは、日本の
HC患者血清の全てを検出できないことが明らかになっ
ている(日本肝臓学会1990年)。
The blood determined to be positive for HCV antibody by the screening is prohibited to be used not only for blood transfusion but also as a raw material for blood products. However, it has been revealed that the HC antibody detection kit cannot detect all the sera of HC patients in Japan due to the difference in antigenicity between strains that are prevalent in Japan and the US (Japan Society of Hepatology 1990 Year).

【0005】従って、C型肝炎の感染を未然に防ぐた
め、輸血用血液及び各種血液製剤はもちろんのこと、安
全性の面から精度管理用血清等からもHCVを完全に除
去することが強く望まれている。
Therefore, in order to prevent infection with hepatitis C, it is strongly desired to completely remove HCV not only from blood for transfusion and various blood products but also from serum for quality control in terms of safety. It is rare.

【0006】HCVの除去法としては、高分子多層構造
膜(BMM、旭化成工業)を利用した限外濾過法が知ら
れている。BMMは血漿分画製剤とりわけ凝固因子製剤
からのHCV除去法として実用化されているが、これは
凝固因子精製の最終段階で使用されており、高濃度の蛋
白を含む大量の血漿または血清からHCVを除去するの
には適していない。
As a method for removing HCV, an ultrafiltration method utilizing a polymer multilayer structure membrane (BMM, Asahi Kasei) is known. BMM has been put to practical use as a method for removing HCV from plasma fractionated preparations, especially coagulation factor preparations, and it is used at the final stage of purification of coagulation factors, and HCV can be extracted from a large amount of plasma or serum containing a high concentration of protein. Is not suitable for removing.

【0007】[0007]

【発明の目的】本発明はHCVを含有する血漿または血
清から効率的に、かつ簡便にHCVを除去することを目
的とする。また組織培養法または遺伝子組換え体から得
られたHCVまたはその構成成分とりわけエンベロープ
蛋白の分画にも応用が可能であろう。本発明は、特別の
機器を必要とせず極めて安価に、かつ多量の血漿または
血清からHCVを除去できるところに特徴を有するもの
である。
The object of the present invention is to efficiently and simply remove HCV from plasma or serum containing HCV. It may also be applicable to the fractionation of HCV or its constituents, especially envelope proteins, obtained from tissue culture methods or gene recombinants. The present invention is characterized in that HCV can be removed from a large amount of plasma or serum at a very low cost without requiring any special equipment.

【0008】[0008]

【発明の構成】本発明のHCVの除去方法は、下記のよ
うにして極めて簡便に行うことができる。まず、血漿又
は血清に二価金属イオンを溶解し、ついでポリアニオン
化合物を添加、攪拌し、一夜冷房に静置後、冷却遠心
し、沈澱を除去することにより、達成できる。ここで、
本発明に用いられるポリアニオン化合物の代表例として
は、ヘパリン、デキストラン硫酸、コンドロイチン硫
酸、コンドロイチンポリ硫酸、ヘパラン酸、アミロペク
チン硫酸、ケラタン硫酸、ヘパリチン硫酸、キシラン硫
酸、カロニン硫酸、セルロース硫酸、キチン硫酸、キト
サン硫酸、ペクチン硫酸、イヌリン硫酸、アルギン酸硫
酸、グリコーゲン硫酸、ポリラクトース硫酸、カラゲニ
ン硫酸、デンプン硫酸、ポリグルコース硫酸、ラミナリ
ン硫酸、ガラクタン硫酸、レバン硫酸、メペサルフェー
トなどの硫酸多糖体、リンタングステン酸、ポリ硫酸化
アネトール、ポリビニルアルコール硫酸、ポリリン酸等
があげられる。また共存させる二価金属イオンとして
は、カルシウム、マグネシウム、マンガン、コバルト等
のイオンが使用可能である。
The method for removing HCV of the present invention can be carried out very simply as follows. This can be achieved by first dissolving the divalent metal ion in plasma or serum, adding the polyanion compound, stirring the mixture, allowing it to stand overnight in air-conditioning, cooling and centrifuging, and removing the precipitate. here,
Representative examples of the polyanion compound used in the present invention include heparin, dextran sulfate, chondroitin sulfate, chondroitin polysulfate, heparanic acid, amylopectin sulfate, keratan sulfate, heparitin sulfate, xylan sulfate, caronine sulfate, cellulose sulfate, chitin sulfate, chitosan. Sulfuric acid, pectin sulfate, inulin sulfate, alginate sulfate, glycogen sulfate, polylactose sulfate, carrageenin sulfate, starch sulfate, polyglucose sulfate, laminarin sulfate, galactan sulfate, levan sulfate, mepesulfate sulfate polysaccharides, phosphotungstic acid, Examples thereof include polysulfated anethole, polyvinyl alcohol sulfuric acid, polyphosphoric acid and the like. As the divalent metal ion to be coexistent, ions of calcium, magnesium, manganese, cobalt and the like can be used.

【0009】硫酸多糖体を始めとするポリアニオン化合
物は二価金属イオンの存在下、リポ蛋白特に低密度リポ
蛋白(LDL)及び超低密度リポ蛋白(VLDL)と結
合し、沈澱を形成することが知られている。沈澱を生ず
るメカニズムについては、ポリアニオンの負電荷と蛋白
の正電荷によって、可溶性のリポ蛋白−ポリアニオン複
合体を生じ、リポ蛋白中の脂質成分に二価の金属イオン
が結合して不溶性のリポ蛋白−ポリアニオン−金属イオ
ン複合体を形成するとされている。この現象を応用して
血漿または血清中のLDL及びVLDLを沈澱させ、上
清に残った高密度リポ蛋白(HDL)を測定する方法は
臨床検査に広く利用されている。本発明者らはHCVの
分離、除去を目的として、上述の分離法を基に鋭意研究
を重ねた結果、HCVを含む血漿または血清から効率的
にHCVを分離しうる技術を提供する本発明を完成する
に至った。
Polyanion compounds such as sulfated polysaccharides are capable of binding to lipoproteins, particularly low density lipoproteins (LDL) and very low density lipoproteins (VLDL) in the presence of divalent metal ions to form precipitates. Are known. Regarding the mechanism of precipitation, the negative charge of the polyanion and the positive charge of the protein produce a soluble lipoprotein-polyanion complex, and a divalent metal ion is bound to the lipid component of the lipoprotein to form an insoluble lipoprotein- It is said to form a polyanion-metal ion complex. The method of applying this phenomenon to precipitate LDL and VLDL in plasma or serum and measuring the high density lipoprotein (HDL) remaining in the supernatant is widely used in clinical tests. The present inventors have conducted extensive studies based on the above-mentioned separation method for the purpose of separating and removing HCV, and as a result, provide a technique capable of efficiently separating HCV from plasma or serum containing HCV. It came to completion.

【0010】上記の処理によりHCVが除去されたこと
を確認する方法として、上清、及びシュウ酸ナトリウム
液で溶解した沈澱について、PCR法並びに電気泳動法
を適用することによってHCVの有無の判定ができる。
As a method for confirming that HCV has been removed by the above treatment, the presence or absence of HCV can be determined by applying the PCR method and the electrophoresis method to the supernatant and the precipitate dissolved in a sodium oxalate solution. it can.

【0011】HCV−cDNAの増幅にはAmpli−
taqポリメラーゼ及びNCR1〜4のプライマーを用
いダブルPCRを行なう。すなわち、NCR1及び4の
外側のプライマーセットを用い1stPCRを行い、つ
いでその一部を試料としてNCR2及び3の内側プライ
マーセットを用い2ndPCRを行なう。
Ampli-for amplification of HCV-cDNA
Double PCR is performed using taq polymerase and NCR1-4 primers. That is, 1st PCR is performed using a primer set outside NCR1 and 4, and then 2nd PCR is performed using an inside primer set of NCR2 and 3 using a part of the sample as a sample.

【0012】この様にして増幅された各HCV遺伝子断
片を電気泳動にかけ、1stPCR242bp,2ndPC
R145bpのバンドの有無で、サンプル中のHCV−RN
Aの存在を判定する。その結果、本発明のHCV除去処
理後の上清はHCV−RNA陰性であったが、沈澱画分
はHCV−RNA陽性であった。この事は当該除去処理
を施すことにより、血漿又は血清中からHCVが完全に
除去されたことを示している。
Each HCV gene fragment thus amplified was subjected to electrophoresis, and 1stPCR242bp, 2ndPC
HCV-RN in the sample with or without the R145bp band
The presence of A is determined. As a result, the supernatant after the HCV removal treatment of the present invention was HCV-RNA negative, but the precipitate fraction was HCV-RNA positive. This indicates that HCV was completely removed from plasma or serum by performing the removal treatment.

【0013】このように、本発明のHCVの除去方法に
よって、血漿または血清中に存在するHCVを極めて簡
便にかつ確実に除去することが可能となったのである。
本発明のHCV除去方法を、例えば、臨床検査において
利用度の高い精度管理用血清の製造工程に適用すると、
HCV感染性粒子を含まない安全な精度管理用血清を簡
便にかつ安価に得ることができる。
As described above, according to the method for removing HCV of the present invention, it has become possible to remove HCV existing in plasma or serum very easily and reliably.
When the HCV removal method of the present invention is applied to, for example, the production process of quality control serum highly utilized in clinical tests,
A safe serum for quality control that does not contain HCV infectious particles can be obtained easily and inexpensively.

【0014】[0014]

【実施例】【Example】

実施例1: デキストラン硫酸−塩化カルシウム処理 HTLV−I抗体、HIV抗体及びHBs抗原いずれも
陰性で、HCV抗体及びHCV−RNA陽性の血清200m
lに塩化カルシウム1.11gを溶解し、攪拌しながらデキ
ストラン硫酸(ファルマシア)10%溶液2.02mlを添加
した。一夜冷室に静置後、冷却遠心機(日立6PR−5
2)で4,000rpm、30分遠心し、上清及び沈澱を得た。
Example 1 Dextran Sulfate-Calcium Chloride Treatment HTLV-I antibody, HIV antibody and HBs antigen negative, HCV antibody and HCV-RNA positive serum 200 m
1.11 g of calcium chloride was dissolved in 1 and 2.02 ml of a 10% dextran sulfate (Pharmacia) solution was added with stirring. After standing in a cold room overnight, a cooling centrifuge (Hitachi 6PR-5
After centrifugation at 4,000 rpm for 30 minutes at 2), a supernatant and a precipitate were obtained.

【0015】実施例2: ヘパリンナトリウム−塩化マ
ンガン処理 HTLV−I抗体、HIV抗体及びHBs抗原いずれも
陰性で、HCV抗体及びHCV−RNA陽性の血清200m
lに塩化マンガン1.98gを溶解し、攪拌しながらヘパリ
ンナトリウム(和光純薬)10%溶液4.04mlを添加し
た。以下、実施例1と同様に処理し、上清及び沈澱を得
た。
Example 2 Heparin Sodium-Manganese Chloride Treatment Serum 200 m positive for HCV antibody and HCV-RNA, negative for HTLV-I antibody, HIV antibody and HBs antigen
1.98 g of manganese chloride was dissolved in l, and 4.04 ml of 10% heparin sodium (Wako Pure Chemical Industries) solution was added with stirring. Thereafter, the same treatment as in Example 1 was carried out to obtain a supernatant and a precipitate.

【0016】実施例3: リンタングステン酸−塩化マ
グネシウム処理 HTLV−I抗体、HIV抗体及びHBs抗原いずれも
陰性で、HCV抗体及びHCV−RNA陽性の血清200m
lに塩化マグネシウム6水和物2.03gを溶解し、攪拌し
ながらリンタグステン酸(和光純薬)10%溶液8.08ml
を添加した。以下、実施例1と同様に処理し、上清及び
沈澱を得た。
Example 3: Phosphotungstic acid-magnesium chloride treatment Sera 200m positive for HCV antibody and HCV-RNA, all negative for HTLV-I antibody, HIV antibody and HBs antigen
2.03 g of magnesium chloride hexahydrate was dissolved in l, and 8.08 ml of a 10% solution of phosphotagustonic acid (Wako Pure Chemical) while stirring
Was added. Thereafter, the same treatment as in Example 1 was carried out to obtain a supernatant and a precipitate.

【0017】実施例4: HCV除去確認試験 (1)シュウ酸ナトリウム溶解 実施例1,2及び3で得られた沈澱画分に0.1Mシュウ
酸ナトリウム10mlを加え、沈澱が溶解するまで強く振
とうした。DEAEデキストラン(ファルマシア)10
%溶液を25%v/v添加し、攪拌後一夜冷室に静置し
た。冷却遠心機で4,000rpm、20分遠心後、上清を静か
に吸引し採取した。生理食塩水に透析し、脂質画分とし
た。
Example 4: HCV removal confirmation test (1) Sodium oxalate dissolution To the precipitate fractions obtained in Examples 1, 2 and 3, 10 ml of 0.1M sodium oxalate was added and shaken vigorously until the precipitate was dissolved. did. DEAE Dextran (Pharmacia) 10
% Solution was added at 25% v / v, and after stirring, the mixture was allowed to stand overnight in a cold room. After centrifugation at 4,000 rpm for 20 minutes in a cooling centrifuge, the supernatant was gently aspirated and collected. It was dialyzed against physiological saline to obtain a lipid fraction.

【0018】(2)検体溶液調製 実施例1、2、3及び4(1)で得られた上清及び沈澱処
理溶液各々50μlに50%グアニヂンチオシアネイト
及び0.5M 2−メルカプトエタノールを含む0.75Mクエ
ン酸緩衝液(pH7.0)500μlを加え、攪拌した後、2
M酢酸ナトリウム50μl及びクロロホルム/イソアミ
ルアルコール(49:1)100μlを加え、攪拌した。
氷中で15分間冷却した後、超遠心機(Tomy MC
−150)を用いて15,000rpm、30分超遠心を行な
い、水層を採取した。これにグリコーゲン2μlを加え
攪拌した後、2−プロパノール600μlを添加し、攪拌
した。零下20℃に1時間静置後、同様に15,000rpm、
30分超遠心し、RNAペレットを得た。ペレットを減
圧下、55℃で乾燥後、脱イオン水10μlを加えて溶
解し、検体溶液とした。
(2) Preparation of Specimen Solution 50 μl of the supernatant and the precipitation treatment solution obtained in Examples 1, 2, 3 and 4 (1) were each supplemented with 50% guanidine thiocyanate and 0.5 M 2-mercaptoethanol. Add 500 μl of 0.75 M citrate buffer (pH 7.0)
50 μl of M sodium acetate and 100 μl of chloroform / isoamyl alcohol (49: 1) were added and stirred.
After cooling in ice for 15 minutes, the ultracentrifuge (Tomy MC
-150) was subjected to ultracentrifugation at 15,000 rpm for 30 minutes to collect an aqueous layer. Glycogen (2 μl) was added and stirred, and then 2-propanol (600 μl) was added and stirred. After standing at 20 ° C for 1 hour, 15,000 rpm,
Ultracentrifugation was performed for 30 minutes to obtain an RNA pellet. The pellet was dried at 55 ° C. under reduced pressure, and then 10 μl of deionized water was added and dissolved to obtain a sample solution.

【0019】(3)cDNA合成 375mMKCl及び15mMMgCl2を含む250mMトリス塩
酸緩衝液(pH8.3)4μlにdATP、dTTP、dC
TP、dGTP(いずれも宝酒造)の等量混合液(以下
dNTPs)0.4μl、ランダムプライマー(宝酒造)
1μl、、RNaseインヒビター(宝酒造)0.2μ
l、M−MLVリバーストランスクリプターゼ(BR
L)1μl及び脱イオン水3.4μlを加え、cDNA合
成用混合液を調製した。実施例4(2)で得られた各検体
溶液10μlを65℃で5分間加温した後、cDNA合
成用混合液10μl加え、37℃で90分間加温し、c
DNAを合成した。
(3) cDNA synthesis 4 μl of 250 mM Tris-HCl buffer (pH 8.3) containing 375 mM KCl and 15 mM MgCl 2 was added to 4 μl of dATP, dTTP and dC.
0.4 μl of an equal volume mixture of TP and dGTP (both Takara Shuzo) (hereinafter dNTPs), random primer (Takara Shuzo)
1μl, RNase inhibitor (Takara Shuzo) 0.2μ
l, M-MLV reverse transcriptase (BR
L) 1 μl and 3.4 μl of deionized water were added to prepare a mixed solution for cDNA synthesis. After heating 10 μl of each sample solution obtained in Example 4 (2) at 65 ° C. for 5 minutes, 10 μl of the cDNA synthesis mixture was added, and heated at 37 ° C. for 90 minutes, and c
DNA was synthesized.

【0020】(4)PCR法 500mMKCl、15mMMgCl2、0.2%BSAを含む100mM
トリス塩酸緩衝液(pH8.3)5μlにdNTPs0.2μ
l、Taqポリメラーゼ (宝酒造)、プライマー N
CR−1(HCV−RNAの7〜26bpに相補的な合成
DNA、自家製、以下同)及びNCR−4(同229〜248
bpに相補的)の等量混合液0.2μl及び脱イオン水39.1
μlを加えて1stPCR用混合液とした。実施例4
(3)で得られた各cDNA溶液5μlを小エッペンドル
フチューブにとり、1stPCR用混合液45μlを加
え混合した。蒸発を防ぐためにミネラルオイル2滴を滴
下した後、プログラムコントロールシステムPC−70
0(アステック)を用い、35サイクルのDNA増幅を
行なった(1stPCR)。
(4) PCR method 100 mM containing 500 mM KCl, 15 mM MgCl 2 , 0.2% BSA
0.2μ of dNTPs in 5μl of Tris-HCl buffer (pH 8.3)
l, Taq polymerase (Takara Shuzo), primer N
CR-1 (synthetic DNA complementary to 7 to 26 bp of HCV-RNA, homemade, hereinafter the same) and NCR-4 (229 to 248 of the same)
0.2 μl of an aliquot of 1) complementary to bp) and 39.1 deionized water
μl was added to prepare a mixed solution for 1st PCR. Example 4
5 μl of each cDNA solution obtained in (3) was placed in a small Eppendorf tube, and 45 μl of the mixed solution for 1st PCR was added and mixed. After dropping 2 drops of mineral oil to prevent evaporation, program control system PC-70
Using 0 (Astec), 35 cycles of DNA amplification were performed (1st PCR).

【0021】ついで、上記の緩衝液5μlにdNTPs
0.2μl、Taqポリメラーゼ0.2μl、プライマーNC
R−2(同46〜65bpに相補的)及びNCR−3(同
171〜190bpに相補的)の等量混合液0.5μlを加え、2
ndPCR用混合液とした。1stPCR反応液から1
μlを小エッペンドルフチューブにとり、2ndPCR
用混合液49μlを加え混合した。以下、1stPCR
と同様に操作し、2ndPCRを行なった。
Then, dNTPs were added to 5 μl of the above buffer solution.
0.2 μl, Taq polymerase 0.2 μl, primer NC
R-2 (complementary to 46-65 bp) and NCR-3 (complementary)
0.5 μl of an equal volume mixture of 171 to 190 bp)
This was used as a mixed solution for ndPCR. 1 from 1st PCR reaction solution
Transfer μl to a small Eppendorf tube and use 2nd PCR
The mixed solution (49 μl) was added and mixed. Below, 1st PCR
2nd PCR was performed in the same manner as in.

【0022】(5)電気泳動 ミニゲル電気泳動システムMupid−2(アドバン
ス)に2%アガロースゲル(0.089Mトリス−ホウ酸緩
衝液(pH7.3)20mMEDTA)を調製し、固化した
後、泳動槽に同緩衝液を満たした。実施例4(4)で得ら
れた検体(1stPCR反応液及び2ndPCR反応
液)10μlに色素液MarkerV(半井)2μlを
添加したものをアプライし、120Vで泳動した。マーカ
ーが中央から約1cmのところで泳動を止め、取り出した
ゲルを0.025%エチヂウムブロマイド蛍光染色液中で2
0分間振とうし、染色した。染色したゲルにUVランプ
を照射し、陽性コントロールと同じ位置にバンドが観察
されるか否かにより、検体中のHCV−RNAの存在を
判定した。その結果、図1及び図2、並びに表1に示し
たように、実施例1,2及び3で得られた沈澱について
はいずれも陽性コントロールと同じ位置にバンドが観察
されたのに対して、上清ではいずれの検体もバンドが観
察されなかった。これは、沈澱画分はHCV陽性、上清
はHCV陰性であることを意味し、本発明のポリアニオ
ン−金属塩処理を行うことにより、血清中のHCVを沈
澱させ、容易にHCVの除去が可能なことを示すもので
ある。
(5) Electrophoresis A 2% agarose gel (0.089M Tris-borate buffer (pH7.3) 20 mM EDTA) was prepared in a mini gel electrophoresis system Mupid-2 (Advance), and after solidification, it was placed in an electrophoresis tank. The same buffer was filled. 10 μl of the sample (1st PCR reaction solution and 2nd PCR reaction solution) obtained in Example 4 (4), to which 2 μl of the dye solution Marker V (Hanui) was added, was applied and electrophoresed at 120V. Stop the electrophoresis when the marker is about 1 cm from the center, and remove the taken gel in 0.025% ethidium bromide fluorescent staining solution.
Shake for 0 minutes and stain. The presence of HCV-RNA in the sample was determined by irradiating the stained gel with a UV lamp and observing a band at the same position as the positive control. As a result, as shown in FIGS. 1 and 2 and Table 1, for the precipitates obtained in Examples 1, 2, and 3, a band was observed at the same position as that of the positive control. No band was observed in any of the samples in the supernatant. This means that the precipitated fraction is HCV positive and the supernatant is HCV negative, and by performing the polyanion-metal salt treatment of the present invention, HCV in serum can be precipitated and HCV can be easily removed. It shows that.

【0023】[0023]

【表1】 [Table 1]

【図面の簡単な説明】[Brief description of drawings]

【図1】1stPCR反応により得られた各検体の電気
泳動結果を示す図である。
FIG. 1 is a diagram showing an electrophoresis result of each sample obtained by a 1st PCR reaction.

【図2】2ndPCR反応により得られた各検体の電気
泳動結果を示す図である。
FIG. 2 is a diagram showing an electrophoresis result of each sample obtained by the 2nd PCR reaction.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.5 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 // C12N 15/51 ─────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of front page (51) Int.Cl. 5 Identification code Office reference number FI technical display location // C12N 15/51

Claims (3)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】 血漿または血清に二価の金属イオン、並
びにポリアニオン化合物を添加し、攪拌後、得られる沈
澱を除去することからなるC型肝炎ウイルスの除去方
法。
1. A method for removing hepatitis C virus, which comprises adding a divalent metal ion and a polyanion compound to plasma or serum and stirring and removing the resulting precipitate.
【請求項2】 ポリアニオン化合物が、ヘパリン、デキ
ストラン硫酸、コンドロイチン硫酸、コンドロイチンポ
リ硫酸、ヘパラン酸、アミロペクチン硫酸などの硫酸多
糖体、リンタングステン酸、ポリリン酸より選択される
少なくとも1種の化合物である請求項1記載の除去方
法。
2. The polyanion compound is at least one compound selected from sulfate polysaccharides such as heparin, dextran sulfate, chondroitin sulfate, chondroitin polysulfate, heparanic acid, and amylopectin sulfate, phosphotungstic acid, and polyphosphoric acid. Item 1. The removal method according to Item 1.
【請求項3】 二価の金属イオンが、カルシウム、マグ
ネシウム、マンガン、コバルトのイオンより選択される
少なくとも1種の金属イオンである請求項1記載の除去
方法。
3. The removal method according to claim 1, wherein the divalent metal ion is at least one metal ion selected from ions of calcium, magnesium, manganese, and cobalt.
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