JPH06343492A - Method for determining 1,5-anhydroglucitol - Google Patents

Method for determining 1,5-anhydroglucitol

Info

Publication number
JPH06343492A
JPH06343492A JP16000193A JP16000193A JPH06343492A JP H06343492 A JPH06343492 A JP H06343492A JP 16000193 A JP16000193 A JP 16000193A JP 16000193 A JP16000193 A JP 16000193A JP H06343492 A JPH06343492 A JP H06343492A
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
glucose
sample
oxidase
specimen
anhydroglucitol
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Granted
Application number
JP16000193A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JP3428073B2 (en
Inventor
Shigeru Tajima
茂 田島
Toshio Tanabe
田辺  敏雄
Reiko Machida
礼子 町田
Tomoko Takezawa
智子 竹澤
Minoru Masuda
増田  稔
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Nippon Kayaku Co Ltd
Original Assignee
Nippon Kayaku Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Nippon Kayaku Co Ltd filed Critical Nippon Kayaku Co Ltd
Priority to JP16000193A priority Critical patent/JP3428073B2/en
Publication of JPH06343492A publication Critical patent/JPH06343492A/en
Application granted granted Critical
Publication of JP3428073B2 publication Critical patent/JP3428073B2/en
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Fee Related legal-status Critical Current

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

PURPOSE:To provide a determination method applicable to accurate, rapid and automatic analysis of 1,5-anhydroglucitol (1,5-AG) used as a diagnostic morker for diabetes mellitus. CONSTITUTION:In determining 1,5-AG in a sample such as a serum using pyranose oxidase or L-sorbose oxidase, pH at which glucose mixed in the sample is convertgd to a substance which does not react with pyranose oxidase or L-sorbose oxidase is changed to <7 or an acidic substance is previously added to the sample and then, the glucose is converted to a substance which does not react with pyranose oxidase or L-sorbose oxidase.

Description

【発明の詳細な説明】Detailed Description of the Invention

【0001】[0001]

【産業上の利用分野】本発明は糖尿病の診断マーカーと
して利用されている1,5−アンヒドログルシトール
(以下1,5−AGと略す)の正確、迅速でかつ自動分
析装置にも適用可能な測定方法に関するものである。
FIELD OF THE INVENTION The present invention is applied to an accurate, rapid and automatic analyzer for 1,5-anhydroglucitol (hereinafter abbreviated as 1,5-AG) used as a diagnostic marker for diabetes. It concerns a possible measurement method.

【0002】[0002]

【従来の技術】1,5−AGは、グルコースと類似構造
を持つ環状ポリオールである。この1,5−AGは、健
常人の血液中に、グルコースに次ぎ高濃度(個人毎に一
定値を持つ)で存在するが、糖尿病患者では、1,5−
AGの濃度は特異的に低下し、かつその低下率が顕著で
あることから、糖尿病の診断に用いられる様になった。
2. Description of the Related Art 1,5-AG is a cyclic polyol having a structure similar to glucose. This 1,5-AG is present in the blood of healthy people at the next highest concentration (after glucose has a constant value for each individual) in glucose, but in diabetic patients, 1,5-AG is present.
Since the concentration of AG specifically decreases and the rate of decrease is remarkable, it has come to be used for the diagnosis of diabetes.

【0003】従来、1,5−AGを測定するには、1,
5−AGを酸化する酵素(以下1,5−AG酸化酵素と
いう)が見いだされ、これを応用した測定法(特公平3
−24200号公報)が開発された。また、1,5−A
G酸化酵素ではあるが、基質特異性が厳密でないピラノ
ースオキシダーゼ叉はL−ソルボースオキシダーゼを用
い、これら酵素と反応性を有する1,5−AG以外の糖
類(以下、夾雑糖類という)を選択的に除去するいくつ
かの方法のうちの1つと組み合わせた測定法(特開昭6
3−185397号公報)が開発された。
Conventionally, to measure 1,5-AG, 1,
An enzyme that oxidizes 5-AG (hereinafter referred to as 1,5-AG oxidase) was found, and a measurement method using this enzyme (Japanese Patent Publication No.
-24200) was developed. Also, 1,5-A
Although it is a G-oxidizing enzyme, pyranose oxidase or L-sorbose oxidase whose substrate specificity is not strict is used to selectively select sugars other than 1,5-AG having reactivity with these enzymes (hereinafter referred to as contaminating sugars). A measurement method in combination with one of several methods of removal (Japanese Patent Laid-Open No. Sho 6-96
3-185397) was developed.

【0004】この特開昭63−185397号公報に
は、夾雑糖類(ヒト血中では主としてグルコース)の除
去法として、(1)イオン交換樹脂(ミニカラム)で吸
着する方法、(2)塩酸で分解する方法、(3)水素化
ホウ素ナトリウムで還元する方法、(4)グルコースオ
キシダーゼで酸化する方法、(5)ヘキソキナーゼでリ
ン酸化する方法が開示されている。これらの方法のう
ち、(1)の方法が最も厳密かつ簡便であり、現在、こ
の方法を用いた用手法の1,5−AG測定キットが診断
薬として開発され、上市されている。しかしながら、多
忙な臨床現場を考えると、カラム操作を必要とする用手
法のキットでは、必ずしも十分に簡便とは言えず、自動
化法の開発に強い期待がかけられている。
In Japanese Patent Laid-Open No. 63-185397, as a method for removing contaminant saccharides (mainly glucose in human blood), (1) adsorption with an ion exchange resin (minicolumn), (2) decomposition with hydrochloric acid , (3) sodium borohydride reduction, (4) glucose oxidase oxidation, and (5) hexokinase phosphorylation. Of these methods, the method (1) is the most rigorous and simple, and currently a 1,5-AG assay kit using this method is developed and put on the market as a diagnostic agent. However, considering a busy clinical scene, a kit of a technique requiring column manipulation is not always simple enough, and there is a strong expectation for the development of an automated method.

【0005】そこで、カラム操作が不要であり、生化学
検査用に市販されている汎用の自動分析装置へも応用可
能な(5)の夾雑糖類(主としてグルコース)の酵素に
よるリン酸化法が注目され、特開平1−320998号
公報、特開平2−104298号公報、特開平3−27
299号公報にその改良法が提案されている。
[0005] Therefore, attention is paid to the enzymatic phosphorylation method of contaminating sugars (mainly glucose) of (5), which does not require column operation and can be applied to a general-purpose automatic analyzer commercially available for biochemical examination. JP-A-1-320998, JP-A-2-104298, and JP-A-3-27.
An improved method is proposed in Japanese Patent Publication No. 299.

【0006】[0006]

【発明が解決しようとする課題】ところで、血液中では
グルコースは空腹時で800〜1,200mg/L、食後で
も1,400mg/L程度の量にコントロールされている。
ところが糖尿病になるとこれ以上に上昇し、3,000
から4,000mg/Lに上がることもまれではなく、1
0,000mg/Lに上昇することも有り得る。一方、1,
5−AGの量は0〜50mg/Lの範囲に分布しており、健
常者で平均23〜25mg/L(グルコースのおよそ1/4
0)、糖尿病患者ではずっと少なくなって平均4〜7mg
/Lであり、1mg/L以下(グルコースの数千分の1)とな
ることもある。従って、10,000mg/Lのグルコース
を完全に除去できる方法でないと、1,5−AGを充分
精度良く測定できる方法とは言えない。すなわち、グル
コース濃度が10,000mg/Lの糖尿病患者の血液で
は、グルコースの99.99%が除去できても1mg/Lの
グルコースが残存し、1,5−AGの測定値は上昇し、
正確に測定できない。
By the way, glucose in the blood is controlled to an amount of 800 to 1,200 mg / L on an empty stomach and about 1,400 mg / L after a meal.
However, when it becomes diabetic, it rises to more than 3,000.
It is not uncommon to increase from 1 to 4,000 mg / L. 1
It is possible to increase to 50,000 mg / L. On the other hand, 1,
The amount of 5-AG is distributed in the range of 0 to 50 mg / L, and an average of 23 to 25 mg / L in healthy subjects (about 1/4 of glucose)
0), much lower in diabetic patients 4-7 mg on average
/ L, which may be 1 mg / L or less (one-thousandth of glucose). Therefore, it cannot be said that 1,5-AG can be measured with sufficient accuracy unless it is a method capable of completely removing 10,000 mg / L of glucose. That is, in the blood of a diabetic patient with a glucose concentration of 10,000 mg / L, even if 99.99% of glucose can be removed, 1 mg / L of glucose remains and the measured value of 1,5-AG increases.
It cannot be measured accurately.

【0007】従って、1,5−AGに対する特異性が悪
く、むしろグルコースと強く反応するようなピラノース
オキシダーゼ叉はL−ソルボースオキシダーゼを用い、
汎用の生化学分析装置で測定可能な1,5−AG自動測
定法を開発するためには、グルコースを完全に除去する
方法が必要となる。
Therefore, using pyranose oxidase or L-sorbose oxidase, which has a low specificity for 1,5-AG and rather strongly reacts with glucose,
In order to develop a 1,5-AG automatic measuring method that can be measured by a general-purpose biochemical analyzer, a method for completely removing glucose is required.

【0008】また、特開平1−320998号公報、特
開平2−104298号公報、特開平3−27299号
公報、特開平5ー76397号公報等では、グルコース
の処理に、グルコース6位リン酸化酵素(グルコキナー
ゼ叉はヘキソキナーゼ)を用い、さらにこの反応を完結
させるため、グルコースのリン酸化反応の平衡を完全に
グルコース−6−リン酸に向かわせる工夫がなされてい
る。
Further, in JP-A-1-320998, JP-A-2-104298, JP-A-3-27299, JP-A-5-76397, etc., glucose 6-position phosphatase is used for treating glucose. (Glucokinase or hexokinase) is used, and in order to complete this reaction, a scheme has been made to completely shift the equilibrium of the phosphorylation reaction of glucose to glucose-6-phosphate.

【0009】いずれの方法でも、1,5−AGとグルコ
ースのみを試料とした場合、正確に1,5−AGを定量
することができる。しかしながら、これらの方法でヒト
血清叉は血漿中の1,5−AGの測定を行なった場合、
血清あるいは血漿の採取から測定までの保存期間により
測定値が異なり、時間の経過とともに測定値が上昇し、
又、グルコース量が多いほど測定値が大きくなる傾向が
あり、大きな問題点となっている。
With either method, 1,5-AG can be accurately quantified when only 1,5-AG and glucose are used as samples. However, when measuring 1,5-AG in human serum or plasma by these methods,
The measured value varies depending on the storage period from the collection of serum or plasma to the measurement, and the measured value rises over time,
Further, the measured value tends to increase as the glucose amount increases, which is a serious problem.

【0010】[0010]

【課題を解決するための手段】本発明者らは、汎用の自
動分析装置にも応用可能な方法で前述した問題点を解決
する方法を検討し、本発明を完成した。即ち本発明は、
(1)試料中の1,5−アンヒドログルシトールをピラ
ノースオキシダーゼまたはL−ソルボースオキシダーゼ
を用いて測定する際に、試料中のグルコースを予めピラ
ノースオキシダーゼまたはL−ソルボースオキシダーゼ
と反応しない化合物にpH7未満の条件下で酵素変換す
ることを特徴とする1,5−アンヒドログルシトールの
定量法、
The present inventors have completed a method of the present invention by studying a method for solving the above-mentioned problems by a method applicable to a general-purpose automatic analyzer. That is, the present invention is
(1) When 1,5-anhydroglucitol in a sample is measured using pyranose oxidase or L-sorbose oxidase, glucose in the sample is adjusted to pH 7 with a compound that does not react with pyranose oxidase or L-sorbose oxidase in advance. A method for quantifying 1,5-anhydroglucitol, which comprises enzymatically converting under less than

【0011】(2)試料中の1,5−アンヒドログルシ
トールをピラノースオキシダーゼまたはL−ソルボース
オキシダーゼを用いて測定する際に、試料に酸性物質を
加えて試料のpHを7未満にした後試料中のグルコース
をピラノースオキシダーゼまたはL−ソルボースオキシ
ダーゼと反応しない化合物に予め酵素変換することを特
徴とする1,5−アンヒドログルシトールの定量法、に
関する。
(2) When measuring 1,5-anhydroglucitol in a sample using pyranose oxidase or L-sorbose oxidase, after adding an acidic substance to the sample to reduce the pH of the sample to less than 7. The present invention relates to a method for quantifying 1,5-anhydroglucitol, which comprises enzymatically converting glucose in a sample into a compound that does not react with pyranose oxidase or L-sorbose oxidase.

【0012】以下、本発明の1,5−AG定量法につい
て詳細に説明する。本発明においては、試料中のグルコ
ースをピラノースオキシダーゼまたはL−ソルボースオ
キシダーゼと反応しない化合物に変換する際あるいは変
換する前に試料を酸性(pH7未満)にして変換を行な
う。本発明者らは、標準の試料では試料の経時変化がな
いのに、血清等蛋白を含む試料を用いた場合に経時的、
グルコース量依存的に干渉が起こる現象を見いだし、そ
の原因の推定を行い、その解決策を見いだした。
The 1,5-AG quantification method of the present invention will be described in detail below. In the present invention, when the glucose in the sample is converted into a compound that does not react with pyranose oxidase or L-sorbose oxidase, or before the conversion, the sample is acidified (pH less than 7) and converted. The present inventors have found that the standard sample does not change with time, but when a sample containing a protein such as serum is used,
We found a phenomenon in which glucose-dependent interference occurs, estimated its cause, and found a solution.

【0013】1,5−AGを含まない試料として牛血清
アルブミンにグルコース10000mg/Lを加えた試料
を、1,5−AGとグルコース(10000mg/L)の標
準試料では正確な定量が可能な方法で測定したところ、
測定値は1〜10mg/Lの間でバラツキの大きい定量値が
得られた。そこで、この時の試料のpHを種々変えたと
ころ、酸性サイドで低い定量値、アルカリサイドで高い
定量値となった。試料として用いた牛血清アルブミンは
1,5−AGを全く含んでいないので、この定量値はグ
ルコースを測定したものと推定される。
A method in which a sample obtained by adding 10000 mg / L glucose to bovine serum albumin as a sample not containing 1,5-AG can be accurately quantified with a standard sample containing 1,5-AG and glucose (10000 mg / L). When measured with
Quantitative values with large variations were obtained between the measured values of 1 to 10 mg / L. Therefore, when the pH of the sample at this time was changed variously, the quantitative value was low on the acidic side and high on the alkaline side. Since the bovine serum albumin used as a sample does not contain 1,5-AG at all, this quantitative value is estimated to be a measurement of glucose.

【0014】また、イオン交換樹脂を充填したカラムを
用いてグルコース及び蛋白を除去する方法(ラナAG
(アンヒドログルシトール)キット(日本化薬(株)
製))で測定すると、その測定値はいずれもほとんど0
mg/Lであった。従って、この測定値を上げる物質はカラ
ム処理によって除去出来ることが分かった。
A method for removing glucose and protein using a column packed with an ion exchange resin (Lana AG
(Anhydroglucitol) kit (Nippon Kayaku Co., Ltd.)
Manufactured)), the measured values are almost 0
It was mg / L. Therefore, it was found that the substance that raises the measured value can be removed by the column treatment.

【0015】上記のように、血清等蛋白を含む試料を用
いた場合に測定値にバラツキが生じる原因は、蛋白とグ
ルコースが可逆的に結合し、グルコースの酵素変換反応
中に酵素の作用を受けず、1,5−AGの定量反応中に
一部がグルコースを解離し、発色定量されたものと考え
られる。この蛋白とグルコースの可逆的な結合は蛋白の
リジン側鎖のアミノ基、あるいは蛋白のアミノ末端のア
ミノ基とグルコースのアルデヒド基とのシッフ塩基結合
が推定される。シッフ塩基はアルカリ性で生成の方に平
衡が大きくなり、酸性では逆の方向に平衡がずれること
が知られている。
As described above, the cause of variation in measured values when a sample containing protein such as serum is used is that protein and glucose are reversibly bound to each other and are affected by the enzyme during the enzyme conversion reaction of glucose. However, it is considered that a part of glucose was dissociated during the quantitative reaction of 1,5-AG and the color was quantitatively determined. The reversible bond between this protein and glucose is presumed to be a Schiff base bond between the amino group on the lysine side chain of the protein or the amino group at the amino terminus of the protein and the aldehyde group of glucose. It is known that the Schiff base is alkaline and its equilibrium is larger when it is produced, and that it is deviated in the opposite direction when it is acidic.

【0016】従って、蛋白とグルコースはpHの高い条
件では、シッフ塩基の結合を生成し、グルコースの変換
消去反応の際に反応を受けず、1,5−AGの定量反応
で再び生成してくるので測定値が上昇するものと思われ
る。一方、血清、血漿等は放置によってpHが上昇する
ことが知られている。このことから血清等の試料の1,
5−AG測定値は、経時的に上昇し、又、グルコース量
に応じて上昇してくることとなる。
Therefore, under conditions of high pH, protein and glucose form a Schiff base bond, are not reacted during the glucose conversion elimination reaction, and are regenerated by the quantitative reaction of 1,5-AG. Therefore, the measured value is expected to rise. On the other hand, it is known that the pH of serum, plasma, etc. increases when left standing. From this fact,
The 5-AG measurement value increases with time and also increases with the amount of glucose.

【0017】本発明では、血清、血漿等の試料中のグル
コース変換反応中のpHが低い条件となっているため、
あるいは、試料に酸を加えてpHを下げているため、シ
ッフ塩基の結合は解離し蛋白とグルコースに分かれるの
で、グルコース変換反応が完全に進行し、1,5−AG
を正確に測定する事ができる。
In the present invention, since the pH during the glucose conversion reaction in a sample such as serum or plasma is low,
Alternatively, since the pH is lowered by adding an acid to the sample, the bond of the Schiff base is dissociated and separated into protein and glucose, so that the glucose conversion reaction proceeds completely and the 1,5-AG
Can be measured accurately.

【0018】本発明の前記(1)の定量法において、グ
ルコース変換反応中のpHの範囲は7未満であるが好ま
しくは5、5〜6、5の範囲である。この場合、pHを
コントロールする物質としては、単なる酸を用いるより
も、緩衝作用のあるものを用いるのが好ましく、例え
ば、燐酸緩衝液、酢酸緩衝液、クエン酸緩衝液、コハク
酸緩衝液、グッドの緩衝液(例えば、MES、Bis−
Tris、ADA、PIPES、ACES、MOPS
O、MOPS等)等が挙げられるが、pH7未満の範囲
で緩衝作用のあるものなら特に限定されない。その濃度
も通常使われている5〜200mM程度の範囲が好まし
い。
In the quantification method (1) of the present invention, the pH range during the glucose conversion reaction is less than 7, preferably 5, 5 to 6, 5. In this case, as the substance for controlling the pH, it is preferable to use a substance having a buffer action rather than simply using an acid. For example, a phosphate buffer, an acetate buffer, a citrate buffer, a succinate buffer, a Good Buffers (eg MES, Bis-
Tris, ADA, PIPES, ACES, MOPS
O, MOPS, etc.), but is not particularly limited as long as it has a buffering action in the range of pH less than 7. The concentration is preferably within the range of 5 to 200 mM which is usually used.

【0019】本発明の前記(2)の定量法において、試
料のpHを下げる場合の試料のpHの範囲は7未満であ
るが好ましくは2〜6の範囲である。pHを下げるため
に用いる酸性物質は、特に限定されないが、例えば、塩
酸、硫酸、燐酸等の無機酸、酢酸、プロピオン酸、クエ
ン酸、リンゴ酸、酒石酸、コハク酸、マレイン酸等の有
機酸を使うことが可能であるが、グルコース変換酵素
類、1,5−AG酸化酵素あるいはペルオキシダーゼ等
の酵素阻害の起こるイオンを持つ酸性物質は使用できな
い。
In the quantification method (2) of the present invention, when the pH of the sample is lowered, the pH range of the sample is less than 7, preferably 2 to 6. The acidic substance used for lowering the pH is not particularly limited, and examples thereof include inorganic acids such as hydrochloric acid, sulfuric acid and phosphoric acid, and organic acids such as acetic acid, propionic acid, citric acid, malic acid, tartaric acid, succinic acid and maleic acid. Although it can be used, an acidic substance having an ion that causes enzyme inhibition such as glucose converting enzyme, 1,5-AG oxidase or peroxidase cannot be used.

【0020】本発明において、グルコース変換反応は公
知の方法に従って行なうことができ、特に限定されない
が、グルコース6位リン酸化酵素(グルコキナーゼ叉は
ヘキソキナーゼ)とATP(アデノシン三リン酸)を用
いて、グルコース−6−リン酸に変換する方法が好まし
い。また、この反応を完全に進行させるため、ATPを
別な酵素と基質を用いてADPから再生させる工夫、あ
るいは生成物であるグルコース−6−リン酸をさらに別
酵素を用いて6ーホスフォグルコノラクトン、あるいは
フルクトース−6−リン酸さらにフルクトース−2,6
二リン酸に変換する工夫等がなされているがいずれの方
法も採用することができる。
In the present invention, the glucose conversion reaction can be carried out according to a known method and is not particularly limited, but using glucose 6-position phosphatase (glucokinase or hexokinase) and ATP (adenosine triphosphate), The method of converting to glucose-6-phosphate is preferred. In addition, in order to allow this reaction to proceed completely, a device for regenerating ATP from ADP using another enzyme and a substrate, or a product glucose-6-phosphate using another enzyme, 6-phosphoglucose was used. Nolactone or fructose-6-phosphate and further fructose-2,6
Although any method for converting into diphosphoric acid has been devised, any method can be adopted.

【0021】これらの反応は通常5〜40℃で行われる
が、自動測定機では37℃で行われることが多い。反応
時間は反応温度との関係で1分〜1時間程度であり、自
動測定機では3〜10分が採用されている。
These reactions are usually carried out at 5 to 40 ° C., but they are often carried out at 37 ° C. in an automatic measuring machine. The reaction time is about 1 minute to 1 hour in relation to the reaction temperature, and 3 to 10 minutes is adopted in the automatic measuring machine.

【0022】上記反応により試料中のグルコースを消去
した後、1,5−AGをピラノースオキシダーゼ叉はL
−ソルボースオキシダーゼを用いて定量する。この1,
5−AGの定量法は公知であり、特開平3−24200
号、特開昭63−185397号、特開平1−3209
98号公報等に記載された方法に従って行うことができ
る。
After eliminating glucose in the sample by the above reaction, 1,5-AG was added to pyranose oxidase or L.
-Quantify using sorbose oxidase. This one
A method for quantifying 5-AG is known and disclosed in JP-A-3-24200.
JP-A-63-185397, JP-A-1-3209
It can be carried out according to the method described in Japanese Patent Publication No. 98, etc.

【0023】例えば、上記反応により試料中のグルコー
スを消去した後、これに酸素等の電子受容体、及び、ピ
ラノースオキシダーゼ叉はL−ソルボースオキシダーゼ
を添加し、4〜50℃好ましくは25〜40℃で、30
秒〜3時間、好ましくは2分〜1時間インキュベート
し、次いで生成する過酸化水素等の電子受容体の還元体
等を測定し、別に作製した検量線から1,5−AG量を
求めれば良い。
For example, after the glucose in the sample is eliminated by the above reaction, an electron acceptor such as oxygen and pyranose oxidase or L-sorbose oxidase are added thereto, and the temperature is 4 to 50 ° C., preferably 25 to 40 ° C. So 30
After incubating for 2 seconds to 3 hours, preferably for 2 minutes to 1 hour, the reductant of the electron acceptor such as hydrogen peroxide produced is measured, and the 1,5-AG amount can be determined from a separately prepared calibration curve. .

【0024】この1,5−AG測定反応はグルコース消
去反応に引き続いて行われるので、反応温度はそのまま
の条件がとられることが多い。反応時間は1分〜1時間
程度であるが、発色強度と測定方法との関係から選択さ
れ、自動測定機では3〜15分が採用されている。
Since the 1,5-AG measurement reaction is carried out subsequent to the glucose elimination reaction, the reaction temperature is often kept as it is. The reaction time is about 1 minute to 1 hour, but it is selected from the relationship between the color development intensity and the measuring method, and 3 to 15 minutes is adopted in the automatic measuring machine.

【0025】ピラノースオキシダーゼ及びL−ソルボー
スオキシダーゼはIUPAC−IUBの命名法でそれぞ
れEC1.1.3.10及びEC1.1.3.11に分
類しうるものであれば、特に制限はなく、市販のものを
使用しうる。これら酵素は、通常0.5〜500U/mL
好ましくは1〜50U/mL使用される。
Pyranose oxidase and L-sorbose oxidase are not particularly limited as long as they can be classified into EC 1.1.3.10 and EC 1.1.3.11 by the nomenclature of IUPAC-IUB, respectively. You can use one. These enzymes are usually 0.5-500 U / mL
Preferably 1 to 50 U / mL is used.

【0026】具体例を示すとつぎのとおりである。例え
ば、電子受容体の還元体が過酸化水素の場合、過酸化水
素を検出する方法としては、高感度に検出できる方法で
あればいずれであっても良く、数多くの方法が利用でき
る。これらのうちで最も一般的に用いられている方法
は、ホースラディッシュペルオキシダーゼ(HRP)を
触媒酵素として、各種のHRP基質を過酸化水素で酸化
するものであり、酸化反応の結果生成した色素、ケイ光
物質や化学発光をそれぞれ吸光度測定、ケイ光測定及び
発光測定すれば良い。
A specific example is as follows. For example, when the reduced form of the electron acceptor is hydrogen peroxide, the method for detecting hydrogen peroxide may be any method as long as it can be detected with high sensitivity, and many methods can be used. The most commonly used method among these is to oxidize various HRP substrates with hydrogen peroxide using horseradish peroxidase (HRP) as a catalytic enzyme. The light substance and chemiluminescence may be measured by absorbance measurement, fluorescence measurement and luminescence measurement, respectively.

【0027】色素を生成するHRPの基質としては2,
2’−アジノビス(3−エチルベンゾチアゾリン−6−
スルホン酸)(ABTS)、o−フェニレンジアミン
(OPD)、5−アミノサリチル酸(5−AS)、3,
3’,5,5’−テトラメチルベンジジン(TMB)、
N−(カルボキシメチルアミノカルボニル)−4,4’
−ビス(ジメチルアミノ)−ジフェニルアミンナトリウ
ム塩(DA−64)、4−アミノアンチピリンとフェノ
ール類、N−エチル−N−スルホプロピル−m−トルイ
ジンあるいはN−エチル−N−(2−ヒドロキシ−3−
スルホプロピル)−m−トルイジン(TOOS)等の組
み合わせによるいわゆるトリンダー系発色剤などがあ
る。ケイ光物質を生成するHRPの基質としては、p−
ヒドロキシフェニル酢酸、3−(p−ヒドロキシフェニ
ル)プロピオン酸(HPPA)などがある。また、化学
発光するHRPの基質としては、ルミノール、イソルミ
ノールなどが知られている。
As a substrate for HRP which produces a dye,
2'-azinobis (3-ethylbenzothiazoline-6-
Sulfonic acid) (ABTS), o-phenylenediamine (OPD), 5-aminosalicylic acid (5-AS), 3,
3 ', 5,5'-tetramethylbenzidine (TMB),
N- (carboxymethylaminocarbonyl) -4,4 '
-Bis (dimethylamino) -diphenylamine sodium salt (DA-64), 4-aminoantipyrine and phenols, N-ethyl-N-sulfopropyl-m-toluidine or N-ethyl-N- (2-hydroxy-3-)
There is a so-called Trinder-based color-developing agent which is a combination of sulfopropyl) -m-toluidine (TOOS) and the like. As a substrate for HRP that produces a fluorescent substance, p-
Examples include hydroxyphenylacetic acid and 3- (p-hydroxyphenyl) propionic acid (HPPA). Luminol, isoluminol, and the like are known as substrates for chemiluminescent HRP.

【0026】HRPなしに化学発光で検出する方法もい
くつか知られている。たとえば、フェリシアンイオン存
在下に過酸化水素でルミノールを発光させる方法、金属
イオン存在下に過酸化水素でルシゲニンを発光させる方
法、ビス(2,4,6−トリクロルフェニル)オギザレ
ートの様なアリルシュウ酸エステル類の化合物をケイ光
物質存在下に過酸化水素と反応させ、シュウ酸エステル
の分解エネルギーでケイ光物質を励起させ発光させる方
法などが知られている。さらに過酸化水素を直接検出す
る方法として、過酸化水素電極を用いても良い。
Several methods for chemiluminescence detection without HRP are also known. For example, a method of causing luminol to emit light with hydrogen peroxide in the presence of ferricyan ion, a method of emitting lucigenin with hydrogen peroxide in the presence of metal ion, and an allyl oxalic acid such as bis (2,4,6-trichlorophenyl) oxalate. There is known a method of reacting an ester compound with hydrogen peroxide in the presence of a fluorescent substance to excite the fluorescent substance with the decomposition energy of oxalate ester to emit light. Further, as a method for directly detecting hydrogen peroxide, a hydrogen peroxide electrode may be used.

【0027】また、本発明で用いられる試料としては種
々のものが使用でき、1,5−AGを定量したいものな
らとくに制限はなく、例えば髄液、血漿、血清、尿等の
体液や植物、動物組織などの抽出物および、それらの除
蛋白物が挙げられる。
Various samples can be used as the sample used in the present invention, and there is no particular limitation as long as 1,5-AG is to be quantified. For example, body fluids such as cerebrospinal fluid, plasma, serum, urine and plants, Examples include extracts such as animal tissues and deproteinized products thereof.

【0028】本発明によれば、試料中のグルコース変換
反応中のpHを7未満の酸性の条件下で行うこと、また
は、試料のpHを酸性物質を用いて下げることで、グル
コースと蛋白の可逆的な結合を解離の方向にずらしてグ
ルコースを変換するので、ピラノースオキシダーゼ叉は
L−ソルボースオキシダーゼを用いた1,5−AGの測
定中にグルコースが蛋白から解離して測定値を押し上げ
ることが少なくなるため、正確な1,5−AG測定値を
得ることが出来る。従って、本発明によれば、試料を保
存しても、採取後すぐに測定してもその測定値に変化は
なく、1,5−AGの定量を高い精度で行うことができ
る。
According to the present invention, glucose and protein can be reversible by performing the glucose conversion reaction in the sample under acidic conditions of less than 7 or by lowering the pH of the sample with an acidic substance. Since glucose is converted by shifting the specific bond in the dissociation direction, glucose is less likely to be dissociated from the protein and push up the measured value during the measurement of 1,5-AG using pyranose oxidase or L-sorbose oxidase. Therefore, an accurate 1,5-AG measurement value can be obtained. Therefore, according to the present invention, even if the sample is stored or measured immediately after collection, the measured value does not change, and 1,5-AG can be quantified with high accuracy.

【0029】[0029]

【実施例】以下、比較例及び実施例により本発明を具体
的に説明するが、本発明はこれら実施例に限定されるも
のではない。
EXAMPLES The present invention will be described in detail below with reference to comparative examples and examples, but the present invention is not limited to these examples.

【0030】以下、比較例、実施例ともに次の血清(検
体)を試料として用いた。 1,5−AG濃度(mg/L) グルコース濃度(mg/L) 検体A 28.4 820 検体B 14.5 1250 検体C 4.6 3120 (1,5−AG濃度はラナAG(アンヒドログルシトー
ル)キット(日本化薬(株)製)にて測定した。)
The following serum (specimen) was used as a sample in both Comparative Examples and Examples. 1,5-AG concentration (mg / L) Glucose concentration (mg / L) Specimen A 28.4 820 Specimen B 14.5 1250 Specimen C 4.6 3120 (The 1,5-AG concentration is Rana AG (anhydroglucan Sitol) kit (manufactured by Nippon Kayaku Co., Ltd.)

【0031】これらは、血清分離後プラスチック製サン
プルチューブに分注し、−20℃で凍結保存し、使用時
に解凍し、新鮮試料とした。また、分注した各血清を冷
蔵庫に1ヶ月間保存したものを保存試料とし、それぞ
れ、検体D、検体E、検体Fとして使用した。また、測
定は自動分析装置7150型((株)日立製作所製)を
用い、検体量10μlとし、これに試薬1を260μl
加え37℃で5分間処理し、次いで試薬2を130μl
加え37℃で5分間処理し測定した。検量線には、1,
5−AG濃度50mg/Lの標準液及び生理食塩液
(1,5−AG濃度0mg/L)を用いた。
After separation of serum, these were dispensed into plastic sample tubes, frozen and stored at -20 ° C, and thawed at the time of use to prepare fresh samples. In addition, the dispensed serum was stored in a refrigerator for one month, and used as stored samples, which were used as Sample D, Sample E, and Sample F, respectively. For the measurement, an automatic analyzer 7150 (manufactured by Hitachi, Ltd.) was used, and the amount of the sample was 10 μl.
Addition and treatment at 37 ° C. for 5 minutes, then 130 μl of reagent 2
The mixture was further treated at 37 ° C. for 5 minutes and measured. The calibration curve has 1,
A standard solution having a 5-AG concentration of 50 mg / L and a physiological saline solution (1,5-AG concentration of 0 mg / L) were used.

【0032】比較例1 以下の試薬を調製し検体A〜Fを測定した。その結果を
表1に示す。なお、検体を試薬1で処理している際の系
のpHは、いずれも約8であった。 試薬1(pH8.0) 4−アミノアンチピリン 1.5mM MgCl2 5mM KCl 50mM ATP 5mM グルコキナーゼ 2U/mL アスコルビン酸オキシダーゼ 5U/mL ピルビン酸キナーゼ 3U/mL ホスフォエノールピルビン酸 4mM HEPES緩衝液 50mM
Comparative Example 1 The following reagents were prepared and samples A to F were measured. The results are shown in Table 1. The pH of the system when treating the sample with the reagent 1 was about 8. Reagent 1 (pH 8.0) 4-aminoantipyrine 1.5 mM MgCl 2 5 mM KCl 50 mM ATP 5 mM glucokinase 2 U / mL ascorbate oxidase 5 U / mL pyruvate kinase 3 U / mL phosphoenolpyruvate 4 mM HEPES buffer 50 mM

【0033】 試薬2(pH8.0) TOOS 4.5mM ピラノースオキシダーゼ 100U/mL HRP 3.75U/mL HEPES緩衝液 50mMReagent 2 (pH 8.0) TOOS 4.5 mM Pyranose oxidase 100 U / mL HRP 3.75 U / mL HEPES buffer 50 mM

【0034】比較例2 以下の試薬を調製し検体A〜Fを測定した。その結果を
表1に示す。なお、検体を試薬1で処理している際の系
のpHは、いずれも約8であった。 試薬1(pH8.0) 4−アミノアンチピリン 1.5mM MgCl2 5mM KCl 50mM ATP 5mM グルコキナーゼ 2U/mL アスコルビン酸オキシダーゼ 5U/mL グルコース−6−リン酸脱水素酵素 12U/mL 乳酸脱水素酵素 2U/mL ピルビン酸 2mM NAD 1mM HEPES緩衝液 50mM
Comparative Example 2 The following reagents were prepared and the samples A to F were measured. The results are shown in Table 1. The pH of the system when treating the sample with the reagent 1 was about 8. Reagent 1 (pH 8.0) 4-aminoantipyrine 1.5 mM MgCl 2 5 mM KCl 50 mM ATP 5 mM glucokinase 2 U / mL ascorbate oxidase 5 U / mL glucose-6-phosphate dehydrogenase 12 U / mL lactate dehydrogenase 2 U / mL Pyruvate 2mM NAD 1mM HEPES buffer 50mM

【0035】 試薬2(pH8.0) TOOS 4.5mM ピラノースオキシダーゼ 100U/mL HRP 3.75U/mL HEPES緩衝液 50mMReagent 2 (pH 8.0) TOOS 4.5 mM Pyranose oxidase 100 U / mL HRP 3.75 U / mL HEPES buffer 50 mM

【0036】比較例3 以下の試薬を調製し検体A〜Fを測定した。その結果を
表1に示す。なお、検体を試薬1で処理している際の系
のpHは、いずれも約8であった。 試薬1(pH8.0) 4−アミノアンチピリン 1.5mM MgCl2 10mM KCl 25mM KH2 PO4 40mM CaCl2 1.5mM ATP 15mM グルコキナーゼ 3.5U/mL アスコルビン酸オキシダーゼ 5U/mL グルコースリン酸イソメラーゼ 3.5U/mL 6−ホスフォフルクトキナーゼ 5U/mL ピルビン酸キナーゼ 3U/mL ホスフォエノールピルビン酸 4mM HEPES緩衝液 20mM
Comparative Example 3 The following reagents were prepared and samples A to F were measured. The results are shown in Table 1. The pH of the system when treating the sample with the reagent 1 was about 8. Reagent 1 (pH 8.0) 4-aminoantipyrine 1.5 mM MgCl 2 10 mM KCl 25 mM KH 2 PO 4 40 mM CaCl 2 1.5 mM ATP 15 mM glucokinase 3.5 U / mL ascorbate oxidase 5 U / mL glucose phosphate isomerase 3. 5 U / mL 6-phosphofructokinase 5 U / mL pyruvate kinase 3 U / mL phosphoenolpyruvate 4 mM HEPES buffer 20 mM

【0037】 試薬2(pH8.0) TOOS 4.5mM ピラノースオキシダーゼ 100U/mL HRP 3.75U/mL HEPES緩衝液 50mMReagent 2 (pH 8.0) TOOS 4.5 mM Pyranose oxidase 100 U / mL HRP 3.75 U / mL HEPES buffer 50 mM

【0038】[0038]

【表1】 表1 比較例1 比較例2 比較例3 検体A 28.3 28.5 28.4 検体B 14.6 14.6 14.4 検体C 4.8 4.6 4.5 検体D 29.5 30.1 29.3 検体E 16.2 16.4 16.9 検体F 9.8 9.2 10.1 (1,5−AG濃度、mg/L)Table 1 Comparative Example 1 Comparative Example 2 Comparative Example 3 Sample A 28.3 28.5 28.4 Sample B 14.6 14.6 14.4 Sample C 4.8 4.6 4.5 Sample D 29.5 30.1 29.3 Specimen E 16.2 16.4 16.9 Specimen F 9.8 9.2 10.1 (1,5-AG concentration, mg / L)

【0039】実施例1 比較例1の試薬1の緩衝液をMES緩衝液50mMと
し、試薬1のpHを6.3に調整した。他は比較例1と
同様にして測定した。その結果を表2に示す。なお、検
体を試薬1で処理している際の系のpHはいずれも約
6.3であった。
Example 1 The buffer solution of the reagent 1 of the comparative example 1 was 50 mM of MES buffer, and the pH of the reagent 1 was adjusted to 6.3. Others were measured in the same manner as in Comparative Example 1. The results are shown in Table 2. The pH of the system when treating the sample with Reagent 1 was about 6.3 in all cases.

【0040】実施例2 比較例2の試薬1の緩衝液をMES緩衝液50mMと
し、試薬1のpHを6.0に調整した。他は比較例2と
同様にして測定した。その結果を表2に示す。なお、検
体を試薬1で処理している際の系のpHはいずれも約6
であった。
Example 2 The buffer solution of the reagent 1 of the comparative example 2 was 50 mM of MES buffer, and the pH of the reagent 1 was adjusted to 6.0. Others were measured in the same manner as in Comparative Example 2. The results are shown in Table 2. The pH of the system during treatment of the sample with Reagent 1 was approximately 6
Met.

【0041】実施例3 比較例1の試薬1の緩衝液をMES緩衝液20mMと
し、試薬1のpHを5.8に調整した。他は比較例1と
同様にして測定した。その結果を表2に示す。なお、検
体を試薬1で処理している際の系のpHはいずれも約
5.8であった。
Example 3 The buffer solution of the reagent 1 of the comparative example 1 was 20 mM of MES buffer, and the pH of the reagent 1 was adjusted to 5.8. Others were measured in the same manner as in Comparative Example 1. The results are shown in Table 2. The pH of each system when the sample was treated with the reagent 1 was about 5.8.

【0042】[0042]

【表2】 表2 実施例1 実施例2 実施例3 検体A 28.4 28.5 28.6 検体B 14.6 14.7 14.4 検体C 4.7 4.9 4.7 検体D 28.4 28.2 28.3 検体E 14.5 14.6 14.6 検体F 5.0 4.6 4.8 (1,5−AG濃度、mg/L)Table 2 Table 1 Example 1 Example 2 Example 3 Specimen A 28.4 28.5 28.6 Specimen B 14.6 14.7 14.4 Specimen C 4.7 4.9 4.7 Specimen D 28.4 28.2 28.3 Specimen E 14.5 14.6 14.6 Specimen F 5.0 4.6 4.8 (1,5-AG concentration, mg / L)

【0043】実施例4〜6 比較例1〜3で用いた検体A〜F0.5mlのそれぞれ
に10%酢酸水溶液50μlを添加しそれぞれpHを
4.2〜4.5としたものを試料とし、比較例1〜3で
使用した試薬を用いて測定した。また、検量線に用いた
1,5−AG濃度50mg/Lの標準液および生理食塩
液も同様に処理した。その測定結果を表3に示す。
Examples 4 to 6 Samples were prepared by adding 50 μl of 10% acetic acid aqueous solution to 0.5 ml of each of the samples A to F used in Comparative Examples 1 to 3 to adjust the pH to 4.2 to 4.5. The measurement was performed using the reagents used in Comparative Examples 1 to 3. The standard solution and physiological saline solution having a 1,5-AG concentration of 50 mg / L used for the calibration curve were also treated in the same manner. The measurement results are shown in Table 3.

【0044】[0044]

【表3】 表3 実施例4 実施例5 実施例6 検体A 28.5 28.5 28.6 検体B 14.5 14.8 14.4 検体C 4.7 4.9 4.8 検体D 28.4 28.6 28.7 検体E 14.5 14.7 14.6 検体F 4.9 4.7 4.9 (1,5−AG濃度、mg/L)[Table 3] Table 3 Example 4 Example 5 Example 6 Specimen A 28.5 28.5 28.6 Specimen B 14.5 14.8 14.4 Specimen C 4.7 4.9 4.8 Specimen D 28.4 28.6 28.7 Specimen E 14.5 14.7 14.6 Specimen F 4.9 4.7 4.9 (1,5-AG concentration, mg / L)

【0045】実施例7〜9 実施例4〜6と同様にして検体A〜F0.5mlのそれ
ぞれに10%リンゴ酸水溶液50μlを添加しそれぞれ
pHを3.7〜4.0としたものを試料とし、実施例4
〜6と同様にして測定した。その測定結果を表4に示
す。
Examples 7 to 9 Samples were prepared by adding 50 μl of 10% malic acid aqueous solution to 0.5 ml of each of the samples A to F and adjusting the pH to 3.7 to 4.0 in the same manner as in Examples 4 to 6. And Example 4
The measurement was carried out in the same manner as ~ 6. The measurement results are shown in Table 4.

【0046】[0046]

【表4】 表4 実施例7 実施例8 実施例9 検体A 28.5 28.6 28.9 検体B 14.6 14.8 14.8 検体C 4.7 4.9 4.8 検体D 28.5 28.4 28.3 検体E 14.5 14.8 14.6 検体F 4.8 4.9 5.8 (1,5−AG濃度、mg/L)[Table 4] Table 4 Example 7 Example 8 Example 9 Specimen A 28.5 28.6 28.9 Specimen B 14.6 14.8 14.8 Specimen C 4.7 4.9 4.8 Specimen D 28.5 28.4 28.3 Specimen E 14.5 14.8 14.6 Specimen F 4.8 4.9 5.8 (1,5-AG concentration, mg / L)

【0047】[0047]

【発明の効果】本発明によれば試料の保存状態の違いに
関わらず、試料中の1,5−AGを迅速で簡便な方法に
より精度良く定量する事ができ、自動分析装置での測定
が可能である。
EFFECTS OF THE INVENTION According to the present invention, 1,5-AG in a sample can be accurately quantified by a quick and simple method regardless of the storage condition of the sample, and measurement by an automatic analyzer is possible. It is possible.

Claims (2)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】試料中の1,5−アンヒドログルシトール
をピラノースオキシダーゼまたはL−ソルボースオキシ
ダーゼを用いて測定する際に、試料中のグルコースを予
めピラノースオキシダーゼまたはL−ソルボースオキシ
ダーゼと反応しない化合物にpH7未満の条件下で酵素
変換することを特徴とする1,5−アンヒドログルシト
ールの定量法。
1. A compound which does not previously react glucose in a sample with pyranose oxidase or L-sorbose oxidase when 1,5-anhydroglucitol in the sample is measured using pyranose oxidase or L-sorbose oxidase. 1. A method for quantifying 1,5-anhydroglucitol, which comprises enzymatically converting the enzyme under pH 7 conditions.
【請求項2】試料中の1,5−アンヒドログルシトール
をピラノースオキシダーゼまたはL−ソルボースオキシ
ダーゼを用いて測定する際に、試料に酸性物質を加えて
試料のpHを7未満にした後試料中のグルコースをピラ
ノースオキシダーゼまたはL−ソルボースオキシダーゼ
と反応しない化合物に予め酵素変換することを特徴とす
る1,5−アンヒドログルシトールの定量法。
2. When measuring 1,5-anhydroglucitol in a sample using pyranose oxidase or L-sorbose oxidase, an acidic substance is added to the sample to make the pH of the sample less than 7, A method for quantifying 1,5-anhydroglucitol, which comprises enzymatically converting glucose in the enzyme into a compound that does not react with pyranose oxidase or L-sorbose oxidase in advance.
JP16000193A 1993-06-07 1993-06-07 Determination of 1,5-anhydroglucitol Expired - Fee Related JP3428073B2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP16000193A JP3428073B2 (en) 1993-06-07 1993-06-07 Determination of 1,5-anhydroglucitol

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP16000193A JP3428073B2 (en) 1993-06-07 1993-06-07 Determination of 1,5-anhydroglucitol

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JPH06343492A true JPH06343492A (en) 1994-12-20
JP3428073B2 JP3428073B2 (en) 2003-07-22

Family

ID=15705835

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP16000193A Expired - Fee Related JP3428073B2 (en) 1993-06-07 1993-06-07 Determination of 1,5-anhydroglucitol

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JP3428073B2 (en)

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2001116756A (en) * 1999-08-09 2001-04-27 Nippon Kayaku Co Ltd Liquid reagent and preservation method
JP2007300818A (en) * 2006-05-09 2007-11-22 Ikeda Shokken Kk Pyranose oxidase
CN111455020A (en) * 2020-02-25 2020-07-28 深圳市安帝宝科技有限公司 1, 5-sorbitan detection kit and detection method

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2001116756A (en) * 1999-08-09 2001-04-27 Nippon Kayaku Co Ltd Liquid reagent and preservation method
JP2007300818A (en) * 2006-05-09 2007-11-22 Ikeda Shokken Kk Pyranose oxidase
CN111455020A (en) * 2020-02-25 2020-07-28 深圳市安帝宝科技有限公司 1, 5-sorbitan detection kit and detection method

Also Published As

Publication number Publication date
JP3428073B2 (en) 2003-07-22

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US5516700A (en) Automated urinalysis method
US4743561A (en) Luminescent assay with a reagent to alter transmitive properties of assay solution
US4425427A (en) Simultaneous, kinetic, spectrophotometric analysis of blood serum for multiple components
EP0200540B1 (en) Analytical element and method for determination of creatine kinase isoenzyme
JPS5948099A (en) Glucose test composition for ascorbate resistant wide concentration region, test tool and method
JP3537507B2 (en) Creatinine detection method and detector
US4657854A (en) Assay systems based on magnesium-responsive enzymes
JPH08507206A (en) Compositions useful for anaerobic determination of analytes
US5759860A (en) Automated analysis method for detecting bacterial nitrite in urine
JP3428073B2 (en) Determination of 1,5-anhydroglucitol
US4302537A (en) Reagent and method for the determination of peroxidase
JPH0771514B2 (en) Method for quantifying 1,5-anhydroglucitol
US5776780A (en) Method for quantitatively measuring white blood cells esterase activity in urine
JP2767049B2 (en) Analytical method and test composition for measuring the presence of an analyte
JP3415873B2 (en) Determination of 1,5-anhydroglucitol
JPH06237794A (en) Determination of 1,5-anhydroglucitol
JPH06237795A (en) Determination of 1,5-anhydroglucitol
US3778384A (en) Diagnostic composition for the quantitative determination of glucose
JP3287879B2 (en) Determination of 1,5-anhydroglucitol
EP0420893A4 (en) Reducible indicators containing pyrogallol and use thereof
IE47123B1 (en) Analytical device
JP3402487B2 (en) Determination of 1,5-anhydroglucitol
JP4544598B2 (en) Liquid reagent and storage method
JP2761768B2 (en) Method for determining NADH and method for determining bile acid using the same
JP3034984B2 (en) Highly sensitive method and composition for quantification of D-galactose

Legal Events

Date Code Title Description
FPAY Renewal fee payment (prs date is renewal date of database)

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20090516

Year of fee payment: 6

FPAY Renewal fee payment (prs date is renewal date of database)

Year of fee payment: 9

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20120516

FPAY Renewal fee payment (prs date is renewal date of database)

Year of fee payment: 9

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20120516

FPAY Renewal fee payment (prs date is renewal date of database)

Year of fee payment: 10

Free format text: PAYMENT UNTIL: 20130516

LAPS Cancellation because of no payment of annual fees