JPH0632611B2 - γ-Cyclodextrin synthase and method for producing the same - Google Patents

γ-Cyclodextrin synthase and method for producing the same

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JPH0632611B2
JPH0632611B2 JP60167128A JP16712885A JPH0632611B2 JP H0632611 B2 JPH0632611 B2 JP H0632611B2 JP 60167128 A JP60167128 A JP 60167128A JP 16712885 A JP16712885 A JP 16712885A JP H0632611 B2 JPH0632611 B2 JP H0632611B2
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Description

【発明の詳細な説明】 〔産業上の利用分野〕 本発明は、新規なγ−サイクロデキストリン合成酵素及
びその製造法に関する。
TECHNICAL FIELD The present invention relates to a novel γ-cyclodextrin synthase and a method for producing the same.

〔従来の技術〕[Conventional technology]

従来、サイクロデキストリンを合成する酵素はバチルス
属細菌においてその存在が知られている。すなわち、バ
チルス・マセランス(Bacillus macerans)がα−サイク
ロデキストリンを主成分とするサイクロデキストリンの
混合物を生成する酵素を生産すること(アミラーゼシン
ポジウムVol.8,(1973),p.21)、好アルカリ性バチルス
属細菌がβ−サイクロデキストリンを主成分とするサイ
クロデキストリンの混合物を生成する酵素を生産するこ
と(特公昭53−31223号公報)が知られている。
このようにα−およびβ−サイクロデキストリンを主成
分とする混合物を生成する酵素を生産する微生物につい
ては多くの文献に報告されているが、γ−サイクロデキ
ストリンを主成分とするサイクロデキストリン混合物を
生成する酵素を生産する微生物については全く報告され
ていない。
Conventionally, the presence of an enzyme that synthesizes cyclodextrin in Bacillus bacteria is known. That is, Bacillus macerans produces an enzyme that produces a mixture of cyclodextrins whose main component is α-cyclodextrin (amylase symposium Vol.8, (1973), p.21), an alkaliphilic Bacillus It is known that a genus bacterium produces an enzyme that produces a mixture of cyclodextrins containing β-cyclodextrin as a main component (Japanese Patent Publication No. 53-31223).
As described above, microorganisms that produce an enzyme that produces a mixture containing α- and β-cyclodextrin as the main component have been reported in many documents, but produce a cyclodextrin mixture containing γ-cyclodextrin as the main component. No report has been made on a microorganism that produces the enzyme.

本発明者は、γ−サイクロデキストリンを特異的に合成
し、かつ、α−およびβ−サイクロデキストリンを生成
しない酵素を見い出すことができれば、γ−サイクロデ
キストリンの生産にきわめて有用な酵素になり得るとの
見地から、γ−サイクロデキストリン合成酵素を生産す
ることのできる菌を求めて探索したところ、土壌中より
見出されたバチルス属に属するものと認められる一菌株
がγ−サイクロデキストリンを特異的に合成し、かつα
−およびβ−サイクロデキストリンを合成しない酵素を
生産すること、この酵素は従来のサイクロデキストリン
合成酵素の性状に比し明らかに相違する全く新しい酵素
であることを見出した。
If the present inventor can specifically synthesize γ-cyclodextrin and find an enzyme that does not produce α- and β-cyclodextrin, it can be a very useful enzyme for the production of γ-cyclodextrin. From the viewpoint of, when searching for a bacterium capable of producing γ-cyclodextrin synthase, one strain recognized as belonging to the genus Bacillus found in soil specifically identified γ-cyclodextrin. Synthesize and α
It was found that an enzyme that does not synthesize -and β-cyclodextrin is produced, and that this enzyme is a completely new enzyme that is clearly different from the properties of conventional cyclodextrin synthase.

〔発明の構成〕[Structure of Invention]

本発明は、上記新しい知見に基いて完成されたものであ
る。本発明は、下記の理化学的性質を有するγ−サイク
ロデキストリン合成酵素A(以下「本酵素」ともい
う)、バチルス属に属するγ−サイクロデキストリン合
成酵素A生産菌を培養し、培養物からγ−サイクロデキ
ストリン合成酵素Aを採取する方法を提供するものであ
る。
The present invention has been completed based on the above new findings. The present invention cultivates γ-cyclodextrin synthase A (hereinafter also referred to as “the present enzyme”) having the following physicochemical properties, γ-cyclodextrin synthase A-producing bacteria belonging to the genus Bacillus, and γ-from the culture. The present invention provides a method for collecting cyclodextrin synthase A.

〔γ−サイクロデキストリン合成酵素Aの理化学的性
質〕
[Physical and chemical properties of γ-cyclodextrin synthase A]

(1)作用および基質特異性:澱粉、アミロース、アミロ
ペクチン、グリコーゲンなどからγ−サイクロデキスト
リンを特異的に合成し、かつ、α−およびβ−サイクロ
デキストリンの生成は認められない。
(1) Action and substrate specificity: γ-cyclodextrin is specifically synthesized from starch, amylose, amylopectin, glycogen and the like, and α- and β-cyclodextrin are not produced.

(2)作用pH範囲:pH4〜9(0.02M緩衝液)〔酢酸ナト
リウム−酢酸緩衝液(pH4〜6)、トリス−塩酸緩衝液
(pH7〜8)、グリシン−塩化ナトリウム−水酸化ナト
リウム緩衝液(pH9〜10)、5%可溶性澱粉中で、5
0℃で60分間反応〕。
(2) Working pH range: pH 4 to 9 (0.02M buffer solution) [sodium acetate-acetic acid buffer solution (pH 4 to 6), Tris-hydrochloric acid buffer solution (pH 7 to 8), glycine-sodium chloride-sodium hydroxide buffer solution (PH 9-10) 5% in 5% soluble starch
Reaction at 0 ° C. for 60 minutes].

(3)最適作用pH:pH8付近(測定方法は(2)と同じ)
(4)作用温度:約75℃まで〔0.02Mトリス−塩酸緩衝
液(pH8)、5%可溶性澱粉中で、各温度で60分間反
応〕。
(3) Optimum action pH: around pH 8 (measurement method is the same as (2))
(4) Working temperature: up to about 75 ° C. [reaction in 0.02M Tris-HCl buffer (pH 8), 5% soluble starch for 60 minutes at each temperature].

(5)最適作用温度:約65℃(測定方法は(4)と同じ) (6)熱安定性:0.05Mトリス−塩酸緩衝液(pH7)中で
各温度で30分間加熱し、残存活性を測定した。その結
果、本酵素は50℃までの温度では殆んど失活が認めら
れず、55℃、30分間の加熱で約19%失活し、60
℃、30分間の加熱で約37%失活し、65℃、30分
間の加熱で約75%失活し、そして70℃、30分間の
加熱でほぼ完全に失活する。
(5) Optimum working temperature: approx. 65 ° C (measurement method is the same as (4)) (6) Thermal stability: 0.05M Tris-hydrochloric acid buffer solution (pH 7) was heated at each temperature for 30 minutes to remove residual activity. It was measured. As a result, almost no inactivation was observed at temperatures up to 50 ° C, and the enzyme was inactivated by about 19% by heating at 55 ° C for 30 minutes.
Heating at 37 ° C for 30 minutes deactivates about 37%, heating at 65 ° C for 30 minutes deactivates at about 75%, and heating at 70 ° C for 30 minutes almost completely deactivates.

(7)pH安定性:pH6〜8で安定(0.1M緩衝液0.1mlに酵
素液を添加し、全量を0.2mlとして後、50℃で30
分放置後、残存活性を測定した)。
(7) pH stability: stable at pH 6 to 8 (enzyme solution was added to 0.1 ml of 0.1M buffer solution to bring the total volume to 0.2 ml, and then 30 at 50 ° C)
After standing for minutes, the residual activity was measured).

(8)精製方法;培養上澄液に3倍量の冷アセトン(−2
0℃)を加えて生成する沈澱物を集め、0.01Mのトリス
−塩酸緩衝液(pH7.5)で透析し、前記緩衝液で充分に平
衡化したCM−トヨパール(東洋曹達(株)製、商品
名)に吸着させる。前記緩衝液で充分に洗った後、0.1
M食塩を含む前記緩衝液で溶出する。濃縮後、0.2M食
塩を含む0.05Mトリス−塩酸緩衝液(pH7)で充分に平
衡化したセファクリルS−200(ファルマシア社製、
商品名)でゲル濾過を行なうことにより、電気泳動的に
単一のγ−サイクロデキストリン合成酵素Aを得た。
(8) Purification method: Three-fold amount of cold acetone (-2
The resulting precipitate was collected, dialyzed with 0.01 M Tris-HCl buffer (pH 7.5), and CM-Toyopearl (manufactured by Toyo Soda Co., Ltd.) sufficiently equilibrated with the above buffer. Adsorb to the product name). After thoroughly washing with the above buffer, 0.1
Elute with the buffer containing M sodium chloride. After concentration, Sephacryl S-200 (manufactured by Pharmacia Ltd., fully equilibrated with 0.05 M Tris-hydrochloric acid buffer (pH 7) containing 0.2 M sodium chloride)
A single γ-cyclodextrin synthase A was obtained electrophoretically by performing gel filtration with (trade name).

(9)分子量:SDS−ポリアクリルアミド電気泳動法に
より測定した結果 、64,000という値が得られた。
(9) Molecular weight: As a result of measurement by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis, a value of 64,000 was obtained.

(10)等電点:キャリアーアンホライン(セルバ社製セル
バライト)を用いた電気泳動法により測定した結果7.05
という値が得られた。
(10) Isoelectric point: 7.05 as measured by electrophoresis using carrier ampholine (Celvalite manufactured by Selva)
Was obtained.

(11)力価測定法:10%可溶性澱粉を含む0.04Mトリス
−塩酸緩衝液(pH8)0.5mlに適量の酵素液を加え、蒸留
水で全量1mlとし、50℃で60分間反応させた。そ
して生成されるγ−サイクロデキストリンをブロム・ク
レゾール・グリーン法により定量した。
(11) Titration method: An appropriate amount of enzyme solution was added to 0.5 ml of 0.04 M Tris-hydrochloric acid buffer solution (pH 8) containing 10% soluble starch, and the total amount was adjusted to 1 ml with distilled water, followed by reaction at 50 ° C. for 60 minutes. Then, the produced γ-cyclodextrin was quantified by the brom cresol green method.

上記反応条件下で1時間あたり1mgのγ−サイクロデキ
ストリンを生成する酵素量を1単位とした。
The amount of enzyme that produces 1 mg of γ-cyclodextrin per hour under the above reaction conditions was defined as 1 unit.

本発明のγ−サイクロデキストリン合成酵素Aと、従
来、報告されているサイクロデキストリン合成酵素の理
化学的性質を下表に比較して示す。
The physicochemical properties of γ-cyclodextrin synthase A of the present invention and conventionally reported cyclodextrin synthase are shown in the following table for comparison.

この表から明らかなように本酵素は従来知られているサ
イクロデキストリン合成酵素のいずれにも分類されない
新規なγ−サイクロデキストリン合成酵素と認められ
る。
As is clear from this table, this enzyme is recognized as a novel γ-cyclodextrin synthase which is not classified into any of the conventionally known cyclodextrin synthases.

本酵素は、バチルス属に属するγ−サイクロデキストリ
ン合成酵素Aの生産能を有する微生物を培養し、培養物
から採取することができる。このような微生物の一例と
して、バチルス・エスピーNO.313(Bacillus sp NO.
313)を挙げることができる。バチルス・エスピーN
O.313は昭和60年7月22日付で工業技術院微生物
工業技術研究所に寄託され、その受託番号は微工研菌寄
第8366号(FERM P−8366)である。バチ
ルス・エスピーNO.313の菌学的性質は次のとおりで
ある。
This enzyme can be collected from a culture by culturing a microorganism belonging to the genus Bacillus and having the ability to produce γ-cyclodextrin synthase A. As an example of such a microorganism, Bacillus sp. NO. 313 (Bacillus sp NO.
313) can be mentioned. Bacillus SP N
O.313 was deposited at the Institute of Microbial Science and Technology of the Agency of Industrial Science on July 22, 1960, and the deposit number is Micromachine Research Institute of Microbiology No. 8366 (FERM P-8366). The mycological properties of Bacillus sp. No. 313 are as follows.

(1)形態:桿菌(0.6〜0.8μ×2〜3μ)で、運動性はあ
り、胞子を形成し、その大きさは0.8〜1.0μ×0.8〜1.0
μの円形である。胞子ノウのはっきりしたふくらみは認
められない。細胞の多形性及び抗酸性は、いずれもな
い。グラム染色陽性である。
(1) Morphology: Bacillus (0.6-0.8μ × 2-3μ) with motility and forming spores, the size of which is 0.8-1.0μ × 0.8-1.0
It is a circle of μ. No clear swelling of spores is observed. There is neither cell polymorphism nor acid resistance. Gram stain is positive.

(2)肉汁寒天平板培養:集落の形状は円形、集落の表面
は扁平状であり、集落の周縁は波状である。また集落の
色調は白色で光沢はない。
(2) Meat broth agar plate culture: The shape of the community is circular, the surface of the community is flat, and the periphery of the community is wavy. In addition, the color tone of the village is white and has no gloss.

(3)肉汁寒天斜面培養:生育良好、糸状に生育する。(3) Slop culture of broth agar: Good growth, filamentous growth.

(4)肉汁液体培養:生育良好、菌膜を形成する。(4) Liquid culture of broth: good growth and pellicle formation.

(5)リトマスミルク:ペプトン化する。(5) Litmus milk: Peptone.

(6)ゼラチン:液化しない。(6) Gelatin: Does not liquefy.

(7)硝酸塩の還元:還元しない。(7) Reduction of nitrate: No reduction.

(8)脱窒反応:なし (9)MRテスト:陽性 (10)VPテスト:陽性 (11)インドールの生成:なし (12)硫化水素の生成:なし (13)デンプンの加水分解:陽性 (14)カゼインの加水分解:陽性 (15)クエン酸の利用:陽性 (16)無機窒素源の利用:陽性 (17)色素の生成:生成しない。(8) Denitrification reaction: None (9) MR test: Positive (10) VP test: Positive (11) Indole formation: None (12) Hydrogen sulfide formation: None (13) Starch hydrolysis: Positive (14) ) Casein hydrolysis: Positive (15) Utilization of citric acid: Positive (16) Utilization of inorganic nitrogen source: Positive (17) Formation of pigment: Not produced.

(18)ウレアーゼ:陽性 (19)オキシダーゼ:陽性 (20)カタラーゼ:陽性 (21)食塩肉汁:食塩10%以上で生育しない。(18) Urease: Positive (19) Oxidase: Positive (20) Catalase: Positive (21) Salt broth: Does not grow with 10% or more of salt.

(22)生育の範囲:pH4−9 温度23−48℃ (23)酸素に対する態度:好気性 (24)糖類の利用性:L−アラビノース、D−キシロー
ス、D−グルコース、D−マンノース、D−フラクトー
ス、麦芽糖、ショ糖、乳糖、トレハロース、D−ソルビ
ット、D−マンニット、イノシット、グリセリンを利用
し、酸を生成する。ガスの生成なし。
(22) Growth range: pH 4-9 Temperature 23-48 ° C (23) Attitude toward oxygen: aerobic (24) Availability of sugars: L-arabinose, D-xylose, D-glucose, D-mannose, D- Fructose, maltose, sucrose, lactose, trehalose, D-sorbit, D-mannitol, inosit, and glycerin are used to generate an acid. No gas is generated.

D−ガラクトース、デンプンも利用するが酸もガスも生
成しない。
It also utilizes D-galactose and starch, but produces neither acid nor gas.

以上の菌学的性質について、バージェーのマニュアル・
オブ・デタミネーティブ・バクテリオロジ第8版を参照
し、バチルス・ズブチリス(Bacillus subtilis)と同定
されるべき微生物であることを認めた。
About the above mycological properties
It was confirmed that the microorganism should be identified as Bacillus subtilis with reference to the 8th Edition of Determinating Bacteriology.

γ−サイクロデキストリン合成酵素A生産菌の培養にお
いては普通に使用されている培地が広く使用できる。一
般的には澱粉、デキストリンなどの澱粉部分分解物など
の炭素源を含む培地で培養される。その他、窒素源とし
て、ペプトン、カゼイン、肉エキス、酵母エキス、コー
ンスティープリカーあるいは大豆または大豆粕などの抽
出物、およびこれを補足するため、無機窒素源、リン酸
塩、マグネシウム塩、カルシウム塩を含む培地などが使
用される。培養はpH4〜9、温度30〜40℃で、3〜
5日間、通気しながらおこなわれる。
In culturing the γ-cyclodextrin synthase A-producing bacterium, a commonly used medium can be widely used. Generally, it is cultured in a medium containing a carbon source such as starch and partially decomposed products of starch such as dextrin. In addition, as a nitrogen source, peptone, casein, meat extract, yeast extract, corn steep liquor or extracts such as soybean or soybean meal, and to supplement this, inorganic nitrogen sources, phosphates, magnesium salts, calcium salts, A culture medium containing the same is used. Culture at pH 4-9, temperature 30-40 ° C, 3
It is performed with aeration for 5 days.

得られた培養物においては、γ−サイクロデキストリン
合成酵素Aは菌体外に出て培養液中に存在している。培
養物は濾過して菌体を除去し、濾液を濃縮し、アセト
ン、エタノール、メタノール、イソプロパノールなどの
有機溶剤を加えて沈降させるか、硫安などの塩析材で沈
澱させるなどして更に濃縮させることができる。
In the obtained culture, γ-cyclodextrin synthase A is out of the cells and is present in the culture solution. The culture is filtered to remove the bacterial cells, and the filtrate is concentrated and then precipitated by adding an organic solvent such as acetone, ethanol, methanol, or isopropanol, or by further precipitating with a salting out material such as ammonium sulfate. be able to.

こうして得られたγ−サイクロデキストリン合成酵素A
を用いてγ−サイクロデキストリンを合成するには、澱
粉、アミロース、アミロペクチン、グリコーゲンの少な
くとも1種に、本酵素を加え、pH4〜9、好ましくは6
〜8、温度40〜60℃、好ましくは約55℃で反応さ
せればよい。
Γ-Cyclodextrin synthase A thus obtained
In order to synthesize γ-cyclodextrin using, the present enzyme is added to at least one of starch, amylose, amylopectin, and glycogen to adjust pH 4 to 9, preferably 6
-8, the temperature is 40 to 60 ° C, preferably about 55 ° C.

好ましくは、反応終了後、酵素を失活させたのち、反応
液をグリコアミラーゼまたは細菌液化型α−アミラー
ゼ、好ましくは両者を併用して処理し、γ−サイクロデ
キストリン以外の糖をグルコースに分解したのち、γ−
サイクロデキストリンを採取する。γ−サイクロデキス
トリンの採取には、通常の方法、たとえば、カラム法、
溶媒沈澱法などが適宜利用される。
Preferably, after the completion of the reaction, after deactivating the enzyme, the reaction solution is treated with glycoamylase or bacterial liquefaction type α-amylase, preferably both in combination to decompose sugars other than γ-cyclodextrin into glucose. Later, γ-
Collect cyclodextrin. For collecting γ-cyclodextrin, a conventional method, for example, a column method,
A solvent precipitation method or the like is appropriately used.

〔実施例〕〔Example〕

以下に、本発明の実施例を示す。 Examples of the present invention will be shown below.

実施例1 バレイショデンプン21%、ペプトン1%、KH2PO4
0.3%、酵母エキス0.1%、NaCl0.1%、MgSO40.
1%、CaCl20.02%からなる培地500mlを2容
三角フラスコに入れ常法により殺菌後、バチルス・エス
ピーNO.313(FERM P−8366)を接種し、
37℃で5日間振盪培養した。培養終了後、遠心分離機
で菌体を除去し、生産された酵素量を測定した結果、培
地1ml当り、0.33単位であった。
Example 1 21% potato starch, 1% peptone, KH 2 PO 4
0.3%, yeast extract 0.1%, NaCl 0.1%, MgSO 4 .
500 ml of a medium containing 1% and CaCl 2 0.02% was placed in a 2-volume Erlenmeyer flask and sterilized by a conventional method, and then Bacillus sp. NO. 313 (FERM P-8366) was inoculated,
The cells were cultured at 37 ° C for 5 days with shaking. After the culture was completed, the cells were removed by a centrifuge, and the amount of enzyme produced was measured. As a result, it was 0.33 units per 1 ml of the medium.

実施例2 実施例1と同様の組成培地に前記バチルス・エスピーN
O.313(FERM P−8366)を接種し、37℃
で5日間振盪培養後、遠心分離機で菌体を除去し、得ら
れた粗酵素液を通常の方法によってアセトン乾燥粉末と
なした。培養液1当り6.9gのγ−サイクロデキスト
リン合成酵素A(比活性43単位/g)を得ることがで
きた。
Example 2 The same composition as in Example 1 was added to the above Bacillus sp. N.
Inoculated with O.313 (FERM P-8366), 37 ℃
After culturing with shaking for 5 days, the cells were removed by a centrifuge, and the obtained crude enzyme solution was made into acetone dry powder by a usual method. It was possible to obtain 6.9 g of γ-cyclodextrin synthase A (specific activity 43 units / g) per culture solution.

参考例 5%バレイショデンプン糊化液20(1NNaOHで
pH8.0に調整)に240単位のγ−サイクロデキストリ
ン合成酵素Aを加え、55℃で20時間反応させγ−サ
イクロデキストリンを生成させた。反応後、酵素を加熱
失活(100℃、30分間)させた後、1NHClでpH
5.5に調整し、グルコアミラーゼ2,000単位と細菌液化型
α−アミラーゼ4,000単位を加え、50℃で5時間反応
させ、γ−サイクロデキストリン以外の糖をグルコース
に分解した。この反応液を活性炭処理後、γ−サイクロ
デキストリンをトリクロルエチレンによって沈澱させ
た。沈澱物をろ過により分別し、トリクロルエチレンを
水蒸気蒸留で除いた。得られたγ−サイクロデキストリ
ン溶液を凍結乾燥しγ−サイクロデキストリン10gを
得た。
Reference example 5% potato starch gelatinization liquid 20 (with 1N NaOH
240 units of γ-cyclodextrin synthase A was added to (adjusted to pH 8.0) and reacted at 55 ° C. for 20 hours to produce γ-cyclodextrin. After the reaction, inactivate the enzyme by heating (100 ° C, 30 minutes), then add 1N HCl to pH
It was adjusted to 5.5, 2,000 units of glucoamylase and 4,000 units of bacterial liquefied α-amylase were added, and the mixture was reacted at 50 ° C for 5 hours to decompose sugars other than γ-cyclodextrin into glucose. After the reaction solution was treated with activated carbon, γ-cyclodextrin was precipitated with trichloroethylene. The precipitate was separated by filtration and trichloroethylene was removed by steam distillation. The obtained γ-cyclodextrin solution was freeze-dried to obtain 10 g of γ-cyclodextrin.

参考例で得られたγ−サイクロデキストリンを高速液体
クロマトグラフィー(充填材ヌクレオシル5NH2、4.6
×25cm、アセトニトリル/水−65/35、流速1m
l/分)およびブロム・クレゾール・グリーン法により
同定を行った。
The γ-cyclodextrin obtained in the reference example was analyzed by high performance liquid chromatography (filler nucleosyl 5NH 2 , 4.6
× 25 cm, acetonitrile / water-65 / 35, flow rate 1 m
(l / min) and the bromcresol-green method.

第1図は高速液体クロマトグラムを示す図面であり、
(A)はグルコース(G)、α−CD(サイクロデキス
トリン)、β−CDおよびγ−CDの標品を含むサンプ
ル、(B)はグルコース単位数1〜7のオリゴ糖を含む
サンプル、(C)は本発明のγ−CDを含むサンプル、
(D)はサンプル(A)とサンプル(C)を混合したサ
ンプルのクロマトグラムである。上記クロマトグラムか
ら本発明のγ−CDの保持時間は、γ−CD標品の保持
時間と完全に一致していることがわかる。
FIG. 1 is a drawing showing a high performance liquid chromatogram,
(A) is a sample containing preparations of glucose (G), α-CD (cyclodextrin), β-CD and γ-CD, (B) is a sample containing oligosaccharides having 1 to 7 glucose units, (C) ) Is a sample containing γ-CD of the present invention,
(D) is a chromatogram of the sample which mixed the sample (A) and the sample (C). From the above chromatogram, it can be seen that the retention time of γ-CD of the present invention completely matches the retention time of the γ-CD standard.

第2図はブロム・クレゾール・グリーン法によるγ−C
Dの吸光スペクトルを示す図面であり、本発明のγ−C
Dのスペクトルはγ−CD標品のスペクトルと完全に一
致していることがわかる。
Figure 2 shows γ-C by the Brom-cresol-green method.
It is a figure which shows the absorption spectrum of D, and (gamma) -C of this invention.
It can be seen that the spectrum of D completely matches the spectrum of the γ-CD standard.

【図面の簡単な説明】[Brief description of drawings]

第1図は高速液体クロマトグラムを示す図面であり、第
2図はブロム・クレゾール・グリーン法による吸光スペ
クトルを示す図面である。
FIG. 1 is a drawing showing a high performance liquid chromatogram, and FIG. 2 is a drawing showing an absorption spectrum by the brom cresol green method.

Claims (3)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】下記の理化学的性質を有するγ−サイクロ
デキストリン合成酵素A。 作用および基質特異性:澱粉、アミロース、アミロペク
チン、グリコーゲンなどからγ−サイクロデキストリン
を特異的に合成する。α−およびβ−サイクロデキスト
リンの生成は認められない。 作用pHの範囲:pH4〜9(0.02M緩衝液中) 最適作用pH:pH8付近 作用温度の範囲:約75℃以下 最適作用温度:約65℃ 熱安定性:0.05Mトリス−塩酸緩衝液中、30分間加熱
により、50℃以下ではほとんど失活しないが、70℃
以上ではほぼ完全に失活する。 pH安定性:pH6〜8で安定 分子量:64,000(SDS−ポリアクリルアミド電気泳動
法による測定) 等電点:7.05(キャリアーアンホラインを用いた電気泳
動法による測定)
1. A γ-cyclodextrin synthase A having the following physicochemical properties. Action and substrate specificity: γ-cyclodextrin is specifically synthesized from starch, amylose, amylopectin, glycogen and the like. Formation of α- and β-cyclodextrin is not observed. Working pH range: pH 4 to 9 (in 0.02M buffer) Optimal working pH: around pH 8 Working temperature range: approx. 75 ° C or less Optimal working temperature: approx. 65 ° C Thermal stability: in 0.05M Tris-HCl buffer By heating for 30 minutes, it hardly deactivates below 50 ° C, but 70 ° C
With the above, it is almost completely deactivated. pH stability: Stable at pH 6 to 8 Molecular weight: 64,000 (measured by SDS-polyacrylamide electrophoresis method) Isoelectric point: 7.05 (measured by electrophoresis method using carrier ampholine)
【請求項2】バチルス属に属する、下記の理化学的性質
を有するγ−サイクロデキストリン合成酵素A生産菌を
培養し、培養物からγ−サイクロデキストリン合成酵素
Aを採取することを特徴とするγ−サイクロデキストリ
ン合成酵素Aの製造法。 作用および基質特異性:澱粉、アミロース、アミロペク
チン、グリコーゲンなどからγ−サイクロデキストリン
を特異的に合成する。α−およびβ−サイクロデキスト
リンの生成は認められない。 作用pHの範囲:pH4〜9(0.02M緩衝液中) 最適作用pH:pH8付近 作用温度の範囲:約75℃以下 最適作用温度:約65℃ 熱安定性:0.05Mトリス−塩酸緩衝液中、30分間加熱
により、50℃以下ではほとんど失活しないが、70℃
以上ではほぼ完全に失活する。 pH安定性:pH6〜8で安定 分子量:64,000(SDS−ポリアクリルアミド電気泳動
法による測定) 等電点:7.05(キャリアーアンホラインを用いた電気泳
動法による測定)
2. A γ-cyclodextrin synthase A, which belongs to the genus Bacillus and has the following physicochemical properties, is cultured, and γ-cyclodextrin synthase A is collected from the culture. Process for producing cyclodextrin synthase A. Action and substrate specificity: γ-cyclodextrin is specifically synthesized from starch, amylose, amylopectin, glycogen and the like. Formation of α- and β-cyclodextrin is not observed. Working pH range: pH 4 to 9 (in 0.02M buffer) Optimal working pH: around pH 8 Working temperature range: approx. 75 ° C or less Optimal working temperature: approx. 65 ° C Thermal stability: in 0.05M Tris-HCl buffer By heating for 30 minutes, it hardly deactivates below 50 ° C, but 70 ° C
With the above, it is almost completely deactivated. pH stability: Stable at pH 6 to 8 Molecular weight: 64,000 (measured by SDS-polyacrylamide electrophoresis method) Isoelectric point: 7.05 (measured by electrophoresis method using carrier ampholine)
【請求項3】バチルス属に属するγ−サイクロデキスト
リン合成酵素A生産菌がバチルス・エスピー・NO.31
3(Bacillus sp NO.313)である特許請求の範囲第
(2)項記載の方法。
3. A γ-cyclodextrin synthase A-producing bacterium belonging to the genus Bacillus is Bacillus sp. NO.31.
No. 3 (Bacillus sp NO.313)
The method described in (2).
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