JPH06261782A - Production of monoclonal antibody producing cell line, monoclonal antibody producing cell line and monoclonal antibody - Google Patents

Production of monoclonal antibody producing cell line, monoclonal antibody producing cell line and monoclonal antibody

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JPH06261782A
JPH06261782A JP5053380A JP5338093A JPH06261782A JP H06261782 A JPH06261782 A JP H06261782A JP 5053380 A JP5053380 A JP 5053380A JP 5338093 A JP5338093 A JP 5338093A JP H06261782 A JPH06261782 A JP H06261782A
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JP
Japan
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monoclonal antibody
cell line
cocaine
producing
producing cell
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JP5053380A
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Japanese (ja)
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Keiko Yugawa
系子 湯川
Osayuki Shigefuji
修行 重藤
Kimimasa Miyazaki
仁誠 宮崎
Tadayasu Mitsumata
忠泰 光亦
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Original Assignee
Matsushita Electric Industrial Co Ltd
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Abstract

PURPOSE:To provide a new monoclonal antibody producing cell line which produces monoclonal antibody useful for the detection of cocaine or its derivative with high sensitivity by immunoassay. CONSTITUTION:The monoclonal antibody producing cell line is obtained by fusing a mouse spleen cell sensitized with an antigen of a conjugate composed of a compound of formula (n is an integer of Z >=1) and a protein to a cell line derived from a myeloma and screening the fused cells. The immunoglobulin produced in the supernatant of the cell line culture specifically combines to cocaine or its derivative.

Description

【発明の詳細な説明】Detailed Description of the Invention

【0001】[0001]

【産業上の利用分野】本発明は、新規なモノクローナル
抗体産生細胞ライン、およびこの細胞ラインから得られ
るモノクローナル抗体に関するものである。この細胞ラ
インより産生されるモノクローナル抗体は、コカインあ
るいはコカインの誘導体を、血中あるいは大気中より免
疫測定法によって高感度に検知するために有用である。
TECHNICAL FIELD The present invention relates to a novel monoclonal antibody-producing cell line and a monoclonal antibody obtained from this cell line. The monoclonal antibody produced by this cell line is useful for highly sensitively detecting cocaine or a cocaine derivative in blood or air by an immunoassay.

【0002】[0002]

【従来の技術】コカインあるいはコカインの誘導体に対
する抗体は、例えばバルクリシェーナ・カウル、ステフ
ァン・ジェー・ミリアンおよびバーナード・デビドウら
によって報告されている(ジャーナル オブ ファーマ
コロジー アンド イクスペリメンタル セラピューテ
ィクス 199巻 171〜178頁)。
2. Description of the Related Art Antibodies to cocaine and cocaine derivatives have been reported, for example, by Bulkrichena Cowl, Stefan J. Milian and Bernard Devidou et al. (Journal of Pharmacology and Experimental Therapeutics Vol. 171-178).

【0003】しかしながら、報告されている抗体は、免
疫した羊あるいは兎の血液を精製して得られるポリクロ
ーナル抗体である。また、免疫原としては、(化2)に
示すエクゴニンを用いている。
However, the reported antibody is a polyclonal antibody obtained by purifying blood of immunized sheep or rabbits. Further, ecgonine shown in (Chemical Formula 2) is used as the immunogen.

【0004】[0004]

【化2】 [Chemical 2]

【0005】[0005]

【発明が解決しようとする課題】従来の技術であるポリ
クローナル抗体は、これを得るまでの全体の製造行程が
簡単である長所を有する反面、得られる抗体の特性は免
疫動物の各個体に依存するため、再現性のある抗体を提
供することが困難である。
Polyclonal antibodies, which are conventional techniques, have the advantage that the entire production process until obtaining them is simple, but the characteristics of the obtained antibodies depend on the individual immunized animals. Therefore, it is difficult to provide a reproducible antibody.

【0006】また、ポリクローナル抗体は抗原に対する
アフィニティーが様々な抗体の混合物であるため、平均
としてのアフィニティーが低く、高感度測定には用いる
ことができないなどの問題を有している。
Further, since a polyclonal antibody is a mixture of antibodies having various affinities for antigens, it has a low average affinity and cannot be used for high-sensitivity measurement.

【0007】さらに、我々の追試によれば、エクゴニン
を免疫原として用いた場合、コカインとエクゴニンとの
構造の差が大きいので、コカインに対して高いアフィニ
ティーを持つモノクローナル抗体は得られなかった。
Furthermore, according to our follow-up test, when ecgonine was used as an immunogen, there was a large difference in structure between cocaine and ecgonine, so that a monoclonal antibody having high affinity for cocaine could not be obtained.

【0008】本発明の目的は、従来の課題を鑑みてなさ
れたもので、コカインまたはコカイン誘導体に対して高
いアフィニティーを有するモノクロナール抗体、および
これを産生する細胞ラインを提供することにある。
[0008] An object of the present invention is to provide a monoclonal antibody having a high affinity for cocaine or a cocaine derivative, and a cell line producing the same, which has been made in view of the conventional problems.

【0009】[0009]

【課題を解決するための手段】上記課題を解決するため
に本発明においては、(化1)で示した構造を含む化合
物とタンパク質とのコンジュゲートからなる免疫原で感
作されたマウスの脾臓細胞と、骨髄腫由来の細胞ライン
とを融合後、クローニングすることによりモノクローナ
ル抗体産生細胞ラインを得た。
In order to solve the above problems, the present invention provides a spleen of a mouse sensitized with an immunogen comprising a conjugate of a compound having the structure shown in (Chemical formula 1) and a protein. The cells were fused with a myeloma-derived cell line and then cloned to obtain a monoclonal antibody-producing cell line.

【0010】[0010]

【作用】免疫グロブリンを産生する細胞は、脾臓内に蓄
積される。脾臓細胞はそれ自体増殖能力を持たないが、
骨髄腫細胞ラインと融合することによって、増殖しなが
ら抗体を産生するハイブリドーマ細胞ラインを作製する
ことができる。最も優れたアフィニティーを有する抗体
を産生し、かつ高い増殖能力を有するハイブリドーマ細
胞1個を選択し、これを培養する(クローニング)と高
アフィニティーのモノクローナル抗体が産生される。
[Function] Immunoglobulin-producing cells are accumulated in the spleen. Spleen cells have no proliferative capacity by themselves,
By hybridizing with a myeloma cell line, a hybridoma cell line that produces antibodies while proliferating can be prepared. When one hybridoma cell producing an antibody having the highest affinity and having a high proliferative ability is selected and cultured (cloning), a high-affinity monoclonal antibody is produced.

【0011】こうして得たモノクローナル抗体は、同一
種の抗体であるため、高アフィニティーが得られる。ま
たハイブリドーマ細胞ラインを培養することにより、永
続的に一定の特性のモノクローナル抗体を提供すること
ができる。
Since the monoclonal antibodies thus obtained are antibodies of the same species, high affinity can be obtained. Further, by culturing the hybridoma cell line, it is possible to permanently provide a monoclonal antibody having certain characteristics.

【0012】また、従来用いられていた免疫原エクゴニ
ンと比較して、本発明における免疫原は、コカイン自身
との構造における共通性が著しく高く、その結果、コカ
インに対して高いアフィニティーのモノクローナル抗体
を作製することが可能となった。
Further, as compared with the conventionally used immunogen ecgonine, the immunogen of the present invention has remarkably high structural commonality with cocaine itself, and as a result, a monoclonal antibody having a high affinity for cocaine is obtained. It became possible to make.

【0013】[0013]

【実施例】発明者らは、免疫したマウスの脾臓細胞とマ
ウス骨髄腫由来細胞ラインを融合し、クローニングを行
うことによって、コカインあるいはコカインの誘導体に
対して高いアフィニティーを有するモノクローナル抗体
を産生する細胞ラインを作製することに成功した。
[Examples] The present inventors fused spleen cells of an immunized mouse with a mouse myeloma-derived cell line and cloned the cells to produce a monoclonal antibody having a high affinity for cocaine or a cocaine derivative. We succeeded in producing the line.

【0014】本発明において、目的抗原はコカインある
いはコカインの誘導体であり、これらの物質は何れも低
分子であるため、タンパク質等の高分子キャリアに結合
させることにより、初めて免疫原として作用する。
In the present invention, the target antigen is cocaine or a derivative of cocaine, and since all of these substances are low molecular weight, they act as an immunogen for the first time by binding to a high molecular carrier such as protein.

【0015】キャリアとして最適なタンパク質は、感作
動物および抗原によって異なる。発明者らは各種のタン
パク質を用いて実験を行い、その結果、スカシ貝ヘモシ
アニン(以下KLHと称する)が本発明における免疫原の
キャリアとして最適であることを見いだした。
The optimal protein as a carrier depends on the sensitized animal and the antigen. The inventors conducted experiments using various proteins, and as a result, found that keyhole limpet hemocyanin (hereinafter referred to as KLH) was the most suitable as the immunogen carrier in the present invention.

【0016】また、高アフィニティーのモノクローナル
抗体産生細胞を得るためには、抗血清の段階で高い抗体
力価を発揮させる必要がある。このような免疫応答は、
感作動物の種類、系統によって異なる。発明者らは各種
の系統(A/J、BALB/c、DBA/2、C57BL/6、C3H/Heなど)の
マウスを感作し、その結果、A/Jマウスが最高の力価の
抗血清を産生することを見いだした。
In order to obtain high affinity monoclonal antibody-producing cells, it is necessary to exert a high antibody titer in the antiserum stage. Such an immune response
It depends on the type and system of the moving object. The inventors sensitized mice of various strains (A / J, BALB / c, DBA / 2, C57BL / 6, C3H / He, etc.), and as a result, A / J mice had the highest titers of anti-antibody. It was found to produce serum.

【0017】さらに、コカインに対して高アフィニティ
ーのモノクローナル抗体産生細胞を得るためには、(化
3)で示すコカインの基本骨格を、できるだけ正確に保
持している免疫原を用いることが好ましい。
Further, in order to obtain a monoclonal antibody-producing cell having a high affinity for cocaine, it is preferable to use an immunogen that retains the basic skeleton of cocaine shown in (Chemical Formula 3) as accurately as possible.

【0018】[0018]

【化3】 [Chemical 3]

【0019】従来の免疫原として用いられていたエクゴ
ニンとタンパク質のコンジュゲートには、コカイン分子
の特徴的な官能基であるメトキシカルボニル基とベンゾ
イル基がない。
The conjugates of ecgonine and protein used as conventional immunogens do not have the methoxycarbonyl group and benzoyl group, which are the characteristic functional groups of the cocaine molecule.

【0020】発明者らはメトキシカルボニル基とベンゾ
イル基を保持した、より基本骨格がコカインに似た構造
の(化1)に示す構造式を含む化合物とタンパク質のコ
ンジュゲートを免疫原に用いた。
The present inventors used a conjugate of a compound and a protein having a methoxycarbonyl group and a benzoyl group and having a structural formula shown in (Chemical formula 1) having a more basic skeleton more similar to cocaine as an immunogen.

【0021】最後に、ハイブリドーマ細胞の増殖能力
は、細胞融合の際に用いるマウス骨髄腫由来細胞ライン
の種類に依存するところが大きい。発明者らは、各種の
マウス骨髄腫由来細胞ラインを用いて細胞融合を行った
結果、P3X63-Ag8.653と融合したハイブリドーマ細胞の
分裂が最も速いことを見いだした。
Finally, the proliferation ability of hybridoma cells largely depends on the type of mouse myeloma-derived cell line used for cell fusion. As a result of cell fusion using various mouse myeloma-derived cell lines, the inventors have found that hybridoma cells fused with P3X63-Ag8.653 have the fastest division.

【0022】以下、本発明のモノクローナル抗体産生細
胞ライン、およびモノクローナル抗体を作製する実験方
法を1.免疫原の作製、2.モノクローナル抗体産生細
胞ラインおよびモノクローナル抗体の作製方法、3.検
出方法の順に記載する。
The monoclonal antibody-producing cell line of the present invention and the experimental method for producing the monoclonal antibody are described below. Preparation of immunogen, 2. 2. Monoclonal antibody-producing cell line and method for producing monoclonal antibody Describe in order of detection method.

【0023】1.免疫原の作製 まず、(化1)に示す構造式を含む化合物と、KLHのコ
ンジュゲート(以下、CC-KLH)を作製し、ついでこれを
アジュバントと共に乳化させることによって免疫原を得
た。
1. Preparation of Immunogen First, a compound containing the structural formula shown in (Chemical Formula 1) and a KLH conjugate (hereinafter referred to as CC-KLH) were prepared, and then this was emulsified with an adjuvant to obtain an immunogen.

【0024】(A)KLHとO-サクシンイミシ゛ル-3-(2-ヒ゜リシ゛ルシ゛チ
オ)-1-フ゜ロヒ゜オネート(以下SPDPと称す)(ファルマシア製)
との結合物を作製し、ついでCC-KLHを作製した。但し、
CC-KLHの作製方法は、特願平5−43502号に記載の
方法を用いた。
(A) KLH and O-succinimyl-3- (2-polydithio) -1-propionate (hereinafter referred to as SPDP) (Pharmacia)
A conjugate with and was prepared, and then CC-KLH was prepared. However,
As a method for producing CC-KLH, the method described in Japanese Patent Application No. 5-43502 was used.

【0025】すなわち、コカインから(化4)に示すノ
ルコカインを作製し、コカインのアミノブチル誘導体を
作製した。次いで、(化5)に示したノルコカインのブ
チルフタルイミド化物を作製し、(化6)に示したアミ
ノ誘導体を作製した。このようにして得たアミノ誘導体
から(化7)に示したコカインの2-ヒ゜リシ゛ルシ゛チオ誘導体を
作製し、CC-KLHを作製した。この合成経過を以下に示
す。
That is, norcocaine shown in Chemical formula 4 was prepared from cocaine to prepare an aminobutyl derivative of cocaine. Next, the butylphthalimidized product of norcocaine shown in (Chemical Formula 5) was produced, and the amino derivative shown in (Chemical Formula 6) was produced. From the amino derivative thus obtained, a 2-polybenzylthio derivative of cocaine shown in Chemical formula 7 was prepared to prepare CC-KLH. The synthetic process is shown below.

【0026】(イ)ノルコカインの作製 下記(化4)の構造を持つノルコカインを以下に示す方
法で作製した。
(B) Preparation of Norcocaine Norcokine having the structure of the following (Chemical Formula 4) was prepared by the method shown below.

【0027】[0027]

【化4】 [Chemical 4]

【0028】500mg(1.65mmol)のコカインを21mlの混合
溶媒(アセトニトリル/水=1/2)に溶解し、0.5mlの
酢酸を加えて弱酸性(pH≒5)とした。
500 mg (1.65 mmol) of cocaine was dissolved in 21 ml of a mixed solvent (acetonitrile / water = 1/2), and 0.5 ml of acetic acid was added to make it weakly acidic (pH≈5).

【0029】この溶液に、21mlの過マンガン酸カリウム
水溶液(KMnO4=534mg、3.78mmol、2.05eq.)を3時間に
わたって滴下した後、室温で一晩撹拌した。
21 ml of an aqueous potassium permanganate solution (KMnO 4 = 534 mg, 3.78 mmol, 2.05 eq.) Was added dropwise to this solution over 3 hours, and the mixture was stirred overnight at room temperature.

【0030】生じた沈澱物を濾過して除いた後、濾液に
炭酸カリウムを加えて弱アルカリ性(pH≒8)とした。
After removing the formed precipitate by filtration, potassium carbonate was added to the filtrate to make it weakly alkaline (pH≈8).

【0031】エ−テルで3回抽出し、無水硫酸ナトリウ
ムを加えて一晩乾燥した。硫酸ナトリウムを濾過して除
いた後、エ−テルを減圧留去して無色の液体を得た。
It was extracted with ether three times, and anhydrous sodium sulfate was added thereto, followed by drying overnight. After removing sodium sulfate by filtration, ether was distilled off under reduced pressure to obtain a colorless liquid.

【0032】得られた液体をシリカゲル薄層クロマトグ
ラフィ−(以下TLCと略す、展開溶媒:アンモニア飽
和クロロホルム)を用いて精製し、269mgのノルコカイン
を得た。
The obtained liquid was purified using silica gel thin layer chromatography (hereinafter abbreviated as TLC, developing solvent: ammonia saturated chloroform) to obtain 269 mg of norcocaine.

【0033】収率は56%であった。次に、これをブチル
フタルイミド化した後、アミノ誘導体を作製した。
The yield was 56%. Next, this was butylphthalimidated to prepare an amino derivative.

【0034】(ロ)ノルコカインのブチルフタルイミド
化 下記(化5)の構造を持つノルコカインのブチルフタル
イミド化物を以下に示す方法で作製した。
(B) Butylphthalimidization of norcocaine A butylphthalimidated product of norcocaine having the structure of (formula 5) was prepared by the following method.

【0035】[0035]

【化5】 [Chemical 5]

【0036】268mg(0.93mmol)のノルコカイン、314mg
(1.11mmol、1.2eq.)のブロモブチルフタルイミドおよび
147mg(1.39mmol、1.5eq.)の無水炭酸ナトリウムを10ml
のベンゼンに溶解し、窒素気流下で72時間還流した。
268 mg (0.93 mmol) norcocaine, 314 mg
(1.11 mmol, 1.2 eq.) Bromobutylphthalimide and
10 ml of 147 mg (1.39 mmol, 1.5 eq.) Anhydrous sodium carbonate
Was dissolved in benzene and refluxed under a nitrogen stream for 72 hours.

【0037】反応溶液を室温まで冷却し、濾過した。濾
液を1N塩酸で3回抽出した後、水層をクロロホルムで
3回抽出した。
The reaction solution was cooled to room temperature and filtered. The filtrate was extracted 3 times with 1N hydrochloric acid, and then the aqueous layer was extracted 3 times with chloroform.

【0038】無水硫酸ナトリウムを用いて乾燥した後、
クロロホルムを減圧留去して無色の結晶を得た。
After drying with anhydrous sodium sulfate,
Chloroform was distilled off under reduced pressure to obtain colorless crystals.

【0039】得られた結晶をTLC(展開溶媒:アンモ
ニア飽和クロロホルム/ベンゼン=1/3)を用いて精
製し、270mgのブチルフタルイミド化物を得た。
The obtained crystals were purified by TLC (developing solvent: ammonia saturated chloroform / benzene = 1/3) to obtain 270 mg of butylphthalimidide.

【0040】収率は60%であった。 (ハ)アミノ誘導体の作製 下記(化6)の構造を持つアミノ誘導体を以下に示す方
法で作製した。
The yield was 60%. (C) Preparation of Amino Derivative An amino derivative having the structure of the following (Chemical Formula 6) was prepared by the method shown below.

【0041】[0041]

【化6】 [Chemical 6]

【0042】100mgのブチルフタルイミド化物(0.20mmo
l)を、3mlの95%エタノ−ルに溶解し、これに10mgのヒ
ドラジン1水和物(0.20mmol)を加えた後、2時間還流し
た。
100 mg of butylphthalimidide (0.20 mmo
l) was dissolved in 3 ml of 95% ethanol, 10 mg of hydrazine monohydrate (0.20 mmol) was added thereto, and the mixture was refluxed for 2 hours.

【0043】反応溶液を、TLC(展開溶媒:アンモニ
ア飽和クロロホルム/メタノ−ル=10/1)を用いて精
製し、57mgのアミノ誘導体を得た。
The reaction solution was purified using TLC (developing solvent: ammonia saturated chloroform / methanol = 10/1) to obtain 57 mg of an amino derivative.

【0044】収率は78%であった。 (ニ)コカインの2-ピリジルジチオ誘導体の作製 下記(化7)の構造を持つコカインの2-ピリジルジチオ
誘導体を以下に示す方法で作製した。
The yield was 78%. (D) Preparation of 2-pyridyldithio derivative of cocaine A 2-pyridyldithio derivative of cocaine having the structure shown below was prepared by the method shown below.

【0045】[0045]

【化7】 [Chemical 7]

【0046】84mg(0.23mmol)のアミノ誘導体を1mlのエ
タノ−ルに溶解し、これに1mlのO-サクシンイミジル-3
-(2-ピリジルジチオ)-1-プロピオネ−ト(以下SPDP
と略す)/エタノ−ル溶液(SPDP=73mg、0.23mmol)
を滴下した。
84 mg (0.23 mmol) of the amino derivative was dissolved in 1 ml of ethanol and added to 1 ml of O-succinimidyl-3.
-(2-Pyridyldithio) -1-propionate (hereinafter SPDP
Abbreviated) / ethanol solution (SPDP = 73 mg, 0.23 mmol)
Was dripped.

【0047】室温で1時間撹拌した後、TLC(展開溶
媒:アンモニア飽和クロロホルム)を用いて精製し、133
mgのピリジルジチオ誘導体を得た。
After stirring at room temperature for 1 hour, the product was purified using TLC (developing solvent: ammonia saturated chloroform).
Obtained mg of pyridyldithio derivative.

【0048】収率は100%であった。 (ホ)KLH−SPDPの作製 200mgのKLHを30mlのリン酸バッファーサリン(以下PB
Sと称す)に溶解し、撹拌しながら0.5mlのSPDP/
エタノール溶液(SPDP=9.4mg、15eq.)を滴下し
た。
The yield was 100%. (E) Preparation of KLH-SPDP 200 mg of KLH was added to 30 ml of phosphate buffer sarin (hereinafter referred to as PB).
S) and 0.5 ml of SPDP / with stirring.
An ethanol solution (SPDP = 9.4 mg, 15 eq.) Was added dropwise.

【0049】室温で30分撹拌した後、生じた沈澱物を遠
心分離(10min.、20000rpm)により除いた。
After stirring at room temperature for 30 minutes, the formed precipitate was removed by centrifugation (10 min., 20000 rpm).

【0050】得られた上清をセファデックスG25カラム
(ファルマシア社製、直径2cm×長さ80cm)でゲル濾過
し、40mlのKLH−SPDP/PBS溶液を得た。
The obtained supernatant was subjected to gel filtration using a Sephadex G25 column (Pharmacia, diameter 2 cm × length 80 cm) to obtain 40 ml of KLH-SPDP / PBS solution.

【0051】KLH1分子当りのSPDPの結合数を次
のように決定した。得られたKLH−SPDPのPBS
溶液の内1mlを用いて280nmにおける吸光度A280を測定
し、測定結果は3.6005であった。
The number of SPDP bound per KLH molecule was determined as follows. The obtained KLH-SPDP PBS
The absorbance A 280 at 280 nm was measured using 1 ml of the solution, and the measurement result was 3.6005.

【0052】これに100mMのジチオスレイトール(以下
DTTと称す)水溶液50μlを加え、5分間放置した後3
43nmにおける吸光度A343を測定し、測定結果は1.576で
あった。
To this, 50 μl of 100 mM dithiothreitol (hereinafter referred to as DTT) aqueous solution was added, and after standing for 5 minutes, 3
The absorbance A 343 at 43 nm was measured, and the measurement result was 1.576.

【0053】DTT還元によって放出されたピリジン−
2−チオンの343nmにおける分子吸光係数を1.12×105
すると、その濃度は次の(数1)のように計算すること
ができる。
Pyridine released by DTT reduction
Assuming that the molecular extinction coefficient of 2-thione at 343 nm is 1.12 × 10 5 , its concentration can be calculated as in the following (Equation 1).

【0054】[0054]

【数1】 [Equation 1]

【0055】この濃度はKLHに導入されたSPDPの
濃度に等しい。また、SPDPの2−ピリジルスルフィ
ド基が280nmにおける吸光度に寄与するため、KLH濃
度の計算には次のような補正が必要である。
This concentration is equal to the concentration of SPDP introduced into KLH. Further, since the 2-pyridyl sulfide group of SPDP contributes to the absorbance at 280 nm, the following correction is necessary for the calculation of the KLH concentration.

【0056】KLHに起因する280nmにおける吸光度A
280,CGGは次のようになる。 A280,CGG=3.6005−(1.9505×10-4×5.1×103) =2.6057 但し、2−ピリジルジスルフィド基の280nmにおける分
子吸光係数を5.1×103とする。
Absorbance A at 280 nm due to KLH
280, CGG is as follows. A 280, CGG = 3.6005- (1.9505 × 10 -4 × 5.1 × 10 3) = 2.6057 However, a 2-pyridyl 5.1 × 10 3 molar absorption coefficient at 280nm of disulfide groups.

【0057】従って、KLHの濃度およびKLH1分子
当りに導入されたSPDPの分子数は次の(数2)のよ
うになる。
Therefore, the concentration of KLH and the number of SPDP molecules introduced per molecule of KLH are as shown in the following (Equation 2).

【0058】[0058]

【数2】 [Equation 2]

【0059】 (ヘ)コカイン・KLHコンジュゲートの作製 コカイン・KLHコンジュゲートを以下に示す方法で作
製した。
(F) Preparation of Cocaine / KLH Conjugate A cocaine / KLH conjugate was prepared by the following method.

【0060】40mlのKLH−SPDP/PBS溶液(2.
3265×10-5M)に77.1mg(50eq.)のDTTを加え、室温
で30分撹拌した。
40 ml of KLH-SPDP / PBS solution (2.
77.1 mg (50 eq.) Of DTT was added to 3265 × 10 −5 M), and the mixture was stirred at room temperature for 30 minutes.

【0061】生じた沈澱物を遠心分離(10min.、20000r
pm)により除いた後、得られた上清をセファデックスG2
5カラム(ファルマシア社製、直径2cm×長さ80cm)でゲ
ル濾過して48mlのKLH−SPDP(SHfree)/PB
S溶液(1.7316×10-5M)を得た。
The resulting precipitate was centrifuged (10 min., 20000r
pm), and the resulting supernatant is Sephadex G2
Gel filtration through 5 columns (Pharmacia, diameter 2 cm x length 80 cm) and 48 ml of KLH-SPDP (SHfree) / PB
An S solution (1.7316 × 10 -5 M) was obtained.

【0062】得られた溶液に4.63mg(8.312×10-3mmo
l)のピリジルジチオ誘導体を加え、4℃で一晩撹拌し
た。
4.63 mg (8.312 × 10 −3 mmo) was added to the obtained solution.
l) Pyridyldithio derivative was added, and the mixture was stirred at 4 ° C. overnight.

【0063】生じた沈澱物を遠心分離(10min.、20000r
pm)により除いた後、343nmにおける吸光度A343を測定
し、測定結果は1.0352であった。
The resulting precipitate was centrifuged (10 min., 20000r
The absorbance A 343 at 343 nm was measured, and the measurement result was 1.0352.

【0064】得られた上清をセファデックスG25カラム
(ファルマシア社製、直径2cm×長さ80cm)でゲル濾過
して、48mlのコカイン・KLHコンジュゲート/PBS
溶液を得た。
The obtained supernatant was subjected to gel filtration with a Sephadex G25 column (Pharmacia, diameter 2 cm × length 80 cm), and 48 ml of cocaine / KLH conjugate / PBS was obtained.
A solution was obtained.

【0065】KLH1分子当りのピリジルジチオ誘導体
の結合数を次のように決定した。反応直後のA343が1.0
352であることより、放出されたピリジン−2−チオン
の343nmにおける分子吸光係数を8.08×103とすると、そ
の濃度は次の(数3)のように計算することができる。
The number of bonds of the pyridyldithio derivative per molecule of KLH was determined as follows. A 343 immediately after the reaction is 1.0
Since it is 352, if the molecular extinction coefficient of the released pyridine-2-thione at 343 nm is 8.08 × 10 3 , its concentration can be calculated as in the following (Equation 3).

【0066】[0066]

【数3】 [Equation 3]

【0067】この濃度は、KLHに導入されたピリジル
ジチオ誘導体の濃度に等しい。KLHの濃度は1.40×10
-5Mであることより、KLH1分子当りに導入されたピ
リジルジチオ誘導体の分子数は次の(数4)のようにな
る。
This concentration is equal to the concentration of the pyridyldithio derivative introduced into KLH. The concentration of KLH is 1.40 × 10
Since it is −5 M, the number of molecules of the pyridyldithio derivative introduced per one molecule of KLH is as shown in the following (Equation 4).

【0068】[0068]

【数4】 [Equation 4]

【0069】その結果、KLH1分子当り7.4個のコカイン
が結合したCC-KLHが得られた。なお、本実施例において
は架橋剤としてSPDPを用いたが、当然、これ以外の架橋
剤を用いてコンジュゲートを作製することは容易にでき
る。
As a result, CC-KLH having 7.4 cocaine bound per molecule of KLH was obtained. Although SPDP was used as the cross-linking agent in this example, it is naturally possible to easily prepare the conjugate using a cross-linking agent other than this.

【0070】(B)アジュバントエマルジョンの調製 上記の合成によって得たCC-KLHをリン酸緩衝生理食塩水
(以下、PBS)で希釈して、1mg/mL溶液6mLを得た。
(B) Preparation of Adjuvant Emulsion CC-KLH obtained by the above synthesis was diluted with phosphate buffered saline (hereinafter, PBS) to obtain 6 mL of 1 mg / mL solution.

【0071】アジュバント(ヒト結核死菌含有完全フロ
イントアジュバント 、和光純薬製、H37Rv)をよく撹は
んしながら6mL取り、CC-KLH溶液6mLを3回に分けて加え
つつ、ホモジナイザで撹はんしながら(10,000rpm)少
量を水の上に落としても広がらなくなるまで乳化を行っ
た。
6 mL of an adjuvant (complete Freund's adjuvant containing human tuberculosis killed, Wako Pure Chemical Industries, H37Rv) was stirred well, and 6 mL of CC-KLH solution was added in 3 portions, while stirring with a homogenizer. While emulsifying (10,000 rpm), a small amount was dropped onto the water until it did not spread.

【0072】なお本実施例では、タンパク質としてKLH
を用いて免疫原を作製したが、ウシ血清アルブミンおよ
びチキン−γ−グロブリンなど、その他のタンパク質を
キャリアとした場合においてもまったく同様の合成方法
を用いて、モノクローナル抗体産生細胞ライン作製のた
めの免疫原が作製できる。
In this example, KLH was used as the protein.
Although the immunogen was prepared by using, the immunization for preparing the monoclonal antibody-producing cell line was performed by using the same synthetic method even when other proteins such as bovine serum albumin and chicken-γ-globulin were used as carriers. Hara can be made.

【0073】2.モノクローナル抗体産生細胞ラインお
よびモノクローナル抗体の作製方法 以下、モノクローナル抗体産生細胞およびモノクローナ
ル抗体の作製方法をステップごとに示し、実施例の説明
を行う。
2. Monoclonal antibody producing cell line
And a method for producing a monoclonal antibody Hereinafter, a method for producing a monoclonal antibody-producing cell and a monoclonal antibody will be shown step by step, and an example will be described.

【0074】(A)マウスの免疫 生後約8週のマウス(A/J)10匹の腹腔に1.免疫原の
作製で得た免疫原を含むアジュバントエマルジョンを10
0μLずつ注射した。
(A) Immunization of Mice About 8 weeks after birth, 10 mice (A / J) were intraperitoneally injected with 1. 10% of the adjuvant emulsion containing the immunogen obtained in the preparation of the immunogen
Each injection was 0 μL.

【0075】(B)抗体産生のチェック 免疫注射後、70日を経過したマウスについて、眼静脈よ
り50〜100μLの血液を遠心管に採取した。
(B) Check of antibody production For mice 70 days after the immunization injection, 50 to 100 μL of blood was collected from the ocular vein into a centrifuge tube.

【0076】血清を遠心分離し、ELISA法(後出)によ
るスクリーニングを行ったところ、全てのマウスについ
て抗コカイン抗体の産生が確認された。
When the serum was centrifuged and screened by the ELISA method (described later), production of anti-cocaine antibody was confirmed in all mice.

【0077】(C)マウスのブースト (B)項のスクリーニングで特に力価の高かった2匹の
マウスについてマウスの脾臓を肥大させるためにブース
ト(弱い免疫原の注射)を行った。
(C) Boosting of Mice Two mice, which had particularly high titers in the screening of (B), were boosted (injection of weak immunogen) to enlarge the spleen of the mice.

【0078】免疫原はCC-KLHをPBSで希釈して得た1mg/m
L溶液を、アジュバントを加えずにそのまま用いた。
The immunogen was 1 mg / m 2 obtained by diluting CC-KLH with PBS.
The L solution was used as it was without adjuvant.

【0079】免疫後71日を経過した時点でこの免疫原を
100μL腹腔内に注射した。 (D)細胞融合 ブースト後3日を経過したマウスの脾臓細胞を摘出し、
平均分子量1,500のポリエチレングリコールを用いた常
法により、マウス骨髄腫由来細胞ライン(P3X63-Ag8.65
3)と融合した。
71 days after immunization, the immunogen was
100 μL was injected intraperitoneally. (D) Cell fusion The spleen cells of the mouse 3 days after the boost were removed,
A mouse myeloma-derived cell line (P3X63-Ag8.65) was prepared by a conventional method using polyethylene glycol having an average molecular weight of 1,500.
Fused with 3).

【0080】フィーダー(成長因子を供給する細胞)と
して同じマウスの脾臓細胞を用い、96ウェルプレート2
枚の上で15%のウシ胎児血清(以下、FCS)を含むHAT培
地で培養した。
Using the same mouse spleen cells as feeders (cells supplying growth factors), 96-well plate 2
The plate was cultured on a HAT medium containing 15% fetal calf serum (hereinafter, FCS).

【0081】1週間後、15%のFCSを含むHT培地と交換し
た。 (E)クローニング ELISA法によるスクリーニングを行い、力価の高いもの
から上位12ウェルを選択した。
After 1 week, the medium was replaced with HT medium containing 15% FCS. (E) Cloning Screening was carried out by the ELISA method, and the top 12 wells were selected from those having high titers.

【0082】ウェルあたり1ケの細胞が含まれる濃度に
希釈(限界希釈)し、96ウェルのマイクロプレート1
2枚に分注した。
96 well microplate 1 was diluted to a concentration containing 1 cell per well (limit dilution)
Dispensed into 2 pieces.

【0083】フィーダーとして生後5週のマウス(Balb
/c)の胸線細胞を用いて初期増殖を促した。
Five-week-old mice (Balb
/ c) pleural cells were used to promote early proliferation.

【0084】プレートのサイズを上げながら培養を進
め、適時上清についてELISA法によるスクリーニングを
繰り返し、コカインに対して高い力価を示し、かつ良好
な増殖を示している細胞ラインを最終的に選別し、200m
l中で5x105 細胞/mLの濃度に至るまで培養を進めた。
The culture is advanced while increasing the size of the plate, and the supernatant is repeatedly screened by the ELISA method at appropriate times to finally select a cell line showing a high titer against cocaine and good growth. , 200m
The culture was advanced to a concentration of 5 × 10 5 cells / mL in l.

【0085】(F)最終的に選別された細胞ラインは、
上清を遠心分離し、5×106 細胞/mLの濃度でFCS:ジメチ
ルスルフォキシド=9:1の溶液1mLに浮遊させ、ー80℃で凍
結した後、-135℃に移して長期保存状態にした。
(F) The finally selected cell line is
The supernatant was centrifuged and suspended in 1 mL of FCS: dimethylsulfoxide = 9: 1 solution at a concentration of 5 × 10 6 cells / mL, frozen at -80 ° C, and then transferred to -135 ° C for long-term storage. I was in a state.

【0086】(G)プロティンA結合ゲル(プロティン
Aセファロース CL-4B、ファルマシア製)を用いたアフ
ィニティークロマトグラフィにより細胞培養上清からモ
ノクローナル抗体を精製した。
(G) A monoclonal antibody was purified from the cell culture supernatant by affinity chromatography using a protein A-binding gel (protein A Sepharose CL-4B, manufactured by Pharmacia).

【0087】このモノクローナル抗体は、SDSポリアク
リルアミドゲル電気泳動により、標準蛋白との比較か
ら、精製抗体は分子量約50,000のH鎖と約20,000のL鎖か
らなるIgGであることを確認した。
This monoclonal antibody was confirmed by SDS polyacrylamide gel electrophoresis to be an IgG composed of a H chain having a molecular weight of about 50,000 and an L chain of about 20,000 by comparison with a standard protein.

【0088】なお本実施例では、コカインに結合させる
タンパク質としてKLHを用いたがウシ血清アルブミンお
よびチキン−γ−グロブリンなど、その他のタンパク質
をキャリアとした場合においても同様にモノクローナル
抗体産生細胞ラインが作製できる。
In this example, KLH was used as a protein to bind to cocaine, but a monoclonal antibody-producing cell line was similarly prepared when other proteins such as bovine serum albumin and chicken-γ-globulin were used as carriers. it can.

【0089】3.検出方法(ELISA法) 2において得られた抗血清、培養上清の評価およびモノ
クローナル抗体を用いたコカインおよびコカイン誘導体
の検出については、ELISA法を用いた。
3. Detection method (ELISA method) The ELISA method was used for evaluation of the antiserum and culture supernatant obtained in 2 and detection of cocaine and cocaine derivatives using a monoclonal antibody.

【0090】その操作法を以下に記載する。 (A)抗原のコーティング CC-KLHと同様の合成法によって得た、ウシ血清アルブミ
ン(BSA)1分子あたりコカインが1分子結合したコンジ
ュゲート(CC-BSA)を、0.1mg/mlおよび0.04%のアジ化
ナトリウムを含むPBSで希釈して(BSA・PBS・Az)BSAの濃
度として0.1mg/mLの抗原溶液を調製した。
The operation method is described below. (A) Antigen coating A conjugate (CC-BSA) obtained by the same synthesis method as CC-KLH and having one molecule of cocaine bound to one molecule of bovine serum albumin (BSA) was added at 0.1 mg / ml and 0.04%. An antigen solution having a BSA concentration of 0.1 mg / mL was prepared by diluting with PBS containing sodium azide (BSA / PBS / Az).

【0091】マイクロプレート(塩化ビニル製96ウェル
プレート コスター社製)に抗原溶液を100μL/ウェル
注入し、20℃で1夜保存した。
100 μL / well of the antigen solution was injected into a microplate (vinyl chloride 96-well plate, Costar) and stored at 20 ° C. overnight.

【0092】アスピレータで抗原溶液を除去した後、PB
Sで3回洗浄し、アスピレータで残存するPBSを除去し
た。
After removing the antigen solution with an aspirator, PB
It was washed 3 times with S and the remaining PBS was removed with an aspirator.

【0093】(B)ブロッキング BSA・PBS・Azを250μL/ウェル注入し、30分間室温で放置
した。
(B) Blocking BSA / PBS / Az was injected at 250 μL / well and left at room temperature for 30 minutes.

【0094】その後、アスピレータでBSA・PBS・Azを除去
した。即日に以降の実験を行わないときは、この状態
で、水で湿したろ紙と共に4℃で保存した。
After that, BSA / PBS / Az was removed with an aspirator. When no subsequent experiments were performed on the same day, they were stored in this state at 4 ° C. together with filter paper moistened with water.

【0095】(C)抗体の反応 BSA・PBS・Azで種々の希釈率に希釈した抗体溶液(血清、
培養上清、精製抗体等)100μL/ウェルを注入した。
(C) Antibody reaction Antibody solutions (serum, diluted with BSA / PBS / Az at various dilution ratios)
Culture supernatant, purified antibody, etc.) 100 μL / well was injected.

【0096】インヒビションの実験を行うときはインヒ
ビタ溶液50μL/ウェルを注入し、振とうしながら抗体溶
液50μL/ウェルをさらに加えた。
When carrying out the inhibition experiment, 50 μL / well of the inhibitor solution was injected, and 50 μL / well of the antibody solution was further added while shaking.

【0097】常温で3時間保存した後、アスピレータで
抗体溶液を除去し、PBSで3回洗浄し、アスピレータで
残存するPBSを除去した。
After storing at room temperature for 3 hours, the antibody solution was removed with an aspirator and washed three times with PBS to remove the remaining PBS with the aspirator.

【0098】(D)第2抗体の反応 0.2μg/mLのペルオキシダーゼ標識抗マウスIgG抗体ヤギ
由来(KPL社製、 Cat.141806 lot. HL10-5)を1%BSAのP
BS溶液に溶解したもの(第2抗体溶液)50μL/ウェル注
入し、常温で30分放置した。
(D) Reaction of secondary antibody 0.2 μg / mL peroxidase-labeled anti-mouse IgG antibody goat origin (KPL, Cat.141806 lot. HL10-5) was added to P of 1% BSA.
50 μL / well of a solution (second antibody solution) dissolved in a BS solution was injected, and the mixture was left at room temperature for 30 minutes.

【0099】アスピレータで第2抗体溶液を除去し、PB
Sで3回洗浄し、さらにアスピレータで残存するPBSを除
去した。
The second antibody solution was removed with an aspirator, and PB
It was washed 3 times with S, and the remaining PBS was removed with an aspirator.

【0100】(E)基質の反応と停止 o-フェニレンジアミン(生化学用)40mgを、10mLのクエ
ン酸−リン酸バッファー(pH5)に溶解し、使用直前に3
0%過酸化水素水4μLを加えた溶液(基質溶液)を100μL
/ウェル注入し、室温放置した。
(E) Reaction and Termination of Substrate 40 mg of o-phenylenediamine (for biochemistry) was dissolved in 10 mL of citrate-phosphate buffer (pH 5), and immediately before use,
100 μL of a solution (substrate solution) containing 4 μL of 0% hydrogen peroxide solution
/ Well was injected and left at room temperature.

【0101】10分後、4N硫酸を25μL/ウェル注入して反
応を停止した。 (F)測定 東洋ソーダマイクロプレートリーダを用いて492nm以上
の吸光度を測定した。通常第1列は純水を注入して参照
値とし、適時(C)項のみを省いたブランク値を使用し
た。
After 10 minutes, 25 μL / well of 4N sulfuric acid was injected to stop the reaction. (F) Measurement The absorbance at 492 nm or more was measured using a Toyo Soda Microplate Reader. Usually, in the first column, pure water was injected to serve as a reference value, and a blank value in which only the item (C) was appropriately omitted was used.

【0102】以上の方法によって、各濃度のモノクロー
ナル抗体溶液とプレートにコーティングした固相抗原で
あるCC-BSAとの結合能力の例を、図1に示す。縦軸は吸
光度、横軸は抗体濃度(mole/l、以下、M)の対数値で
ある。
An example of the binding ability between the monoclonal antibody solution of each concentration and CC-BSA which is the solid phase antigen coated on the plate by the above method is shown in FIG. The vertical axis is the absorbance and the horizontal axis is the logarithmic value of the antibody concentration (mole / l, hereinafter, M).

【0103】図1に示すように10-9Mより高い濃度で結
合が飽和していることがわかる。次に抗体10-9Mで各濃
度のコカインを検出した例を図2に示す。図2におい
て、縦軸はインヒビション(%)、横軸はコカイン濃度
(M)の対数値である。
As shown in FIG. 1, it can be seen that the bond is saturated at a concentration higher than 10 −9 M. Next, FIG. 2 shows an example of detecting cocaine at each concentration with the antibody 10 -9 M. In FIG. 2, the vertical axis is the inhibition (%) and the horizontal axis is the logarithmic value of the cocaine concentration (M).

【0104】インヒビション(%)は次の計算式により
得られる値である。 インヒビション(%)=(1− ODx/ODmax)×1
00 ODx :コカインxMの時の吸光度 ODmax :コカイン0Mの時の吸光度 この検出方法では、コカインの濃度が高くなるほど吸光
度が下がる。したがって、上式で表されるインヒビショ
ンはコカインの濃度が高くなるほど上がる。
The inhibition (%) is a value obtained by the following calculation formula. Inhibition (%) = (1-ODx / ODmax) x 1
00 ODx: Absorbance at cocaine xM ODmax: Absorbance at cocaine 0M In this detection method, the higher the concentration of cocaine, the lower the absorbance. Therefore, the inhibition represented by the above formula increases as the concentration of cocaine increases.

【0105】図2に示しているように本条件において、
10-9.0Mのコカインを検出することができた。
Under these conditions, as shown in FIG.
10-9.0 M of cocaine could be detected.

【0106】なお、モノクローナル抗体は、通常免疫原
と類似の構造を有している物質にたいしてもアフィニテ
ィーを示すことが知られている。したがって、実施例に
示したようにCC-KLHを用いて免疫をおこなったモノクロ
ーナル抗体を用いても、コカイン誘導体を、やや感度が
低下するものの、検出することができる。
It is known that a monoclonal antibody usually shows affinity for a substance having a structure similar to that of an immunogen. Therefore, even if the monoclonal antibody immunized with CC-KLH as shown in the examples is used, the cocaine derivative can be detected although the sensitivity is slightly lowered.

【0107】以下、コカインおよびコカインの誘導体に
ついて、本実施例と同様の方法で検出を行ったときの相
対感度を以下に列挙する。
The relative sensitivities of cocaine and derivatives of cocaine when the detection is carried out in the same manner as in this example are listed below.

【0108】ここで相対感度はコカインの最低検出濃度
を1としたときの各物質の最低検出濃度を示し、従って
数が高くなるほど低感度である。
Here, the relative sensitivity indicates the lowest detectable concentration of each substance when the lowest detectable concentration of cocaine is 1, and therefore the higher the number, the lower the sensitivity.

【0109】ノルコカイン−−−−−−10 エクゴニン −−−−−−13 メチルエクゴニン−−−−20 ベンゾイルエクゴニン−−30Norcocaine ------ 10 ecgonine ------ 13 methyl ecgonine ---- 20 benzoyl ecgonine -30

【0110】[0110]

【発明の効果】本発明は特定の構造式を有する化合物と
タンパク質とのコンジュゲートからなる免疫源で感作さ
れたマウスの脾臓細胞と、骨髄種由来の細胞ラインとを
融合後、クローニングして得られたモノクロナール抗体
産生細胞ライン作製方法、この作製方法で作製し、培養
上清中に産生されるイムノグロブリンが、コカインまた
はコカイン誘導体に特異的に結合するモノクロナール抗
体産生細胞ライン、およびモノクロナール抗体であるた
め、コカインあるいはコカインの誘導体に対して高いア
フィニティーを有するモノクローナル抗体およびこれを
産生する細胞ラインを提供することが可能になった。
INDUSTRIAL APPLICABILITY According to the present invention, mouse spleen cells sensitized with an immunogen comprising a conjugate of a compound having a specific structural formula and a protein and a myeloma-derived cell line are fused and cloned. The method for producing the obtained monoclonal antibody-producing cell line, the immunoglobulin produced in this production method, in which the immunoglobulin produced in the culture supernatant specifically binds to cocaine or a cocaine derivative, and a monoclonal antibody-producing cell line Since it is a nal antibody, it has become possible to provide a monoclonal antibody having a high affinity for cocaine or a derivative of cocaine and a cell line producing the same.

【図面の簡単な説明】[Brief description of drawings]

【図1】図は本発明の一実施例におけるモノクローナル
抗体を用いて、ELISA法における固相抗原に対する
モノクローナル抗体の結合能力を示すグラフ
FIG. 1 is a graph showing the binding ability of a monoclonal antibody to a solid phase antigen in an ELISA method using the monoclonal antibody in one example of the present invention.

【図2】図は本発明の一実施例におけるモノクローナル
抗体を用いて、ELISA法によってコカインを検出し
た際の結果を示すグラフ
FIG. 2 is a graph showing the results of detecting cocaine by the ELISA method using the monoclonal antibody in one example of the present invention.

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.5 識別記号 庁内整理番号 FI 技術表示箇所 G01N 33/53 S 8310−2J 33/577 A 8310−2J //(C12P 21/08 C12R 1:91) (72)発明者 光亦 忠泰 大阪府門真市大字門真1006番地 松下電器 産業株式会社内─────────────────────────────────────────────────── ─── Continuation of the front page (51) Int.Cl. 5 Identification code Internal reference number FI Technical display location G01N 33/53 S 8310-2J 33/577 A 8310-2J // (C12P 21/08 C12R 1: 91) (72) Inventor Tadayasu Kouji 1006 Kadoma, Kadoma City, Osaka Prefecture Matsushita Electric Industrial Co., Ltd.

Claims (6)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】(化1)に示す構造式を含む化合物とタン
パク質とのコンジュゲートからなる免疫原で感作された
マウスの脾臓細胞と、骨髄腫由来の細胞ラインとを融合
後、クローニングして得られたことを特徴とするモノク
ローナル抗体産生細胞ライン作製方法。 【化1】
1. Spleen cells of a mouse sensitized with an immunogen consisting of a conjugate of a compound having the structural formula shown in (Chemical formula 1) and a protein are fused with a myeloma-derived cell line and then cloned. A method for producing a monoclonal antibody-producing cell line, which is obtained by [Chemical 1]
【請求項2】タンパク質がスカシ貝ヘモシアニンである
ことを特徴とする、請求項1記載のモノクローナル抗体
産生細胞ライン作製方法。
2. The method for producing a monoclonal antibody-producing cell line according to claim 1, wherein the protein is keyhole limpet hemocyanin.
【請求項3】骨髄腫由来の細胞ラインが、P3X63-Ag8.65
3であることを特徴とする、請求項1記載のモノクロー
ナル抗体産生細胞ライン作製方法。
3. The myeloma-derived cell line is P3X63-Ag8.65.
3. The method for producing a monoclonal antibody-producing cell line according to claim 1, which is 3.
【請求項4】マウスの種類が、A/J系統であることを
特徴とする、請求項1記載のモノクローナル抗体産生細
胞ライン作製方法。
4. The method for producing a monoclonal antibody-producing cell line according to claim 1, wherein the type of mouse is an A / J strain.
【請求項5】(化1)に示す構造式を含む化合物とタン
パク質とのコンジュゲートからなる免疫源で感作された
マウスの脾臓細胞と、骨髄種由来の細胞ラインとを融合
後、クローニングして得られるモノクロナール抗体産生
細胞ライン作製方法で得られ、培養上清中に産生される
イムノグロブリンが、コカインまたはコカインの誘導体
に特異的に結合することを特徴とするモノクローナル抗
体産生細胞ライン。
5. Spleen cells of a mouse sensitized with an immunogen comprising a conjugate of a compound containing the structural formula shown in (Chemical formula 1) and a protein are fused with a myeloma-derived cell line and then cloned. A monoclonal antibody-producing cell line obtained by the method for producing a monoclonal antibody-producing cell line obtained as above, wherein immunoglobulin produced in the culture supernatant specifically binds to cocaine or a cocaine derivative.
【請求項6】(化1)に示す構造式を含む化合物とタン
パク質とのコンジュゲートからなる免疫源で感作された
マウスの脾臓細胞と、骨髄種由来の細胞ラインとを融合
後、クローニングして得られるモノクロナール抗体産生
細胞ライン作製方法で得られ、培養上清中に産生される
イムノグロブリンが、コカインまたはコカインの誘導体
に得意的に結合するモノクロナール抗体産生細胞ライン
で得られたことを特徴とするモノクローナル抗体。
6. Spleen cells of a mouse sensitized with an immunogen comprising a conjugate of a compound containing the structural formula shown in (Chemical formula 1) and a protein are fused with a myeloma-derived cell line and then cloned. The monoclonal antibody-producing cell line obtained by the method for producing a monoclonal antibody-producing cell line, which is produced in a culture supernatant, is obtained by a monoclonal antibody-producing cell line that specifically binds to cocaine or a derivative of cocaine. Characterized monoclonal antibody.
JP5053380A 1993-03-04 1993-03-15 Production of monoclonal antibody producing cell line, monoclonal antibody producing cell line and monoclonal antibody Pending JPH06261782A (en)

Priority Applications (5)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP5053380A JPH06261782A (en) 1993-03-15 1993-03-15 Production of monoclonal antibody producing cell line, monoclonal antibody producing cell line and monoclonal antibody
DE69332637T DE69332637T2 (en) 1993-03-04 1993-07-16 Cocaine derivative, protein conjugate thereof, a hybridoma cell line producing a monoclonal antibody, process for producing the hybridoma cell line and the monoclonal antibody
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