JPH06189766A - Dna sequence coding zona pellucida czp2 of canine ovum - Google Patents

Dna sequence coding zona pellucida czp2 of canine ovum

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JPH06189766A
JPH06189766A JP35926592A JP35926592A JPH06189766A JP H06189766 A JPH06189766 A JP H06189766A JP 35926592 A JP35926592 A JP 35926592A JP 35926592 A JP35926592 A JP 35926592A JP H06189766 A JPH06189766 A JP H06189766A
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JP
Japan
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czp2
leu
dna
ser
thr
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JP35926592A
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Japanese (ja)
Inventor
Yuichi Okazaki
祐一 岡崎
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Tonen General Sekiyu KK
Original Assignee
Tonen Corp
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Publication date
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Abstract

PURPOSE:To provide a new DNA sequence necessary for the artificial synthesis of CZP2 useful as a contraceptive vaccine antigen of dog. CONSTITUTION:A DNA containing a base sequence coding the total or a part of the amino acid sequence of zona pellucida CZP2 protein of canine ovum of formula. It can be prepared by extracting the total RNA from the ovary of a dog and cloning the total gene of CZP2 by the purification of mRNA with oligo-dt-cellulose and the PCR amplification using a cDNA synthesized from the mRNA as a template DNA.

Description

【発明の詳細な説明】Detailed Description of the Invention

【0001】[0001]

【産業上の利用分野】本発明は、イヌ卵透明帯CZP2
蛋白質をコードするDNA配列に関する。
FIELD OF THE INVENTION The present invention relates to dog egg zona pellucida CZP2.
It relates to a DNA sequence encoding a protein.

【0002】[0002]

【従来の技術】卵透明帯(ZP:Zona Pellu
cida)とは、哺乳動物の卵細胞を取り囲んで存在す
る細胞外マトリックスでZP−1,−2,−3,−4と
呼ばれる幾種類かの糖蛋白質が集まって構成されてい
る。この卵透明帯が、授精の場において卵側の精子レセ
プターとなっており、精子はこの卵透明帯を通過できな
いと授精は成立しない(Wassarman P.M. (1990) Develo
pment 108, 1-17)。従って、何らかの形で精子がこの卵
透明帯と結合できないようにすることができれば避妊は
可能となる。その一つの方法として、卵透明帯に対する
抗体はin vitroで授精を阻害できることが報告されてお
り(Shivers, C.H. ら (1972) Science, 178:1211-121
3, メルクの特開昭53−26311号公報)、さら
に、この蛋白質をワクチン抗原として雌哺乳動物に投与
してその個体を不妊にできることも報告されている(Wo
od D.M. ら (1981) Biol. Reprod. 25:439-450, Skinne
r S.M.ら (1984) Endrocrinology 115:2418-2432, Mahi
-Brown C.A. ら (1985) Biol. Repro. 32:761-772 )。
この効果はZP−3と呼ばれる成分単独でも効果のある
ことが報告されており、成分全体でなくとも良いと考え
られている。(Sacco A.G.ら(1987) Biol. Reprod. 36:
481-490, Millar S.E. ら(1989) Science 246:935-93
8)。
2. Description of the Prior Art Zona Pellu (ZP)
Cida) is an extracellular matrix that surrounds mammalian egg cells and is composed of several types of glycoproteins called ZP-1, -2, -3, and -4. The egg zona pellucida serves as a sperm receptor on the egg side during insemination, and insemination cannot be established unless the sperm can pass through the egg zona pellucida (Wassarman PM (1990) Develo
pment 108, 1-17). Therefore, contraception is possible if it is possible to somehow prevent sperm from binding to this egg zona pellucida. As one of the methods, it has been reported that an antibody against the zona pellucida can inhibit fertilization in vitro (Shivers, CH et al. (1972) Science, 178: 1211-121).
3, Merck, JP-A-53-26311), and it has also been reported that this protein can be administered to a female mammal as a vaccine antigen to make the individual sterile (Wo).
od DM et al. (1981) Biol. Reprod. 25: 439-450, Skinne.
r SM et al. (1984) Endrocrinology 115: 2418-2432, Mahi
-Brown CA et al. (1985) Biol. Repro. 32: 761-772).
It has been reported that this effect is effective even with a component called ZP-3 alone, and it is considered that it is not necessary for the entire component to be effective. (Sacco AG et al. (1987) Biol. Reprod. 36:
481-490, Millar SE et al. (1989) Science 246: 935-93.
8).

【0003】この卵透明帯を構成する卵透明帯蛋白質成
分に関してはその遺伝子クローニングが行なわれアミノ
酸配列、塩基配列が明らかとされてきている。ZP−3
と呼ばれる成分に関しては、マウス(Ringuette M.J.
(1988) Dev. Biol. 127:287-265)、ハムスター(Kinlo
ch R.A.ら (1990) Dev. Biol. 142:414-421) 、ヒト(C
hamberlin M.E. (1990) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 8
7:6014-6018) 、その他本出願人によりブタ、イヌ、ネ
コ由来のものが明らかとなっている。またZP−2と呼
ばれる成分に関しても、ZP−2に対する抗体がin vi
tro で授精を阻害することが報告されており(East I.
J. ら (1985) Dev. Biol. 109:268-273)、ZP−3と
同様にそのワクチン効果が考えられる。ZP−2に関し
ては、マウス(Liang Li-Fang ら (1990) Mol. Cell. B
iol. 10:1507-1515 )由来のものが明らかとなってい
る。
The egg zona pellucida protein component constituting the egg zona pellucida has been subjected to gene cloning to clarify the amino acid sequence and the nucleotide sequence. ZP-3
As for the ingredients called "Mouse (Ringuette MJ
(1988) Dev. Biol. 127: 287-265), Hamster (Kinlo)
ch RA et al. (1990) Dev. Biol. 142: 414-421), human (C
hamberlin ME (1990) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 8
7: 6014-6018), and others derived from pigs, dogs, and cats have been clarified by the applicant. Also with respect to components called ZP-2, antibodies to ZP-2 is in vi
It has been reported to inhibit fertilization in vitro (East I.
J. et al. (1985) Dev. Biol. 109: 268-273), the vaccine effect is considered similar to ZP-3. Regarding ZP-2, the mouse (Liang Li-Fang et al. (1990) Mol. Cell. B
iol. 10: 1507-1515) has been clarified.

【0004】[0004]

【発明が解決しようとする課題】天然の卵透明帯蛋白質
をワクチン抗原として用いるためには大量の卵細胞を得
ることが必要である。しかし、そのためにワクチン対象
動物の卵透明帯を必要量得ることは不可能である。又、
天然の卵透明帯を精製する場合、他の卵巣組織の混在す
る危険性がありこれが副作用の原因となる可能性があ
る。これに対して遺伝子工学的手法やペプチド合成とい
った手法で卵透明帯を人工合成できるようにすれば高純
度の卵透明帯蛋白質を安価に製造することが可能とな
る。
In order to use the natural egg zona pellucida protein as a vaccine antigen, it is necessary to obtain a large amount of egg cells. However, it is not possible to obtain the required amount of egg zona pellucida in vaccinated animals for that reason. or,
When purifying natural egg zona pellucida, there is a risk of mixing with other ovarian tissues, which can cause side effects. On the other hand, if the egg zona pellucida can be artificially synthesized by a method such as a genetic engineering method or a peptide synthesis method, a highly pure egg zona pellucida protein can be produced at low cost.

【0005】従って、本発明の目的は、このイヌ卵透明
帯成分−2(CZP2)の人工合成に必要なDNA配列
及びアミノ酸配列を提供することである。
Therefore, an object of the present invention is to provide a DNA sequence and an amino acid sequence necessary for the artificial synthesis of this dog egg zona pellucida component-2 (CZP2).

【0006】[0006]

【課題を解決するための手段】本発明は、配列番号1に
示されるイヌ卵透明帯CZP2蛋白質のアミノ酸配列の
全部又は一部をコードする塩基配列を含むDNAを提供
する。
The present invention provides a DNA containing a nucleotide sequence encoding all or part of the amino acid sequence of the dog egg zona pellucida CZP2 protein shown in SEQ ID NO: 1.

【0007】イヌ卵透明帯CZP2(Canine Zona Pell
ucida 2 )遺伝子の全塩基配列及びそれから推定される
アミノ酸配列の決定は、ポリメラーゼ連鎖反応(PC
R)法を用いてイヌ卵巣よりCZP2の全遺伝子をクロ
ーニングすることによって行なわれる。この目的のため
には、一般的な組換えDNA技術、例えば、組織からの
全RNAの抽出、オリゴdTセルロースによるmRNA
の精製、mRNAからのcDNA合成、PCR増幅、表
現型マーカーを含むベクター内へのDNAの挿入、コン
ピテント宿主細胞の形質転換、コロニーライブラリーか
らの目的cDNAクローンのスクリーニング、陽性cD
NAクローンからのベクターDNAの単離、DNAの配
列決定などが使用される(例えば、Maniatisら、Molecu
lar Cloning:A Laboratory Manual (1982); Wardら、J.
Virol., 9:61(1972); Saikら、 Science 230:1350-1354
(1985))。CZP2遺伝子のクローニングの詳細につい
ては、後記実施例で述べられる。ここでは、mRNAか
ら合成されたcDNAを鋳型DNAとしてPCRを実施
するが、このとき使用するプライマーを、3つの群すな
わちCZP2遺伝子の中央領域、5’側領域及び3’側
領域に各々アニーリング可能なプライマー群に分けてP
CRを行ない、各領域遺伝子をクローニングする方法を
とった。これにより、それぞれ、配列番号1に示される
ヌクレオチド75〜520(CZP275-520);ヌクレ
オチド42〜103(CZP242-103)及びヌクレオチ
ド1〜65(CZP21-65);並びにヌクレオチド48
7〜713(CZP2487-713 )の各塩基配列が決定さ
れ、従って、イヌ卵透明帯CZP2蛋白質をコードする
全DNA配列が判明した。このDNA配列は、配列番号
1に示される2216bpのヌクレオチド配列から成
り、そのうちCZP2リーディングフレームはヌクレオ
チド番号46〜2184までの2139bpで構成され
る。このDNA配列から推定されるアミノ酸配列も同様
に配列番号1に示されており、Met1 ……His713
の713アミノ酸から構成される。
Canine Zona Pell
The determination of the entire nucleotide sequence of the ucida 2) gene and the amino acid sequence deduced therefrom is carried out by the polymerase chain reaction (PC
R) method is used to clone the entire CZP2 gene from dog ovary. For this purpose, common recombinant DNA techniques such as extraction of total RNA from tissues, mRNA with oligo dT cellulose are used.
, CDNA synthesis from mRNA, PCR amplification, insertion of DNA into vector containing phenotypic marker, transformation of competent host cells, screening of target cDNA clone from colony library, positive cD
Isolation of vector DNA from NA clones, DNA sequencing and the like are used (eg Maniatis et al., Molecu.
lar Cloning: A Laboratory Manual (1982); Ward et al., J.
Virol., 9:61 (1972); Saik et al., Science 230: 1350-1354.
(1985)). Details of cloning of the CZP2 gene will be described in Examples below. Here, PCR is carried out using cDNA synthesized from mRNA as a template DNA, and the primers used at this time can be annealed to three groups, that is, the central region, 5'side region and 3'side region of the CZP2 gene, respectively. Divide into primer groups P
CR was performed, and a method of cloning each region gene was adopted. Thereby, nucleotides 75 to 520 (CZP2 75-520 ) shown in SEQ ID NO: 1; nucleotides 42 to 103 (CZP2 42-103 ) and nucleotides 1 to 65 (CZP2 1-65 ); and nucleotide 48, respectively.
The nucleotide sequences of 7 to 713 (CZP2 487-713 ) were determined, and thus the entire DNA sequence encoding the dog egg zona pellucida CZP2 protein was identified. This DNA sequence consists of the 2216 bp nucleotide sequence shown in SEQ ID NO: 1, of which the CZP2 reading frame is composed of 2139 bp from nucleotide number 46 to 2184. The amino acid sequence deduced from this DNA sequence is also shown in SEQ ID NO: 1, and Met 1 ... His 713
Of 713 amino acids.

【0008】本発明のDNAの具体例は、配列番号1に
示されるヌクレオチド番号46〜2184の全部又は一
部から成るDNAである。その他の例として、配列番号
1の配列中、アミノ酸の遺伝暗号の縮重に基づく対応す
る全ての塩基配列を含む全ての可能なヌクレオチド配列
が挙げられる。これらのヌクレオチド配列も、本発明の
一部を構成する。
A specific example of the DNA of the present invention is DNA comprising all or part of nucleotide numbers 46 to 2184 shown in SEQ ID NO: 1. Other examples include all possible nucleotide sequences in the sequence SEQ ID NO: 1 including all corresponding base sequences based on the degeneracy of the amino acid genetic code. These nucleotide sequences also form part of the invention.

【0009】本明細書中「ペプチド」なる用語は、短鎖
及び長鎖ペプチドの両方を意味する。ここで、長鎖ペプ
チドは蛋白質も包含する。
The term "peptide" as used herein refers to both short and long peptides. Here, the long-chain peptide also includes a protein.

【0010】上記定義の本発明のDNAを発現すること
により、CZP2関連ペプチドを製造することができ
る。例えば、該ペプチドの製造方法は、配列番号1に示
されるアミノ酸配列の全部若しくは一部をコードするヌ
クレオチド配列から成るDNA又は該ヌクレオチド配列
を含むDNAを複製可能な適切な発現ベクターに組み込
む工程、得られた発現ベクターで適切な宿主を形質転換
する工程、得られた形質転換体を適切な培地中で培養
し、前記DNAを発現させる工程、及び得られた組換え
型ペプチドを回収する工程、を包含する。
By expressing the above-defined DNA of the present invention, a CZP2-related peptide can be produced. For example, the method for producing the peptide includes a step of incorporating a DNA consisting of a nucleotide sequence encoding all or a part of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 1 or a step of incorporating the DNA containing the nucleotide sequence into an appropriate expression vector capable of replication. Transforming an appropriate host with the obtained expression vector, culturing the obtained transformant in an appropriate medium to express the DNA, and collecting the obtained recombinant peptide. Include.

【0011】この場合、本発明のDNAを発現させるた
めのベクターは、ファージ又はプラスミドであり、通
常、複製部位と選択マーカー配列を含む。複製部位は、
形質転換される宿主細胞に適合するプロモーター、ター
ミネーター、複製起点、リボソーム結合部位などの配列
を適宜含み得る。特に、プロモーターとしては、原核生
物を宿主とする場合には常用のlacプロモーター、t
rpプロモーター、バクテリオファージλプロモーター
等が、酵母を宿主とする場合にはアルコールデヒドロゲ
ナーゼや解糖系酵素類に対するプロモーター等が、動物
細胞を宿主とする場合にはSV40ウイルスプロモータ
ーのようなウイルスプロモーター等が挙げられる。ま
た、選択マーカー配列としては、アンピシリン、テトラ
サイクリン耐性遺伝子等の抗生物質耐性遺伝子が常用さ
れる。発現すべき外来遺伝子は、プロモーターの下流に
挿入される。
In this case, the vector for expressing the DNA of the present invention is a phage or a plasmid, and usually contains a replication site and a selectable marker sequence. The replication site is
Sequences such as a promoter, a terminator, an origin of replication, a ribosome binding site, etc. which are compatible with the host cell to be transformed can be contained as appropriate. In particular, as a promoter, when a prokaryote is used as a host, a commonly used lac promoter, t
An rp promoter, a bacteriophage λ promoter, etc., a promoter for alcohol dehydrogenase and glycolytic enzymes when yeast is used as a host, and a viral promoter such as SV40 virus promoter when an animal cell is used as a host. Can be mentioned. As the selectable marker sequence, antibiotic resistance genes such as ampicillin and tetracycline resistance genes are commonly used. The foreign gene to be expressed is inserted downstream of the promoter.

【0012】また、宿主細胞は、原核及び真核生物の両
方を使用し得る。原核生物には、大腸菌、枯草菌、放線
菌等の細菌類が含まれ、また、真核生物には、酵母、昆
虫細胞、植物細胞、動物細胞等が含まれる。これらの宿
主細胞は、対象とするペプチドの糖鎖構造の有無に応じ
て適宜選択され、一般に、糖鎖を含むペプチドを合成し
たい場合には、真核生物が利用される。しかし、その糖
鎖構造は、必要な免疫能が達成される限り、対象とする
天然ペプチドと必ずしも一致していなくてもよい。
In addition, the host cell may use both prokaryote and eukaryote. Prokaryotes include bacteria such as Escherichia coli, Bacillus subtilis and actinomycetes, and eukaryotes include yeast, insect cells, plant cells, animal cells and the like. These host cells are appropriately selected depending on the presence or absence of a sugar chain structure of the target peptide, and generally, a eukaryote is used when it is desired to synthesize a peptide containing a sugar chain. However, the sugar chain structure thereof does not necessarily have to match the natural peptide of interest as long as the necessary immunocompetence is achieved.

【0013】あるいは、CZP2関連ペプチドは化学的
ペプチド合成によっても作り得るだろう。ペプチド合成
に関しては、生化学実験講座1タンパク質の化学IV−
化学修飾とペプチド合成−第205〜495頁、197
7年(日本生化学会編)に記載の技術等が使用可能であ
る。
Alternatively, the CZP2-related peptides could be made by chemical peptide synthesis. Regarding peptide synthesis, Biochemistry Laboratory 1 Protein Chemistry IV-
Chemical modification and peptide synthesis-p. 205-495, 197.
The technology described in the 7th year (ed. By the Japanese Biochemical Society) can be used.

【0014】上述の方法により得られるCZP2関連ペ
プチドは、これを抗原として含むイヌの避妊ワクチンに
使用することができる。ワクチンは、ペプチドの他に通
常、必要に応じて水酸化アルミニウム、リン酸カルシウ
ム、ムラミルジペプチド、Freundの完全又は不完
全アジュバント等のアジュバント、油類及び適切な希釈
剤を含み、溶液、乳濁又は懸濁形態で処方され得る。低
アミノ酸数の抗原ペプチドの場合には、免疫能を高める
ためにKLH(Keyhole Limpet Hemocyanin )のような
異種蛋白質を結合してもよい。
The CZP2-related peptide obtained by the above-mentioned method can be used in a dog contraceptive vaccine containing the peptide as an antigen. In addition to the peptides, the vaccine usually contains aluminum hydroxide, calcium phosphate, muramyl dipeptide, adjuvants such as Freund's complete or incomplete adjuvant, oils and a suitable diluent, if necessary, and the solution, emulsion or suspension is used. It can be formulated in a turbid form. In the case of an antigen peptide having a low amino acid number, a heterologous protein such as KLH (Keyhole Limpet Hemocyanin) may be bound to enhance the immunocompetence.

【0015】[0015]

【実施例】本発明を以下の非限定的実施例によりさらに
詳細に説明する。
The invention is illustrated in more detail by the following non-limiting examples.

【0016】CZP2遺伝子のクローニング 1.CZP2の中央領域(CZP275-520 )遺伝子のク
ローニング PCRに用いる鋳型DNAは次のようにして調製した。
Cloning of CZP2 gene 1. CZP2 central region (CZP2 75-520 ) gene
The template DNA used for the rolling PCR was prepared as follows.

【0017】まず最初にイヌ卵巣よりmRNAを抽出し
た。抽出操作は、イヌ卵巣を液体窒素下でブレンダーを
用いパウダー状に破砕し、これを、市販のmRNA抽出
用キット(FastTrack mRNA ISOLATION KIT, Invitroge
n)の抽出方法に従いイヌ卵巣mRNAを調製した。こ
のmRNAを市販のcDNA合成キット(RiboClone cD
NA Synthesis System, Promega)を用いてcDNAへと
変換しPCRの鋳型DNAとした。
First, mRNA was extracted from dog ovary. The extraction procedure was to crush dog ovaries into powder using a blender under liquid nitrogen, and use a commercially available mRNA extraction kit (FastTrack mRNA ISOLATION KIT, Invitroge
Dog ovarian mRNA was prepared according to the extraction method of n). A commercially available cDNA synthesis kit (RiboClone cD
It was converted into cDNA using NA Synthesis System, Promega) and used as a template DNA for PCR.

【0018】mRNA抽出 凍結粉末状の卵巣1gに対しキット中のLysis溶液
10mlを加えDounce Homogenizer
でホモジナイズ(10〜12ストローク)する。これを
さらに18Gの注射筒を通過させた後45℃で2時間ゆ
っくり振盪させる。インキュベート終了後4000×
g、10分間遠心し、沈殿をとらないように注意して上
清を回収する。この上清に0.5Mとなるように5M
NaCl溶液を加え、混合後、生じた白沈殿を21Gの
注射筒に通して切断する。これに、別途にキット内のB
inding溶液で調製してあるオリゴdTセルロース
50mgを加え室温で1時間転倒混和して反応させる。
反応終了後2000×g、10分間遠心しオリゴdTセ
ルロースを回収する。このセルロースペレットを再度2
0mlのBinding溶液に懸濁させて洗う。この操
作を3回繰り返してオリゴdTセルロースを洗浄する。
こうして洗浄の終了したセルロースをキットについてい
るスピンカラムにつめる。このスピンカラムにつめた段
階でさらにBinding溶液で洗い、スピンカラムを
2000×g、10秒間遠心し回収溶液のOD280
0.05以下になるまで繰り返し洗う。洗浄終了後Bi
nding溶液を遠心除去し、キット内の溶出溶液0.
2mlを加えてセルロースペレットを十分に懸濁させ
る。2000×g、10秒間遠心し溶出液を回収する、
再びこのセルロースペレットに0.15mlの溶出溶液
を加え再度懸濁後2000×g、1分間遠心して完全に
溶出液をセルロースペレットより回収する。この2回の
溶出操作で0.35mlの回収液が得られる、これにキ
ットについている2M酢酸ナトリウム溶液を0.15容
加え、さらに100%エタノールを2.5容追加して混
合後、−70℃に凍るまで放置する。凍結後16000
×g、15分間遠心しmRNAを回収する。冷70%エ
タノールで2回mRNAペレットを洗浄、真空エバポレ
ーターで乾燥させた後、適当量の滅菌水に溶解する。一
部を適当に希釈してOD320-220 間のスキャンニングを
行ないOD260 の吸光度値よりmRNA量を算出する。
こうして1gのイヌ卵巣より7.7μgのmRNAを精
製した。取り扱う試薬、器具類はすべてRNaseによ
る分解を防ぐための処理を施しておく。
MRNA extraction 10 ml of the Lysis solution in the kit was added to 1 g of frozen powdered ovaries, and Dounce Homogenizer was added.
Homogenize (10 to 12 strokes). This is further passed through an 18 G syringe and slowly shaken at 45 ° C. for 2 hours. 4000x after incubation
g, centrifuge for 10 minutes, and collect the supernatant, taking care not to collect a precipitate. Add 5M to this supernatant to 0.5M
After adding the NaCl solution and mixing, the resulting white precipitate is cut through a 21G syringe. In addition to this, B in the kit separately
50 mg of oligo dT cellulose prepared with an inding solution is added, and mixed by inversion at room temperature for 1 hour to react.
After completion of the reaction, the mixture is centrifuged at 2000 xg for 10 minutes to collect oligo dT cellulose. Repeat this cellulose pellet for 2
Suspend in 0 ml of Binding solution and wash. This operation is repeated 3 times to wash the oligo dT cellulose.
The washed cellulose is packed in the spin column included in the kit. At the stage of packing in this spin column, the spin column is further washed with a binding solution, and the spin column is centrifuged at 2000 × g for 10 seconds, and repeatedly washed until the OD 280 of the recovered solution becomes 0.05 or less. After cleaning Bi
Centrifuge off the Nding solution and remove the elution solution in the kit.
Add 2 ml to fully suspend the cellulose pellets. Collect the eluate by centrifugation at 2000 xg for 10 seconds,
Again, 0.15 ml of the elution solution was added to this cellulose pellet, and the suspension was resuspended and centrifuged at 2000 × g for 1 minute to completely recover the eluate from the cellulose pellet. With these two elution operations, 0.35 ml of recovered liquid is obtained. To this, 0.15 volume of the 2M sodium acetate solution included in the kit is added, and 2.5 volume of 100% ethanol is further added, and after mixing, -70 Let stand until it freezes to ℃. 16000 after freezing
Centrifuge at xg for 15 minutes to collect mRNA. The mRNA pellet is washed twice with cold 70% ethanol, dried with a vacuum evaporator, and then dissolved in an appropriate amount of sterile water. A portion is appropriately diluted and scanning is performed between OD 320 and 220, and the amount of mRNA is calculated from the absorbance value of OD 260 .
Thus, 7.7 μg of mRNA was purified from 1 g of dog ovary. Treat all reagents and instruments handled to prevent decomposition by RNase.

【0019】cDNA合成 mRNA1μgをdTプライマー0.5μgと混合後7
0℃、5分間インキュベート、その後室温に戻しこれに
キットのファーストストランド合成試薬(ファーストス
トランドバッファー,ジチオスレイトール溶液,デオキ
シヌクレオシド三リン酸混液,リボヌクレアーゼインヒ
ビター溶液,ピロリン酸ナトリウム溶液,AMV逆転写
酵素)を加え、42℃、1時間反応した。次にキットの
セカンドストランド合成試薬(セカンドストランドバッ
ファー,ジチオスレイトール,NAD溶液,DNAポリ
メラーゼI,RNaseH,リガーゼ)を追加して14
℃,2時間反応させた。反応終了後、70℃,10分間
の加温処理をしたあと、氷冷し、さらにこれにT4DN
AポリメラーゼIを加え37℃,10分間反応させ、
0.2M EDTAで反応を終了させる。こうして作製
したcDNAを次のPCRの鋳型DNAとして使用す
る。
After mixing 1 μg of cDNA synthetic mRNA with 0.5 μg of dT primer, 7
Incubate at 0 ° C for 5 minutes, then return to room temperature and use the first-strand synthesis reagent of the kit (first-strand buffer, dithiothreitol solution, deoxynucleoside triphosphate mixture, ribonuclease inhibitor solution, sodium pyrophosphate solution, AMV reverse transcriptase). Was added and reacted at 42 ° C. for 1 hour. Next, the second strand synthesis reagent (second strand buffer, dithiothreitol, NAD solution, DNA polymerase I, RNaseH, ligase) of the kit is added to add 14
The reaction was carried out at ℃ for 2 hours. After the reaction was completed, the mixture was heated at 70 ° C for 10 minutes, cooled with ice, and then added with T4DN.
A polymerase I was added and reacted at 37 ° C for 10 minutes,
The reaction is terminated with 0.2M EDTA. The cDNA thus prepared is used as a template DNA for the next PCR.

【0020】PCRによる遺伝子クローニング PCR反応は、市販のPCRキット試薬(GeneAmp DNA
Amplification Reagent Kit, Perkin Elmer Cetus )及
びPCR自動化装置(DNA Thermal Cycler, Perkin Elm
er Cetus)を用いた。
Gene cloning by PCR The PCR reaction is performed using a commercially available PCR kit reagent (GeneAmp DNA
Amplification Reagent Kit, Perkin Elmer Cetus) and PCR automation equipment (DNA Thermal Cycler, Perkin Elm
er Cetus) was used.

【0021】プライマーは、MZP2(Mouse Zona Pel
lucida; Liang. L. F., Chamow. S.M & Dean, J. (199
0) Mol. Cell. Biol. 10, 1507-1515)とPZP2(本出
願人が一部クローニング済みで現在クローニング継続中
のもの)の分かっている配列から、以下の2つのプライ
マーを作製した。プライマーの合成には自動DNA合成
機(Cyclone Plus DNA Synthesizer, Milli Gen/Biosea
rch )を使用した。
The primer is MZP2 (Mouse Zona Pel
lucida; Liang. LF, Chamow. SM & Dean, J. (199
0) Mol. Cell. Biol. 10, 1507-1515) and PZP2 (partially cloned by the applicant of the present invention and currently being cloned), the following two primers were prepared. An automated DNA synthesizer (Cyclone Plus DNA Synthesizer, Milli Gen / Biosea) was used for primer synthesis.
rch) was used.

【0022】[0022]

【表1】 (但し、[]はミックスを表わす。) イヌ卵巣cDNAとプライマー1及びプライマー2とで
PCRを実施した。反応条件は、94℃−30秒,55
℃−1分,72℃−2分を1サイクルとし、これを40
サイクル実施後72℃−7分を1回追加する。反応終了
後、等量のクロロホルムを加えてミネラルオイルを反応
溶液より除去し、これに1/10容量の3M酢酸ナトリ
ウム(pH5.2)と3倍容量の冷エタノールを加えて
DNAをエタノール沈殿させる。沈殿DNAは乾燥後、
適量の水に溶解させKpnIおよびSalIで完全に消
化させる。これを低融点アガロースゲル電気泳動に流し
1200bp程度のDNAを切り出す。ゲルからのDN
Aの抽出はGENECLEAN II(BIO 101 )を用いる。このD
NAを先にKpnI,SalIで消化して同様にアガロ
ースゲルより精製してあるpUC18ベクターの大断片
にライゲーションキット(宝酒造)を用いて連結させ、
大腸菌JM109に形質転換させる(この形質転換体を
pCZP275-520/JM109と称する)。これを、ア
ンピシリン含有LBプレートに播き、生えてきたコロニ
ーを5ml培養し QIAGEN Hi PurityPlasmid Kit(QIAGE
N) でプラスミドを精製した。精製したプラスミドはそ
の一部をKpnI,SalI消化して目的サイズのDN
Aが組み込まれていることの確認に用い、残りを通常の
2本鎖シークエンスに用いた。シークエンスはプラスミ
ドをアルカリ処理後ジデオキシ終止鎖法DNAシークエ
ンスキット(SEQUENASEVERSION 2.07-deaza-dGTP Kit,
USB)を用いて決定した。その結果以下の配列が決定さ
れた。
[Table 1] (However, [] represents a mix.) PCR was performed with the dog ovary cDNA and the primer 1 and the primer 2. The reaction condition is 94 ° C for 30 seconds, 55
℃ -1 minute, 72 ℃ -2 minutes as 1 cycle, this 40
After the cycle is performed, 72 ° C.-7 minutes is added once. After completion of the reaction, an equal amount of chloroform is added to remove the mineral oil from the reaction solution, and 1/10 volume of 3M sodium acetate (pH 5.2) and 3 times volume of cold ethanol are added thereto to precipitate the DNA with ethanol. . After drying the precipitated DNA,
It is dissolved in an appropriate amount of water and completely digested with KpnI and SalI. This is subjected to low melting point agarose gel electrophoresis to cut out a DNA of about 1200 bp. DN from the gel
GENECLEAN II (BIO 101) is used for extraction of A. This D
NA was previously digested with KpnI and SalI and ligated to a large fragment of pUC18 vector which was similarly purified from agarose gel using a ligation kit (Takara Shuzo),
E. coli JM109 is transformed (this transformant is called pCZP2 75-520 / JM109). This is seeded on an LB plate containing ampicillin, and 5 ml of the grown colony is cultured and the QIAGEN Hi PurityPlasmid Kit (QIAGE
N) was used to purify the plasmid. A part of the purified plasmid was digested with KpnI and SalI to obtain the desired size DN.
It was used to confirm that A was incorporated, and the rest was used for a normal double-stranded sequence. Sequencing was carried out by treating the plasmid with an alkali, and then dideoxy termination chain method DNA sequence kit (SEQUENASEVERSION 2.07-deaza-dGTP Kit,
USB). As a result, the following sequences were determined.

【0023】決定されたCZP275-520の塩基配列:The determined nucleotide sequence of CZP2 75-520 :

【0024】[0024]

【表2】 5’CTTCTGTGGTGGATCCATTTAGTTTTGAATTGTTGAACTGTACTTCTATCCTGGACCCAGAAAGCTCA CCCTGAAGGCCCCATATGAGACCTGTAGCAGGAGAGTGCTTGGCCAGCATCAGATGGCCATCAGACTCACGG ACAACAATGCTGCTTCAAGACATAAGGCTTTCATGTATCAGATCAGCTGTCCAGTTATGCAAACAGAAGAAA CCCATGAGCATGCAGGATCCACAATCTGCACAAAAGATTCCATGTCTTTTACCTTTAACATTATTCCTGGCA TGGCTGATGAAAATAGCAATCCCAGTGGTGGGAAATGGATGATGGAGGTTGATGATGCAAAAGCTCAAAATC TGACTCTTCGGGAGGCCTTGATGCAAGGATATAATTTCCTGTTTGATAGCCACAGGCTCAGTGTCCAAGTGT CATTCAATGCCACTGGAGTCACTCACTACATGCAAGGTAACAGTCACCTCTACACAGTGCCTCTGAAGCTTA TACACACATCTCCTGGGCAGAAGATCATCTTAACAACACGAGTACTTTGTATGTCAGATCCCGTGACCTGTA ACGCCACACACATGACCCTCACCATACCAGAGTTTCCTGGGAAACTACAGTCTGTGAGATTTGAAAACACGA ACTTTGCTGTAAGCCAGCTGCACAACCATGGGATTGATAAAGAAGAATTAAACGGCTTGAGGTTACACTTCA GCAAATCTCTTCTCAAAATGAACTCCTCTGAAAAATGCTACCCTATCAGTTCTACTTAGCATCTCTCAGGCT GACCTTTGAACGGGACACGGTTTCCACAGTGGTTTATCCTGAGTGTGTTTGTGAGCCACCAGTTACTATAGT TACAGGTGACCTGTGTACCCAGGATGGGTTTATGGATGTCAAGGTCTACAGCCACCAAACAAAACCAGCTCT AAACTTGGATACCCTCGGAGTGGGAGACTCCTCCTGCCAACCTACTTTCAAGGCTCCATCACAAGGGTTAAC ACTGTTTCACATCCCCCTAAATGGATGTGGAACAAGACTTAAGTTCAAAGGTGACACAGTCATCTATGAAAA TGAAATACATGCTCTCTGGACAGATCTCCCTCCAAGCACAATTTCCAGAGATAGTGAATTCAGAATGACTGT GAAGTGCCATTACAGCAGAGATGACCTGCTGATAAATACCAATGTCCAAAGTCTTCCTCCTCCCGTGGCCTC AGTGAGGCCTGGTCCACTTGCCTTAATCCTGCAAACCTACCCAGATAAATCCTATTTGCGACCCTATGGGGA TAAGGGGTATCCTGTGGTGAGATATCTCCGCCAACCAATTTAC 3’ 2.3’側領域遺伝子のクローニング 次の4個のプライマーとイヌ卵巣cDNAを用いてCZ
P2の残り3’側遺伝子をクローニングし配列を決定し
た。
[Table 2] 5'CTTCTGTGGTGGATCCATTTAGTTTTGAATTGTTGAACTGTACTTCTATCCTGGACCCAGAAAGCTCA CCCTGAAGGCCCCATATGAGACCTGTAGCAGGAGAGTGCTTGGCCAGCATCAGATGGCCATCAGACTCACGG ACAACAATGCTGCTTCAAGACATAAGGCTTTCATGTATCAGATCAGCTGTCCAGTTATGCAAACAGAAGAAA CCCATGAGCATGCAGGATCCACAATCTGCACAAAAGATTCCATGTCTTTTACCTTTAACATTATTCCTGGCA TGGCTGATGAAAATAGCAATCCCAGTGGTGGGAAATGGATGATGGAGGTTGATGATGCAAAAGCTCAAAATC TGACTCTTCGGGAGGCCTTGATGCAAGGATATAATTTCCTGTTTGATAGCCACAGGCTCAGTGTCCAAGTGT CATTCAATGCCACTGGAGTCACTCACTACATGCAAGGTAACAGTCACCTCTACACAGTGCCTCTGAAGCTTA TACACACATCTCCTGGGCAGAAGATCATCTTAACAACACGAGTACTTTGTATGTCAGATCCCGTGACCTGTA ACGCCACACACATGACCCTCACCATACCAGAGTTTCCTGGGAAACTACAGTCTGTGAGATTTGAAAACACGA ACTTTGCTGTAAGCCAGCTGCACAACCATGGGATTGATAAAGAAGAATTAAACGGCTTGAGGTTACACTTCA GCAAATCTCTTCTCAAAATGAACTCCTCTGAAAAATGCTACCCTATCAGTTCTACTTAGCATCTCTCAGGCT GACCTTTGAACGGGACACGGTTTCCACAGTGGTTTATCCTGAGTGTGTTTGTGAGCCACCAGTTACTATAGT TACAGGTGACCTGTGTACCCAGGATGGGTTTATGGATGTCAAGGTCTACAGCCACCAAACAAAACCAGCTCT AAACTTGGATACCCTCGGAGTGGGAGACTCCTCCTGCC AACCTACTTTCAAGGCTCCATCACAAGGGTTAAC ACTGTTTCACATCCCCCTAAATGGATGTGGAACAAGACTTAAGTTCAAAGGTGACACAGTCATCTATGAAAA TGAAATACATGCTCTCTGGACAGATCTCCCTCCAAGCACAATTTCCAGAGATAGTGAATTCAGAATGACTGT GAAGTGCCATTACAGCAGAGATGACCTGCTGATAAATACCAATGTCCAAAGTCTTCCTCCTCCCGTGGCCTC AGTGAGGCCTGGTCCACTTGCCTTAATCCTGCAAACCTACCCAGATAAATCCTATTTGCGACCCTATGGGGA TAAGGGGTATCCTGTGGTGAGATATCTCCGCCAACCAATTTAC 3 '2. Cloning of 3'side region gene CZ using the following four primers and dog ovary cDNA
The remaining 3'side gene of P2 was cloned and sequenced.

【0025】先に決定したCZP275-520の配列より次
のプライマー3,4,5を作製し、またmRNAのポリ
A配列よりプライマー6を作製した。
The following primers 3, 4 and 5 were prepared from the sequence of CZP2 75-520 previously determined, and primer 6 was prepared from the poly A sequence of mRNA.

【0026】[0026]

【表3】 これらのプライマーは、自動DNA合成機を用いて作製
した。また、PCR条件は以下のとおりである。
[Table 3] These primers were prepared using an automatic DNA synthesizer. The PCR conditions are as follows.

【0027】[0027]

【表4】1回目のPCR:プライマー3およびプライマ
ー6 鋳型DNA:イヌ卵巣cDNA PCR条件:94℃−30秒、45℃−1分、72℃−
2分、30回 72℃−5分、1回 2回目のPCR:プライマー4およびプライマー6 鋳型DNA:1回目PCR産物 PCR条件:94℃−30秒、50℃−1分、72℃−
2分、30回 72℃−5分、1回 3回目のPCR:プライマー5およびプライマー6 鋳型DNA:2回目PCR産物 PCR条件:2回目PCR条件と同じ。
[Table 4] First PCR: Primer 3 and Primer 6 Template DNA: Canine ovary cDNA PCR conditions: 94 ° C-30 seconds, 45 ° C-1 minute, 72 ° C-
2 minutes, 30 times 72 ° C-5 minutes, once 2nd PCR: primer 4 and primer 6 Template DNA: 1st PCR product PCR conditions: 94 ° C-30 seconds, 50 ° C-1 minute, 72 ° C-
2 minutes, 30 times 72 ° C.-5 minutes, 1 time Third PCR: Primer 5 and Primer 6 Template DNA: Second PCR product PCR conditions: Same as second PCR conditions.

【0028】3回のPCR産物の一部を2%アガロース
ゲルにて電気泳動を行ない増幅されたDNAバンドをエ
チジウムブロマイド染色で確認する。その結果3回目の
PCR産物に700bp程度のバンドが検出された。こ
の3回目のPCR産物をエタノール沈殿後、EcoR
I,SalI消化した後、低融点アガロースゲルにて電
気泳動を行ないゲルより目的の700bpのDNAをGE
NECLEAN II(BIO 101 )を用いて精製した。この精製し
たDNAをあらかじめ同じEcoRI,SalIで消化
してあるpUC18の大断片にライゲーションキット
(宝酒造)を用いて連結させた。大腸菌JM109に形
質転換を行なった後、アンピシリン含有LBプレートに
播き生えてきた形質転換株を拾い上げる(この形質転換
体をpCZP2487-713 /JM109と称する)。これ
を5mlアンピシリン含有LB培地で培養し、プラスミ
ドを精製(QIAGEN Hi Purity Plasmid Kit)した。精製
したプラスミドはその一部をEcoRI,SalI消化
して目的サイズのDNAが組み込まれていることの確認
に用い、残りを通常の2本鎖シークエンスに用いた。シ
ークエンスはプラスミドをアルカリ処理後ジデオキシ終
止鎖法のDNAシークエンスキット(SEQUENASE VERSIO
N 2.07-deaza-dGTP Kit, USB)を用いて決定した。その
結果、以下の配列が決定された。
A part of the PCR products obtained three times is electrophoresed on a 2% agarose gel to confirm the amplified DNA band by ethidium bromide staining. As a result, a band of about 700 bp was detected in the third PCR product. This third PCR product was ethanol precipitated and then EcoR
After digestion with I and SalI, electrophoresis was carried out on a low melting point agarose gel and the desired 700 bp DNA was analyzed by GE from the gel.
Purified using NECLEAN II (BIO 101). This purified DNA was ligated to a large fragment of pUC18 which had been previously digested with the same EcoRI and SalI using a ligation kit (Takara Shuzo). After transforming Escherichia coli JM109, the transformant that has been seeded on the LB plate containing ampicillin is picked up (this transformant is called pCZP2 487-713 / JM109). This was cultured in LB medium containing 5 ml ampicillin, and the plasmid was purified (QIAGEN Hi Purity Plasmid Kit). A part of the purified plasmid was digested with EcoRI and SalI and used to confirm that the DNA of the desired size was incorporated, and the rest was used for a normal double-stranded sequence. Sequencing is carried out by treating the plasmid with an alkali and then using the dideoxy termination chain method DNA sequence kit (SEQUENASE VERSIO
N 2.07-deaza-dGTP Kit, USB). As a result, the following sequences were determined.

【0029】決定されたCZP2487-713 の塩基配列:The determined nucleotide sequence of CZP2 487-713 :

【0030】[0030]

【表5】 5’CACTTGCCTTAATCCTGCAAACCTACCCAGATAAATCCTATTTGCGACCCTATGGGGATAAGGAGTAT CCTGTGGTGAGATACCTCCGCCAACCAATTTACCTGGAAGTGAAAGTCCTAAATAGGGCTGACCCCAACATC AAGCTGGTCTTAGATGATTGCTGGGCAACACCCACCATGGACCCAGCCTCACTCCCCCAGTGGAATATTGTC ATGGATGGCTGTGAATACAATCTGGACAACTACAGAACGACCTTCCATCCAGTTGGCTCCTCTGTGACCTAC CCTACTCACTATCGGAGGTTTGATGTGAAGACCTTTGCCTTTATAGCAGAGGCCCAAGTGCTTGCTAGCCTG GTCTACTTCCACTGCCCCGCATTAATCTGCAATCCGACTGTCTCCTGACTCCCCTCTGTGTTCTGTGACTTG CCCTGTATCATCCAGGCACAGGCGAGCCACAGGCAGTACTGCAGAAGAGAAGATGATAGTAAGTCTCCCGGG ACCCATCCTCCTGTTGGCAGACAGCTCTTCACTCAGAGATGGTGTGGACTCAAAAGGGCACAGGGCTGCTGG ATATGTTGCTTTTAAAACTGTAGTGGCTGTGGCTGCCTTAGCAGGCCTTGTGGCTGCTCTAGGTCTCATCAT CTACCTGCGTAAGAAAAGAACCATGGTGTTAAATCACTAAGGATTTTCAAATAAAGTGTTTGTTAAAGT 3 ’ 3.5’側領域遺伝子のクローニング CZP2の5’側領域はCZP275-520の配列をもとに
してcDNAを作製し、これを鋳型としてPCRを行な
いクローニングした(Michael A. Frohman, Michael K.
Dush,及び Gail R. Martin (1988) Proc. Natl. Acad.
Sci. USA 85,8998-9002; Osamu Ohara, Robert L. Dor
it,及び Walter Gilbert (1989) Proc.Natl. Acad. Sc
i. USA 86, 5673-5677 )。
[Table 5] 5'CACTTGCCTTAATCCTGCAAACCTACCCAGATAAATCCTATTTGCGACCCTATGGGGATAAGGAGTAT CCTGTGGTGAGATACCTCCGCCAACCAATTTACCTGGAAGTGAAAGTCCTAAATAGGGCTGACCCCAACATC AAGCTGGTCTTAGATGATTGCTGGGCAACACCCACCATGGACCCAGCCTCACTCCCCCAGTGGAATATTGTC ATGGATGGCTGTGAATACAATCTGGACAACTACAGAACGACCTTCCATCCAGTTGGCTCCTCTGTGACCTAC CCTACTCACTATCGGAGGTTTGATGTGAAGACCTTTGCCTTTATAGCAGAGGCCCAAGTGCTTGCTAGCCTG GTCTACTTCCACTGCCCCGCATTAATCTGCAATCCGACTGTCTCCTGACTCCCCTCTGTGTTCTGTGACTTG CCCTGTATCATCCAGGCACAGGCGAGCCACAGGCAGTACTGCAGAAGAGAAGATGATAGTAAGTCTCCCGGG ACCCATCCTCCTGTTGGCAGACAGCTCTTCACTCAGAGATGGTGTGGACTCAAAAGGGCACAGGGCTGCTGG ATATGTTGCTTTTAAAACTGTAGTGGCTGTGGCTGCCTTAGCAGGCCTTGTGGCTGCTCTAGGTCTCATCAT CTACCTGCGTAAGAAAAGAACCATGGTGTTAAATCACTAAGGATTTTCAAATAAAGTGTTTGTTAAAGT 3 '3. Cloning of 5'side region gene For the 5'side region of CZP2, cDNA was prepared based on the sequence of CZP2 75-520 and cloned by using this as a template (Michael A. Frohman, Michael K.
Dush, and Gail R. Martin (1988) Proc. Natl. Acad.
Sci. USA 85,8998-9002; Osamu Ohara, Robert L. Dor
it and Walter Gilbert (1989) Proc. Natl. Acad. Sc
i. USA 86, 5673-5677).

【0031】CZP242-103 領域の遺伝子クローニング 先に決定したCZP275-520の配列より次の3個のプラ
イマーを合成した。
Gene cloning of CZP2 42-103 region The following three primers were synthesized from the sequence of CZP2 75-520 determined in advance.

【0032】[0032]

【表6】 プライマー7をもとにしてイヌ卵巣mRNAより一本鎖
cDNAを作製した。1本鎖cDNAの合成はRiboClon
e cDNA Synthesis System (Promega) を使用した。具体
的には、0.5μgのイヌ卵巣mRNAに0.5μgの
プライマー7を加え70℃で5分間保温後室温にゆっく
りと戻す、つづいて10×first strandbuffer, 100mM DD
T 10mM dNTP mix, RNasin ribonuclease inhibitor, 40
mM Napyrophosphate, 逆転写酵素を加えて42℃で1
時間保温して1本鎖cDNAを合成する。反応終了後1
回フェノール/クロロホルム抽出を行ない、その上清を
TE(10mM Tris-HCl pH7.5, 1mM EDTA )であらかじめ
平衡化してあるスパンカラム(Pharmacia )にかける。
回収液はエタ沈メイト(ニッポンジーン社)とともにエ
タノール沈殿させる。次に合成した1本鎖cDNAの
3’側にポリAを付加する反応を行なう。具体的には、
沈殿させた1本鎖cDNAを乾燥後、水に溶解し94℃
2分処理後氷上で急冷、これにdATPと 5×tailing
Buffer, terminal deoxynucleotidyl-transferase (Be
thesda Research Laboratories)を加えて37℃で10
分間、65℃、15分間反応させる。これにTEを加え
て希釈してPCRの鋳型DNA(5’CZP2−cDN
Aと称する)とした。PCR条件は以下の通りである。
[Table 6] Single-stranded cDNA was prepared from dog ovary mRNA based on primer 7. RiboClon for single-stranded cDNA synthesis
e cDNA Synthesis System (Promega) was used. Specifically, 0.5 μg of canine ovary mRNA was added with 0.5 μg of primer 7 and the mixture was incubated at 70 ° C. for 5 minutes and then slowly returned to room temperature, followed by 10 × first strand buffer, 100 mM DD.
T 10mM dNTP mix, RNasin ribonuclease inhibitor, 40
Add 1 mM mM Napyrophosphate and reverse transcriptase at 42 ℃
Incubate for a period of time to synthesize single-stranded cDNA. After reaction 1
Phenol / chloroform extraction is performed once, and the supernatant is applied to a span column (Pharmacia) that has been pre-equilibrated with TE (10 mM Tris-HCl pH7.5, 1 mM EDTA).
The recovered liquid is ethanol-precipitated together with Eta-precipitated mate (Nippon Gene). Next, a reaction of adding poly A to the 3'side of the synthesized single-stranded cDNA is performed. In particular,
After drying the precipitated single-stranded cDNA, dissolve it in water and
After processing for 2 minutes, quench on ice, dATP and 5 x tailing
Buffer, terminal deoxynucleotidyl-transferase (Be
thesda Research Laboratories) at 37 ° C for 10
Incubate for 15 minutes at 65 ° C. TE was added to this to dilute it and the template DNA for PCR (5'CZP2-cDN
It is referred to as A). The PCR conditions are as follows.

【0033】[0033]

【表7】 1回目PCR:プライマー8およびプライマー6 鋳型DNA:5’CZP2−cDNA PCR条件:94℃−30秒、45℃−1分、72℃−
2分、30回 72℃、5分、 2回目PCR:プライマー9およびプライマー6 鋳型DNA:1回目PCR産物 PCR条件:94℃−30秒、50℃−1分、72℃−
2分、30回 72℃、5分。
[Table 7] First PCR: Primer 8 and Primer 6 Template DNA: 5'CZP2-cDNA PCR conditions: 94 ° C-30 seconds, 45 ° C-1 minute, 72 ° C-
2 minutes, 30 times 72 ° C, 5 minutes, 2nd PCR: primer 9 and primer 6 Template DNA: 1st PCR product PCR conditions: 94 ° C-30 seconds, 50 ° C-1 minute, 72 ° C-
2 minutes, 30 times 72 ° C, 5 minutes.

【0034】2回のPCR産物の一部を2%アガロース
ゲルにて電気泳動を行なう。エチジウムブロマイドでD
NAを染色した。その結果250bp程度のDNAバン
ドが検出された。この250bpのDNAをpUC18
のEcoRI,SalIにサブクローニングするため
に、PCR産物からクロロホルムでミネラルオイルを取
り除き、エタノール沈殿させる。沈殿は乾燥後水に溶解
した後EcoRI,SalI消化する。反応終了後2%
低融点アガロース電気泳動で分離し目的の250bpの
バンドを切り出しGENECLEAN II(BIO 101 )を用いてゲ
ルより抽出する。これをあらかじめEcoRI,Sal
Iで消化してあるpUC18の大断片にライゲーション
キット(宝酒造)を用いて連結させる。これを大腸菌/
JM109に形質転換させ、アンピシリン含有LBプレ
ートに播く(この形質転換体をpCZP242-103/JM
109と称する)。生えてきたコロニーは拾い上げて5
mlのアンピシリン含有LB培地で培養し、QUIAGEN, H
i Purity Plasmid Kitを用いてプラスミドを精製する。
精製したプラスミドはその一部をEcoRI,SalI
消化して目的サイズのDNAが組み込まれていることを
確認した後、残りは通常の2本鎖シークエンスを行なっ
た。シークエンスはプラスミドをアルカリ処理後ジデオ
キシ終止鎖法のDNAシークエンスキット(SEQUENASE
VERSION 2.07-deaza-dGTP Kit, USB)を用いて決定し
た。その結果、以下の配列が決定された。
A part of the PCR product obtained twice is electrophoresed on a 2% agarose gel. D with ethidium bromide
NA was stained. As a result, a DNA band of about 250 bp was detected. This 250 bp DNA was added to pUC18
In order to subclone into EcoRI and SalI, the PCR product is subjected to chloroform removal of mineral oil and ethanol precipitation. The precipitate is dried, dissolved in water and digested with EcoRI and SalI. 2% after completion of reaction
The target 250 bp band is separated by low melting point agarose electrophoresis and cut out from the gel using GENECLEAN II (BIO 101). This is EcoRI, Sal beforehand
The large fragment of pUC18 digested with I is ligated with a ligation kit (Takara Shuzo). E. coli /
JM109 was transformed and plated on an LB plate containing ampicillin (this transformant was transformed into pCZP2 42-103 / JM
109). Pick up the growing colony, 5
Culture in LB medium containing ampicillin, QUIAGEN, H
Purify the plasmid using the i Purity Plasmid Kit.
A part of the purified plasmid was EcoRI, SalI
After digestion to confirm that the DNA of the desired size was incorporated, the rest was subjected to a normal double-stranded sequence. Sequencing is carried out by treating the plasmid with an alkali, and then using the dideoxy termination chain method DNA sequence kit (SEQUENASE
VERSION 2.07-deaza-dGTP Kit, USB). As a result, the following sequences were determined.

【0035】決定されたpCZP242-103の塩基配列:The determined nucleotide sequence of pCZP2 42-103 :

【0036】[0036]

【表8】 5’ACTCAGTTGGTGAATCCCATCTTCCCAGGTACTGTCATTTGCCATGAAAATAAAATGACAGTGGAATT TCAAAGGGATCTTGGCACCAAAAAATGGCATGCATCTGTGGTGGATCCATTTAGTTTTGAATTGTTGAACTG TACTTCTATCCTGGACCCAGAAAAGCTCACCCTGAAGGCCCCATATGA3’CZP21-65 領域の遺伝子クローニング 上で決定した配列(CZP242-103)をもとに次のプラ
イマーを作製し、さらに5’側領域遺伝子をクローニン
グした。PCR条件は以下のとおりである。
TABLE 8 5'ACTCAGTTGGTGAATCCCATCTTCCCAGGTACTGTCATTTGCCATGAAAATAAAATGACAGTGGAATT TCAAAGGGATCTTGGCACCAAAAAATGGCATGCATCTGTGGTGGATCCATTTAGTTTTGAATTGTTGAACTG TACTTCTATCCTGGACCCAGAAAAGCTCACCCTGAAGGCCCCATATGA3 'to prepare the following primers based on CZP2 1-65 sequence determined on gene cloning of regions (CZP2 42-103), further 5' was cloned side region genes. The PCR conditions are as follows.

【0037】[0037]

【表9】 1回目PCR:プライマー8およびプライマー6 鋳型DNA:5’CZP2−cDNA PCR条件:94℃−30秒、45℃−1分、72℃−
2分、30回 72℃、5分、 2回目PCR:プライマー10およびプライマー6 鋳型DNA:1回目PCR産物 PCR条件:94℃−30秒、50℃−1分、72℃−
2分、30回 72℃、5分、 3回目PCR:プライマー11およびプライマー6 鋳型DNA:2回目PCR産物 PCR条件:94℃−30秒、55℃−1分、72℃−
2分、30回 72℃、5分。
[Table 9] First PCR: Primer 8 and Primer 6 Template DNA: 5'CZP2-cDNA PCR conditions: 94 ° C-30 seconds, 45 ° C-1 minute, 72 ° C-
2 minutes, 30 times 72 ° C, 5 minutes, 2nd PCR: primer 10 and primer 6 Template DNA: 1st PCR product PCR conditions: 94 ° C-30 seconds, 50 ° C-1 minute, 72 ° C-
2 minutes, 30 times 72 ° C, 5 minutes, 3rd PCR: Primer 11 and primer 6 Template DNA: 2nd PCR product PCR conditions: 94 ° C-30 seconds, 55 ° C-1 minute, 72 ° C-
2 minutes, 30 times 72 ° C, 5 minutes.

【0038】3回のPCR産物の一部を2%アガロース
ゲルにて電気泳動を行なう。エチジウムブロマイドでD
NAを染色した。その結果300bp程度のDNAバン
ドが検出された。この300bpのDNAをpUC18
のKpnI,SalIにサブクローニングするために、
PCR産物からクロロホルムでミネラルオイルを取り除
き、エタノール沈殿させる。沈殿は乾燥後水に溶解した
後KpnI,SalI消化する。反応終了後2%低融点
アガロース電気泳動で分離し目的の300bpのバンド
を切り出しGENECLEAN II(BIO 101 )を用いてゲルより
抽出する。これをあらかじめKpnI,SalIで消化
してあるpUC18の大断片にライゲーションキット
(宝酒造)を用いて連結させる。大腸菌JM109に形
質転換させ、アンピシリン含有LBプレートに播く(こ
の形質転換体をpCZP21-65/JM109と称す
る)。生えてきたコロニーは拾い上げて5mlのアンピ
シリン含有LB培地で培養し、QUIAGEN Hi Purity Plas
mid Kit を用いてプラスミドを精製する。精製したプラ
スミドはその一部をKpnI,SalI消化して目的サ
イズのDNAが組み込まれていることを確認した後、残
りは通常の2本鎖シークエンスをおこなった。シークエ
ンスはプラスミドをアルカリ処理後ジデオキシ終止鎖法
のDNAシークエンスキット(SEQUENASE VERSION 2.07
-deaza-dGTP Kit, USB)を用いて決定した。その結果、
以下の配列が決定された。
A part of the PCR product obtained three times is electrophoresed on a 2% agarose gel. D with ethidium bromide
NA was stained. As a result, a DNA band of about 300 bp was detected. This 300 bp DNA is called pUC18
For subcloning into KpnI and SalI of
Remove the mineral oil from the PCR product with chloroform and ethanol precipitate. The precipitate is dried, dissolved in water and digested with KpnI and SalI. After completion of the reaction, the product is separated by 2% low-melting point agarose electrophoresis and the desired 300 bp band is cut out and extracted from the gel using GENECLEAN II (BIO 101). This is ligated to a large fragment of pUC18 that has been digested with KpnI and SalI in advance using a ligation kit (Takara Shuzo). E. coli JM109 was transformed, plated on LB plates containing ampicillin (a transformant called pCZP2 1-65 / JM109). The grown colonies are picked up and cultured in 5 ml of LB medium containing ampicillin, and QUIAGEN Hi Purity Plas
Purify the plasmid using the mid Kit. A part of the purified plasmid was digested with KpnI and SalI to confirm that the DNA of the desired size had been incorporated, and then the rest was subjected to a normal double-stranded sequence. Sequencing is carried out by treating the plasmid with an alkali and then using the dideoxy termination chain method DNA sequence kit (SEQUENASE VERSION 2.07).
-deaza-dGTP Kit, USB). as a result,
The following sequences were determined.

【0039】決定されたCZP21-65の塩基配列:The determined nucleotide sequence of CZP2 1-65 :

【0040】[0040]

【表10】 5’GGGCGTCTACCCACCTACCTGGCTGATTTGGTGGTACGTTTGGCCATGGCATGCAAACAGAAAGGAGA CAGTGGGAGTCCCTCAAGCTGGTTTAGTGCAGATTGGAGCACCTACAGGTCACTTTCTTTATTCTTCATCCT TGTGACTTCAGTGAACTCAGTAGGTGTTATGCAGTTGGTGAATCCCATCTTCCCAGGTACTGTCATTTGCCA TGAAAATAAAATGACAGTGGAATTTCCAA 3’ 以上、クローニングした4つのDNAフラグメント(C
ZP21-65,CZP242-103,CZP275-520,CZP
487-713 )の塩基配列より下記の配列表に示すイヌ卵
透明帯−2(CZP2)の全塩基配列(2216nt)
およびアミノ酸配列(713個)が明らかとなった。
[Table 10] 5'GGGCGTCTACCCACCTACCTGGCTGATTTGGTGGTACGTTTGGCCATGGCATGCAAACAGAAAGGAGA CAGTGGGAGTCCCTCAAGCTGGTTTAGTGCAGATTGGAGCACCTACAGGTCACTTTCTTTATTCTTCATCCT TGTGACTTCCCTCCATCAT4TCCATCCATCAT4CTCAGTCATCAT4CTCAGTCACATCAT4GTCAGTCCCATCATAG4GTCATCCACATCATAG4GTCATCCACATCAT4CATGACTCTGCATGCATGACCATGCATGCATGACCATGCATGCATGACATGACTCTGAG
ZP2 1-65 , CZP2 42-103 , CZP2 75-520 , CZP
2 487-713 ), the entire base sequence (2216nt) of dog egg zona pellucida-2 (CZP2) shown in the sequence listing below.
And the amino acid sequence (713) were revealed.

【0041】[0041]

【発明の効果】本発明によりイヌ卵透明帯CZP2遺伝
子のDNA配列が解明されたことにより、CZP2関連
ペプチドを遺伝子工学的手法又はペプチド合成等の手法
を用いて大量供給することが可能となった。得られるペ
プチドはイヌの避妊又は不妊用のワクチン抗原として有
用である。
Elucidation of the DNA sequence of the canine egg zona pellucida CZP2 gene according to the present invention has made it possible to supply a large amount of CZP2-related peptides using a genetic engineering method or a method such as peptide synthesis. . The resulting peptide is useful as a vaccine antigen for contraception or infertility in dogs.

【0042】[0042]

【配列表】[Sequence list]

配列番号:1 配列の長さ:2216 配列の型:核酸 鎖の数:二本鎖 トポロジー:直鎖状 配列の種類:cDNA to mRNA 起源: 生物名:イヌ 組織の種類:卵巣 細胞の種類:卵 配列: gggcgtctac ccacctacct ggctgatttg gtggtacgtt tggcc atg gca tgc aaa 57 Met Ala Cys Lys 1 cag aaa gga gac agt ggg agt ccc tca agc tgg ttt agt gca gat tgg 105 Gln Lys Gly Asp Ser Gly Ser Pro Ser Ser Trp Phe Ser Ala Asp Trp 5 10 15 20 agc acc tac agg tca ctt tct tta ttc ttc atc ctt gtg act tca gtg 153 Ser Thr Tyr Arg Ser Leu Ser Leu Phe Phe Ile Leu Val Thr Ser Val 25 30 35 aac tca gta ggt gtt atg cag ttg gtg aat ccc atc ttc cca ggt act 201 Asn Ser Val Gly Val Met Gln Leu Val Asn Pro Ile Phe Pro Gly Thr 40 45 50 gtc att tgc cat gaa aat aaa atg aca gtg gaa ttt cca agg gat ctt 249 Val Ile Cys His Glu Asn Lys Met Thr Val Glu Phe Pro Arg Asp Leu 55 60 65 ggc acc aaa aaa tgg cat gca tct gtg gtg gat cca ttt agt ttt gaa 297 Gly Thr Lys Lys Trp His Ala Ser Val Val Asp Pro Phe Ser Phe Glu 70 75 80 ttg ttg aac tgt act tct atc ctg gac cca gaa aag ctc acc ctg aag 345 Leu Leu Asn Cys Thr Ser Ile Leu Asp Pro Glu Lys Leu Thr Leu Lys 85 90 95 100 gcc cca tat gag acc tgt agc agg aga gtg ctt ggc cag cat cag atg 393 Ala Pro Tyr Glu Thr Cys Ser Arg Arg Val Leu Gly Gln His Gln Met 105 110 115 gcc atc aga ctc acg gac aac aat gct gct tca aga cat aag gct ttc 441 Ala Ile Arg Leu Thr Asp Asn Asn Ala Ala Ser Arg His Lys Ala Phe 120 125 130 atg tat cag atc agc tgt cca gtt atg caa aca gaa gaa acc cat gag 489 Met Tyr Gln Ile Ser Cys Pro Val Met Gln Thr Glu Glu Thr His Glu 135 140 145 cat gca gga tcc aca atc tgc aca aaa gat tcc atg tct ttt acc ttt 537 His Ala Gly Ser Thr Ile Cys Thr Lys Asp Ser Met Ser Phe Thr Phe 150 155 160 aac att att cct ggc atg gct gat gaa aat agc aat ccc agt ggt ggg 585 Asn Ile Ile Pro Gly Met Ala Asp Glu Asn Ser Asn Pro Ser Gly Gly 165 170 175 180 aaa tgg atg atg gag gtt gat gat gca aaa gct caa aat ctg act ctt 633 Lys Trp Met Met Glu Val Asp Asp Ala Lys Ala Gln Asn Leu Thr Leu 185 190 195 cgg gag gcc ttg atg caa gga tat aat ttc ctg ttt gat agc cac agg 681 Arg Glu Ala Leu Met Gln Gly Tyr Asn Phe Leu Phe Asp Ser His Arg 200 205 210 ctc agt gtc caa gtg tca ttc aat gcc act gga gtc act cac tac atg 729 Leu Ser Val Gln Val Ser Phe Asn Ala Thr Gly Val Thr His Tyr Met 215 220 225 caa ggt aac agt cac ctc tac aca gtg cct ctg aag ctt ata cac aca 777 Gln Gly Asn Ser His Leu Tyr Thr Val Pro Leu Lys Leu Ile His Thr 230 235 240 tct cct ggg cag aag atc atc tta aca aca cga gta ctt tgt atg tca 825 Ser Pro Gly Gln Lys Ile Ile Leu Thr Thr Arg Val Leu Cys Met Ser 245 250 255 260 gat ccc gtg acc tgt aac gcc aca cac atg acc ctc acc ata cca gag 873 Asp Pro Val Thr Cys Asn Ala Thr His Met Thr Leu Thr Ile Pro Glu 265 270 275 ttt cct ggg aaa cta cag tct gtg aga ttt gaa aac acg aac ttt gct 921 Phe Pro Gly Lys Leu Gln Ser Val Arg Phe Glu Asn Thr Asn Phe Ala 280 285 290 gta agc cag ctg cac aac cat ggg att gat aaa gaa gaa tta aac ggc 969 Val Ser Gln Leu His Asn His Gly Ile Asp Lys Glu Glu Leu Asn Gly 295 300 305 ttg agg tta cac ttc agc aaa tct ctt ctc aaa atg aac tcc tct gaa 1017 Leu Arg Leu His Phe Ser Lys Ser Leu Leu Lys Met Asn Ser Ser Glu 310 315 320 aaa tgc cta ccc tat cag ttc tac tta gca tct ctc agg ctg acc ttt 1065 Lys Cys Leu Pro Tyr Gln Phe Tyr Leu Ala Ser Leu Arg Leu Thr Phe 325 330 335 340 gaa cgg gac acg gtt tcc aca gtg gtt tat cct gag tgt gtt tgt gag 1113 Glu Arg Asp Thr Val Ser Thr Val Val Tyr Pro Glu Cys Val Cys Glu 345 350 355 cca cca gtt act ata gtt aca ggt gac ctg tgt acc cag gat ggg ttt 1161 Pro Pro Val Thr Ile Val Thr Gly Asp Leu Cys Thr Gln Asp Gly Phe 360 365 370 atg gat gtc aag gtc tac agc cac caa aca aaa cca gct cta aac ttg 1209 Met Asp Val Lys Val Tyr Ser His Gln Thr Lys Pro Ala Leu Asn Leu 375 380 385 gat acc ctc gga gtg gga gac tcc tcc tgc caa cct act ttc aag gct 1257 Asp Thr Leu Gly Val Gly Asp Ser Ser Cys Gln Pro Thr Phe Lys Ala 390 395 400 cca tca caa ggg tta aca ctg ttt cac atc ccc cta aat gga tgt gga 1305 Pro Ser Gln Gly Leu Thr Leu Phe His Ile Pro Leu Asn Gly Cys Gly 405 410 415 420 aca aga ctt aag ttc aaa ggt gac aca gtc atc tat gaa aat gaa ata 1353 Thr Arg Leu Lys Phe Lys Gly Asp Thr Val Ile Tyr Glu Asn Glu Ile 425 430 435 cat gct ctc tgg aca gat ctc cct cca agc aca att tcc aga gat agt 1401 His Ala Leu Trp Thr Asp Leu Pro Pro Ser Thr Ile Ser Arg Asp Ser 440 445 450 gaa ttc aga atg act gtg aag tgc cat tac agc aga gat gac ctg ctg 1449 Glu Phe Arg Met Thr Val Lys Cys His Tyr Ser Arg Asp Asp Leu Leu 455 460 465 ata aat acc aat gtc caa agt ctt cct cct ccc gtg gcc tca gtg agg 1497 Ile Asn Thr Asn Val Gln Ser Leu Pro Pro Pro Val Ala Ser Val Arg 470 475 480 cct ggt cca ctt gcc tta atc ctg caa acc tac cca gat aaa tcc tat 1545 Pro Gly Pro Leu Ala Leu Ile Leu Gln Thr Tyr Pro Asp Lys Ser Tyr 485 490 495 500 ttg cga ccc tat ggg gat aag gag tat cct gtg gtg aga tac ctc cgc 1593 Leu Arg Pro Tyr Gly Asp Lys Glu Tyr Pro Val Val Arg Tyr Leu Arg 505 510 515 caa cca att tac ctg gaa gtg aaa gtc cta aat agg gct gac ccc aac 1641 Gln Pro Ile Tyr Leu Glu Val Lys Val Leu Asn Arg Ala Asp Pro Asn 520 525 530 atc aag ctg gtc tta gat gat tgc tgg gca aca ccc acc atg gac cca 1689 Ile Lys Leu Val Leu Asp Asp Cys Trp Ala Thr Pro Thr Met Asp Pro 535 540 545 gcc tca ctc ccc cag tgg aat att gtc atg gat ggc tgt gaa tac aat 1737 Ala Ser Leu Pro Gln Trp Asn Ile Val Met Asp Gly Cys Glu Tyr Asn 550 555 560 ctg gac aac tac aga acg acc ttc cat cca gtt ggc tcc tct gtg acc 1785 Leu Asp Asn Tyr Arg Thr Thr Phe His Pro Val Gly Ser Ser Val Thr 565 570 575 580 tac cct act cac tat cgg agg ttt gat gtg aag acc ttt gcc ttt ata 1833 Tyr Pro Thr His Tyr Arg Arg Phe Asp Val Lys Thr Phe Ala Phe Ile 585 590 595 gca gag gcc caa gtg ctt gct agc ctg gtc tac ttc cac tgc acc gca 1881 Ala Glu Ala Gln Val Leu Ala Ser Leu Val Tyr Phe His Cys Thr Ala 600 605 610 tta atc tgc aat cga ctg tct cct gac tcc cct ctg tgt tct gtg act 1929 Leu Ile Cys Asn Arg Leu Ser Pro Asp Ser Pro Leu Cys Ser Val Thr 615 620 625 tgc cct gta tca tcc agg cac agg cga gcc aca ggc agt act gca gaa 1977 Cys Pro Val Ser Ser Arg His Arg Arg Ala Thr Gly Ser Thr Ala Glu 630 635 640 gag aag atg ata gta agt ctc ccg gga ccc atc ctc ctg ttg gca gac 2025 Glu Lys Met Ile Val Ser Leu Pro Gly Pro Ile Leu Leu Leu Ala Asp 645 650 655 660 agc tct tca ctc aga gat ggt gtg gac tca aaa ggg cac agg gct gct 2073 Ser Ser Ser Leu Arg Asp Gly Val Asp Ser Lys Gly His Arg Ala Ala 665 670 675 gga tat gtt gct ttt aaa act gta gtg gct gtg gct gcc tta gca ggc 2121 Gly Tyr Val Ala Phe Lys Thr Val Val Ala Val Ala Ala Leu Ala Gly 680 685 690 ctt gtg gct gct cta ggt ctc atc atc tac ctg cgt aag aaa aga acc 2169 Leu Val Ala Ala Leu Gly Leu Ile Ile Tyr Leu Arg Lys Lys Arg Thr 695 700 705 atg gtg tta aat cac taaggatttt caaataaagt gtttgttaaa gt 2216 Met Val Leu Asn His 710 SEQ ID NO: 1 Sequence Length: 2216 Sequence Type: Nucleic Acid Number of Strands: Double Strand Topology: Linear Sequence Type: cDNA to mRNA Origin: Organ Name: Dog Tissue Type: Ovarian Cell Type: Egg Sequence: gggcgtctac ccacctacct ggctgatttg gtggtacgtt tggcc atg gca tgc aaa 57 Met Ala Cys Lys 1 cag aaa gga gac agt ggg agt ccc tca agc tgg ttt agt gca gat tgg 105 Gln Lys Gly Serp Asp Ser Tly Serp Ser Gly Serp Ser Tly Serp 5 10 15 20 agc acc tac agg tca ctt tct tta ttc ttc atc ctt gtg act tca gtg 153 Ser Thr Tyr Arg Ser Leu Ser Leu Phe Phe Ile Leu Val Thr Ser Val 25 30 35 aac tca gta ggt gtt atg cag ttg gtg aat ccc atc ttc cca ggt act 201 Asn Ser Val Gly Val Met Gln Leu Val Asn Pro Ile Phe Pro Gly Thr 40 45 50 gtc att tgc cat gaa aat aaa atg aca gtg gaa ttt cca agg gat ctt 249 Val Ile Cys His Glu Asn Lys Met Thr Val Glu Phe Pro Arg Asp Leu 55 60 65 ggc acc aaa aaa tgg cat gca tct gtg gtg gat cca ttt agt ttt gaa 297 Gly Thr Lys Lys Trp His Ala Ser Val Val Asp Pro Phe Ser Phe Glu 70 75 80 ttg ttg aac tgt act tct atc ctg gac cca gaa aag ctc acc ctg aag 345 Leu Leu Asn Cys Thr Ser Ile Leu Asp Pro Glu Lys Leu Thr Leu Lys 85 90 95 100 gcc cca tat gag acc tgt agc agg aga gtg ctt ggc cag cat cag atg 393 Ala Pro Tyr Glu Thr Cys Ser Arg Arg Val Leu Gly Gln His Gln Met 105 110 115 gcc atc aga ctc acg gac aac aat gct gct tca aga cat aag gct ttc 441 Ala Ile Arg Leu Thr Asp Asn Asn Ala Ala Ser Arg His Lys Ala Phe 120 125 130 atg tat cag atc agc tgt cca gtt atg caa aca gaa gaa acc cat gag 489 Met Tyr Gln Ile Ser Cys Pro Val Met Gln Thr Glu Glu Thr His Glu 135 140 145 cat gca gga tcc aca atc tgc aca aaa gat tcc atg tct ttt acc ttt 537 His Ala Gly Ser Thr Ile Cys Thr Lys Asp Ser Met Ser Phe Thr Phe 150 155 160 aac att att cct ggc atg gct gat gaa aat agc aat ccc agt ggt ggg 585 Asn Ile Ile Pro Gly Met Ala Asp Glu Asn Ser Asn Pro Ser Gly Gly 165 170 175 180 aaa tgg atg atg gag gtt gat gat gca aaa gct caa aat ctg act ctt 633 Lys Trp Met Met Glu Val Asp As p Ala Lys Ala Gln Asn Leu Thr Leu 185 190 195 cgg gag gcc ttg atg caa gga tat aat ttc ctg ttt gat agc cac agg 681 Arg Glu Ala Leu Met Gln Gly Tyr Asn Phe Leu Phe Asp Ser His Arg 200 205 210 ctc agt gtc caa gtg tca ttc aat gcc act gga gtc act cac tac atg 729 Leu Ser Val Gln Val Ser Phe Asn Ala Thr Gly Val Thr His Tyr Met 215 220 225 caa ggt aac agt cac ctc tac aca gtg cct ctg aag ctt ata cac aca 777 Gln Gly Asn Ser His Leu Tyr Thr Val Pro Leu Lys Leu Ile His Thr 230 235 240 tct cct ggg cag aag atc atc tta aca aca cga gta ctt tgt atg tca 825 Ser Pro Gly Gln Lys Ile Ile Leu Thr Thr Arg Val Leu Cys Met Ser 245 250 255 260 gat ccc gtg acc tgt aac gcc aca cac atg acc ctc acc ata cca gag 873 Asp Pro Val Thr Cys Asn Ala Thr His Met Thr Leu Thr Ile Pro Glu 265 270 275 ttt cct ggg aaa cta cag tct gtg aga ttt gaa aac acg aac ttt gct 921 Phe Pro Gly Lys Leu Gln Ser Val Arg Phe Glu Asn Thr Asn Phe Ala 280 285 290 gta agc cag ctg cac aac cat ggg att gat aaa gaa gaa tta aac ggc 969 Val Ser Gln Leu H is Asn His Gly Ile Asp Lys Glu Glu Leu Asn Gly 295 300 305 ttg agg tta cac ttc agc aaa tct ctt ctc aaa atg aac tcc tct gaa 1017 Leu Arg Leu His Phe Ser Lys Ser Leu Leu Lys Met Asn Ser Ser Glu 310 315 320 aaa tgc cta ccc tat cag ttc tac tta gca tct ctc agg ctg acc ttt 1065 Lys Cys Leu Pro Tyr Gln Phe Tyr Leu Ala Ser Leu Arg Leu Thr Phe 325 330 335 340 gaa cgg gac acg gtt tcc aca gtg gag tatct tgt gtt tgt gag 1113 Glu Arg Asp Thr Val Ser Thr Val Val Tyr Pro Glu Cys Val Cys Glu 345 350 355 cca cca gtt act ata gtt aca ggt gac ctg tgt acc cag gat ggg ttt 1161 Pro Pro Val Thr Ile Val Thr Gly Asp Leu Cys Thr Gln Asp Gly Phe 360 365 370 atg gat gtc aag gtc tac agc cac caa aca aaa cca gct cta aac ttg 1209 Met Asp Val Lys Val Tyr Ser His Gln Thr Lys Pro Ala Leu Asn Leu 375 380 385 gat acc ctc gga gtg gga gac tcc tcc tgc caa cct act ttc aag gct 1257 Asp Thr Leu Gly Val Gly Asp Ser Ser Cys Gln Pro Thr Phe Lys Ala 390 395 400 cca tca caa ggg tta aca ctg ttt cac atc ccc cta aat gga tgt gga 130 5 Pro Ser Gln Gly Leu Thr Leu Phe His Ile Pro Leu Asn Gly Cys Gly 405 410 415 420 aca aga ctt aag ttc aaa ggt gac aca gtc atc tat gaa aat gaa ata 1353 Thr Arg Leu Lys Phe Lys Gly Asp Thr Val Ile Tyr Glu Asn Glu Ile 425 430 435 cat gct ctc tgg aca gat ctc cct cca agc aca att tcc aga gat agt 1401 His Ala Leu Trp Thr Asp Leu Pro Pro Ser Thr Ile Ser Arg Asp Ser 440 445 450 gaa ttc aga atg act gtg aag tgc cat tac agc aga gat gac ctg ctg 1449 Glu Phe Arg Met Thr Val Lys Cys His Tyr Ser Arg Asp Asp Leu Leu 455 460 465 ata aat acc aat gtc caa agt ctt cct cct ccc gtg gcc tca gtg ang 1497 Ile Asle Val Gln Ser Leu Pro Pro Pro Val Ala Ser Val Arg 470 475 480 cct ggt cca ctt gcc tta atc ctg caa acc tac cca gat aaa tcc tat 1545 Pro Gly Pro Leu Ala Leu Ile Leu Gln Thr Tyr Pro Asp Lys Ser Tyr 485 490 495 500 ttg cga ccc tat ggg gat aag gag tat cct gtg gtg aga tac ctc cgc 1593 Leu Arg Pro Tyr Gly Asp Lys Glu Tyr Pro Val Val Arg Tyr Leu Arg 505 510 515 caa cca att tac ctg gaa gtg aa aaa gtc agg gct gac ccc aac 1641 Gln Pro Ile Tyr Leu Glu Val Lys Val Leu Asn Arg Ala Asp Pro Asn 520 525 530 atc aag ctg gtc tta gat gat tgc tgg gca aca ccc acc atg gac cca 1689 Ile Lys Leu Val Leu Asp Asp Cy Trp Ala Thr Pro Thr Met Asp Pro 535 540 545 gcc tca ctc ccc cag tgg aat att gtc atg gat ggc tgt gaa tac aat 1737 Ala Ser Leu Pro Gln Trp Asn Ile Val Met Asp Gly Cys Glu Tyr Asn 550 555 560 ctg gac aac tac aga acg acc ttc cat cca gtt ggc tcc tct gtg acc 1785 Leu Asp Asn Tyr Arg Thr Thr Phe His Pro Val Gly Ser Ser Val Thr 565 570 575 580 tac cct act cac tat cgg agg ttt gat gtg aag acc ttt gcc ttt ata 1833 Tyr Pro Thr His Tyr Arg Arg Phe Asp Val Lys Thr Phe Ala Phe Ile 585 590 595 gca gag gcc caa gtg ctt gct agc ctg gtc tac ttc cac tgc acc gca 1881 Ala Glu Ala Gln Val Leu Ala Ser Leu Val Tyr Phe Cys Thr Ala 600 605 610 tta atc tgc aat cga ctg tct cct gac tcc cct ctg tgt tct gtg act 1929 Leu Ile Cys Asn Arg Leu Ser Pro Asp Ser Pro Leu Cys Ser Val Thr 615 620 625 tgc cct gta tca tcc agg cac agg cga gcc aca ggc agt act gca gaa 1977 Cys Pro Val Ser Ser Arg His Arg Arg Ala Thr Gly Ser Thr Ala Glu 630 635 640 gag aag atg ata gta agt ctc ccg gga ccc atc ctc ctg ttg gca gac 2025 Glu Lys Met Ile Val Ser Leu Pro Gly Pro Ile Leu Leu Leu Ala Asp 645 650 655 660 agc tct tca ctc aga gat ggt gtg gac tca aaa ggg cac agg gct gct 2073 Ser Ser Ser Leu Arg Asp Gly Val Asp Ser Lys Gly His Arg Ala Ala 665 670 675 gga tat gtt gct ttt aaa act gta gtg gct gtg gct gcc tta gca ggc 2121 Gly Tyr Val Ala Phe Lys Thr Val Val Ala Val Ala Ala Leu Ala Gly 680 685 690 ctt gtg gct gct cta ggt ctc atc atc tac cgt aag aaa aga acc 2169 Leu Val Ala Ala Leu Gly Leu Ile Ile Tyr Leu Arg Lys Lys Arg Thr 695 700 705 atg gtg tta aat cac taaggatttt caaataaagt gtttgttaaa gt 2216 Met Val Leu Asn His 710

Claims (1)

【特許請求の範囲】[Claims] 【請求項1】 配列番号1に示されるイヌ卵透明帯CZ
P2蛋白質のアミノ酸配列の全部又は一部をコードする
塩基配列を含むDNA。
1. A dog egg zona pellucida CZ shown in SEQ ID NO: 1.
A DNA containing a nucleotide sequence encoding all or part of the amino acid sequence of P2 protein.
JP35926592A 1992-12-25 1992-12-25 Dna sequence coding zona pellucida czp2 of canine ovum Pending JPH06189766A (en)

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Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2011039112A2 (en) 2009-10-01 2011-04-07 Delaval Holding Ab Animal monitoring

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
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WO2011039112A2 (en) 2009-10-01 2011-04-07 Delaval Holding Ab Animal monitoring

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