JPH0472506B2 - - Google Patents

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JPH0472506B2
JPH0472506B2 JP15855584A JP15855584A JPH0472506B2 JP H0472506 B2 JPH0472506 B2 JP H0472506B2 JP 15855584 A JP15855584 A JP 15855584A JP 15855584 A JP15855584 A JP 15855584A JP H0472506 B2 JPH0472506 B2 JP H0472506B2
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JP
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amylase
alpha
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bacillus
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Oo Horuwaasu Robaato
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Stabra AG
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  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Description

【発明の詳細な説明】 [産業上の利用分野] 本発明は耐熱性アルフア−アミラーゼの改良さ
れた製造法に関する。
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION [Industrial Field of Application] The present invention relates to an improved method for producing thermostable alpha-amylase.

[従来の技術] アルフア−アミラーゼは商業用洗浄剤の成分と
して、あるいは澱粉を水溶性炭水化物、特にグル
コースに変換するための酵素としてよく知られて
いる。
BACKGROUND OF THE INVENTION Alpha-amylase is well known as a component of commercial detergents and as an enzyme for converting starch to water-soluble carbohydrates, particularly glucose.

従来、アミラーゼはバチルス属の菌株を培養す
ることによつて製造されている。英国特許第
1296839号明細書によれば、耐熱性アルフア−ア
ミラーゼはバチルス・リツチエニホルミス
(Bacillus licheniforms)の菌株を培養すること
によつて製造出来ることが記載されている。
Conventionally, amylase has been produced by culturing strains of the genus Bacillus. UK patent no.
No. 1296839 describes that thermostable alpha-amylase can be produced by culturing a strain of Bacillus licheniforms.

[発明が解決しようとする問題点] 上記方法により製造された酵素はバチルス・ズ
ブチリス(Bacillus subtilis)の菌株を培養して
製造されたものよりも顕著に高い熱安定性を示す
が、残念ながら前記英国特許明細書に報告されて
いる酵素活性の収率があまり良好でなく、該耐熱
性アミラーゼを商業的に生産するにはこの点の改
良を必要とする。
[Problems to be Solved by the Invention] The enzyme produced by the above method exhibits significantly higher thermostability than that produced by culturing a strain of Bacillus subtilis. The yield of enzyme activity reported in the British patent specification is not very good, and improvements in this respect are required for commercial production of the thermostable amylase.

[問題点を解決するための手段] 本発明者らは、バチルス・リツチエニホルミス
のある種の菌株がその高い酵素活性収率の故に耐
熱性アルフア−アミラーゼの商業的生産に利用し
得る事実を見出だした。
[Means for Solving the Problem] The present inventors have discovered the fact that certain strains of Bacillus ritsieniformis can be used for commercial production of thermostable alpha-amylase due to their high yield of enzymatic activity. I found out.

[発明の作用と効果] 一般に、本発明で使用するバチルス・リツチエ
ニホルミスの特定菌株による酸素活性の収率は、
前記英国特許明細書に報告されている収率の少な
くとも約10倍である。本発明で使用するバチル
ス・リツチエニホルミスの標準菌株はアメリカ
ン・タイプ・カルチユア・コレクシヨンに寄託番
号ATCC39326として保存されている。
[Operations and Effects of the Invention] Generally, the yield of oxygen activity by the specific strain of Bacillus ritsieniformis used in the present invention is as follows:
The yield is at least about 10 times higher than that reported in the British patent specification. The standard strain of Bacillus lithueniformis used in the present invention is stored in the American Type Culture Collection under deposit number ATCC39326.

本発明により生産されるアルフア−アミラーゼ
は、前記英国特許明細書の方法によつて得られた
ものと同程度の熱安定性を示し、高濃度のカルシ
ウムイオン沈澱剤の存在下においても比較的安定
である。前記英国特許明細書に記載された総ての
機能的利点に加え、本発明方法によれば、高い収
率が達成される。
The alpha-amylase produced according to the present invention exhibits a thermal stability comparable to that obtained by the method of the above-mentioned British patent specification and is relatively stable even in the presence of high concentrations of calcium ion precipitants. It is. In addition to all the functional advantages described in the British patent specification, high yields are achieved with the process of the invention.

本発明の好ましい結果を得るためには、バチル
ス・リツチエニホルミスの特定菌株を使用し、こ
れを栄養培地中で充分な酵素活性が得られるまで
培養すればよい。通常、発酵は資化性の炭素源お
よび窒素源ならびに必須栄養素を使用し、約25〜
55℃の温度で約2〜6日間にわたつて行なわれ
る。このような発酵条件はそれ自体当業者にとつ
て良く知られた常套のものである。適当な炭素源
の例としては炭水化物(たとえばラクトース、グ
ルコース、澱粉)や炭水化物含有物質(たとえば
大豆、コーンミール)あるいはこれらの混合物を
挙げることが出来る。炭水化物の量は大幅に変化
し得るが、通常は約1〜25%(w/v)、好まし
くは約5〜15%(w/v)である。
In order to obtain the preferred results of the present invention, a specific strain of Bacillus ritsieniformis may be used and cultured in a nutrient medium until sufficient enzymatic activity is obtained. Fermentation typically uses assimilable carbon and nitrogen sources as well as essential nutrients, and uses approximately 25 to
It is carried out over a period of about 2 to 6 days at a temperature of 55°C. Such fermentation conditions are themselves conventional and well known to those skilled in the art. Examples of suitable carbon sources include carbohydrates (eg, lactose, glucose, starch), carbohydrate-containing substances (eg, soybean, cornmeal), or mixtures thereof. The amount of carbohydrate can vary widely, but is usually about 1-25% (w/v), preferably about 5-15% (w/v).

本発明の好ましい態様において、ラクトースを
炭素源として使用することにより良好な酵素活性
収率が達成される。通常、栄養培地中において、
ラクトースは約1〜20%(w/v)、好ましくは
約5〜15%(w/v)の濃度で使用される。ラク
トースは単一の炭素源として使用されても良く、
ホエーや大豆粉のような他の炭素源と併用されて
も良い。併用する炭素源は通常約5%(w/v)
以下である。
In a preferred embodiment of the invention, good enzyme activity yields are achieved by using lactose as a carbon source. Usually in a nutrient medium,
Lactose is used at a concentration of about 1-20% (w/v), preferably about 5-15% (w/v). Lactose may be used as the sole carbon source,
It may also be used in conjunction with other carbon sources such as whey or soy flour. The carbon source used in combination is usually about 5% (w/v)
It is as follows.

窒素源は有機または無機の物質であつてよく、
その具体例としては可溶性硝酸塩、アンモニウム
塩、イーストエキス、コーンステイープリカー、
ピーナツツミールなどが挙げられる。
The nitrogen source may be an organic or inorganic substance;
Examples include soluble nitrates, ammonium salts, yeast extract, cornstarch liquor,
Examples include peanut meal.

培養は栄養培地中、好気性条件下で実施されて
良い。好気性条件は、発酵容器に通常培地1容当
たり約1容の空気を導入することによつて行なわ
れる。
Cultivation may be carried out in a nutrient medium under aerobic conditions. Aerobic conditions are usually achieved by introducing about 1 volume of air per volume of medium into the fermentation vessel.

培地中の酵素活性が所望のレベルに達した後、
酵素を収得する。酵素の収得方法は自体常套の方
法で行なわれてよく、たとえば硫酸ナトリウムの
ような公知の沈澱剤を用いたり、アセトンやエタ
ノールのような水混和性有機溶剤を用いて酵素を
沈澱させればよい。沈澱した酵素の回収は遠心分
離やろ過によつて行なうことが出来、次いでこれ
を乾燥させれば純度の良好な固体状酵素を得る。
After the enzyme activity in the medium reaches the desired level,
Obtain the enzyme. The enzyme may be obtained by a conventional method, for example by precipitating the enzyme using a known precipitant such as sodium sulfate or using a water-miscible organic solvent such as acetone or ethanol. . The precipitated enzyme can be recovered by centrifugation or filtration, and then dried to obtain a solid enzyme with good purity.

上記した特定菌株それ自体に代え、その変異株
や、酵素遺伝子を導入して得られた遺伝学的に変
形された菌株もまた本発明で使用することが出
来、その場合も本発明の範囲に包含される。
Instead of the above-mentioned specific bacterial strain itself, mutant strains thereof and genetically modified strains obtained by introducing enzyme genes can also be used in the present invention, and such cases also fall within the scope of the present invention. Included.

[実施例] 以下に実施例を挙げて本発明をさらに詳細に説
明する。
[Example] The present invention will be described in further detail with reference to Examples below.

実施例 1 (A) バチルス・リツチエニホルミスATCC39326
のジフコ澱粉寒天スラント上の培養物をジフコ
澱粉寒天プレート上に接種し、40±1℃におい
て18±1時間培養を行なう。
Example 1 (A) Bacillus ritsieniformis ATCC39326
The culture on the Difco starch agar slant is inoculated onto a Difco starch agar plate and cultured for 18±1 hours at 40±1°C.

(B) 上記培養で得られた菌体の一白金耳を次の培
地に接種する: 水性接種培地 0.5%イーストエキス、0.5%トリプトン、0.1
%K2HPO4、0.1%D−グルコース350ml/1
フラスコ 上記フラスコをニユウ・ブランズウイツクG
−50シエイカー(2”オービツト)上200rpm
において40±1℃に1〜2日間培養する。
(B) Inoculate one loopful of the bacterial cells obtained in the above culture into the following medium: Aqueous inoculation medium 0.5% yeast extract, 0.5% tryptone, 0.1
%K 2 HPO 4 , 0.1% D-glucose 350ml/1
Flask The above flask was taken from New Brunswick G.
-200 rpm on 50 shaker (2” orbit)
Culture at 40±1°C for 1 to 2 days.

(C) フラスコの全内容物を次の発酵培地3150ml中
に接種する: 水性発酵培地 10%ラクトース*、1.4%K2HPO4 *、0.6%
KH2PO4 *、0.6%(NH42SO4、0.3%クエン酸
ナトリウム、3.0%大豆粉、0.05%CaCl22H2O、
1.0ml“MazuDF6000”、初期PH=6.8〜7.0(*印
は他の成分と別に滅菌) 発酵容器は15lbsにおいて121℃に60分間滅菌
する。
(C) Inoculate the entire contents of the flask into 3150 ml of the following fermentation medium: Aqueous fermentation medium 10% Lactose * , 1.4% K2HPO4 * , 0.6%
KH2PO4 * , 0.6% ( NH4 ) 2SO4 , 0.3% sodium citrate, 3.0% soy flour, 0.05% CaCl22H2O ,
1.0ml “MazuDF6000”, initial pH = 6.8-7.0 (*marked is sterilized separately from other ingredients) Fermentation vessel is sterilized at 121°C for 60 minutes at 15lbs.

アルフア−アミラーゼの至適生産を容易なら
しめるため、培地のPHは8.0以下、5.5以上に調
節する。
In order to facilitate optimal production of alpha-amylase, the pH of the medium is adjusted to below 8.0 and above 5.5.

培養の間に生ずる発泡を抑制するため、常套
の泡抑制装置を通して“MazuDF6000”消泡
剤を加える。
To suppress foaming that occurs during incubation, "MazuDF6000" antifoam is added through a conventional foam suppressor.

発酵条件 600rpm 40℃、1v/v空気 72時間後のPHは通常6.5〜7.0である。Fermentation conditions 600rpm 40℃, 1v/v air PH after 72 hours is usually 6.5-7.0.

アルフア−アミラーゼ酵素活性の測定は標準の
方法によつて実施される。そのような方法の一例
として改良ホールガーマス(Wholegermuth)法
があり、これによれば活性は澱粉のデキストリン
化の明らかな段階を示す変色を起こすための消化
時間で示される。これを定量線化すれば、次のよ
うにアミラーゼ強さをリクエホン(liquefon)/
グラムの単位で直接計算することが出来る。
Measurement of alpha-amylase enzyme activity is performed by standard methods. An example of such a method is the modified Wholegermuth method, in which activity is indicated by the time of digestion to produce a color change, which is an obvious step in the dextrinization of the starch. If this is converted into a quantitative line, the amylase strength can be expressed as follows:
It can be calculated directly in grams.

リクエホンアルフア−アミラーゼ定量法は次の
ように行なう。すなわち、溶媒および希釈液とし
て0.025モルCaCl2溶液を用いてサンプル溶液を調
製し、最終の希釈サンプル5mlが約10分のデキス
トリン化時間を持つようにする。酵素製剤のおお
よその活性が不明の場合には試行鎖誤(trial
and error)により適当なサンプルの量と希釈度
を見出ださなければならない。5.0ml希釈ヨード
溶液を13×200mm試験管に分注し、10〜12本の試
験管を水浴(30℃)に保つ。10mlリントナー
(Lintner)澱粉を23×200mm試験管に移し、30℃
の水浴中に保持する。25〜30mlの希釈した未知ア
ルフア−アミラーゼ溶液を23×200mm試験管に移
し、30℃の水溶中に保つ。上記未知の希釈酵素サ
ンプル5mlを10mlの澱粉溶液に加える。その半量
が加えられたとき、ストツプウオツチを始動さ
せ、残りの半量をピペツトから吹き込む。適当な
時間間隔で加水分解混合物(澱粉、アルフア−ア
ミラーゼ溶液)1ml(1mlピペツト)を温度調節
した希釈モード溶液を含む試験管に加える。これ
をよくふりまぜ、13mmの正確な角形試験管に注
ぎ、ヘリツジ(Hellige)比較計中で標準アルフ
ア−アミラーゼカラーデイスクと比較する。1ml
ピペツトの内容物をヨード溶液中に吹き込めば、
終点時間をより正確に測定することが出来る。終
点時間に殆ど到達したとき、0.1分間隔(6〜12
秒)でサンプルを採取する。反応が完了したとき
時間と希釈度を記録し、gまたはml当たりのリク
エホン単位活性を計算する。酵素活性の計算には
次式を採用する: リクエホン/gまたはml=1140×希釈度/サンプルの現
実の量(gまたはml)×デキストリン化時間(分) 前記の定量法で使用した溶液は以下のごとく調
製する。
The Liquehon alpha-amylase quantitative method is carried out as follows. That is, a sample solution is prepared using a 0.025 molar CaCl 2 solution as the solvent and diluent such that the final diluted sample of 5 ml has a dextrinization time of approximately 10 minutes. If the approximate activity of the enzyme preparation is unknown, trial chain error (trial
(and error) to find the appropriate sample volume and dilution. Dispense 5.0 ml diluted iodine solution into 13 x 200 mm test tubes and keep 10-12 test tubes in a water bath (30 °C). Transfer 10ml Lintner starch to a 23 x 200mm test tube and store at 30°C.
Keep in water bath. Transfer 25-30 ml of diluted unknown alpha-amylase solution to a 23 x 200 mm test tube and keep in water at 30°C. Add 5 ml of the unknown diluted enzyme sample to 10 ml of starch solution. When half of the amount has been added, start the stopwatch and pipet in the remaining half of the amount. At appropriate time intervals, 1 ml (1 ml pipette) of the hydrolysis mixture (starch, alpha-amylase solution) is added to the test tube containing the temperature-controlled dilute mode solution. This is mixed well, poured into a 13 mm precision rectangular test tube, and compared with a standard alpha-amylase color disc in a Hellige comparator. 1ml
By squirting the contents of the pipette into the iodine solution,
The end point time can be measured more accurately. When the end point time is almost reached, every 0.1 minute (6 to 12
Collect the sample in seconds). When the reaction is complete, record the time and dilution and calculate the Requephon unit activity per gram or ml. The following formula is adopted to calculate the enzyme activity: Liquehon/g or ml = 1140 x dilution / actual amount of sample (g or ml) x dextrinization time (min) The solutions used in the above quantitative method are as follows: Prepare as follows.

澱粉溶液 可溶性リントナー澱粉(10g)をフラスコ中蒸
留水35mlと混合し、加熱して沸騰させ、撹はんし
ながら沸点に5分間保持する。室温まで冷却し、
酢酸バツフアー125mlと充分量の水を加えて500ml
とし、更にトルエン1mlを加えるる。この溶液の
安定性を活性既知のアルフア−アミラーゼの標準
サンプルを使用して確認する。
Starch Solution Soluble Lintner starch (10 g) is mixed with 35 ml of distilled water in a flask, heated to boiling and maintained at boiling point for 5 minutes with stirring. Cool to room temperature;
Add 125ml of acetic acid buffer and enough water to make 500ml.
Then add 1 ml of toluene. The stability of this solution is confirmed using a standard sample of alpha-amylase of known activity.

酢酸バツフアー 1モル酢酸ナトリウム(82.0g)を秤量し、水
300mlに溶解させる。酢酸でPHを6.2±0.1に調節
し、1に希釈する。その20mlを使用して1の
澱粉基質を調製する。
Acetic acid buffer Weigh 1 mol sodium acetate (82.0g) and add water
Dissolve in 300ml. Adjust the pH to 6.2±0.1 with acetic acid and dilute to 1. The 20 ml is used to prepare the starch substrate of 1.

0.025モル塩化カルシウム希釈液 C.P.無水塩化カルシウム11.1gを水4に溶か
す。
0.025M Calcium Chloride Dilute Solution Dissolve 11.1g of CP anhydrous calcium chloride in 4 parts of water.

バツフアー溶液 水酸化ナトリウムペレツト25.3gとリン酸二水
素カリウム340gを蒸留水に溶かし、容量フラス
コ中で2に調節する。バツフアーが室温になつ
たとき容量調節を行なう(PH6.2±0.1)。
Buffer Solution 25.3 g of sodium hydroxide pellets and 340 g of potassium dihydrogen phosphate are dissolved in distilled water and adjusted to 2 in a volumetric flask. Adjust the volume when the buffer reaches room temperature (PH6.2±0.1).

ストツクヨード溶液 C.P.ヨード結晶5.50gとヨードカリウム11.0gを
水に溶かし、250mlとする。褐色びんに入れて貯
蔵する。
Stock iodine solution Dissolve 5.50g of CP iodine crystals and 11.0g of potassium iodine in water to make 250ml. Store in a brown bottle.

希釈ヨード溶液 ヨードカリウム20.0gを水に溶かし、ストツク
ヨード溶液2.00mlを加え、500mlに希釈する。
Diluted iodine solution Dissolve 20.0g of potassium iodide in water, add 2.00ml of stock iodine solution, and dilute to 500ml.

上記したリクエホン法を採用して測定したとこ
ろ、前記実施例で得られた発酵混合物の酵素活性
は1000リクエホン/ml以上、多くの場合1500〜
2000リクエホン/mlにも達する。この定量法によ
ると、前記英国特許明細書に記載されたバチル
ス・リツチエニホルミスの菌株は上記した発酵培
地中において酵素活性平均125リクエホン/mlを
与えるが、英国特許明細書に記載された培地中に
おいては更に低い酵素活性、すなわち50リクエホ
ン/ml以下を与えるに過ぎない。
When measured using the Liquehon method described above, the enzyme activity of the fermented mixture obtained in the above example was more than 1,000 Liquehon/ml, and in most cases 1,500 -
It reaches up to 2000 requests/ml. According to this quantitative method, the strain of Bacillus ritsieniformis described in the British patent specification gives an average enzyme activity of 125 Liquehons/ml in the fermentation medium described above, but Some give even lower enzymatic activity, ie less than 50 requesthons/ml.

アルフア−アミラーゼ活性を測定する他の方法
としては前記した英国特許明細書に記載された改
良SKB法がある。この試験法の条件下において、
前記英国特許明細書の菌株は500SKB単位/ml以
下の活性を与えたが、本発明の菌株は約
10000SKB単位/mlの活性を与えた。
Another method for measuring alpha-amylase activity is the modified SKB method described in the UK patent specification mentioned above. Under the conditions of this test method,
While the strain of the British patent specification gave an activity of less than 500 SKB units/ml, the strain of the present invention gave an activity of about 500 SKB units/ml.
It gave an activity of 10000 SKB units/ml.

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1 バチルス・リツチエニホルミス(Bacillus
licheniformis)ATCCNo.39326を栄養培地で培養
してアルフア−アミラーゼを生産することを特徴
とするアルフア−アミラーゼの製法。 2 生産されたアルフア−アミラーゼを栄養培地
から採取する第1項記載の製法。 3 栄養培地が炭素源としてラクトースを含有す
る第1項または第2項に記載の製法。 4 ラクトースが5〜15%(w/v)の濃度で含
有されている第3項記載の製法。 5 栄養培地のPHが8以下、5.5以上に維持され
ている第1項〜第4項のいずれかに記載の製法。
[Scope of Claims] 1. Bacillus lithueniformis
39326) ATCC No. 39326 in a nutrient medium to produce alpha-amylase. 2. The production method according to item 1, wherein the produced alpha-amylase is collected from a nutrient medium. 3. The method according to item 1 or 2, wherein the nutrient medium contains lactose as a carbon source. 4. The method according to item 3, wherein lactose is contained at a concentration of 5 to 15% (w/v). 5. The manufacturing method according to any one of items 1 to 4, wherein the pH of the nutrient medium is maintained at 8 or less and 5.5 or more.
JP15855584A 1984-07-27 1984-07-27 Production of heat resistant amylase Granted JPS6137094A (en)

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