JPH0452557A - Composite carrier for immunological measurement and immunological measuring method using the carrier - Google Patents

Composite carrier for immunological measurement and immunological measuring method using the carrier

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JPH0452557A
JPH0452557A JP16141790A JP16141790A JPH0452557A JP H0452557 A JPH0452557 A JP H0452557A JP 16141790 A JP16141790 A JP 16141790A JP 16141790 A JP16141790 A JP 16141790A JP H0452557 A JPH0452557 A JP H0452557A
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JP
Japan
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carrier
antigen
antibody
solid phase
composite
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JP16141790A
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Japanese (ja)
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Toshiaki Kumazawa
熊沢 俊明
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Olympus Corp
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Abstract

PURPOSE:To improve the reaction efficiency of a measuring carrier by a method wherein a composite carrier having particles of a secondary solid state carrier bonded to the surface of a primary solid state carrier is used as a solid state carrier for fixation of ligand, thereby bonding much more ligands without saturation accompanied. CONSTITUTION:An anti IgG antibody 13 is fixated to the surface of a primary solid state carrier 11 and particles of a secondary solid state carrier 12. The antibody 13 is bonded with an antigen 14. Accordingly, the particles 12 are bonded to the carrier 11. Those of the antibodies 13 fixed to the surface of the particles 12 without being used for bonding to the carrier 11 and therefore in the free state are employed for immune reaction with an antigen present in a measuring sample. The antigen 14 is the same as an antigen to be measured by this composite carrier. In this manner, much more antibodies 13 can be fixated without saturating or lowering the reactivity. Therefore, if this composite carrier is used, the reaction efficiency can be improved in the immunological measurement.

Description

【発明の詳細な説明】 〔産業上の利用分野〕 本発明は免疫学的測定用の複合担体に関する。[Detailed description of the invention] [Industrial application field] The present invention relates to a composite carrier for immunoassays.

また、この複合担体を用いた免疫学的測定方法に関する
The present invention also relates to an immunoassay method using this composite carrier.

〔従来の技術〕[Conventional technology]

抗原、抗体およびホルモン等の測定方法として、酵素免
疫測定法(EIA : Enzyme Immunoa
ssay)や蛍光免疫測定法が用いられている。これら
の免疫測定法は液相法と固相法とに大別されるが、−船
釣には固相法か用いられている。
Enzyme immunoassay (EIA) is a method for measuring antigens, antibodies, hormones, etc.
ssay) and fluorescence immunoassay are used. These immunoassay methods are broadly classified into liquid phase methods and solid phase methods, but the solid phase method is used for boat fishing.

固相免疫測定法では、免疫反応によって目的の被測定物
質を固相担体表面に捕獲するステ・ンプが含まれる。こ
のために、被測定物質と親和性を有するリガンドを、ガ
ラスピーズ等の担体に予め固定化した免疫検定用担体が
知られている(米国特許第3,652,761号)。リ
ガンドには被測定物質と特異的に反応する抗原または抗
体が用いられている。リガンドを担体表面に固定化する
方法としては、第7図(A)に示したように、担体1表
面に抗体2等を物理的に吸着させる方法や、第7図(B
)に示したように抗体2等をカップリング剤3を用いて
担体表面1に共有結合させる方法か用いられている。
The solid-phase immunoassay method includes a step that captures the target substance to be measured on the surface of a solid-phase carrier through an immune reaction. For this purpose, an immunoassay carrier is known in which a ligand having an affinity for the substance to be measured is immobilized in advance on a carrier such as glass beads (US Pat. No. 3,652,761). The ligand used is an antigen or antibody that specifically reacts with the substance to be measured. As a method for immobilizing the ligand on the carrier surface, there is a method of physically adsorbing the antibody 2 etc. on the surface of the carrier 1 as shown in FIG. 7(A), and a method as shown in FIG. 7(B).
), a method is used in which antibody 2 or the like is covalently bonded to carrier surface 1 using coupling agent 3.

このような免疫検定用担体と被測定物質を含むサンプル
とを反応させることにより、被測定物質が担体表面のリ
ガンドに捕獲される。続いて、担体に結合された被測定
物質(Bound )と結合されなかった被測定物質(
Free)との分離(以下ではB/P分離という)を行
う。次に、被測定物質と親和性を有し、且つ酵素または
蛍光物質等で標識した第二のリガンドを反応させた後、
B/P分離を行う。第二のリガンドが酵素で標識されて
いる場合には、該酵素に対する基質を添加して酵素量に
応じた発色反応を生じさせ、生成した色素を比色定量す
ることによって、被測定物質の量を間接的に測定するこ
とができる。第二のリガンドが蛍光物質で標識されてい
る場合は、励起光を照射して発生した蛍光を測定するこ
とにより、被測定物質の量を間接的に測定することがで
きる。
By reacting such an immunoassay carrier with a sample containing a substance to be measured, the substance to be measured is captured by the ligand on the surface of the carrier. Next, the analyte bound to the carrier (Bound) and the unbound analyte (Bound) are separated.
Free) (hereinafter referred to as B/P separation). Next, after reacting with a second ligand that has an affinity for the substance to be measured and is labeled with an enzyme or a fluorescent substance,
Perform B/P separation. When the second ligand is labeled with an enzyme, the amount of the analyte can be determined by adding a substrate for the enzyme to cause a coloring reaction depending on the amount of the enzyme, and colorimetrically quantifying the produced dye. can be measured indirectly. When the second ligand is labeled with a fluorescent substance, the amount of the substance to be measured can be indirectly measured by irradiating it with excitation light and measuring the generated fluorescence.

上記のような免疫測定の感度は、担体表面に固定化した
リガンドと被測定物質との反応確率に依存し、この反応
確率は両者の濃度に比例する。従って、測定感度を向上
させるためには、より多くのリガンドを担体表面に固定
化しなければならない。
The sensitivity of the above-mentioned immunoassay depends on the probability of reaction between the ligand immobilized on the surface of the carrier and the substance to be measured, and this reaction probability is proportional to the concentration of both. Therefore, in order to improve measurement sensitivity, more ligands must be immobilized on the carrier surface.

例えば第7図(A)で説明したようにして、直径6.3
Hのポリスチレンビーズを固相担体1として用い、この
表面に抗1gG抗体2を種々の密度で物理的に吸着した
とき、得られた免疫学的測定用担体の反応性は第8図に
示したように変化した。
For example, as explained in FIG. 7(A), a diameter of 6.3
When anti-1gG antibody 2 was physically adsorbed onto the surface of H polystyrene beads as the solid phase carrier 1 at various densities, the reactivity of the obtained immunoassay carrier was shown in Figure 8. It changed like this.

即ち、ポリスチレンビーズ1の単位面積当りの抗体吸着
量に比例して、反応性は増大する。
That is, the reactivity increases in proportion to the amount of antibody adsorbed per unit area of the polystyrene beads 1.

しかし、第8図の結果から明らかなように、抗体吸着量
が一定の値に達したところで反応性は飽和し、これを越
えると反応性は逆に低下する。その理由は、第9図(A
)に示したように、隣接する抗1gG抗体2の間の距離
が一定の値a(抗1gG抗体2の幅)よりも短くなると
、相互の電気的な緩衝によって抗原4を寄せ付けること
ができなくなるからである。この状態では、抗1gG抗
体2は1:1で抗原4を結合できなくなるなめ、反応性
が低下するのである。抗1gG抗体2と抗原4とが1=
1で結合するためには、第9図(B)に示したように、
隣接する抗1gG抗体2の間の距離すがaの2倍以上で
なければならないことが実験によって明らかにされてい
る。
However, as is clear from the results shown in FIG. 8, the reactivity is saturated when the amount of antibody adsorption reaches a certain value, and beyond this, the reactivity decreases. The reason is shown in Figure 9 (A
), when the distance between adjacent anti-1gG antibodies 2 becomes shorter than a certain value a (width of anti-1gG antibodies 2), antigens 4 cannot be brought together by mutual electrical buffering. Because it will disappear. In this state, anti-1gG antibody 2 is no longer able to bind antigen 4 in a 1:1 ratio, resulting in decreased reactivity. Anti-1gG antibody 2 and antigen 4 = 1
In order to combine with 1, as shown in Figure 9 (B),
Experiments have revealed that the distance between adjacent anti-1gG antibodies 2 must be at least twice a.

従って、上記の飽和値以上に反応性を増大させるために
は、ポリスチレンビーズ1の表面積を増大させなければ
ならない。そのための手段として、ビーズ1に粗面化処
理を施すことも可能である。
Therefore, in order to increase the reactivity above the saturation value mentioned above, the surface area of the polystyrene beads 1 must be increased. As a means for this purpose, it is also possible to subject the beads 1 to surface roughening treatment.

しかし、これによって表面積を増大させ得る効果は僅か
なもので、上記目的を満足させ得るものではない。
However, the effect of increasing the surface area by this method is slight, and the above object cannot be satisfied.

〔発明が解決しようとする課題〕[Problem to be solved by the invention]

本発明は上記事情に鑑みてなされたもので、その課題は
、固相担体の表面積を顕著に増大させることによって、
飽和を伴うことなくより多くのリガンドを結合し、免疫
学的測定用担体の反応効率を向上することである。
The present invention has been made in view of the above circumstances, and its object is to significantly increase the surface area of the solid support,
The objective is to bind more ligands without saturation and improve the reaction efficiency of immunoassay carriers.

〔課題を解決するための手段〕[Means to solve the problem]

上記課題を達成するために、本発明の免疫学的測定用担
体では、リガンドを固定化するための固相担体として、
複数の担体を抗原抗体反応により結合させた複合担体を
用いた。
In order to achieve the above object, the carrier for immunological assay of the present invention, as a solid phase carrier for immobilizing a ligand,
A composite carrier was used in which multiple carriers were bound together through an antigen-antibody reaction.

即ち、本発明による免疫学的測定用複合担体は、表面に
第一抗体が固定化された一次固相担体と、表面に第一抗
体が固定化された二次固相担体粒子と、これら両組体の
第一抗体に特異的に結合して両組体を連結する第一抗原
と、前記第二担体粒子の表面に固定化され、測定対象で
ある第二抗原と特異的に反応する第二抗体とを具備した
ことを特徴とするものである。
That is, the composite carrier for immunoassay according to the present invention comprises a primary solid phase carrier having a first antibody immobilized on its surface, a secondary solid phase carrier particle having a first antibody immobilized on its surface, and both of these particles. a first antigen that specifically binds to the first antibody of the assembly and connects both the assembly; and a second antigen that is immobilized on the surface of the second carrier particle and reacts specifically with the second antigen to be measured. It is characterized by comprising two antibodies.

上記の免疫学的測定用複合担体において、一次担体およ
び二次担体を連結するため第一抗体は、測定対象と特異
的に反応するための第二抗体と同じであってもよく、異
なってもよい。
In the above composite carrier for immunoassay, the first antibody for linking the primary carrier and the secondary carrier may be the same as or different from the second antibody for specifically reacting with the measurement target. good.

また、第二抗体を二次固相担体粒子たけでなく、一次固
相担体の表面に固定化してもよい。
Furthermore, the second antibody may be immobilized not only on the secondary solid phase carrier particles but also on the surface of the primary solid phase carrier.

更に、上記の免疫学的測定用複合担体は抗原を測定する
ためのものであるが、本発明によれば、抗体を測定対象
とする免疫学的測定用担体も同様にして構成することが
可能である。即ち、この場合には抗原と抗体との関係を
逆にすればよい。
Furthermore, although the above-mentioned composite carrier for immunoassay is for measuring an antigen, according to the present invention, a carrier for immunoassay that targets antibodies to be measured can be constructed in the same manner. It is. That is, in this case, the relationship between antigen and antibody may be reversed.

本発明による免疫#j定定法法、上記の免疫測定用複合
担体を用いることを特徴とするもので、それ以外は従来
の方法と同じである。
The immunoassay #j standard method according to the present invention is characterized by using the above-mentioned composite carrier for immunoassay, and is otherwise the same as the conventional method.

〔作 用〕[For production]

本発明による免疫測定用複合担体粒子は、リガンドを固
定化するための固相担体として、一次固相担体の表面に
二次固相担体粒子を連結した複合担体を用いている。こ
のため、担体の表面積は従来のものよりも著しく増大す
る。従って、反応性の飽和を生じない範囲でより多くの
リガンドを固定化することができ、従来よりも格段に優
れた免疫反応性を得ることができる。
The composite carrier particles for immunoassay according to the present invention use a composite carrier in which secondary solid phase carrier particles are connected to the surface of a primary solid phase carrier as a solid phase carrier for immobilizing a ligand. Therefore, the surface area of the carrier is significantly increased compared to conventional carriers. Therefore, more ligands can be immobilized without causing saturation of reactivity, and much better immunoreactivity than before can be obtained.

〔実施例〕〔Example〕

以下、図面を参照して本発明の実施例を詳細に説明する
Embodiments of the present invention will be described in detail below with reference to the drawings.

第1図(A)は、抗原測定用複合担体の一実施例をを示
す図である。この実施例では、第一抗体および第二抗体
として同じ抗体が用いられている。
FIG. 1(A) is a diagram showing an example of a composite carrier for antigen measurement. In this example, the same antibody is used as the first and second antibody.

同図において、11は一次固相担体、12は二次固相担
体粒子である。一次固相担体11としては、例えばガラ
スピーズ及びポリスチレンビーズ等の球形粒子や、マイ
クロプレートのウェル壁を用いることができる。また、
二次固相担体粒子12としては、例えばガラスピーズ、
ポリスチレンビーズ、ラテックスビーズ等を用いること
ができる。
In the figure, 11 is a primary solid phase carrier, and 12 is a secondary solid phase carrier particle. As the primary solid phase carrier 11, for example, spherical particles such as glass beads and polystyrene beads, or well walls of a microplate can be used. Also,
As the secondary solid phase carrier particles 12, for example, glass beads,
Polystyrene beads, latex beads, etc. can be used.

一次固相担体11および二次固相担体粒子12の表面に
は、物理的吸着またはカップリング剤を介することによ
り、抗1gG抗体13が固定化されている。一次固相担
体11および二次固相担体粒子12に固定化された抗1
gG抗体13.13は何れも抗原14に結合されており
、これによって二次固相担体粒子12は一次固相担体1
1に連結されている。二次固相担体粒子12の表面に固
定化された抗1gG抗体13・・・のうち、一次固相担
体11との連結に使用されずにフリーの状態で残ってい
るものは、測定サンプル中に存在する抗原との免疫反応
に用いられる。なお、抗原14はこの免疫測定用複合担
体を用いて測定すべき抗原と同じものである。
Anti-1gG antibody 13 is immobilized on the surfaces of primary solid phase carrier 11 and secondary solid phase carrier particles 12 by physical adsorption or via a coupling agent. Anti-1 immobilized on the primary solid phase carrier 11 and the secondary solid phase carrier particles 12
Both of the gG antibodies 13 and 13 are bound to the antigen 14, so that the secondary solid phase carrier particles 12 are bonded to the primary solid phase carrier 1.
1. Among the anti-1gG antibodies 13 immobilized on the surface of the secondary solid phase carrier particles 12, those remaining in a free state without being used for coupling with the primary solid phase carrier 11 are contained in the measurement sample. used for immune reactions with antigens present in Incidentally, the antigen 14 is the same as the antigen to be measured using this composite carrier for immunoassay.

上記実施例によれば、反応性の飽和ないし低下を生じる
ことなく、従来よりも多くの抗1gG抗体13を固定化
することができる。従って、この複合担体を用いれば、
免疫学的測定における反応効率を向上することができる
According to the above embodiment, more anti-1gG antibody 13 can be immobilized than before without saturation or reduction of reactivity. Therefore, if this composite carrier is used,
The reaction efficiency in immunological measurements can be improved.

第1図(B)は、第1図(A)の実施例の変形例を示す
図である。この変形例では、一次固相担体11の表面に
も、測定すべきサンプル中の抗原と反応し得るフリーの
抗1gG抗体13が設けられている。それ以外は、全て
第1図(A)の実施例と同じである。これによって、免
疫反応性をより向上することができる。
FIG. 1(B) is a diagram showing a modification of the embodiment of FIG. 1(A). In this modification, a free anti-1gG antibody 13 capable of reacting with the antigen in the sample to be measured is also provided on the surface of the primary solid phase carrier 11. Everything else is the same as the embodiment shown in FIG. 1(A). Thereby, immunoreactivity can be further improved.

第2図(A)は、抗原測定用複合担体の他の実施例を示
す図である。この実施例では、第一抗体および第二抗体
として異なる抗体が用いられている。即ち、第一抗体と
しては第1図(A)の実施例と同じく抗1gG抗体13
を用いたが、第二抗体としては抗HBs抗体15を用い
た。従って、次固相担体11と二次固相担体粒子12と
は抗原14を介して連結される。また、この免疫学的測
定用複合担体はHBs抗原の測定に用いられる。
FIG. 2(A) is a diagram showing another example of a composite carrier for antigen measurement. In this example, different antibodies are used as the first and second antibodies. That is, as the first antibody, anti-1gG antibody 13 was used as in the example of FIG. 1(A).
However, anti-HBs antibody 15 was used as the second antibody. Therefore, the secondary solid phase carrier 11 and the secondary solid phase carrier particles 12 are linked via the antigen 14. Further, this composite carrier for immunological measurement is used for measurement of HBs antigen.

それ以外は第1図(A)の実施例と同じであり、同様の
効果を得ることができる。
The rest is the same as the embodiment shown in FIG. 1(A), and the same effects can be obtained.

第2図(B)は、第2図(A)の実施例の変形例を示す
図である。この変形例では、一次固相担体1の表面にも
、測定すべきサンプル中のHBs抗原と反応し得るフリ
ーの抗HBs抗体15が設けられている。それ以外は、
全て第2図(A)の実施例と同じである。これによって
、免疫反応性を第2図(A)の実施例よりも更に向上す
ることができる。
FIG. 2(B) is a diagram showing a modification of the embodiment of FIG. 2(A). In this modification, a free anti-HBs antibody 15 capable of reacting with the HBs antigen in the sample to be measured is also provided on the surface of the primary solid phase carrier 1. Other than that,
Everything is the same as the embodiment shown in FIG. 2(A). Thereby, the immunoreactivity can be further improved than in the example shown in FIG. 2(A).

第3図(A)は、抗体測定用複合担体の一実施例を示す
図である。この実施例では、第一抗原および第二抗原と
して同じ抗原が用いられている。
FIG. 3(A) is a diagram showing an example of a composite carrier for antibody measurement. In this example, the same antigen is used as the first and second antigen.

同図において、21は一次固相担体、22は二次固相担
体粒子である。一次固相担体21としては、例えばガラ
スピーズ及びポリスチレンビーズ等の球形粒子や、マイ
クロプレートのウェル壁を用いることができる。また、
二次固相担体粒子22としては、例えばガラスピーズ、
ポリスチレンビーズ、ラテックスビーズ等を用いること
ができる。
In the figure, 21 is a primary solid phase carrier, and 22 is a secondary solid phase carrier particle. As the primary solid support 21, for example, spherical particles such as glass beads and polystyrene beads, or well walls of a microplate can be used. Also,
As the secondary solid phase carrier particles 22, for example, glass beads,
Polystyrene beads, latex beads, etc. can be used.

一次固相担体21および二次固相担体粒子22の表面に
は、物理的吸着またはカップリング剤を介することによ
り、抗1gG抗体と特異的に結合する抗原23が固定化
されている。一次固相担体21および二次固相担体粒子
22に固定化された抗原23.23は何れも抗1gG抗
体24に結合されており、これによって二次固相担体粒
子22は一次固相担体21に連結されている。二次固相
担体粒子22の表面に固定化された抗原23・・・のう
ち、一次固相担体11との連結に使用されずにフリーの
状態で残っているものは、測定サンプル中に存在する抗
1gG抗体との免疫反応に用いられる。抗IgG抗体2
4は、この免疫測定用複合担体を用いて測定すべき抗体
と同じものである。
An antigen 23 that specifically binds to the anti-1gG antibody is immobilized on the surfaces of the primary solid phase carrier 21 and the secondary solid phase carrier particles 22 by physical adsorption or via a coupling agent. The antigens 23 and 23 immobilized on the primary solid phase carrier 21 and the secondary solid phase carrier particles 22 are both bound to the anti-1gG antibody 24, so that the secondary solid phase carrier particles 22 is connected to. Among the antigens 23 immobilized on the surface of the secondary solid phase carrier particles 22, those that are not used for coupling with the primary solid phase carrier 11 and remain in a free state are present in the measurement sample. It is used for immunoreaction with anti-1gG antibody. Anti-IgG antibody 2
4 is the same antibody to be measured using this composite carrier for immunoassay.

上記実施例によれば、反応性の飽和ないし低下を生じる
ことなく、従来よりも多くの抗原23を固定化すること
ができる。従って、この複合担体を用いれば、抗1gG
抗体の免疫学的測定における反応効率を向上することが
できる。
According to the above embodiment, more antigens 23 can be immobilized than before without saturation or reduction of reactivity. Therefore, if this composite carrier is used, anti-1gG
The reaction efficiency in immunoassay of antibodies can be improved.

第3図(B)は、第3図(A)の実施例の変形例を示す
図である。この変形例では、一次固相担体21の表面に
も、測定すべきサンプル中の抗IgG抗体と反応し得る
フリーの抗原23が設けられている。それ以外は、全て
第3図(A)の実施例と同じである。これによって、免
疫反応性をより向上することができる。
FIG. 3(B) is a diagram showing a modification of the embodiment of FIG. 3(A). In this modification, a free antigen 23 that can react with the anti-IgG antibody in the sample to be measured is also provided on the surface of the primary solid phase carrier 21. Everything else is the same as the embodiment shown in FIG. 3(A). Thereby, immunoreactivity can be further improved.

第4図(A)は、抗体測定用複合担体の他の実施例を示
す図である。この実施例では、第一抗原および第二抗原
として異なる抗原が用いられている。即ち、第一抗体と
しては第3図(A)の実施例と同じ抗原23を用いたが
、第二抗体としてはHBs抗原25を用いた。従って、
一次固相担体21と二次固相担体粒子22とは抗1gG
抗体24を介して連結される。また、この免疫学的測定
用複合担体は抗HBs抗体の測定に用いられる。それ以
外は第3図(A)の実施例と同じであり、同様の効果を
得ることができる。
FIG. 4(A) is a diagram showing another example of a composite carrier for antibody measurement. In this example, different antigens are used as the first and second antigens. That is, as the first antibody, the same antigen 23 as in the example of FIG. 3(A) was used, but as the second antibody, HBs antigen 25 was used. Therefore,
The primary solid phase carrier 21 and the secondary solid phase carrier particles 22 are anti-1gG.
linked via antibody 24. Moreover, this composite carrier for immunological measurement is used for the measurement of anti-HBs antibodies. The rest is the same as the embodiment shown in FIG. 3(A), and the same effects can be obtained.

第4図(B)は、第4図(A)の実施例の変形例を示す
図である。この変形例では、一次固相担体1の表面にも
、測定すべき抗HBs抗原と反応し得るフリーのHBs
抗原25か設けられている。
FIG. 4(B) is a diagram showing a modification of the embodiment of FIG. 4(A). In this modification, free HBs that can react with the anti-HBs antigen to be measured is also present on the surface of the primary solid phase carrier 1.
25 antigens are provided.

それ以外は、全て第4図(A)の実施例と同じである。Everything else is the same as the embodiment shown in FIG. 4(A).

これによって、免疫反応性を第4図(A)の実施例より
も更に向上することができる。
This allows the immunoreactivity to be further improved than in the example shown in FIG. 4(A).

次に、本発明による免疫測定用複合担体の製造およびこ
れを用いた免疫学的測定に関する具体的実施例について
説明する。
Next, specific examples regarding the production of a composite carrier for immunoassay according to the present invention and immunoassay using the same will be described.

実施例1:HBs抗原測定用複合担体粒子の製造 (1)第一の担体粒子の調製 50個のセキスイ化学社製のポリスチレンビーズ(直径
8.35mm)を、抗HBs抗体1mgを含む0.15
M NaCJ−0,1Mグリシン−NaOH緩衝液(p
H−8,0)1001中に溶解し、撹拌しながら4℃で
60分間反応させた。こうして抗HBs抗体を固相化し
た後、反応液を廃棄した。続いて、0.15M NaC
j−0,1Mグリシン−NaOH緩衝液(pH−8,0
) 100m1を添加して洗浄し、同様の洗浄操作を更
に2回行った。
Example 1: Production of composite carrier particles for HBs antigen measurement (1) Preparation of first carrier particles 50 polystyrene beads (diameter 8.35 mm) manufactured by Sekisui Chemical Co., Ltd.
M NaCJ-0, 1M glycine-NaOH buffer (p
H-8,0) 1001 and reacted for 60 minutes at 4°C with stirring. After immobilizing the anti-HBs antibody in this manner, the reaction solution was discarded. followed by 0.15M NaC
j-0,1M glycine-NaOH buffer (pH-8,0
) 100ml was added and washed, and the same washing operation was performed two more times.

洗浄液を廃棄した後に、10%BSA−0,15M N
aCJ−0,1Mグリシン−NaOH緩衝液(pH−7
,5)を添加し、撹拌しながら4℃で60分間反応させ
た。先の固相化反応の場合と同様、反応液を廃棄した後
、0.05%Tween20−0.15M NaCj−
0,1Mグリシン−NaOH緩衝液(pH48,0) 
100+alを添加して洗浄する操作を3回行った。
After discarding the washing solution, add 10% BSA-0.15M N
aCJ-0, 1M glycine-NaOH buffer (pH-7
, 5) was added thereto, and the mixture was reacted at 4° C. for 60 minutes with stirring. As in the case of the previous solid phase reaction, after discarding the reaction solution, add 0.05% Tween20-0.15M NaCj-
0.1M glycine-NaOH buffer (pH 48.0)
The operation of adding 100+al and washing was performed three times.

(2)第二の担体粒子の調製 セキスイ化学社製ラテックスビーズN−200(直径0
.2μIl)を0.1Mグリシン−NaOH水溶液(p
H−8,0)に溶解し、0,1%のラテックス懸濁液を
調製した。このラテックス懸濁液中に抗HBs抗体lI
Igを溶解し、撹拌しながら4℃で60分間反応させた
。反応終了後、5000rpmで5分間の遠心操作を施
し、抗体を固相化したラテックスビーズを沈降させた後
、吸引により上澄みを除去した。次いで、0.05%T
ween20−0.15M NaCJ−0,1Mグリシ
ン−NaOH緩衝液(pH−8,0) LOOmlを添
加して洗浄する操作を3回行った。
(2) Preparation of second carrier particles Latex beads N-200 manufactured by Sekisui Chemical Co., Ltd. (diameter 0
.. 2μIl) was added to a 0.1M glycine-NaOH aqueous solution (p
H-8.0) to prepare a 0.1% latex suspension. Anti-HBs antibody lI was added to this latex suspension.
Ig was dissolved and allowed to react at 4° C. for 60 minutes with stirring. After the reaction was completed, centrifugation was performed at 5000 rpm for 5 minutes to sediment the latex beads immobilized with antibodies, and the supernatant was removed by suction. Then 0.05%T
An operation of adding LOOml of ween20-0.15M NaCJ-0, 1M glycine-NaOH buffer (pH-8,0) and washing was performed three times.

洗浄の後、10%BSA−0,15M NaCj−0,
1Mグリシン−NaOH緩衝液(pH=7.5)を添加
し、撹拌しながら4℃で60分間反応させた。反応終了
後、5000rpmで5分間の遠心操作を施し、抗体を
固相化したラテックスビーズを沈降させた後、吸引によ
り上澄みを除去した。続いて、0.05%Tween2
0−0.15MNaCj−0,1Mグリシン−NaOH
緩衝液(pH−8,0) 1001を添加して洗浄する
操作を3回行った。
After washing, 10% BSA-0, 15M NaCj-0,
1M glycine-NaOH buffer (pH=7.5) was added, and the mixture was reacted at 4°C for 60 minutes with stirring. After the reaction was completed, centrifugation was performed at 5000 rpm for 5 minutes to sediment the latex beads immobilized with antibodies, and the supernatant was removed by suction. Next, 0.05% Tween2
0-0.15M NaCj-0,1M glycine-NaOH
An operation of adding buffer solution (pH-8, 0) 1001 and washing was performed three times.

(3)複合担体粒子の製造 先に(1)で調製した第一の担体粒子50個と、HBs
抗原50μgを含む10%ヤギ血清−1%BSA−3%
ゼラチンー0.05%Tween20−0.1M PB
S(pH−7,0)LOOmlとを、4℃で30分間反
応させた。反応終了後、吸引により反応液を除去し、0
.05%Tween20−0.1M PBS(pH=7
.0) 100m1を添加して洗浄した。
(3) 50 first carrier particles prepared in (1) and HBs at the manufacturer of composite carrier particles.
10% goat serum containing 50 μg of antigen - 1% BSA - 3%
Gelatin-0.05% Tween20-0.1M PB
S(pH-7,0) LOOml was reacted at 4°C for 30 minutes. After the reaction is complete, remove the reaction solution by suction and reduce to 0.
.. 05% Tween20-0.1M PBS (pH=7
.. 0) Added 100ml and washed.

、この洗浄操作を更に2回繰り返した。This washing operation was repeated two more times.

一方、10%ヤギ血清−1%BSA−3%ゼラチンー0
.05%Tveen20−0.1M PBS(pH−7
,0)LOOmlを用い、(2)で調製した第二の担体
粒子の0.025%懸濁液を調製した。
Meanwhile, 10% goat serum - 1% BSA - 3% gelatin - 0
.. 05%Tveen20-0.1M PBS (pH-7
, 0) A 0.025% suspension of the second carrier particles prepared in (2) was prepared using LOOml.

次に、上記で処理された第一の担体粒子を、この第二の
担体粒子懸濁液に添加して反応させた。
Next, the first carrier particles treated above were added to this second carrier particle suspension and allowed to react.

吸引により反応液を除去した後、0.05%Tシeen
20−0.1M PBS(pH=7.0) 10hlを
添加して洗浄し、この洗浄操作を更に2回繰り返した。
After removing the reaction solution by suction, add 0.05% T-seen.
10 hl of 20-0.1M PBS (pH=7.0) was added for washing, and this washing operation was repeated two more times.

実施例2 : HBs抗原の測定 (1)HBs抗原陽性のヒト血清を、10%ヤギ血清−
1%BS^−3%ゼラチンー0.05%Tveen20
−0、OIM PBS(pH−7,0)を用いて稀釈し
た。こうして、稀釈倍率の異なる多数の血清溶解液サン
プルを調製した。
Example 2: Measurement of HBs antigen (1) HBs antigen positive human serum was mixed with 10% goat serum -
1% BS^-3% gelatin-0.05% Tveen20
-0, diluted with OIM PBS (pH-7,0). In this way, a large number of serum lysate samples with different dilution ratios were prepared.

(2)実施例1で製造した複合担体粒子を試験管に収容
し、上記で調製した血清溶解液サンプル300μgを添
加した後、37℃で60分間反応させた。
(2) The composite carrier particles produced in Example 1 were placed in a test tube, and 300 μg of the serum solution sample prepared above was added thereto, followed by reaction at 37° C. for 60 minutes.

反応液を吸引除去した後、0.05%Tween20−
0.01MPBS(pH=7.0) 100+nlを添
加して洗浄し、この洗浄操作を更に2回繰り返した。
After removing the reaction solution by suction, add 0.05% Tween20-
Washing was carried out by adding 100+ nl of 0.01 MPBS (pH=7.0), and this washing operation was repeated two more times.

(3)洗浄液を吸引除去した後、0.0023%0−フ
二二レンジアミンー0.033%過酸化水素−0,1M
炭酸緩衝液(p)I−5,0) 300μgを添加し、
37℃で15分間だけ酵素基質反応を行った。
(3) After removing the cleaning solution by suction, 0.0023% 0-phenylenediamine-0.033% hydrogen peroxide-0.1M
Add 300 μg of carbonate buffer (p)I-5,0),
The enzyme-substrate reaction was performed at 37°C for 15 minutes.

(4)次に、2N硫酸を100μg添加することにより
反応を停止させ、波長492nmにおける吸光度を測定
した。各サンプルの稀釈倍率に対してこの測値をプロッ
トすることにより、第5図に示す検量線(Sl)が得ら
れた。
(4) Next, the reaction was stopped by adding 100 μg of 2N sulfuric acid, and the absorbance at a wavelength of 492 nm was measured. By plotting this measured value against the dilution ratio of each sample, a calibration curve (Sl) shown in FIG. 5 was obtained.

比較のために、従来の免疫測定用担体を用い、上記と同
様の測定を行った。これによって得られた検量線(S2
)を、第5図に併記した。
For comparison, measurements similar to those described above were performed using a conventional immunoassay carrier. The calibration curve obtained by this (S2
) are also shown in Figure 5.

二つの検量線(Sl、S2)を比較すれば明らかなよう
に、本発明の実施例によれば測定レンジを広くとること
ができ、しかもHBs抗原の各濃度において測定感度を
向上することができる。
As is clear from comparing the two calibration curves (Sl, S2), according to the embodiment of the present invention, the measurement range can be widened and the measurement sensitivity can be improved at each concentration of HBs antigen. .

実施例3:HBs抗原測定用複合マイクロプレートの製
造 (1)第一の担体(EIjS^プレート)の調製マイク
ロプレート(NLINC社製のSTRI PPLATE
 4B8687)の各ウェルに、抗HBs抗体1μgを
含む0.01M PBS(pH−7,0) 100μρ
中に溶解し、37℃で60分間反応させた。こうして抗
HBs抗体を固相化した後、マイクロプレートウオッシ
ャ−を用い、300μΩ/ウエルの洗浄液(0,01M
PBS(pH−7,0) )で3回洗浄した。
Example 3: Production of composite microplate for HBs antigen measurement (1) Preparation of first carrier (EIjS^ plate) Microplate (STRI PPLATE manufactured by NLINC)
4B8687), 100 μρ of 0.01 M PBS (pH-7,0) containing 1 μg of anti-HBs antibody.
and reacted at 37°C for 60 minutes. After immobilizing the anti-HBs antibody in this way, using a microplate washer, wash solution (0.01M
Washed three times with PBS (pH-7,0).

洗浄液を廃棄した後に、5%BSA−0,05M Tw
een20−0.OIM PBS(pH−7,0)  
300μgを各ウェルに添加し、37℃で60分間反応
させた。反応終了後、マイクロプレートウオッシャ−を
用い、300μp/ウエルの洗浄液で3回洗浄した。洗
浄液としては、0.05%Tveen20−0.OIM
 PBS(pH−7,0)を用いた。
After discarding the washing solution, add 5% BSA-0,05M Tw
een20-0. OIM PBS (pH-7,0)
300 μg was added to each well and reacted at 37° C. for 60 minutes. After the reaction was completed, the plate was washed three times with a washing solution of 300 μp/well using a microplate washer. As a cleaning solution, 0.05% Tveen20-0. OIM
PBS (pH-7,0) was used.

(2)第二の担体粒子の調製 セキスイ化学社製ラテックスビーズN−200(直径0
.2μl)をo、i河グリシン−NaOH水溶液(p)
l−8,0)に溶解し、0. l1%のラテックス懸濁
液を調製した。このラテックス懸濁液中に抗HBs抗体
IBを溶解し、撹拌しながら4℃で60分間反応させた
。反応終了後、5000rpmで5分間の遠心操作を施
し、抗体を固相化したラテックスビーズを沈降させた後
、吸引により上澄みを除去した。次いで、0.05%T
ween20−0.15M NaCj−0,1Mグリン
ンー NaOH緩衝液(pH=8.0) 100m1を
添加して洗浄する操作を3回行った。
(2) Preparation of second carrier particles Latex beads N-200 manufactured by Sekisui Chemical Co., Ltd. (diameter 0
.. 2μl), i River glycine-NaOH aqueous solution (p)
l-8,0), dissolved in 0. A 1% latex suspension was prepared. Anti-HBs antibody IB was dissolved in this latex suspension, and reacted at 4° C. for 60 minutes with stirring. After the reaction was completed, centrifugation was performed at 5000 rpm for 5 minutes to sediment the latex beads immobilized with antibodies, and the supernatant was removed by suction. Then 0.05%T
An operation of adding 100 ml of ween20-0.15M NaCj-0,1M Green-NaOH buffer (pH=8.0) and washing was performed three times.

洗浄の後、10%BSA−0,15M NaCJ−0,
1Mグリシン−NaOH緩衝液(pH−7,5)を添加
し、撹拌しながら4℃で60分間反応させた。反応終了
後、5000rpmで5分間の遠心操作を施し、抗体を
固相化したラテックスビーズを沈降させた後、吸引によ
り上澄みを除去した。続いて、0.Ω5%Tween2
D−0,15MNaCj−0,1Mグリシン−NaOH
緩衝液(pH−8,0) 1001を添加して洗浄する
操作を3回行った。
After washing, 10% BSA-0, 15M NaCJ-0,
A 1M glycine-NaOH buffer (pH-7,5) was added, and the mixture was reacted at 4°C for 60 minutes with stirring. After the reaction was completed, centrifugation was performed at 5000 rpm for 5 minutes to sediment the latex beads immobilized with antibodies, and the supernatant was removed by suction. Then 0. Ω5% Tween2
D-0,15M NaCj-0,1M glycine-NaOH
An operation of adding buffer solution (pH-8, 0) 1001 and washing was performed three times.

(3)複合マイクロプレートの製造 光に(1)で調製したELISAプレートの各ウェルに
、HBs抗原3ngを含む10%ヤギ血清−1%BSA
−3%ゼラチン−〇、05%Tween20−0.1M
 PBS(pH−7,0)  100μgを添加し、4
℃で60分間反応させた。反応終了後、吸引により反応
液を除去した。
(3) Preparation of composite microplate In each well of the ELISA plate prepared in (1), add 10% goat serum containing 3 ng of HBs antigen to 1% BSA.
-3% Gelatin-〇, 05% Tween20-0.1M
Add 100 μg of PBS (pH-7.0) and
The reaction was carried out at ℃ for 60 minutes. After the reaction was completed, the reaction solution was removed by suction.

続いて、マイクロプレートウオッシャ−を用い、300
μg/ウェルの洗浄液で6回洗浄した。洗浄液としては
、0.05%Tween20−0.DIM PBS(p
H−7,0)を用いた。
Subsequently, using a microplate washer, 300
Washed six times with μg/well washing solution. As the cleaning solution, 0.05% Tween 20-0. DIM PBS(p
H-7,0) was used.

一方、10%ヤギ血清−1%BSA−3%ゼラチンー0
.05%Tween20−0.1M PBS(pH−7
,0)100mlを用い、(2)で調製した第二の担体
粒子の0.025%懸濁液を調製した。
Meanwhile, 10% goat serum - 1% BSA - 3% gelatin - 0
.. 05% Tween20-0.1M PBS (pH-7
, 0) to prepare a 0.025% suspension of the second carrier particles prepared in (2).

次に、この第二の担体粒子懸濁液100μfI/ウエル
を添加し、37℃で60分間反応させた。吸引により反
応液を除去した後、マイクロプレートウオッシャ−を用
い、300μg/ウェルの洗浄液で3回洗浄シタ。洗浄
液ニハ、0.05%Tveen20−0.01MPBS
(pH−7,(1)を用いた。
Next, 100 μfI/well of this second carrier particle suspension was added and reacted at 37° C. for 60 minutes. After removing the reaction solution by suction, the plate was washed three times with 300 μg/well of washing solution using a microplate washer. Cleaning liquid Niha, 0.05% Tveen20-0.01MPBS
(pH-7, (1) was used.

実施例4 : HBs抗原の測定 (1)HBs抗原陽性のヒト血清を、10%ヤギ血清−
1%BSA−3%ゼラチ:/−0,05%Tween2
0−0.01M Pt3S(J)H−7,0)を用いて
稀釈した。こうして、稀釈倍率の異なる多数の血清溶解
液サンプルを調製した。
Example 4: Measurement of HBs antigen (1) HBs antigen positive human serum was mixed with 10% goat serum -
1% BSA-3% gelati:/-0,05% Tween2
0-0.01M Pt3S(J)H-7,0). In this way, a large number of serum lysate samples with different dilution ratios were prepared.

(2)実施例3で製造した複合マイクロプレート担体の
各ウェルに、上記で調製した血清溶解液サンプル100
μρ/ウエルを添加した後、37℃で60分間反応させ
た。反応終了後、マイクロプレートウオッシャ−を用い
、 300μp/ウエルの洗浄液で6回洗浄した。洗浄
液には、0.05%Tween20−0.01M PB
S(pH=7.0)100mlを用いた。
(2) Into each well of the composite microplate carrier prepared in Example 3, 100 samples of the serum lysate prepared above were added.
After adding μρ/well, the reaction was carried out at 37° C. for 60 minutes. After the reaction was completed, the plate was washed six times with a washing solution of 300 μp/well using a microplate washer. The cleaning solution includes 0.05% Tween20-0.01M PB
100 ml of S (pH=7.0) was used.

(3)洗浄液を吸引除去した後、0.0028%0−フ
二二レンジアミンー0.033%過酸化水素−0,1M
炭酸緩衝液(pH=5.0) 100μI)を添加し、
37℃テ15分間だけ酵素基質反応を行った。
(3) After removing the cleaning solution by suction, 0.0028% 0-phinylene diamine-0.033% hydrogen peroxide-0.1M
Add carbonate buffer (pH = 5.0) 100μI),
The enzyme-substrate reaction was carried out for 15 minutes at 37°C.

(4)次に、2N硫酸を100μp添加することにより
反応を停止させ、ELISA RECORDERを用い
て波長492r+mにおける吸光度を測定した。この測
定値を夫々のサンプルの稀釈倍率に対してプロットする
ことにより、第5図に示す検量線(Sl)が得られた。
(4) Next, the reaction was stopped by adding 100 μp of 2N sulfuric acid, and the absorbance at a wavelength of 492r+m was measured using an ELISA RECORDER. By plotting these measured values against the dilution ratio of each sample, a calibration curve (Sl) shown in FIG. 5 was obtained.

比較のために、従来のEL I SA用マイクロプレー
トを用い、上記と同様の測定を行った。これによって得
られた検量線(S2)を、第5図に併記した。
For comparison, measurements similar to those described above were performed using a conventional ELISA microplate. The calibration curve (S2) thus obtained is also shown in FIG.

二つの検量線(SL、S2)を比較すれば明らかなよう
に、本発明の実施例によれば測定レンジを広くとること
ができ、しかもHBs抗原の各濃度において測定感度を
向上゛することができる。
As is clear from comparing the two calibration curves (SL, S2), according to the embodiment of the present invention, the measurement range can be widened and the measurement sensitivity can be improved at each concentration of HBs antigen. can.

〔発明の効果〕〔Effect of the invention〕

以上詳述したように、本発明によれば、反応性の飽和な
いし低下を伴うことなくより多くのリガンドを結合し、
免疫学的測定用担体の反応効率を向上でき、測定精度を
高めることができる等、顕著な効果を得ることができる
As detailed above, according to the present invention, more ligands can be bound without saturation or decrease in reactivity,
Remarkable effects such as improving the reaction efficiency of the carrier for immunological measurements and increasing measurement accuracy can be obtained.

【図面の簡単な説明】[Brief explanation of drawings]

第1図(A)〜第4図(B)は、夫々本発明による免疫
学的測定用複合担体の実施例を示す図、第5図および第
6図は、夫々本発明による免疫学的測定方法の実施例に
おいて作成した検量線を示す図、第7図(A)(B)は
免疫学的測定用担体の一般的な構造を示す図、第8図お
よび第9図(A)(B)は従来の免疫学的測定用担体の
問題点を示す図である。 11.21・・・一次固相担体、12.22・・・二次
固相担体粒子、13.24・・・抗1gG抗体、14゜
23・・・抗原、15・・・抗HBs抗体、25・・・
HBs抗原
FIG. 1(A) to FIG. 4(B) are diagrams showing examples of the composite carrier for immunoassay according to the present invention, and FIGS. 5 and 6 are diagrams showing examples of the composite carrier for immunoassay according to the present invention, respectively. Figures 7(A) and 7(B) are diagrams showing the general structure of immunoassay carriers, and Figures 8 and 9 (A) (B) are diagrams showing the calibration curve prepared in the example of the method. ) is a diagram showing problems with conventional immunoassay carriers. 11.21... Primary solid phase carrier, 12.22... Secondary solid phase carrier particles, 13.24... Anti-1gG antibody, 14°23... Antigen, 15... Anti-HBs antibody, 25...
HBs antigen

Claims (7)

【特許請求の範囲】[Claims] (1)表面に第一抗体が固定化された一次固相担体と、 表面に第一抗体が固定化された二次固相担 体粒子と、 これら両担体の第一抗体に特異的に結合し て両担体を連結する第一抗原と、 前記第二担体粒子の表面に固定化され、測 定対象である第二抗原と特異的に反応する第二抗体とを
具備したことを特徴とする免疫学的測定用複合担体。
(1) A primary solid phase carrier with a first antibody immobilized on its surface, a secondary solid phase carrier particle with a first antibody immobilized on its surface, and a particle that specifically binds to the first antibody on both of these carriers. and a second antibody that is immobilized on the surface of the second carrier particle and reacts specifically with the second antigen to be measured. Composite carrier for quantitative measurements.
(2)前記第一抗体と前記第二抗体とが同じものであり
、前記第一抗原と前記第二抗原とが同じものである請求
項1に記載の免疫学的測定用複合担体。
(2) The composite carrier for immunoassay according to claim 1, wherein the first antibody and the second antibody are the same, and the first antigen and the second antigen are the same.
(3)前記第二抗体が、一次固相担体表面にも固定化さ
れている請求項1または2に記載の免疫学的測定用複合
担体。
(3) The composite carrier for immunoassay according to claim 1 or 2, wherein the second antibody is also immobilized on the surface of the primary solid phase carrier.
(4)表面に第一抗原が固定化された一次固相担体と、 表面に第一抗原が固定化された二次固相担 体粒子と、 これら両担体の第一抗原に特異的に結合し て両担体を連結する第一抗体と、 前記第二担体粒子の表面に固定化され、測 定対象である第二抗体と特異的に反応する第二抗原とを
具備したことを特徴とする免疫学的測定用複合担体。
(4) A primary solid phase carrier with a first antigen immobilized on its surface, a secondary solid phase carrier particle with a first antigen immobilized on its surface, and a particle that specifically binds to the first antigen of both carriers. and a second antigen that is immobilized on the surface of the second carrier particle and reacts specifically with the second antibody to be measured. Composite carrier for quantitative measurements.
(5)前記第一抗原と前記第二抗原とが同じものであり
、前記第一抗体と前記第二抗体とが同じものである請求
項1に記載の免疫学的測定用複合担体。
(5) The composite carrier for immunoassay according to claim 1, wherein the first antigen and the second antigen are the same, and the first antibody and the second antibody are the same.
(6)前記第二抗原が、一次固相担体表面にも固定化さ
れている請求項1または2に記載の免疫学的測定用複合
担体。
(6) The composite carrier for immunoassay according to claim 1 or 2, wherein the second antigen is also immobilized on the surface of the primary solid phase carrier.
(7)請求項1〜6の何れかに記載の免疫学的測定用複
合担体を、測定すべき抗原または抗体を含むサンプル溶
液と反応させることにより、前記抗原または抗体を前記
複合担体に結合させて捕獲する工程を具備したことを特
徴とする免疫学的測定方法。
(7) The antigen or antibody is bound to the composite carrier by reacting the composite carrier for immunological assay according to any one of claims 1 to 6 with a sample solution containing the antigen or antibody to be measured. An immunological measurement method characterized by comprising a step of capturing the target.
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Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2010096677A (en) * 2008-10-17 2010-04-30 Toray Ind Inc Nano particle for sensitive immunological measurement having antibody/antigen binding capability
JP2011505580A (en) * 2008-12-23 2011-02-24 インダストリー−アカデミック コーポレーション ファウンデーション, ヨンセイ ユニバーシティ Bioprobe, manufacturing method thereof, analysis apparatus and analysis method using the same
JP2013083632A (en) * 2011-09-28 2013-05-09 Fujifilm Corp Method for measuring substance to be measured using fluorescent particle

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2010096677A (en) * 2008-10-17 2010-04-30 Toray Ind Inc Nano particle for sensitive immunological measurement having antibody/antigen binding capability
JP2011505580A (en) * 2008-12-23 2011-02-24 インダストリー−アカデミック コーポレーション ファウンデーション, ヨンセイ ユニバーシティ Bioprobe, manufacturing method thereof, analysis apparatus and analysis method using the same
JP2013083632A (en) * 2011-09-28 2013-05-09 Fujifilm Corp Method for measuring substance to be measured using fluorescent particle

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