JPH04232850A - 電気泳動分離のための内部標準 - Google Patents
電気泳動分離のための内部標準Info
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- JPH04232850A JPH04232850A JP3196018A JP19601891A JPH04232850A JP H04232850 A JPH04232850 A JP H04232850A JP 3196018 A JP3196018 A JP 3196018A JP 19601891 A JP19601891 A JP 19601891A JP H04232850 A JPH04232850 A JP H04232850A
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Classifications
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/68—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving proteins, peptides or amino acids
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
-
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- C12Q1/6813—Hybridisation assays
- C12Q1/6827—Hybridisation assays for detection of mutation or polymorphism
- C12Q1/683—Hybridisation assays for detection of mutation or polymorphism involving restriction enzymes, e.g. restriction fragment length polymorphism [RFLP]
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【0001】本発明は、電気泳動分離におけるバンド位
置を同定する方法に関する。
置を同定する方法に関する。
【0002】電気泳動は、電場の影響下に液体媒質中の
帯電した溶質または粒子の移動を呼ぶ。電気泳動分離は
高分子の分析に広く使用されている。タンパク質および
核酸配列の同定は、とくに重要である。このような分離
は、大きさおよび/または電荷の差に基づくことができ
る。電気泳動は支持されていない液体媒質(例えば、毛
管電気泳動)中で実施することができるが、より普通に
は液体媒質は固体の支持媒質を通して移動することがで
きる。最も広く使用されている支持媒質はゲル、例えば
、ポリアクリルアミドゲルおよびアガロースゲルである
。
帯電した溶質または粒子の移動を呼ぶ。電気泳動分離は
高分子の分析に広く使用されている。タンパク質および
核酸配列の同定は、とくに重要である。このような分離
は、大きさおよび/または電荷の差に基づくことができ
る。電気泳動は支持されていない液体媒質(例えば、毛
管電気泳動)中で実施することができるが、より普通に
は液体媒質は固体の支持媒質を通して移動することがで
きる。最も広く使用されている支持媒質はゲル、例えば
、ポリアクリルアミドゲルおよびアガロースゲルである
。
【0003】ヌクレオチド配列は、均一な電荷を有し、
したがって大きさの差に基づいて分離される。タンパク
質は大きさおよび電荷の両者が異なり、そして性質に基
づくか、あるいは2つの組み合わせにより分離すること
ができる。タンパク質は、それに均一な電荷対大きさの
比を与えるドデシル硫酸ナトリウム(SDS)を使用す
ることによって、大きさの差に基づいてのみ分離するこ
とができる。
したがって大きさの差に基づいて分離される。タンパク
質は大きさおよび電荷の両者が異なり、そして性質に基
づくか、あるいは2つの組み合わせにより分離すること
ができる。タンパク質は、それに均一な電荷対大きさの
比を与えるドデシル硫酸ナトリウム(SDS)を使用す
ることによって、大きさの差に基づいてのみ分離するこ
とができる。
【0004】篩でないゲルは分子の流れを妨害せず、そ
して分離される種の電荷にのみ基づく分離に使用される
。等電点電気泳動において、種は篩でないゲル中でつく
られるpHの勾配に沿って移動して、最後に種はそれら
の等電点に到達する。
して分離される種の電荷にのみ基づく分離に使用される
。等電点電気泳動において、種は篩でないゲル中でつく
られるpHの勾配に沿って移動して、最後に種はそれら
の等電点に到達する。
【0005】篩のゲルは分子の流れを妨害する。ゲルの
孔の大きさは、ゲルを通して自由に流れることができる
分子の大きさを決定する。ゲルを通して移動する時間は
、分子の大きさが増加するにつれて、増加する。結局、
小さい分子は大きい分子より急速にゲルを通して移動す
る。このようなゲルは大きさに基づくか、あるいは大き
さ/電荷に基づく分離に使用される。
孔の大きさは、ゲルを通して自由に流れることができる
分子の大きさを決定する。ゲルを通して移動する時間は
、分子の大きさが増加するにつれて、増加する。結局、
小さい分子は大きい分子より急速にゲルを通して移動す
る。このようなゲルは大きさに基づくか、あるいは大き
さ/電荷に基づく分離に使用される。
【0006】電気泳動の臨床的適用について主要な問題
は、この方法の固有の変動性である。変動性の多くは、
とくにゲルのへりにおける、ゲルを通る不均一な移動の
ためである。しかしながら、温度、時間、電圧および電
流は、また、分離に影響を与える。通常、既知の大きさ
(または等電点)の1または2以上の種を包含する対照
は、試料と同一の条件下に電気泳動して、そのゲルにつ
いての既知の大きさ(または電荷)のマーカーを得る。 スラブゲルについて、通常対照はゲルの一方または双方
のへりにおいて、そして時には、また、ゲルの中央線に
おいて展開する。しかしながら、試料の分子の明瞭な同
定は、とくにゲルのへりにおいて、レーン対レーンまた
はゲル対ゲルの比較により、しばしば行うことができな
い。
は、この方法の固有の変動性である。変動性の多くは、
とくにゲルのへりにおける、ゲルを通る不均一な移動の
ためである。しかしながら、温度、時間、電圧および電
流は、また、分離に影響を与える。通常、既知の大きさ
(または等電点)の1または2以上の種を包含する対照
は、試料と同一の条件下に電気泳動して、そのゲルにつ
いての既知の大きさ(または電荷)のマーカーを得る。 スラブゲルについて、通常対照はゲルの一方または双方
のへりにおいて、そして時には、また、ゲルの中央線に
おいて展開する。しかしながら、試料の分子の明瞭な同
定は、とくにゲルのへりにおいて、レーン対レーンまた
はゲル対ゲルの比較により、しばしば行うことができな
い。
【0007】分析用ゲルの調製および染色はよく知られ
ている。例えば、臭化エチジウムを使用して染色される
3%のヌシーブ(Nusieve)1%のアガロースゲ
ルは、ベルウィンクル(Boerwinkle)ら、P
NAS 86:212−216(1989)に記載さ
れている。銀の染色を使用するポリアクリルアミドゲル
中のDNAの検出は、次の文献に記載されている:ゴー
ルドマン(Goldman)ら、電気泳動(Elect
rophoresis)3:24−26(1982);
マーシャル(Marshall)、電気泳動(Elec
trophoresis)4:269−272(198
3);テゲルストロム(Tegelstrom)、電気
泳動(Electrophoresis)7:226−
229(1987);およびアレン(Allen)ら、
バイオテクニークス(BioTechniques)7
:736−744(1989)。アレン(Allen)
らが記載する方法は、大きい孔大きさの極めて薄い層の
、再水和可能なポリアクリルアミドゲルを使用し、銀で
染色する。
ている。例えば、臭化エチジウムを使用して染色される
3%のヌシーブ(Nusieve)1%のアガロースゲ
ルは、ベルウィンクル(Boerwinkle)ら、P
NAS 86:212−216(1989)に記載さ
れている。銀の染色を使用するポリアクリルアミドゲル
中のDNAの検出は、次の文献に記載されている:ゴー
ルドマン(Goldman)ら、電気泳動(Elect
rophoresis)3:24−26(1982);
マーシャル(Marshall)、電気泳動(Elec
trophoresis)4:269−272(198
3);テゲルストロム(Tegelstrom)、電気
泳動(Electrophoresis)7:226−
229(1987);およびアレン(Allen)ら、
バイオテクニークス(BioTechniques)7
:736−744(1989)。アレン(Allen)
らが記載する方法は、大きい孔大きさの極めて薄い層の
、再水和可能なポリアクリルアミドゲルを使用し、銀で
染色する。
【0008】前述の参考文献の各を、ここに引用によっ
て加える本発明は、電気泳動分離においてバンド位置を
同定する方法を提供する。この方法は、試料と一緒に内
部標準として少なくとも1つの対照を電気泳動すること
からなる。この方法は、電気泳動分離が大きさ、電荷ま
たはそれらの組み合わせに基づくかどうかにかかわらず
、ヌクレオチド配列またはタンパク質の同定に使用する
ことができる。好ましい実施態様において、対照を試料
に直接した後、試料を調製してゲルに負荷する。
て加える本発明は、電気泳動分離においてバンド位置を
同定する方法を提供する。この方法は、試料と一緒に内
部標準として少なくとも1つの対照を電気泳動すること
からなる。この方法は、電気泳動分離が大きさ、電荷ま
たはそれらの組み合わせに基づくかどうかにかかわらず
、ヌクレオチド配列またはタンパク質の同定に使用する
ことができる。好ましい実施態様において、対照を試料
に直接した後、試料を調製してゲルに負荷する。
【0009】本発明は、試料とともに内部標準として対
照を電気泳動することによって、電気泳動分離において
バンド位置を同定する方法を提供する。内部標準を試料
物質に直接添加することによって、何らかの変動は同一
方法において試料および対照の両者に影響を与える。こ
れは、へりの効果によるか、あるいは電気泳動の方法ま
たは条件に関連する他の変動によりつくられる不明瞭さ
を排除する。
照を電気泳動することによって、電気泳動分離において
バンド位置を同定する方法を提供する。内部標準を試料
物質に直接添加することによって、何らかの変動は同一
方法において試料および対照の両者に影響を与える。こ
れは、へりの効果によるか、あるいは電気泳動の方法ま
たは条件に関連する他の変動によりつくられる不明瞭さ
を排除する。
【0010】本発明の方法は、タンパク質およびヌクレ
オチド配列の分離により例示する。しかしながら、この
方法は、また、他の方法の電気泳動分離に適用され、そ
して本発明はそれらの実施態様を包含することを意味す
る。
オチド配列の分離により例示する。しかしながら、この
方法は、また、他の方法の電気泳動分離に適用され、そ
して本発明はそれらの実施態様を包含することを意味す
る。
【0011】本発明の方法は、内部標準として使用のた
めに3つの型を包含する:(1)試料の分析物と同一の
大きさまたは電荷の範囲にある既知の大きさ、電荷また
は両者のマーカー;(2)試料の分析物と同一の大きさ
、電荷または両者を有するマーカー;および(3)試料
の分析物と同定であるマーカー。
めに3つの型を包含する:(1)試料の分析物と同一の
大きさまたは電荷の範囲にある既知の大きさ、電荷また
は両者のマーカー;(2)試料の分析物と同一の大きさ
、電荷または両者を有するマーカー;および(3)試料
の分析物と同定であるマーカー。
【0012】ヌクレオチドの電気泳動分離は大きさに基
づく。ヌクレオチド配列について、大きさは配列中のヌ
クレオチドの数(または配列の長さ)に直接相関関係を
もつ。タンパク質の電気泳動分離は、大きさ、電荷また
はそれらの組み合わせに基づく。しかしながら、通常、
分離は、組み合わせよりむしろ、大きさ(篩のゲルおよ
びSDSを使用する)または電荷(篩でないゲルを使用
する等電点電気泳動)に基づくであろう。
づく。ヌクレオチド配列について、大きさは配列中のヌ
クレオチドの数(または配列の長さ)に直接相関関係を
もつ。タンパク質の電気泳動分離は、大きさ、電荷また
はそれらの組み合わせに基づく。しかしながら、通常、
分離は、組み合わせよりむしろ、大きさ(篩のゲルおよ
びSDSを使用する)または電荷(篩でないゲルを使用
する等電点電気泳動)に基づくであろう。
【0013】分離の型が何であっても、内部標準の第1
の型は、それに対して試料の成分を測定することができ
る、ある種の内部の定規を形成する対照物質である。大
きさに基づく、対照は既知の等電点を有する分子である
。大きさおよび電荷に基づく分離について、対照は既知
の大きさおよび等電点を有する分子である。好ましくは
、試料中の予測される範囲の分析物にまたがる既知の大
きさおよび/または電荷のある数の分子を対照混合物中
で一緒にする。
の型は、それに対して試料の成分を測定することができ
る、ある種の内部の定規を形成する対照物質である。大
きさに基づく、対照は既知の等電点を有する分子である
。大きさおよび電荷に基づく分離について、対照は既知
の大きさおよび等電点を有する分子である。好ましくは
、試料中の予測される範囲の分析物にまたがる既知の大
きさおよび/または電荷のある数の分子を対照混合物中
で一緒にする。
【0014】遺伝子の型別が試料中のアレルに依存する
長さが異なる、増幅されたDNA配列を産生する場合、
中間の長さを有するDNA配列は2つのアレルの配列の
間で区別することができる。例えば、1つの場合におい
て250ntそして他の場合において350ntの試料
のヌクレオチド配列の間で区別するために、長さが30
0ntの対照の配列を使用することができる。350n
tの配列はゲル中で長さが大きいために対照より上に位
置し、そして250ntの配列はより速く移動しそして
対照より下に位置するであろう。2つの試験物質の間の
中間の分子量および/または等電点を有するタンパク質
の配列は、同一の方法で機能することができる。
長さが異なる、増幅されたDNA配列を産生する場合、
中間の長さを有するDNA配列は2つのアレルの配列の
間で区別することができる。例えば、1つの場合におい
て250ntそして他の場合において350ntの試料
のヌクレオチド配列の間で区別するために、長さが30
0ntの対照の配列を使用することができる。350n
tの配列はゲル中で長さが大きいために対照より上に位
置し、そして250ntの配列はより速く移動しそして
対照より下に位置するであろう。2つの試験物質の間の
中間の分子量および/または等電点を有するタンパク質
の配列は、同一の方法で機能することができる。
【0015】試料のヌクレオチド配列について、対照は
予測する試料の大きさの範囲にまがりかつ既知の長さだ
け異なる、1系列のヌクレオチド配列であることができ
る。例えば、50〜500ヌクレオチドの大きさの範囲
の試料のヌクレオチド配列について、対照は50〜50
0ntの範囲でありかつ長さが50ntだけ異なる、1
系列のヌクレオチド配列であることができる。重量によ
り分離されるタンパク質について、対照は重量が既知の
量だけ異なりかつ期待する試料の重量範囲をカバーする
、1系列の調製であることができる。同様に、既知の範
囲の等電点を有する対照を等電点電気泳動分析に使用さ
れる。
予測する試料の大きさの範囲にまがりかつ既知の長さだ
け異なる、1系列のヌクレオチド配列であることができ
る。例えば、50〜500ヌクレオチドの大きさの範囲
の試料のヌクレオチド配列について、対照は50〜50
0ntの範囲でありかつ長さが50ntだけ異なる、1
系列のヌクレオチド配列であることができる。重量によ
り分離されるタンパク質について、対照は重量が既知の
量だけ異なりかつ期待する試料の重量範囲をカバーする
、1系列の調製であることができる。同様に、既知の範
囲の等電点を有する対照を等電点電気泳動分析に使用さ
れる。
【0016】対照の第2の型は、分離の型に依存して、
試料物質と同一の大きさ、等電点(電荷)または両者を
有する物質を含有する。対照は試料の分析物と同一であ
る組成物であることは必要ではない。例えば、300n
tのヌクレオチド配列についての対照は同一の長さを有
するヌクレオチド配列である。対照は試料の分析物と同
一のヌクレオチド配列を有することは必要ではない。所
定の等電点をもちかつ等電点電気泳動により分離される
タンパク質のための対照は、その等電点を有する物質で
ある。対照物質は好ましくはタンパク質である。
試料物質と同一の大きさ、等電点(電荷)または両者を
有する物質を含有する。対照は試料の分析物と同一であ
る組成物であることは必要ではない。例えば、300n
tのヌクレオチド配列についての対照は同一の長さを有
するヌクレオチド配列である。対照は試料の分析物と同
一のヌクレオチド配列を有することは必要ではない。所
定の等電点をもちかつ等電点電気泳動により分離される
タンパク質のための対照は、その等電点を有する物質で
ある。対照物質は好ましくはタンパク質である。
【0017】対照の第3の型は、試料の分析物と同一で
ある物質である。したがって、対照は分析されるタンパ
ク質またはヌクレオチド配列を包含する。例えば、ヒト
血清アルブミン(HSA)を同定することを試みるとき
、対照はHSAである。ヒト血清タンパク質を分離する
とき、タンパク質の各々は対照混合物の中に存在するこ
とができる。あるいは、試料の部分を各血清タンパク質
と別々に展開するか、あるいは2または3種類のタンパ
ク質の混合物とともに展開して、試料の分析物の各々を
同定することができる。
ある物質である。したがって、対照は分析されるタンパ
ク質またはヌクレオチド配列を包含する。例えば、ヒト
血清アルブミン(HSA)を同定することを試みるとき
、対照はHSAである。ヒト血清タンパク質を分離する
とき、タンパク質の各々は対照混合物の中に存在するこ
とができる。あるいは、試料の部分を各血清タンパク質
と別々に展開するか、あるいは2または3種類のタンパ
ク質の混合物とともに展開して、試料の分析物の各々を
同定することができる。
【0018】遺伝子位置のアレルに関連するヌクレオチ
ド配列を同定するとき、1または2以上のアレルにより
産生される配列を使用することができる。例えば、正常
のベータ−グロビン遺伝子が試料中に存在しそして2つ
のより小さい配列が鎌状赤血球貧血に関連する試料中に
存在するとき、1つのヌクレオチド配列が存在する場合
、ヌクレオチド配列の組(正常または病気に関連する)
またはすべての3つの配列の混合物を対照として使用す
ることができる。
ド配列を同定するとき、1または2以上のアレルにより
産生される配列を使用することができる。例えば、正常
のベータ−グロビン遺伝子が試料中に存在しそして2つ
のより小さい配列が鎌状赤血球貧血に関連する試料中に
存在するとき、1つのヌクレオチド配列が存在する場合
、ヌクレオチド配列の組(正常または病気に関連する)
またはすべての3つの配列の混合物を対照として使用す
ることができる。
【0019】より複雑なヌクレオチド配列のパターン、
例えば、HLA DQA1位置のアレルにより産生さ
れる断片のパターンを試料とともに添加することができ
る。ある数の断片がアレルに関連するとき、試料の一部
分を各アレルのための断片とともに添加することができ
る。容易に区別することができるアレルからの断片のパ
ターンをプールして、複数のアレルを検出することがで
きる。このようにして、試料のヌクレオチド配列が対照
のヌクレオチド配列と整列する、試料/対照の混合物を
同定するとき、試料中に存在するアレルを決定する。
例えば、HLA DQA1位置のアレルにより産生さ
れる断片のパターンを試料とともに添加することができ
る。ある数の断片がアレルに関連するとき、試料の一部
分を各アレルのための断片とともに添加することができ
る。容易に区別することができるアレルからの断片のパ
ターンをプールして、複数のアレルを検出することがで
きる。このようにして、試料のヌクレオチド配列が対照
のヌクレオチド配列と整列する、試料/対照の混合物を
同定するとき、試料中に存在するアレルを決定する。
【0020】試料とともに電気泳動する内部標準として
分析物を使用すると、試料の分析物がゲル中の対照と整
列することを観察することによって、バンドが同定され
る。内部標準は試料と区別されなくてはならない。対照
を同定する適当な方法は、分析方法の型および感度に依
存して変化する。2つの基準を適用する。まず、対照は
分析方法により検出可能でなくてはならない。第2に、
対照は、分析方法により容易に検出される方法で、試料
と異ならなくてはならない。
分析物を使用すると、試料の分析物がゲル中の対照と整
列することを観察することによって、バンドが同定され
る。内部標準は試料と区別されなくてはならない。対照
を同定する適当な方法は、分析方法の型および感度に依
存して変化する。2つの基準を適用する。まず、対照は
分析方法により検出可能でなくてはならない。第2に、
対照は、分析方法により容易に検出される方法で、試料
と異ならなくてはならない。
【0021】試料を電気泳動後に染色する方法のために
、対照はゲルの中に試料の量と区別される量で存在し、
こうして試料および対照により産生されるバンドが容易
に同定することができるようにする。このような決定は
、ヌクレオチドについて臭化エチジウムまたは銀の染色
か、あるいはタンパク質についてクーマッシーブルー(
Coomassie blue)または他の色素の使
用を包含する。対照および分析物について区別可能な濃
度を決定することは、当業者の技量の範囲内である。
、対照はゲルの中に試料の量と区別される量で存在し、
こうして試料および対照により産生されるバンドが容易
に同定することができるようにする。このような決定は
、ヌクレオチドについて臭化エチジウムまたは銀の染色
か、あるいはタンパク質についてクーマッシーブルー(
Coomassie blue)または他の色素の使
用を包含する。対照および分析物について区別可能な濃
度を決定することは、当業者の技量の範囲内である。
【0022】例えば、臭化エチジウムまたは銀で染色し
たヌクレオチド配列について、配列により生成したバン
ドは視的にまたは光学密度により検出される。対照のヌ
クレオチド配列は、好ましくは、ゲル中の試料のヌクレ
オチド配列の約1/10〜1/2の濃度で存在する。し
かしながら、ある分析試料について、試料の濃度の10
倍以上の濃度で存在する対照は、対照のバンドが試料の
バンド付近に存在するか、あるいは試料のバンドと同一
位置に存在するかどうかにかかわらず、試料と容易に区
別される。
たヌクレオチド配列について、配列により生成したバン
ドは視的にまたは光学密度により検出される。対照のヌ
クレオチド配列は、好ましくは、ゲル中の試料のヌクレ
オチド配列の約1/10〜1/2の濃度で存在する。し
かしながら、ある分析試料について、試料の濃度の10
倍以上の濃度で存在する対照は、対照のバンドが試料の
バンド付近に存在するか、あるいは試料のバンドと同一
位置に存在するかどうかにかかわらず、試料と容易に区
別される。
【0023】標識の存在により検出される試料について
、対照混合物を、また、標識する。例えば、放射線標識
したタンパク質またはヌクレオチド配列をオートラジオ
グラフィーにより分離しそして検出す場合、対照混合物
中のタンパク質またはヌクレオチドを、また、輻射線ヌ
クレオチドで標識し、これをフィルムに露出する。試料
および対照は異なる濃度であることができる。色素、酵
素などで標識した試料のタンパク質またはヌクレオチド
について、対照をまた標識する。このような場合におい
て、色素は試料の色素と同一であるか、あるいは異なる
ことができる。例えば、対照のタンパク質は試料のタン
パク質のそれと異なる検出可能な色素で標識することが
できる。示差的標識づけはよく知られており、そして異
なる色の蛍光色素の使用;DNA断片酵素および順次の
色発生の使用;および試料および対照のときについて異
なる色素の使用を包含する。
、対照混合物を、また、標識する。例えば、放射線標識
したタンパク質またはヌクレオチド配列をオートラジオ
グラフィーにより分離しそして検出す場合、対照混合物
中のタンパク質またはヌクレオチドを、また、輻射線ヌ
クレオチドで標識し、これをフィルムに露出する。試料
および対照は異なる濃度であることができる。色素、酵
素などで標識した試料のタンパク質またはヌクレオチド
について、対照をまた標識する。このような場合におい
て、色素は試料の色素と同一であるか、あるいは異なる
ことができる。例えば、対照のタンパク質は試料のタン
パク質のそれと異なる検出可能な色素で標識することが
できる。示差的標識づけはよく知られており、そして異
なる色の蛍光色素の使用;DNA断片酵素および順次の
色発生の使用;および試料および対照のときについて異
なる色素の使用を包含する。
【0024】対照は好ましくは電気泳動のための調製の
前に添加して、処理における潜在的な差を最小にする。 しかしながら、試料と前以て混合せずに、ゲルまたは他
の電気泳動の支持媒体へ対照を直接添加することが、ま
た、考えられる。
前に添加して、処理における潜在的な差を最小にする。 しかしながら、試料と前以て混合せずに、ゲルまたは他
の電気泳動の支持媒体へ対照を直接添加することが、ま
た、考えられる。
【0025】内部標準は、電気泳動法において使用する
緩衝液と適合性の緩衝液中に存在する。好ましくは、内
部標準は試料と同一の緩衝液である。内部標準の成分の
濃度は変化することができる。好ましくは、この濃度は
少量の内部標準を試料に添加して、ゲル中で使用するた
めの適当な最終濃度を与える。内部標準は好ましくは、
電気泳動のための調製の前に、試料に添加する。
緩衝液と適合性の緩衝液中に存在する。好ましくは、内
部標準は試料と同一の緩衝液である。内部標準の成分の
濃度は変化することができる。好ましくは、この濃度は
少量の内部標準を試料に添加して、ゲル中で使用するた
めの適当な最終濃度を与える。内部標準は好ましくは、
電気泳動のための調製の前に、試料に添加する。
【0026】電気泳動のための試料の調製は、内部標準
を使用するとき、先行技術の調製と異ならないであろう
。調製物は、一般に、組成物を添加して試料を電気泳動
の緩衝液より重くすること(例えば、スクロースまたは
グリセロール)を包含し、そしてトラッカー色素(例え
ば、ヌクレオチドについてキシレンシアノール、タンパ
ク質についてブロモフェノールブルー)を包含すること
ができる。タンパク質について、通常試料の調製物は、
また、β−メルカプト−エタノールおよび2〜5%のS
DSの添加、および約2分間の試料混合物の沸騰を包含
する。前述したように、内部標準は、好ましくは、この
ような調製の前に試料に添加して、差を最小にする。し
かしながら、電気泳動についての内部標準の別の調製は
、また、考えられる。
を使用するとき、先行技術の調製と異ならないであろう
。調製物は、一般に、組成物を添加して試料を電気泳動
の緩衝液より重くすること(例えば、スクロースまたは
グリセロール)を包含し、そしてトラッカー色素(例え
ば、ヌクレオチドについてキシレンシアノール、タンパ
ク質についてブロモフェノールブルー)を包含すること
ができる。タンパク質について、通常試料の調製物は、
また、β−メルカプト−エタノールおよび2〜5%のS
DSの添加、および約2分間の試料混合物の沸騰を包含
する。前述したように、内部標準は、好ましくは、この
ような調製の前に試料に添加して、差を最小にする。し
かしながら、電気泳動についての内部標準の別の調製は
、また、考えられる。
【0027】好ましい実施態様において、この方法は個
体のHLA位置についてのHLAアレル型の決定に使用
する。この方法は、個体からのDNAから前記個体のH
LAアレルの特徴を示すヌクレオチド配列を生成して、
試料のヌクレオチド配列を生成することを包含する。試
料のヌクレオチド配列は、HLA位置の少なくとも1つ
のアレルの特徴を示す対照のヌクレオチド配列とともに
電気泳動する。試料のヌクレオチド配列は、前記対照の
ヌクレオチド配列と比較し、そして試料のアレルについ
ての内部の対照と整列する。
体のHLA位置についてのHLAアレル型の決定に使用
する。この方法は、個体からのDNAから前記個体のH
LAアレルの特徴を示すヌクレオチド配列を生成して、
試料のヌクレオチド配列を生成することを包含する。試
料のヌクレオチド配列は、HLA位置の少なくとも1つ
のアレルの特徴を示す対照のヌクレオチド配列とともに
電気泳動する。試料のヌクレオチド配列は、前記対照の
ヌクレオチド配列と比較し、そして試料のアレルについ
ての内部の対照と整列する。
【0028】次の特定であるが、非限定的実施例によっ
て、本発明をさらに説明する。特記しない限り、温度は
セ氏であり、そして濃度は重量%である。構成的に実施
に変形した手順は現在時制で記載し、そして実験室にお
いて実施した手順は過去の時制で実施する。
て、本発明をさらに説明する。特記しない限り、温度は
セ氏であり、そして濃度は重量%である。構成的に実施
に変形した手順は現在時制で記載し、そして実験室にお
いて実施した手順は過去の時制で実施する。
【0029】
【実施例】実施例1
HLA DQA位置の分析
HLA DQA1 0102アレルの3つのDR/
DQハプロタイプを、後述するように分析した。3つの
ハプロタイプの各をもつ個体からのDNAを、ポリメラ
ーゼ連鎖反応(PCR)を使用して増幅し、次いでエン
ドヌクレアーゼ(AluI)で消化して、3つのハプロ
タイプに相当する3つの明確な断片のパターンを生成し
た。 増幅したDNA配列および消化物を生成する方法は、こ
の出願と同日に提出しそして「ハプロタイプとして隣接
するおよび遠い位置のアレルの検出のためのイントロン
配列の分析法」と題するマルコルム・J.シモンス(M
alcolm J.Simons)による同時継続出
願に詳細に説明されている。その出願をここに引用によ
って加える。
DQハプロタイプを、後述するように分析した。3つの
ハプロタイプの各をもつ個体からのDNAを、ポリメラ
ーゼ連鎖反応(PCR)を使用して増幅し、次いでエン
ドヌクレアーゼ(AluI)で消化して、3つのハプロ
タイプに相当する3つの明確な断片のパターンを生成し
た。 増幅したDNA配列および消化物を生成する方法は、こ
の出願と同日に提出しそして「ハプロタイプとして隣接
するおよび遠い位置のアレルの検出のためのイントロン
配列の分析法」と題するマルコルム・J.シモンス(M
alcolm J.Simons)による同時継続出
願に詳細に説明されている。その出願をここに引用によ
って加える。
【0030】パターン(塩基対の大きさで決定した断片
)は、次の通りであった: 1、DR15 DQ6 Dw2:120、
350、370、480 2、DR13 DQ
6 Dw19:120、330、350、480
3、DR16 DQ6 Dw21:120、3
30、350生成後、ほぼ0.1μgの「ラダー(la
dder)」ヌクレオチド配列を試料のDNA配列(約
0.5および1μgのDNA)に添加する。ラダー配列
は、長さ123bpで開始し、長さが123bpで約5
,000bpの最終大きさまで増加するヌクレオチド配
列の1つの群である[ベセスダ・リサーチ・ラボラトリ
ーズ(Bethesda Research La
boratoies)、マリイランド州ベセスダ、から
商業的に入手可能である]。
)は、次の通りであった: 1、DR15 DQ6 Dw2:120、
350、370、480 2、DR13 DQ
6 Dw19:120、330、350、480
3、DR16 DQ6 Dw21:120、3
30、350生成後、ほぼ0.1μgの「ラダー(la
dder)」ヌクレオチド配列を試料のDNA配列(約
0.5および1μgのDNA)に添加する。ラダー配列
は、長さ123bpで開始し、長さが123bpで約5
,000bpの最終大きさまで増加するヌクレオチド配
列の1つの群である[ベセスダ・リサーチ・ラボラトリ
ーズ(Bethesda Research La
boratoies)、マリイランド州ベセスダ、から
商業的に入手可能である]。
【0031】試料および内部標準の塩化マグネシウムを
、4%の水平の極めて薄いポリアクリルアミドゲル[E
−C装置、クリアーウォーター(Clearwater
)FLA]を使用して電気泳動にかける。ゲル中のバン
ドは、銀の染色を使用して可視化(染色)した[アレン
(Allen)ら、バイオテクニークス(BioTec
hniques)7:736−744(1989)]。 断片のパターンおよび内部標準は容易に区別することが
できる。内部標準の使用は、断片の大きさの計算を容易
にする。
、4%の水平の極めて薄いポリアクリルアミドゲル[E
−C装置、クリアーウォーター(Clearwater
)FLA]を使用して電気泳動にかける。ゲル中のバン
ドは、銀の染色を使用して可視化(染色)した[アレン
(Allen)ら、バイオテクニークス(BioTec
hniques)7:736−744(1989)]。 断片のパターンおよび内部標準は容易に区別することが
できる。内部標準の使用は、断片の大きさの計算を容易
にする。
【0032】この手順は、DQA1 0102 D
R15 DQ6 Dw2ハロタイプを有する第2試
料、および対照としてDQA1 0102に関連する
ハロタイプの各々のDNAの既知の源の増幅の第2系列
を使用して反復する。増幅反応混合物の1/10を内部
標準として使用し、そして試料のDNAの3つのアリコ
ートに添加する。3つの試料混合物を、6.5%の垂直
のポリアクリルアミドゲル上で電気泳動し、そして臭化
エチジウムで染色する。試料の配列はDQA10102
DR15 DQ6 Dw2ハロタイプの内部対照の
配列と同一に整列する。他の2つのレーンにおいて、内
部標準により生成されるより軽いバンドは試料のバンド
と明瞭に区別することができる。
R15 DQ6 Dw2ハロタイプを有する第2試
料、および対照としてDQA1 0102に関連する
ハロタイプの各々のDNAの既知の源の増幅の第2系列
を使用して反復する。増幅反応混合物の1/10を内部
標準として使用し、そして試料のDNAの3つのアリコ
ートに添加する。3つの試料混合物を、6.5%の垂直
のポリアクリルアミドゲル上で電気泳動し、そして臭化
エチジウムで染色する。試料の配列はDQA10102
DR15 DQ6 Dw2ハロタイプの内部対照の
配列と同一に整列する。他の2つのレーンにおいて、内
部標準により生成されるより軽いバンドは試料のバンド
と明瞭に区別することができる。
【0033】実施例2
pMCT 118 VNTR位置の分析個体からの
DNAを分析して、pMCT 118 VNTR位
置(また、D1S80 VNTR位置と呼ぶ)の7つ
の変異型のどれが個体の中に存在するかどうかを決定し
た。位置の変異型は、位置に対して特異的なプライマー
の対を使用してゲノムのDNAを増幅し、そして生ずる
増幅されたDNA配列の長さを決定することによって、
決定することができる。増幅に使用する手順は実施例1
に記載するものと同一であるが、ただし増幅は94℃で
30秒間、65℃で30秒間、および72℃で60秒間
の30サイクルを使用した。プライマーの配列は、次の
通りであった: 5′GAA ACT GGC CTC CAA
ACA CTG CCC GCC G
3′;および5′GTC TTG TTG GA
G ATG CAC GTG CCC CT
T GC 3′プライマーは、pMCT 118
VNTR配列をフランキングする保存された配列に
ハイブリダイゼーションする。前述のプライマーの少な
くとも15の連続的ヌクレオチドに相当する配列を有す
るプライマーを、また、使用することができる。
DNAを分析して、pMCT 118 VNTR位
置(また、D1S80 VNTR位置と呼ぶ)の7つ
の変異型のどれが個体の中に存在するかどうかを決定し
た。位置の変異型は、位置に対して特異的なプライマー
の対を使用してゲノムのDNAを増幅し、そして生ずる
増幅されたDNA配列の長さを決定することによって、
決定することができる。増幅に使用する手順は実施例1
に記載するものと同一であるが、ただし増幅は94℃で
30秒間、65℃で30秒間、および72℃で60秒間
の30サイクルを使用した。プライマーの配列は、次の
通りであった: 5′GAA ACT GGC CTC CAA
ACA CTG CCC GCC G
3′;および5′GTC TTG TTG GA
G ATG CAC GTG CCC CT
T GC 3′プライマーは、pMCT 118
VNTR配列をフランキングする保存された配列に
ハイブリダイゼーションする。前述のプライマーの少な
くとも15の連続的ヌクレオチドに相当する配列を有す
るプライマーを、また、使用することができる。
【0034】増幅後、増幅したDNA配列を電気泳動し
て変異型を決定した。増幅反応混合物の2μlのアリコ
ートを、等しい体積の内部標準の対照と混合した。
て変異型を決定した。増幅反応混合物の2μlのアリコ
ートを、等しい体積の内部標準の対照と混合した。
【0035】内部標準は、各混合物において、既知のV
NTR変異型のDNAを使用して同一条件下に調製した
、7つのVNTR変異型の各々について、等しい量の増
幅反応混合物の混合物であった。反応混合物の各々をプ
ールし、そして希釈した。最終混合物は反応混合物の各
々のもとの濃度の1:10の希釈物であった。試料は、
実施例1に記載するように、4%の水平の極めて薄いポ
リアクリルアミドゲルおよび銀の染色を使用して電気泳
動にかけた。
NTR変異型のDNAを使用して同一条件下に調製した
、7つのVNTR変異型の各々について、等しい量の増
幅反応混合物の混合物であった。反応混合物の各々をプ
ールし、そして希釈した。最終混合物は反応混合物の各
々のもとの濃度の1:10の希釈物であった。試料は、
実施例1に記載するように、4%の水平の極めて薄いポ
リアクリルアミドゲルおよび銀の染色を使用して電気泳
動にかけた。
【0036】試験した個体の変異型を内部標準とともに
同時に電気泳動にかけ、そして容易に同定することがで
きた。
同時に電気泳動にかけ、そして容易に同定することがで
きた。
【0037】本発明の特徴および態様は以下のとおりで
ある。
ある。
【0038】1、工程:
a、試料物質に少なくとも1つの対照を直接添加し、こ
こで試料および対照は標識されていないか、あるいは同
一標識を有し、 b、対照を試料とともに電気泳動し、そしてc、電気泳
動分離後、試料物質を対照と比較する、からなる、試料
の電気泳動ゲルの分離においてバンド位置を同定する方
法。
こで試料および対照は標識されていないか、あるいは同
一標識を有し、 b、対照を試料とともに電気泳動し、そしてc、電気泳
動分離後、試料物質を対照と比較する、からなる、試料
の電気泳動ゲルの分離においてバンド位置を同定する方
法。
【0039】2、試料はヌクレオチド配列を含有し、そ
して対照は既知の大きさのヌクレオチド配列からなる、
上記第1項記載の方法。
して対照は既知の大きさのヌクレオチド配列からなる、
上記第1項記載の方法。
【0040】3、試料はタンパク質を含有し、そして対
照は既知の大きさのタンパク質からなる、上記第1項記
載の方法。
照は既知の大きさのタンパク質からなる、上記第1項記
載の方法。
【0041】4、試料はタンパク質を含有し、そして対
照は既知の等電点を有するタンパク質からなる、上記第
1項記載の方法。
照は既知の等電点を有するタンパク質からなる、上記第
1項記載の方法。
【0042】5、電気泳動のための試料の調製の前に、
対照を試料に直接添加する、上記第1項記載の方法。
対照を試料に直接添加する、上記第1項記載の方法。
【0043】6、前記対照は試料濃度の1/10〜1/
2の濃度で存在する、上記第1項記載の方法。
2の濃度で存在する、上記第1項記載の方法。
【0044】7、工程:
a、個体からの試料のDNAから前記個体のHLAアレ
ルの特徴を示すヌクレオチド配列を産生して、試料のヌ
クレオチド配列を産生し、 b、HLA位置の少なくとも1つのアレルの特徴を示す
対照のヌクレオチド配列とともに前記試料のヌクレオチ
ド配列を電気泳動にかけ、そして c、前記試料のヌクレオチド配列を前記対照のヌクレオ
チド配列を比較する、からなる、個体のHLA位置につ
いてのHLAアレル型を決定する方法。
ルの特徴を示すヌクレオチド配列を産生して、試料のヌ
クレオチド配列を産生し、 b、HLA位置の少なくとも1つのアレルの特徴を示す
対照のヌクレオチド配列とともに前記試料のヌクレオチ
ド配列を電気泳動にかけ、そして c、前記試料のヌクレオチド配列を前記対照のヌクレオ
チド配列を比較する、からなる、個体のHLA位置につ
いてのHLAアレル型を決定する方法。
Claims (2)
- 【請求項1】 工程: a、試料物質に少なくとも1つの対照を直接添加し、こ
こで試料および対照は標識されていないか、あるいは同
一標識を有し、 b、対照を試料とともに電気泳動し、そしてc、電気泳
動分離後、試料物質を対照と比較する、からなる、試料
の電気泳動ゲルの分離においてバンド位置を同定する方
法。 - 【請求項2】 工程: a、個体からの試料のDNAから前記個体のHLAアレ
ルの特徴を示すヌクレオチド配列を産生して、試料のヌ
クレオチド配列を産生し、 b、HLA位置の少なくとも1つのアレルの特徴を示す
対照のヌクレオチド配列とともに前記試料のヌクレオチ
ド配列を電気泳動にかけ、そして c、前記試料のヌクレオチド配列を前記対照のヌクレオ
チド配列を比較する、からなる、個体のHLA位置につ
いてのHLAアレル型を決定する方法。
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JP2018028549A (ja) * | 2012-05-29 | 2018-02-22 | ヘルス・ダイアグノスティック・ラボラトリー,インコーポレーテッド | in−situキャリブレーションを用いるゲル電気泳動用の組成物及び方法 |
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