JPH03501202A - dna probe - Google Patents

dna probe

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JPH03501202A
JPH03501202A JP63507209A JP50720988A JPH03501202A JP H03501202 A JPH03501202 A JP H03501202A JP 63507209 A JP63507209 A JP 63507209A JP 50720988 A JP50720988 A JP 50720988A JP H03501202 A JPH03501202 A JP H03501202A
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sequence
dna
probe
restriction
sequences
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JP63507209A
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クレイグ,イアン
フレイザー,ネイル
ボイド,イヴォンヌ・エル
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アイシス・イノベーション・リミテッド
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。 (57) [Summary] This bulletin contains application data before electronic filing, so abstract data is not recorded.

Description

【発明の詳細な説明】 DNAプローブ 個体の相違をDNAレベルで検出するDNAプローブ、いわゆる“ハイパーバリ アプル(hypervariible)プローブが最近単離された(5)、ハイ パーバリアプルプローブはヒトDNAにおける可変DNAを検出することができ る。このプローブにより検出された過剰可変部は基本DNA配列が多数回反復さ れたものからなる。過剰可変部は多数の染色体の種々の位置で検出されている。[Detailed description of the invention] dna probe DNA probes that detect individual differences at the DNA level, so-called “hypervariable” Hypervariable probes have recently been isolated (5), Parvariaple probes can detect variable DNA in human DNA. Ru. The hypervariable region detected by this probe is a region in which the basic DNA sequence is repeated many times. It consists of things that are Hypervariable regions have been detected at various locations on many chromosomes.

これらの部分の可変度はある部分の反復配列の反復回数の差による。The degree of variability in these parts is due to the difference in the number of repeats of the repeat sequences in a certain part.

過剰可変部内で切断しない制限酵素で個体DNAを消化すると、過剰可変部を含 む多数のDNA断片が得られる。DNA断片は周知の手段で、断片中の塩基対の 数に従って分離することができる。過剰可変部の場合は、得られる断片の大きさ はその部分で反復配列が反復される回数に依存するので、制限酵素断片長多型が 生じる。これらの断片はハイパーバリアプルプローブとのハイブリダイゼーショ ンにより検出される。これらは身体組織のごく小さな試料から調製されたDNA の簡単な試験によって、“遺伝フィンガープリント”として示すことができる。When individual DNA is digested with a restriction enzyme that does not cut within the excess variable region, it will contain the excess variable region. A large number of DNA fragments are obtained. DNA fragments are prepared using well-known means, and the base pairs in the fragments are Can be separated according to number. In the case of overvariable regions, the size of the resulting fragment depends on the number of times the repeat sequence is repeated in that part, so restriction enzyme fragment length polymorphism arise. These fragments are subjected to hybridization with hyperbaric pull probes. detected by These are DNA prepared from tiny samples of body tissue. can be shown as a "genetic fingerprint" by a simple test.

このプローブにより検出される可変度は著しいので、同型双生児のみが区別でき ないパターンを示す。The variability detected by this probe is so significant that only homozygous twins can be distinguished. Shows no pattern.

特定のヒト染色体の可変部を同定しうるハイパーバリアプルプローブおよびその 誘導体は、個体の同定を行う際のその有用性のほかに、遺伝病をマツプするため に、および上記断片の遺伝がメンデル性であることが示されている家系を通して それらを追跡するために用いることができる。これらのプローブを用いると、後 代の疾患状態の可能性を予想することができる。Hypervariable probes that can identify variable regions of specific human chromosomes and their In addition to their usefulness in identifying individuals, derivatives are useful for mapping genetic diseases. and through families where the inheritance of the above fragment has been shown to be Mendelian. It can be used to track them. With these probes, after The likelihood of future disease states can be predicted.

ただしハイパーバリアビリティプローブにより検出された可変部(5)はすべて 常染色体に由来する。X−染色体に結合した配列はこれまで検出されていない。However, all variable regions (5) detected by the hypervariability probe Derived from autosomes. No X-chromosome bound sequences have been detected to date.

今回、あるDNA配列配列側別個従来報告されている可変配列を参照せずに単離 した。この新規な配列はX−染色体の可変部およびフランキング配列にハイブリ ダイズする。This time, we isolated a certain DNA sequence without referring to the previously reported variable sequences. did. This novel sequence hybridizes to the variable region and flanking sequences of the X-chromosome. Soybean.

これはヒト−マウスハイブリッド細胞パネルの分析によればXcen−XpH, 3に、インサイチュ−ハイブリダイゼーションによればXeen−Xpll、2 2に位置し、推定位置はXpH,22である。According to analysis of a human-mouse hybrid cell panel, this 3, Xeen-Xpll, 2 according to in situ hybridization 2, and the estimated position is XpH, 22.

従って本発明は以下の点を特徴とするDNA配列を提供する: これはインサイチュ−ハイブリダイゼーションにより、ヒトX−染色体のXce n−XpH,22領域に位置する。The invention therefore provides a DNA sequence characterized by: It was determined by in situ hybridization that the Xce of the human X-chromosome was Located in the n-XpH, 22 region.

これは一般に第1図に示される制限部位のパターンを有するχeen−χpH, 3領域からのDNAの全部または一部である。This generally refers to χeen-χpH, with the pattern of restriction sites shown in Figure 1. All or part of the DNA from three regions.

これは反復配列(IIYPERXOX)の可変回数の反復からなる領域を含み、 これはヒトX−染色体DNAを該反復配列内で切断しない制限酵素で切断すると 、反復配列の存在回数に応じて個体毎に長さが異なる制限断片を生じる。It contains a region consisting of a variable number of repeats of a repetitive sequence (IIYPERXOX); This occurs when human X-chromosomal DNA is cut with a restriction enzyme that does not cut within the repeat sequence. , producing restriction fragments that vary in length from individual to individual depending on the number of times the repeat sequence exists.

添付の図面を参照する。See attached drawings.

第1図はM27β領域のコスミドM27の制限地図である。FIG. 1 is a restriction map of cosmid M27 of the M27β region.

第2図は配列M27から単離されたSau 3^/HaellI制限断片であり 、これは26bp反復配列HYPERXOXノ3’/2ニア ヒーラ含す。Figure 2 shows the Sau3^/HaellI restriction fragment isolated from sequence M27. , which contains the 26 bp repeat sequence HYPERXOX 3'/2 near healer.

第3図はM27βで探査したEcoRIの消化雌DNAのサザーンプロットであ り、多重対立遺伝子変異(multiallelievariation)を立 証する。Figure 3 is a Southern plot of EcoRI digested female DNA probed with M27β. and establish multiallelic variation. I testify.

第4図はM27βで探査した親族個体からのEcoRI消化DNAのサザーンプ ロットであり、単純な伴性メンデル道伝を示す。Figure 4 is a southern sample of EcoRI-digested DNA from relatives probed with M27β. It is a lot and shows a simple link-related Mendelian path.

第5および6図は網膜色素変性症が起こることが知られている家系の家系図およ びそれから得たDNAのEeoRI消化物である。Figures 5 and 6 are pedigrees and pedigrees of families in which retinitis pigmentosa is known to occur. and an EeoRI digest of DNA obtained therefrom.

第7および8図はM27βで探査したX染色体DNAのMsplおよびHpaI Iの消化物であり、X不活化のパターンを示す。Figures 7 and 8 show Mspl and HpaI of X chromosome DNA probed with M27β. This is a digest of I and shows a pattern of X inactivation.

第9図は反復配列IIYPERXOXに対して提案された構造である。 。FIG. 9 is the proposed structure for the repeating array IIYPERXOX. .

一形態においては、この配列はflYPERXOXを含むM27β領域のDNA 断片を構成する。In one form, this sequence is the DNA of the M27β region that includes flYPERXOX. Construct fragments.

相補的配列の検出に用いるために常法により調製されたDNA分子またはその断 片である。特定の一形態によれば、本発明は前記の一本鎖DNAからなるDNA プローブであって、この−重鎖DNA分子が検出可能なマーカーで標識されたも のを提供する。一般に検出可能なマーカーは蛍光性および放射性マーカーならび にクロモゲン性および化学ルミネセンス酵素系の成分から選ばれる。これらのマ ーカーは当技術分野で周知である。DNA molecules or fragments thereof prepared by conventional methods for use in detecting complementary sequences It's a piece. According to one particular embodiment, the present invention provides DNA comprising the single-stranded DNA as described above. A probe in which the heavy chain DNA molecule is labeled with a detectable marker. provide the following. Commonly detectable markers include fluorescent and radioactive markers and components of chromogenic and chemiluminescent enzyme systems. These ma markers are well known in the art.

M27βがX染色体の周心領域(XpH,3→Xcen)に小領域局在している ことは、この領域に存在すると思われる疾病の遺伝子座を連鎖分析するのにこの プローブを使用しうろことを意味する。動原体付近の配列間の組換え度はより遠 位に位置する配列間のものより低いと考えられるので、これは近位XQ上の遺伝 子座および近位Xplのものに適用できる。この領域の遺伝子座には網膜色素変 性性(XpH,3)、色素失調症(XpH)、メンクス(Menkes)症候群 (Xpl 1−ql 1)およびウィスコットーアルドリッしくWiskott −Aldrich)症候群(Xpl 1−ql2)に対するものが含まれる。M27β is localized in a small region in the pericentric region of the X chromosome (XpH, 3→Xcen) This is useful for linkage analysis of disease loci that are thought to exist in this region. It means using a probe to scale. The degree of recombination between sequences near centromeres is more distant. This is considered to be lower than that between the sequences located at the proximal XQ. Applicable to those of the concus and proximal Xpl. Gene loci in this region include retinitis pigmentosa. sex (XpH, 3), achromatopsia (XpH), Menkes syndrome (Xpl 1-ql 1) and Wiskott -Aldrich syndrome (Xpl1-ql2).

他の観点によれば本発明は、制限酵素で切断したX−染色体DNAを本発明のD NAプローブでハイブリダイゼーション条件下に処理し、次いでこの処理された DNAを分析して各DNA中の断片の存在および/または大きさを検出すること よりなるアッセイ法(特に家系内の過剰可変部の遺伝性および後代の疾患状態の 可能性の判定に好適)を提供する。この種の方法を実施するのに適しな一方式は 周知のサザーツブロッティング法を用いることである。この方法によれば、処理 すべきDNAを1種または2種以上の制限酵素で切断し、その断片をゲル電気泳 動により大きさに従って分離する。標準法によればゲル中のDNAをニトロセル ロース濾紙に移し、ここでプローブに対し相補的なりNA配列を含むいかなるD NA断片にも結合する標識プローブとハイブリダイズさせる0次いで結合プロー ブをその検出可能なマーカーにより検出する。この種の方法には多数の変法があ り、これらも本発明によれば適切であろう、このスクリーニング法において、各 X−染色体につき1個のDNA断片が得られるであろう、従って雌DNAにより 普通は2個の断片が得られ、雄DNAにより普通は1個の断片が得られる。家系 から得た断片のゲル上での位置を比較することにより、いずれのX断片が後代に よって受継がれたかが明らかになり、また10−ブの領域における遺伝子座マツ ピングによりX−染色体連鎖疾患に関する後代の疾患状態の可能性が明らかにな るであろう。According to another aspect, the present invention provides the D treated under hybridization conditions with an NA probe, and then this treated Analyzing DNA to detect the presence and/or size of fragments in each DNA Assay methods (particularly for determining the heritability of hypervariable regions within a family and disease status in progeny) suitable for determining the possibility). One method suitable for carrying out this kind of method is The well-known Southards blotting method is used. According to this method, processing The desired DNA is cut with one or more restriction enzymes, and the fragments are subjected to gel electrophoresis. Separate according to size by movement. According to standard methods, the DNA in the gel is transferred to a nitrocell. Transfer to a loin filter paper and remove any DNA that is complementary to the probe or contains an NA sequence. The binding probe is then hybridized with a labeled probe that also binds to the NA fragment. The target is detected by its detectable marker. There are many variations of this type of method. In this screening method, each of these would also be suitable according to the present invention. One DNA fragment will be obtained per X-chromosome, so by female DNA Usually two fragments are obtained, and with male DNA usually one fragment is obtained. family lineage By comparing the positions on the gel of the fragments obtained from Therefore, it becomes clear whether the gene was inherited, and the genetic locus in the area of 10-B Ping reveals the possibility of disease status in offspring related to X-linked diseases. There will be.

本発明の他の観点によれば、異常な数のX−染色体が存在する疾患状態のスクリ ーニングおよび診断のための方法が提供される。この方法を実施するための一方 法はサザーツブロツティング法を用いることである。この方法において、生成し た異なる長さの断片の数が普通は存在するX−染色体の数である。従って存在す る断片の数を調べるだけで、診断を行うことができる。According to another aspect of the invention, screening for disease states in which an abnormal number of X-chromosomes is present. Methods are provided for testing and diagnosis. One way to carry out this method The method is to use the Sathertz blotting method. In this method, we generate The number of different length fragments is usually the number of X-chromosomes present. Therefore it exists Diagnosis can be made simply by looking at the number of fragments present.

この方法によればクリンフェルター(K 1infelter)症候群の場合、 母方の両X染色体の関与を証明するために上記プローブを用いた。According to this method, in the case of Klinfelter syndrome, The above probe was used to prove the involvement of both maternal X chromosomes.

本発明は、多様な供給源から得た細胞におけるX−染色体の不活化を調べる方法 をも提供する。これは制限酵素Msplおよび)(palIに対する1または2 以上の隣接認識部位の存在によって可能となる。酵素Msplは配列CCGGを 開裂し、内部シトシンがメチル化されている場合ですらこれを行う;そのイソシ ゾマ−(isoschizomer)HpaIIは非メチル化cccc配列にお いてのみ解裂する0本発明のプローブおよび過剰可変部はこれらの酵素に対する 標的部位を含まず、従って過剰可変性はそれらにより形成される断片に及ぶ、活 性X染色体は本発明のプローブの結合部位に隣接する標的部位においてメチル化 されており、不活性Xはメチル化されていないことが認められた。予備実験によ って、他の酵素による効果に基づく予想、すなわち大部分の雌はMspl/Hp all制限断片対立遺伝子に関してヘテロ接合体であることが確認された。The present invention provides methods for examining X-chromosome inactivation in cells obtained from diverse sources. We also provide This is the restriction enzyme Mspl and ) (1 or 2 for palI) This is possible due to the presence of the above adjacent recognition sites. The enzyme Mspl has the sequence CCGG cleaved and does this even when internal cytosines are methylated; isoschizomer HpaII at the unmethylated cccc sequence. The probes and hypervariable regions of the present invention are cleaved only when active fragments that do not contain the target site and therefore hypervariability extends to the fragments formed by them. The sex X chromosome is methylated at the target site adjacent to the binding site of the probe of the present invention. It was found that inactive X was not methylated. According to preliminary experiments Therefore, the prediction based on the effects of other enzymes, i.e., that most females Heterozygotes for all restriction fragment alleles were confirmed.

本発明によるプローブを用いて多くの状況−たとえば刷込み、雌におけるX一連 鎖障害およびクローン分析−におけるX不活化状態を、1個の体細胞からの子孫 における2個のX−染色体の一方の一貫した不活化により生じる一定のメチル化 の永続性によって評価することができる。この種類の方法は他の(非−過剰可変 性)X−染色体プローブについて報告されている(7)。The probe according to the invention can be used in many situations - e.g. imprinting, X series in females. Chain failure and clonal analysis - X inactivation status in progeny from one somatic cell Constant methylation resulting from consistent inactivation of one of the two X-chromosomes in can be evaluated by its persistence. This type of method is similar to other (non-overvariable sex) has been reported for the X-chromosome probe (7).

上記のDNA配列は下記の方法により単離された。The above DNA sequence was isolated by the following method.

LNんEと011 ヒト−マウスハイブリッド細胞系MOG−TがらコスミドベクターpTM1(1 )を用いて構成したゲノムライブラリーを、32p放射性標識全ヒトゲノムDN Aを用いて、ヒト材料を含むコスミドをスクリーニングした。ハイブリッドMO G−Tはマウス染色体上に転座したヒトX−染色体の2断片を含み、これ−は唯 一のヒト成分としてX−染色体全体に及ぶ(2)、これらの断片が一緒になって X−染色体全体に及ぶと考えられる。ヒトとげっ歯頚の反復配列間ではほとんど 交叉ハイブリダイゼーションが起こらないので、ヒトX−染色体DNAハイブリ ッドを含むクローンのみが上記プローブにハイブリダイズし、これらはオートラ ジオグラフィーにより同定された。LNnE and 011 Human-mouse hybrid cell line MOG-T cosmid vector pTM1 (1 ) was constructed using 32p radiolabeled whole human genomic DNA. A was used to screen cosmids containing human material. hybrid MO G-T contains two fragments of the human X-chromosome translocated onto the mouse chromosome, which are the only Together, these fragments span the entire X-chromosome as one human component (2). It is thought that the entire X-chromosome is involved. There are almost no differences between human and rodent neck repeats. Since cross-hybridization does not occur, human X-chromosome DNA hybridization Only clones containing the probe hybridized to the above probe, and these were autotraced. Identified by geography.

コスミド挿入配列内の一貫コピーDNA断片は、この場合も反復配列を含む断片 を検出するために放射性標識全ヒトDNAを用いて、制限消化クローンのサザー ン分析によって同定された、オートラジオグラフィー上に信号を与えない断片は 独自の、または低コピー数の配列を含むと推定された。これらのコスミドの1つ (M 27 )は3種類の低コピー数EcoRI制限断片−M27α1M27β およびM27γ、サイズは3 kb(M 27α)から1.5kb(M 27γ )に及ぶ−を含むことが見出された9M27βは2.3kbである。これらはプ ラスミドベクターpUc9中ヘサブクローン化された。Consistently copying DNA fragments within the cosmid insertion sequence are again fragments containing repetitive sequences. Sather restriction digest clones using radiolabeled total human DNA to detect Fragments that give no signal on autoradiography, identified by Presumed to contain unique or low copy number sequences. one of these cosmids (M27) are three types of low copy number EcoRI restriction fragments - M27α1M27β and M27γ, sizes ranging from 3 kb (M27α) to 1.5 kb (M27γ 9M27β, which was found to contain - spanning ), is 2.3 kb. These are It was subcloned into the lasmid vector pUc9.

M27βのX位置決定および下位領域帰属は種々の表現(representa tion)のヒトX−染色体を含むハイブリッド細胞系からのEcoRI消化D NAよりなるハイブリッドマツピングパネルを用いて行われた。この研究に用い たハイブリッドは下記のとおりであった。The X localization and subregion assignment of M27β are expressed in various ways. EcoRI digestion from a hybrid cell line containing the human X-chromosome of This was carried out using a hybrid mapping panel made of NA. used in this study The hybrids used were as follows.

保有されたヒト バイブ1ツド X−の − H0RL911R8B Xpter−Xq2(2−4) (2)PIP ’ X pH,4−Xp22.1 (2)Xq26−Xqter HAに8 Xqter−Xp21 (2)MCP6 Xq13−Xqter ( 4)M27βにより検出される配列はハイブリッド)IORL911R8Bおよ びWAG8にのみ見出された。これによりこれらは下位領域XpH,3−Xq1 2に帰属する。この位置はさらに、1soXq染色体を含む細胞系から誘導され るX染色体を含む細胞系からのDNAを探査することによって厳密化された0M 27βはこのハイブリッドに存在する配列を検出しないので、この位置はXce n−XpH,3に厳密化される。ここで述べるXcen−XpH,3には破断点 XpH,4まで、すなわちハイブリッドPIP中に存在する領域までのX−染色 体の領域を含むと解すべきである。インサイチュ−ハイブリダイゼーション実験 はさらに位置をXeen−XpH,22に厳密化し、推定位置はXpH,22と された。ハイブリッド細胞系に存在するX染色体は異なる由来をもつ0M27β によってWAG8およびHORL911R8B(ならびに対照の雄および雌DN Aのもの〉中に検出されたEcoRI制限断片の大きさはすべて異なり、従って 過剰可変性領域であることを示す。retained human Vibrator 1 H0RL911R8B Xpter-Xq2 (2-4) (2) PIP’ X pH, 4-Xp22.1 (2) Xq26-Xqter 8 Xqter-Xp21 (2) MCP6 Xq13-Xqter ( 4) The sequence detected by M27β is a hybrid) IORL911R8B and and WAG8. This makes these subregions XpH, 3-Xq1 It belongs to 2. This position is further derived from a cell line containing the 1soXq chromosome. 0M, refined by probing DNA from cell lines containing the X chromosome Since 27β does not detect sequences present in this hybrid, this position n-XpH, 3. The Xcen-XpH described here, 3 has a breaking point. X-staining up to XpH, 4, i.e. to the area present in the hybrid PIP It should be understood that it includes areas of the body. In situ hybridization experiments further refines the position to Xeen-XpH,22, and the estimated position becomes XpH,22. It was done. The X chromosome present in the hybrid cell line has a different origin, 0M27β. WAG8 and HORL911R8B (and control male and female DN The sizes of the EcoRI restriction fragments detected in A's are all different and therefore Indicates a hypervariable region.

著しい所見は、細胞系MOG−T(これからクローンが最初に誘導される)から のDNAを調べるのに用いた場合にM27βにより検出されたEcoRI制限断 片が予想長さ2.3kbと異なり〜5.1kbである点であった。コスミドM2 7の制限地図を827β領域に作成したく第1図参照)。M27β(HXoxS l)で探査したゲノム消化物中に検出されたBgl[部位B+の左側の制限断片 (定常部)は、ロスミド中に存在するものと同一の大きさである。A striking finding is that from the cell line MOG-T, from which clones are initially derived, The EcoRI restriction fragment detected by M27β when used to examine the DNA of The length of the fragment was ~5.1 kb, unlike the expected length of 2.3 kb. Cosmid M2 7 in the 827β region (see Figure 1). M27β (HXoxS Bgl [restriction fragment to the left of site B+] detected in the genomic digest probed in l) (the constant part) is the same size as that present in Rosmid.

M27βおよびHχoxS2により検出されたB1の右側のゲノム制限断片(B gl II−EeoRl、 Bgl II−Bgl II、Bgl II−Pv ulIおよびBglII−Rind III)は異なる個体間で著しい変動を示 す(可変部)。制限断片B” −E” (HXoxS2)は2.8kbの欠失を 含むと思われる。ハイブリッドMOG−T中にHXoxS2により検出されるB gl II−EeoRIゲノム断片はこの地図から予想される0、8kbに対し 〜3.6kbであるからである。観察された過剰可変性に関与する反復配列の多 くはこの欠失内に含まれると思われる。The right genomic restriction fragment of B1 detected by M27β and HχoxS2 (B gl II-EeoRl, Bgl II-Bgl II, Bgl II-Pv ulI and BglII-RindIII) show significant variation among different individuals. (variable part). Restriction fragment B"-E" (HXoxS2) contains a 2.8 kb deletion. It seems to include. B detected by HXoxS2 during hybrid MOG-T The gl II-EeoRI genome fragment is 0.8 kb predicted from this map. This is because it is ~3.6 kb. The large number of repetitive sequences responsible for the observed hypervariability It is likely that the following deletions are contained within this deletion.

ここで観察された配列の欠失に対する信頼できそうな説明は、この遺伝子座にお ける過剰可変性に関与する反復配列がコスミドライブラリーを増殖させるために 用いたrecA’大腸菌宿主(大腸菌ED8767)中では不安定であるという ものである。この現象は他の数人の研究者によって注目されている。この反復配 列を単離する目的で、ニコルス(N 1chol Is)ら(6)により報告さ れた方法を採用した。彼らはベクターpUC9およびrec A大腸菌HBIO I株を用いて小規模であるが典型的なプラスミドライブラリー中の特異的ゲノム DNA断片をクローニングする簡単かつ迅速な方法を報告している。前記の過剰 可変性反復配列はこの系を用いた場合、安定であることが示されており、この方 法を用いて特にα−グロビン遺伝子座に付随する過剰反復配列を効果的に単離し た。この方法を用いて、上記の過剰可変反復配列を含むことが分かつている4X 細胞系G?41416から5.3kbBgl II−EeoRIをクローン化す ることを試みた。A plausible explanation for the sequence deletion observed here is that this locus repetitive sequences involved in hypervariability in order to propagate cosmid libraries. recA' is said to be unstable in the E. coli host (E. coli ED8767). It is something. This phenomenon has been noted by several other researchers. This iterative arrangement For the purpose of isolating columns, the method reported by Nichols et al. (6) The method was adopted. They are vector pUC9 and rec A coli HBIO Specific genomes in a small but typical plasmid library using I strain A simple and rapid method for cloning DNA fragments is reported. said excess Variable repeat sequences have been shown to be stable using this system; has been used to effectively isolate supernumerary repetitive sequences specifically associated with the α-globin locus. Ta. Using this method, 4X Cell line G? Cloning 5.3 kbBgl II-EeoRI from 41416 I tried to do that.

本発明の他の形態においては、プローブは過剰可変反復領域内に多重コピー数で 存在するDNA断片からなる。In other forms of the invention, the probes are present in multiple copy numbers within the hypervariable repeat region. Consists of existing DNA fragments.

過剰可変反復配列)IYPERXOXは観察された多重対立遺伝子変異に関与す る配列である。IYPERXOX (hypervariable repeat sequence) is responsible for the observed multiple allelic variation. This is an array.

M27βと記述される配列は過剰可変性を検出する、主として一貫コピーのプロ ーブを意味するが、ただしこれは多数回の反復配列)IYPERXO)!−モ含 tj。The sequence described as M27β is primarily a consistent copying process that detects hypervariability. However, this means a large number of repeat sequences)IYPERXO)! -Mo included tj.

5au3^/HaelII制限断片−26塩基対の反復配列の完全なコピー3回 および部分コピー1回を含む−がM27βから単離された。この制限断片の全配 列を第2図に示す0反復モチーフは肉太文字で表わされる。第9図から、26塩 基対の反復配列1(YPERXOXは3塩基対で分離された10塩基対の完全な 逆転反復配列を包含し、従って対称的な幹ループ形状をもつ十字架構造を形成す る可能性があることが分かる。この型の配列は特に組換えを促進する際に生物学 的に重要である。これらの配列がヒトゲノムおよび他の生物のゲノム中のいずれ かに分布している可能性がある。5au3^/HaelII restriction fragment - 3 complete copies of a 26 base pair repeat sequence and one partial copy were isolated from M27β. The entire distribution of this restriction fragment Zero-repeat motifs whose columns are shown in FIG. 2 are represented in bold type. From Figure 9, 26 salts Base pair repeat sequence 1 (YPERXOX is a complete sequence of 10 base pairs separated by 3 base pairs) It contains an inverted repeat sequence, thus forming a cruciform structure with a symmetrical stem-loop shape. It can be seen that there is a possibility that This type of sequence is particularly useful in biology when promoting recombination. important. If these sequences exist in the human genome or in the genomes of other organisms, It may be widely distributed.

26bp反復配列FIYPERXOXの他の誘導体がオリゴヌクレオチド合成に より製造され、これは下記のポリヌクレオチドからなる。Other derivatives of the 26 bp repeat sequence FIYPERXOX can be used for oligonucleotide synthesis. It consists of the following polynucleotide.

^CATACTATCCAtl:(:ACTC(3′)この誘導体(オリゴHY PERXOX)は内部で折りたたまれた安定な構造を形成することができず、H YPERXOXと異なり相補的配列に容易にハイブリダイズすることができる。^CATACTATCCAtl:(:ACTC(3')This derivative (oligoHY PERXOX) cannot form a stable internally folded structure and H Unlike YPERXOX, it can easily hybridize to complementary sequences.

放射性標識オリゴ1(YPERXOXはM27/9消化物中)HYPERXOX 反復配列を保有する制限断片にハイブリダイズしうる。Radiolabeled oligo 1 (YPERXOX in M27/9 digest) HYPERXOX It can hybridize to restriction fragments that carry repetitive sequences.

ポリヌクレオチド配列、オリゴHYPERχOxおよびIIYPERXOXまた は相補的配列はRYPERXOXまたはその相補的配列に、および反復配列を含 むDNA断片にハイブリダイズするであろう。Polynucleotide sequences, oligos HYPERχOx and IIYPERXOX or is a complementary sequence to RYPERXOX or its complementary sequence, and includes repetitive sequences. will hybridize to the DNA fragment containing the DNA.

HYPERXOX配列の有意部分を含むオリゴHYPERXOχ才たは相補的配 列などの配列からなる他のプローブも、特異的ハイブリダイゼーションを保証す るのに十分な部分の配列を用いる限り、反復配列を含むDNA断片にハイブリダ イズするであろう。また、HYPERXOX配列もしくは相補的配列またはそれ らの有意部分に対し、特異的様式のハイブリダイゼーションを生じるのに十分な 程度に高い相同性をもつポリヌクレオチド配列からなるブロ−ブも、反復配列を 含むDNA断片の検出に使用しうろことを認識すべきである。Oligos containing a significant portion of the HYPERXOX sequence or complementary sequences Other probes consisting of sequences such as columns also ensure specific hybridization. It is possible to hybridize to DNA fragments containing repetitive sequences as long as sufficient portions of the sequence are used to It will be. Also, HYPERXOX sequence or complementary sequence or sufficient to cause a specific mode of hybridization to a significant portion of the Probes consisting of polynucleotide sequences with moderately high homology also contain repetitive sequences. It should be appreciated that the method can be used to detect DNA fragments containing DNA fragments.

従って、)IYPERXOXを含む可変DNA断片を検出するのに適したポリヌ クレオチドプローブは、HYPERXOX配列またはその相補的配列に特異的に ハイブリダイズするいかなるポリヌクレオチド配列からも調製しうる。配列が短 いほど、または相同性が低いほど、ハイブリダイゼーションは特異性が低くなる であろう、これらの低特異性プローブを用いて、ヒトゲノムまたは他の種のゲノ ム全体からHYPERXOXに関連する配列を単離することができる。しかし相 同性の程度は、関連のない配列に結合するほど低下させるべきでない、同様に第 2図に示すようにHYPERXOX反復配列をフランクする−1コピー配列のポ リヌクレオチドからなるプローブはHYPERXOX配列を含む制限断片にハイ ブリダイズするのである。この場合も、全配列ではなく、特異的ハイブリダイゼ ーションを生じるのに十分な配列、または相補的配列のみからなるプローブが雨 いられる。HYPERXOX配列を含むDNA断片が単離されると、これをプロ ーブとして用いて、さらに)IYPERXOX領域をフランクする一重コピー領 域に結合する配列を単離することができ、これらは用いる制限酵素がプローブの ハイブリダイゼーション部位とHYPERXOX領域の間で、または)IYPE RXOX配列内で開裂しない限り、いずれもHYPERXOXによる過剰可変性 を検出するためのプローブとして用いることができる。Therefore, polynucleotides suitable for detecting variable DNA fragments containing ) IYPERXOX The nucleotide probe is specific for the HYPERXOX sequence or its complementary sequence. It can be prepared from any hybridizing polynucleotide sequence. array is short The higher or lower the homology, the less specific the hybridization will be. These low specificity probes may be used to analyze the human genome or the genome of other species. Sequences related to HYPERXOX can be isolated from the entire system. But phase The degree of homogeneity should not be reduced to the extent that it binds to unrelated sequences; As shown in Figure 2, the −1 copy sequence flanking the HYPERXOX repeats is A probe consisting of polynucleotides is used to target a restriction fragment containing the HYPERXOX sequence. It breeds. Again, specific hybridization rather than the entire sequence A probe consisting only of sufficient or complementary sequences to cause I can stay. Once the DNA fragment containing the HYPERXOX sequence is isolated, it is (also used as a single copy area to flank the IYPERXOX area) Sequences that bind to the probe region can be isolated, and these can be isolated if the restriction enzyme used between the hybridization site and the HYPERXOX region or) IYPE Hypervariability with HYPERXOX unless cleaved within the RXOX sequence It can be used as a probe to detect.

プローブM 27βは第2図に示す5au3^/HaeIII断片の配列に相補 的な配列の少なくとも一部を含むポリヌクレオチドプローブを合成することによ り単離される0次いで前記のハイブリダイゼーション条件下でMOG−Tハイブ リ・ノド細胞系から構成したEeoRI消化ゲノムライブラリーを探査するため に、こうして得たプローブを用いる。Probe M27β is complementary to the sequence of the 5au3^/HaeIII fragment shown in Figure 2. by synthesizing a polynucleotide probe containing at least a portion of the The MOG-T hybrid was then isolated under the hybridization conditions described above. To explore the EeoRI-digested genomic library constructed from the Rhinoceros cell line. The probe thus obtained is then used.

従って本発明は、可変コピー数の反復配列1(YPERXOXを含む制限断片に ハイブリダイズするプローブの製法をも提供し、この方法は以下の工程からなる 。Therefore, the present invention provides a restriction fragment containing variable copy number repeat sequence 1 (YPERXOX). We also provide a method for producing hybridizing probes, which consists of the following steps: .

一マーカーまたは標識成分、および反復配列HYPERXOXを含む制限断片に 特異的にハイブリダイズするのに十分な、第2図の配列の少なくとも一部からな るポリヌクレオチドプローブな調製する。one marker or label component, and a restriction fragment containing the repeat sequence HYPERXOX. comprising at least a portion of the sequence of FIG. 2 sufficient to specifically hybridize. Prepare polynucleotide probes.

一制限酵素消化その他の方法により調製した、X染色体DNAを含むゲノムライ ブラリーをハイブリダイゼーション条件下にインキュベートする。Genomic libraries containing X chromosome DNA prepared by restriction enzyme digestion or other methods. The library is incubated under hybridization conditions.

−ハイブリダイズした断片を含むプラスミドを同定する。- Identifying plasmids containing hybridized fragments.

−これらの単離したプラスミドを用いて、HYPERχOX反復配列を含む制限 断片にハイブリダイズするプローブをさらに調製し、所望によりさらに上記の適 切なプローブを単離する。- Using these isolated plasmids, restriction containing HYPERχOX repeat sequences Probes that hybridize to the fragments are further prepared and optionally further modified as described above. isolate the relevant probe.

さらに、ヒトゲノムの他の領域、および他の生物にHYPERXOXに密接に関 連する配列が存在する可能性も、これらに隣接する一重コピーを単離する基礎と なる。過剰可変反復配列および近接する−1コピー配列<40kb以内)は共に 疾患遺伝子座の遺伝的分析に際し、かなりの有用性をもつであろう、これはたと えば本発明者らがM27βおよび網膜色素変性症について証明した(8)、 H YPERXOχ配列が疾患遺伝子座に近接することは、その後のそれらの単離法 をも提供するであろう。Furthermore, other regions of the human genome and other organisms closely related to HYPERXOX The possibility of the existence of contiguous sequences also serves as a basis for isolating single copies adjacent to these. Become. Excess variable repeat sequences and adjacent −1 copy sequences (within <40 kb) are both This may be of considerable utility in the genetic analysis of disease loci. For example, the present inventors demonstrated that M27β and retinitis pigmentosa (8), H The proximity of YPERXOχ sequences to disease loci suggests that their subsequent isolation will also be provided.

さらに第9図に示すように多重十字架構造を形成しうろことにより、これらの配 列は銀量および銀白組換えを受けやすくなる。このプローブまたはその誘導体の 他の用途は、反復モチーフに結合した配列をヒトのゲノムおよび相同配列を有す る他の生物のゲノム内へ導入することである。Furthermore, as shown in Figure 9, the scales form a multiple cross structure, making it easier to columns become more susceptible to silver content and silver-white recombination. of this probe or its derivatives. Other uses include repeat motif-bound sequences in the human genome and homologous sequences. It is the introduction into the genome of another organism.

プラスミドM 27はその有意素子として(1)標的細胞、たとえばネオマイシ ン耐性菌に導入されたのち選択性の遺伝子表現型を与える遺伝子、(2)選択性 “マーカー”遺伝子をフランクするI(YPERXOX配列のコピー、(3)修 飾されたプラスミドの細菌内での増殖および選択を可能にする配列、を含む試薬 を調製するための基礎となる。この試薬は“トランスフェクション”として知ら れる方法により標的細胞に導入することができる。これはA Practica l Guide to Mo1ecular Cloning”()く−ノくル (Perbal 、B、> 1984年、ワイリー・インターサイエンス。Plasmid M27 has significant elements as (1) target cells, such as neomycosis; (2) Selectivity I flanking the “marker” gene (a copy of the YPERXOX sequence, (3) a reagent comprising a sequence that allows propagation and selection of decorated plasmids in bacteria; serves as the basis for the preparation of This reagent is known as “transfection”. It can be introduced into target cells by the method described below. This is A Practica l Guide to Mo1ecular Cloning” () (Perbal, B, > 1984, Wiley Interscience.

510−512頁)に記載された方法である。510-512).

“トランスフェクション”ののち、一定割合の供与配列を組換えによってレシピ エンドゲノム内へ組込む、相同組換えは低し)頻度で起こるが、HYPERXO Xによってかなり増強されるであろう。After “transfection”, a certain proportion of the donor sequence is recombined into a recipe. Homologous recombination (integration into the endogenome) occurs at a low frequency, but HYPERXO It will be significantly enhanced by X.

この方法はゲノム内のHYPERXOX部位に選択性マーカーを導入するのに有 用である。連鎖遺伝子を含めて隣接配列のいっそうの富化は、染色体媒介遺伝子 伝達(CMGT)およびゲノムライブラリーの調製という確立された方法により 達成される(たとえばプリチャード(Prichard、C、)およびグツドフ ェロ−(G oo −dfellow、P、N、)、1987Developm ent 101.補遺59−65参照)、さらにI(YPERXOXにより相同 性組換えを増強しうろことによって、ヒトおよび他の生物のゲノムに他の遺伝子 材料を導入することができる。特にこの方法によれば欠陥遺伝子を有するレシピ エンド内へ正常な遺伝子コピーを導入しく遺伝子療法)、または実験生物に新た な遺伝子を加入する(遺伝子操作)ことが可能となる。This method is useful for introducing selectable markers at HYPERXOX sites within the genome. It is for use. Further enrichment of flanking sequences, including linked genes, indicates that chromosome-mediated genes by established methods of transduction (CMGT) and genomic library preparation. achieved (e.g. Pritchard, C. and Gutsdoff). G oo -dfellow, P, N, 1987 Developopm ent 101. (see Addenda 59-65), and also I (homologous by YPERXOX) Scales enhance sexual recombination by adding other genes to the genomes of humans and other organisms. Materials can be introduced. Especially according to this method recipes with defective genes (gene therapy) to introduce a normal copy of a gene into an experimental organism, or to introduce a new copy of a gene into an experimental organism. It becomes possible to add genes (genetic manipulation).

K!匠1 非親族女性パネル18人からのEeoRI消化RNAをさらに探査することによ り、この過剰増殖性を調べた。各消化物の試料2.5μ9からフィルターを調製 し、M27β挿入配挿入上り探査した。フィルターを最終ストリンジエンシー〇 、1ySSC10,1$SDSとなるまで洗浄した。結果を第3図に示す、観察 された過剰可変性はきわめて著しく、試験した女性18人中に17種の変異体が 検出された。2人の女性のみがこの遺伝子座においてホモ接合体であることが認 められ、これはへテロ接合度が約90%であることを示唆する。ゲルの解像度は 対立遺伝子間の正確な大きさの違いを厳密に推定するのに十分なほど良好ではな かったが、それは100〜数百塩基程度の長さの基本反復単位の付加/欠失であ るためと思われる。K! Takumi 1 By further exploring EeoRI-digested RNA from a panel of 18 unrelated women, We investigated this hyperproliferative property. Prepare filters from 2.5μ9 samples of each digest. Then, the M27β insertion was investigated. Final stringency of the filter , 1ySSC10, 1$SDS. The results are shown in Figure 3. Observation The hypervariability observed was quite significant, with 17 variants in the 18 women tested. was detected. Only two women were found to be homozygous at this locus. This suggests that the degree of heterozygosity is approximately 90%. The resolution of the gel is not good enough to accurately estimate the exact size differences between alleles. However, it was an addition/deletion of a basic repeating unit with a length of about 100 to several hundred bases. This seems to be for the purpose of

犬113− 雌減数分裂を通してこの多重対立遺伝子変異が安定であることが、3世代家系か ら得たDNAを探査することにより分析された。これらの変異体は単純な伴性メ ンデル遺伝を示す、結果を第4図に示す。dog 113- The stability of this multiple allelic variation through female meiosis indicates that it is possible to have a three-generation pedigree. was analyzed by probing the DNA obtained from These mutants have a simple sex-linked mechanism. The results are shown in FIG. 4, indicating a genetic defect.

用いた実験法はすべてマニアチス(Maniatis)ら、Molecular C1oniB、%験手引書、コールド・スプリング・ハーバ−・ラボラトリ−出 版社、ニューヨーク(1982年)に記載されたものであった。All experimental methods used were described by Maniatis et al., Molecular C1oniB, % test manual, published by Cold Spring Harbor Laboratory. It was published in Publishers, New York (1982).

上記プローブにより検出された過剰可変性およびXeen−Xpll、3への位 置決定は、遺伝子座がこの領域に位置する疾患(網膜色素変性症および色素失調 症)のマツピングおよび出生前診断、ならびに中心周辺に位置すると考えられる 他の疾患(メンヶ症候群を含む)の分析に際しこのマーカーが重要であることを 示唆する。The hypervariability detected by the above probe and the position to Xeen-Xpll, 3. Location determination is important for diseases in which the locus is located in this region (retinitis pigmentosa and ataxia pigmentosa). mapping and prenatal diagnosis of We have demonstrated the importance of this marker in the analysis of other diseases (including Menga syndrome). suggest.

火族匠1 M27βとm膜色素変性症の遺伝子座との連鎖の研究。Fire Tribe Master 1 Study of the linkage between M27β and the mmembrane pigmentosa locus.

網膜色素変性症(RP)は一般集団の5000人中1〜2人の頻度で起こる。R P患者の36〜38%は孤立した症例であり、残りが常染色性優性、常染色体性 劣性またはX一連鎖型の遺伝を示す、X一連鎖型のもの(X L RP )は米 国のRP家系の14〜22%に見出される。Retinitis pigmentosa (RP) occurs in 1 to 2 in 5000 people in the general population. R 36-38% of P patients are isolated cases, the rest are autosomal dominant, autosomal The X-linked type (XLRP), which shows recessive or X-linked inheritance, is a rice It is found in 14-22% of RP families in the country.

RFLPプローブL1.28を用いた連鎖実験は、RPがXpH,3に近接した 遺伝子座をもつことを示したが、必ずしもすべてのキャリヤーが情報を提供する わけではないので、このプローブが与える情報は限られている。 Ll、28に より検出された2個のTagl対立遺伝子のへテロ接合度は〜40%と推定され る。Linkage experiments using RFLP probe L1.28 showed that RP was close to XpH,3 Although it was shown that there is a genetic locus, not all carriers provide information. This probe provides limited information because it does not. Ll, at 28 The heterozygosity of the two Tagl alleles detected was estimated to be ~40%. Ru.

M27βはへテロ接合度90%以上と推定されるほど高度の条里性を検出するの で、この分析様式においては各親族のいずれにおいてもほぼすべての個体が情報 を提供し、ある家系に連鎖が確認されると、疑われるキャリヤーの検出および罹 患した個体の出生前診断が可能となるはずである。M27β detects a high degree of heterozygosity, which is estimated to be over 90%. In this analysis style, information is available for almost all individuals in each family. Once linkage to a family is confirmed, detection of suspected carriers and morbidity can occur. Prenatal diagnosis of affected individuals should be possible.

t!4膜色素変性症が分離していることが知られている4組のドイツおよびユー ゴスラビアの大家系からの血液試料を入手しうろことになったので、これらの試 料から単離したDNAをH27βで分析し、このプローブにより検出される対立 遺伝子がこの疾患の遺伝子座に連鎖しているか否かを調べた。T! 4 German and European groups in which 4 membranous pigmentosas are known to be isolated. Since we were about to obtain blood samples from a large family in Goslavia, we decided to DNA isolated from samples was analyzed with H27β and alleles detected by this probe were analyzed using H27β. We investigated whether the gene was linked to the locus for this disease.

血液試料を採取し、これから標準法によりDNA試料を調整した。Blood samples were collected from which DNA samples were prepared using standard methods.

第5および6図にこの研究により分析した個体の家系、およびこれらの個体から のDNAのEcoRI消化物をM27βで探査することにより得られたオートラ ジオグラフを示す。Figures 5 and 6 show the pedigrees of the individuals analyzed in this study and from these individuals. The autotra obtained by probing the EcoRI digest of DNA with M27β. Show geograph.

求五NΩU−旺 この家系から、女性57および58は罹患した男性の娘であるので絶対(obl igate)キャリヤーであることが分かる0両者ともM、W、 3.4kbお よび3.0kbの対立遺伝子を有する。いずれの場合も、これらの個体の息子( 63および59)は3.4kb対立遺伝子を受継いでおり、これはこの家系では この障害が3.4kb対立遺伝子と共に分離していることを示唆する0女性56 はキャリヤーであることが臨床的に診断され、同様に3.4kb対立遺伝子を受 継いでいた。従って連鎖分析の目的に対しては、交叉が検出されない3例の情報 を提供する減数分裂がある。さらに女性53もキャリヤーであると思われる。Seeking five NΩU-wan From this pedigree, females 57 and 58 are obl (obl) as they are daughters of the affected male. igate) Both are M, W, 3.4kb and 3.4kb. and a 3.0 kb allele. In each case, the sons of these individuals ( 63 and 59) have inherited the 3.4 kb allele, which is unique in this family. 0 females 56 suggesting that this disorder segregates with the 3.4 kb allele was clinically diagnosed as a carrier and also received the 3.4 kb allele. I inherited it. Therefore, for the purpose of linkage analysis, information on three cases in which no crossover is detected is required. There is meiosis, which provides Furthermore, the woman, 53, is also believed to be a carrier.

求辰影1μ」旺 女性49は、罹患した息子、および後続世代に罹患した息子をもつ娘をもつので 、絶対キャリヤーである。彼女はM、W。Seeking picture 1μ” Want Woman 49 will have an affected son and a daughter who will have an affected son in subsequent generations. , is an absolute carrier. She is M, W.

4.8kbおよび2.8kbの対立遺伝子をもつ、罹患した息子45、両方のキ ャリヤー娘43および46は2.8kb対立遺伝子をもち、これはこの家系では この障害が2.8kb対立遺伝子と共に分離していることを示唆する。罹患した 男性44もこの対立遺伝子を受継いでいる。この家系では交叉が検出されない4 例の情報を提供する減数分裂が記録された。さらに女性42はキャリヤーである と思われ、一方立性47および48はキャリヤーではない。Affected sons 45 with 4.8 kb and 2.8 kb alleles, both children Daughters 43 and 46 carry the 2.8kb allele, which is unique in this family. This suggests that this disorder segregates with the 2.8 kb allele. affected Male 44 also inherited this allele. No crossover detected in this family4 Meiosis providing example information was recorded. Furthermore, the woman, 42, is a carrier. It appears that unilateral 47 and 48 are not carriers.

これらの家系はすべて情報を提供し、結果は検出された異なる対立遺伝子の単純 X一連鎖メンデル遺伝と一致する。All these pedigrees provide information, and the results are simple representations of the different alleles detected. Consistent with X-linked Mendelian inheritance.

夾芝匠主 Uゞの DNAを血液(B)、リンパ芽球様細胞系(L>または体細胞ハイブリッド(H )から標準法により調製した。5μこの試料Msplまたは)1paIIにより 、製造業者から供給された制限緩衝液(BRL)を用いて消化し、電気泳動し、 ハイボンド、N−ナイロン膜(エーメルシャム社)に移した。プローブDNAを 二・ツクトランスレーションにより標識してl O”dp−/μgとなし、ハイ ブリダイゼーションおよび洗浄を行って最終ストリンジエンシー0.5XS S  C(63℃で)となした。Master of Kyoshiba U's DNA was extracted from blood (B), lymphoblastoid cell lines (L>) or somatic cell hybrids (H ) was prepared by standard methods. 5μ this sample Mspl or) by 1paII , digested with buffer restriction solution (BRL) supplied by the manufacturer, and electrophoresed. It was transferred to a Hybond, N-nylon membrane (Emersham). probe DNA Labeled by two-dimensional translation as lO”dp-/μg, high After hybridization and washing, the final stringency was 0.5XS. C (at 63°C).

調べた試料の詳細 試料 数7種類 対立遺伝子数/X−不活化状態46、XY 2(B)+5(L ) 1活性x46、XX 3(B)+1(L) 2x/−y ンダム不活化48 、XXXX 1(L) 1活性+3不活性X第7図−正常な男性(従ってそのX −染色体は活性である)はMspl消化物について単一バンドを示す、これはM splが内部シトシンのメチル化と無関係に開裂を行うからである。Hpall 消化物においては、この単一バンドが高分子量物質で置換されている。HpaI [は内部シトシンがメチル化されている場合は開裂しない。Details of the sample examined Number of samples: 7 types, number of alleles/X-inactivation state: 46, XY: 2 (B) + 5 (L ) 1 activity x 46, XX 3 (B) + 1 (L) 2x/-y random inactivation 48 , XXXX 1 (L) 1 active + 3 inactive - the chromosome is active) shows a single band for the Mspl digest, which is M This is because spl cleaves internal cytosines independently of methylation. Hpall In the digest, this single band is replaced by a high molecular weight substance. HpaI [ is not cleaved if the internal cytosine is methylated.

正常な女性はMspl消化物については2個のバンドを示す。Normal women show two bands for Mspl digest.

Hpa[で消化したのちには両方のバンドとも存在するが、強度が低下し、高分 子量物質を伴う、これは大部分の女性がX不活化に関してヘテロ接合性であるこ とを確認する。After digestion with Hpa[, both bands are present, but their intensity has decreased and the This suggests that most women are heterozygous for X inactivation. Check.

第8図−一定パターンのX不活化を伴う女性はM spl消化物中に存在するバ ンドを示す、これはHpal消化物には存在せず、高分子量物質が存在する0両 消化物中に存在する他方のバンドはHpa[消化に対する良好な対照となる。Figure 8 - Women with a pattern of X inactivation have This is not present in the Hpal digest, and is present in the Hpal digest where high molecular weight substances are present. The other band present in the digest is Hpa [which serves as a good control for the digestion.

活性X染色体上にM27β遺伝子座を含む体細胞ハイブリッドは男性と同じパタ ーンを示す。Somatic cell hybrids containing the M27β locus on the active X chromosome have the same pattern as males. Indicates the tone.

これらの結果はMspl/ HpaI[によるゲノムDNAの消化後にM27β で解明したハイブリダイゼーションパターンを多くの状況、たとえば刷込み、雌 におけるX一連鎖障害、および腫瘍進行中のクローン分析の評価に直接適用しう ろことを示唆する。この遺伝子座における高度のへテロ接合性、およびメチル化 怒受性酵素対、M splおよびHpallによる条里性の直接検出は、ここに 述べる簡単な系が先に発表されたちの(7)の有用な補足となることを示す。These results indicate that M27β was isolated after digestion of genomic DNA with Mspl/HpaI. The hybridization patterns elucidated in may be directly applicable to the evaluation of X-linked disorders in cancer and clonal analysis during tumor progression. Suggests that there is something wrong with it. High degree of heterozygosity and methylation at this locus Direct detection of pharyngeal enzymes, M spl and Hpall, is shown here. We show that the simple system we describe is a useful complement to our previously published (7).

11文1 1、グロスベルト(Grosveld、F 、G 、>ら、、Nucleic  Ac1dsRes、 (1982)Vol、 10.6175−6733゜2、 ボイド(Boyd、Y、 Ann、 Hum、 Genet、 )(1987) Vol、 51゜13−26゜ 3、ビショップ(B 1shop、C、E 、 )ら、、Nature(198 3)Vol。11 sentences 1 1. Grosveld (Grosveld, F, G, > et al., Nucleic) Ac1dsRes, (1982) Vol, 10.6175-6733°2, Boyd, Y., Ann, Hum, Genet, (1987) Vol, 51゜13-26゜ 3. Bishop (B1shop, C, E, ) et al., Nature (198 3) Vol.

303.831−832゜ 4、グツドフェロ−(Goodfellow、P 、N 、 )ら、、Proc 、 Natl。303.831-832° 4. Goodfellow, P, N, et al., Proc. , Natl.

Acad、 Sci、 USA(1982)79.1190−1194゜5、ジ ェフレイズ(JefTreys A、J 、 )ら、、Nature(1985 )Vol 、 314.67−73゜ 6、ニコルス(N 1chol Is R’、D、 )ら、、Nucleic  Ac1dsRes(1985)Vol、 13.7569−7578゜7、フォ ーゲルスタイン(Vogelstein、B、 )、フェアロン(Fearon 、E、R,)ハミルトン(Hamilton、 S 、R、)ら1987、Ca ncer Res、 47.4806−4813゜8、マイチンガー(Meit inger)ら、1988Hu+man Genetics(印刷中)。Acad, Sci, USA (1982) 79.1190-1194°5, Ji JefTreys A, J, et al., Nature (1985 ) Vol, 314.67-73゜ 6. Nichols (N1chol Is R', D,) et al., Nucleic Ac1dsRes (1985) Vol, 13.7569-7578°7, Fo. - Vogelstein, B., Fearon , E, R, ) Hamilton, S, R, et al. 1987, Ca ncer Res, 47.4806-4813°8, Meitinger inger) et al., 1988 Hu+man Genetics (in press).

浄書(古’!+:=、ieなし) 浄書(丙Gに哀:なし) 亀 Ft(、、3 ・ 浄書([t;に変更なし) 浄書(rジSに変更なし) −・・・・・ 浄書(内容に変更なし) MspI Hpa[l kb ゝb Ficr、y 46、Xt(X;8) 46.χdicX 4s、xxxx /、イ1”ルyF ”F/C7,’S (請求項12乃至16項の差換え) 12. 第1および第2酵素がそれぞれMsplおよpHpaIIである、請求 の範囲第11項に記載の方法。Engraving (old’!+:=, no ie) Shinsho (Sad to Hei G: None) turtle Ft(,,3 ・ Engraving (no change to [t;) Engraving (no changes to RjiS) −・・・・・ Engraving (no changes to the content) MspI Hpa[l kbゝb Ficr, y 46, Xt (X; 8) 46. χdicX 4s, xxxx /, 1” yF “F/C7,’S (Replacement of claims 12 to 16) 12. A claim in which the first and second enzymes are Mspl and pHpaII, respectively. The method according to item 11.

13、 請求の範囲第4項に記載の配列の少なくとも−1コピーによりいずれか の側がフランクされた配列であるDNAの配列からなるDNA配列。13. Any by at least -1 copy of the sequence according to claim 4 A DNA sequence consisting of a sequence of DNA whose sides are flanked sequences.

14、 請求の範囲第4項に記載の配列の多重コピーを含むDNA配列をゲノム 内へ導入する方法において、同第4項に記載の配列の少なくとも−1コピーによ りいずれかの側がフランクされた状慧で挿入することを目的とするDNA配列か らなる試薬を調製し、そして調製された試薬をトランスフェクション法により標 的細胞内へ導入することよりなる方法。14. A DNA sequence containing multiple copies of the sequence described in claim 4 is used as a genome In the method of introducing into Is the DNA sequence intended to be inserted flanked on either side? A reagent is prepared, and the prepared reagent is labeled using a transfection method. A method consisting of introducing a target cell into a target cell.

15、 標識またはマーカー成分を含み、DNA制限断片にハイブリダイズする ポリヌクレオチドプローブにおいて、該断片が5°→3′に読取られた下記配列 TCCTGにATAGATACTATCCAC(:ACTCまたは相補的配列の 少なくとも−1コピーを含むプローブ。15. Contains a label or marker component and hybridizes to the DNA restriction fragment In the polynucleotide probe, the following sequence where the fragment is read from 5° → 3' TCCTG with ATAGATAACTATCCAC (:ACTC or complementary sequence A probe containing at least -1 copy.

16、 請求の範囲第15項に記載のプローブを製造する方法において、下記の 工程からなる方法ニ ーマーカーまたは標識成分、および反復配列HYPERXOχを含む制限断片に 特異的にハイブリダイズするのに十分な、請求の範囲第3項に記載の配列の少な くとも一部からなるポリヌクレオチドプローブを調製する。16. In the method for manufacturing the probe according to claim 15, the following A method consisting of steps - a marker or label component and a restriction fragment containing the repeat sequence HYPERXOx A sufficient number of sequences according to claim 3 to hybridize specifically. A polynucleotide probe consisting of at least a portion of a spider is prepared.

一制限酵素消化その他の手段により調製した、X染色体DNAを含むゲノムライ ブラリーをハイブリダイゼーション条件下にインキュベートする。A genomic library containing X chromosome DNA prepared by restriction enzyme digestion or other means. The library is incubated under hybridization conditions.

一ハイブリダイズした断片を含むプラスミド、コスミドまたは7アージを同定す る。Identification of plasmids, cosmids, or hepatocytes containing single-hybridized fragments Ru.

−これらの単離したプラスミドを用いて、)IYPERXOX反復配列を含む制 限断片にハイブリダイズするプローブをさらに調製し、所望によりさらに上記の 適切なプローブを単離する。- Using these isolated plasmids, Probes that hybridize to the restriction fragments are further prepared and, if desired, further Isolate the appropriate probe.

手続補正書坊幻Procedural amendment book phantom

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1.下記を特徴とするDNA配列: −これはインサイチューハイブリダイゼーションにより、ヒトX染色体のXce n−Xp11.22領域に位置する。 −これは一般に第1図に示される制限部位パターンを有するXcen−Xp11 .3領域からのDNAの全部または一部である。 −これは反復配列の可変回数の反復からなる領域を含み、これはヒトX染色体D NA配列を該反復配列内で切断しない制限酵素で切断すると、反復配列の存在回 数に応じて個体毎に長さが異なる制限断片を生じる。 2.マーカーまたは標識を含み、請求の範囲第1項に記載のDNA配列からなる DNAプローブ。 3.5′→3′センスにおいて読取られた下記式を有する単離もしくはクローン 化もしくは合成された形のポリヌクレオチド【配列があります】 または上記に対する相補的配列のポリヌクレオチド。 4.5′→3′センスにおいて読取られた下記式を有する単離もしくはクローン 化された形のポリヌクレオチド【配列があります】 または上記に対する相補的配列のポリヌクレオチド5.5′→3′センスにおい て読取られた下記式を有する単離もしくはクローン化された形のポリヌクレオチ ド【配列があります】 または上記に対する相補的配列のポリヌクレオチド。 6.請求の範囲第3項ないし第5項のいずれかに記載のポリヌクレオチド配列お よび標識またはマーカー成分を含むポリヌクレオチドからなるポリヌクレオチド プローブ。 7.標識またはマーカー成分を含み、5′→3′の下記配列【配列があります】 または相補的配列にハイブリダイズするポリヌクレオチドプローブ。 8.標識またはマーカー成分を含み、5′→3′に読取られた下記配列 【配列があります】 または相補的配列の2回以上の反復を含むDNA制限断片の単一コピー領域にハ イブリダイズするポリヌクレオチドプローブ。 9.M27βと連鎖した遺伝子座またはHYPERXOX配列を含む他の遺伝子 座を伴う個体の疾患状態の判定法において、制限酵素消化した染色体DNAを、 請求の範囲第4項に記載の配列または相補的配列の可変回数の反復を含む制限断 片にハイブリダイズするプローブによりハイブリダイズ条件下で探査し、そして 処理されたDNAを分析して、染色体DNAからの制限断片の存在および/また は大きさを同様に処理された基準からのDNAと比較して検出することよりなる 方法。 10.個体ゲノム中のX染色体数を測定する方法において、個体の制限消化DN Aまたは組織試料からのDNAを、請求の範囲第4項に記載の配列または相補的 配列の可変回数の反復を含む制限断片にハイブリダイズするプローブによりハイ ブリダイズ条件下で探査し、そして処理されたDNAを分析して検出された対立 遺伝子の数を測定することよりなる方法。 11.X不活化状態の判定法において、その認識配列内のヌクレオチドのメチル 化に関係なくDNAを開裂して請求の範囲第4項に記載の配列の少なくとも1回 のコピーを含む制限断片を生成する第1制限酵素で消化したDNA試料を、請求 の範囲第4項に記載の配列の少なくとも一重コピーを含む制限断片にハイブリダ イズするプローブにより探査し;その認識配列がメチル化ヌクレオチドを含む場 合はDNAを開裂しない第2の制限酵素で消化した他のDNA試料を上記プロー ブで探査し、そして得られた断片の存在および/または大きさを分析して各X染 色体の不活化状態を判定することよりなる方法。 12.第1および第2酵素がそれぞれMsp1およびHpaIIである、請求の 範囲第11項に記載の方法。 13.請求の範囲第4項に記載の配列の少なくとも一重コピーによりいずれかの 側がフランクされた配列であるDNAの配列からなるDNA配列。 14.請求の範囲第4項に記載の配列の多重コピーを含むDNA配列をゲノム内 へ導入する方法において、同第4項に記載の配列の少なくとも一重コピーにより いずれかの側がフランクされた状態で挿入することを目的とするDNA配列から なる試薬を調製し、そして調製された試薬をトランスフェクション法により標的 細胞内へ導入することよりなる方法。 15.標識またはマーカー成分を含み、DNA制限断片にハイブリダイズするポ リヌクレオチドプローブにおいて、該断片が5′→3′に読取られた下記配列 【配列があります】 または相補的配列の少なくとも一重コピーを含むプローブ。 16.請求の範囲第15項に記載のプローブの製法において、下記の工程からな る方法: −マーカーまたは標識成分、および反復配列HYPERXOXを含む制限断片に 特異的にハイブリダイズするのに十分な、請求の範囲第3項に記載の配列の少な くとも一部からなるポリヌクレオチドプローブを調製する。 −制限酵素消化その他の手段により調製した、X染色体DNAを含むゲノムライ ブラリーをハイブリダイゼーション条件下にインキュベートする。 −ハイブリダイズした断片を含むブラスミド、コスミドまたはファージを同定す る。 −これらの単リしたブラスミドを用いて、HYPERXOX反復配列を含む制限 断片にハイブリダイズするプローブをさらに調製し、所望によりさらに上記の適 切なプローブを単離する。[Claims] 1. A DNA sequence characterized by: -It was determined by in situ hybridization that the Xce of the human X chromosome was It is located in the n-Xp11.22 region. - This generally refers to Xcen-Xp11 with the restriction site pattern shown in Figure 1. .. All or part of the DNA from three regions. - It contains a region consisting of a variable number of repeats of repetitive sequences, which is the human X chromosome D When the NA sequence is cut with a restriction enzyme that does not cut within the repeat sequence, the number of occurrences of the repeat sequence is reduced. Restriction fragments with different lengths are produced depending on the number of individuals. 2. Contains a marker or label and consists of the DNA sequence according to claim 1 DNA probe. 3. Isolates or clones having the following formula read in the 5'→3' sense Polynucleotides in converted or synthesized form [sequences available] or a polynucleotide of complementary sequence to the above. 4. Isolates or clones having the following formula read in the 5'→3' sense: polynucleotide in the form of a sequence [there is a sequence] or in the polynucleotide 5.5'→3' sense of the complementary sequence to the above. The polynucleotide in isolated or cloned form has the following formula as read by [There is an array] or a polynucleotide of complementary sequence to the above. 6. The polynucleotide sequence or polynucleotide sequence according to any one of claims 3 to 5 and a label or marker component. probe. 7. The following sequence from 5' to 3' including a label or marker component [Sequences available] or a polynucleotide probe that hybridizes to a complementary sequence. 8. The following sequence containing a label or marker component and read from 5' to 3' [There is an array] or in a single copy region of a DNA restriction fragment containing two or more repeats of complementary sequences. Polynucleotide probe that hybridizes. 9. Loci linked to M27β or other genes containing HYPERXOX sequences In a method for determining the disease state of an individual with a locus, restriction enzyme-digested chromosomal DNA is Restriction fragments containing a variable number of repeats of the sequence or complementary sequence of claim 4 probed under hybridizing conditions by a probe that hybridizes to the piece; and The processed DNA is analyzed for the presence of restriction fragments from chromosomal DNA and/or consists of detecting the size by comparing it to DNA from a similarly treated standard. Method. 10. In a method for measuring the number of X chromosomes in an individual's genome, restriction digested DNA of the individual A or DNA from a tissue sample to the sequence or complementary sequence according to claim 4. Hybridization is achieved by probes that hybridize to restriction fragments containing a variable number of repeats of the sequence. Alleles detected by probing under hybridizing conditions and analyzing processed DNA A method consisting of measuring the number of genes. 11. In the method for determining the X inactivation state, the methyl of the nucleotide within the recognition sequence at least once by cleaving the DNA regardless of the Request a DNA sample digested with a first restriction enzyme that produces a restriction fragment containing a copy of hybridize to a restriction fragment containing at least a single copy of the sequence described in section 4. If the recognition sequence contains methylated nucleotides, If so, use another DNA sample digested with a second restriction enzyme that does not cleave DNA with the above probe. Each X-stain is probed with A method consisting of determining the inactivation state of color bodies. 12. Claimed wherein the first and second enzymes are Msp1 and HpaII, respectively. The method according to scope item 11. 13. by at least a single copy of the sequence according to claim 4. A DNA sequence consisting of a sequence of DNA that is flanked on its sides. 14. A DNA sequence containing multiple copies of the sequence according to claim 4 is inserted into the genome. by at least a single copy of the sequence described in paragraph 4 of the same. From a DNA sequence intended for insertion flanked on either side and target the prepared reagent by transfection method. A method consisting of introducing into cells. 15. A polymer that contains a label or marker moiety and hybridizes to a DNA restriction fragment. In the renucleotide probe, the following sequence is read from 5' to 3' of the fragment. [There is an array] or a probe containing at least a single copy of a complementary sequence. 16. The method for manufacturing a probe according to claim 15, comprising the following steps. How to: - a marker or label component and a restriction fragment containing the repeat sequence HYPERXOX; A sufficient number of sequences according to claim 3 to hybridize specifically. A polynucleotide probe consisting of at least a portion of a spider is prepared. - Genomic library containing X chromosome DNA prepared by restriction enzyme digestion or other means. The library is incubated under hybridization conditions. - Identification of plasmids, cosmids or phages containing hybridized fragments Ru. - Using these single plasmids, restriction containing HYPERXOX repeat sequences Probes that hybridize to the fragments are further prepared and optionally further modified as described above. isolate the relevant probe.
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