JPH0334990A - Sugar-transferred stevioside compound, production thereof and stevia-based sweetening using the same compound - Google Patents

Sugar-transferred stevioside compound, production thereof and stevia-based sweetening using the same compound

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JPH0334990A
JPH0334990A JP1228280A JP22828089A JPH0334990A JP H0334990 A JPH0334990 A JP H0334990A JP 1228280 A JP1228280 A JP 1228280A JP 22828089 A JP22828089 A JP 22828089A JP H0334990 A JPH0334990 A JP H0334990A
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stevioside
glucose
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stevia
glucopyranosyl
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JP1228280A
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Osamu Tanaka
治 田中
Hirofumi Akano
裕文 赤野
Naohisa Kako
加古 尚久
Hiroaki Nakagawa
裕章 中川
Hajime Okumura
奥村 一
Kichiya Kawamura
川村 吉也
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Nakano Vinegar Co Ltd
Original Assignee
Nakano Vinegar Co Ltd
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Abstract

NEW MATERIAL:Compounds of the formula [R1 is alpha-G, alpha-G<4>-alpha-G, alpha-G<4>-alpha-G<4>-alpha-G (G is D-glucopyranosyl); R2 is H]. EXAMPLE:13-O-[alpha-D-glucopyranosyl-(1 4)-beta-D-glucopyranosyl-(1 2)-beta-D- glucopyranosyl]-19-O-[beta-D-glucopyranosyl]-steviol. USE:A sweetening excellent in quality of sweetness. PREPARATION:A transfer reaction between stevioside and an alpha- glucosylsaccharide compound is carried out enzymatically in the presence of cyclodextrin glucosyltransferase in an amount of <=5u/ml.

Description

【発明の詳細な説明】[Detailed description of the invention]

(産業上の利用分野〕 本発明は、新規なスう−ヒオリ°イl’ +)!r転移
化合物、その製造方法及びそれらを用いた新規ステビア
甘味料に関する。 (従来の技術] ステビアは、南米パラグアイ産のキク科に属する多年生
草木でその葉中にはステビオサイドを主とする高−1’
味成分を含有し、近年天然のダイエノト甘味料として需
要が増大している。 ステヒアU味料は、砂糖の100〜300(@の1」゛
味度を有し、熱にも安定で食品加工に適する特徴を有し
ながら、ステビア1」゛味料中最も含有量の高いステビ
オサイドは1」゛味以外の雑味や目゛味の発現が砂糖と
比較して遅くかつ甘味に持続性があるなどその1」゛味
質に問題点があった。 このようなスデヒオザイ[−のt:f 1.115を改
善する方法として、従来ステビオサイドにα−グルコシ
ル糖化合物を転移することが提案され(特開昭5450
70号、特開昭61−28363−℃)、丈用化されて
いるがいまだ満足出来るしJどのIt IL i′rに
改1(i′されていないのが現状である。 〔発明が解決しようとづる課題〕 ごのように、−1」味質の改善されたステビア1−1味
料は今だ介在−l−ず、デ1該」」゛味質の改善か六品
業界での大きな課題となっていた。 そこで本発明者らは、1」゛味質の改善されたステビア
1」°吐料を開発することが重要かつ急務の課題である
との認識を持つに至り研究に着手した。 すなわち、本発明は、新規なステビオサイド糖転移化合
物、その製造方法及びこれを用いた1」゛味質の改善さ
れた新規ステヒアH゛味料を提仇することを目的とする
ものである。 〔課題を解決するための手段] ステヒアせ味籾のこのような技術的背景を跨まえ、本発
明者らは安全で、II吐質の優れたステビア1」味料を
開発することを目標として鋭意研究を積の重ねたR占果
、新規なステヒオリ゛イl; j)、I!転移物質が1
]゛味質の優れた14゛味料として有用であることを見
い出し、本発明を完成するに至った。 すなわち、本発明は、以下の(1)〜(3)の技術的事
項から構成される。 (1)次式 〔式中、R1はα−G、α−G4−α−G又はα−G4
−α−G4α−G、 R2ばいずれもH(式中、GはD
−グルコピラノシルを示す)を示す。なお、以下III
がαGで、R2がHの物質を5−1a、 ll+がcx
−G’−rx−Gで、R2かI4の物質を5−2a、 
R,がα−G’−a−G’α−GのでR2が11の物質
を5−3aと略す]で表されるステビオサイ1糖転移化
合物。 (2)上記(1)の3物質のうち少なくとも1つのステ
ビオサイド糖転移物質が、全ステヒオザイl’ 1J7
i転移物質に対して高濃度で含有されているステビオサ
イド糖転移物質を有効成分とすることを特徴どするステ
ビア1]゛味料。 (3)上記(+)記載の3物質のうち少なくとも1つの
ステビオサイドわと転移物質の重量が、全ステビオサイ
ド糖転移物質に対する重量割合で70%以」二であるこ
とを特徴とする」二足(2)記載のステビア」」゛味料
。 (4)  ステビオサイドとα−グルコシル糖化合物と
を包接化合物の存在下てり゛イクロデ・1−ス1〜リン
グルコシル1−ランスフェシーゼ等で酵素的に転移させ
ることにより、ステビオサイドのRoにαグルコシル糖
化合物をα−1,4結合にて結合させたステビオサイド
糖転移物質を有効成分とすることを特徴とするステビア
1」″味料。 (5)ステビオサイドとα−グルコシル糖化合物とヲ5
u/ml以下のサイクロテキスI・リングルコシルトラ
ンスフェラーゼの存在下に酵素的に転移させることを特
徴とする上記(1)記載のステビオサイド′糖転移化合
物の製造方法。 以下、本発明について具体的に説明する。 本発明者らはステビオサイドにα−グルコシル糖化合物
を酵素にて転移させた化合物が若干ながらステビオサイ
ドよりも1」°味質が改善されている現象に着目した。 すなわちステビオサイドにαグルコシル糖化合物を酵素
的に転移させる場合ステビオサイドはその19位、13
位にD−グルコースを持つため、例えばサイクロデキス
トリングルコシルトランスフェラーセ (E、C,2,
4,1゜19)「以下CGTアーゼ」等の酵素により、
αグルコシル糖化合物の転移反応を行うとその反応生成
物は19位、13位、19位並びに13位それぞれの結
合糖の先に各種α−グルコシル糖化合物が転移し複雑な
混合物になる。このような混合物中には1↑味質の優れ
た成分と、甘味質が改善されていない成分が混在してい
ることが予想される。しかし、従来この混合物中の個々
のlJ、!!I匠移生戒物の分周]は困難で、一部、特
開昭61−28363号の中でα−1,4モノグルコピ
ラノシルステヒオサイト、α−14−ジグルコピラノシ
ルステビオサイ1〜、α−14−トリグルコピラノシル
ステヒオザイドが分子illされてはいるが、その構造
と甘味質の関係については明らかにされておらず、また
分離も充分ではない。 そこで本発明者らはステヒオーリ′イド!! 17:移
物中の個々の成分を単離し、その構造と一+4’味質の
関係を明らかにすることが、1」味質の優れたステヒア
甘味料を製造するうえて重要であるとの認識を持つに至
り、ステビオサイド糖転移物中の(ll11)Jの成分
の単離と甘味質について種々検討を行った。 その結果、本発明者らは従来困難とされていたステビオ
サイド糖転移物中の個りの成分を単離すると共に、その
1」“味質について明らかにすることに成、TJjシた
。 すなわちステビオサイドのIt、にグルコース、マルト
ース、マルトトリオース させたものが現在ステビア化合物の中で最も甘味質の優
れていると評価されているレバウデイオサイドAと同等
かそれ以上の1↑味質を与えること、また、19−CO
O−グルコースの4位(請求項第1項式中の12位、以
下R2と略)のみ並びにR,、R2両方に転移させたも
のは甘味質の改善は無いかあるいは非常に少ないことを
見い出した。 次に、本発明の新規なステビオサイド糖転移化合物も含
め一連のステビオサイド糖転移化合物の構造及び1」゛
味質について表1に示す。 (来貢以下余白) 表1 ステヒオザイド糖転化合物の構造と1」゛味倍数、−1
」゛味質ステビオサイド S−1.a − 1h −2a −2b −2c −3a −3b −3c −3d m ; n O=0 1:0 0:1 2:O l;1 0:2 3;0 2;1 1:2 0;3 甘味倍数 60 80 33 05 36 36 17 46 50 21 0 * m : n R+(m)と172(n)に結合して
いるD−グルコピラノシル数 −1−1味倍数−B/A A;各ステビオサイド糖転移成分の0.025W/W%
溶液の甘味 B;ステビオサイド糖転移成分の0.025W/W%溶
液と同等の甘味を有する蔗糖溶液の濃度(W/W)% 木本*せ味質 A;レハウデイオザイl”Aより甘味質の優れたもの B;レハウデイオザイドAと同等のものC;ステビオサ
イドより若干優れるがレハウデイオサイFAより劣るも
の D;ステビオサイドと同等なもの *本** 5−1a、 5−2a及び5−3aの化合物
乞は次の通りである 5−1a+ 13−0  [α−D−グルコピラノシル
(1→4)−β−D−グルコピラノシ ル−(1→2)−β−D−グルコピラノ1 ジルコ −]、9−0− [β−D−グルコビラノシル
コーステヒオール 2a:13−〇−[α−マルl−シル β−D−グルコピラノシル β−D−グルコピラノシル] [β−D−グルコピラノシル] ビオール 3a:13−0−[α (1→4)−β (1→2)−β 1.9−0− [β ステビオシト すなわち、ステビオサイドの111にグルコース、フル
1〜−ス、フルl−1−リオース等をα1,4結合にて
結合させた化合物を単独あるいは混合して含むステヒオ
サイト糖転移物、並びにステビオサイド・のR,にグル
コース、マルトース、マルh l〜リオース等をα1,
4結合にて結合させた化合物を単独あるいは混合して含
むスデヒオ゛す°イト抛転移物を多量に含むステビア1
」味料が従来のステビアI11!J(1−−〉/l ) (1−)2) 1.9−0 ス ツー マルL l−リオシル D−−グルコピラノシル D−グルコピラノジルコ D−グルコピラノジルコ 2 料よりも甘味質が優れていることが判明した。 次に、各ステビオザイト糖転移化合物についてその物性
等を説明する。 化合物5−1a、、5−1bばステビオシトの13−0
−ソホロース側の末端グルコースの4位、もしくは19
C00−グルコースの4位にα−グルコースが1つ転移
したちのどちらかである。(N、Kaneda et 
al。 Chem、Pharm、l1u11.25.2466 
(1977)S−Iaは無色結晶で融点2]1〜214
°Cであり、元素分析によりC441170023の分
子式が与えられた。このことにより化合物5−1a、 
5−1bはステビオシトにα−グルコースが1つ転移し
たものであることが確認された。 次に” C−NMRにおいて、S−1aは95.6pp
mに19COOグルコースのアノマー炭素が、98. 
lppmに130−グルコースのアノマー炭素が、10
6.6ppmに13−0ソボロースの末端グルコースの
アノマー炭素が、1.03.lppmに転移したα−グ
ルコースのアノマー炭素が観41りされた。またS −
1114J、95.4ppmに19−Cooグルコース
のアノマー炭素が、97.8ppmに13−0−グ3 ルコースのアノマー炭素が、]06.5ppmに13−
0−ソホロースの末端グルコースのアノマー炭素か、1
02.8ppmに転移したα−グルコースのアノマー炭
素が観測された。しかし、” C−N)IRにおいては
化合物5−Ia、 S−1,bのどちらがステビオシト
の13−0ソホロース側の末端グルコースの4位、もし
くは19−COO−グルコースの4位にα−グルコース
が転移したものであるかは決定できなかった。(表2)
特開昭61−28363号でも同様の” C−NMRの
解析が行われているが、それに於てもα−グルコースの
結合部位は特定されていない。 そこで、大釜法(K、0htani et al、Te
trahedronLett、、 25.4531 (
1,984))を試めた。大釜法においてはステビオシ
トの19−Coo−グルコースイ則のコニステル配糖体
のめを切断し、切断された糖は切断部でメチル化されメ
チル配糖体になるという反応である。この方法により得
られた19位側メメチ配糊休体シリカゲル糊層クロマI
・グラフィー(展開ン容媒:り1■Jホル人−メタノー
ル 水、(in:1)により確認し、化合物5−1a、
 S−1,bの構造を決4 定した。S−1aからはメチルグルコサイドが、5II
)からはメチルグルコサイドがそれぞれ得られていた。 (表6) このことによりシクロデートストリン ルトランスフェラーゼを用いてステビオシトにαグルコ
ースが1分子転移したものである化合物S−1a, S
−1bはそれぞれ第1表に構造が示されるように34a
がステビオシトの13−0−ソホロース側の末5iiグ
ルコースの4位にα−グルコースが転移したものであり
、s−ibがステビオシトの19−COO−グルコース
の4位のα−グルコースが転移したものであると決定し
た。 化合物S−2a, S−2b, S−2cはステビオシ
トの130−ソホロース側の末端グルコースの4位、も
しくば19−COO−グルコースの4位にαーマルI・
−スが1つ転移したものと、またはα−グルコースが1
つづつ転移したものいずれかである。 (N.Kane
daeL al.cllcm.Pharm.I!u11
.、 25,2466(1977)) S−2aは無色
結晶で融点222〜225’Cであり、元素分析により
CSOllBQO2Bの分子式が与えられた。S−2b
は無5 色結品で融点220〜223°Cであり、元素分析によ
りC5o111100□,lの分子式か与えられた。S
−2cは無色結晶で融点224〜227°Cであり、元
素分析によりCSOolloo□8の分子式が勾えられ
た。このことにより化合物S−2a, S−2b, S
−2cはステビオシト’にαーマルI・−スが1つずつ
またはα−グルコースが1つづつ転移したものであるこ
とが確認された。 次に13C−N門Rにおいて、S−2aは95.7pp
mに19COO−グルコースのアノマー炭素が、97.
(ippmに130−グルコースのアノマー炭素が、1
06.7ppmに130−ソホロースの末端グルコース
のアノマー炭素が、1、02.5, 102.7ppm
に、転移したα−グルコースのアノマー炭素が観測され
た。S − 2 bは95.2ppmに19COO−グ
ルコースのアノマー炭素が、97.3ppmに130−
グルコースのアノマー炭素が、106.7ppmに13
−Oソポロースの末端グルコースのアノマー炭素が、]
02.7, 1.02.8ppmに転移したα−グルコ
ースのアノマー炭素が観測された。またS−2c↓J:
 95.5ppmに1、9−COO−グルコースのアノ
マー炭素が、97.8ppmに13−0−グルコースの
アノマー炭素が、106.5ppm6 に13−0−ソホロースの末端グルコースのアノマー炭
素が、+02.7, 103.1ppmに転移したα−
グルコースのアノマー炭素が観測された。しかし、+3
CNMRにおいては、化合物S−2a, S−2b. 
S−2cのいずれがステビオシトの13−0−ソホDー
ス側の末端グルコースの4位、もしくは1.9−Coo
−グルコースの4位にα−マルトースが1つまたばαー
グルコスが1つづつ転移したものであるかは決定できな
かった。(表2) そこで、大谷法(K.Ohtani et al.Te
trahedronfelt.、 25. 4537(
1984))を試みた。大谷法においてエステル配糖体
部分のみを切断し、得られた化合物S−2a, S−2
b, S−2cそれぞれの19位側メチル配糖体をシリ
カゲル薄層クロマトグラフィー(展開溶媒:クロロホル
ム−メタノール−水.6:4:1)により確認したとこ
ろ化合物S−2aからはメチルグルコサイドが、S−2
bからはメチルグルコサイドが、S−2cからはメチル
フル1〜トリオサイドがそれぞれ得られていた。(表6
) このことによりシフロブキス1ーリン グルコシ1フ ルトランスフェラーゼを用いてステビオシトにαグルコ
ースが2分子転移したものである化合物S−2a, S
−2b, S−2cはそれぞれ図2に構造が示されるよ
うにS−2aがステビオシトの13−0−ソボロース側
の末端グルコースの4位にα−マルトースが転移したも
のであり、S−2bがステビオシトの13−0ソボロー
ス側の末端グルコース4位と19−COO− クルコー
スの4位にα−グルコースが1ずつ転+eしたものであ
り、S−2cがステビオシトの19−COO−グルコー
スの4位にαーマル;・−スが1つ転移したものである
と決定した。 化合物S−3a, S−3b, S−3c, S−3d
はステビオシトの13−0−ソホロース側の末端グルコ
ースの4位、もしくは1.9−COO−グルコースの4
位にα−マルトトリオース ルコースが1つづつ転移したものいずれかである。 (N.Kaneda et al.Chem.Phar
m.[lull.+ 25+ 246(i(1977)
) S−3aは白色45)米であり、元素分析によりC
 s I, II 9。(11Jの分子式が1jえられ
た。S−3bは出色わ)末であり、元素分析によりCS
61190033の分子式が8 与えられた。5−3cは白色粉末であり、元素分析によ
りC36+190033の分子式が与えられた。5−3
dは白色粉末であり、元素分析によりC56+19゜0
33の分子式が与えられた。このことにより化合物5−
3a、 S3b、 5−3c、 5−3dはステビオシ
トの13−0−ソホロース側の末端グルコースの4位、
もしくは1.9−Co。 グルコースの4位にα−マルトトリオースが1つまたは
α−マルトースとα−グルコースが1つづつ転移したち
のいずれかであることが確認された。 次に”C−NMRにおいて、5−3aは95.6ppm
に19COO−グルコースのアノマー炭素が、97.8
ppmに13グルコースのアノマー炭素が、106.5
ppmに13−0ソホ11−スの末端グルコースのアノ
マー炭素が、102.5.102.7(2C)ppmに
、転移したα−グルコースのアノマー炭素が観測された
。S −3bは95.5ppmに19−COO−グルコ
ースのアノマー炭素が、98.0ppmに13−グルコ
ースのアノマー炭素が、106.7ppmに13−O−
ソポロースの末端グルコースのアノマー炭素が、102
.3.103.1(2C)ppmに、転移したα−グル
コースのアノマー炭素が観測された。5−3cは9 95.5ppmに1.9−COO−グル=r−スノ7 
/ ?−炭素カ、97.9ppmに13−グルコースの
アノマー炭素か、106.8ppmに13−0−ソホロ
ースの末端グルコースのアノマー炭素が、1.02.6
. ]03.0(2C)ppmに、転移したα−グルコ
ースのアノマー炭素が観測された。 また5−36は95.4ppmに19−Coo−グル:
1−スのアノマー炭素が、97.8ppm4こ13−ク
ルコースのアノマ炭素が、106.5ppmに13−0
−ソホロースの末端クルコースのアノマー炭素が、10
2.6.102.9(2C)ppmGこ、転移したα−
グルコースのアノマー炭素が観測された。しかし、”C
−NMIIにおいては化合物S3a、 5−31+、5
−3(:、5−3dのいずれがステビオシトの13−0
−ソホロースの末端グルニ1−スの4位、4)シくば1
.9−Coo−グルコースの4位にα−マルトトリオー
スが1つまたはα−マルl・−スとαのグルニ1−スが
1つづつ転移したものであるかは決定できなかった。(
表2) そこで、大谷法(K、0htani et al、Te
trahedronl、ett、、 25.4537(
1,984,))を試みた。大谷法においてニスデル配
糖体部分のみを9J 1lIi シ、144られた化0 合物5−3a、 5−3h、 5−3c、 5−3dそ
れぞれの19位側メチル配糖体をシリカゲル7!J層ク
ロマトグラフィー(展開溶媒:クロロホルム−メタノー
ル−水、6:、’+:i)により確認したところ化合物
5−3aからはメチルグルコサイドが、5−3bからは
メチルマルトサイドが、5−3cからはメチルマルトト
リオザイ1′が、5−3dからはメチルマルトサイドう
′す゛イドがそれぞれ得られていた。(表6)このこと
によりシクロデキストリン グルコシルトランスフェラ
ーゼを用いてステビオシトにαグルコースが3分子転移
したものである化合物5−3a、 5−3b、 5−3
c、 5−3dはそれぞれ第1表に構造が示されるよう
に5−3aがステビオシトの13−o−ソホロース側の
末端グルコースの4位にα−マルトトリオースが転移し
たものであり、5−3bがステビオシトの13−0−ソ
ホロース側の末端グルコースの4位にα−マルトースと
19−Coo−グルコースの4位にα−グルコースが1
づつ転移したものであり、5−3cがステビオシトの1
3−0−ソホロース側の末端グルコースの4位にα−グ
ルコースと19−Coo−グ1 ルコースの4位にα−マルト−スが1づつ転移シたもの
であり、5−3dはステヒオシ[“の1.9−COO−
クルコースの4位にα−マルトトリオースが転移し7た
ものであると決定した。 特開昭5,1−5070号、特開昭61−28363号
に記載された方法で製造され、市販されているステビオ
サイドにα−グルコシル糖化合物を転移させたステビオ
サイド’ IJ7j転移物中の各籾1転移物の組成を、
本発明者らが開発した方法で分析した結果を表2にボし
た。 (来貢以下余白) 2 表2 糖転移物 −1a −1b −2a lb −2c −3a −3b −3c −3d 市販糖転移ステビア甘味料中の各転移化合物の分析g/
100gステビア甘味料 市販品A  市販品B  市販品C市販品D3.37 
   8,22   3.44    1.462.0
1    7.08   1.96    1.984
.77    2.51   3.45    2.7
93.24    15.32   4.18    
1.383.57    2.62   2.43  
  1.2B2.84          2.41.
    2.473.80    4.26   3.
06    1.354.98    7.36   
4.08    1.222.70         
 2.08    1..323 その結果糖転移物中1」゛味度の優れたR、のみに転移
した化合物の占める割合は、約20〜45%で、11味
質の改善されていない糖転移物が約80〜55%も含ま
れており、このことが甘味質が充分に改善されていない
原因であると予思出来た。 そこで、本発明者らはR1のみに転移したステビオサイ
ド糖転移物の割合と1」゛味質の関係について研究をお
こなった。その結果を表3に示した。 (来貢以下余白) 4 表3  R,のみに転移したステビオサイド糖転移物の
割合と甘味質 *糖転移物中R1のみに転移した化合物の占める割合。 **ステビオサイド化合物の量は一定にした。 A:レハウデイオサイFAより優れたちのB:レバウデ
イオザイ;・′Aと同等のものC:レハウデイオザイF
Aより劣るがステビオサイドより若干fCれたもの 5 D:ステビオサイドと同等のもの 表2かられかるようにR1のめに転移したステビオサイ
ド糖転移物の割合が70%以上占めるステビア甘味料は
従来品よりもはるかに1」″味質が優れていることが分
った。 次にステビオサイドのR1にグルコース、マルトース、
マルトトリオース等をα−1,4結合にて結合させた化
合物を単独あるいは混合して含むステビオサイド糖転移
物、並びにステビオサイドのR,にグルコース、マルト
−ス、マルI−トリオス等をα−1,4結合にて結合さ
せた化合物を単独あるいは混合して含むステビオサイド
糖転移物を多量に含むステビア羽味料を効率的に製造す
る方法について述べる。 化学合成法を併用する方法としては、ステビオ・す“イ
]・の19位のグルコースを脱グルコシル化したステビ
オ−ルビオシドに、CGTアーセにてF1G にα−グルコシル糖化合物を転移させた後、19位のカ
ルボキシル基をグルコシル化することにより、ステビオ
サイドのR5にグルコース、マルトース、マルトl−リ
オース等をα−1,4結合にて結合させた化合物を小札
あるいし目R合しで含むステビア4」。 味料を製造することが出来る。 (文献;日本化学会誌
1981.(5)、 P726〜735)酵素法として
は、ステビオサイドとα−グルコシル糖化合物とをCO
Tアーセで転移させる際に、種々の包接化合物を添加す
ることにより、ステビオサイドのR1にグルコース、マ
ルト−ス、マルト]・リオース等をα−1,4結合にて
結合させた化合物を単独あるいは混合して含むステビオ
サイド糊転移物を多量に含むステビア甘味料を効率的に
製造することが出来る。包接化合物としては、サイクロ
デキストリンやザイクリックビスデスモサイトが挙げら
れる。特にサイクロデキストリン自体は、COTアーゼ
による糖転移反応のドナーとなるのでより好ましい。 更に、酵素法においては、前記転移反応におい7 てc c ′rアーゼの使用濃度を5u/mF以下に調
整することにより甘味質の優れたSla、 5−2a、
 5−3aのみを高収率に製造することができた。これ
ば、上記酵素濃度の選択によりステビオールの13位の
付加反応が特異的に進行するためである。この方法は、
ステビオサイド1%と基質としての溶性澱粉またはT−
サイクロデキストリンの単独又は混合物1.00〜2.
61%との混合物に0.5uのリーイクI」テ、1−ス
トリン合成酵素(天野製薬製、商品名コンチザイム)を
加え、処理することにより行われる。上記酵素としては
CGTアーセ以外にステビオールの13位の付加反応を
特異的に進行させるサイクロデキストリン合成酵素であ
ればいずれても使用できる。 本発明における酵素反応は、ハツチ式あるいは固定化酵
素を用いる連続式のいずれでもよい。また反応時間は、
長ずぎると目的物質以外の副産物ができて1」゛味質が
悪くなるため32時間以内が適当である。pHは酵素反
応か進行しうる範囲であればいずれでもよく、好ましく
は3.0〜8.0である。 8 以下に、実験例及び実施例を記載して、本発明を具体的
に説明する。 〔実験例〕 1)ステビオサイドに対する糖転移反応ステビア葉から
抽出したステビオサイド(以下Sと略) 1.0.7g
と可溶性澱粉13.6gに水320iR。 IM酢酸ハフy −(p H= 5.6 ) 3.16
mfl及びCC,Tアーゼ(ハシラスステアロザーモフ
ィラス産生1400unit/ ml)0.41 ml
を加えて、40’Cで16時間インキユヘートして反応
を行った。15分煮沸して酵素を失活させた。 (図1
) 2)糖転移生成物の分離 1)で得られた反応混合物を濾過した後、多孔性樹脂カ
ラムクロマトグラフィー(DIAION IIP−20
)に付し、水、40%メタノール、65%メタノール 
80%メタノール、メタノール、アセトンで順次溶出さ
せた。65%メタノール画分7.14gをシリカゲルカ
ラムクロマトグラフィー(溶媒:クロロホルムメタノー
ル−水、 13:7:l)に付し、fr−1〜fr−8
を図1に示す収量で得た。fr−2,−4,−6をさら
に9 シルカゲルカラムクロマトグラフィー ロロホルム−メタノール−水, fr−2 ; 13:
7:1  fr4; 10:5:1. fr−6 ; 
6:4:1)にそれぞれ付した。Sにα−グルコースの
1分子転移した分画(昆ニー上)を1。7g、2分子転
移した分画(S−2)を1.13h 、3分子転移した
分画(這1)を1.38gの各収量で得た。 次に高速液体クロマl−グラフィー(カラム: TSK
Sル00S−120T)を用いて分離を行った。失1(
溶媒:70%メタノール)より違す,連動を、這ヱ(溶
媒:62.5%メタノール)より這7a, 、S−2b
,遺kを・違1(溶媒:59%メタノール)より違叙,
違共,S鞍,遺用をそれぞれ図1に示す収量で単離した
。 3)構造の確認 元素分析、’H−1nlR, ”C−NMR、ヨウ化リ
チウム試薬による反応生成物の解析により構造決定を行
った。また、単離した糖転移物について外観、比旋光度
、融点の測定を行った。 各分析法を以下に記載する。 H−NMR  :JIミOL−GX400起電導核磁気
共鳴装置(日本電子製) 0 重水素化ピリジン溶液、400MHz、30°C’Cニ
ーIJMR: JEOL−FX100核磁気共鳴装置(
日本電子製) 重水素化ピリジン溶液、100 M Hz、30’C元
素分析:柳木C、I(、NコーダーMT−3型(柳本製
作所) 比旋光度:ユニオン オートマチソク デシタルボラリ
−メーターPl+−101を用いて13〜29度で測定
した。 融  点:柳木旦クロ融点測定装置 元素分析(表3)’H−11問及び13C−NMRの解
析(表4,5)により、Lハ、遺珪はモノ−α−14−
グルコシル転移物であることが1111 tWされた。 またヨウ化リチウム試薬による反応を行うと5−1aか
らはメチルグルコシドが得られ、5−1bからばメチル
マルトサイ1が得られることから、5−1aば130−
 〔α−D−グルコピラノシル−(1→4)β−D−グ
ルコピラノシル−(1→2)−βD−グルコピラノシル
)−19−0−[β−D−グルコピラノシル〕−ステビ
オール、S−1,bは13−○1 〔β−D−グルコピラノシル−(1,−〉2)−βD−
グルコピラノシル)−1,9−0−(α−I〕グルコピ
ラノシル−(1→4)−β−D−グルコピラノシル)−
ステヒオールであることが分かった(図2)。 ’11
−NMR及び” C−NMI?の解析(表34)により
、違ハ、違ハ、違りはジ−α−1,4グルコシル転移物
であることが確認された。またヨウ化リチウム試薬によ
る反応を行うと、メチルグルコシド、メチルマルI・シ
ト、メチルフルl−トリオサイトがそれぞれ得られるこ
とから、5−2aは13−○−[α−マルトシル−(1
→4)−β−Dグルコピラノシル−(1→2)−β−D
−クルコピラノシル]−1,9−0−(β−D−グルコ
ピラノシル〕−ステビオール、違頷は13−〇−(αD
−グルコピラノシルー(1→4)−β−I)−グルコピ
ラノシル−(1→2)−β−D−グルコピラノシル)−
11−0−(α−1〕−グルコピラノシル−(1→4)
−β−D−グルコピラノシル]ステビオール、違在は1
.3−0−(β−D−グルコピラノシル−(1−)2)
−β−D−グルコピラノ2 シル〕−19−0−〔α−マルトシル−(1→4)−β
−D−グルコピラノシル]−ステビオールであることが
確認された(図2)。 ’II−NMR及び13C−N
MI?の解析(表4,5)により、L額、連用5−3c
、 5−3dはtri−α−1,4−グルコシル転移物
であることが確認された。またヨウ化リチウム試薬によ
る反応を行うと、それぞれメチルグルコサイド、メチル
マルトサイド、メチルマルトトリオサイド、マルトテト
ロザイドが得られることから、L姦は13−0−(α−
マルトトリオシル−(1→4)−β−D−グルコピラノ
シル−(1→2)β−D−グルコピラノシル〕−19−
○−〔β−Dグルコピラノシル〕−ステビオール、5−
3bは130−〔α−マルトシル−(l→4)−β−D
グルコピラノシル−(1→2)−β−D −クルコビラ
ノシル:l −1,9−0−[α−D−グルコピラノシ
ル−(]→4)−β−D−グルコピラノシル〕ステビオ
ール、V起は13−C1−[α−D−グルコピラノシル
−(1→4)−β−I〕−グルコピラノシル=(1→2
)−β−D−グルコピラノシル]3 1.9−0−(α−マルI・シル−(■→4)−β−D
グルコピラノシル〕−ステビオール、S−3cjば13
0−〔β−D−グルコピラノシル−(1→2)β−D−
クルコピラノシル:]−1,9−○−〔αマルトトリオ
シル−(1−)4. )−β−1)−グルコピラノシル
〕−ステビオールであることが分かった(図2)。また
、各転移物の’II−NMI?スペクl−ルを第3〜5
図に、5−1a、違ハ、 5−3aの’ ”C−NMR
スペクトルを第6〜8図Gこ示した。 各転移物の外観、比旋光度、融点を表6に示した。 (来貢以下余白) 4 表 4 各糖転移物の元素分析値 CaaH7oOzs H2Oとして C3GHII002+1 20 CsOH800ze 120 C56)190033 H20 5 6 7 8 9 4 表7 各糖転移物の外観、 比旋光度、 融点 無色結晶 無色結晶 無色結晶 無色結晶 無色結晶 白色結晶 白色結晶 白色結晶 白色結晶 +12.7゜ 16.1゜ 十38.1゜ −1−32,6゜ +1.2.0゜ +54.5゜ −1−48,6゜ −1−93,6’ +68.6゜ 211〜214 217〜220 222〜225 220〜223 224〜227 (来貢以下余白) 1 表8 大谷法反応生成物のシリカゲル薄層り1コマI・グラフ
ィーによる移動率 *移動率 溶質の移動距離/原点と溶媒先端の1市離溶媒 り
(Industrial Field of Application) The present invention provides a novel su-hiori degree l'+! This invention relates to r-transferred compounds, their production methods, and novel stevia sweeteners using them. (Prior art) Stevia is a perennial plant belonging to the Asteraceae family from Paraguay in South America.
It contains flavor components and has been in increasing demand as a natural sweetener in recent years. Stehya U flavoring has a taste level of 100 to 300 times that of sugar, is stable to heat, and is suitable for food processing, while having the highest content of Stevia 1'' among flavorants. Stevioside has one problem in terms of taste quality, such as the onset of taste and taste other than taste is slower than that of sugar, and the sweetness is long-lasting. As a method for improving the t:f 1.115 of
No. 70, Japanese Patent Publication No. 61-28363-℃), although it has been made longer, it is still satisfactory, and the current situation is that it has not been revised to 1 (i'). As you can see, 1) Stevia 1-1 flavoring with improved taste quality is still not available, and 1-1 flavoring is not available yet. Therefore, the inventors of the present invention recognized that it was an important and urgent task to develop a Stevia vomit with improved taste quality, and began research. That is, the present invention aims to provide a novel stevioside transglycosylation compound, a method for producing the same, and a novel Stehya H flavoring agent using the same with improved taste quality. [Means for Solving the Problems] Based on this technical background of Stevia flavored rice, the present inventors aimed to develop a Stevia 1 seasoning that is safe and has excellent emitter quality. R fortune-telling, which has been intensively researched as a goal, a new theory (l; j), I! 1 metastatic substance
] ``14'' was found to be useful as a flavoring agent with excellent taste quality, and the present invention was completed. That is, the present invention is comprised of the following technical matters (1) to (3). (1) The following formula [wherein R1 is α-G, α-G4-α-G or α-G4
-α-G4α-G, R2 are both H (in the formula, G is D
- indicates glucopyranosyl). In addition, below III
is αG, R2 is H, 5-1a, ll+ is cx
-G'-rx-G, R2 or I4 substance is 5-2a,
R is α-G'-a-G'α-G, so the substance in which R2 is 11 is abbreviated as 5-3a]. (2) At least one stevioside glycosyltransfer substance among the three substances in (1) above is a total stevioside glycosyltransfer substance.
A stevia flavoring agent characterized by containing as an active ingredient a stevioside glycosyltransfer substance which is contained in a high concentration relative to an i-transfer substance. (3) The weight ratio of at least one stevioside sugar transfer substance among the three substances described in (+) above to all the stevioside sugar transfer substances is 70% or more. 2) The ``stevia'' flavoring agent listed. (4) By enzymatically transferring stevioside and α-glucosyl sugar compound in the presence of an clathrate compound using cyclode 1-s 1 to ring glucosyl 1-transferase, α-glucosyl sugar is transferred to Ro of stevioside. Stevia 1'' flavoring agent characterized in that the active ingredient is a stevioside glycosyltransfer substance in which compounds are linked through α-1,4 bonds. (5) Stevioside and α-glucosyl sugar compound;
The method for producing a stevioside' transglycosylation compound according to (1) above, characterized in that the transfer is carried out enzymatically in the presence of cyclotex I ring glucosyltransferase in an amount of 0/ml or less. The present invention will be explained in detail below. The present inventors have focused on the phenomenon that a compound obtained by enzymatically transferring an α-glucosyl sugar compound to stevioside has a slightly improved taste quality by 1" compared to stevioside. In other words, when an α-glucosyl sugar compound is enzymatically transferred to stevioside, stevioside is transferred to the 19th and 13th positions.
Because it has D-glucose at the position, for example, cyclodextrin glucosyltransferase (E, C, 2,
4,1゜19) Enzymes such as "hereinafter referred to as CGTase",
When the transfer reaction of α-glucosyl sugar compounds is carried out, the reaction product becomes a complex mixture in which various α-glucosyl sugar compounds are transferred to the end of the bonding sugar at the 19th, 13th, and 13th positions. It is expected that such a mixture contains components with excellent taste quality (1↑) and components whose sweetness quality has not been improved. However, conventionally the individual lJ in this mixture,! ! It is difficult to divide the frequencies of I-Takumi-Kaimono, and in part, in JP-A-61-28363, α-1,4 monoglucopyranosyl stehiosite, α-14-diglucopyranosyl steviosite, α-14-diglucopyranosyl steviosite Although α-14-triglucopyranosylstehiozide has been molecularly identified, the relationship between its structure and sweetness has not been clarified, and its separation has not been sufficient. Therefore, the present inventors developed Stehioli'id! ! 17: It is important to isolate the individual components in the transfer material and clarify the relationship between their structure and 1+4' taste quality in order to produce Stechia sweetener with excellent taste quality. After coming to this realization, we conducted various studies on the isolation of the (ll11)J component in the stevioside transglycosylate and its sweet taste. As a result, the present inventors were able to isolate the individual components of stevioside glycosyltransferases, which had been considered difficult in the past, and also to elucidate the taste quality of stevioside. It, combined with glucose, maltose, and maltotriose, gives a taste quality of 1↑ that is equal to or better than Rebaudioside A, which is currently evaluated to have the best sweetness quality among stevia compounds. Also, 19-CO
It has been found that when O-glucose is transferred only to the 4th position (the 12th position in the formula of claim 1, hereinafter abbreviated as R2) and to both R and R2, there is no or very little improvement in sweet taste quality. Ta. Next, Table 1 shows the structures and taste qualities of a series of stevioside glycosyl transfer compounds, including the novel stevioside glycosyl transfer compounds of the present invention. (Leaving space below) Table 1 Structure of stehiozide saccharide inverting compounds and 1' taste multiple, -1
"Taste Stevioside S-1. a - 1h -2a -2b -2c -3a -3b -3c -3d m ; n O=0 1:0 0:1 2:O l;1 0:2 3;0 2;1 1:2 0;3 Sweetness multiple 60 80 33 05 36 36 17 46 50 21 0 * m: n Number of D-glucopyranosyl bound to R+(m) and 172(n)-1-1Taste multiple-B/A A; Each stevioside sugar 0.025W/W% of transition component
Sweetness of the solution B: Concentration (W/W)% of a sucrose solution that has the same sweetness as a 0.025W/W% solution of stevioside transglycosylation component. B; Equivalent to Rehaudiozide A C; Slightly superior to Stevioside but inferior to Rehaudioside FA D: Equivalent to Stevioside *Book** Compounds of 5-1a, 5-2a and 5-3a is as follows: 5-1a+ 13-0 [α-D-glucopyranosyl(1→4)-β-D-glucopyranosyl-(1→2)-β-D-glucopyrano1 zirco-], 9-0- [β-D-Glucobyranosylcostehiol 2a: 13-0-[α-mal l-syl β-D-glucopyranosyl β-D-glucopyranosyl] [β-D-glucopyranosyl] Biol 3a: 13-0- [α (1→4)-β (1→2)-β 1.9-0- [β Stevioside, that is, glucose, flu-1--su, flu-1-liose, etc. are added to α1,4 to 111 of stevioside. Stehiosite transglycosylates containing compounds bound alone or in combination;
Stevia 1 containing a large amount of sdehyde derivatives containing 4-bonded compounds alone or in combination
” The flavoring agent is conventional Stevia I11! J(1-->/l) (1-)2) 1.9-0 Sweetness quality is superior to the following It turned out that Next, the physical properties of each steviozite transglycosylation compound will be explained. Compounds 5-1a, 5-1b are 13-0 of steviocyto
-4 or 19 position of the terminal glucose on the sophorose side
Either one α-glucose is transferred to the 4th position of C00-glucose. (N, Kaneda et al.
al. Chem, Pharm, l1u11.25.2466
(1977) S-Ia is a colorless crystal with a melting point of 2]1 to 214
°C, and elemental analysis gave the molecular formula of C441170023. This results in compound 5-1a,
It was confirmed that 5-1b has one α-glucose transferred to steviocyto. Next, in C-NMR, S-1a was 95.6pp.
m is the anomeric carbon of 19COO glucose, 98.
130-glucose anomeric carbon in lppm, 10
The anomeric carbon of the terminal glucose of 13-0 sobolose is at 6.6 ppm and 1.03. The anomeric carbon of α-glucose transferred to lppm was observed. Also S-
1114J, the anomeric carbon of 19-Coo glucose at 95.4 ppm, the anomeric carbon of 13-0-glucose at 97.8 ppm, and the anomeric carbon of 13-Coo glucose at 06.5 ppm.
The anomeric carbon of the terminal glucose of 0-sophorose, or 1
The anomeric carbon of α-glucose transferred to 0.02.8 ppm was observed. However, in "C-N)IR, which of compounds 5-Ia, S-1, and b has α-glucose at the 4-position of the terminal glucose on the 13-0 sophorose side of steviocyto, or at the 4-position of 19-COO-glucose. It could not be determined whether the tumor had metastasized or not (Table 2).
A similar C-NMR analysis was conducted in JP-A No. 61-28363, but the binding site of α-glucose was not identified in this analysis. Therefore, the cauldron method (K, Ohtani et al. Te
trahedronLett,, 25.4531 (
1,984)) was tried. In the cauldron method, the 19-Coo-glucosei rule of steviocyto is used to cleave conistert glycosides, and the cleaved sugars are methylated at the cleavage site to become methyl glycosides. The 19th position Memethi glue resting silica gel glue layer Chroma I obtained by this method
・Confirmed by graphography (deployment medium: Ri 1 J Horin-methanol water, (in: 1), compound 5-1a,
The structure of S-1,b was determined. Methyl glucoside from S-1a, 5II
) Methyl glucoside was obtained from each. (Table 6) As a result, compounds S-1a and S, in which one molecule of α-glucose was transferred to steviocytosite using cyclodate strrine transferase
-1b are respectively 34a as the structure is shown in Table 1
is the one in which α-glucose is transferred to the 4th position of the terminal 5ii glucose on the 13-0-sophorose side of steviocyto, and s-ib is the one in which α-glucose is transferred to the 4th position of the 19-COO-glucose in steviocyto. It was decided that there was. Compounds S-2a, S-2b, and S-2c have α-mal I.
- one glucose has been transferred, or one α-glucose has been transferred.
One of them has been transferred one after another. (N.Kane
daeL al. cllcm. Pharm. I! u11
.. , 25, 2466 (1977)) S-2a is a colorless crystal with a melting point of 222-225'C, and elemental analysis gave it the molecular formula of CSOllBQO2B. S-2b
It was a colorless solid with a melting point of 220-223°C, and elemental analysis gave it a molecular formula of C5o111100□,l. S
-2c is a colorless crystal with a melting point of 224-227°C, and the molecular formula of CSOolloo□8 was determined by elemental analysis. This results in compounds S-2a, S-2b, S
It was confirmed that -2c is a product in which one α-mal I·-su or one α-glucose was transferred to steviocyto'. Next, in 13C-N phylum R, S-2a is 95.7pp
m is the anomeric carbon of 19COO-glucose, 97.
(The anomeric carbon of 130-glucose in ippm is 1
The anomeric carbon of the terminal glucose of 130-sophorose is 1, 02.5, 102.7 ppm at 06.7 ppm.
, a transferred anomeric carbon of α-glucose was observed. S-2b has 19COO-glucose anomeric carbon at 95.2 ppm and 130-glucose at 97.3 ppm.
The anomeric carbon of glucose is 106.7 ppm13
-O The anomeric carbon of the terminal glucose of soporose is]
The anomeric carbon of α-glucose transferred at 0.02.7 and 1.02.8 ppm was observed. Also S-2c↓J:
The anomeric carbon of 1,9-COO-glucose is at 95.5 ppm, the anomeric carbon of 13-0-glucose at 97.8 ppm, and the anomeric carbon of the terminal glucose of 13-0-sophorose at 106.5 ppm6, +02.7 , α- transferred to 103.1 ppm
An anomeric carbon of glucose was observed. However, +3
In CNMR, compounds S-2a, S-2b.
Which of S-2c is the 4th position of the terminal glucose on the 13-0-sophoDose side of steviocyto, or 1.9-Coo
- It could not be determined whether one α-maltose or one α-glucose was transferred to the 4-position of glucose. (Table 2) Therefore, the Ohtani method (K. Ohtani et al.
trahedronfelt. , 25. 4537(
1984)) was attempted. Compounds S-2a, S-2 obtained by cleaving only the ester glycoside moiety using the Otani method
When the 19-position methyl glycoside of each of b and S-2c was confirmed by silica gel thin layer chromatography (developing solvent: chloroform-methanol-water, 6:4:1), methyl glucoside was found from compound S-2a. , S-2
Methyl glucoside was obtained from b, and methylfur 1-trioside was obtained from S-2c. (Table 6
) As a result, compounds S-2a and S, which are two molecules of α-glucose transferred to steviocytosite using sifurobukis-1-phosphorus-glucosy-1 full transferase, were obtained.
As shown in Figure 2, S-2b and S-2c have α-maltose transferred to the 4-position of the terminal glucose on the 13-0-sobolose side of steviocyto, and S-2b has the structure shown in Figure 2. One α-glucose is transferred to the 4th position of the terminal glucose on the 13-0 sobolose side of steviocyto and the 4th position of 19-COO-glucose, and S-2c is transferred to the 4th position of the 19-COO-glucose of steviocyto. It was determined that one alpha-mallease had been transferred. Compounds S-3a, S-3b, S-3c, S-3d
is the 4-position of the terminal glucose on the 13-0-sophorose side of steviocyto, or the 4-position of the 1.9-COO-glucose.
One α-maltotriose slucose is transferred to each position. (N. Kaneda et al. Chem. Phar
m. [lull. + 25 + 246 (i (1977)
) S-3a is white 45) rice, and elemental analysis shows that C
s I, II 9. (The molecular formula of 11J was obtained. S-3b is outstanding), and elemental analysis revealed that CS
The molecular formula of 61190033 was given as 8. 5-3c is a white powder, and elemental analysis gave it a molecular formula of C36+190033. 5-3
d is a white powder, and elemental analysis shows that it is C56+19゜0.
33 molecular formulas were given. This allows compound 5-
3a, S3b, 5-3c, 5-3d are the 4th position of the terminal glucose on the 13-0-sophorose side of steviocyto,
Or 1.9-Co. It was confirmed that either one α-maltotriose or one α-maltose and one α-glucose were transferred to the 4-position of glucose. Next, in "C-NMR, 5-3a is 95.6 ppm
The anomeric carbon of 19COO-glucose is 97.8
13 glucose anomeric carbon in ppm, 106.5
The anomeric carbon of terminal glucose of 13-0 sophos 11-s was observed at ppm, and the anomeric carbon of transferred α-glucose was observed at 102.5.102.7 (2C) ppm. S-3b has the anomeric carbon of 19-COO-glucose at 95.5 ppm, the anomeric carbon of 13-glucose at 98.0 ppm, and the anomeric carbon of 13-O- at 106.7 ppm.
The anomeric carbon of the terminal glucose of soporose is 102
.. The transferred anomeric carbon of α-glucose was observed at 3.103.1 (2C) ppm. 5-3c is 9 95.5 ppm to 1.9-COO-glu=r-sno7
/ ? - carbon carbon, 13-glucose anomeric carbon at 97.9 ppm, 13-0-sophorose terminal glucose anomeric carbon at 106.8 ppm, 1.02.6
.. ]03.0 (2C) ppm, the transferred anomeric carbon of α-glucose was observed. In addition, 5-36 has 95.4 ppm of 19-Coo-glue:
The anomeric carbon of 1-su is 97.8 ppm, and the anomeric carbon of 13-curcose is 106.5 ppm of 13-0.
-The anomeric carbon of the terminal glucose of sophorose is 10
2.6.102.9(2C)ppmG, transferred α-
An anomeric carbon of glucose was observed. However, “C
-In NMII, compound S3a, 5-31+, 5
-3(:, Which of 5-3d is 13-0 of steviocyto
- 4th position of the terminal glunis of sophorose, 4) Skull 1
.. It could not be determined whether one α-maltotriose or one α-mal l·-s and one α glun 1-s were transferred to the 4-position of 9-Coo-glucose. (
Table 2) Therefore, the Otani method (K, Ohtani et al, Te
trahedronl, ett,, 25.4537 (
1,984,)) was attempted. In the Otani method, only the Nisder glycoside moiety was removed using 9J 1lIi, and the 19-position methyl glycosides of each of compounds 5-3a, 5-3h, 5-3c, and 5-3d were prepared using silica gel 7! As confirmed by J-layer chromatography (developing solvent: chloroform-methanol-water, 6:,'+:i), methyl glucoside was found from compound 5-3a, methyl maltoside was found from 5-3b, and 5-3c Methylmaltotriozyde 1' was obtained from 5-3d, and methylmaltoside oxide was obtained from 5-3d. (Table 6) As a result, compounds 5-3a, 5-3b, 5-3 in which three molecules of α-glucose were transferred to steviocytosite using cyclodextrin glucosyltransferase
As shown in Table 1, 5-3a and 5-3d are those in which α-maltotriose is transferred to the 4-position of the terminal glucose on the 13-o-sophorose side of steviocyto, and 5-3d is the structure shown in Table 1. 3b is α-maltose at the 4th position of the terminal glucose on the 13-0-sophorose side of steviocyto, and α-glucose is 1 at the 4th position of 19-Coo-glucose.
5-3c is steviocyto 1.
One α-glucose and one α-maltose have been transferred to the 4th position of the terminal glucose on the 3-0-sophorose side, and 5-3d is the terminal glucose [“ 1.9-COO-
It was determined that α-maltotriose was transferred to the 4th position of crucose. Stevioside' IJ7j transfer product produced by the method described in JP-A No. 5,1-5070 and JP-A No. 61-28363, in which an α-glucosyl sugar compound is transferred to commercially available stevioside. 1 The composition of the transition product is
The results of analysis using the method developed by the present inventors are shown in Table 2. (Leaving space below) 2 Table 2 Analysis of each transglycosylated compound in commercially available transglycosylated stevia sweeteners g/
100g Stevia sweetener Commercial product A Commercial product B Commercial product C Commercial product D3.37
8,22 3.44 1.462.0
1 7.08 1.96 1.984
.. 77 2.51 3.45 2.7
93.24 15.32 4.18
1.383.57 2.62 2.43
1.2B2.84 2.41.
2.473.80 4.26 3.
06 1.354.98 7.36
4.08 1.222.70
2.08 1. .. 323 As a result, among the transglycosylation products, the proportion of compounds transferred only to "R" with excellent taste was about 20 to 45%, and the proportion of transglycosylation products with no improved taste was about 80 to 55. %, and it was assumed that this was the reason why the sweetness quality was not sufficiently improved. Therefore, the present inventors conducted research on the relationship between the proportion of stevioside glycosyltransferases transferred only to R1 and the taste quality. The results are shown in Table 3. (Leaving space below) 4 Table 3 Percentage of stevioside glycosylated compounds transferred only to R and sweet taste *Percentage of compounds transferred only to R1 among glycosylated substances. **The amount of stevioside compound was kept constant. A: Better than Rehaudeiosai FA B: Rebaudeiozai; Equivalent to 'A C: Rehaudeiozai F
Inferior to A, but slightly higher fC than stevioside 5 D: Equivalent to stevioside As shown in Table 2, the stevia sweetener has a proportion of 70% or more of the stevioside sugar transfer product transferred to R1 compared to conventional products. It was found that the taste quality of Stevioside R1 was far superior.Next, R1 of Stevioside contains glucose, maltose,
Stevioside transglycosylates containing compounds in which maltotriose etc. are bonded with α-1,4 bonds, singly or in combination, and glucose, maltose, mal-I-trios etc. in α-1 R of stevioside , a method for efficiently producing a stevia flavoring agent containing a large amount of stevioside transglycosylates containing compounds bound by 4-bonds, either singly or in combination, will be described. As for the method of using chemical synthesis method in combination, after transferring an α-glucosyl sugar compound to F1G using CGTase, 19-glucosyl sugar compound is transferred to Stevio-ruvioside, which is obtained by deglucosylating the glucose at position 19 of Stevio rubioside. Stevia 4 contains a compound in which glucose, maltose, malto-l-liose, etc. are bonded to R5 of stevioside through an α-1,4 bond by glucosylating the carboxyl group at the position. ”. Flavors can be manufactured. (Reference; Journal of the Chemical Society of Japan 1981. (5), P726-735) As an enzymatic method, stevioside and α-glucosyl sugar compound are
When transferring with Tase, by adding various clathrate compounds, compounds in which glucose, maltose, malto]-liose, etc. are bonded to R1 of stevioside through an α-1,4 bond can be used alone or It is possible to efficiently produce a stevia sweetener containing a large amount of mixed stevioside glue. Examples of clathrate compounds include cyclodextrin and zylic bisdesmocytes. In particular, cyclodextrin itself is more preferred since it serves as a donor for the transglycosylation reaction by COTase. Furthermore, in the enzymatic method, by adjusting the concentration of cc'rase used in the transfer reaction to 5 u/mF or less, Sla, 5-2a, 5-2a, which has excellent sweetness,
Only 5-3a could be produced in high yield. This is because the addition reaction at position 13 of steviol proceeds specifically by selecting the above enzyme concentration. This method is
Stevioside 1% and soluble starch or T- as substrate
Cyclodextrin alone or in mixture 1.00-2.
This is carried out by adding 0.5 u of Leik I'te, 1-strine synthase (manufactured by Amano Pharmaceutical Co., Ltd., trade name: Contizyme) to a mixture with 61% and treating. As the above-mentioned enzyme, any cyclodextrin synthase other than CGTase can be used as long as it specifically promotes the addition reaction at the 13th position of steviol. The enzymatic reaction in the present invention may be either a hatch type reaction or a continuous type reaction using an immobilized enzyme. Also, the reaction time is
If it lasts too long, by-products other than the target substance will be produced and the taste quality will deteriorate, so it is appropriate to leave it within 32 hours. The pH may be in any range as long as the enzymatic reaction can proceed, and is preferably 3.0 to 8.0. 8 Below, the present invention will be specifically explained with reference to Experimental Examples and Examples. [Experiment example] 1) Transglycosylation reaction on stevioside Stevioside (hereinafter abbreviated as S) extracted from stevia leaves 1.0.7 g
and 13.6 g of soluble starch and 320 iR of water. IM Acetate Huffy-(pH=5.6) 3.16
mfl and CC, Tase (Hacilus stearothermophilus production 1400 units/ml) 0.41 ml
was added and incubated at 40'C for 16 hours to carry out the reaction. The enzyme was inactivated by boiling for 15 minutes. (Figure 1
) 2) Separation of transglycosylation products After filtering the reaction mixture obtained in 1), porous resin column chromatography (DIAION IIP-20
), water, 40% methanol, 65% methanol
Elution was performed sequentially with 80% methanol, methanol, and acetone. 7.14 g of the 65% methanol fraction was subjected to silica gel column chromatography (solvent: chloroform methanol-water, 13:7:l), fr-1 to fr-8
was obtained in the yield shown in FIG. Further 9 silica gel column chromatography loloform-methanol-water, fr-2, -4, -6, fr-2; 13:
7:1 fr4; 10:5:1. fr-6;
6:4:1) respectively. 1.7 g of the fraction with 1 molecule of α-glucose transferred to S (Konni top), 1.13 h of the fraction with 2 molecules transferred (S-2), and 1 g of the fraction with 3 molecules transferred (Ko-1). Each yield was .38 g. Next, high performance liquid chromatography (column: TSK
Separation was performed using a SL00S-120T). Loss 1 (
(Solvent: 70% methanol), the interlocking is different from (Solvent: 62.5% methanol) 7a, , S-2b
, From the previous article, Difference 1 (solvent: 59% methanol),
Seiko, S. and S. were isolated with the yields shown in Figure 1. 3) Confirmation of structure The structure was determined by elemental analysis, 'H-1nlR,'C-NMR, and analysis of the reaction product using a lithium iodide reagent.In addition, the appearance, specific rotation, and The melting point was measured. Each analysis method is described below. H-NMR: JI Mi OL-GX400 conductive nuclear magnetic resonance apparatus (manufactured by JEOL Ltd.) 0 Deuterated pyridine solution, 400 MHz, 30°C'C Ni IJMR: JEOL-FX100 nuclear magnetic resonance apparatus (
(manufactured by JEOL Ltd.) Deuterated pyridine solution, 100 MHz, 30'C Elemental analysis: Yanagiki C, I (, N coder MT-3 type (Yanagimoto Seisakusho) Specific optical rotation: Union Automatisoku Decital Volarimeter Pl+-101 Melting point: Elemental analysis (Table 3) using Dancro Yanagiki melting point measuring device Mono-α-14-
1111 tW was determined to be a glucosyl transfer product. Furthermore, when 5-1a is reacted with a lithium iodide reagent, methyl glucoside is obtained, and 5-1b is methylmaltoside 1, so 5-1a is 130-
[α-D-glucopyranosyl-(1→4)β-D-glucopyranosyl-(1→2)-βD-glucopyranosyl)-19-0-[β-D-glucopyranosyl]-steviol, S-1, b is 13 -○1 [β-D-glucopyranosyl-(1,->2)-βD-
glucopyranosyl)-1,9-0-(α-I]glucopyranosyl-(1→4)-β-D-glucopyranosyl)-
It turned out to be stehiol (Figure 2). '11
-NMR and "C-NMI?" analysis (Table 34) confirmed that the difference was a di-α-1,4 glucosyl transfer product. Also, the reaction with lithium iodide reagent 5-2a is 13-○-[α-maltosyl-(1
→4)-β-D glucopyranosyl-(1→2)-β-D
-curcopyranosyl]-1,9-0-(β-D-glucopyranosyl)-steviol, the difference is 13-0-(αD
-Glucopyranosyl(1→4)-β-I)-Glucopyranosyl-(1→2)-β-D-glucopyranosyl)-
11-0-(α-1]-glucopyranosyl-(1→4)
-β-D-glucopyranosyl]steviol, the difference is 1
.. 3-0-(β-D-glucopyranosyl-(1-)2)
-β-D-glucopyrano2syl]-19-0-[α-maltosyl-(1→4)-β
-D-glucopyranosyl]-steviol (Figure 2). 'II-NMR and 13C-N
MI? According to the analysis (Tables 4 and 5), L amount, continuous use 5-3c
, 5-3d was confirmed to be a tri-α-1,4-glucosyl transfer product. Furthermore, when a reaction with a lithium iodide reagent is carried out, methyl glucoside, methyl maltoside, methyl maltotriside, and maltotetrozide are obtained, respectively.
Maltotriosyl-(1→4)-β-D-glucopyranosyl-(1→2)β-D-glucopyranosyl]-19-
○-[β-D glucopyranosyl]-steviol, 5-
3b is 130-[α-maltosyl-(l→4)-β-D
Glucopyranosyl-(1→2)-β-D-curcobyranosyl: l-1,9-0-[α-D-glucopyranosyl-(]→4)-β-D-glucopyranosyl] steviol, V is 13-C1- [α-D-glucopyranosyl-(1→4)-β-I]-glucopyranosyl=(1→2
)-β-D-glucopyranosyl]3 1.9-0-(α-Mal I syl-(■→4)-β-D
glucopyranosyl]-steviol, S-3cj 13
0-[β-D-glucopyranosyl-(1→2)β-D-
Curcopyranosyl:]-1,9-○-[α-maltotriosyl-(1-)4. )-β-1)-glucopyranosyl]-steviol (Figure 2). Also, 'II-NMI?' of each metastasis? Speck l-le 3rd to 5th
In the figure, 5-1a, 5-3a's 'C-NMR
The spectra are shown in Figures 6-8G. Table 6 shows the appearance, specific rotation, and melting point of each transition product. (Leaving space below) 4 Table 4 Elemental analysis value of each sugar transfer product CaaH7oOzs As H2O C3GHII002+1 20 CsOH800ze 120 C56) 190033 H20 5 6 7 8 9 4 Table 7 Appearance, specific rotation, melting point of each sugar transfer product Colorless crystal Colorless crystalColorless crystalColorless crystalColorless crystalWhite crystalWhite crystalWhite crystalWhite crystalWhite crystal+12.7°16.1°138.1°-1-32,6°+1.2.0°+54.5°-1-48 , 6゜-1-93,6' +68.6゜211~214 217~220 222~225 220~223 224~227 (Leaving space below) 1 Table 8 1 frame of silica gel thin layer of Otani method reaction product I. Migration rate by graph * Migration rate Distance traveled by solute / 1-city separation between origin and solvent tip

【コロホルム:メタノール:水=6:4:1発色 硫酸発色120°C 4)禍逍とH゛味倍音1及び11味質 得られた各転移生成物について4」゛味倍数、甘味質の
検言・1を行った。甘味倍数は極限法による官能検査に
より行い、サンプルと同H“味度の蔗糖溶液の濃度(等
価刺激PSE)を求めた。甘味質は蔗814%溶液に和
尚する11°味で11味に優れた官能検査員による官能
評価により行った。結果を図2に示した。 (実施例] 実施例1 ステヒオザイド50■とT−サイクロデキストリン10
mgを1雌の華留水に溶解し、40°C130°C13
時間プレインキツーへ後、COTアーゼ(ハシラス ス
テアロザーモフィラス産生50un i t / mf
l>  を0.1mff1.IM酢酸ハノフy −(p
 H5,6) 0.011mRを加えて、40°C11
6時間反応を行った。反応終了後3 沸騰水浴上に15分間放置し酵素を失活さセた。その後
反応生成物を前に述べた方法で分析し、その結果を表9
に示す。尚、未反1芯のステヒオ′す“イトは回収した
。 このようにして得られたスう一ヒアl1llA、llは
11味質が非常に優れていた。 表9 糖転移物  重量(mg) S −1a        12.67S−1b   
     ]、、]6 8S−2a        8.31 S−2b         2.56 S−2c         ]、、26S −3a  
       3.57S−3b         1
..21S−3c         i、46 S−3d         0.03G合計  32.
756 1ヒ  率(%) 38.7 5.1 25.4 7.8 3.8 10.9 3.7 4.5 0.1 100.0 4 実施例2 ステ上オサ4150mgと可溶性澱粉50mg、ザイク
リックヒスデスモサイド70mgを1 mlの草留水に
溶解し、IIO’C13時間プレインキユヘートした後
、CGTアーセ (ハシラスマセランス産生50uni
t/ mQ、 )を0.1mLIM酢酸ハンフy −(
pH5,6)0.011 mflを加えて、40°C1
6時間反応を行った。 反応終了後沸騰水浴上にて15分間放置し、酵素を失活
させた。その後反応生成物を前に述べた方法で分析し、
その結果を表10に示す。尚、未反応のステヒオザイト
は回収した。 このようにして得られたステヒア甘味料は甘味糖転移物 −1a −1b −2a −2b −2c −3a −3b −3c −3d 合計 表10 重量(mg) 7.54 0.35 4.2】 0゜16 0.26 3.76 0.076 0.062 0.15 16.568 比 率(%) 45.5 2.1 25.4 0.9 1.6 22.7 0.5 0.4 0.9 100.0 実施例3 実施例1、並びに実施例2で得られた反応生成物+4〕
l 3位のめに転移した成分を分取し、その1」°吐質
を評価したところ非常に優れていた。(表1参+t0実
胞例4 6 ステビオサイドに、基質として溶性澱粉またばT−サイ
クロデキストリンの単一基質及び両者の混合物をpH5
,6の0.01M酢酸緩衝液に溶解し、サイクロデキス
トリン合成酵素(天守製薬製、商品名コンチリイム60
0u/mn)を40“Cで表11の条件で反応させた。 表 11  ステビオサイドの糖転移反応条件試料7 溶性澱粉 1.61 7 その時の糖転移ステビオサイドを高速液体りlコマドグ
ラフイー(以下HP +−Cと略)により下記の条件で
、ステビオサイド及び1!L 21+、!4$1+転移
物の含量を定量した。なお3糖以上(”J’ JJu 
したものについてはその他として記す。(表12)HP
 L C分析条件 カラム: YMG−PACK R−ODS−54,6X
250mm8 媒=57%メタノール 速: 1.0 ml /m i n 出: 210nm 度:so’c 水 (来貢以下余白) 9 表12 各試料の成分(重量%) 水割台(%)とは(S−1a+S−2a)/(S−1a
+5−1b+5−2a+5−2b+S−2c)の100
分率を示す。 なお、5−3a、 5−3b、 5−3c及び5−3d
の各成分は」二足条件では定量不可0 上記試料7. 8.15.16の結果より、サイクロデ
キストリングルコシルトランスフェラーセの作用濃度が
5u/m、l!以下の場合、70%以上の効率でステビ
オサイドの13位ソホロースのR3に糖転移反応が行わ
れる。 これらの3糖以上の化合物についてはβ−アミラーゼ等
の酵素により、切り戻し、より甘味質が良く、また甘味
倍率もより高い5−1a、5−2aの含量を増やし、更
に甘味質を改善することが出来る。 得られた試料14と試料18について甘味倍数、せ叶質
の検討を行った。甘味倍数は極限法による官能検査によ
り行い、サンプルと同甘味度の蔗糖溶液の濃度(等価刺
激PSE)を求めた。甘味倍数は試料14は150、試
料18は136となった。甘味質は蔗糖4%溶液に相当
する甘味で甘味に優れた官能検査員10名により検討し
たところ8名が試料14の方が蔗糖に近い甘味質である
とした。 〔発明の効果〕 本発明のステビア甘味料は甘味質の優れた新規1 ステビア甘味料であり、従来製品と比較して、その有用
性は顕著なものである。更に、本発明により甘味質の優
れたステヒオ゛す゛イl−糖転移化合物の効率的な製法
が提供された。
[Coloform: methanol: water = 6:4:1 color development Sulfuric acid color development 120°C 4) Calamity and H゛Taste overtones 1 and 11 Taste quality 4) Test of taste multiple and sweetness quality for each transition product obtained I did the word 1. The sweetness factor was determined by a sensory test using the limits method, and the concentration of a sucrose solution with the same taste level as the sample (equivalent stimulation PSE) was determined. The results were shown in Figure 2. (Example) Example 1 Stehiozide 50■ and T-cyclodextrin 10
Dissolve 1 mg in Karyu water and heat at 40°C130°C13
After incubation for an hour, COTase (Hacilus stearothermophilus production 50 unit/mf
l> to 0.1mff1. IM acetate Hanoff y-(p
H5,6) Add 0.011mR and heat to 40°C11
The reaction was carried out for 6 hours. After completion of the reaction 3: The enzyme was inactivated by leaving it on a boiling water bath for 15 minutes. The reaction products were then analyzed as previously described and the results are presented in Table 9.
Shown below. In addition, 1 core of unrefined Stehio'su'ite was collected. The Suichihia l1llA,ll obtained in this way had an extremely excellent taste quality. Table 9 Transglycans Weight (mg) S-1a 12.67S-1b
],, ]6 8S-2a 8.31 S-2b 2.56 S-2c ],, 26S-3a
3.57S-3b 1
.. .. 21S-3c i, 46 S-3d 0.03G total 32.
756 1 Hi rate (%) 38.7 5.1 25.4 7.8 3.8 10.9 3.7 4.5 0.1 100.0 4 Example 2 4150 mg of stewage osa and 50 mg of soluble starch, After dissolving 70 mg of zyclic hisdesmoside in 1 ml of grass distilled water and pre-incubating with IIO'C for 13 hours, CGTase (50 uni
t/mQ, ) to 0.1 mL IM acetate y-(
pH5,6) Add 0.011 mfl and heat at 40°C1
The reaction was carried out for 6 hours. After the reaction was completed, the mixture was left on a boiling water bath for 15 minutes to inactivate the enzyme. The reaction products were then analyzed as previously described,
The results are shown in Table 10. Incidentally, unreacted stehiozite was collected. The Stechia sweetener thus obtained is a sweet sugar transfer product -1a -1b -2a -2b -2c -3a -3b -3c -3d Total Table 10 Weight (mg) 7.54 0.35 4.2] 0゜16 0.26 3.76 0.076 0.062 0.15 16.568 Ratio (%) 45.5 2.1 25.4 0.9 1.6 22.7 0.5 0.4 0.9 100.0 Example 3 Reaction products obtained in Example 1 and Example 2 +4]
The component that had transferred to the 3rd place was separated and the quality of the emetic substance was evaluated, and it was found to be very good. (See Table 1 + t0 cell example 4 6 Stevioside was added with a single substrate of soluble starch or T-cyclodextrin and a mixture of both at pH 5.
, 6 in 0.01M acetate buffer, cyclodextrin synthase (manufactured by Tenshu Pharmaceutical Co., Ltd., trade name Contilime 60).
Table 11 Stevioside transglycosylation reaction conditions Sample 7 Soluble starch 1.61 The content of stevioside and 1!L 21+, !4$1+ metabolites was quantified using HP+-C) under the following conditions.
Items that have been completed are listed as "Other". (Table 12) HP
LC analysis conditions column: YMG-PACK R-ODS-54,6X
250mm8 Medium = 57% methanol Speed: 1.0ml/min Output: 210nm Degree: SO'C Water (margins below) 9 Table 12 Components of each sample (% by weight) What is water splitting table (%)? (S-1a+S-2a)/(S-1a
+5-1b+5-2a+5-2b+S-2c) 100
Shows the fraction. In addition, 5-3a, 5-3b, 5-3c and 5-3d
Each component of sample 7 cannot be quantified under the two-legged condition. From the results of 8.15.16, the effective concentration of cyclodextrin glucosyltransferase is 5 u/m, l! In the following case, the transglycosylation reaction is performed at R3 of sophorose at position 13 of stevioside with an efficiency of 70% or more. These three or more sugar compounds are cut back by enzymes such as β-amylase to increase the content of 5-1a and 5-2a, which have better sweetness and a higher sweetness ratio, and further improve the sweetness. I can do it. The obtained samples 14 and 18 were examined for their sweetness multiple and quality. The sweetness factor was determined by a sensory test using the limits method, and the concentration of a sucrose solution having the same sweetness as the sample (equivalent stimulation PSE) was determined. The sweetness multiple was 150 for sample 14 and 136 for sample 18. The sweetness quality was equivalent to that of a 4% sucrose solution and was examined by 10 sensory testers who were excellent in sweetness, and 8 of them agreed that Sample 14 had a sweetness quality that was closer to that of sucrose. [Effects of the Invention] The stevia sweetener of the present invention is a novel stevia sweetener with excellent sweetness, and its usefulness is remarkable compared to conventional products. Furthermore, the present invention provides an efficient method for producing a stereotransfer compound with excellent sweetness.

【図面の簡単な説明】[Brief explanation of drawings]

第1図はステビオサイド糖転移物の分離方法と収量を示
し、第2〜4図は各ステビオサイド糖転移物の’H−N
+’IRスペクトルを示し、第5〜7図はステビオサイ
ド糖転移物の13C−NMRスペクトルを示す図である
Figure 1 shows the separation method and yield of stevioside glycosylated products, and Figures 2 to 4 show 'H-N' of each stevioside glycosyltransferred product.
+'IR spectra are shown, and FIGS. 5 to 7 are diagrams showing 13C-NMR spectra of stevioside transglycosylates.

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1、次式 ▲数式、化学式、表等があります▼ 〔式中、R_1はα−G、α−G^4−α−G又はα−
G^4−α−G^4−α−G、R_2はいずれもH(式
中GはD−グルコピラノシルを示す)を示す〕で表され
るステビオサイド糖転移化合物。 2、請求項1記載の3物質のうち少なくとも1つのステ
ビオサイド糖転移物質が、全ステビオサイド糖転位物質
に対して高濃度で含有されているステビオサイド糖転移
物質を有効成分とすることを特徴とするステビア甘味料
。 3、請求項第1項記載の3物質のうち少なくとも1つの
ステビオサイド糖転移物質の重量が、全ステビオサイド
糖転移物質に対する重量割合で70%以上であることを
特徴とする請求項1記載のステビア甘味料。 4、ステビオサイドとα−グルコシル糖化合物とを包接
化合物の存在下でサイクロデキストリングルコシルトラ
ンスフェラーゼ等で酵素的に転移させることにより、ス
テビオサイドの13−0−ソホロースの末端グルコース
の4位(請求項第1項記載式中のR_1位、以下R_1
と略)にα−グルコシル糖化合物をα−1,4結合にて
結合させたステビオサイド糖転移物を有効成分とするこ
とを特徴とするステビア甘味料。 5、ステビオサイドとα−グルコシル糖化合物とを5u
/ml以下のサイクロデキストリングルコシルトランス
フェラーゼの存在下に酵素的に転移させることを特徴と
する請求項1記載のステビオサイド糖転移化合物の製造
方法。
[Claims] 1. The following formula ▲ There are mathematical formulas, chemical formulas, tables, etc. ▼ [In the formula, R_1 is α-G, α-G^4-α-G, or α-
G^4-α-G^4-α-G, R_2 both represent H (in the formula, G represents D-glucopyranosyl)] A stevioside transglycosylation compound represented by the following. 2. Stevia, wherein at least one stevioside glycosyl transfer substance among the three substances according to claim 1 contains as an active ingredient a stevioside glycosyl transfer substance that is contained in a high concentration relative to all stevioside glycosyl transfer substances. sweetener. 3. The stevia sweetness according to claim 1, wherein the weight of at least one stevioside glycosyltransfer substance among the three substances according to claim 1 is 70% or more by weight relative to all the stevioside glycosyl transfer substances. fee. 4. The 4-terminal glucose position of 13-0-sophorose of stevioside (Claim 1 R_1 position in the paragraph description formula, hereafter R_1
A stevia sweetener characterized in that the active ingredient is a stevioside transglycosylate in which an α-glucosyl sugar compound is bonded to a stevia (abbreviated as (abbreviated)) through an α-1,4 linkage. 5. 5u of stevioside and α-glucosyl sugar compound
2. The method for producing a stevioside glycosyltransfer compound according to claim 1, characterized in that the enzymatic transfer is carried out in the presence of cyclodextrin glucosyltransferase at an amount of less than /ml.
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JP2016102134A (en) * 2008-10-03 2016-06-02 守田化学工業株式会社 Novel steviol glycoside
JP2017141293A (en) * 2008-10-03 2017-08-17 守田化学工業株式会社 Novel steviol glycoside

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