JPH03244394A - Monoclonal antibody, hybridoma, its production and use thereof - Google Patents
Monoclonal antibody, hybridoma, its production and use thereofInfo
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Abstract
Description
【発明の詳細な説明】
産業上の利用分野
本発明は酸性線維芽細胞成長因子(本明細書において、
aFGFと略称することもある。)蛋白質に対するモノ
クローナル抗体、ハイブリドーマ、それらの製造法およ
びそれらの用途に関する。DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION Field of Industrial Application The present invention relates to acidic fibroblast growth factor (herein referred to as
It is sometimes abbreviated as aFGF. ) Monoclonal antibodies against proteins, hybridomas, their production methods, and their uses.
従来の技術
aF G Fは主として脳および網膜に局在する分子量
的16000の酸性ポリペプチドホルモンであり、BA
LB/c3T3細胞なとの線維芽細胞および中胚葉由来
の殆んど全ての細胞に対して増殖促進作用を示す。[D
、 Gospodarowiczら;Endocrin
e Reviews 8 : 95 (1987)]ま
た、この因子はin vivoでは血管新生作用を示し
、上記の細胞増殖作用と相まって損傷、火傷の治療薬お
よび血栓症、動脈硬化症などの予防治療薬としての可能
性を示す。Prior Art aF G F is an acidic polypeptide hormone with a molecular weight of 16,000 that is mainly localized in the brain and retina.
It exhibits a proliferation-promoting effect on almost all cells derived from fibroblasts and mesoderm, such as LB/c3T3 cells. [D
, Gospodarowicz et al; Endocrin
e Reviews 8: 95 (1987)] In addition, this factor exhibits an angiogenic effect in vivo, and in combination with the above-mentioned cell proliferation effect, it can be used as a therapeutic agent for injuries and burns, and as a prophylactic agent for thrombosis, arteriosclerosis, etc. Show possibilities.
発明が解決しようとする課題
天然に存在するヒトaFGFは極めて微量であり、また
これをヒトの組織から得る試みは種々の制約によって極
めて困難であった。さらにこれ迄aFGFの定量法とし
て容易に使える方法は確立されておらず、これらの理由
からaF G Fを医薬品として開発する上で欠かすこ
との出来ないaFGFに関する性状なとの基礎知見につ
いて不明の点か非常に多い。Problems to be Solved by the Invention Human aFGF exists in nature in extremely small amounts, and attempts to obtain it from human tissues have been extremely difficult due to various restrictions. Furthermore, up until now, no method has been established that can be easily used to quantify aFGF, and for these reasons, there are still some unknown points regarding the basic knowledge regarding the properties of aFGF, which is essential for developing aFGF as a drug. Or very many.
従って、aF G Fに関する多くの基礎知見、例えば
aF G Fの生体内における分布やその産生様式なと
を知ることがてきれば、該aF G Fの医薬品として
の開発が容易となる。Therefore, if a lot of basic information regarding aF GF is known, such as the distribution of aF GF in the living body and its production mode, the development of aF GF as a pharmaceutical will become easier.
また、aF G Fの量を正確に知ることは、この蛋白
質を遺伝子組換え体から精製する際にも重要である。さ
らに、aFGFを投与した動物の血中FGFJ度を追跡
することは非常に重要であるか、サンプル中に直情が混
入するため従来の3T3細吋包を用いに方法では測定出
来ない。通常、aFGFの測定:ま血、青濃度を下げて
培養し、DNA合成を低下させた3T3細胞にaFGF
を加え、DNl\合成能かどの程邸回復するかにより逆
算される。Furthermore, accurately knowing the amount of aFGF is also important when purifying this protein from a genetically recombinant plant. Furthermore, it is very important to track the level of FGFJ in the blood of animals administered with aFGF, or it cannot be measured using the conventional method using 3T3 small capsules due to the contamination of the sample. Normally, aFGF measurement: aFGF was applied to 3T3 cells that were cultured with reduced blue concentration and reduced DNA synthesis.
is added, and it is calculated backwards depending on the amount of DNl\synthetic ability and how much power is recovered.
しかしなかろ、この方法は細胞を用いるため操作か微妙
で測定誤差か大きく、しかも結果を得るのに長時間を要
するという欠点を有する。従って、上記目的のために簡
便かつ正確なaFGFの測定手段の開発か望まれている
。However, this method has the drawbacks of using cells, requiring delicate operations, large measurement errors, and requiring a long time to obtain results. Therefore, it is desired to develop a simple and accurate means for measuring aFGF for the above purpose.
課題を解決するための手段
上記実状にかんかみ、本発明者らはaFGF蛋白質の実
用的な測定手段を見い出すへく種々検討した結果、その
測定を可能ならしめるaF G F蛋白質に対するモノ
クローナル抗体を作製し、これに基づいてさらに研究し
た結果、本発明を完成した。Means for Solving the Problems In view of the above-mentioned circumstances, the present inventors conducted various studies to find a practical means of measuring aFGF protein, and as a result, created a monoclonal antibody against aFGF protein that would enable the measurement. As a result of further research based on this, the present invention was completed.
本発明は、(1)、次の性質を有する酸性線維芽細胞成
長因子(aF G F )蛋白質に対するモノクローナ
ル抗体:
(a)分子量:約140,000〜’、160.000
(b)塩基性線維芽細胞成長因子(bF G F )と
交差反応しない。The present invention provides (1) a monoclonal antibody against acidic fibroblast growth factor (aFGF) protein having the following properties: (a) Molecular weight: about 140,000 to 160,000;
(b) Does not cross-react with basic fibroblast growth factor (bFGF).
(C)免疫グロブリンクラスがIgGに属する;(2)
、酸性線維芽細胞成長因子(aF G F )蛋白質で
免疫した哺乳動物の脾臓細胞と、同種または異種のリン
パ球様細胞とからなるクローン化されたハイブリドーマ
;
(3)、酸性線維芽細胞成長因子(aF G F )蛋
白質で免疫した哺乳動物の脾臓細胞と、同種または異種
のリンパ球様細胞とをクローニングすることを特徴とす
る上記(1)記載のハイブリドーマの製造法;(4)、
上記(1)記載のハイプリドーマを液体培地中または哺
乳動物の腹腔内で増殖し、モノクローナル抗体を生成、
蓄積せしめ、これを採取することを特徴とする上記(1
)記載のモノクローナル抗体の製造法:
(5)、上記(1)記載のモノクローナル抗体を用いる
ことを特徴とするaF G F蛋白質の検出・定量法お
よび
(6)、上記(1)記載のモノクローナル抗体を用いる
ことを特徴とするaFGF蛋白質の精製法である。(C) The immunoglobulin class belongs to IgG; (2)
, a cloned hybridoma consisting of spleen cells of a mammal immunized with acidic fibroblast growth factor (aFGF) protein and homologous or xenogeneic lymphoid cells; (3) acidic fibroblast growth factor; (aF G F ) The method for producing a hybridoma according to (1) above, which comprises cloning spleen cells of a mammal immunized with protein and homologous or heterologous lymphoid cells; (4);
Propagating the hybridoma described in (1) above in a liquid medium or intraperitoneally of a mammal to produce a monoclonal antibody,
The above (1) characterized by accumulating and collecting the accumulated
) Method for producing the monoclonal antibody described in (5), a method for detecting and quantifying aFGF protein characterized by using the monoclonal antibody described in (1) above, and (6), the monoclonal antibody described in (1) above. This is a method for purifying aFGF protein, which is characterized by using.
哺乳動物に免疫するaFGF蛋白質としては、l晶血呻
乳動物のa−F G Fてあればいずれでもよく、また
、そのムティン(mutein)でもよい。The aFGF protein to be used to immunize mammals may be any a-FGF protein derived from hematopoietic mammals, or its mutein.
該哺乳動物のaFGFの代表例としては、たとえば、ウ
シのaF G F [G、 Gimenez−Gall
egoら。Representative examples of the mammalian aFGF include, for example, bovine aFGF [G, Gimenez-Gall
ego et al.
5cience 230 : 1385(1985)]
および[F。5science 230: 1385 (1985)]
and [F.
Esch ら、 Biochem、 Biophy
s、 Res、 Commun。Esch et al., Biochem, Biophy
s, Res, Commun.
133:544(1985)L ヒトのaF G F
CGGimenez−Gallego ら、 Bi
ochem、 Biophys、 Res。133:544 (1985) L Human aF G F
CGGimenez-Gallego et al., Bi
ochem, Biophys, Res.
Commun、土38 : 611(1986)]など
があげられる。a FGFとしては、上記文献Bioc
hem。Common, Sat. 38: 611 (1986)]. a As FGF, the above-mentioned document Bioc
hem.
Biophys、 Res、 Commun、土38
: 611(1985)に記載されたヒトaFGFのア
ミノ酸配列を有するポリペプチドが好ましい。Biophys, Res, Commun, Sat38
: 611 (1985) is preferred.
ヒトのaF G Fを得るには、たとえば上述のaFG
F蛋白質のポリペプチドをコードする塩基配列を有する
DNAを含有する発現型ベクターを作製し、適当な宿主
細胞に導入してaFGFを産生させればよい。発現型ベ
クターとしては、例えば、(イ)aF G Fをコード
するRNAを分離し、(ロ)該RNAから単鎖の相補D
NA(cDNA)を、次いで二重鎖DNAを合成し、
(ハ)該相補DNAをプラスミドに組み込み、(ニ)得
られた組み換えプラスミドで宿主を形質転換し、
(ホ)得られた形質転換体を培養後、形質転換体から適
当な方法、例えばDNAプローブを用いたコロニーハイ
ブリダイゼーション法、により目的とするDNAを含有
するプラスミドを単離し、
(へ)そのプラスミドから目的とするクローン化D N
Aを切り出し、
(ト)該クローン化DNAをビークル中のプロモーター
の下流に連結する、
ことにより製造することができる。To obtain human aF G F, for example, the above-mentioned aFG
An expression vector containing a DNA having a base sequence encoding the F protein polypeptide may be prepared and introduced into a suitable host cell to produce aFGF. As an expression vector, for example, (a) an RNA encoding aF GF is isolated, and (b) a single-stranded complementary D is isolated from the RNA.
Synthesizing NA (cDNA) and then double-stranded DNA, (c) incorporating the complementary DNA into a plasmid, (d) transforming a host with the obtained recombinant plasmid, and (e) obtaining the obtained transformant. After culturing, a plasmid containing the desired DNA is isolated from the transformant by an appropriate method, such as colony hybridization using a DNA probe, and (to) the desired cloned DNA is isolated from the plasmid.
It can be produced by excising A and (g) ligating the cloned DNA downstream of a promoter in a vehicle.
aFGFをフードするRNAは、種々のaFGF産生組
織、例えばヒト脳組織あるいはヒト網膜組織から得るこ
とができる。RNA encoding aFGF can be obtained from various aFGF-producing tissues, such as human brain tissue or human retinal tissue.
このようにして得られた発現ベクターを、適当な宿主(
例、大腸菌、枯草菌、酵母、動物細胞)に組み込み、得
られた形質転換体を培地に培養することにより、ヒトの
aFGFを製造することができる。The expression vector thus obtained was transferred to an appropriate host (
For example, human aFGF can be produced by incorporating it into Escherichia coli, Bacillus subtilis, yeast, animal cells) and culturing the resulting transformant in a medium.
本発明におけるムティンとしては、本来、元のペプチド
あるいは蛋白質のアミノ酸配列が変異したものであり、
aF G F作用を有しているものである。該変異とし
ては、アミノ酸の付加、構成アミノ酸の欠失、他のアミ
ノ酸への置換か挙げられ口◇
該アミノ酸の付加としては、少なくとも1個のアミノ酸
が付加しているものが挙げられる。The mutin in the present invention is originally a mutated amino acid sequence of an original peptide or protein,
It has aFGF action. Such mutations include addition of amino acids, deletion of constituent amino acids, and substitution with other amino acids. Examples of the addition of amino acids include addition of at least one amino acid.
該構成アミノ酸の欠失としては、少なくとも1個のaF
GF構成アミノ酸が欠失しているものが挙げられる。The deletion of the constituent amino acids includes at least one aF
Examples include those in which GF constituent amino acids are deleted.
上記欠失型ムティンとしては、aFGFのアミノ酸配列
の連続した90〜133個のポリペプチド鎖からなるも
の、aFGFのアミノ酸配列の連続した120〜131
個のポリペプチド鎖からなるもの、さらに、aFGFの
アミノ酸配列の連続した12・5〜131個のポリペプ
チド鎖からなるもの+ aF G Fのアミノ酸配列の
連続し131〜133個のポリペプチド鎖からなるもの
が挙げられる。The deletion type mutin mentioned above includes one consisting of a polypeptide chain of 90 to 133 consecutive amino acid sequences of aFGF, and one consisting of 120 to 133 consecutive polypeptide chains of aFGF amino acid sequence.
Furthermore, those consisting of 12.5 to 131 consecutive polypeptide chains of the amino acid sequence of aFGF + 131 to 133 consecutive polypeptide chains of the amino acid sequence of aFGF There are several things that can be mentioned.
本発明の欠失型ムティンとしては、N末端側からアミノ
酸が欠失しているものか好ましい。The deletion type mutin of the present invention is preferably one in which an amino acid is deleted from the N-terminus.
この欠失型ムティンは、基本となる成熟型aFGFのポ
リペプチドのC末端から3個までのアミノ酸を欠失して
いてもよい。This deleted mutin may have up to three amino acids deleted from the C-terminus of the basic mature aFGF polypeptide.
本発明の欠失型ムティンの具体例としては、たとえば、
ヒトaFGFのN末端の8個のアミノ酸を欠失したもの
、ヒトaFGFのN末端の9個のアミノ酸を欠失したも
の、ヒトaFGFのN末端の11個のアミノ酸を欠失し
たもの、ヒ)aFGFのN末端の12個のアミノ酸を欠
失したもの、ヒ)aFGFのN末端の20個のアミノ酸
を欠失したもの、ヒトaF G FのN末端の43個の
アミノ酸を欠失したものなど挙げられる。Specific examples of deletion-type mutins of the present invention include, for example,
human aFGF with the N-terminal 8 amino acids deleted, human aFGF with the N-terminal 9 amino acids deleted, human aFGF with the N-terminal 11 amino acids deleted, human) aFGF with the N-terminal 12 amino acids deleted, human aFGF with the N-terminal 20 amino acids deleted, human aFGF with the N-terminal 43 amino acids deleted, etc. Can be mentioned.
上記欠失型ムティンとしては、さらに、ヒトaFGFの
N末から1個のアミノ酸が欠損しているもの、N末から
5個のアミノ酸が欠損しているもの、ウシaFGFのN
末から6個のアミノ酸が欠損しているもの、ウシaFG
’FのN末から第1番目〜第15番目のアミノ酸からな
るもの、ウシaF G FのN末から第7番目〜第41
番目のアミノ酸からなるもの、ヒトaF G FのN末
から第1番目〜第41番目のアミノ酸からなるもの、ヒ
トaFGFのN末から第7番目〜第41番目のアミノ酸
からなるものでもよい。The above-mentioned deletion-type mutins include those in which one amino acid is deleted from the N-terminus of human aFGF, those in which five amino acids are deleted from the N-terminus, and those in which one amino acid is deleted from the N-terminus of human aFGF.
Bovine aFG, which is missing the last 6 amino acids
' Consisting of the 1st to 15th amino acids from the N-terminus of F, the 7th to 41st amino acids from the N-terminus of bovine aF G
The amino acid may consist of the 1st to 41st amino acids from the N-terminus of human aFGF, or the 7th to 41st amino acids from the N-terminus of human aFGF.
さらに、本発明において用いられるaFGFムティンと
しては、成熟型ウシaF G Fの第16位。Furthermore, the aFGF mutin used in the present invention is the 16th position of mature bovine aFGF.
第47位、第83位のうちの1またはそれ以上のシステ
ィン残基が他のアミノ酸に置換されおよび/またはその
N−末端にメチオニンが付加されているものでもよい。One or more cysteine residues at positions 47 and 83 may be substituted with other amino acids and/or methionine may be added to the N-terminus.
また、本発明に用いるaFGFムティンとしては、アミ
ノ酸残基の個数が139個、140個または154個で
あるヒト型および/またはウシ型aF G Fムティン
でもよい。Furthermore, the aFGF mutin used in the present invention may be a human and/or bovine aFGF mutin having 139, 140 or 154 amino acid residues.
上記アミノ酸の数が154個のムティンとしては、次の
アミノ酸配列:
A 1a−G 1u−G 1y−G lu−l 1e−
Thr−Thr−Phe−Thr−A 1a−LeuT
hr−Glu−Lys
のC末端がaFGFのN末端のPheの先に付加してい
るものが挙げられる(E P −319,052参照)
。The above mutin having 154 amino acids has the following amino acid sequence: A 1a-G 1u-G 1y-G lu-l 1e-
Thr-Thr-Phe-Thr-A 1a-LeuT
Examples include those in which the C-terminus of hr-Glu-Lys is added to the tip of Phe at the N-terminus of aFGF (see EP-319,052).
.
該他のアミノ酸への置換としては、少なくとも1個のa
F G F構成アミノ酸が別のアミノ酸で置換されてい
るものが挙げられる。As for the substitution with other amino acids, at least one a
Examples include those in which the F GF constituent amino acid is substituted with another amino acid.
aF G Fに少な(とも1個のアミノ酸が付加してい
るムティンにおける少なくとも1個のアミノ酸としては
、ペプチドを発現する際に用いられる開始コドンに基因
するメチオニンや、シグナルペプチドは含まれないもの
である。゛
付加されているアミノ酸の数としては、少なくとも1個
であるが、aFGFの特徴を失わない限り何個でもよい
。さらに好ましくは、aFGFと相同性(ホモロジー)
が認められており、同様の活性を示すタンパクのアミノ
酸配列の一部あるいはすへてか挙げられる。The at least one amino acid in a mutin in which a small amount (both one amino acid and one amino acid is added to aF, G, and F) does not include methionine, which is based on the start codon used to express the peptide, or a signal peptide. ``The number of amino acids added is at least one, but any number may be added as long as the characteristics of aFGF are not lost.More preferably, it is homologous to aFGF.
This includes part of the amino acid sequence or complete amino acid sequence of a protein that exhibits similar activity.
aF G Fの少なくとも1個のaFGF構成アミノ酸
が欠損しているムティンにおける欠損している構成アミ
ノ酸の数としては、aFGFの有する特徴を失わない限
り何個でもよい。The number of deficient constitutive amino acids in a mutin in which at least one aFGF constitutive amino acid of aFGF is deficient may be any number as long as the characteristics of aFGF are not lost.
aF G Fの少なくとも1個のaF G F構成アミ
ノ酸か別のアミノ酸て置換されているムティンにおける
置換される前の少な(とも1個のa”F G F構成ア
ミノ酸の数としては、aFGFの特徴を失わない限り何
個でもよい。At least one aFGF constituent amino acid of aFGF is substituted with another amino acid. Any number is fine as long as you don't lose any.
置換される前の構成アミノ酸の例としては、・ツステイ
ン、システィン以外のものが挙げられる。Examples of the constituent amino acids before substitution include those other than thusteine and cysteine.
システィンが特に好ましい。置換される前の構成アミノ
酸としてシスティン以外のものとしては、アスパラギン
酸、アルギニン、グリシン、バリンなどが挙げられる。Cystine is particularly preferred. Constituent amino acids other than cysteine before substitution include aspartic acid, arginine, glycine, and valine.
置換される前の構成アミノ酸がシスティンである場合に
は、置換されたアミノ酸としては、たとえば中性アミ′
)酸が好ましい。該中性アミノ酸の具体例としては、た
とえば、グリシン、バリン、アラニン、ロイシン、イン
ロイシン、チロシン、フェニルアラニン、ヒスチジン、
トリプトファン、セリン。If the constituent amino acid before substitution is cysteine, the substituted amino acid may be, for example, a neutral amino acid.
) acids are preferred. Specific examples of the neutral amino acids include glycine, valine, alanine, leucine, inleucine, tyrosine, phenylalanine, histidine,
tryptophan, serine.
スレオニン、メチオニンなどが挙げられる。特に、セリ
ン、スレオニンが好ましい。Examples include threonine and methionine. Particularly preferred are serine and threonine.
置換される前の構成アミノ酸がシスティン以外のもので
ある場合には、置換された別のアミノ酸としては、たと
えば、アミノ酸の親水性、疎水性あるいは電荷の点で、
置換される前のアミノ酸とは異なる性質をもつものを選
ぶ。具体的には置換される。前のアミノ酸がアスパラギ
ン酸の場合には、置換されたあとのアミ・ノ酸としてア
スパラギン。When the constituent amino acid before substitution is other than cysteine, the substituted amino acid may be, for example, in terms of hydrophilicity, hydrophobicity, or charge of the amino acid.
Choose an amino acid that has properties different from those of the amino acid before being substituted. Specifically, it is replaced. If the previous amino acid is aspartic acid, the substituted amino acid is asparagine.
スレオニン、バリン、フェニルアラニン、アルギニンな
どが挙げられるが、特にアスパラギン、アルキニンが好
ましい。Examples include threonine, valine, phenylalanine, and arginine, with asparagine and arginine being particularly preferred.
置換される前のアミノ酸がアルキニンの場合には置換さ
れたあとのアミノ酸としてグルタミン。If the amino acid before substitution is alkinine, the amino acid after substitution is glutamine.
スレオニン、ロイ/ン、フェニルアラニン、アスパラキ
ン酸か挙げられるが、特にグルタミンが好ましい。Examples include threonine, leucochloride, phenylalanine, and aspartic acid, with glutamine being particularly preferred.
置換される前の構成アミノ酸がグリシンである場合には
、置換されたあとのアミノ酸としては、スレオニン、ロ
イシン、フェニルアラニン、セリン。If the constituent amino acid before substitution is glycine, the amino acids after substitution are threonine, leucine, phenylalanine, and serine.
グルタミ〈酸、アルキニンなどが挙げられ、特にスレオ
ニンが好マしい。Examples include glutamic acid and alkynine, with threonine being particularly preferred.
置換される前の構成アミノ酸がセリンである場合には、
置換されたあとのアミノ酸としては、メチオニン、アラ
ニン、ロイシン、システィン、グルタミン、アルキニン
、アスパラギン酸などが挙げられ、特にメチオニンか好
ましい。If the constituent amino acid before substitution is serine,
Examples of the amino acid after substitution include methionine, alanine, leucine, cysteine, glutamine, alkinine, and aspartic acid, with methionine being particularly preferred.
置換される前の構成アミノ酸がバリンである場合には、
置換されたあとのアミノ酸としては、セノン、ロイシン
、プロリン、グリシン、リジン、アスパラキン酸なとが
挙げられ、特にセリンが好ましい。If the constituent amino acid before substitution is valine,
Examples of the amino acid after substitution include senone, leucine, proline, glycine, lysine, and aspartic acid, with serine being particularly preferred.
置換される前の元の構成アミノ酸としては、アスパラギ
ン酸、アルギニン、グリシン、セリン、バリンが好まし
い。The original constituent amino acids before substitution are preferably aspartic acid, arginine, glycine, serine, and valine.
置換されたあとのアミノ酸としては、アスパラギン、グ
ルタミン、アルギニン、スレオニン、メチオニン、セリ
ン、ロイシンカ好マシい。Preferred amino acids after substitution are asparagine, glutamine, arginine, threonine, methionine, serine, and leucinka.
上記の置換においては、2以上の置換を同時に行なって
もよい。特に、2または3個の構成アミノ酸が置換され
るのが好ましい。In the above substitutions, two or more substitutions may be performed simultaneously. In particular, it is preferred that two or three constituent amino acids are substituted.
本発明のムティンは、上記した付加、欠損、置換の2つ
または3つが組み合わさったものでもよい。The mutin of the present invention may be a combination of two or three of the above additions, deletions, and substitutions.
本発明において用いるaF G Fムティンは、成熟型
ヒトaF G Fの第16位、第83位、第1.17位
のうちの1またはそれ以上のシスティン残基が他のアミ
ノ酸残基に置換されおよび/またはそのN−末端にメチ
オニンが付加されているものでもよい。The aF GF mutin used in the present invention has one or more cysteine residues at positions 16, 83, and 1.17 of mature human aF GF substituted with other amino acid residues. And/or methionine may be added to the N-terminus.
該ムティンを製造する′ためには、特定部位指向性変異
誘発技術(Sitedirected mutage
nesir)が採用される。該技術は周知であり、アー
ル・エフ・レイザー(Lather、 R,F、 )及
びジェイ・ピー・レコノク(1,ecoq、 J、 P
、 )、ジェネティック・エンジニアリング(Gene
tic Engineering)、2ア力デーミツ
クプレス社(,1983年)第31−50頁、に示され
ている。オリゴヌクレオチドに指示された変異誘発はエ
ム・スミス(Smith、 M、 )及びニス・ギラ
ム(Gillam、 S、)、ジェネテインク・エンジ
ニアリング:原理と方法、プレナムプレス社(L98.
1年)3巻 1−32頁に示されている。To produce the mutin, site-directed mutagenesis technology is used.
nesir) will be adopted. The technique is well known and has been described by Lather, R.F. and J.P. Recoq, J.P.
), Genetic Engineering (Gene
tic Engineering), 2nd Century Press, 1983, pp. 31-50. Oligonucleotide-directed mutagenesis is described in Smith, M. and Gillam, S., Genete Inc. Engineering: Principles and Methods, Plenum Press (L98.
1) Volume 3, pages 1-32.
該ムティンをコードする構造遺伝子を製造するためには
、たとえば、
(a) aF G Fの構造遺伝子の1本鎖からなる1
本鎖DNAを突然変異株オリゴヌクレオチドブライマー
と雑種形成させる(この1本鎖で代替えずへきシスティ
ン用コドン、又は場合によりこのコドンと対合をつ(る
アンチセンス・トリプレットを包含する領域に対して上
記ブライマーは相捕的なものである。但し、当該コドン
の他のアミノ酸暗号化用コドン、又は場合によりアンチ
センス・トリプレットとの不一致はこの限りでない。)
、(b)DNAポリメラーゼによりブライマーを伸長さ
せ、突然変異性へテロニ量体(heteroduple
x)を形成させる、及び
(c)この突然変異性へテロニ量体を複製する。In order to produce a structural gene encoding the mutin, for example, (a) one consisting of a single chain of the aF GF structural gene
The double-stranded DNA is hybridized with the mutant oligonucleotide primer (for the region containing the codon for cysteine that cannot be replaced by this single strand, or, optionally, an antisense triplet that pairs with this codon). The above-mentioned primers are complementary, except for the mismatch of the codon with other amino acid encoding codons or, in some cases, with antisense triplets.)
, (b) Extend the brimer with DNA polymerase to form a mutant heteroduple.
(c) replicating this mutant heterodimer.
次に、突然変異化された遺伝子を運搬するファージDN
Aを単離し、プラス、ミドへ組み込む。Next, a phage DN carrying the mutated gene
A is isolated and incorporated into Plus and Mid.
このようにして得られたプラスミドで適当な宿主を形質
転換し、得られた形質転換体を培地に培養することによ
り、ムティンを製造することができる。A mutin can be produced by transforming a suitable host with the plasmid thus obtained and culturing the obtained transformant in a medium.
本発明における抗原としてのaFGFの構成アミノ酸が
欠損したムティンとしては、aFGFのアミノ酸配列の
うちの110個以上のものからなるムテイ、ンが好まし
い。In the present invention, the mutin lacking the constituent amino acids of aFGF as an antigen is preferably a mutin consisting of 110 or more of the amino acid sequence of aFGF.
該aFGF蛋白質を免疫するに際しては、aFGFをキ
ャリヤー蛋白との複合体としてがら、これを免疫に用い
てもよい。When immunizing with the aFGF protein, aFGF may be used as a complex with a carrier protein for immunization.
該キャリヤー蛋白としては、たとえばウシ血清アルブミ
ン、ウシサイログロブリン、ヘモシアニンなどが挙げら
れる。Examples of the carrier protein include bovine serum albumin, bovine thyroglobulin, and hemocyanin.
キャリヤー蛋白複合体を用いる場合に、キャリヤー蛋白
とaFGF蛋白質とのカップリング比率は、約0.1〜
30倍(キャリヤー/aFGF蛋白質・ff1ffi比
)で用いられる。望ましくは約0.5〜5倍が用いられ
る。When using a carrier protein complex, the coupling ratio between the carrier protein and aFGF protein is about 0.1 to
It is used at a ratio of 30 times (carrier/aFGF protein/ff1ffi). Desirably, about 0.5 to 5 times is used.
また、ハブテンとキャリヤーとのカプリングには、種々
の縮合剤を用いることが出来るが、グルタルアルデヒド
やカルボジイミド等が好都合に用いられる。Furthermore, various condensing agents can be used for coupling the hubten and the carrier, and glutaraldehyde, carbodiimide, etc. are conveniently used.
aFGF蛋白質または蛋白腹合体を用いて免疫するに際
し、免疫する哺乳動物は、羊、山羊、兎、モルモット、
ラット、マウス等の実験動物カ使ワれるが、モノクロー
ナル抗体を得るためには、ラット、マウスが好ましい。When immunizing with aFGF protein or protein complex, the mammals to be immunized include sheep, goats, rabbits, guinea pigs,
Although experimental animals such as rats and mice can be used, rats and mice are preferred for obtaining monoclonal antibodies.
免疫方法は、例えばマウスを免疫する場合、皮下、腹腔
内、静脈内、筋肉内、皮内等のいずれのルートからでも
可能であるが、主として皮下、腹腔内、静脈内に(とり
わけ皮下)注入するのが好ましい。また、免疫間隔、免
疫量等も可変度は高く、種々の方法が可能であるが、例
えば2週間隔で約2〜6回免疫し、最終免疫後、約1〜
5日、好ましくは約2〜4日後に摘出した脾臓細胞を用
いる方法がよく用いられる。For example, when immunizing mice, immunization can be done by any route such as subcutaneous, intraperitoneal, intravenous, intramuscular, or intradermal, but mainly subcutaneous, intraperitoneal, or intravenous (especially subcutaneous) injection is possible. It is preferable to do so. In addition, the immunization interval, immunization dose, etc. are highly variable, and various methods are possible.
A method using spleen cells extracted after 5 days, preferably about 2 to 4 days, is often used.
免疫量は1回にペプチド量として、マウス当り約0.1
μg以上、好ましくは約lOμg〜300μg用いるこ
とが望ましい。又、脾臓を摘出する前に、部分採血を行
い、血中の抗体価の上昇を確認した上で、脾臓細胞を用
いる融合実験を行うことが望ましい。The immunization dose is approximately 0.1 peptide per mouse.
It is desirable to use µg or more, preferably about 10 µg to 300 µg. Furthermore, before removing the spleen, it is desirable to perform a partial blood sampling, confirm an increase in antibody titer in the blood, and then perform a fusion experiment using spleen cells.
上記脾臓細胞とリンパ球様細胞との細胞融合は例えば摘
出したマウスの脾臓細胞を、ヒポキサンチン−グアニン
−ホスホリボシルトランスフェラーゼ欠損(HGPRT
−)や、チミジンキナーゼ欠損(TK−)の様なマーカ
ーを持った適切な同種または異種(好ましくは同種)の
ミエローマ[例、P3−X63−Ag・8Ul(市森
他ジャーナル・オブ・イムノロジカル・メソッド 80
55(1985))コ等の、リンパ球様細胞株との間
で融合させる。例えばケラ−およびミルスタインらの方
法[ネイチ+ −(Nature) 256 : 49
5(1975)3に準じて融合させることにより製造さ
れる。たとえばミエローマ細胞と肺細胞とを約1=5の
割合で、たとえばイスコツ培地とハムF−12培地をl
:1に混合した培地(以下IH培地と称する。)に懸濁
させ、センダイウィルス、ポリエチレングリコール(P
EG)等の融合剤が用いられる。もちろんジメチルスル
ホキシド(DMSO)その他の融合促進剤を加えること
も可能である。The above cell fusion between spleen cells and lymphoid cells can be carried out by, for example, using isolated mouse spleen cells with hypoxanthine-guanine-phosphoribosyltransferase deficient (HGPRT)
-) or appropriate allogeneic or xenogeneic (preferably allogeneic) myeloma bearing markers such as thymidine kinase deficiency (TK-) [e.g., P3-X63-Ag・8Ul (Ichimori
Other Journal of Immunological Methods 80
55 (1985)) and a lymphoid cell line. For example, the method of Keller and Milstein et al. [Nature 256: 49
5 (1975) 3. For example, myeloma cells and lung cells may be mixed in a ratio of about 1=5, for example, Iscot medium and Ham's F-12 medium.
: Sendai virus, polyethylene glycol (P
A fusing agent such as EG) is used. Of course, it is also possible to add dimethyl sulfoxide (DMSO) and other fusion promoters.
PEGの重合度は、ふつう約1000〜60’OO。The degree of polymerization of PEG is usually about 1000-60'OO.
時間は約0.5〜30分、濃度は約10%〜80%等か
用いられるか、好ましい条件の一例として、PE0 6
000を約35〜55%で約4〜10分処理することに
より、効率よく融合させることか出来る。融合細胞は、
ヒポキサンチン−アミノプテリン−チミジン培地[HA
T培地:ネイチャーλ五ヱ、495(1975)3等
を用いて、選択的に増殖させることが出来る。As an example of preferred conditions, the time is about 0.5 to 30 minutes, the concentration is about 10% to 80%, etc.
By treating 000 at a concentration of about 35 to 55% for about 4 to 10 minutes, efficient fusion can be achieved. The fused cells are
Hypoxanthine-aminopterin-thymidine medium [HA
T medium: Nature λ5, 495 (1975) 3, etc. can be used to selectively proliferate.
増殖して来た細胞の培養上清は、目的とする抗体産生か
あるか否かについてスクリーニングを行うことができる
が、抗体価のスクリーニングは次の様に行うことが出来
る。即ち、この場合には、まず第1段階として免疫した
ペプチドに対する抗体産生の有無を、ラジオイムノアッ
セイ(RIA)法またはエンザイムイムノアッセイ(E
I A)法等の方法で調べることが出来るが、これら
の方法についても種々の変法が可能である。好ましい測
定法の一例として、EIAを用いる一つの方法について
述べる。セルロースビーズ等の担体に、例えばウサギ抗
マウスイムノグロブリン抗体を常法に従ってカプリング
させておき、これに測定したい培養上清や、マウスの血
清を加え、一定時間、定温(約4〜40°Cを示す。以
下においても同様。)で反応させる。この後、反応物を
よく洗った後、酵素で標識したペプチド(酵素とペプチ
ドを常法に従いカプリジグさせた後精製)を加え、一定
時間、定温で反応させる。反応物をよく洗った後、酵素
基質を加え、一定時間1定温で反応させ、その後、生成
発色物を吸光度または蛍光度等で測定することが出来る
。The culture supernatant of the proliferated cells can be screened to determine whether the desired antibody is produced or not, and the antibody titer can be screened as follows. That is, in this case, as a first step, the presence or absence of antibody production against the immunized peptide is determined by radioimmunoassay (RIA) or enzyme immunoassay (E).
This can be investigated using methods such as the IA) method, but various modifications of these methods are also possible. As an example of a preferred measurement method, one method using EIA will be described. For example, a rabbit anti-mouse immunoglobulin antibody is coupled to a carrier such as cellulose beads according to a conventional method, and the culture supernatant to be measured or mouse serum is added to this and incubated at a constant temperature (approximately 4 to 40°C) for a certain period of time. The same applies below). After this, the reaction product is thoroughly washed, and an enzyme-labeled peptide (purified after caprijig of the enzyme and peptide according to a conventional method) is added and reacted for a certain period of time at a constant temperature. After thoroughly washing the reaction product, an enzyme substrate is added and allowed to react at a constant temperature for a certain period of time, after which the colored product produced can be measured by absorbance, fluorescence, or the like.
選択培地で増殖を示し、かつ免疫に用いたベプチドに対
する抗体活性のみられたウェルの細胞は、限界稀釈法等
によりクローニングを行うことが望ましい。クローン化
された細胞の上清について同様にスクリーニングを行い
抗体価の高いウェルの細胞を増やすことにより、免疫し
たペプチドと反応性を示すモノクローナル抗体産生ハイ
ブリドーマクローンが得られる。It is desirable to clone cells in wells that have proliferated in the selective medium and have antibody activity against the peptide used for immunization using a limiting dilution method or the like. By similarly screening the supernatant of the cloned cells and increasing the number of cells in wells with high antibody titers, monoclonal antibody-producing hybridoma clones that exhibit reactivity with the immunized peptide can be obtained.
このようにしてクローン化されたハイブリドーマを、液
体培地中で増殖させる。具体的には例えば、液体培地た
とえばRP M I 1640 [Moore。Hybridomas thus cloned are grown in liquid culture. Specifically, for example, a liquid medium such as RP MI 1640 [Moore.
G、E、、 et、 al ジャーナル・オブ・アメ
リカン・メティカル・アソシエーション(J、 Am
、 Med。G, E, et al Journal of American Medical Association (J, Am
, Med.
As5oc、 ) 1度9. 549(1967)l
に約0.1〜40%の牛血清を加えた培地等で約2〜1
0日間、好ましくは約3〜5日間培養することにより、
培養液から該モノクローナル抗体を得ることができる。As5oc, ) 1 degree 9. 549 (1967)l
Approximately 2 to 1
By culturing for 0 days, preferably about 3 to 5 days,
The monoclonal antibody can be obtained from the culture solution.
また、哺乳動物の腹腔内に接種し、細胞を増殖させ、腹
水を採取することにより抗体を取得することが出来る。Alternatively, antibodies can be obtained by intraperitoneally inoculating the cells into a mammal, allowing the cells to proliferate, and collecting ascites fluid.
このためには、例えばマウスの場合、ミネラルオイル等
を前もって接種したBALB/c等のマウスに約lXl
0’〜lXl0’個、好ましくは約5X 10’〜2X
10・個のハイブリドーマを腹腔内に接種し、約7〜2
0日後、好ましくは約10〜14日後に腹水液を採取す
る。For this purpose, for example, in the case of mice, approximately 1×1
0' to lXl0', preferably about 5X 10' to 2X
Inoculate 10 hybridomas intraperitoneally, approximately 7 to 2
Ascites fluid is collected after 0 days, preferably about 10-14 days.
腹水に生成蓄積した抗体は、例えば硫安分画、DEAE
−セルロースカラムクロマトグラフィー等により、容易
にモノクローナル抗体を純粋な免疫グロブリンとして単
離することが出来る。Antibodies produced and accumulated in ascites can be detected by, for example, ammonium sulfate fraction, DEAE
- Monoclonal antibodies can be easily isolated as pure immunoglobulins by cellulose column chromatography or the like.
このようにして、aF G )”蛋白質に対するモノク
ローナル抗体が得られる。In this way, a monoclonal antibody against the aF G )" protein is obtained.
本発明のモノクローナル抗体にあっては、免疫原のペプ
チドのaFGF蛋白質と特異的に結合する。The monoclonal antibody of the present invention specifically binds to the aFGF protein of the immunogenic peptide.
なお、本発明のモノクローナル抗体は、製造時に用いた
免疫原のペプチドとは異なるaF G F蛋白質と結合
する場合もある。Note that the monoclonal antibody of the present invention may bind to aFGF protein different from the immunogen peptide used during production.
本発明のモノクローナル抗体は、aFGF蛋白質に結合
することから、aFGF蛋白質測定用試薬として極めて
有用である。さらに生体臓器、組織中のaF G Fの
測定を容易にすることは、aFGFに関する基礎知見(
例えば生体内分布)を得る一上からも極めて有用である
。生体臓器9組織中のaFGFの検出には通常酵素免疫
測定法(EIA法)などによる定量、あるいは蛍光抗体
法やラジオイムノアッセイ法(RIA法)が用いられる
。またこれらの臓器6組織中に存在するaF G Fの
大きさを知るにはタンパクのウェスタンブロッティング
法が有効である。この方法は臓器1組織由来の粗抽出液
あるいはその部分精製試料をアクリルアミド電気泳動し
た後、メンブランフィルタ−にトランスファーし、HR
P結合抗aF G F蛋白質抗体で検出する。また癌細
胞の中には細胞自身がaFGFを産生し、そのaF G
Fにより増殖を続ける場合のあることが考えられる。Since the monoclonal antibody of the present invention binds to aFGF protein, it is extremely useful as a reagent for measuring aFGF protein. Furthermore, basic knowledge regarding aFGF (
For example, it is extremely useful for obtaining biodistribution). Detection of aFGF in nine tissues of living organs is usually performed by enzyme immunoassay (EIA) or the like, or by fluorescent antibody method or radioimmunoassay (RIA). In addition, a protein Western blotting method is effective in determining the size of aFGF present in these six organs and tissues. This method involves performing acrylamide electrophoresis on a crude extract derived from one organ tissue or a partially purified sample thereof, and then transferring it to a membrane filter.
Detection is performed using a P-linked anti-aF GF protein antibody. In addition, some cancer cells themselves produce aFGF, and the aFGF
It is possible that the proliferation may continue due to F.
このような癌に抗aFGF蛋白質抗体を作用させると増
殖を促進するaFGFが中和され、癌細胞の増殖阻止、
すなわち制癌物質としての作用が期待される。またaF
GFを産生する癌では、抗体を用いてそのaFGFを定
量することができ癌の診断検査薬にも応用できる。さら
に該抗体とaFGFとの結合能を利用し、抗体アフィニ
ティーカラムを作製してaFGFの精製の試薬として利
用することもできる。When anti-aFGF protein antibodies act on such cancers, aFGF, which promotes proliferation, is neutralized, inhibiting the proliferation of cancer cells,
In other words, it is expected to act as an anti-cancer substance. Also aF
In cancers that produce GF, aFGF can be quantified using antibodies, and can also be applied to cancer diagnostic tests. Furthermore, by utilizing the binding ability between the antibody and aFGF, an antibody affinity column can be prepared and used as a reagent for purifying aFGF.
aFGFを検出、定量するために用いられる抗体分子は
、IgGでもよく、または、そのフラツジ。The antibody molecule used to detect and quantify aFGF may be IgG or a fragment thereof.
ン(例、F(ab’)*、Fab’もしくはFab)で
あっても良い。なかでも、標識剤を直接結合させる抗体
分子はFab’であることが好ましい。(eg, F(ab')*, Fab' or Fab). Among these, the antibody molecule to which the labeling agent is directly bound is preferably Fab'.
本発明のモノクローナル抗体は、aFGFの免疫化学的
測定法における試薬として用いることができる。The monoclonal antibody of the present invention can be used as a reagent in immunochemical measurement of aFGF.
該免疫化学的測定法においては、用いる抗体は、同時に
2種以上のもの、特に同時に3種のものを用いると、検
出感度の良い結果が得られる。In the immunochemical assay, when two or more types of antibodies are used at the same time, particularly when three types of antibodies are used at the same time, results with good detection sensitivity can be obtained.
該aF G F蛋白質の免疫化学的測定法によって、生
体組織や体液中のaFGF蛋白質の量を測定することが
でき、これにより、前述した如(、たとえば種々の組織
や体液中の血管新生因子を測定することにより、癌の診
断に役立つと考えられる。By immunochemical measurement of aFGF protein, it is possible to measure the amount of aFGF protein in living tissues and body fluids, and thereby, as mentioned above (for example, angiogenic factors in various tissues and body fluids) can be measured. Measuring it is thought to be useful for cancer diagnosis.
担体に保持する抗体は、抗aFGF蛋白質抗体が用いら
れる。As the antibody retained on the carrier, an anti-aFGF protein antibody is used.
本発明の測定法において用いられる標識剤を結合させた
抗体は、上記担体に保持された抗体とは抗原決定部位を
異にする抗aFGF蛋白質抗体に標識剤を直接結合させ
たものを用いる。The labeling agent-conjugated antibody used in the assay method of the present invention is one in which the labeling agent is directly bound to an anti-aFGF protein antibody that has a different antigen-determining site from that of the antibody held on the carrier.
本発明の免疫化学的測定法において用いられる抗aFG
F蛋白質抗体としては、aF G F蛋白質に対して結
合能を有するものであればいずれでもよい。Anti-aFG used in the immunochemical assay method of the present invention
Any F protein antibody may be used as long as it has the ability to bind to aF GF protein.
aF G F蛋白質の測定方法において用いられる担体
上に保持された抗体における担体としては、例えば、ゲ
ル粒子(例、アガロースゲル[例、セファロース4B、
セファロース6B(ファルマシア・ファインケミカル社
(スエーデン)製)コ、デキストランゲル[例、セファ
デックスG−75、セファデックスc−too、セファ
デックスG−200(ファルマシア・ファインケミカル
社(スエーデン)製)]、ポリアクリルアミドゲル[例
、バイオゲルP−30、バイオゲルP−60、バイオゲ
ルP−100(バイオラッド・ラボラトリーズ社(米国
)製)]、セルロース粒子[例、アビセル(脂化成製)
、イオン交換セルロース(例、ジエチルアミノエチルセ
ルロース、カルボキシメチルセルロース)]、物理的吸
着剤[例、ガラス(例、ガラス球、ガラスロッド、アミ
ノアルキルガラス球、アミノアルキルガラスロッド)、
シリコン片、スチレン系樹脂(例、ポリスチレン球、ポ
リスチレン粒子)、イムノアッセイ用プレート(例、ヌ
ンク社(デンマーク)製)]、イオン交換樹脂(例、弱
酸性陽イオン交換樹脂[例、アンバーライトIRC−5
0(ローム・アンド・ハース社(米国)製)、セオカー
プ226(パームチット社(西ドイツ)製)]、弱塩基
性陰イオン交換樹脂[例、アンバーライトIR−4B、
ダウエックス3(ダウケミカル社(米国)製)])など
が挙げられる。Examples of the carrier in the antibody supported on a carrier used in the method for measuring aFGF protein include gel particles (e.g., agarose gel [e.g., Sepharose 4B,
Sepharose 6B (manufactured by Pharmacia Fine Chemicals (Sweden)), dextran gel [e.g., Sephadex G-75, Sephadex C-too, Sephadex G-200 (manufactured by Pharmacia Fine Chemicals (Sweden)]), polyacrylamide Gel [e.g., Biogel P-30, Biogel P-60, Biogel P-100 (manufactured by Bio-Rad Laboratories (USA))], cellulose particles [e.g., Avicel (manufactured by Fukkasei)]
, ion-exchanged cellulose (e.g., diethylaminoethyl cellulose, carboxymethyl cellulose)], physical adsorbent [e.g., glass (e.g., glass bulbs, glass rods, aminoalkyl glass spheres, aminoalkyl glass rods),
Silicon pieces, styrene resins (e.g., polystyrene spheres, polystyrene particles), immunoassay plates (e.g., manufactured by Nunc (Denmark)), ion exchange resins (e.g., weakly acidic cation exchange resins [e.g., Amberlite IRC- 5
0 (manufactured by Rohm & Haas (USA)), Theocarp 226 (manufactured by Palmchit (West Germany))], weakly basic anion exchange resins (e.g., Amberlite IR-4B,
Examples include DOWEX 3 (manufactured by Dow Chemical Company (USA)).
担体に抗体を保持させるには、公知の常套手段を応用し
得るが、例えば、“代謝′°、第8巻(1971年)、
第696頁に記載されているブロムシアン法、ゲルター
ルアルデヒド法などが挙げられる。In order to retain the antibody on a carrier, a known conventional method can be applied, but for example, "Metabolism", Vol. 8 (1971),
Examples include the bromcyan method and the geltaraldehyde method described on page 696.
また、より簡便な方法として物理的に担体表面に吸着さ
せてもよい。Alternatively, as a simpler method, it may be physically adsorbed onto the surface of the carrier.
標識剤を結合させた抗体における標識剤とじては、放射
性同位元素、酵素、蛍光物質、発光物質などが挙げられ
るが、酵素を用いるのが好オしい。Examples of the labeling agent in an antibody bound to a labeling agent include a radioactive isotope, an enzyme, a fluorescent substance, a luminescent substance, etc., and it is preferable to use an enzyme.
酵素としては、安定で比活性の大きなものが好ましく、
ペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、β−D−
ガラクトシダーゼ、グルコースオキ−シダーゼ等を用い
ることができるが、ペルオキシダーゼが好ましい。ペル
オキシダーゼとしては、種々の起源のものを用いること
ができるが、その例としてはたとえば西洋わさび、パイ
ナ・シブル、イチジク、せ諸、ソラマメ、トウモロコシ
などから得られるペルオキシダーゼが挙げられ、特に西
・洋わさびから抽出されたホースラデイツシュ ペルオ
キシダーゼ(horseradish peroxid
ase)(HRP)が好ましい。As an enzyme, one that is stable and has a high specific activity is preferable.
peroxidase, alkaline phosphatase, β-D-
Galactosidase, glucose oxidase, etc. can be used, but peroxidase is preferred. As peroxidase, those of various origins can be used, examples of which include peroxidase obtained from horseradish, pina cible, fig, sesame, fava bean, corn, etc. In particular, peroxidase obtained from horseradish Horseradish peroxidase extracted from
(HRP) is preferred.
ペルオキシダーゼと抗体を結合するにあたり、抗体分子
としてのFab’のチオール基を利用するために、あら
かじめペルオキシダーゼにマレイミド基を導入したもの
を用いる゛と好都合である。In order to utilize the thiol group of Fab' as an antibody molecule in binding peroxidase and antibody, it is convenient to use a peroxidase into which a maleimide group has been introduced in advance.
マレイミド基をペルオキシダーゼに導入する方法として
は、ペルオキシダーゼのアミノ基を介してマレイミド基
を導入することがで基る。そのためには、N−サクシニ
ミジル−マレイミド−カルボキシレート誘導体を用いる
ことができ、好ましくは、N−(γ−マレイミドブチル
オキシ)サクシイミド(GMBSと略称することもある
)などが良い。従って、マレイミド基とペルオキシダー
ゼとの間に一定の基が入っていることとなってもよい。A method for introducing a maleimide group into peroxidase is to introduce the maleimide group via an amino group of peroxidase. For that purpose, N-succinimidyl-maleimido-carboxylate derivatives can be used, preferably N-(γ-maleimidobutyloxy)succinimide (sometimes abbreviated as GMBS). Therefore, a certain group may be present between the maleimide group and the peroxidase.
・GMBSをペルオキシダーゼに反応させるには、両者
を、po約6ないし8の緩衝液中で約10ないし50℃
の温度で約10分ないし24時間反応させることによっ
て行われる。該緩衝液としては、たとえば、pH7,0
の0.01リン酸緩衝液などが挙げられる。このよ□う
にして得られたマレイミド化ペルオキシダーゼは、たと
えばゲルクロマドグ弓フィーなどにより精製することが
できる。該ゲルクロマトグラフィーを行う際に用いられ
る担体としては、例えば、セファデックスG−25,[
ファルマシア・ファインケミカル社(スエーデン)製]
、バイオゲルP−2[バイオラッド・ラボラ斗す−ズ社
(米国)製]などが挙げられる。・To react GMBS with peroxidase, both are heated at about 10 to 50°C in a buffer solution with a po of about 6 to 8.
The reaction is carried out by reacting at a temperature of about 10 minutes to 24 hours. As the buffer solution, for example, pH 7.0
Examples include 0.01 phosphate buffer. The maleimidated peroxidase thus obtained can be purified, for example, by gel chroma-dolphin. Examples of carriers used in gel chromatography include Sephadex G-25, [
Manufactured by Pharmacia Fine Chemicals (Sweden)]
, Biogel P-2 [manufactured by Bio-Rad Laboratories (USA)], and the like.
マレイミド化ペルオキシダーゼと抗体分子トの反応は、
両者を緩衝液中で約0°Cないし4O℃の温度で、約1
ないし48時間反応させることにより行うことかできる
。該緩衝液としては、たとえば、pH6,0の5mMエ
チレンジアミン四酢酸ナトリウム塩を含むO,1Mリン
酸緩衝液などが挙げられる。このようにして得られたベ
ルオキンダーゼ標識抗体は、たとえばゲルクロマトグラ
フィーなどにより精製することができる。該ケルクロマ
トグラフィーを行う際に用いられる担体としては、例え
ば、セファテックスG−25[ファルマンア・ファイン
ケミカル社(スエーテン)製] 、バイオケルP−2[
ハイオシ。The reaction between maleimidating peroxidase and antibody molecules is
Both were mixed in a buffer solution at a temperature of about 0°C to 40°C for about 1 hour.
This can be carried out by reacting for 48 hours to 48 hours. Examples of the buffer include O.1M phosphate buffer containing 5mM ethylenediaminetetraacetic acid sodium salt at pH 6.0. The bell-okindase-labeled antibody thus obtained can be purified, for example, by gel chromatography. Examples of carriers used when carrying out the Kel chromatography include Sephatex G-25 [manufactured by Farman Fine Chemical Co., Ltd. (Sueten)], Biokel P-2 [
Hioshi.
ト・ラボラトリーズ社(米国)製コなとが挙げられる。One example is Konato manufactured by TO Laboratories (USA).
さらに、ペルオキシダーゼにチオール基を導入し、マレ
イミド化された抗体分子と反応させても良い。Furthermore, a thiol group may be introduced into peroxidase and reacted with a maleimidated antibody molecule.
ペルオキシダーゼ以外の酵素を抗体に直接結合させるに
は、ペルオキシダーゼの場合に準じて行なうことができ
、また、自体公知のグルタルアルデヒド法、過ヨウ素酸
法、水溶性カルボジイミド法などが用いられる。Direct binding of an enzyme other than peroxidase to an antibody can be carried out in the same manner as for peroxidase, and the per se known glutaraldehyde method, periodic acid method, water-soluble carbodiimide method, etc. can be used.
本発明の測定系における被検試料としては、尿、血清、
血漿、髄液等の体液、あるいは、動物細胞や菌体の抽出
液またはその培養上清が挙げられる。Test samples in the measurement system of the present invention include urine, serum,
Examples include body fluids such as plasma and cerebrospinal fluid, extracts of animal cells and bacterial cells, and culture supernatants thereof.
本発明の測定方法の例として、標識剤がペルオキシダー
ゼの場合について以下に具体的に説明するが、ペルオキ
シダーゼに限定されるものではない。As an example of the measurement method of the present invention, a case in which the labeling agent is peroxidase will be specifically explained below, but it is not limited to peroxidase.
まず、■:担体に保持された抗体に、測定すべきaF
G F含有の分析対象物を加えて抗原抗体反応を行った
後、これに、前記で得られたペルオキシダーゼと抗aF
GF蛋白質抗体との結合物を加えて反応させる。First, ■: The aF to be measured is added to the antibody retained on the carrier.
After performing an antigen-antibody reaction by adding the GF-containing analyte, the peroxidase obtained above and anti-aF
A conjugate with a GF protein antibody is added and reacted.
この本測定系における被検試料としては、尿、血清、血
漿、髄液等の体液、あるいは、動物細胞や菌体の抽出液
またはその培養上清か挙げられる。Samples to be tested in this measurement system include body fluids such as urine, serum, plasma, and cerebrospinal fluid, extracts of animal cells or bacterial cells, or culture supernatants thereof.
■二〇で得られた反応生成物にペルオキシダーゼの基質
を加え、生じた物質の吸光度もしくは蛍光強度を測定す
ることにより上記の反応生成物の酵素活性を知る。(2) Add a peroxidase substrate to the reaction product obtained in step 20, and measure the absorbance or fluorescence intensity of the resulting substance to determine the enzyme activity of the reaction product.
■二上記■〜■の操作を既知量のaFGFの標準溶液に
対してあらかじめ行い、aF G Fと吸光度もしくは
蛍光強度との関係を標準曲線として作成しておく。(2) The above procedures (1) to (2) are performed in advance on a known amount of a standard solution of aFGF, and the relationship between aFGF and absorbance or fluorescence intensity is prepared as a standard curve.
■・未知量のaF G Fを含む分析対象物(被検試料
)について得られた吸光度もしくは蛍光強度を標準曲線
にあてはめ、分析対象物中のaF G Fの量をC測定
する。(2) The absorbance or fluorescence intensity obtained for the analyte (test sample) containing an unknown amount of aF GF is applied to a standard curve, and the amount of aF GF in the analyte is measured by C.
本発明のモノクローナル抗体をaFGF蛋白質の検出・
定量に用いると、高い検出感度が得られる。したがって
、該検出法によって、例えば癌細すτか産生ずる微量の
aFGFを検出することができる。The monoclonal antibody of the present invention can be used to detect aFGF protein.
When used for quantitative determination, high detection sensitivity can be obtained. Therefore, by this detection method, for example, trace amounts of aFGF produced by cancer cells can be detected.
aFGF蛋白質に対するモノクローナル抗体とキセリア
用蛋白との複合体を免疫原として得られた抗体を用いて
a FGF蛋白質を精製することができる。これには、
該抗体を用いてアフィニティーカラムクロマトグラフィ
ーを行なうことにより行なうことかできる。The aFGF protein can be purified using an antibody obtained using a complex of a monoclonal antibody against the aFGF protein and a protein for xeria as an immunogen. This includes:
This can be done by performing affinity column chromatography using the antibody.
該アフィニティーカラムクロマトグラフィーは、たとえ
ば、該抗体を適切な担体にカップリングさせ、これをカ
ラムに充1め、aFGF蛋白質を含む溶液をカラムに通
し吸着させ、次いで溶出させることにより行なうことが
できる。The affinity column chromatography can be performed, for example, by coupling the antibody to a suitable carrier, filling a column with the antibody, passing a solution containing the aFGF protein through the column to adsorb it, and then eluting it.
該担体として(ネ、たとえば、先に記載された担体と同
様のものが挙げられる。とりわけゲル粒子や各種合成樹
脂が好都合に用いられる。たとえばCNBr−acti
vated 5epharose 4 B(ファルマ
シア・ファインケミカル、社製)、アフィゲル−1O,
アフィゲル15(バイオランド・ラボラトリーズ社製)
などが挙げられる。Examples of the carrier include carriers similar to those described above. In particular, gel particles and various synthetic resins are conveniently used. For example, CNBr-acti
vated 5epharose 4 B (manufactured by Pharmacia Fine Chemicals), Affigel-1O,
Affigel 15 (manufactured by Bioland Laboratories)
Examples include.
抗体ヲ担体にカップリングさせるには、公知の常套手段
を応用し得るが、たとえば“代謝”、第8巻(1971
年)、第696頁に記載されているブロムシアン法、ゲ
ルタールアルデヒド法が挙、げられる。また、水溶性カ
ルボジイミドを用いる方法、活性エステル法なども用い
ることができるが、より簡単な方法として物理的に担体
表面に吸着させでもよい。In order to couple antibodies to carriers, known conventional methods can be applied, such as those described in "Metabolism", Vol. 8 (1971).
Examples include the Bromsian method and the geltaraldehyde method, which are described in 1999, p. 696. Further, a method using water-soluble carbodiimide, an active ester method, etc. can also be used, but as a simpler method, it may be physically adsorbed onto the surface of the carrier.
このようにして得られた抗体カラムを用いて精製を行な
うには、抗体を結合させた担体を充てんした抗体カラム
に中性付近の緩衝液中のaF G F蛋白質を吸着させ
る。次にカラムを同じ緩衝液で洗浄したのち、特異的に
吸着されたaF G F蛋白質を溶出させる。特異的に
吸収された抗体を溶出するには、たとえば、低pHもし
くは高pHの緩衝液、高濃度の塩を含有する緩衝液を用
いて行なわれる。In order to perform purification using the antibody column thus obtained, aF GF protein in a near-neutral buffer is adsorbed onto the antibody column filled with a carrier bound to the antibody. Next, after washing the column with the same buffer, the specifically adsorbed aFGF protein is eluted. Elution of specifically absorbed antibodies is carried out using, for example, a low pH or high pH buffer, or a buffer containing a high concentration of salt.
該低pHの緩衝液としては、たとえばpH2,3の0.
17M グリシン−塩酸緩衝液、pH1,8の0.1
M 第二クエン酸ナトリウム−塩酸緩衝液などが挙げ
られる。As the low pH buffer solution, for example, a 0.0.
17M glycine-hydrochloric acid buffer, pH 1.8, 0.1
M Secondary sodium citrate-hydrochloric acid buffer and the like.
該高pHの緩衝液としては、たとえばpH11のアンモ
ニア水、pH11,7の0.2Mホウ酸ナナトリウム緩
衝液どが挙げられる。Examples of the high pH buffer include aqueous ammonia at pH 11 and 0.2M sodium borate buffer at pH 11.7.
該高濃度の塩を含有する緩衝液としては、たとえば6M
グアニジン塩酸溶液、7M尿素溶液なとが挙げられる。As the buffer containing the high concentration of salt, for example, 6M
Examples include guanidine hydrochloric acid solution and 7M urea solution.
上記の溶出は、バッチ法でもよく、またカラムを用いる
方法でも−よい。The above elution may be performed by a batch method or by a method using a column.
抗体の溶出液はたとえば透析して精製する。たとえば低
pHの緩衝液で溶出した時は、たとえば0.1M炭酸ナ
トリウム緩衝液(pH10,5)、高pt−tの緩衝液
で溶出した時は、たとえば0.1Mグリシン−塩酸緩衝
液(pH3,0)で中性化したのち、たとえば0.1%
NaN3を含む0.02Mリン酸食塩緩衝液(pH8,
0)に対して透析する。また高濃度の塩を含有する緩衝
液で溶出した抗体液は直接に上記のリン酸食塩緩衝液に
透析して保存することもできる。また、上記溶出液また
は透析液を凍結乾燥して得られた凍結乾燥標品として保
存することもできる。The antibody eluate is purified, for example, by dialysis. For example, when eluting with a low pH buffer, for example, 0.1M sodium carbonate buffer (pH 10.5), and when eluating with a high pt-t buffer, for example, 0.1M glycine-hydrochloric acid buffer (pH 3). , 0) and then, for example, 0.1%
0.02M phosphate saline buffer (pH 8,
0). Alternatively, the antibody solution eluted with a buffer containing a high concentration of salt can be directly dialyzed against the above-mentioned phosphate saline buffer and stored. Alternatively, the eluate or dialysate may be lyophilized and stored as a lyophilized specimen.
このようにして精製されたaFGF蛋白質は、極めて高
単位のものであり、たとえば、創傷の治癒促進剤として
用いることができ、また、神経細胞増殖作用を有するの
で、各種神経障害の治療に有効に利用できる。The aFGF protein purified in this way has an extremely high unit content and can be used, for example, as a wound healing promoter, and also has a neuronal proliferation effect, making it effective for the treatment of various neurological disorders. Available.
aFGF蛋白質を上記治療のための医薬として用いるに
は、そのまま粉末として、または他の薬理学的に許容さ
れうる担体、賦形剤、希釈剤とともに医薬組成物(例、
注射剤1錠剤、カプセル剤、液剤。In order to use the aFGF protein as a medicament for the above-mentioned treatment, it can be used as a powder as it is, or in a pharmaceutical composition (e.g.
Injection 1 tablet, capsule, liquid.
軟膏)として、混血動物(例、ヒト、マウス、ラット。ointments), mixed-breed animals (e.g., humans, mice, rats).
ハムスター、ウサギ、犬、ネコ)に対して非経口的また
は経口的に安全に投与することができる。It can be safely administered parenterally or orally to hamsters, rabbits, dogs, cats).
上記の医薬組成物としての製剤化は常法に従って行なわ
れる。The above-mentioned formulation as a pharmaceutical composition is carried out according to a conventional method.
aFGF蛋白質を上記した医薬として用いる場合には、
たとえば上記した温血動物に、投与ルート、症状などを
考慮して、1日量約LongないしlOμg/kgの中
から適当量を選んで投与される。When using aFGF protein as the above-mentioned medicine,
For example, the drug is administered to the above-mentioned warm-blooded animals by selecting an appropriate daily dose from about Long to 10 μg/kg in consideration of the route of administration, symptoms, etc.
また、このようにして精製されたaF G F蛋白質は
、細胞培養を促進させるための試−として用いることが
できる。この場合、aFGF蛋白質を好ましくは、培地
112あたり約0,1〜10μgとなるように培地に加
えることが好ましい。Furthermore, the aFGF protein purified in this manner can be used as a test for promoting cell culture. In this case, the aFGF protein is preferably added to the medium in an amount of about 0.1 to 10 μg per medium 112.
本発明明細書および図面において、塩基やアミノ酸など
を略号で表示する場合、 IUPAC−I U B
Colllmision on B iochem
icalN omenclatureによる略号あるい
は当該分野における慣用略号に基つくものであり、その
例を下記する。また、アミノ酸に関し光学異性体があり
うる場合は、特に明示しなければL一体を示すものとす
る。In the specification and drawings of the present invention, when bases, amino acids, etc. are indicated by abbreviations, IUPAC-IUB
Collmision on Biochem
It is based on the abbreviations according to the ical culture or the abbreviations commonly used in the field, and examples thereof are shown below. Furthermore, if an amino acid can have optical isomers, unless otherwise specified, the L-isomer is assumed to be indicated.
NA DNA NA ATP TTP GTP CTP TP dr DTA DS G、Gly :デオキシリボ核酸 :相補的デオキシリポ核酸 :アデニン 二チミン :グアニン :シトシン :リボ核酸 :デオキシアデノンン三リン酸 :デオキシチミジン三リン酸 :デオキシグアノシン三リン酸 :デオキシシチジン三リン酸 :アデノシン三リン酸 :チミジン :エチレンジアミン四酢酸 ニドデシル硫酸ナトリウム :グリシン A、Ala V、Vat L、Leu 1、l1e S 、 S er T、Thr C,Cys M、Met E 、 G lu D、Asp K、Lys R,Arg H,His F、Phe Y、Tyr W、Trp P、Pr。NA DNA NA ATP TTP GTP CTP T.P. dr D.T.A. DS G,Gly :deoxyribonucleic acid : Complementary deoxyliponucleic acid :Adenine dithymine :guanine :Cytosine :ribonucleic acid : Deoxyadenone triphosphate :Deoxythymidine triphosphate : Deoxyguanosine triphosphate : Deoxycytidine triphosphate :Adenosine triphosphate : Thymidine :Ethylenediaminetetraacetic acid sodium nidodecyl sulfate :glycine A.Ala V, Vat L.Leu 1, l1e S, Ser T, Thr C, Cys M, Met E, Glu D.Asp. K, Lys R, Arg H, His F, Phe Y, Tyr W,Trp P, Pr.
N、Asn
Q、Gin
lz
:アラニン
:バリン
:ロイシン
:イソロイシン
:セリン
:スレオニン
:システイン
:メチオニン
グルタミン酸
:アスパラギン酸
:リジン
:アルギニン
:ヒスチジン
:フエニールアラニン
;チロシン
”トリプトファン
プロリン
:アスパラギン
:グルタミン
:2−クロロペンジルオキシ力ルポ
二ル
BrZ :2−ブロモベンジルオキシカルボ二ル
Bzl :ベンジル
Boa :t−ブトキシカルボニル後述の実施例
において製造されたハイブリドーマの財団法人発酵研究
所(IFO)、通商産業省工業技術院微生物工業技術研
究所(FRI)への寄託臼および寄託番号を次の第1表
に示す。なお、FRlのFERM BP番号は、ブダ
ペスト条約に基づく寄託の受託番号を示す。N, Asn Q, Gin lz: Alanine: Valine: Leucine: Isoleucine: Serine: Threonine: Cysteine: Methionine Glutamic acid: Aspartic acid: Lysine: Arginine: Histidine: Phenylalanine; Tyrosine Tryptophan proline: Asparagine: Glutamine: 2-chloro Penzyloxycarbonyl BrZ: 2-bromobenzyloxycarbonyl Bzl: Benzyl Boa: t-butoxycarbonyl The hybridomas produced in the examples described below were obtained from the Fermentation Research Institute (IFO), Ministry of International Trade and Industry. The mortar and deposit number deposited with the Institute of Microbial Technology (FRI) are shown in Table 1 below.The FERM BP number of FRl indicates the deposit number based on the Budapest Treaty.
(以 下 余 白)
後述の実施例において用いられたりコンビナンドヒト塩
基性FGF(以下、rhbF G Fと略称することも
ある。)は、ヨーロッパ特許出願公開(以下、EP公開
と略称することもある。)第237,966号公報に記
載の方法で製造される。すなわち、該rhbF G F
は、形質転換体エシェリヒア・コリ(Escheric
hia coli)K12 MM294/pTB669
(I Fo 14532、FERM BP−12
81)を用いて、EP公開第237,966号公報の実
施例1.3および6または8に記載された方法で製造、
精製されたものである。(Margin below) Combinant human basic FGF (hereinafter sometimes abbreviated as rhbFGF) used in the examples described below is obtained from the European Patent Application Publication (hereinafter also abbreviated as EP publication). ) Manufactured by the method described in Publication No. 237,966. That is, the rhbF G F
is a transformant of Escherichia coli (Escherichia coli).
hia coli) K12 MM294/pTB669
(I Fo 14532, FERM BP-12
81) by the method described in Examples 1.3 and 6 or 8 of EP Publication No. 237,966,
It is purified.
上述の形質転換体E、 coli K 12 MM2
94/pTB669は、IFOおよびFRIに寄託され
ている。それらの受託番号および受託臼を次の表2に示
す。なお、FRIへの寄託については当初国内寄託かな
されFERMP番号で示される受託番号が付され、該寄
託はブダペスト条約に基づく寄託に切換えられて、FE
RM BP番号で示される受託番号が付され、Ftに
保管されている。Transformant E described above, coli K 12 MM2
94/pTB669 has been deposited with IFO and FRI. The entrustment numbers and dies are shown in Table 2 below. Regarding the deposit with FRI, it was initially deposited domestically and a deposit number indicated by the FERMP number was attached, but the deposit was changed to deposit based on the Budapest Treaty and was transferred to FE.
It is assigned an accession number indicated by the RM BP number and is stored in Ft.
後述の参考例で製造された形質転換体エシェリヒア・コ
リ(Escherichia coli ) MM2
94(DE3)/pLysS、pTB975.E、co
li MM294(DE3)/pLysS、pTB
1069およびE、coli MM294(DE3)
/pLysS、pTB1070は、IFOおよびFRI
に寄託されている。それらの受託番号および受託臼を次
の表3に示す。Transformant Escherichia coli MM2 produced in the reference example described below
94(DE3)/pLysS, pTB975. E,co
li MM294(DE3)/pLysS, pTB
1069 and E. coli MM294 (DE3)
/pLysS, pTB1070 is IFO and FRI
It has been deposited in Their accession numbers and dies are shown in Table 3 below.
(以下余白)
実施例
以下に参考例、実施例をもって、本発明をさらに詳しく
説明するが、本発明は、これらによってなんら限定され
るものではない。(The following is a blank space) Examples The present invention will be explained in more detail with reference examples and examples below, but the present invention is not limited by these in any way.
参考例1 (組換え型ヒトaFGFの調製)ヒトaF
G Fを、Biotechnology 5 、 96
0 (1987) ; Journal or Bio
logical Chemistry 2631647
1 (198g)、およびIC5U 5hort
Reportvolume 8. Advances
in Gene Technology:Pro
tein Engineering and P
roduction。Reference Example 1 (Preparation of recombinant human aFGF) Human aF
G F, Biotechnology 5, 96
0 (1987); Journal or Bio
Logical Chemistry 2631647
1 (198g), and IC5U 5hort
Report volume 8. Advances
in Gene Technology: Pro
tein Engineering and P
production.
Proceedings of the 1988 M
iami Bio、/TechnologyWinte
r Symposium、 IRL Press、 p
age 110に記載の方法を参考にして、次に示す方
法により製造した。Proceedings of the 1988 M
iami Bio, /TechnologyWinte
r Symposium, IRL Press, p
It was manufactured by the following method with reference to the method described in AGE 110.
(a) 発現プラスミドの構築
化学合成されたヒhaFGFのcDNA(第1図)をp
U C18[Methods in Enzymolo
gy、 10120−78 (1983))に組み込
んたプラスミドpTB917(プラスミドpTB917
を大腸菌K12MM294に導入して得られた形質転換
体Ecoli K12 MM294/pTB917
はIFOにIFO15093として寄託されている。)
をBspMlて切断し、large fragment
の反応によりこの部位を平滑末端にした後BamHIで
消化して0.45KbのDNA断片を調製した。ベクタ
ーDNAにはT7フアーンのφ10プロモーターを保持
するpE T 3c(5tudier、 F、 W
らJ、 1AolBiol ↓89 : 113−1
30(1986))を用い、pE、T3cをNdelで
切断し、large fragmentて平滑末端とし
た後T4DNAリガーゼによりNcolリンカ−5’−
CCΔTGG−3’を結合させた。このプラスミドをN
colで切断し、その部位をDNAポリメラーゼlar
ge fragmentにより平滑化した後BamHI
で切断してSIOの配列を除き、そこに先の0 、45
Kb blunt B spM rBamHI断片を
T4DNAリガーセを用いて組み込んでpT B 97
5を得た(第2図)。(a) Construction of expression plasmid The chemically synthesized human haFGF cDNA (Fig. 1) was
U C18 [Methods in Enzymolo
gy, 10120-78 (1983)).
Transformant Ecoli K12 MM294/pTB917 obtained by introducing the into Escherichia coli K12MM294
has been deposited with IFO as IFO15093. )
Cut with BspMl and make large fragment
This site was made blunt-ended by the reaction described above, and then digested with BamHI to prepare a 0.45 Kb DNA fragment. The vector DNA contained pET3c (5tudier, F, W
et al. J, 1AolBiol ↓89: 113-1
30 (1986)), pE and T3c were cut with Ndel, large fragment was made into blunt ends, and Ncol linker-5'- was added with T4 DNA ligase.
CCΔTGG-3' was conjugated. This plasmid is N
cut the site with DNA polymerase lar
BamHI after smoothing by ge fragment
Cut it with , remove the SIO array, and add the preceding 0, 45 there.
The Kb blunt B spM rBamHI fragment was integrated using T4 DNA ligase to create pT B97.
5 was obtained (Figure 2).
(b) ヒトaF G F cD N Aの大腸菌で
の発現次に大腸菌M M 294株にT7フアージのR
NAポリメラーゼ遺伝子を組み込んだλファージDE
3 (Studier、 F、 W、らJ、Mo1.B
iol、 189 : 113−130 (1986)
)を溶原化させ、さらにT7フアーノのりゾチーム遺伝
子をもつプラスミドpLys 5(Studier、
F、 W、らJ、Mo1.Biol、 189 : 1
13−130 (1986))を導入し、大腸菌MM2
94(DE3 )/ pLys S株を作製した。この
大腸菌株にpTB975を導入し、大腸菌〜4M2’9
4 (D E 3 )/p1.yss、pTB975(
IFO14936,FER〜I BP−2599)をつ
くった。この菌を35μg/dアンピンリン、10μg
/綬クロラムフェニコールを含む培地で37°Cで培養
し、濁度かKlett I 70になったときイソプ
ロピルβ−Dチオガラクトンド(IPTG)を最終濃度
かO、、v mMになるように加え更に3時間培養を継
続した。菌体を遠心により集め、水冷したPBSで洗っ
た後、再集菌し使用時まで一20°Cに保存した。(b) Expression of human aFGF cDNA in E. coli Next, R of T7 phage was injected into E. coli MM294 strain.
λ phage DE incorporating the NA polymerase gene
3 (Studier, F, W, et al. J, Mo1.B
iol, 189: 113-130 (1986)
) was lysogenized, and the plasmid pLys 5 (Studier,
F, W, et al. J, Mo1. Biol, 189:1
13-130 (1986)) was introduced into E. coli MM2.
94(DE3)/pLys S strain was created. pTB975 was introduced into this E. coli strain, and E. coli ~4M2'9
4 (D E 3 )/p1. yss, pTB975 (
IFO14936, FER~I BP-2599). 35μg/d Anpinlin, 10μg of this bacteria
Culture at 37°C in a medium containing chloramphenicol, and when the turbidity reached Klett I 70, add isopropyl β-D thiogalactone (IPTG) to a final concentration of O, V mM. In addition, the culture was continued for an additional 3 hours. Bacterial cells were collected by centrifugation, washed with water-cooled PBS, and then recollected and stored at -20°C until use.
(c) ヒトaF G Fの精製
11iter培養から集めた菌体を100dの水冷10
mM Tris−HCl2(pH7,4)、 L O
mM EDTA、Q 6〜lNaC1,10%ンー3
糖、0.25mM P M S Fに懸?蜀し、卵白リ
ゾチームを0.5mg/dとなるように添加した。1時
間水中に放置後37°Cて5分間インキュベートし、水
冷下で超音波処理(20秒間、2回)を行い、遠心(S
ORVALL。(c) Purification of human aF G
mM Tris-HCl2 (pH 7,4), L O
mM EDTA, Q6~lNaC1, 10% N~3
Sugar, 0.25mM PMS F? Then, egg white lysozyme was added at a concentration of 0.5 mg/d. After leaving in water for 1 hour, incubate at 37°C for 5 minutes, perform ultrasonic treatment (20 seconds, twice) under water cooling, and centrifuge (S
ORVALL.
18 Krpm、 30 min、 4°C)して上清
を得た。この上清を200dの氷冷20mM Tris
−HCρ(pH7,4)、1 mM EDTAと混
和し、20mMTris−HCl2(pH7,4)、1
mM EDTAo、2MNaC12で平衡化したヘパリ
ンセファロースカラム(径2.5X4Cin)にかけた
。カラムを150mの20mM Tris−HCC’(
pH7,4)、1mM EDTA、0.5M Na
C12で洗った後、20mM Tris−HCl2(1
)H7,4)、LmM EDTA。18 Krpm, 30 min, 4°C) to obtain a supernatant. This supernatant was diluted with ice-cold 20mM Tris for 200d.
-HCρ (pH 7,4), mixed with 1 mM EDTA, 20mM Tris-HCl2 (pH 7,4), 1
It was applied to a heparin Sepharose column (diameter 2.5×4 Cin) equilibrated with mM EDTAo, 2M NaC12. The column was washed with 150 m of 20 mM Tris-HCC' (
pH 7,4), 1mM EDTA, 0.5M Na
After washing with C12, 20mM Tris-HCl2 (1
)H7,4), LmM EDTA.
1.5MNaCf2で蛋白を溶出した。溶出液を6d毎
に分画し、OD 、、、をモニターして2番目のピーク
画分(8−11番、計 24d)を集めた(第3図)。Proteins were eluted with 1.5M NaCf2. The eluate was fractionated every 6 days, the OD was monitored, and the second peak fractions (numbers 8 to 11, total 24 days) were collected (Figure 3).
この画分22dに対して等量の20mMTris−HC
(!(pH7,4)、1mM EDTA、2M(N H
−) t S 04を混和し、20mM Tris−H
Cl2(pH7,4)、1mM EDTA、IM(N
H4)tso。For this fraction 22d, an equal amount of 20mM Tris-HC
(! (pH 7,4), 1mM EDTA, 2M (NH
-) Mix tS04 and add 20mM Tris-H.
Cl2 (pH 7,4), 1mM EDTA, IM (N
H4) tso.
で平衡化したフェニルセファロースカラム(径2.5X
8c+a)にかけた(流速 0 、53112/win
、 )。Phenyl Sepharose column (diameter 2.5X) equilibrated with
8c+a) (flow rate 0, 53112/win
).
20mの同じ緩衝液でカラムを洗った後、IMからOM
の硫酸アンモニウム直線的濃度勾配(流速0 、5 y
tl /sin、、勾配時間200分)をかけ、溶出さ
れた画分40−55を集め(第4図)、精製ヒトaF
G Fとした。After washing the column with 20 m of the same buffer, IM to OM
ammonium sulfate linear concentration gradient (flow rate 0, 5 y
tl/sin, gradient time 200 minutes), eluted fractions 40-55 were collected (Figure 4), and purified human aF
GF.
(d) 逆相C4HPLC
精製ヒトaFGF 1.2mg/m溶液を0.25dの
0.1%トリフルオロ酢酸(TFA)と混合し、逆相C
4カラム(VYDAC)にアプライし、O11%TFA
存在下に0%から90%アセトニトリルの直線的濃度勾
配をかけ溶出パターンを調べた。流速17/nin、、
勾配時間60分で行った(第5図)。(d) Reversed-phase C HPLC A 1.2 mg/m solution of purified human aFGF was mixed with 0.25 d of 0.1% trifluoroacetic acid (TFA) and subjected to reverse-phase C HPLC.
4 column (VYDAC) and O11% TFA.
The elution pattern was examined by applying a linear concentration gradient from 0% to 90% acetonitrile. Flow rate 17/nin,,
The gradient time was 60 minutes (Figure 5).
(e) 生物活性
ヒトaFGFの活性は佐々田らの方法(Sasadaら
、 Mo1. Ce1l Biol、8 : 5
88 594(198g))に従い、マウスBALB/
c3T3細胞のDNA合成誘起を[3H]チミジンの取
り込みを指標として測定した。検体添加時、必要に応じ
て培地中および検体中にヘパリン(SIGMA Gr
ade I )溶液を混合した。(e) The activity of bioactive human aFGF was determined by the method of Sasada et al. (Sasada et al., Mo1. Ce1l Biol, 8:5
88 594 (198 g)), mouse BALB/
The induction of DNA synthesis in c3T3 cells was measured using [3H]thymidine incorporation as an indicator. When adding the sample, add heparin (SIGMA Gr.
ade I) solutions were mixed.
参考例2 (aFGFの部分ペプチドの製造)(1)
H−Phe−Asn−Leu−Pro−Pro−G
ly−Asn−Tyr−Lys−OH(ヒトaF G
F (1−9))の製造アプライド・バイオシステムズ
社、430A型全自動ペプチド合成機を用い、Boc−
Lys(CQZ)フェニルアセタミド(PAM)樹脂0
、5 mmoleより出発し、以下のアミノ酸を順次
、縮合及び脱Boc化反応に付した。Reference Example 2 (Production of partial peptide of aFGF) (1)
H-Phe-Asn-Leu-Pro-Pro-G
ly-Asn-Tyr-Lys-OH (human aF G
Boc-
Lys (CQZ) phenylacetamide (PAM) resin 0
, 5 mmole, the following amino acids were sequentially subjected to condensation and de-Boc reaction.
Boa−Tyr(BrZ)−OH
Boc−Asn−OH
Boa−Gly−OH
Boc−Pro−OH
Boa−Pro−OH
Boc−Leu−OH
Boc−Asn−OH
Boa−Phe−OH
斯くして、Boc−Phe−Asn−Leu−Pro−
Pro−Gly−Asn−Tyr(BrZ)−Lys(
C12Z)−PAM樹脂1.13gを得た。Boa-Tyr(BrZ)-OH Boc-Asn-OH Boa-Gly-OH Boc-Pro-OH Boa-Pro-OH Boc-Leu-OH Boc-Asn-OH Boa-Phe-OH Thus, Boc-Phe -Asn-Leu-Pro-
Pro-Gly-Asn-Tyr(BrZ)-Lys(
1.13 g of C12Z)-PAM resin was obtained.
これをアニソール1.34d及びジメチルスルフィドl
、34−を含む弗化水素13d中で0°C160分間処
理した後、弗化水素を減圧留去し、残留物をエチルエー
テルで洗浄後、目的物をIN酢酸501t1で抽出し、
これをアンバーライトIRA−400(酢酸型)のカラ
ム(2Z5cm)でイオン交換し、溶出液を凍結乾燥し
た。これを30%酢酸10j112にとかし、セファデ
ックスG−50(ファルマシア社製;カラム: 5 X
110cm; 溶出H:30%酢酸)によるゲルろ過
にて精製し、部分精製品267 mgを得た。これを0
.IN酢酸20雌にとかし、CM−52(ワットマン社
製;カラム2.2x18cm;溶出法:0.01M酢酸
アンモニウム水溶液(pH4,5)−0,15M酢酸ア
ンモニウム水溶液(pH6,5)によるグラジェント溶
出)によるイオン交換クロマトグラフィーにて精製し目
的物を得た。This was mixed with 1.34d of anisole and 1.34d of dimethyl sulfide.
, 34- in hydrogen fluoride 13d at 0°C for 160 minutes, the hydrogen fluoride was distilled off under reduced pressure, the residue was washed with ethyl ether, and the target product was extracted with IN acetic acid 501t1,
This was ion-exchanged using an Amberlite IRA-400 (acetic acid type) column (2Z5 cm), and the eluate was freeze-dried. This was dissolved in 30% acetic acid 10j112, and Sephadex G-50 (manufactured by Pharmacia; column: 5X
The product was purified by gel filtration using 110 cm (elution H: 30% acetic acid) to obtain 267 mg of a partially purified product. Set this to 0
.. Dissolve in 20% IN acetic acid, CM-52 (Whatman Co., Ltd.; column 2.2 x 18 cm; elution method: gradient elution with 0.01 M ammonium acetate aqueous solution (pH 4,5) - 0.15 M ammonium acetate aqueous solution (pH 6,5). ) to obtain the desired product.
収量 213mg
Rf O,50(n−ブタ/−ル:ヒリシン:酢酸:
水=5:5:1:4)
アミノ酸分析値: Asp 1.98; Gly
1.00; LeuO,99: Tyr O,9
7; Phe 1.00: Lys O,98
; Pr。Yield 213 mg Rf O,50 (n-but/-ru:hyricin:acetic acid:
Water = 5:5:1:4) Amino acid analysis value: Asp 1.98; Gly
1.00; LeuO,99: TyrO,9
7; Phe 1.00: Lys O, 98
;Pr.
2.1O
(2) H−Leu−Pro−Leu−Pro−Va
l−3er−Ser−Asp−OH(ヒト (ウシ)
aF G F (133−140))の製造アプライド
・バイオシステムズ社430A型全自動ペプチド合成機
を用い、Boc−Asp(OBz12)−PAM樹脂0
、5 mmoleより出発し、以下のアミノ酸を順次
、縮合及び脱Boc反応に付した。2.1O (2) H-Leu-Pro-Leu-Pro-Va
l-3er-Ser-Asp-OH (human (bovine)
Production of aF G F (133-140)) Boc-Asp (OBz12)-PAM resin 0 using an Applied Biosystems Model 430A fully automatic peptide synthesizer.
, 5 mmole, the following amino acids were sequentially subjected to condensation and de-Boc reaction.
Boc−3et(Bz12)−0H
Boc−3et(Bz(2)−0H
Boa−Val−OH
Boc−Pro−OH
Boc−Leu−OR
Boc−Pro=OR
Boc−Leu−OR
斯くして、Boc−Leu−Pro−Leu−Pro−
Vat−3et(Bze)Set(Bzff) −As
p(OBz12)−PAM樹脂1.lOgを得た。Boc-3et(Bz12)-0H Boc-3et(Bz(2)-0H Boa-Val-OH Boc-Pro-OH Boc-Leu-OR Boc-Pro=OR Boc-Leu-OR Thus, Boc-Leu -Pro-Leu-Pro-
Vat-3et(Bze)Set(Bzff)-As
p(OBz12)-PAM resin 1. Obtained lOg.
このうち500mgをアニソール0,6d及びジメチル
スルフィド0.6j!I2を含む弗化水素6.Od中で
O’C,60分間処理した後、弗化水素を減圧留去し、
残留物をエチルエーテルで洗浄後、目的物をIN−酢酸
40m12で抽出し、アンバーライ1−IRA−400
(酢酸型)のカラム(2X5cm)でイオン交換し、溶
出液を凍結乾燥した。これをIN酢酸5mにとかし、セ
ファデックスLH−20(ファルマンア社製;カラム:
2.5 X l 25cm;溶出液:lN酢酸)によ
るゲルろ過にて精製して目的物を得た。Of this, 500mg of anisole 0.6d and dimethyl sulfide 0.6j! Hydrogen fluoride containing I26. After treatment with O'C in Od for 60 minutes, hydrogen fluoride was distilled off under reduced pressure,
After washing the residue with ethyl ether, the target product was extracted with 40ml of IN-acetic acid, and
(acetic acid type) column (2×5 cm), and the eluate was lyophilized. This was dissolved in 5 m of IN acetic acid, and Sephadex LH-20 (manufactured by Farmana Co., Ltd.; column:
The desired product was purified by gel filtration using 2.5×1 25 cm; eluent: IN acetic acid).
収量 120mg
Rr O,43(酢酸エチル:ブタ/−ル:酢酸水−1
:1:l:1)
アミノ酸分析値:^sp 1.00; Ser 1.
95; Pr。Yield: 120 mg Rr O, 43 (ethyl acetate:buta/l:acetic acid water
:1:l:1) Amino acid analysis value: ^sp 1.00; Ser 1.
95; Pr.
2.06; Val O,98; Leu
2.01参考例3 (アミン末端欠失型組換え型ヒ)
aFGFの調製)
(a)発現プラスミドの構築
化学合成されたヒトaFGFのcDNA(第1図)をp
UCl 8 [Methods in Enzymol
ogy、 l O1゜2O−78(1983)]に組
み込んだプラスミドpTB917をS ma I (第
6図)あるいはPvuIl(第7図)で切断した後、T
4DNAリガーゼによりNcolリンカ−5’−CCA
TGG−3’を結合させた。これらのプラスミドをNc
olおよびBamHIで切断し、0.41kbt5るい
+10.3kbのDNA断片を調製した。ベクターDN
AにはT7フアージのφ10プロモーターを有するpE
T 8 C[5tudier、 F、 W、 (Br
ookhaven National Labs U。2.06; Val O, 98; Leu
2.01 Reference Example 3 (Amine terminal deleted recombinant human)
Preparation of aFGF) (a) Construction of expression plasmid The chemically synthesized cDNA of human aFGF (Fig. 1) was
UCl 8 [Methods in Enzymol
After cutting the plasmid pTB917, which had been integrated into SmaI (Fig. 6) or PvuIl (Fig. 7), into T.
Ncol linker-5'-CCA by DNA ligase
TGG-3' was conjugated. These plasmids were converted into Nc
A DNA fragment of 0.41 kb5+10.3 kb was prepared by cutting with Ol and BamHI. Vector DN
A contains pE with the T7 phage φ10 promoter.
T 8 C[5tudier, F, W, (Br
ookhaven National Labs U.
S、A)より分与を受けた。]を用いた。pET8cを
NcolおよびBamHIで切断し、そこに先の0゜4
1kbあるいは0.3kbのDNA断片をT4DNAリ
ガーゼにより組み込んでpTB1069(第6図)ある
いはpTB1070(第7図)をそれぞれ得た。Received a donation from S.A. ] was used. Cut pET8c with Ncol and BamHI and insert the 0°4
A 1 kb or 0.3 kb DNA fragment was integrated using T4 DNA ligase to obtain pTB1069 (Figure 6) or pTB1070 (Figure 7), respectively.
(b)アミノ末端欠失型ヒトaFGF cDNAの大腸
菌での発現
大腸菌MM294株に、T7フアージのRNAホリメラ
ーゼ遺伝子を組み込んだλファージDE3 [5tud
ier、 F、 W、 ら+ J、 Mo1
. Biol : 189 +11:3−130(
1986)]を溶原化させ、さらにT7フアージのリゾ
チーム遺伝子をもつプラスミ ドpL ysS (
Studier、 F、 胃 ら、
J、 Mo1. Biol。(b) Expression of amino-terminal deleted human aFGF cDNA in Escherichia coli λ phage DE3 [5tud
ier, F, W, et al + J, Mo1
.. Biol: 189 +11:3-130(
1986)] was lysogenized, and a plasmid pL ysS (
Studier, F., et al.
J, Mo1. Biol.
189 : 113−130(1986))を導入し、
大腸菌(Escherichia coli)MM 2
94 (D E 3 )/pLysS株を作製した。こ
の大腸菌株にpT81069あるいはpTB1070を
導入し大腸菌MM294 (DE 3)/pLysS、
pTB 1069(I FO14937、FERM
BP−2600)あるいは大腸菌〜1M294(DE3
)/I)LysS、pTB1070(IFO14938
,FERM BP2601)をそれぞれつくった。こ
れらの菌をそれぞれ35μg/dアンピシリン、10μ
g/dクロラムフェニコールを含む培地て37℃て培i
L、濁度かKlett 120になったときイソプロピ
ルβD−チオガラクトンドを最終濃度が0.5mMにな
るように添加し、更に2時間培養を継続した。189: 113-130 (1986)),
Escherichia coli MM 2
94 (D E 3 )/pLysS strain was created. By introducing pT81069 or pTB1070 into this E. coli strain, E. coli MM294 (DE 3)/pLysS,
pTB 1069 (I FO14937, FERM
BP-2600) or Escherichia coli ~1M294 (DE3
)/I) LysS, pTB1070 (IFO14938
, FERM BP2601). These bacteria were treated with 35 μg/d ampicillin and 10 μg/d, respectively.
Cultured at 37°C in a medium containing g/d chloramphenicol.
When the turbidity reached Klett 120, isopropyl βD-thiogalactone was added to a final concentration of 0.5 mM, and the culture was continued for an additional 2 hours.
菌体を遠心により集め、水冷したフォスフェートバ、フ
ァードセライン(PBS)で洗った後書集菌し使用時ま
で一20°Cに保管した。Bacterial cells were collected by centrifugation, washed with water-cooled phosphate bath, fardoserine (PBS), collected, and stored at -20°C until use.
(c)アミノ末端5残基欠失型ヒ)aFGFの精製75
d培養から集めた大腸菌MM294(DE3)pLys
S、pTB1069(IFO14937゜FERM
BP−2600)の菌体をIQ、d(7)水冷10mM
Tris−HCC(pH7,4)、 10mMEDT
A、0.2M NaC1,10%シヨ糖、0.25mM
フェニルメチルスルホニルフルオライド(PMSF)に
懸濁し、卵白リゾチームを0 、5 mg/〆となる様
に添加した。1時間水中に放置後37°Cて5分間イン
キュベートし、水冷下で超音波処理を行い、遠心(SO
RVALL、18Krpm、30分。(c) Purification of aFGF lacking 5 amino terminal residues 75
d E. coli MM294 (DE3) pLys collected from culture.
S, pTB1069 (IFO14937°FERM
IQ, d(7) water-cooled 10mM
Tris-HCC (pH 7,4), 10mMEDT
A, 0.2M NaCl, 10% sucrose, 0.25mM
It was suspended in phenylmethylsulfonyl fluoride (PMSF), and egg white lysozyme was added at a concentration of 0.5 mg/filter. After being left in water for 1 hour, incubated at 37°C for 5 minutes, sonicated under water cooling, and centrifuged (SO
RVALL, 18K rpm, 30 minutes.
4°C)して上清を得た。この上清を20 mM T
risHCl2(pH7,4)で平衡化したヘパリンH
PLCカラム(径0.8cmX 5 cm)にかけた。4°C) to obtain a supernatant. This supernatant was diluted with 20 mM T
Heparin H equilibrated with risHCl2 (pH 7,4)
It was applied to a PLC column (0.8 cm in diameter x 5 cm).
カラムを20mM Tris−HCl2(+)H7,4
)、0.6M NaCQで洗浄後、OMから2MのN
aCQ直線的濃度勾配(流速1m/min、勾配時間1
時間)をかけ、ld毎に分画した。溶出された画分28
−32を集めた(第8図)。以上の操作により第14図
に示すアミノ酸配列を有するN末5残基欠失型aFGF
ムティン(以下、rN5欠aFGFJと称することもあ
る。)を4 、2 mg得た。Coat the column with 20mM Tris-HCl2(+)H7,4
), after washing with 0.6 M NaCQ, 2 M N from OM
aCQ linear concentration gradient (flow rate 1 m/min, gradient time 1
time) and fractionated every ld. Eluted fraction 28
-32 were collected (Figure 8). By the above operations, the N-terminal 5 residue-deleted aFGF having the amino acid sequence shown in FIG.
4.2 mg of mutin (hereinafter sometimes referred to as rN5-deficient aFGFJ) was obtained.
(d)アミノ末端43残基欠失型ヒトaFGFの精製
12!M培養から集めた大腸菌MM294(DE3)/
pLyss、pTB1070(IFO14938、FE
RM 、BP−2601)の菌体を1042の水冷10
mM Tris−HCl2(pH7,4)、 l Om
MEDTA、0.2M NaCQ、10%シヨ糖、0.
25mMPMSFに懸濁し、卵白リゾチームを0,5釦
g/IIt1となる様に添加した。1時間氷中に放置後
37°Cで5分間保温し、水冷下に超音波処理を行い、
遠心した。沈殿を2 M N aCQに懸濁した後再び
遠心して得られた沈殿を、15j112の6M尿素。(d) Purification of human aFGF with amino terminal 43 residues deleted 12! E. coli MM294 (DE3) collected from M culture
pLyss, pTB1070 (IFO14938, FE
RM, BP-2601) cells were cooled with water at 1042
mM Tris-HCl2 (pH 7,4), l Om
MEDTA, 0.2M NaCQ, 10% sucrose, 0.
It was suspended in 25mM PMSF, and egg white lysozyme was added at a concentration of 0.5 g/IIt1. After leaving it in ice for 1 hour, it was kept warm at 37°C for 5 minutes, and subjected to ultrasonication while cooling with water.
Centrifuged. The precipitate was suspended in 2 M NaCQ and centrifuged again, and the resulting precipitate was added to 15j112 of 6 M urea.
20mM Tris−HCC(pH7,4)、10mM
ジチオスレイトル(DTT)に懸濁し、時々かくはんし
ながら水上で3時間保温した。この溶液を遠心した後の
上清を、3M尿素、 20 mM T ris −HC
Q(pH7,4)で平衡化したQ−セファロースカラム
(径2.5cmX8cm)にかけた。カラムを平衡化に
用いたバッファーで洗浄した後、OMからIMのNaC
Q直線的濃度勾配を流速0.6m/分で160分に亘っ
てかけ、2.5d毎に分画した(第9図)。20mM Tris-HCC (pH 7,4), 10mM
It was suspended in dithiothreitol (DTT) and kept warm on water for 3 hours with occasional stirring. After centrifuging this solution, the supernatant was mixed with 3M urea, 20mM Tris-HC.
It was applied to a Q-Sepharose column (diameter 2.5 cm x 8 cm) equilibrated with Q (pH 7,4). After washing the column with the buffer used for equilibration, the OM to IM NaC
A Q linear concentration gradient was applied over 160 minutes at a flow rate of 0.6 m/min and fractionated every 2.5 d (Figure 9).
溶出された画分14−19を集め2Qの20mMTri
s−HC(2(pH7,4)、5i+M DTTに対し
て一晩透析した後、3Qの20mM Tris−HCl
2(pH7,4)、1mM DTTに対して3時間透析
した。以上の操作により第15図に示すアミノ酸配列を
有するN末43残基欠失型aFGFムティン(以下、[
N43欠aFGFJと称することもある。)を3.2m
g得た。The eluted fractions 14-19 were collected and treated with 20mM Tri of 2Q.
s-HC (2 (pH 7,4), 5i+M after overnight dialysis against DTT, 3Q 20mM Tris-HCl
2 (pH 7,4), and dialyzed against 1 mM DTT for 3 hours. By the above operations, the N-terminal 43 residue-deleted aFGF mutin (hereinafter referred to as [
It is also called N43-deficient aFGFJ. ) 3.2m
I got g.
実施例1 (1) 免疫。Example 1 (1) Immunity.
BALB/cマウス(♀8週令)に対し生理食塩水0.
3dに溶解させた100μgの抗原ヒトaFGF(参考
例1で得られたもの。)と同量のフロイント完全アジュ
バント(Difco社)を混合して皮下に注射した。3
週間後に同量の抗原と0.3dのフロインド不完全アジ
ュバントの混合物を皮下に再投与した。さらに3週間後
に同様の追加免疫を行い、その2週間後に生理食塩水に
溶かした100μgのヒトaF G Fを静脈内に接種
した。BALB/c mice (♀8 weeks old) were given 0.0% physiological saline.
100 μg of the antigen human aFGF (obtained in Reference Example 1) dissolved in 3d and the same amount of complete Freund's adjuvant (Difco) were mixed and injected subcutaneously. 3
A week later, a mixture of the same amount of antigen and 0.3 d of Freund's incomplete adjuvant was re-administered subcutaneously. Further 3 weeks later, a similar booster immunization was performed, and 2 weeks later, 100 μg of human aFGF dissolved in physiological saline was intravenously inoculated.
(2)細胞融合:
上記(1)で得られた免疫マウスより、抗原最終投与の
3日後牌臓を摘出し、細胞融合に用いる細胞を得た。こ
の細胞は、イスコツ培地とハムF12培地をl:1の比
率で混合した培地(以下■H培地と略す)に懸濁した。(2) Cell fusion: Three days after the final administration of the antigen, the spleen was removed from the immunized mouse obtained in (1) above to obtain cells used for cell fusion. These cells were suspended in a medium (hereinafter abbreviated as ``H medium'') in which Iskot's medium and Ham's F12 medium were mixed at a ratio of 1:1.
マウスミエローマ細胞P3−X63−Ag−8Ulは1
0%ウシ胎児血清を含むRPMI 1640培地で5
%炭酸ガス、95%空気の条件で継代培養した。Mouse myeloma cells P3-X63-Ag-8Ul are 1
5 in RPMI 1640 medium containing 0% fetal bovine serum.
Subculture was carried out under conditions of % carbon dioxide gas and 95% air.
細胞融合は、ケーラーおよびミルスタインらが確立した
方法[ケーラー、G、およびミルスタイン。Cell fusion is performed by the method established by Köhler and Milstein et al. [Kohler, G., and Milstein.
C,; 不イチ+−(Nature) 25−β−,4
95(1975)コに準じて行った。上記ミエローマ細
胞3.2×107個と上述した方法で得られた免疫され
たリンパ球1.6X 10”個を混合、遠沈し、0.3
7のIH培地に溶解した45%ポリエチレングリコール
6000(以下PE06000)を滴下した。C,; Fuichi+-(Nature) 25-β-,4
95 (1975). 3.2 x 107 myeloma cells and 1.6 x 10" immunized lymphocytes obtained by the above method were mixed, centrifuged, and 0.3
45% polyethylene glycol 6000 (hereinafter referred to as PE06000) dissolved in No. 7 IH medium was added dropwise.
PEG6000溶液は、予め37°Cに温め、ゆっくり
と滴下した。8分後37℃に予温したIH培地1分間に
0.53112ずつ加え10dとした後、室温で600
回転15分遠心し上清を除去した。この細胞沈澱物を2
0%仔牛血清を含むI H培地200dに懸濁し、96
ウエルマイクロプレート(ヌンク社)に100μgずつ
960ウェル植えつけた。1日後、HAT(ヒボキサン
チン1x10−’M、アミノプテリン4 x 10−7
M、チミジン1.6 X 10−’M)を含んだIH培
地(20%仔牛血清含有)(以下HAT培地と称する。The PEG6000 solution was preheated to 37°C and slowly added dropwise. After 8 minutes, add 0.53112 per minute to IH medium prewarmed to 37°C to make 10d, then add 600% at room temperature.
The mixture was centrifuged for 15 minutes and the supernatant was removed. This cell precipitate is
Suspended in IH medium 200d containing 0% calf serum,
100 μg each was plated in 960 wells of a well microplate (Nunc). One day later, HAT (hyboxanthin 1 x 10-'M, aminopterin 4 x 10-7
IH medium (containing 20% calf serum) (hereinafter referred to as HAT medium) containing M, thymidine 1.6 x 10-'M).
)を各ウェルに100μσずつ添加し、さらに3日おき
に、培地の1/2量をHAT培地と交換した。このよう
にして生育した細胞は雑種細胞である。) was added to each well in an amount of 100 μσ, and 1/2 the volume of the medium was replaced with HAT medium every 3 days. Cells grown in this manner are hybrid cells.
(3)抗体産生細胞の検索:
参考例1記載の方法で精製されたりコンビナンドaFG
Fを10dg/mになるよう0.O1M炭酸緩衝液(p
H8,5)で希釈し、その100μQを96、ウェルイ
ムノプレート(ヌンク社製)の各ウェルに入れ4℃−夜
装置し、固相にaF G Fを結合させた。0.15M
NaCcを含有する0、01Mリン酸緩衝液(pH7,
0)で洗浄した後、余剰の結合部位をふさ(ため、1%
ウシ血清アルブミン(BSA)を含有する0、oIMリ
ン酸緩衝液ヲ200A1i2ずつウェルに注入して、使
用時まて冷所に保存した。以上のようにして得られたヒ
トaFGFを結合した96ウエルイムノプレートに、雑
種細胞培養土浦を100μQずつ加え室温で2時間イン
キュベートした。培養上清を除去、洗浄後2次抗体とし
て西洋ワサビペルオキシターゼ(HRP )標識抗マウ
スIgGヤキ抗体(カッベル社)を加え室温で2時間イ
ンキュベートした。2次抗体を除去し、よくウェルを洗
浄した後、ベルオキ/ターセ基質溶?夜(002%H,
02と0.15%0 7 エニL/ンジアミンを含むp
H5,5のクエン酸ナトリウム緩衝液)を100μQ加
え、25°Cて10分反応させ、2N−硫酸100μg
を加えることにより酵素反応を停止した後、マイクロプ
レート用自動比色計(MTP−32,コロナ社製)を用
い、492nmにおける吸光度を測定した(ELISA
法)。この方法により12ウエルに結合抗体の存在か観
察された。(3) Search for antibody-producing cells: Purified by the method described in Reference Example 1 or combined aFG
F to 10dg/m. O1M carbonate buffer (p
H8,5), and 100 μQ of the solution was placed in each well of a 96-well immunoplate (manufactured by Nunc) and incubated at 4° C. overnight to bind aFGF to the solid phase. 0.15M
0.01M phosphate buffer containing NaCc (pH 7,
After washing with 1%
200A1i2 of 0 and oIM phosphate buffer containing bovine serum albumin (BSA) were injected into each well and stored in a cool place until use. To the 96-well immunoplate bound with human aFGF obtained as described above, 100 μQ each of hybrid cell culture Tsuchiura was added and incubated at room temperature for 2 hours. After removing the culture supernatant and washing, a horseradish peroxidase (HRP)-labeled anti-mouse IgG Yaki antibody (Kabbell) was added as a secondary antibody, and the mixture was incubated at room temperature for 2 hours. After removing the secondary antibody and rinsing the wells thoroughly, add Veloki/Tase substrate solution. Night (002%H,
02 and 0.15% 07 p containing L/N diamine
Add 100 μQ of sodium citrate buffer (H5.5), react at 25°C for 10 minutes, and add 100 μg of 2N-sulfuric acid.
After stopping the enzyme reaction by adding
law). By this method, the presence of bound antibodies in 12 wells was observed.
(4)雑種細胞のクローニング:
これらのウェル中の細胞を、1ウエルあたり0.5個と
なるように、予め5XIO5個/ウェルのマウス胸腺細
胞をフィーター細胞としてまいておいた96ウエルマイ
クロプレートにまき、クローニングを行った。その結果
、それぞれのウェルから代表的なりローン細胞各1を得
、合計12のクローン細胞、すなわち、AFi52 (
IFO50204、FERM BP−2607)。(4) Cloning of hybrid cells: The cells in these wells were placed in a 96-well microplate in which 5XIO5 cells/well of mouse thymocytes were seeded as feeder cells in advance at 0.5 cells per well. Sowing and cloning. As a result, one representative clone cell was obtained from each well, and a total of 12 clone cells, namely AFi52 (
IFO50204, FERM BP-2607).
API−81(IFO50205,FERMBP−26
81)、API−113,AFL114(IFO502
06,FERM BP2608)、HaFIHll(
IFO50198)HaF IF5(I FO5020
0)、HaF IC10(IFO50197,FERM
BP−2605)、HaF2F9(I FO502
01)、HaF2E’6(IFO50202,FERM
BP2606)、HaF2B7(I FO5019
9)。API-81 (IFO50205, FERMBP-26
81), API-113, AFL114 (IFO502
06, FERM BP2608), HaFIHll (
IFO50198) HaF IF5(IFO5020
0), HaF IC10 (IFO50197, FERM
BP-2605), HaF2F9 (IFO502
01), HaF2E'6 (IFO50202, FERM
BP2606), HaF2B7 (I FO5019
9).
HaFIAlo(IFO50203)およびHaFlF
9(IFO50196)が得られた。HaFIAlo (IFO50203) and HaFIF
9 (IFO50196) was obtained.
(5)抗体の製造:
上記(4)においてクローニングによって得うれたハイ
ブリドーマクローンAPI−52,AFL8]、AFL
113.AFL 114.HaFIFII、Ha
FIF6.HaFIClo、HaF2F9.)(aF2
E6.HaF2B7.HaF lAl0およびHaFI
F9をそれぞれ、あらかじめ05dのミネラルオイルを
腹腔内に投与しておいたB A L B / cマウス
の腹腔内に1匹あたりlXl06個接種す6ことにより
腹水化を行なった。ハイブリドーマを腹腔に投与して1
o日後、腹水を採取した。得られたそれぞれの腹水約1
0ばから、ステーリンらEツヤ−ナル オブ バイオロ
ノカルケミストリー、256.9750−9754(1
981)Eの方法に準してモノクローナル抗体を精製し
た。まず腹水からフィブリン様物質を除去するため10
.000回転15分間遠心した後、リン酸緩衝液−食塩
水(PBS:8.1mM−Na、HPO,、■、5rn
M KHtPO,、27mM KCQ、137mM
NaC(!、pl(7,2)で280nmの紫外部吸収
(A tso)か12〜14の値を示す濃度に希釈した
。希釈後サンプルに飽和硫酸アンモニウム溶液を47%
の濃度になるように加え、4°Cて撹拌しながら60分
間塩析を行ない、その後遠心(10,000回転、15
分間)を行なって沈澱物を得た。沈澱物を50mMNa
CQ含有20mM)!Jス緩衝溶液(pH7,9)に溶
遊し、同溶液2Qに対して透析を行なった。2時間後、
2σの新しい同じ透析液に換え、さらに15時間透析を
行なった。透析後、沈澱を除去するため10,000回
転15分間遠心を行ない、上清をA2.。の値か20〜
30の濃度になるように調整した。このサンプルを充分
量の50 mM −N aCQ含有トリス緩衝溶液て平
衡化した20dのDEAEセルロースカラム(ワットマ
ンD E 、、)にかけ、50mMN a CQ含有ト
リス緩衝溶液でよ(洗った後、50mM 500mM
NaC(!を含む同緩衝液の濃度勾配塩溶液を用いて
1 、5 m111分の流出速度で分画を行なって素通
り分画を濃縮し、それぞれの精製モノクローナル抗体A
F 1−52. AF l−81゜API−113,A
FL 114.HaFIHll、HaF IF5.H
aF IC10,HaF2F9゜HaF2E6.HaF
2B7.HaFIAloおよびHaFIF9を得た。(5) Production of antibodies: Hybridoma clone API-52, AFL8 obtained by cloning in (4) above], AFL
113. AFL 114. HaFIFII, Ha
FIF6. HaFIClo, HaF2F9. )(aF2
E6. HaF2B7. HaF lAl0 and HaFI
F9 was injected intraperitoneally into BALB/c mice, which had previously been intraperitoneally administered with 05d of mineral oil, to induce ascites formation by injecting 1×106 mice per mouse into ascitic fluid. After administering the hybridoma into the peritoneal cavity,
After o days, ascitic fluid was collected. Each ascites obtained approx.
Obakara, Staelin et al.
Monoclonal antibodies were purified according to the method of 981)E. First, to remove fibrin-like material from ascites, 10
.. After centrifuging at 000 rpm for 15 minutes, phosphate buffer-saline solution (PBS: 8.1mM-Na, HPO, 5rn
M KHtPO, 27mM KCQ, 137mM
The sample was diluted with NaC (!, pl(7,2) to a concentration exhibiting an ultraviolet absorption (Atso) of 12 to 14 at 280 nm. After dilution, a 47% saturated ammonium sulfate solution was added to the sample.
salting out for 60 minutes with stirring at 4°C, and then centrifuged (10,000 rpm, 15°C).
) to obtain a precipitate. The precipitate was diluted with 50mM Na.
Contains CQ 20mM)! The product was dissolved in JS buffer solution (pH 7, 9) and dialyzed against 2Q of the same solution. 2 hours later,
The dialysate was replaced with the same new 2σ dialysate, and dialysis was continued for an additional 15 hours. After dialysis, centrifugation was performed at 10,000 rpm for 15 minutes to remove the precipitate, and the supernatant was transferred to A2. . The value of 20~
The concentration was adjusted to 30. This sample was applied to a 20 d DEAE cellulose column (Whatman DE, ) equilibrated with a sufficient amount of Tris buffer containing 50 mM NaCQ, and then washed with Tris buffer containing 50 mM NaCQ (after washing, 500 mM 500 mM
Fractionation was performed using a concentration gradient salt solution of the same buffer containing NaC (!) at a flow rate of 1.5 ml/111 min, the flow-through fraction was concentrated, and each purified monoclonal antibody A
F 1-52. AF l-81゜API-113,A
FL 114. HaFIHll, HaFIF5. H
aF IC10, HaF2F9゜HaF2E6. HaF
2B7. HaFIAlo and HaFIF9 were obtained.
抗体の純度の確認にはラエムリらの方法〔ネイチャー、
227.680−685(19yo))に準じて5DS
−ポリアクリルアミドゲル電気泳動を用いた。すなわち
、硫安塩析し、DEAEセルロースカラムで素通りした
分画を、2−メルカプトエタノールで還元し、アクリル
アミド濃度lO%のケルを用いて180ポルトで2.5
時間泳動を行なった。その結果、いずれのモノクローナ
ル抗体も分子ff152に前後にH鎖、28に前後にL
鎖の2つのバンドが認められた。To confirm the purity of antibodies, the method of Laemli et al. [Nature,
5DS according to 227.680-685 (19yo))
- using polyacrylamide gel electrophoresis. That is, the fraction that passed through the DEAE cellulose column after salting out with ammonium sulfate was reduced with 2-mercaptoethanol, and the fraction was reduced to 2.5 at 180 ports using Kel with an acrylamide concentration of 10%.
Time migration was performed. As a result, all monoclonal antibodies had H chains before and after molecule ff152 and L chains before and after 28.
Two bands of strands were observed.
(6)抗体のサブクラスの測定:
抗体のサブクラスは次の方法で測定した。即ち参考例1
で得られたりコンビナンドaFGFをコートした96ウ
エルイムノプレートにクローン化されたそれぞれのハイ
プリドーマ培養上清を10OμQ入れ室温で2時間イン
キュベートした。培養上清を除去、洗浄後ウサギ抗マウ
スIgG1゜I gG 2 a、 I gG 2 b
、 I gG 3 、 K鎖、λ鎖に対する抗体(カ
ッベル社)をそれぞれ100μσ入れ室温で2時間イン
キュベートした。それぞれの抗体を除去、洗浄後HRP
標識ヤギ抗ウサつIgG抗体(カッベル社)を加え室温
で2時間インキュベートした。標識抗体を除去し、よく
洗浄した後、上記(3)記載の方法で酵素反応を行ない
吸光度を測定した。その結果、モノクローナル抗体AP
I−52およびAF 1−81の2種はIgG2bK型
、他の10種のモノクローナル抗体は全てIgGIK型
のサブクラスであることが判明した。(6) Measurement of antibody subclass: Antibody subclass was measured by the following method. That is, reference example 1
100 μQ of each hybridoma culture supernatant obtained in the above or cloned into a 96-well immunoplate coated with combinant aFGF was added and incubated at room temperature for 2 hours. After removing the culture supernatant and washing, remove rabbit anti-mouse IgG1゜IgG2a, IgG2b.
, IgG 3 , K chain, and λ chain antibodies (Kabbell) were added at 100 μσ and incubated at room temperature for 2 hours. HRP after removing each antibody and washing
A labeled goat anti-rabbit IgG antibody (Cabbell) was added and incubated at room temperature for 2 hours. After removing the labeled antibody and washing thoroughly, an enzyme reaction was performed by the method described in (3) above, and the absorbance was measured. As a result, monoclonal antibody AP
It was found that two types, I-52 and AF 1-81, were of the IgG2bK type, and the other 10 types of monoclonal antibodies were all of the IgGIK type subclass.
(7)抗体の認識部位の検討:
抗体がaF G Fのどの部位を認識するのかにつき、
次の方法で検討した。(7) Examination of antibody recognition site: Regarding which site of aFGF the antibody recognizes,
We investigated using the following method.
参考例1で得られたrhaF G F 、参考例2で得
られたヒトaF G Fの1〜9の部分ペプチド(ヒト
aF G F (1−9))、およびヒトaFGFの1
33〜140の部分ペプチド(ヒトaFGF(133−
140))、EP公開第237.966号公報に記載の
方法で得られたりコンビナンドヒト塩基性線維芽細胞成
長因子(rhbF G F )および参考例3で得られ
たN5欠aFGFおよびN43欠a FGFをそれぞれ
10μg/ll12になるようO,0,1M炭酸緩衝液
(pH8,5)で希釈し、その100μQを96ウエル
イムノプレートの各ウェルに入れ4℃−夜装置して固相
に各抗原を結合させた。0.15MNaCl2を含有す
る0、01Mリン酸緩衝液(pH7,0)で洗浄した後
、1%ウシ血清アルブミン・(BSA)を含有する0、
01Mリン酸緩衝液を200μCずつウェルに注入して
、使用時まで冷所に保存した。以上のように調製したプ
レートに、上記(4)て得られた12種のクローン細胞
の培養上清を100μσずつ分注し、上記(3)記載の
方法と同様の方法てERAを行なったところ、第9表に
示す結果が得られた。rhaFGF obtained in Reference Example 1, partial peptides 1 to 9 of human aFGF obtained in Reference Example 2 (human aFGF (1-9)), and human aFGF 1
Partial peptide 33-140 (human aFGF (133-
140)), combined human basic fibroblast growth factor (rhbFGF) obtained by the method described in EP Publication No. 237.966, and N5-deficient aFGF and N43-deficient aFGF obtained in Reference Example 3. FGF was diluted with O, 0, 1M carbonate buffer (pH 8,5) to a concentration of 10 μg/ll12, and 100 μQ of the diluted solution was placed in each well of a 96-well immunoplate at 4°C overnight to incubate each antigen on the solid phase. were combined. After washing with 0.01M phosphate buffer (pH 7.0) containing 0.15M NaCl2, 0.01M phosphate buffer (pH 7.0) containing 1% bovine serum albumin (BSA) was used.
200 μC of 01M phosphate buffer was injected into each well and stored in a cool place until use. The culture supernatants of the 12 types of cloned cells obtained in (4) above were dispensed into 100 μσ portions onto the plates prepared as above, and ERA was performed using the same method as described in (3) above. , the results shown in Table 9 were obtained.
第9表に示した結果から、モノクローナル抗体API−
52はaFGFの1−5のアミノ酸シークエンス、モノ
クローナル抗体A P I −113゜IHIl、IF
5.ICl0.2F9,287の6種はaFGFの6−
43のアミノ酸シークエンス、モノクローナル抗体AP
I−114,2E6゜lA10.1F9の4種はaFG
Fの44−132のアミノ酸シークエンス内に存在する
抗原決定基を認識するものと考えられた。モノクローナ
ル抗体API−81はaFGFのwhole mole
culeを認識するが、N5欠aFGFを認識せず、ま
たaFGFの1−9のアミノ酸シークエンスからなるペ
プチドも認識しないことから、認識部位の特定化ができ
なかった。From the results shown in Table 9, monoclonal antibody API-
52 is the 1-5 amino acid sequence of aFGF, monoclonal antibody API-113゜IHIl, IF
5. Six species of ICl0.2F9,287 are 6-
43 amino acid sequence, monoclonal antibody AP
I-114, 2E6゜A10.1F9 are aFG
It was thought that the antigenic determinant present within the 44-132 amino acid sequence of F. Monoclonal antibody API-81 is a whole mole of aFGF.
cule, but does not recognize N5-deficient aFGF, nor does it recognize a peptide consisting of the 1-9 amino acid sequence of aFGF, so the recognition site could not be specified.
(以下余白)
実施例2
(1)抗体の酵素標識
精製API−52抗体(4,2mg/ 1.41II2
)にS−アセチルメルカプトサクシニックアンハイドラ
イドを0.4mg/mとなるように加え、室温で1時間
反応させSH基を導入した。トリス塩酸緩衝液(pH7
,0)、EDTA、 ヒドロキシルアミンをそれぞれ
15mM、1.5mM、O,15mMになるように加え
、未反応分を不活化した後、セファデックスG−25カ
ラムクロマトグラフイーで分離し、SH基が導入された
抗体画分を得た。(Left below) Example 2 (1) Enzyme-labeled and purified antibody API-52 antibody (4.2 mg/1.41II2
) was added with S-acetylmercaptosuccinic anhydride at a concentration of 0.4 mg/m, and reacted at room temperature for 1 hour to introduce an SH group. Tris-HCl buffer (pH 7)
, 0), EDTA, and hydroxylamine to be 15mM, 1.5mM, and 15mM, respectively, to inactivate unreacted components, and then separated by Sephadex G-25 column chromatography to remove SH groups. The introduced antibody fraction was obtained.
一方、ホースラディノシュベルオキシターゼ(HRP)
10n+gを含む0.1Mリン酸ナトリウム溶液(pH
7,0)1.4dに、1.5n+g/dとなるようにN
−(γ−マレイミドブチリルオキシ)サクシニミドを加
え、室温で1時間反応させることによりマレイミド基を
導入した。マレイミド化HRPはセファデックスG−2
5カラムクロマトグラフイーで分離した。分離したマレ
イミド化HRPとSH基の導入された抗体を混合し、4
°C−夜、結合反応を行った。反応後ウルトロゲルΔc
t\44カラムクロマトグラフィーで分離し、HRP標
識AF L−52抗体を得た。On the other hand, horseradinosuberoxidase (HRP)
0.1M sodium phosphate solution containing 10n+g (pH
7,0) N to 1.4d so that it becomes 1.5n+g/d
-(γ-maleimidobutyryloxy)succinimide was added and the mixture was reacted at room temperature for 1 hour to introduce a maleimide group. Maleimidated HRP is Sephadex G-2
Separation was performed using 5-column chromatography. Mix the separated maleimidized HRP and the antibody into which SH groups have been introduced, and
Coupling reactions were performed overnight at °C. Ultrogel Δc after reaction
Separation was performed by t\44 column chromatography to obtain HRP-labeled AF L-52 antibody.
(2)抗体結合固相の作製
精¥AAFI−sl、API−114,ICl0抗体を
それぞれ10ug/dになるよう0.01M炭酸緩衝液
(pH8,5)で希釈し、それぞれ単独または3種の抗
体の混合液100μQを96ウエルイムノプレートの各
ウェルに入れ、4°c−夜装置して固相に抗体を結合さ
せた。O,15MNaCQを含有する0、O1Mリン酸
緩衝液(pH7゜0)で洗浄した後、1%BSAを含有
するOOI Niリン酸緩衝液を200ugずつウェル
に注入して、使用時まて冷所に保存した。(2) Preparation of antibody-bound solid phase Purified AAFI-sl, API-114, and ICl0 antibodies were each diluted to 10 ug/d with 0.01 M carbonate buffer (pH 8, 5), and each alone or three types of 100 μQ of the antibody mixture was placed in each well of a 96-well immunoplate and incubated at 4°C overnight to bind the antibody to the solid phase. After washing with 0,01M phosphate buffer (pH 7°0) containing 0,15M NaCQ, 200ug of OOI Ni phosphate buffer containing 1% BSA was injected into the wells and kept in a cool place until use. Saved to.
(3)号ントインチEIA法の検討
柱々の濃度に調製したヒ)aFGF溶液100μQを、
抗体を結合させたウェルに入れ4°Cで一夜インキユヘ
ートした。a FGF溶液を除去後、200倍に希釈し
たHRP標識API−52抗体をウェル当たり100μ
e加え、室温て2時間インキュベートした。標識抗体を
除去後、HRP基實基液溶液え、実施例1記載と同様の
方法で以下酵素反応を行い492nmにおける吸光度を
測定した。その結果、3種のモノクローナル抗体(AF
L−81,AFL−114,ICl0)を混合して固相
に用いた場合、それぞれの抗体を単独で用いた場合に比
べて感度かよく、aFGFの検出限界は1.5pg/ウ
ェルと非常に低濃度での検出が可能であった(第10図
)。第10図において△はモノクローナル抗体API−
81の結果を、ムはモノクローナル抗体API−114
の結果を、○はモノクローナル抗体IC10の結果を、
・は3種のモノクローナル抗体の混合物の結果を、それ
ぞれ示す。(3) 100 μQ of the aFGF solution prepared to the concentration of the standard EIA method,
It was placed in a well bound to the antibody and incubated overnight at 4°C. a After removing the FGF solution, add 100 μl of HRP-labeled API-52 antibody diluted 200 times per well.
e and incubated at room temperature for 2 hours. After removing the labeled antibody, an HRP base solution was prepared, and the following enzymatic reaction was performed in the same manner as described in Example 1, and the absorbance at 492 nm was measured. As a result, three types of monoclonal antibodies (AF
When a mixture of L-81, AFL-114, and ICl0) is used as a solid phase, the sensitivity is better than when each antibody is used alone, and the detection limit for aFGF is extremely high at 1.5 pg/well. Detection was possible at low concentrations (Figure 10). In Figure 10, △ indicates monoclonal antibody API-
The results of 81 were obtained using monoclonal antibody API-114.
○ indicates the result of monoclonal antibody IC10,
* indicates the results for a mixture of three types of monoclonal antibodies, respectively.
a FGFの検出感度は3種のモノクローナル抗体を用
いた場合が最も良(、そのうちの1つを除いた何れの場
合も感度はそれよりも低かった(第11図参照)。a The detection sensitivity of FGF was best when three types of monoclonal antibodies were used (although the sensitivity was lower in all cases except one of them (see Figure 11).
すなわち、第11図においてムはモノクローナル抗体A
FL−81,AF1−114混合物の結果を、△はモノ
クローナル抗体1cIO,AFl−81混合物の結果を
、○はモノクローナル抗体ICl0.API−114混
合物の結果を、・は3種のモノクローナル抗体の混合物
の結果を、それぞれ示す。That is, in FIG. 11, Mu is monoclonal antibody A.
The result is for the FL-81, AF1-114 mixture, △ is the result for the monoclonal antibody 1cIO, AFl-81 mixture, and ○ is the result for the monoclonal antibody ICl0. The results for the API-114 mixture are shown, and the * represents the results for the mixture of three monoclonal antibodies.
(4)サンドイッチEIAの特異性の検討設定したサン
ドイッチEIAが、ヒトa FGFに特異的であるかど
うかを検討するため、種々の濃度に調製したrhbFG
Fを抗原としてサンドイッチEIAを行った。すなわち
、3種の抗体混合物を結合したウェルに上記の抗原調製
液を100μQ入れ4°Cで一夜インキユベートした。(4) Examination of specificity of sandwich EIA In order to examine whether the sandwich EIA set up is specific for human aFGF, rhbFG prepared at various concentrations was used.
Sandwich EIA was performed using F as an antigen. That is, 100 μQ of the above antigen preparation solution was added to the well to which the three types of antibody mixture had been bound and incubated overnight at 4°C.
抗原を除去後、200倍に希釈したHRP標識AFI−
52抗体をウェル当たり100uQ加え、以下上記と同
様の方法で反応性の有無を検討した。その結果、rhb
FGFが800ng/Mlの高濃度であっても本サンド
イッチEIAでは検出されず、本性はaFGFを特異的
に認識する系であることが判った(第12図)。第12
図において、・はa FGFの結果を、○はbFGFの
結果を、それぞれ示す。After removing the antigen, HRP-labeled AFI diluted 200 times
52 antibody was added at 100 uQ per well, and the presence or absence of reactivity was examined in the same manner as above. As a result, rhb
Even at a high concentration of FGF of 800 ng/Ml, it was not detected by this sandwich EIA, indicating that the system is actually a system that specifically recognizes aFGF (Figure 12). 12th
In the figure, * indicates the results for aFGF, and ○ indicates the results for bFGF.
(5)ヘパリンの影響
4種のモノクローナル抗体(API−52,AFl−8
1,API−114,ICl0)のaFGF結合性にヘ
パリンが影響を及ぼすかどうかを検討した。すなわち、
実施例1記載の方法で作製したaFGF結合ウェルにそ
れぞれの抗体を加える際に、ヘパリンを共存させ抗体の
結合性の変化を検討した。結果は、第10表に示した。(5) Effect of heparin 4 monoclonal antibodies (API-52, AFl-8
We investigated whether heparin affects the aFGF binding of 1, API-114, ICl0). That is,
When each antibody was added to the aFGF-binding well prepared by the method described in Example 1, heparin was allowed to coexist to examine changes in antibody binding. The results are shown in Table 10.
モノクローナル抗体
ヘパリン(μg/、m)
A F l −520,9610,8340,887A
F 1−81 0.278 0.278
0.224AF 1−114 1.4
98 1.478 1.398第10表
から明らかなように、ヘパリンか10mg/ 4 、
100 mg/ rmの濃度に存在しても、いずれの抗
体のaFGFへの結合性も阻害されず、これらの抗体は
、a FGFのヘパリン結合部位を認識しないことが判
った。次にヘパリンの存在にょってサンドイッチEIA
が影響されるかどうかの検討もおこなった。すなわち、
種々の濃度に調製したaFGF溶液に、ヘパリンをlo
ug/mまたは100μs/dになるように加え、サン
トイ、チ”EIAに供した。その結果、本EIAによる
aFGFの認識は、ヘパリンb(存在してもほとんど抑
制されず、検出感度は2pg/ウェルと高感度を維持し
た(第13図)。第13図において、・は無添加の場合
の結果を、○はヘパリン100μs/m添加の結果を、
△はヘパリン10μg/d添加の結果をそれぞれ示す。Monoclonal antibody heparin (μg/, m) A Fl -520,9610,8340,887A
F 1-81 0.278 0.278
0.224AF 1-114 1.4
98 1.478 1.398 As is clear from Table 10, heparin 10mg/4,
It was found that even at a concentration of 100 mg/rm, the binding of none of the antibodies to aFGF was inhibited, and these antibodies did not recognize the heparin binding site of aFGF. Next, due to the presence of heparin, sandwich EIA
We also investigated whether it would be affected. That is,
Heparin was added to aFGF solutions prepared at various concentrations.
ug/m or 100 μs/d, and subjected to Santoi, Chi's EIA. As a result, the recognition of aFGF by this EIA was hardly suppressed even in the presence of heparin b (the detection sensitivity was 2 pg/m). well and high sensitivity was maintained (Fig. 13). In Fig. 13, ◯ indicates the results without the addition of heparin, ○ indicates the results with the addition of heparin at 100 μs/m,
Δ indicates the results of adding 10 μg/d of heparin.
実施例3
(1)抗体結合樹脂の作製
CN B r −activated 5ephar
ose 4 B l gを、グラスフィルター上で1
mM塩酸(’200d)により、洗浄と膨潤を繰り返す
。Example 3 (1) Preparation of antibody-binding resin CNBr-activated 5ephar
ose 4 B lg on a glass filter.
Repeat washing and swelling with mM hydrochloric acid ('200d).
カップリングバッファー(0,5M NaCQを含む
0.1M炭酸緩衝液(pH8,0)にてゲルを洗浄した
後、実施例1(5)で得られたAF 1−81゜HaF
LC10,AF l l 14それぞれのモノクロ
ーナル抗体各2111gを含む力、2プリングツ望1.
ファー中にゲルを加え、全量をカップリングバッファー
で10mとして、4℃で20時間か(はんする。After washing the gel with coupling buffer (0.1M carbonate buffer (pH 8,0) containing 0.5M NaCQ), the AF 1-81°HaF obtained in Example 1 (5)
LC10, AF l l 14 each containing 2111 g of each monoclonal antibody, 2 pulls 1.
Add the gel to the fur, make the total volume 10ml with coupling buffer, and incubate at 4°C for 20 hours.
グラスフィルター上でゲルを口取し、これを0゜2M
Gly Na0H(pH8,0)に移して、室温で
2時間かくはんする。Take the gel on a glass filter and transfer it to 0゜2M.
Transfer to Gly NaOH (pH 8,0) and stir at room temperature for 2 hours.
ゲルを口取し、・カップリングバッファーと0゜5M
NaCl2を含む・0.1M酢酸緩衝液で洗浄し、0
.02Mリン酸緩衝液(pH7,0)中で4°Cて保存
する。Take the gel and add coupling buffer and 0°5M
Wash with 0.1M acetate buffer containing NaCl2,
.. Store at 4°C in 02M phosphate buffer (pH 7,0).
(2)ヒトaFGFの精製
(1)で調製したゲル0,5dをカラム(内径0゜8c
m’)につめ、緩衝液A(0,15M NaCl2を
含む0.05Mヘベス緩衝液(pH7,5)にて充分洗
浄する。(2) Purification of human aFGF Apply the gel 0.5d prepared in (1) to a column (inner diameter 0°8c).
m') and thoroughly washed with buffer A (0.05M Heves buffer (pH 7.5) containing 0.15M NaCl2).
参考例3(b)で得られた大腸菌MM294(DE 3
)/pLysS、 pT B 975を培養し5dかり
得られる菌体を1mの水冷10mM Tris−HC(
1(p)17.4)、10mM EDTA、0.2M
NaCQ。E. coli MM294 (DE 3) obtained in Reference Example 3(b)
)/pLysS, pT B 975 was cultured and the resulting bacterial cells were cultured in 1 m of water-cooled 10 mM Tris-HC (
1(p)17.4), 10mM EDTA, 0.2M
NaCQ.
10%シヨ糖、0.25mMフェニルメチルスルホ4
ニルフルオライド(PMSF)に懸濁し、卵白リゾチー
ムを0.5+ng/mとなる様添加する。1時間水中に
放置後37°Cで5分間インキコベートし、水冷上超音
波処理を行い、遠心(S ORV A L Ll 8
Krpm、 30分4°C)し、上清を得、そのうち5
0μQを上記カラムに流す。Suspend in 10% sucrose and 0.25 mM phenylmethylsulfonyl fluoride (PMSF), and add egg white lysozyme to a concentration of 0.5+ng/m. After standing in water for 1 hour, incubate at 37°C for 5 minutes, perform ultrasonic treatment on water cooling, and centrifuge (SORVA L Ll 8
Krpm, 30 min at 4°C) to obtain the supernatant, of which 5
0 μQ is applied to the above column.
カラムを緩衝液Aて充分洗浄した後、緩衝液B(02M
グリンンー塩酸緩衝液(pH2,0))にてaFGFを
溶出する。溶出液は、IM Trisにて中+13す
る。溶出液中のヒ)aFGFの生物活性を、参考例1(
e)記載の佐々円らの方法で検討すると、参考例+(d
)で得られたa FGFとほぼ同等の比活性を示す。After thoroughly washing the column with buffer A, add buffer B (02M
aFGF is eluted with green-hydrochloric acid buffer (pH 2,0). The eluate is medium +13 on IM Tris. The biological activity of aFGF in the eluate was determined using Reference Example 1 (
When examined using the method of Sasama et al. described in e), the reference example + (d
) It shows almost the same specific activity as aFGF obtained in .
灸匪卑匁湯
本発明のモノクローナル抗体は、aFGFと特異的に結
合し、また結合能も高いので、a FGF、則定用試薬
なととして有利に用いることかできる。Since the monoclonal antibody of the present invention specifically binds to aFGF and has a high binding ability, it can be advantageously used as a reagent for determining aFGF.
第1図は、参考例1て用いられた、aFGFのcDNA
の配クリを示す。
第2図は、参考例1て得られた、プラスミドpTB97
5の構築図を示す。
第3図は、参考例1で得られた、溶出パターンを示す。
第4図は、参考例1で得られた、溶出パターンを示す。
第5図は、参考例1で得られた、溶出パターンを示す
第6図は、参考例3て得られた、N末5残基欠失型aF
GF発現用ヘクターpTB1069の構築図を示す。
第7図は、参考例3て得られた、N末43残基欠失型a
FGF発現用ヘクターpTB1070の構築図を示す
。
第8図は参考例3で得られた、N末5残基欠失型aFG
F精製用に使用したヘパリン)(PLCカラムの溶出パ
ターンを示す。
第9図は、参考例3て得られた、N末43残基欠失型a
FGF精製用に使用したQセファロースカラムからの溶
出パターンを示す。
第10図は実施例2(3〉で得られた、サンドイッチE
IAによるa FGFの検出感度の結果を示す。
第11図は、実施例5(3)で得られた、サントイ、チ
EIAによるa FGFの検出感度の結果を示す。
第12図は、実施例2(4)で得られた、サントイ、千
EIAの特異性の結果を示す。
第13図は、実施例2(5)で得られた、サン[・イ、
チEIAに及ぼすヘパリンの影響の結果をボす。
第14図は、す考例3て得られた、N末5残基欠失”1
h a F G Fムティンのアミノ酸配列を示す。
なお、N末端のN1は、駐訳開始フトンによるメチオニ
ンをホす。
第15図は、参考例3で得られた、N末43残基欠失型
haFGFムチイノのアミノ酸配列を示す。なお、N末
端のMは、駐訳開始コドンによるメチオニンをボす。Figure 1 shows the aFGF cDNA used in Reference Example 1.
This shows the placement of the winnings. Figure 2 shows plasmid pTB97 obtained in Reference Example 1.
5 is shown. FIG. 3 shows the elution pattern obtained in Reference Example 1. FIG. 4 shows the elution pattern obtained in Reference Example 1. FIG. 5 shows the elution pattern obtained in Reference Example 1. FIG. 6 shows the N-terminal 5 residue deleted aF obtained in Reference Example 3.
A construction diagram of Hector pTB1069 for GF expression is shown. Figure 7 shows the N-terminal 43 residue deletion type a obtained in Reference Example 3.
A construction diagram of Hector pTB1070 for FGF expression is shown. Figure 8 shows N-terminal 5 residue deleted aFG obtained in Reference Example 3.
Fig. 9 shows the elution pattern of PLC column (heparin used for F purification).
The elution pattern from the Q Sepharose column used for FGF purification is shown. Figure 10 shows the sandwich E obtained in Example 2 (3).
The results of detection sensitivity of aFGF by IA are shown. FIG. 11 shows the results of detection sensitivity of aFGF by Santoy and Chi EIA obtained in Example 5 (3). FIG. 12 shows the specificity results of Santoy and 1,000 EIA obtained in Example 2 (4). FIG. 13 shows the san[・i,
We present the results of the effect of heparin on the EIA. Figure 14 shows the N-terminal 5 residue deletion "1" obtained in Example 3.
The amino acid sequence of h a F GF mutin is shown. Note that N1 at the N-terminus represents methionine due to the translation initiation futon. FIG. 15 shows the amino acid sequence of the N-terminal 43 residue-deleted haFGF mutiino obtained in Reference Example 3. Note that M at the N-terminus replaces methionine due to the translation start codon.
Claims (18)
FGF)蛋白質に対するモノクローナル抗体:(a)分
子量:約140,000〜160,000(b)塩基性
線維芽細胞成長因子(bFGF)と交差反応しない。 (c)免疫グロブリンクラスがIgGに属する。(1) Acidic fibroblast growth factor (a
Monoclonal antibody against FGF) protein: (a) Molecular weight: approximately 140,000-160,000 (b) Does not cross-react with basic fibroblast growth factor (bFGF). (c) The immunoglobulin class belongs to IgG.
免疫した哺乳動物の脾臓細胞と、同種または異種のリン
パ球様細胞とからなるクローン化されたハイブリドーマ
。(2) A cloned hybridoma consisting of spleen cells of a mammal immunized with acidic fibroblast growth factor (aFGF) protein and homologous or heterologous lymphoid cells.
リドーマ。(3) The hybridoma according to claim 2, wherein the mammal is a mouse.
載のハイブリドーマ。(4) The hybridoma according to claim 2, wherein the lymphoid cells are myeloma.
記載のハイブリドーマ。(5) Claim 2, wherein the aFGF protein is human aFGF.
Hybridoma described.
免疫した哺乳動物の脾臓細胞と、同種または異種のリン
パ球様細胞とを細胞融合し、クローニングすることを特
徴とする請求項2記載のハイブリドーマの製造法。(6) Cell fusion of spleen cells of a mammal immunized with acidic fibroblast growth factor (aFGF) protein and homologous or heterologous lymphoid cells and cloning. Hybridoma production method.
。(7) The production method according to claim 6, wherein the mammal is a mouse.
載の製造法。(8) The production method according to claim 6, wherein the lymphoid cells are myeloma.
記載の製造法。(9), Claim 6, wherein the aFGF protein is human aFGF.
Manufacturing method described.
または哺乳動物の腹腔内で増殖し、モノクローナル抗体
を生成、蓄積せしめ、これを採取することを特徴とする
請求項1記載のモノクローナル抗体の製造法。(10) Production of the monoclonal antibody according to claim 1, which comprises growing the hybridoma according to claim 2 in a liquid medium or intraperitoneally of a mammal, producing and accumulating the monoclonal antibody, and collecting the monoclonal antibody. Law.
造法。(11) The production method according to claim 10, wherein the mammal is a mouse.
0記載の製造法。(12) Claim 1, wherein the lymphoid cells are myeloma.
The manufacturing method described in 0.
10記載の製造法。(13) The production method according to claim 10, wherein the aFGF protein is human aFGF.
ことを特徴とするaFGF蛋白質の検出・定量法。(14) A method for detecting and quantifying aFGF protein, which comprises using the monoclonal antibody according to claim 1.
14記載の検出・定量法。(15) The detection/quantification method according to claim 14, wherein the aFGF protein is human aFGF.
出・定量法。(16) The detection/quantification method according to claim 14, wherein enzyme immunoassay is performed.
ことを特徴とするaFGF蛋白質の精製法。(17) A method for purifying aFGF protein, which comprises using the monoclonal antibody according to claim 1.
17記載の精製法。(18), the purification method according to claim 17, wherein the aFGF protein is human aFGF.
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