JPH0292298A - Monoclonal antibody against hiv-constructing protein - Google Patents

Monoclonal antibody against hiv-constructing protein

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JPH0292298A
JPH0292298A JP63247215A JP24721588A JPH0292298A JP H0292298 A JPH0292298 A JP H0292298A JP 63247215 A JP63247215 A JP 63247215A JP 24721588 A JP24721588 A JP 24721588A JP H0292298 A JPH0292298 A JP H0292298A
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JP
Japan
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hiv
monoclonal antibody
synthetic peptide
protein
antibody
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JP63247215A
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Sachiko Karaki
幸子 唐木
Noriko Matsushima
松嶋 規子
Makoto Nakamura
誠 中村
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Olympus Optical Co Ltd
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    • CCHEMISTRY; METALLURGY
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    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/08Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from viruses
    • C07K16/10Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from viruses from RNA viruses
    • C07K16/1036Retroviridae, e.g. leukemia viruses
    • C07K16/1045Lentiviridae, e.g. HIV, FIV, SIV
    • C07K16/1063Lentiviridae, e.g. HIV, FIV, SIV env, e.g. gp41, gp110/120, gp160, V3, PND, CD4 binding site

Abstract

PURPOSE:To obtain monoclonal antibody specific to HIV protein gp41 by using synthetic peptide consistent with a part of amino acid sequence derived from gp41 as membrane protein of HIV as an immunogen, without using any natural HIV having possibility of infection. CONSTITUTION:In production of the above-mentioned monoclonal antibody, synthetic peptide is administrated an animal other than human, e.g., mammal such as mouse and immunized. Then, splenic cell is taken out as lymphatic corpuscle cell from immunized said animal and subjected to cell fusion with myeloma cell having infinite reproducibility. A monoclonal antibody obtained by said method is not reacted with a virus main body different from the case of using natural virus protein as an immunogen, but reacted with a part of amino acid derived from gp41 as a membrane protein of HIV and bonded to gp41. Therefore, usable as a positive standard of western blotting or EIA, etc., and biohazard in examination is free from care because derived from hybridoma.

Description

【発明の詳細な説明】 〔産業上の利用分野〕 本発明はヒト免疫不全ウィルス(HIV)の分析等に使
用されるモノクローナル抗体であり、特に種々のエイズ
検査用キットにおける安全性に優れた陽性標準として使
用でき、かつHIVの基礎研究にも応用可能なモノクロ
ーナル抗体の樹立に関するものである。
[Detailed Description of the Invention] [Industrial Application Field] The present invention relates to a monoclonal antibody used in the analysis of human immunodeficiency virus (HIV), etc., and particularly as a positive antibody with excellent safety in various AIDS test kits. This invention relates to the establishment of monoclonal antibodies that can be used as standards and can also be applied to basic research on HIV.

〔従来の技術〕[Conventional technology]

後天性免疫不全症候群(AIDS、エイズ)は1981
年アメリカにおいて初めて報告された(Gottl i
ab、 M、S、  ら、N、Eng、J、Med、、
Mi、 1425(1981)参照〕、この疾患は、現
在ヒト免疫不全ウィルス(HIV)と呼ばれているレト
ロウィルスによって感染すると考えられている(Cof
fin、J、ら、S c i e n c e 、 ■
L697 (1986)参照〕。
Acquired immunodeficiency syndrome (AIDS) in 1981
It was first reported in the United States in 2010 (Gottl i
ab, M.S. et al., N.Eng., J.Med.
Mi, 1425 (1981)], the disease is thought to be transmitted by a retrovirus now called human immunodeficiency virus (HIV) (Cof
fin, J., et al., Science, ■
See L697 (1986)].

従来、血清中のHIVに対する抗体を検出する確定検査
として、HIVを電気泳動にかけてgp120、gp4
1.p24.plB等の構成蛋白に分画し、これらをニ
トロセルロース膜に転写してストリップを作成し、この
ストリップをヒト血清と反応させて酵素免疫測定(EI
A)を行うウェスタンブロッティング法が用いられてい
る。この方法では予め抗HIV抗体の存在が既知である
エイズ患者血清を非動不活化して陽性標準として使用し
ている(Bio−Rad社 インストラクションマニュ
アル(1987)参照〕、シかしながら、エイズ患者血
清由来の抗体を利用する際、安定して多量に抗体を得る
ことは困難を要する。このため近年よりHIvそのもの
をマウスに免疫し、免疫後の牌細胞を摘出した後、適当
な骨髄腫(ミエローマ)all胞と融合させて融合細胞
(ハイプリドーマ)とし、この融合細胞を培養すること
によりHIVに特異的な結合反応を示すモノクローナル
抗体を大量に得る試みが数多くなされている0例えば、
Michael S、C,Fungら、Blotech
nology、5.940. (19B?)のように)
IIVの構成蛋白のひとつであるgp120対するモノ
クローナル抗体の報告やp24に対する抗体について報
告されている。ところで、米国特許第4.520.11
3号公報には、エイズ及びブリ・エイズ(Pro−AI
DS)患者の血清中に検出される抗体の持つ反応性また
は特異性が主にHIVのエンベロープ抗原を構成する蛋
白質gp41に対して向けられていることが指摘されて
いる。そこで、James J、GJangら、Pro
c、Natl、Acad、Sc!、LISA+JL1.
6159(1986)では、gp4tを構成する蛋白よ
りエイズ患者血清中の抗体に対して高免疫原性を有する
アミノ酸領域を検討し、その結果エンベロープ抗原の5
84−604番目のアミノ酸を構成する以下の21個の
配列をもつペプチドを特定化している。 Arg−11
e−Leu−Ala−Val−Glu−Arg−Tyr
−Leu−Lys−Asp−G l n−G 1 n−
Lue−Lue−G ly−11e−Trp−G Iy
−Cys−3er (Ala−アラニン、 Arg=ア
ルギニン。
Conventionally, as a definitive test to detect antibodies against HIV in serum, HIV was subjected to electrophoresis to detect gp120, gp4
1. p24. Fractionate into constituent proteins such as plB, transfer these to a nitrocellulose membrane to create a strip, and react this strip with human serum to perform enzyme immunoassay (EI).
Western blotting is used to perform A). In this method, the serum of AIDS patients, for which the presence of anti-HIV antibodies is known, is inactivated and used as a positive standard (see Bio-Rad's instruction manual (1987)). When using serum-derived antibodies, it is difficult to stably obtain antibodies in large quantities.For this reason, in recent years, mice have been immunized with HIV itself, and after the immunized tile cells are removed, appropriate myeloma ( Many attempts have been made to obtain a large amount of monoclonal antibodies that exhibit a specific binding reaction to HIV by fusing them with all cells (hyperidoma) and culturing the fused cells.
Michael S., C. Fung et al., Blotech
nology, 5.940. (Like 19B?)
There have been reports of monoclonal antibodies against gp120, which is one of the constituent proteins of IIV, and antibodies against p24. By the way, U.S. Patent No. 4.520.11
Publication No. 3 includes information on AIDS and Buri-AIDS (Pro-AI).
DS) It has been pointed out that the reactivity or specificity of antibodies detected in the serum of patients is primarily directed against gp41, a protein that constitutes the envelope antigen of HIV. Therefore, James J, GJang et al., Pro
c, Natl, Acad, Sc! , LISA+JL1.
6159 (1986), investigated the amino acid region of the protein constituting gp4t that has high immunogenicity against antibodies in the serum of AIDS patients.
Peptides with the following 21 sequences constituting amino acids 84-604 have been specified. Arg-11
e-Leu-Ala-Val-Glu-Arg-Tyr
-Leu-Lys-Asp-G l n- G 1 n-
Lue-Lue-G ly-11e-Trp-G Iy
-Cys-3er (Ala-alanine, Arg=arginine.

Aap*アスパラギン酸、 Cys−システィン、 G
1n==グルタミン、 Glu−グルタミ°ン酸、 G
ly・グリシン。
Aap*Aspartic acid, Cys-cystine, G
1n==glutamine, Glu-glutamic acid, G
ly glycine.

11e−イソロイシン、 Leu+−ロイシン、 Ly
s=リジン。
11e-isoleucine, Leu+-leucine, Ly
s = lysine.

Ser・セリン、 Trp・トリプトファン1↑yr=
チロシン、 Val−バリン) 又、この報告の中で、James J、G、Wangら
はかかる配列をもつ合成ペプチドを用いて直接反応容器
等に面相化することにより、血清中の抗H!■抗体を特
異的かつ感度良く検出している。
Ser, serine, Trp, tryptophan 1↑yr=
In addition, in this report, James J, G, Wang et al. used a synthetic peptide having such a sequence and directly applied it to a reaction vessel, etc., thereby reducing anti-H! ■Detects antibodies specifically and with high sensitivity.

〔発明が解決しようとする課題〕[Problem to be solved by the invention]

′従来のHIV検出演出法いてEIA、ウェスが多く、
非動不活化してはいるが、検査者等にとっでは尚も感染
の危険が残る。その上、患者血清の絶対量も不足しがち
である。又、HIVそのものを免疫原として作成したマ
ウスモノクローナル抗体には現在gp120やp24に
対するものが種々報告されているが、ウィルス膜中に埋
没した形態で存在するg941に対して特異性を有する
抗体は得られていない、このため、gp4tがHIVの
感染及び9因発現の探究に多大な重要性を有しているに
も拘らず、HI V構成蛋白の中で最も分析および研究
が遅れている。
'Conventional HIV detection methods are mostly EIA and waste;
Although the virus has become inactive, there is still a risk of infection for testers and others. Moreover, the absolute amount of patient serum tends to be insufficient. In addition, various mouse monoclonal antibodies produced using HIV itself as an immunogen have been reported against gp120 and p24, but antibodies with specificity for g941, which exists in the form embedded in the virus membrane, have not been obtained. Therefore, although gp4t has great importance in investigating HIV infection and its expression, it is the least analyzed and studied among the HIV constituent proteins.

以上の問題点に着目して、HIV蛋白gp41に特異的
なモノクローナル抗体を提供することを目的とする。
In view of the above problems, the present invention aims to provide a monoclonal antibody specific to the HIV protein gp41.

〔課題を解決するための手段および作用〕本発明では、
感染の恐れのある天然のHIVは一切用いず、HIMの
膜蛋白gp41由来のアミノ酸配列の一部に一部する合
成ペプチドを免疫原としてモノクローナル抗体を作製す
る。
[Means and effects for solving the problem] In the present invention,
Monoclonal antibodies are produced using a synthetic peptide that is part of the amino acid sequence derived from the HIM membrane protein gp41 as an immunogen, without using any natural HIV that may cause infection.

その際、合成ペプチドをヒト以外の動物1例えばマウス
のような哺乳類に投与して免疫し、その後該動物よりリ
ンパ球細胞として牌細胞を取り出し、無限増殖能をもつ
骨髄腫(ミエローマ)細胞と細胞融合させる。ここで融
合に用いる手段にはポリエチレングリコール(PEG)
のような融合促進剤を使用する方法(にoheler 
G。
At that time, a synthetic peptide is administered to a non-human animal (for example, a mammal such as a mouse) to immunize it, and then tile cells are taken out from the animal as lymphocytes, and myeloma cells, which have unlimited proliferation potential, are fuse. Here, the means used for fusion is polyethylene glycol (PEG).
Methods using fusion accelerators such as oheler
G.

and Milstein C,、Nature、」旦
、495+ (1975)’参照)や、電気パルスを利
用した融合方法(tl。
and Milstein C., Nature, 495+ (1975)'), and a fusion method using electric pulses (tl.

Zimmermann and J、Vienken、
 J、Menb?ane Biol。
Zimmermann and J., Vienken;
J, Menb? ane Biol.

■、 165. (1982)参照)等がある。■, 165. (1982)).

本発明のモノクローナル抗体は天然のウィルス蛋白を免
疫原とする場合と異なり、ウィルス本体とは反応せず、
HIVの膜蛋白gp41由来のアミノ酸の一部に反応し
てgp41と結合する。
The monoclonal antibody of the present invention does not react with the virus itself, unlike when a natural virus protein is used as an immunogen.
It reacts with some amino acids derived from the HIV membrane protein gp41 and binds to gp41.

(実施例〕 本発明を実施例に基いて説明する。(Example〕 The present invention will be explained based on examples.

まず、免疫原には以下のアミノ酸配列よりなる合成ペプ
チドを用いた。Arg−11e−Leu−AlaVal
−Glu−Arg−Tyr−Leu−Lys−Asp−
Gin−Gin−LeuLeu−Gly−11e−Tr
p−Gly−Cys−Ser(A1a=アラニン。
First, a synthetic peptide consisting of the following amino acid sequence was used as an immunogen. Arg-11e-Leu-AlaVal
-Glu-Arg-Tyr-Leu-Lys-Asp-
Gin-Gin-LeuLeu-Gly-11e-Tr
p-Gly-Cys-Ser (A1a = alanine.

Arg−アルギニン、^sp=アスパラギン酸、 Cy
s=システィン、 Gln−グルタミン、 Glu−グ
ルタミン酸。
Arg-arginine, ^sp=aspartic acid, Cy
s = cysteine, Gln-glutamine, Glu-glutamic acid.

cry−グリシン、 11e=イソロイシン+ Leu
=ロイシン、  Lys・リジン、  5er−セリン
*TrpcFリプトファン、 Tyr−チロシン、 V
al・バリン)(1)肺細胞の調整 まず、上記合成ペプチド100μgを特定のキャリアを
媒体として動物に投与した。即ち、ポリビニルピロリド
ン(P V P )  100μ2と混合溶解させ、こ
れを6週令の雌BALB/Cマウス(チャールズリバー
■より入手)の腹腔内に注射して免疫した# 1か月後
、同様の腹腔内注射を行って追加免疫をして、更に1か
月後に背皮下9尾静脈、眼等に分散して同様の注射を行
ない、その4日後にBALB/Cマウスより肺臓を摘出
して以下の調製を行った。まず、摘出した肺臓をD −
M E M  (Dulbecco’s旧11malE
ssentlal Medium)培養液中で数回振っ
て余分な脂肪塊等を洗い落とした0次に、D−MEM培
養液10−を入れたベトリ皿に肺臓を移し、大きく4つ
程度に切断した後、ピンセットによりリンパ球を押し出
した。リンパ球を含んだD−MEM培養液をステンレス
メツシュを通して組織塊を濾過して取り除くことにより
リンパ球浮遊液を調製した。
cry-glycine, 11e=isoleucine+Leu
=Leucine, Lys/Lysine, 5er-serine *TrpcF liptophan, Tyr-tyrosine, V
(1) Preparation of lung cells First, 100 μg of the above synthetic peptide was administered to an animal using a specific carrier as a vehicle. Specifically, polyvinylpyrrolidone (PVP) was mixed and dissolved with 100μ2, and 6-week-old female BALB/C mice (obtained from Charles River) were immunized by intraperitoneal injection. One month later, the same A booster immunization was performed by intraperitoneal injection, and one month later, the same injection was performed by dispersing it into the 9 tail veins under the back skin, the eyes, etc., and 4 days later, the lungs were removed from BALB/C mice. was prepared. First, the removed lung was D −
M E M (Dulbecco's former 11malE
Shake the lungs several times in the culture medium to wash off excess fat lumps, etc.Next, transfer the lungs to a vetri dish containing D-MEM culture medium 10-1, cut them into about 4 pieces, and use forceps to remove the lungs. The lymphocytes were pushed out. A lymphocyte suspension was prepared by filtering the D-MEM culture medium containing lymphocytes through a stainless mesh to remove tissue lumps.

(2)融合細胞およびPEG溶液の調製融合に用いるミ
エローマはマウス骨髄腫細胞P3x63−AJI 8.
653 (環ATCC番号 CRL−1580)を使用
した。大型培養@(150d) ニ成育シタミエローマ
5X10?個を遠心管に移して1200r、p、m、で
5分間遠心して細胞を集め、これを血清を含まないD−
MEM培養培養液1巾浮遊させた後、肺細胞2X10”
個を含む上記リンパ球浮遊液を混合して再度120Or
po+で5分間遠心して融合に備えた。
(2) Preparation of fused cells and PEG solution The myeloma used for fusion was mouse myeloma cell P3x63-AJI 8.
653 (ring ATCC number CRL-1580) was used. Large-scale culture @ (150d) Ni-grown Shitami Eloma 5X10? Transfer the cells to a centrifuge tube and centrifuge at 1200r, p, m for 5 minutes to collect the cells, which are then added to serum-free D-
After suspending one width of MEM culture medium, 2x10" of lung cells
Mix the above lymphocyte suspension containing
Prepare for fusion by centrifuging at po+ for 5 minutes.

次に、融合に用いるポリエチグレングリコール(PEG
)溶液は次のように調製した。PEG(メルク5972
7) 1 gをガラス試験管に取り、これにアルミ栓を
してオートクレーブにかけた後60℃まで冷まし、更に
45℃に加温したD−MEM培養液を11d加え、攪拌
して45゛cの温浴中で保存した。
Next, polyethylene glycol (PEG) used for fusion
) The solution was prepared as follows. PEG (Merck 5972
7) Place 1 g in a glass test tube, cover it with an aluminum stopper, autoclave it, cool it to 60°C, add 11 d of D-MEM culture solution warmed to 45°C, stir, and incubate at 45°C. Stored in a warm bath.

(3)融合作業 遠心した融合細胞の上清を出来るだけ取り除き、上記P
EG1液lIdを1分間でピペットにより滴下した.こ
の間、遠心管は激しく振とうして細胞沈渣を充分はぐし
た0次に遠心管を振り続けて1分間の攪拌を行ない融合
を促進させた0次の1分間でD−MEM培養液IIdl
を滴下した後ピペットを交換して更に1d滴下した。
(3) Fusion work Remove as much of the supernatant of the centrifuged fused cells as possible, and
EG1 solution lId was added dropwise with a pipette over a period of 1 minute. During this time, the centrifuge tube was shaken vigorously to remove the cell sediment.Next, the centrifuge tube was continuously shaken and stirred for 1 minute to promote fusion.D-MEM culture solution IIdl was added during the next 1 minute.
After dropping, the pipette was replaced and another 1 d was dropped.

このようにPEGを徐々に薄めた後更にD−MEM溶液
8II!lを2分間で滴下することにより一気にPEG
を希釈して融合作業を終えた。
After gradually diluting PEG in this way, D-MEM solution 8II! PEG is added dropwise over 2 minutes.
The fusion work was completed by diluting the

(4)ハイプリドーマの培養 融合を終了した遠心管中の細胞浮遊液は1200rpm
で5分間遠心した後、上清を廃棄して、ハイブリドーマ
増殖用HAT培地(70%DーMEMm液.20%牛脂
児血清, 10%NCTC培地の混合液にヒボキサンチ
ン13.61Mg/戚.チミジン3.88μg/ym.
アミノプリテン0.176μg/dを含む)30dに浮
遊させ、これを100μ2ずつ96マイクロプレ一ト3
枚の各ウェルに分注して5%CG! 37℃のインキュ
ベーター中で培養した.培養4日目にHAT培地を10
0μ2ずつ各ウェルに添加し、更に培養7日目および1
00日目各ウェル100μiずつ新鮮なHAT培地に交
換する.培l115日目頃に各ウェルに育成して来たハ
イプリドーマがコロニーを形成した時点でスクリーニン
グにより免疫原である合成ペプチドに対する特異性を調
べた。
(4) Culture of hybridoma The cell suspension in the centrifuge tube after fusion is heated at 1200 rpm.
After centrifuging for 5 minutes at .88μg/ym.
(containing 0.176 μg/d of aminopretene) was suspended in 30 d of 96 microplates of 100 μ2 each.
Dispense 5% CG into each well of the plate! Cultured in an incubator at 37°C. On the 4th day of culture, add 10% of HAT medium.
0μ2 was added to each well, and further on the 7th day of culture and 1
Day 00: Replace 100μi of each well with fresh HAT medium. At around the 115th day of culture, when the hybridomas grown in each well formed a colony, the specificity for the synthetic peptide as an immunogen was examined by screening.

(5)スリーニング ELISA用96ウエル平底プレート(Nunc :4
−68667 )を用意し各ウェルに合成ペプチドをI
IIgずつ分注し37℃で1時間静置して固相化した.
各ウェルを0.OIMIJン酸緩衝液(PBS)で3回
洗浄し、更に3%のBSAを含んだO.GIMPBSを
それぞれ100μlずつ加えて再び37“Cで1時間静
置し、次いで0.05%Tween20を含む0、01
M P B S 、PH7.5で3回洗浄した.このよ
うに所定量の合成ペプチドを固相化したブレートノ各つ
ェルに培養中のプレートの各ウェルより100uj!の
培養上清をそれぞれ移し室温で1時間静置した0次に、
Twean20− P B S液で4回洗Sおよび5%
のTween20を含んだ0.OIM P B S 。
(5) 96-well flat bottom plate for screening ELISA (Nunc: 4
-68667) and inject the synthetic peptide into each well.
Aliquots of IIg were dispensed and allowed to stand at 37°C for 1 hour to solidify.
Fill each well with 0. Washed three times with OIMIJ acid buffer (PBS) and further washed with OIMID buffer containing 3% BSA. Add 100 μl of GIMPBS to each and leave to stand at 37"C for 1 hour, then add 0.01 GIMPBS containing 0.05% Tween20.
Washed three times with MPBS, pH 7.5. In this way, 100 uj was added to each well of the culture plate on which a predetermined amount of synthetic peptide was immobilized. Next, the culture supernatant of each was transferred and left to stand at room temperature for 1 hour.
Wash 4 times with Tween20-PBS solution and 5%
0.0 containing Tween20. OIM PBS.

P117.2により1000倍に希釈してこれを100
plずつ各ウェルに分注した。室温で1時間静置した後
、Theen20− P B S液で4回洗浄し、次い
でオルソフエニルジアミン(OPD)1.5μl/dを
0.1Mクエン酸緩衝液、PH5,5に溶かし、30%
の過酸化水素1μm7d4を加えたものを100μlず
つ各ウェルに分注した。室温の暗所にて静置して15〜
30分間反応させ、2N硫酸50μ!を各ウェルに添加
して呈色反応を停止し、それぞれの吸光度をマイクロプ
レートリーダー(Btotec社、 EL−310)を
用いて490 mで測定した。このような間接ELIS
A法により合成ペプチドに反応する抗体の存在が確認さ
れたウェルについて、測定値の高い順にハイブリドーマ
を取り出し24ウエル培養用プレートに移して上述と同
様の培養を行った。
Diluted 1000 times with P117.2 and diluted it to 100
pl was dispensed into each well. After standing at room temperature for 1 hour, it was washed 4 times with Theen20-PBS solution, and then 1.5 μl/d of orthophenyl diamine (OPD) was dissolved in 0.1 M citrate buffer, pH 5.5, and %
1 μm of hydrogen peroxide was added to each well, and 100 μl of the solution was dispensed into each well. Leave it in a dark place at room temperature for 15~
React for 30 minutes, add 50μ of 2N sulfuric acid! was added to each well to stop the color reaction, and the absorbance of each was measured at 490 m using a microplate reader (Btotec, EL-310). Such indirect ELIS
For wells in which the presence of antibodies reactive with the synthetic peptide was confirmed by method A, hybridomas were taken out in descending order of the measured value, transferred to a 24-well culture plate, and cultured in the same manner as described above.

(6)クローニング このように選別された陽性のハイブリドーマは通常の軟
寒天2重層法を用いて24ウエルプレート中で単個細胞
を2週間増殖させ、成育したクローンを取り出すことに
より純化した。更に、上記と同様のスクリーニングを適
宜繰り返すことにより抗原ペプチドに特異的なモノクロ
ーナル抗体を産生ずるハイブリドーマを樹立した。
(6) Cloning The positive hybridomas selected in this way were purified by growing single cells in a 24-well plate for 2 weeks using the conventional soft agar double layer method, and removing the grown clones. Furthermore, by appropriately repeating the same screening as described above, a hybridoma producing a monoclonal antibody specific to the antigenic peptide was established.

第1表は樹立したハイブリドーマの法名およびオフタロ
ニー法により決定された各イムノグロブリンクラスであ
る。
Table 1 shows the legal name of the established hybridoma and each immunoglobulin class determined by the Ophthalony method.

第1表 (7)モノクローナル抗体の産生及び精製免疫に用いた
マウスと同系であるマウスの腹腔内に樹立したハイブリ
ドーマを107細胞ずつ投与した。投与したハイブリド
ーマは15〜20日間程で腹水腫瘍を形成し、腹腔中か
ら抗体活性の高い抗体を含む腹水が大量に得られた。
Table 1 (7) Production and Purification of Monoclonal Antibodies 10 7 cells of hybridomas established intraperitoneally were administered to mice syngeneic to those used for immunization. The administered hybridoma formed an ascites tumor in about 15 to 20 days, and a large amount of ascites containing antibodies with high antibody activity was obtained from the peritoneal cavity.

次に、採取した腹水は陽イオン交換クロマトグラフィー
にかけて抗体成分を分取した。
Next, the collected ascites was subjected to cation exchange chromatography to separate antibody components.

第1図は第1表で示したハイブリドーマのうち226を
精製した際に溶出されて得られた各吸着画分を280論
の波長による吸光度で分析したときのフラクションパタ
ーンである。横軸に腹水を添加してからの時間、縦軸に
吸光度を示した。又、図には各吸着画分に対応するピー
クにそれぞれ番号1〜6を付けた。
FIG. 1 shows a fraction pattern obtained by analyzing each adsorbed fraction obtained by elution during purification of 226 of the hybridomas shown in Table 1 by absorbance at a wavelength of 280 degrees. The horizontal axis shows the time since ascites was added, and the vertical axis shows the absorbance. In addition, in the figure, peaks corresponding to each adsorption fraction are numbered 1 to 6, respectively.

第2図は第1図に示したフラクションパターンの各ピー
ク部分1〜6を各々5O3−PAGEポリアクリルアミ
ド電気泳動法にて分析した結果であり、左側の2列は分
子tm準物質とカラム添加前のハイブリドーマの原液に
よる結果である。第2図を比較検討することによりピー
ク3に抗体が含まれていることが判明した。
Figure 2 shows the results of analyzing each peak part 1 to 6 of the fraction pattern shown in Figure 1 by 5O3-PAGE polyacrylamide electrophoresis. These are the results obtained using the hybridoma stock solution. Comparative examination of FIG. 2 revealed that peak 3 contained antibodies.

(8)モノクローナル抗体の性状 第3図は第1表に示した各ハイブリドーマの培養上清に
よる合成ペプチドとの反応を各希釈系列の培養上清につ
いて得た濃度反応曲線である。ハイブリドーマがlXl
0’個/d以上に生育した培養液より、D−MEMに5
%FBSを加えた希釈液を用いて3倍毎の希釈系列を作
成し、それぞれtoopxずつスクリーニング時と同様
のELISAプレートに移して反応させた。
(8) Properties of monoclonal antibodies FIG. 3 shows concentration response curves obtained for each dilution series of the culture supernatants of each hybridoma shown in Table 1 showing the reaction with synthetic peptides. The hybridoma is lXl
From the culture solution that grew to 0' cells/d or more, 5 cells were added to D-MEM.
A 3-fold dilution series was prepared using a diluted solution containing %FBS, and each toopx was transferred to the same ELISA plate as used for screening and reacted.

第3図の各グラフの横軸には段階的な希釈系列を示し、
縦軸には各希釈系列における反応液の吸光度(波長49
0nm )を示した。図中記号・は合成ペプチドを固相
したELISAプレートを使用したときの結果を表し、
記号Oはコントロールとして合成ペプチドを添加する工
程のみを省いて作成した同様のELISAプレートを使
用したときの結果を表す、各同右上の表示はハイブリド
ーマの法名である0合成ペプチドを固定したプレートで
はどの反応曲線も合成ペプチドに対して特異性を示して
いるが、2E6.3Ell、  4 Hllの3つのイ
ムノグロブリンIgG株はウェル表面にブロックされて
いるBSAには反応せず非特異吸着は見られないのに対
し、他の1gM株はBSAにも弱い吸着を示した。
The horizontal axis of each graph in Figure 3 shows a stepwise dilution series,
The vertical axis shows the absorbance of the reaction solution in each dilution series (wavelength 49
0 nm). The symbol ・ in the figure represents the result when using an ELISA plate with a synthetic peptide immobilized.
The symbol O represents the result when using a similar ELISA plate prepared by omitting only the step of adding synthetic peptide as a control. All reaction curves show specificity for the synthetic peptide, but the three immunoglobulin IgG strains, 2E6.3Ell and 4Hll, do not react with BSA blocked on the well surface, and no nonspecific adsorption is observed. In contrast, other 1 gM strains also showed weak adsorption to BSA.

第4図は合成ペプチドを変量とした場合の上記ELIS
Aの結果である。即ち、合成ペプチドLOug/dから
2倍ずつの希釈系列を作成してそれぞれの100μlを
用いてプレートに固相することにより各ウェルにおける
固相量は段階的に1 、0.5.0.25.0.125
.0.0625.0.03125゜0.0156a 1
 /ウェルとした。このような固相化ウェルに各種ハイ
ブリドーマ上清を100μ!ずつ反応させ、波長490
nmによる吸光度を調べた。
Figure 4 shows the above ELIS using synthetic peptide as a variable.
This is the result of A. That is, by creating a 2-fold dilution series from the synthetic peptide LOug/d and immobilizing it on a plate using 100 μl of each dilution series, the amount of solid phase in each well is gradually adjusted to 1, 0.5, 0.25. .0.125
.. 0.0625.0.03125゜0.0156a 1
/ well. Pour 100μ of various hybridoma supernatants into such solid-phase wells! React at wavelength 490
The absorbance was determined by nm.

図の横軸は合成ペプチドの固相量、縦軸は吸光度である
0図の縦軸の記号**ネに示すレベルは検出限界であり
、それ以上の値は検出できないことを示す、第4図に表
した結果から、測定した7株のバイプリドーマ上清の全
てが固相した合成ペプチドに対し定量的に反応したが、
特に3E11.2B6,4H11の1.0株では感度の
高い定量性を示した。
The horizontal axis of the figure is the solid phase amount of the synthetic peptide, and the vertical axis is the absorbance. From the results shown in the figure, all of the seven bilidoma supernatants measured quantitatively reacted with the solid-phase synthetic peptide.
In particular, the 1.0 strains of 3E11.2B6 and 4H11 showed highly sensitive quantitative performance.

第5図はHIVの各種蛋白に対する特異性を調べるため
の公知のウェスタンブロッティング法による結果である
。ウェスタンブロッティングにはr Imwunobl
ot As5ay J (Bio−rad社、カタログ
番号197−1001 )をキットとして用い各サンプ
ルと対応させることによりバンドパターンを調べた。尚
、キットは各HIV構成蛋白を分子量順の分画に電気泳
動した像をニトロセルロース上に転写したストリップよ
り成る。又、マウス由来の本発明の抗体に対する2次抗
体にはヤギ抗マウスIgG&Mを適用し、その他試薬及
び使用方法はキットの内容に従った0図のサンプルは左
から順に2E6,3E11,4H11の各IgG株のハ
イプリドーマ培養上清及び腹水であり、1gM株からは
例として3F5による腹水を用いた。更に、右の3つの
サンプルは、陽性標準としてのエイズ患者血清より反応
性の低いサンプルと高いサンプルの2検体及び陰性標準
としての新鮮な培養液(90%D−MEM及び10%F
BSの混合溶液)を示す、縦軸の数字は分子量である。
FIG. 5 shows the results of a known Western blotting method for examining the specificity of HIV to various proteins. r Imwunobl for Western blotting
The band pattern was examined by using ot As5ay J (Bio-rad, catalog number 197-1001) as a kit and making it correspond to each sample. The kit consists of a strip in which images of each HIV component protein electrophoresed into fractions in order of molecular weight are transferred onto nitrocellulose. In addition, goat anti-mouse IgG&M was applied to the secondary antibody against the mouse-derived antibody of the present invention, and other reagents and usage methods were according to the contents of the kit. Hypuridoma culture supernatant and ascites of IgG strain were used, and ascites from 3F5 was used as an example from 1gM strain. In addition, the three samples on the right are two samples, one with lower reactivity and one with higher reactivity than AIDS patient serum as a positive standard, and a fresh culture medium (90% D-MEM and 10% FEM) as a negative standard.
BS mixed solution), the number on the vertical axis is the molecular weight.

第5図かられかるように、2E6は培養上清、腹水共に
分子量41−43,000の分画(gp41 )に結合
しており、3E11は腹水のみ弱く結合し、4H11は
結合反応が検出されなかった。一方、1gM株の3F5
は全長に亘り非特異な吸着がみられgp41への特異性
はなかった。このように同じIgG株においても、22
6の抗体のみがgp41に強く結合していることがわか
る。
As can be seen from Figure 5, 2E6 binds to the fraction with a molecular weight of 41-43,000 (gp41) in both the culture supernatant and ascites, 3E11 binds only weakly to ascites, and no binding reaction was detected for 4H11. There wasn't. On the other hand, 3F5 of 1gM strain
Nonspecific adsorption was observed over the entire length, and there was no specificity for gp41. In this way, even in the same IgG strain, 22
It can be seen that only antibody No. 6 strongly binds to gp41.

第6図は前記2E6の抗体が反応する合成ペプチドにお
ける認識部位及びエイズ患者血清中の抗体によるt!I
I! 識部位を反応阻害性により調べた結果である。患
者血清および正常人血清に対してヤギ血清20%を加え
たP B S 、PH7,2を用いて3倍ずつの希釈系
列を作った0次に、上述したELISAプレートと同様
にlウェル当たりLagずつの合成ペプチドを固相化し
たマイクロプレートの各2列に前記稀釈系列の患者およ
び正常人の血清をそれぞれ2ウエル毎に100pe/ウ
エル分注した。1時間の反応後、液を廃棄し、0.OI
M P B Sで3回洗浄した2次に、2E6のハイブ
リドーマ培養上清を100d/ウエルずつ均等に加えて
1時間反応させた。ここにおいて各1枚のプレートには
患者血清または正常人血清の稀釈列について2列ずつの
同一の処理がなされた状態にある0次に上記と同様の洗
浄を3回行った後、患者および正常人血清における前記
2列の同一処理した稀釈系列のウェルに対して、一方の
列には2B6抗体と反応するヤギ抗マウスIgGを、も
う一方の列には患者血清中の抗HIV抗体と反応するヤ
ギ抗ヒ)IgGをそれぞれペルオキシダーゼ標識の2次
抗体として加え、室温で1時間反応させた。反応後、上
述のELISAと同様にして各ウェルを洗浄し、基質反
応をさせて490n−の吸長での吸光度を示した。第6
図のグラフの横軸は患者または正常人血清の稀釈系列、
縦軸は吸光度を表す。
Figure 6 shows the recognition site in the synthetic peptide that the 2E6 antibody reacts with and the t! I
I! These are the results of investigating the reaction inhibiting properties of the recognition site. A 3-fold dilution series was made using PBS, PH7,2 containing 20% goat serum for patient serum and normal human serum.Next, as in the ELISA plate described above, Lag The dilution series of patient and normal human serum was dispensed at 100 pe/well into each of two rows of a microplate immobilized with each synthetic peptide. After 1 hour of reaction, the liquid was discarded and 0. OI
After washing three times with MPBS, 2E6 hybridoma culture supernatant was evenly added at 100 d/well and allowed to react for 1 hour. Here, each plate has two rows of diluted patient serum or normal human serum treated in the same way.Next, the same washing as above is performed three times, and then patient and normal human serum are washed three times. For the two rows of identically treated dilution series of human serum wells, one row contains goat anti-mouse IgG that reacts with 2B6 antibody, and the other row contains goat anti-mouse IgG that reacts with anti-HIV antibody in patient serum. Goat anti-human (goat anti-human) IgG was added as a peroxidase-labeled secondary antibody, and the mixture was allowed to react at room temperature for 1 hour. After the reaction, each well was washed in the same manner as in the above-mentioned ELISA, and a substrate reaction was performed to show the absorbance at 490 n-. 6th
The horizontal axis of the graph in the figure is the dilution series of patient or normal human serum.
The vertical axis represents absorbance.

図中記号・は上記ELISAプレートに対し患者血清を
反応させた後に2E6と反応させた結果であり、記号O
は上記ELISAプレートに対し正常人血清を反応させ
た後に286と反応させた結果である。又、図の実線は
2次抗体としてヤギ抗マウスIgGを加えたウェルによ
る結果を示し、点線は2次抗体としてヤギ抗ヒfigG
を加えたウェルによる結果を示している。第6図より合
成ペプチドの反応部位を患者血清中の抗HIV抗体でブ
ロッキングした場合と反応部位をブロッキングしない正
常血清の場合とでは2E6はいずれも合成ペプチドに結
合していることが分かった。このことは、患者血清中の
抗HIV抗体と2E6の抗体とがそれぞれ異なる反応部
位を介して合成ペプチドに結合することを示している。
The symbol ・ in the figure is the result of reacting the above ELISA plate with patient serum and then reacting with 2E6, and the symbol O
This is the result of reacting the above ELISA plate with normal human serum and then reacting with 286. In addition, the solid line in the figure shows the results from wells to which goat anti-mouse IgG was added as a secondary antibody, and the dotted line shows the results from wells to which goat anti-mouse IgG was added as a secondary antibody.
The results are shown for wells in which . From FIG. 6, it was found that 2E6 was bound to the synthetic peptide both when the reactive site of the synthetic peptide was blocked with anti-HIV antibody in patient serum and when the reactive site was not blocked by normal serum. This indicates that the anti-HIV antibody and the 2E6 antibody in the patient's serum bind to the synthetic peptide through different reaction sites.

換言すれば本実施例のモノクローナル抗体は抗HIV抗
体と合成ペプチドとの反応を妨げない。
In other words, the monoclonal antibody of this example does not interfere with the reaction between the anti-HIV antibody and the synthetic peptide.

第2表は本実施例のモノクローナル抗体群と不活化され
たHIVとの反応性を確認した結果である0反応には市
販のヒト血清スクリーニング用のELISAキット(パ
スツール社、製造番号7D224)を用いた。このキッ
トはエイズウィルスをそのまま固相化したウェルと固相
化しないウェルの2種類よりなる96ウエルマイクロプ
レートである。まず、本実施例の各モノクローナル抗体
群および反応性の異なるエイズ患者血清並びにコントロ
ールとしてのD−MEM培養液(10%血清を含む)を
それぞれ前記2種類のウェルに加えて反応させた0次に
、2次抗体以降の試薬としてはヒト血清用の本キットの
ものは用いず、第7図以前のELISAと同様のマウス
用試薬を用いて判定を行った0図から明らかなように、
患者血清はいずれもウィルス陽性ウェルに反応し陰性ウ
ェルには反応せずウィルス特異性を示したのに対し、本
実施例のマウスモノクローナル抗体は特に2E6゜3 
Ell、  4 HllのIgG株でそれぞれ前記2種
類のウェルに対して陰性を示した。これはこれらIgG
株のモノクローナル抗体がHrVそのものには結合しな
いことを意味する。一方、その他IgM株は前記2種類
のウェルにおいて反応してしまい、HIMに対する特異
性はみられなかった。
Table 2 shows the results of confirming the reactivity of the monoclonal antibody group of this example with inactivated HIV. For 0 reactions, a commercially available ELISA kit for human serum screening (Pasteur, product number 7D224) was used. Using. This kit is a 96-well microplate consisting of two types of wells: wells in which the AIDS virus is directly immobilized and wells in which the AIDS virus is not immobilized. First, each monoclonal antibody group of this example, AIDS patient serum with different reactivity, and D-MEM culture solution (containing 10% serum) as a control were added to the two types of wells and reacted. As is clear from Figure 0, the determination was made using the same mouse reagents as in the ELISA before Figure 7, without using the reagents from this kit for human serum as reagents after the secondary antibody.
All of the patient sera showed virus specificity by reacting with virus-positive wells and not with virus-negative wells, whereas the mouse monoclonal antibody of this example was particularly sensitive to 2E6゜3.
The IgG strains of Ell and 4 Hll each showed negative results in the two types of wells. This is these IgG
This means that the strain's monoclonal antibodies do not bind to HrV itself. On the other hand, other IgM strains reacted in the two types of wells, and no specificity for HIM was observed.

第2表 以上に示したような特異を持つことにより、本実施例の
モノクローナル抗体はHIV構成蛋白であるgp41を
特異的に認識する陽性標準用の抗体としてウェスタンブ
ロッティングやEIA等に利用できる。また、本モノク
ローナル抗体はマウスハイブリドーマ由来であることか
ら、現在検査室で懸念されているような患者血清の使用
によるバイオハザードの心配もな(、しかも大量生産も
容易なため慢性状態にある標準サンプルの不足を解消す
ることができる。
Due to the specificity shown in Table 2 and above, the monoclonal antibody of this example can be used for Western blotting, EIA, etc. as a positive standard antibody that specifically recognizes gp41, an HIV constituent protein. Furthermore, since this monoclonal antibody is derived from mouse hybridomas, there is no need to worry about biohazards caused by the use of patient serum, which is currently a concern in laboratories. can eliminate the shortage of

第7図は本実施例のモノクローナル抗体を利用した免疫
反応の模式図である。図に示すように本実施例のモノク
ローナル抗体は免疫原の合成ペプチドを抗HIV抗体に
対するのとは異なる反応部位で結合して複合体を形成す
るので、この複合体におけるモノクローナル抗体を反応
容器等に固相化すれば、合成ペプチドにおける抗HIV
抗体との反応部位は隠されることがない、即ち、合成ペ
プチドを直接固相した場合、ペプチドは抗HIV抗体と
の反応部位も含めて全(不均一に付着されるのに比べて
、本性ではペプチドが均一に固定される。従って、本実
施例のモノクローナル抗体によれば公知の凝集試験やE
IAに応用することにより、効率良く安定した抗HIV
抗体の検出を行うことができる。
FIG. 7 is a schematic diagram of an immune reaction using the monoclonal antibody of this example. As shown in the figure, the monoclonal antibody of this example binds the synthetic peptide of the immunogen at a reaction site different from that for the anti-HIV antibody to form a complex, so the monoclonal antibody in this complex is placed in a reaction vessel etc. If immobilized, anti-HIV in synthetic peptides
The sites that react with antibodies are not hidden; in other words, when a synthetic peptide is immobilized directly, the entire peptide, including the sites that react with anti-HIV antibodies, are not hidden (compared to the fact that they are attached heterogeneously). The peptide is uniformly immobilized.Therefore, the monoclonal antibody of this example can be used in known agglutination tests and E.
By applying it to IA, efficient and stable anti-HIV
Antibody detection can be performed.

尚、本発明は上述した実施例に限られることなく、適宜
変更が可能である0例えば免疫原には上述した21個の
アミノ酸配列をもつ合成ペプチドに他のアミノ酸配列を
もつペプチドを追加したものを用いても良い。又、本実
施例では免疫原を投与する際にPVPのような特定のキ
ャリアを媒体として用いたが、適当なアジュバント(例
えばフロイントの完全アジュバント)とともに免疫して
もよい、又、融合にはマウス骨髄腫細胞P3 X 63
− Ag8.653を用いたが、他の種々の公知なミエ
ローマ細胞を使用してもよい。
Note that the present invention is not limited to the above-mentioned embodiments, and can be modified as appropriate. For example, the immunogen may include a synthetic peptide having the above-mentioned 21 amino acid sequence and a peptide having another amino acid sequence. You may also use In addition, in this example, a specific carrier such as PVP was used as a vehicle when administering the immunogen, but immunization may also be carried out with an appropriate adjuvant (for example, complete Freund's adjuvant), or mice may be used for fusion. Myeloma cells P3 x 63
- Although Ag8.653 was used, various other known myeloma cells may be used.

又、クローニングの手段には軟寒天2重層法の他に公知
の限界希釈法等が使用できる。
In addition to the soft agar double layer method, the known limiting dilution method and the like can be used for cloning.

〔本発明の効果] 本発明のモノクローナル抗体によれば、H[vl成蛋白
であるgp41に反応するので、ウェスタンブロッティ
ングまたはEIA等の陽性基準として使用でき、かつハ
イブリドーマ由来であるため検査中のバイオハザードの
心配がない。
[Effects of the present invention] Since the monoclonal antibody of the present invention reacts with gp41, which is an H[vl protein, it can be used as a positive standard for Western blotting or EIA, and since it is derived from a hybridoma, it can be used as a positive standard for biological tests during testing. There is no need to worry about hazards.

又、HIVそのものには反応しないため、ウィルスの破
壊状況、 gp41の露出状況等を検出して分析するた
めに有効に使用することができる。
Furthermore, since it does not react with HIV itself, it can be effectively used to detect and analyze the destruction status of the virus, the exposure status of GP41, etc.

【図面の簡単な説明】[Brief explanation of drawings]

第1図は第1表で示したハイブリドーマのうちE6と命
名されたハイブリドーマをDEAEカラムクロマトグラ
フィーで分画して得られたフラクションパターンを示す
グラフ、 第2図は第1図で得られたフラクションパターンの各ピ
ーク部分の5DS−PAGEポリアクリルアミドゲル電
気床動像の写真、 第3図は各種ハイブリドーマの培養上清の各希釈系列に
よる合成ペプチドとのELISA反応の結果を示すグラ
フ、 第4図は各希釈系列の合成ペプチドに対する各バイブリ
ドーマの培養上清のELISA反応の結果を示すグラフ
、 第5図は各種ハイブリドーマの培養上清と腹水、及びエ
イズ患者血清によるウェスタンブロッティングの結果を
示す写真、 第6図は合成ペプチドとエイズ患者血清との反応に対す
るハリブリドーマ2E6が産生じた抗体の反応阻害性を
示すグラフ、 第7図は本実施例のモノクローナル抗体を介して合成ペ
プチドを固相化した抗HIV抗体検出法における抗HI
V抗体の結合状態を示す模式図である。
Figure 1 is a graph showing the fraction pattern obtained by fractionating the hybridoma named E6 among the hybridomas shown in Table 1 by DEAE column chromatography. Figure 2 is a graph showing the fraction pattern obtained in Figure 1. A photograph of a 5DS-PAGE polyacrylamide gel electrocardiogram of each peak part of the pattern, Figure 3 is a graph showing the results of ELISA reaction with synthetic peptides using various dilution series of culture supernatants of various hybridomas, Figure 4 is Graph showing the results of ELISA reaction of the culture supernatant of each hybridoma against each dilution series of synthetic peptides, Figure 5 is a photograph showing the results of Western blotting with culture supernatant of various hybridomas, ascites fluid, and AIDS patient serum, Figure 6 The figure is a graph showing the reaction inhibitory effect of the antibody produced by hybridoma 2E6 on the reaction between the synthetic peptide and AIDS patient serum. Figure 7 shows the anti-HIV antibody immobilized with the synthetic peptide via the monoclonal antibody of this example. Anti-HI in detection method
FIG. 2 is a schematic diagram showing the binding state of V antibody.

Claims (1)

【特許請求の範囲】[Claims] 1、ヒト免疫不全ウィルスHIVの膜蛋白gp41由来
のアミノ酸配列の一部に一致する合成ペプチドをヒト以
外の動物に免疫し免疫後の該動物の脾細胞と骨髄腫細胞
との融合細胞から産生されるモノクローナル抗体であっ
て、HIV本体には反応せず、膜蛋白gp41と反応す
ることを特徴とするHIV構成蛋白に対するモノクロー
ナル抗体。
1. A synthetic peptide that matches part of the amino acid sequence derived from the membrane protein gp41 of the human immunodeficiency virus HIV is immunized into a non-human animal, and produced from a fused cell of the animal's splenocytes and myeloma cells after immunization. A monoclonal antibody against an HIV constituent protein, which is characterized by not reacting with the HIV body but reacting with the membrane protein gp41.
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