JPH02502337A - Plasmodium falciparum rod body antigen - Google Patents
Plasmodium falciparum rod body antigenInfo
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。 (57) [Summary] This bulletin contains application data before electronic filing, so abstract data is not recorded.
Description
【発明の詳細な説明】 プラスモジウム・ファルシパルムの桿小体抗原本発明は、プラスモジウム・ファ ルシパルム(Plasmodium falciparua)の生育を阻害し得 る免疫応答および抗体を生じ得る無性血液期のプラスモジウム・ファルシパルム の抗原の同定、並びに免疫化、診断および治療法におけるこの抗原およびこれに 対する抗体の使用に関するものである。[Detailed description of the invention] Plasmodium falciparum rod body antigen The present invention is directed to Plasmodium falciparum rod body antigen. Can inhibit the growth of Plasmodium falciparua. Asexual blood stage Plasmodium falciparum that can generate immune responses and antibodies Identification of this antigen and its use in immunization, diagnostic and therapeutic methods It concerns the use of antibodies against.
桿小体抗原は、宿主の免疫メカニズムに近づきやすいことおよび赤血球の侵聾過 程に関与していると考えられていることのために、究において、とりわけ興味深 い。多数の桿小体抗原が、イ、ン・ビボまたはイン・ビトロにおいて、無性血液 期のP、ファルシパルムの生育を阻害する免疫応答を惹起し得ることが知られて いる(1.2)。Rod body antigens are known for their accessibility to host immune mechanisms and their invasion of red blood cells. It is of particular interest in research because it is believed to be involved in stomach. A large number of rod body antigens have been detected in asexual blood in vivo or in vitro. It is known that P. falciparum can induce an immune response that inhibits the growth of P. falciparum. There is (1.2).
本発明の1態様によれば、 特表千2−502337(2) (i)約55kI)aの見かけの分子量を有し;(ii)!リスチン酸を伴った 糖タンパクであり;(iii )桿小体の位置に一致するメロゾイトの制限され た位置に存在し;(iv)寄生体抗原を界面活性剤、例えば界面活性剤であるト リトンX−114で相分配することによって分離する時、界面活性剤相に抽出さ れる ことを特徴とする、無性血液期のプラスモジウム・ファルシパルムの桿小体抗原 、またはその抗原フラグメントが提供される。According to one aspect of the invention, Special Table Sen2-502337 (2) (i) has an apparent molecular weight of approximately 55kI)a; (ii)! with listic acid glycoprotein; (iii) restricted in merozoites corresponding to the location of rod bodies; (iv) the parasite antigen is present in a surfactant, e.g. When separated by phase partitioning with Riton be able to A rod body antigen of Plasmodium falciparum in the asexual blood stage, characterized by , or antigenic fragments thereof.
抗原は、第2図に記載のアミノ酸配列を含む一次構造を有するポリペプチドまた はその抗原フラグメントであるのが好ましい。The antigen is a polypeptide or polypeptide having a primary structure comprising the amino acid sequence shown in FIG. is preferably an antigenic fragment thereof.
本発明はまた、本発明の抗原またはその抗原フラグメントを宿主に投与すること からなる、プラスモジウム・ファルシパルムに対し、宿主を能動的に免疫するた tの方法を提供するものである。The invention also provides for administering an antigen of the invention or an antigenic fragment thereof to a host. to actively immunize the host against Plasmodium falciparum, which consists of The present invention provides a method of t.
本発明は、本発明の抗原またはその抗原フラグメント、薬学的に許容し得る担体 または希釈剤、および所望によりアジユバントを含有してなるワクチンを提供す るものである。The present invention provides an antigen of the present invention or an antigen fragment thereof, a pharmaceutically acceptable carrier, or a diluent, and optionally an adjuvant. It is something that
本発明のその他の特色は、以下の実施例の詳細な記載かみ明らか叉籏男 この実施例では、P、ファルシパルムの推定細胞膜内タンパクを濃厚にするため に、界面活性剤であるトリトンX−114の水溶液の温度依存性相分離による界 面活性剤相への細胞膜内タンパクの選択的分配を使用した。次いで、パプア・二 ニー・ギニアからの患者から得たヒト抗体をニトロセルロースにプロットした後 、これらを、これらの抗原に対してアフィニティー精製した。この精製ヒト抗体 を、これらの抗原に相当するポリペプチドフラグメントを発現して、いるニジエ リシア・コリ(Escherichia coli)の組換えクローンを同定す るために使用した。Other features of the invention will be apparent from the detailed description of the examples below. In this example, to enrich the putative cell membrane proteins of P. falciparum In this study, an interface was created due to temperature-dependent phase separation of an aqueous solution of Triton X-114, a surfactant. Selective partitioning of intracellular membrane proteins into the surfactant phase was used. Next, Papua After plotting human antibodies from a patient from Guinea on nitrocellulose. , which were affinity purified against these antigens. This purified human antibody , which expresses polypeptide fragments corresponding to these antigens. Identification of recombinant clones of Escherichia coli It was used to
この研究で使用したP、ファルシパルムJllI1体FCQ27/PNG(Fe 12)の起源は、別に記載した(2)。ソルビトール処理にょうて同調させた寄 生体を、2−7%の範囲の寄生体面と一緒に0.25%ヘマクリット(血中赤血 球容積比)で培養した。全試料を洗浄し、遠心して培地を除去し、ヒト張度のリ ン酸緩衝化食塩水(HTPBS)と交換した。次いで、細胞をペレット化し、I RQずつ封入した細胞を急凍し、更に処理するまで一70℃で貯蔵した。P used in this study, Falciparum JllI1 body FCQ27/PNG (Fe The origin of 12) was described separately (2). The synchronized cells were treated with sorbitol. The organisms were treated with 0.25% hemacrite (blood red blood) along with a parasite surface in the range of 2-7%. The cells were cultured at a sphere volume ratio). Wash all samples, centrifuge to remove medium, and recalibrate human tonicity. The solution was replaced with acid buffered saline (HTPBS). Cells were then pelleted and I The RQ-encapsulated cells were snap frozen and stored at -70°C until further processing.
トリトンX−114による可溶化および相分離実質上、ボーディアー(B or dierX4 )の記載に従い、以下の改良を加えて、トリトンX−114によ る可溶化、および疎水性、親水性および不溶性フラクションの分離を行った。ト リトンX−114人)を、ヒト張度のリン酸緩衝化食塩水(HTPBS)中で予 め濃縮した。先に封入した寄生体化した細胞111Qを、10分間隔で穏やかに 撹拌しながら、0.5%トリドア’X −114’(15z12)中、水上で9 0分間、可溶化した。全体のlleを試料としてとり、急凍した。Solubilization and phase separation with Triton dierX4), and added the following improvements to Triton Solubilization and separation of hydrophobic, hydrophilic and insoluble fractions were carried out. to Liton It was concentrated. The previously encapsulated parasitized cells 111Q are gently injected at 10 minute intervals. 9 on water in 0.5% Toridoa'X-114' (15z12) with stirring. Solubilized for 0 minutes. The entire lle was taken as a sample and rapidly frozen.
次ぎに、残りの15xI2を10.000xg、4℃で15分間遠心し、不溶性 物質をとった。上清を除去し、この段階を繰り返した。次ぎに、沈澱した物質( 不溶性ペレット)を、0.5%トリトンX−114中で更に3回洗浄した後、H TPBSlzff中で急凍した。次いで、界面活性剤可溶性物質を、冷6%シー クロース、0.06%トリトンX−114のシュクロースクッション10j11 2上に注意深く積層L、37℃の水浴に5分間入れ、次いで37℃、500 X s+で5分間遠心した。遠心後、界面活性剤が除去された上層15j112を集 め、氷上で冷却した。シュクロースクッション10xffを捨て、界面活性剤豊 富なベレット(1−2112)を水上にて冷HTPBSIO!12で再懸濁した 。再懸濁した界面活性剤豊富な相を再びシークロースクッション上に積層し、3 7℃で5分間おき、遠心によって再ペレット化した。Next, the remaining 15xI2 was centrifuged at 10.000xg for 15 minutes at 4°C to remove the insoluble I took the substance. The supernatant was removed and this step was repeated. Next, the precipitated material ( The insoluble pellet) was washed three more times in 0.5% Triton X-114, then washed with H It was quickly frozen in TPBSlzff. The surfactant soluble material was then added to the cold 6% seaweed. Sucrose cushion 10j11 of sucrose, 0.06% Triton X-114 Carefully stack on top of the 2L, put in a 37 °C water bath for 5 minutes, then 500X at 37 °C. Centrifugation was performed for 5 minutes at s+. After centrifugation, collect the upper layer 15j112 from which the surfactant has been removed. and cooled on ice. Discard the sucrose cushion 10xff and use the surfactant enriched Cold HTPBSIO of rich beret (1-2112) on the water! resuspended at 12 . The resuspended surfactant-rich phase was again layered onto the seacloth cushion and 3 The mixture was incubated at 7°C for 5 minutes and re-pelleted by centrifugation.
この第2の沈澱後、界面活性剤豊富なベレy)をHTPBS5xffに再懸濁し 、急凍した。シュクロースクッション分離によって界面活性剤が除去された上層 を、水上、11.4%トリトンX−114をIMI2加え、撹拌して溶液とし、 37℃で5分間加温し、次いで、遠心し、トリトンX−114ベレツトを捨てる ことによって更に疎水性タンパクを除去した。この一連の処理を3回繰り返した 。次いで、残りの、界面活性剤が除去された水溶液(水相)を急凍した。全試料 を、検定まで一70℃で貯蔵した。After this second precipitation, the surfactant-rich belay) was resuspended in HTPBS5xff. , it froze quickly. Upper layer from which surfactant was removed by sucrose cushion separation on water, add IMI2 of 11.4% Triton X-114, stir to make a solution, Incubate at 37°C for 5 minutes, then centrifuge and discard the Triton X-114 pellet. This further removed hydrophobic proteins. This series of processes was repeated three times. . Next, the remaining aqueous solution (aqueous phase) from which the surfactant was removed was rapidly frozen. All samples were stored at -70°C until assay.
電気泳動およびイムノブロッティング ドデシル硫酸ナトリウムポリアクリルアミドゲル電気泳動(S’DS−PAGE )のための試料を還元条件下で調製し、10%スラブゲル上で電気泳動した。タ ンパクについて検定しようとするゲルをクーマシー・ブリリアント・ブルーで染 色した。イムノブロッティングによって検定しようとする試料を10%スラブゲ ル上で分画し、電気泳動的にニトロセルロースシートに移した。移した後、ニト ロセルロースをHTPBS中の5%(W/V)脱脂乳粉末(B 1otto)で ブロックし、B Iotto中で適当に希釈した血清またはアフィニティー精製 ヒト抗体でプローブした。結合した抗体を、1161−プロティンAでプローブ し、次いで、オートラジオグラフィーすることによって検出した。プロティンA (ファルマシア・ファイン・ケミカルズ、ウプサラ、スウェーデン(Pharm acia Fine Chemicals、Uppsala、 Sweden) )は、クロラミンT法によって40uC5/ltg−’の比活性にヨウ化した。Electrophoresis and immunoblotting Sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis (S’DS-PAGE) ) samples were prepared under reducing conditions and electrophoresed on a 10% slab gel. Ta Stain the gel to be assayed for protein with Coomassie Brilliant Blue. It was colored. Samples to be assayed by immunoblotting were added to a 10% slab gel. fractionated on a nitrocellulose sheet and electrophoretically transferred to a nitrocellulose sheet. After transferring, nit cellulose in 5% (W/V) skim milk powder (B1otto) in HTPBS. Blocked and diluted serum appropriately in Biotto or affinity purified Probed with human antibodies. Bound antibodies were probed with 1161-Protein A. and then detected by autoradiography. Protein A (Pharmacia Fine Chemicals, Uppsala, Sweden) acia Fine Chemicals, Uppsala, Sweden) ) was iodinated to a specific activity of 40 uC5/ltg-' by the chloramine T method.
ポリクローナル単一特異性ヒト抗体のアフィニティー精製先行文献(5)の様に して、かつ、この実施例では以下に述べる様ニジて、ニトロセルロースに電気泳 動的に移したトリトンX−114可溶性抗原で、ヒト血清または血漿から抗体を アフィニティー精製した。トリトンX−114で抽出した膜抗原の還元試料を電 気泳動的に分離し、ニトロセルロースに移した。調べたい領域を決定するために 、放射活性なI′C高分子量マーカー(アマ−ジャム(Amersham))を 使用した。調べたい領域に対応するニトロセルロースの細片を、マラリアにさら されたヒトからの血清または血漿と一緒に4°Cで8時間インキュベートした。Affinity purification of polyclonal monospecific human antibodies As in previous literature (5) and in this example, electrophoresis was performed on nitrocellulose as described below. Dynamically transferred Triton X-114 soluble antigen to generate antibodies from human serum or plasma. Affinity purified. A reduced sample of membrane antigen extracted with Triton X-114 was electrolyzed. Aerophoretically separated and transferred to nitrocellulose. to determine the area you want to investigate , a radioactive I'C high molecular weight marker (Amersham). used. A strip of nitrocellulose corresponding to the area of interest is exposed to malaria. The cells were incubated for 8 hours at 4°C with serum or plasma from treated humans.
血清を除去し、ニトロセルロースの細片を、B 1ottoを6回、HTPBS を3回取り替えて2時間以上激しく洗浄し、次いでホウ酸緩衝液(0,1Mグリ シン、0.15M塩化ナトリウム、pH2,6)中で15分間洗浄した(10分 間)。Remove the serum and remove the nitrocellulose strips with B1otto 6 times in HTPBS. Wash vigorously for at least 2 hours with 3 changes of Syn, 0.15M sodium chloride, pH 2,6) for 15 minutes (10 minutes while).
溶離した抗体を2M)リス−HCffpH8,0で直ちに中和し、0゜05%ア ジ化ナトリウムを加えて4℃で貯蔵した。このアフィニティー精製した抗体を、 B 1otto中で1=2希釈してイムノプロットおよびλAll1p3cDN Aライブラリーフィルターをプローブするか、または、免疫蛍光検定のために、 セントリコン・マイクロコンセントレータ−(Centricon m1cro concentrator(アミコン(Amicon))) 。The eluted antibody was immediately neutralized with 2M) Lis-HCff pH 8.0 and then diluted with 0.05% Sodium diide was added and stored at 4°C. This affinity purified antibody is B Immunoplot and λAll1p3 cDNA with 1=2 dilution in 1otto A to probe library filters or for immunofluorescence assays. Centricon Micro Concentrator (Centricon m1cro) concentrator (Amicon).
を使用して濃縮した。抗体を更に、ニトロセルロース上、ローン(芝生状物)と して増殖した免疫陽性λA mp3クローンから直接溶離した。It was concentrated using The antibody was further coated on nitrocellulose with a lawn. were directly eluted from immunopositive λAmp3 clones grown in the same manner.
分解したローンを有するフィルターを、ホウ酸およびグリシン緩衝液で予め溶離 し、血清と一緒にインキュベートし、上記と同様にして単一特異性抗体を溶離し た。アフィニティー精製のこの第2の方法には、抗E、コリ抗体の除去が必要で あり、これは、音波処理および対照λAmp3Am−ンのローンで行われた。Filters with degraded lawns were pre-eluted with boric acid and glycine buffer. and incubate with serum and elute monospecific antibodies as above. Ta. This second method of affinity purification requires removal of anti-E. coli antibodies. This was done on sonicated and control λAmp3Am-n lawns.
けるその増幅およびE、コリにおける溶菌性発現の詳細は、(6)に記載されて いる。ヒト抗体を用いる系中コロニー免疫検定による抗原発現クローンの検出も 、(6)に記載されている。(7)に記載の様にして、液体培養中で陽性クロー ンを増殖および誘導し、電気泳動のために試料緩衝液で抽出した。試料を10% 5DS−PAGEスラブゲルで電気泳動し、タンパクについて染色するか、また はイムツブロフトしてアフィニティー精製抗体で検定し、β−ガラクトシダーゼ との安定な融合ポリペプチドの存在または非存在を検出した。Details of its amplification and lytic expression in E. coli are described in (6). There is. Detection of antigen-expressing clones by in-system colony immunoassay using human antibodies , (6). Positive clones were cultured in liquid culture as described in (7). The cells were grown and induced and extracted with sample buffer for electrophoresis. 10% sample Electrophoresed on a 5DS-PAGE slab gel and stained for proteins or were immunoblofted and assayed with affinity-purified antibodies to detect β-galactosidase. The presence or absence of a stable fusion polypeptide with was detected.
抗体の消耗(枯渇) 免疫陽性クローンの1xj2培養を誘導し、遠心によってベレット化し、液体培 地を除去した。ペレットを3回、凍結および解凍し、溶解した細胞をHTPBS lxffに再懸濁した。PNG血清20μaを加え、このリゼートと一緒に4℃ で3時間インキ−ベートした。次に、生じた融合ポリペプチドに帰し得る抗体の 消耗の程度を調べるために、細胞残骸を10,000xyで遠心し、上清を使用 して、トリトンX−114抽出しイムノブロッティングした寄生体膜タンパク抗 原をプローブした。Antibody exhaustion (depletion) 1xj2 cultures of immunopositive clones were induced, pelleted by centrifugation, and cultured in liquid culture. removed the ground. Freeze and thaw the pellet three times and lyse the lysed cells in HTPBS. Resuspended in lxff. Add 20 μa of PNG serum and incubate with this lysate at 4°C. Incubation was carried out for 3 hours. Next, antibodies attributable to the resulting fusion polypeptide are detected. To examine the extent of depletion, centrifuge the cell debris at 10,000xy and use the supernatant. Triton X-114 extracted and immunoblotted parasite membrane protein anti- probed the original.
免疫陽性λAs3クローンのサブクローニング免疫陽性クローンからλAmp3 Am−ジを単離し、cDNA挿入特表千2−502337 (4) 体を記載の様にしてEcoRI消化によ゛って抽出した。精製し鶴挿入体を、サ ンガーのジデオキシ法(8,9)によって決定された1本鎖配列のためのM13 ベクターに、そしてゲイリー・コバーン(GaryCoburn) (バイオテ クノロジー・オーストラリア・プロブライエタて快く提供されたpBTA224 (PUR−290の修飾)にサブクローンした。プラスミドベクターpBTA2 24は、E、コリ細胞における発現ベクターであり、クローンをコロニー免疫検 定によって免疫反応性について再スクリーニングした。Subcloning of immunopositive λAs3 clones λAmp3 from immunopositive clones Isolate Am-di and insert cDNA The bodies were extracted by EcoRI digestion as described. Refined Tsuru insert, support M13 for single-stranded sequences determined by Nger's dideoxy method (8,9) Vector, and Gary Coburn (Biotech) pBTA224 kindly provided by Knology Australia Proprietor. (modification of PUR-290). Plasmid vector pBTA2 24 is an expression vector in E. coli cells, and clones were subjected to colony immunoassay. The cells were rescreened for immunoreactivity by assay.
間接免疫蛍光 P、ファルシパルムの非同調性培養からの寄生体化赤血球の薄い血液フィルムを 風乾し、100%アセトン中、−20℃で20分間固定した。スライドを、漬ア フィ、ニティー精製単一特異性ヒト抗体、第2の抗体としてのフルオレセインー コンジエゲートシタヒツシ抗ヒト1g抗血清と一緒にインキ1ベートした。寄生 体の核を臭化エチジウムで対比染色した。indirect immunofluorescence Thin blood films of parasitized red blood cells from asynchronous cultures of P. falciparum Air dried and fixed in 100% acetone at -20°C for 20 minutes. Dip the slide into Fluorescein as a second antibody - purified monospecific human antibody The ink was incubated with Condiegate Shitahitsushi anti-human 1g antiserum. Parasitic Body nuclei were counterstained with ethidium bromide.
図面に対する説明 P、ファルシパルム感染赤血球のトリトンX−114抽出物を、10%5DS− PAGEで分画し、電気泳動的にニトロセルロースに移し、(a)集めた成人P N G血清、(b)アフィニティー精製ポリクローナルヒト抗体、または(C )アフィニティー精製単一特異性ヒト抗体でプローブした。Explanation for drawings Triton X-114 extract of P. falciparum infected red blood cells was added to 10% 5DS Fractionated by PAGE and electrophoretically transferred to nitrocellulose, (a) collected adult P N G serum, (b) affinity purified polyclonal human antibody, or (C ) probed with affinity-purified monospecific human antibodies.
(a)および(b)において、レーンは、(1)非感染赤血球対照、(2)全非 分画物質、(3)水相、(4) ) !j )ン相、(5)不溶性物質である。In (a) and (b), the lanes are (1) uninfected erythrocyte control, (2) whole non- Fractionated substance, (3) aqueous phase, (4))! (5) an insoluble substance.
(e)では、Ag512.のフィルターローン上、集めた成人PNG血清からヒ ト単一特異性抗体をアフィニティー精製し、(1)トリトンX−114相抗原の 対照細片を、集めた血清でプローブし、(2)アフィニティー精製した抗Ag5 12を、複製したフィルター細片に対してプローブした。In (e), Ag512. Human PNG serum was collected on a filter lawn. (1) Triton X-114 phase antigen Control strips were probed with collected serum and (2) affinity purified anti-Ag5. 12 were probed against duplicate filter strips.
里2Σ 単一のオープンリーディングフレームの予想アミノ酸配列を用いたAt512の 部分ヌクレオチド配列。Sato2Σ of At512 using the predicted amino acid sequence of a single open reading frame. Partial nucleotide sequence.
!旦Σ 非同調性血液フィルム上、間接免疫蛍光検定で使用したアフィニ小体に局在する 抗原に特有の蛍光の斑点状パターンを有する成熟シゾントが描いである。! DanΣ localized to affini bodies used in indirect immunofluorescence assays on asynchronous blood films A mature schizont with a speckled pattern of antigen-specific fluorescence is depicted.
トリトンX−114へのP、ファルシパルム抗原のサブセットの分配 P、ファルシパルムで繰り返し感染させたヒトからの血清を使用して、トリトン X−114中相分離によって分画したP、ファルシパルム抗原のイムノプロット をプローブすると、数種類の予想される細胞膜内タンパク抗原が同定される。こ れらの大部分の優性な抗原は5DS−PAGE分析で求めると21,000.3 5,000.42.000,50,000および55,000の相対分子jl( Mr)を有していた。この抗原抽出物を、多数のクローニングしたP、ファルシ パルム抗原に対して生じた抗血清でプローブするか、またはアフィニティー精製 した時、分子量21,000トリトンX−114可溶性抗原は、環状スポロゾイ トタンパク関連抗原(CRA)であるノ酸疎水性配列を有していることが知られ ており(10)、この方法がこの様な分子を選択することを確認する。その他の トリトンX−114可溶性抗原は、今までに特性化された多数のP、ファルシパ ルム抗原のいずれにも対応しないらしい。Distribution of a subset of P. falciparum antigens to Triton X-114 triton using serum from humans repeatedly infected with P. falciparum. Immunoplot of P, falciparum antigen fractionated by X-114 medium phase separation. probing identifies several putative intracellular membrane protein antigens. child The dominant antigen for most of them was determined by 5DS-PAGE analysis and was 21,000.3 5,000.42.000, 50,000 and 55,000 relative molecules jl ( Mr. This antigen extract was combined with a large number of cloned P. falciparum Probe with antiserum raised against parm antigen or affinity purify When the molecular weight 21,000 molecular weight Triton X-114 soluble antigen was It is known that it has a noic acid hydrophobic sequence, which is a protein-associated antigen (CRA). (10), confirming that this method selects for such molecules. Other Triton X-114 soluble antigen is derived from numerous previously characterized P. It seems that it does not correspond to any of the rum antigens.
分子量35−55.000の一連のタンパクに特異的な精製抗体を得るために、 P、ファルシパルムのトリトンX−114抽出物を電気泳動的に分画し、ニトロ セルロースに移した。次いで、ニトロセルロースフィルターの適当な領域を切断 し、ヒト血清から対応する°抗体をアフィニティー精製するための吸着体として 使用した(原料および方法)。精製抗体を、これらを、分画したP、ファルシパ ルムタンパクと反応させることによって、特異性について試験した。In order to obtain purified antibodies specific for a series of proteins with a molecular weight of 35-55,000, Triton X-114 extract of P. falciparum was electrophoretically fractionated and nitro Transferred to cellulose. Then cut a suitable area of the nitrocellulose filter and as an adsorbent for affinity purification of the corresponding ° antibodies from human serum. Used (Materials and Methods). The purified antibodies were purified using fractionated P, falcipa Specificity was tested by reacting with rum protein.
これらの精製抗体がほとんど独占的に、トリトンX−114相に選択的に分配す るこれらの分子量35−55,000の抗原と反応するということは、第1b図 に明らかである。These purified antibodies almost exclusively partition selectively to the Triton X-114 phase. The fact that these molecules react with antigens with a molecular weight of 35-55,000 is shown in Figure 1b. It is clear that
これらの抗原を発現しているクローンを単離するために、P、ファルシパルムの cDNA配列を発現しているλAmp3Am−ンのライブラリーを、アフィニテ ィー精製抗体でスクリーニングした。この方法によって検出された陽性の溶原性 クローンを、単一のコロニーを得るために再プレートした。To isolate clones expressing these antigens, P. falciparum A library of λAmp3Ammon expressing the cDNA sequence was Screening was carried out using purified antibodies. Positive lysogeny detected by this method Clones were replated to obtain single colonies.
トリトンX−114可溶性抗原に対応する選択コロニー選択したクローンの;− ン上でアフィニティー精製した抗体を、10個のクローン列上コロニー免疫検定 において、および寄生体抗原のイムノプロットをプローブするために使用した。Selected colonies corresponding to Triton X-114 soluble antigen;- Antibodies affinity-purified on a clone array were subjected to colony immunoassay on 10 clone arrays. and used to probe immunoplots of parasite antigens.
7個のクローンが、トリトンX−114相から分子量55.000の抗原をコー ドしている兄弟であることがわかった。最も免疫反応性の強いクローンを典型的 なりローンとして選択し、Ag512と名付けた。Seven clones encoded an antigen with a molecular weight of 55,000 from the Triton X-114 phase. It turned out that they were brothers. Typical of the most immunoreactive clones I selected it as a loan and named it Ag512.
5DS−PAGE、次いでタンパク染色またはイムノブロッティングによってク ローンを検定したところ、Ag512の7個の兄弟クローン全てが、β−ガラク トシダーゼと不安定な融合タンパクを生成することがわかった。免疫血清を、大 部分の免疫反応性cDNAクローン、Ag512の音波処理物と合し、次いで、 P、ファルシパルムのトリトンX−114抽出物のイムノプロットをプローブす る寄生体抗原に対する全ての検出可能な抗体反応性を全て除去した。この様に、 このcDNAクローンは明らかに、この抗原における優性な天然の免疫原性エピ トープをコードしている。Clear by 5DS-PAGE followed by protein staining or immunoblotting. When clones were assayed, all seven sibling clones of Ag512 were found to be β-galactin. It was found to produce an unstable fusion protein with tosidase. Immune serum, partial immunoreactive cDNA clones, combined with sonication of Ag512, and then Probing the immunoplot of Triton X-114 extract of P. falciparum All detectable antibody reactivity against parasite antigens was removed. Like this, This cDNA clone clearly represents the dominant natural immunogenic epitope on this antigen. Coded taupe.
腔凰旦主互魅p農只葺 時期特異的寄生体標本をトリトンX−114で抽出し、5DS−PAGEによっ て分画し、イムノプロットをPNG血清でプローブした。Ag512に対応する 抗原は、寄生体のライフサイクルの全ての時期に存在したが、無性環(リング) およびトロフオゾイト期に最も少なく、後期シゾント標本に最も多い。後期シゾ ントおよびメロゾイト期では、抗原は界面活性剤であるトリトンX−114に全 く可溶性であったが、環およびトロフオゾイト期では、これは、トリトンX−1 14相および不溶性ペレットの両者に分配された。トリトンX−114抽出物は 、培養中間調的に得られるP、ファルシパルムの5株から調製された。抗原は、 全ての株に存在し、抗原のサイズまたは免疫反応性において明白な、株に関連す る相違はなかった。Room 凰dansu mutual charm p farmhouse roof Period-specific parasite specimens were extracted with Triton X-114 and analyzed by 5DS-PAGE. and immunoplots were probed with PNG serum. Compatible with Ag512 Antigens were present at all stages of the parasite's life cycle, but only in the asexual ring. and least abundant in the trophozoite stage and most abundant in late schizont specimens. Late Schizo At the merozoite and merozoite stages, the antigen is completely absorbed by the surfactant Triton X-114. In the ring and trophozoite stages, it was very soluble in Triton 14 partitioned into both phase and insoluble pellets. Triton X-114 extract , prepared from five strains of P. falciparum obtained by culture intertone. The antigen is Strain-associated strains that are present in all strains and are evident in antigen size or immunoreactivity. There were no differences.
Ag5 ] 2のヌクレオチドおよびアミノ酸配列Ag512のヌクレオチド配 列および予想される翻訳を第2図に提供する。cDNAクローンは、完全なコー ド配列をコードしていない。これは、β−ガラクトシダーゼの枠内(インフレー ム)にある1個のオープンリーディングフレームを有し、°クローンは、E、コ リ中で不安定な融合ポリペプチドを生じる。配列は、839塩基対長さであり、 長い反復エレメントを有していない。配列は疎水性アミノ酸の広がりを含んでい ない。コードされたポリペプチドは、33、534ダルトンの予想分子量を有し ている。Ag5] 2 nucleotide and amino acid sequence nucleotide sequence of Ag512 The columns and expected translations are provided in Figure 2. A cDNA clone is a complete code code array is not coded. This is within the framework of β-galactosidase (inflationary The clone has one open reading frame located in This results in a fusion polypeptide that is unstable in the cell. The sequence is 839 base pairs long; Does not have long repeating elements. The sequence contains a stretch of hydrophobic amino acids. do not have. The encoded polypeptide has a predicted molecular weight of 33,534 Daltons. ing.
Ag512は推測上の桿小体抗原に対応するAg512に対するアフィニティー 精製ヒト抗体を、記載の様にして調製し、濃縮し、非同調性血液フィルム上、間 接免疫蛍光検定で使用した。観察された蛍光パターンは、メロゾイトの桿小体器 官内の抗原の位置に一致している。Ag512 has affinity for Ag512, which corresponds to a putative rod body antigen. Purified human antibodies were prepared as described, concentrated and plated on non-synchronized blood films. used in the immunofluorescence assay. The observed fluorescence pattern is the rod body organ of merozoites. This corresponds to the location of the antigen in the body.
ディスカッシ1ン この実施例は、P、ファルシパルム、の細胞膜内タンパク抗原の温度依存性トリ トンX−114界面活性剤分離を示している。トリトンX−114相へ分配され る抗原の1つは、CRA、即ち、細胞膜内タンパクに典型的な既知の一次構造の 十分特性化された抗原として識別された。トリトンX−114に分配するその他 の主要な抗原は、分子量40−55.000の範囲に集まり、明らかに、今まで にクローニングされた抗原に相当しなかった。ニトロセルロースに移した後、こ れらのタンパクを使用してポリクローナル単一特異性ヒト抗体をアフィニティー 精製し、これを使用してメロゾイトの桿小体タンパクに対応する、Ag512と 名付けられたクローンをλAmp3 cDNA発現ライブラリーから単離した。Discuss 1 This example demonstrates the temperature-dependent triggering of the intracellular membrane protein antigen of P. falciparum. Figure 3 shows Ton X-114 surfactant separation. partitioned into Triton X-114 phase One such antigen is CRA, a protein with a known primary structure typical of intracellular membrane proteins. It was identified as a well-characterized antigen. Others distributed to Triton X-114 The major antigens of did not correspond to the antigen cloned in After transferring to nitrocellulose, this Affinity polyclonal monospecific human antibodies using these proteins Ag512 and Ag512, which correspond to merozoite rod body proteins, were purified and used. The named clones were isolated from the λAmp3 cDNA expression library.
Ag512に対する抗体はく調べたP、ファルシパルムの全ての株に存在し、無 性ライフサイクル期の全てに存在する分子量55.000のトリトンX−114 可溶性タンパクと反応した二これらの抗体を用いて間接免疫蛍光顕微鏡検査する と、成熟期における強い染色に、“ダブルドツト”のブドウ様パターンを、メロ ゾイトに桿小体抗原に対する抗体に特有のパターン与えた。Ag512関連抗原 の一次構造の一部分論された。Antibodies against Ag512 were present in all strains of P. falciparum screened, and none Triton X-114 with a molecular weight of 55.000, present in all stages of the sexual life cycle Indirect immunofluorescence microscopy using two of these antibodies reacted with soluble proteins. The grape-like pattern of ``double dots'' is strongly dyed during the ripening stage. Antibodies against rod body antigens gave zoites a distinctive pattern. Ag512 related antigen Part of the primary structure was discussed.
ネイチ+−(Nature)、 294: 361−3642、ペリン(Per rin、 L、H,)+ メルクリ(Merkli、 B−)+ ガブラ( Gabra。Nature, 294: 361-3642, Perrin rin, L, H,) + Merkli (B-) + Gabura ( Gabra.
M、 S、 )、 スト・ツカ−(Stocker、 J、 L )+ シ ゾリニ(Chizzol ini。M, S, ), Stocker (Stocker, J, L) + Shi Chizzolini.
)(J、Cl1n、Invest、) 75: 1,71g−1721゜3、デ ィン(Chen、 P、)+ラモン(Lamont、 G、)+ エリオツド( Elliot。) (J, Cl1n, Invest,) 75: 1,71g-1721°3, De Chen, P,) + Lamont, G,) + Elliott ( Elliot.
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7、アンダース(Anders、 R,F、)+ コツペル(Coppel、 R,L、)、ブラウン(Browrb c、v、)+ セイント(Saint、 R,B、)、 カラマン(Cotman。7. Anders (R, F,) + Coppel (Coppel, R, L,), Brown (Browrb c, v,) + Saint (Saint, R, B, ), Cotman.
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