JPH02501441A - How to cultivate pearls - Google Patents

How to cultivate pearls

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JPH02501441A JP63508678A JP50867888A JPH02501441A JP H02501441 A JPH02501441 A JP H02501441A JP 63508678 A JP63508678 A JP 63508678A JP 50867888 A JP50867888 A JP 50867888A JP H02501441 A JPH02501441 A JP H02501441A
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。 (57) [Summary] This bulletin contains application data before electronic filing, so abstract data is not recorded.

Description

【発明の詳細な説明】 真珠の養殖方法 〔関連出願についてのクロス・リファレンス3本出願は、1987年7月28日 付で出願された出願番号第102、127号の一部継続出願である。[Detailed description of the invention] How to cultivate pearls [Cross reference 3 to related applications This application was filed on July 28, 1987 This is a partial continuation of Application No. 102 and No. 127 filed with the above.

序 言 〔技術分野〕 本発明は、真珠の養殖方法および該方法に利用される組成物に関し、詳しくは、 真珠産生性軟体動物腹足類に見い出される外套組織の生物学的および生化学的活 性を持続する生体外培養系を使用する真珠の生産方法に関する。Preface 〔Technical field〕 The present invention relates to a method for cultivating pearls and a composition used in the method. Biological and biochemical activities of mantle tissue found in pearl-producing mollusk gastropods. This invention relates to a method for producing pearls using an in vitro culture system that maintains their sex.

最も一般的には、真珠は双殻類、特に真珠貝として知られている各種海産様によ り形成され宝石である。真珠は、貝の体内に侵入した異物、一般に寄生体、砂粒 またはじやり細片により惹起される刺激に対する防御として形成される。異物を 軟組織層に包み込み、次いで殻に真珠質が平行に配列されるのと同様に、その表 面に真珠層が配列される。すべての有殻軟体動物または腹足類は、理論上真珠を 生産し得るが、宝石品質を示す殆んどの真珠は、アコヤ貝、ミミ貝およびある種 の淡水双殻類の特定の属により生産される。Most commonly, pearls are produced by shellfish, especially the variety of marine species known as pearl oysters. It is formed into a gemstone. Pearls are made of foreign matter that has entered the body of the oyster, generally a parasite, or a grain of sand. Or, it is formed as a defense against irritation caused by jellyfish particles. Foreign matter encased in soft tissue layers and then its surface similar to the parallel arrangement of nacre in the shell. Nacre is arranged on the surface. All crusted molluscs or gastropods theoretically produce pearls. However, most pearls of gem quality are produced in pearl oysters, ear oysters, and some types of pearls. produced by a specific genus of freshwater bispods.

生きた真珠貝を使用する真珠の養殖技術は、今世紀の変り目に日本で開発された 。そして今日も、各種塩水性および淡水性双殻類を真珠形成段階を通じて生かし ておくそれらの方法が今だ利用されている。養殖真珠は、一般に約2〜3年間真 珠貝に外套組織の小片を伴う核を手動的に埋め込むことにより生産される。Pearl farming techniques using living pearl oysters were developed in Japan at the turn of the century. . And today, we continue to utilize a variety of saline and freshwater bishells through the pearl-forming stage. Those methods are still in use today. Cultured pearls generally stay true for about 2 to 3 years. It is produced by manually implanting a nucleus with a small piece of mantle tissue into a pearl oyster.

ここ数年来の水質汚染の拡大および真珠産生軟体動物の乱獲などの生態的環境変 化により、真珠産業の生産能力は減少してきた。さらに、現存する真珠養殖方法 には、(1)広大な面積の土地および海を選定して利用しなければならず;そし て真珠産生貝は、真珠の核が成体の貝に挿入可能となる前に2〜3年間養殖しな ければならない; (3)一般的には、それらが宝玉品質の真珠を生産するまで さらに2〜3年間要し; (4)膨大な労働力が真珠生産工場で必要である、な どの本質的な制限事項を有する。従って、現在の真珠生産方法は、世界市場の多 様性に制限をもたらし、高価格水準を維持する実質的な生産制限を有する。Ecological environmental changes such as the expansion of water pollution and overfishing of pearl-producing molluscs in recent years The production capacity of the pearl industry has decreased due to the In addition, existing pearl cultivation methods (1) Vast areas of land and sea must be selected and utilized; Pearl-producing oysters must be cultured for two to three years before the pearl nucleus can be inserted into an adult oyster. (3) generally until they produce gem-quality pearls; It will take another 2-3 years; (4) a huge amount of labor is required in the pearl production factory; Which has inherent limitations. Therefore, current pearl production methods are There are substantial production limits that limit product availability and maintain high price levels.

〔発明の概要〕[Summary of the invention]

本発明は、養殖真珠用の生きた真珠貝の使用を回避する。 The present invention avoids the use of live pearl oysters for cultured pearls.

具体的には、生体外で真珠産生性組織を持続する栄養物および滋養物の提供を目 的として開発された細胞培養系に基づく方法である。この方法は、培地中に必要 な化学的および物理的成分を供給することにより、外套組織外植体の増殖性持続 に関する。組織を持続増殖するための培地組成には、かかる組織を増殖する天然 の入手可能な培地(この培地には、無機塩、アミノ酸源、糖源、天然産の蛋白質 を含む)を有する栄養物の組み合わせを包含する。Specifically, we aim to provide nutrients and nutrients that sustain pearl-producing tissues in vitro. This method is based on a cell culture system developed as a target. This method requires Proliferative persistence of mantle tissue explants by providing appropriate chemical and physical components Regarding. The culture medium composition for sustained tissue growth includes natural ingredients that grow such tissue. available medium (this medium contains inorganic salts, amino acid sources, sugar sources, naturally occurring protein ).

〔発明の詳細な陳述〕[Detailed statement of the invention]

外套組織は、双殻類およびある種の腹足類を含み、細胞間で産生されて真珠質( nacreousまたはmother−of−peal)堆積の原因となる細胞 外マ) IJックス戊分を分泌する生理的代謝を受けるすべての殻形成性軟体動 物に見い出される。本発明では、外套組織が軟体動物から摘出され、特定の生体 外条件下に維持された場合、標準的な生物学的条件下でそれらを複製する生理的 特性および機能を有する。本発明は、外套組織について理想的な生体外条件下で シュミレーションするのに必要な適当な化学的および物理的成分を有する複合増 殖培地を使用する。通常の養殖真珠の超微形態および化学的性質を 一本発明に より生産される真珠のそれと比較する一連の電子顕微鏡写真により示されるよう に、本発明で開示される培地を利用することによって、本発明により生産される 真珠の化学的および超微形態は、天然産または今日市場に出されている養殖真珠 と実質的に同一である。現在市場で見られる常法で生産される養殖真珠と本発明 から生産される真珠の表面形態を示す透過型電子顕微鏡写真によれば、真珠質の 結晶サイズおよび形状ならびに既括的な表面局所学は、両真珠間で実質的に同一 である。常法の養殖真珠と本発明により生産される真珠のX線回折を用いる化学 的な同定は、炭酸カルシウム(寵石)が両真珠に見い出される主要な相であるこ とを示す。 Mantle tissue is produced between cells and is produced in nacre ( cells that cause the deposition of nacreous or mother-of-peal) All shell-forming soft body movements that undergo physiological metabolism that secrete IJx found in things. In the present invention, mantle tissue is extracted from a mollusk and Physiological to reproduce them under standard biological conditions when maintained under external conditions Has characteristics and functions. The present invention provides for mantle tissue under ideal in vitro conditions. A complex compound with the appropriate chemical and physical components necessary to simulate Use a culture medium. The ultra-fine morphology and chemical properties of ordinary cultured pearls have been incorporated into the present invention. As shown by a series of electron micrographs comparing with that of pearls produced by produced according to the present invention by utilizing the medium disclosed in the present invention. The chemical and microscopic forms of pearls are naturally occurring or cultured pearls on the market today. is substantially the same as Cultured pearls produced by conventional methods currently on the market and the present invention Transmission electron micrographs showing the surface morphology of pearls produced from Crystal size and shape and general surface topology are virtually identical between both pearls. It is. Chemistry using X-ray diffraction of conventional cultured pearls and pearls produced by the present invention The basic identification is that calcium carbonate (Koiseki) is the main phase found in both pearls. and

複合増殖培地 本発明の方法で使用される培地は、複合増殖培地である。complex growth medium The medium used in the method of the invention is a complex growth medium.

使用される培地は、多様な状態をとることができ、一般に天然流体、細胞または 細胞外環境に近似するように改良された環境を提供する。前記培地は、主要部と して、無機塩、アミノ酸源、代謝エネルギー源、通常の代謝可能なまたは資化可 能な糖源ならびに好ましいホルモン源を含み得る。本発明の目的は、一般に次の 成分に区分されて含まれていてもよい各種栄養培地成分を開示する。すなわち、 (i)無機塩、(ii)アミノ酸、(1i)ビタミ:/、(1v)天然産蛋白質 含有成分、(v)抗生物質および抗カビ剤、(vi)資化可能なエネルギー源な らびに(vli) CO2,CD3および/または02である。The media used can take on a wide variety of conditions and are generally natural fluids, cellular or Provides an improved environment to approximate the extracellular environment. The medium contains the main part and mineral salts, amino acid sources, metabolizable energy sources, normal metabolizable or assimilable may include a capable sugar source as well as a preferred hormone source. The purpose of the invention is generally to: Discloses various nutrient medium components that may be divided into components. That is, (i) Inorganic salt, (ii) Amino acid, (1i) Vitamin:/, (1v) Naturally produced protein Ingredients, (v) Antibiotics and antifungal agents, (vi) Assimilated energy sources, etc. and (vli) CO2, CD3 and/or 02.

栄養培地は、天然媒体に模した前記組織の増殖に必要な無機塩を含む。さらに、 ある種の因子が他の因子の存在により供給される場合には各種の別の因子を含ん でもよい。例えば、天然原料が別途合成培地に添加される因子を含む天然原料を 意味する場合である。もう一つの例としては、他の成分に代替するように天然原 料を役立ててもよい。従って、使用される培地には広範な変種が存在でき、それ ぞれ迅速に真珠が得られる結果の様々な段階を有する多種多様な培地が使用可能 である。例えば、培地成分として軟体動物組織が使用される場合、この組織はア ミノ酸およびホルモン源として役立つ。The nutrient medium contains the inorganic salts necessary for the growth of the tissue to mimic the natural medium. moreover, When a factor is supplied by the presence of another factor, it includes various other factors. But that's fine. For example, natural raw materials containing factors are added separately to synthetic media. It is a case of meaning. Another example is the use of natural ingredients to replace other ingredients. You may also use the fee. Therefore, there can be a wide variety of media used; A wide variety of media are available, each with different stages of rapid pearling results. It is. For example, if mollusk tissue is used as a media component, this tissue Serves as a source of amino acids and hormones.

蛋白氷解物はアミノ酸源として役立ち得るので、個々のアミノ酸が含まれなくて もよい。増殖外套組織から調製された培地も使用可能であり、この場合には、そ の調製培地が、所定量のエネルギー源および望ましくない因子が好ましい水準ま で減少している場合、特定の成分を補給し得る。基本培地は、適当なpHで組織 の自然媒体に模した塩培地、資化性エネルギー源、必須アミノ酸源、さらに増殖 促進因子を有することができる。かかる因子には、軟体動物組織、特に生殖組織 が含まれてよく、これらはまた、アミノ酸源、胎児血清、アンドロゲン抽出物ま たは酵母抽出物などのようなステロイド源として役立ち得る。Protein thaw products can serve as a source of amino acids, so they do not contain individual amino acids. Good too. Media prepared from growth mantle tissue can also be used; A prepared medium containing a given amount of energy source and desirable levels of undesirable factors. If it is reduced, certain ingredients can be supplemented. The basal medium is suitable for tissue culture at an appropriate pH. A salt medium that mimics the natural medium of It can have a promoting factor. Such factors include molluscan tissues, especially reproductive tissues. These may also include amino acid sources, fetal serum, androgen extracts or or can serve as a source of steroids, such as yeast extract.

増殖培地中の無機塩は、一般に軟体動物、外套組織の生物学的活性がある間、そ れら自体に見い出される全てのイオンを含むことができる。外套組織を取り囲む 流体の化学的性状を決定するために、これらの流体のイオン濃度が調査測定され た。第1表に測定された無機成分の平均濃度を示す。Inorganic salts in growth media generally inhibit the biological activity of molluscs, mantle tissue. They can include all ions found in themselves. surround the mantle tissue The ion concentrations of these fluids are investigated and measured to determine their chemical properties. Ta. Table 1 shows the average concentrations of inorganic components measured.

HC0,0,223 上記の結果として、複合増殖培地で使用される無機塩組成は、次の第■表に見ら れるようなものとなる。HC0,0,223 As a result of the above, the inorganic salt composition used in complex growth media can be found in the following table. It will be something like that.

第■表 NaC1! 16.0 −35.0 22.5KIJ! 0.4 − 1.2  0.76CaC120,81,41,08 MgC12・6)120 0.7−14 10.3Na2SO,2,9−4,9 4,05 KHC0,0,25−0,750,358a)I2PO,・t120 0.15 − 0.50 0.25NaHCOs 0.1 0.2 0.12前述の塩培地 が好ましいが、好ましいイオン組成および常態の必須イオンを与える別異の塩培 地を調製してもよい。Table ■ NaC1! 16.0 -35.0 22.5KIJ! 0.4 - 1.2 0.76CaC120,81,41,08 MgC12・6) 120 0.7-14 10.3Na2SO,2,9-4,9 4,05 KHC0,0,25-0,750,358a) I2PO,・t120 0.15 - 0.50 0.25 NaHCOs 0.1 0.2 0.12 Salt medium as described above is preferred, but different salt cultures that provide the preferred ionic composition and normal essential ions are used. You may also prepare a base.

また、アミノ酸分析を実施して真珠形成の間、関与するアミノ酸の同定およびそ の濃度を測定した。アミノ酸濃度は軟体動物間が変化するにもかかわらず、使用 した種類の軟体動物についてアミノ酸濃度の一貫性が認められた。測定されたア ミノ酸の平均的な組成および濃度を次の第■表に示す。We also carried out amino acid analysis to identify and identify the amino acids involved during pearl formation. The concentration of was measured. Although amino acid concentrations vary between molluscs, the use Consistency in amino acid concentrations was observed for the different mollusk species. Measured a The average composition and concentration of amino acids are shown in Table 1 below.

アスパラギン酸 132 フエニルアラニン 31.9 グルタミン酸 33.5 軟体動物は、殆んどのアミノ酸を提供できるが、増殖を高めるには細胞増殖を高 めるそれらの提供するアミノ酸を供給することが好ましい。その結果、類似の濃 度を有する特定アミノ酸成分が複合増殖培地に使用可能であり、次の第■表に示 す。Aspartic acid 132 Phenylalanine 31.9 Glutamic acid 33.5 Molluscs can provide most of the amino acids, but to increase proliferation it is necessary to increase cell proliferation. It is preferable to supply the amino acids that they provide. As a result, similar Specific amino acid components with specific concentrations can be used in complex growth media and are listed in the following table. vinegar.

グリシン 0.75−5.5 4.5 L−アラニン 2.5 −4.6 2.8L−アルギニン 0.8 −2.5  2.4L−アスパラギン 0.05−0.3 0.05L−アスパラギン酸 0 .32−0.95 0.6L−シスチン 0.1−0.15 0.1L−グルタ ミン酸 0.6 −1.2 0.8L−グルタミン 0.1−1.0 0.25 L−ヒスチジン 0.50−2.8 2.1L−イソロイシン 0.01−0. 075 0.05L−ロイシン 0.01−0.1 0.05L−リ ジ ン  0.2 − 0.4 0.2L−メチオニン 0.01−0.75 0.05L −フェニルアラニン 0.05−0.2 0.1OL−プロリン 0.1 −1 .5 0.25L−セ リ ン 0.55 − 1.4 1.0L−スレオニン  0.01−0.05 0.03L−)リプトファン 0.01−0.02 0 .01L−チロシン 0.05−0.15 0.1個別のアミノ酸源として特に 興味深いものは、アミノ酸セリン、アラニン、アルギニン、アスパラギン酸、グ リシン、ヒスチジン、ロイシン、メチオニンおよびフェニルアラニンである。ア ミノ酸と称する場合には、天然産のし一立体異性体を意図するものとして解され る。しかしながら、個別のアミノ酸に代え、蛋白氷解物または抽出物がそれら単 独でまたは個別のアミノ酸と共に使用することができ、この場合には蛋白氷解物 または抽出物がより経済的なアミノ酸源として供給され得る。Glycine 0.75-5.5 4.5 L-Alanine 2.5 -4.6 2.8L-Arginine 0.8 -2.5 2.4L-asparagine 0.05-0.3 0.05L-aspartic acid 0 .. 32-0.95 0.6L-cystine 0.1-0.15 0.1L-gluta Mic acid 0.6-1.2 0.8L-Glutamine 0.1-1.0 0.25 L-histidine 0.50-2.8 2.1 L-isoleucine 0.01-0. 075 0.05L-Leucine 0.01-0.1 0.05L-Resine 0.2-0.4 0.2L-Methionine 0.01-0.75 0.05L -Phenylalanine 0.05-0.2 0.1OL -Proline 0.1-1 .. 5 0.25L-Serine 0.55-1.4 1.0L-Threonine 0.01-0.05 0.03L-)Liptophan 0.01-0.02 0 .. 01L-Tyrosine 0.05-0.15 0.1 Especially as a source of individual amino acids Of interest are the amino acids serine, alanine, arginine, aspartic acid, and glycan. They are lysine, histidine, leucine, methionine and phenylalanine. a When referring to amino acids, it is understood that the naturally occurring monostereoisomer is intended. Ru. However, instead of individual amino acids, protein lysates or extracts can Can be used alone or with individual amino acids, in which case protein lysate Alternatively, extracts can be supplied as a more economical source of amino acids.

ビタミンは任意である。含まれる場合、複合増殖培地に存在するビタミンは、濃 度にある程度のバリエーションを有する他の細胞や組織培養物に使用されるもの と類似である。具体的なビタミンおよび濃度を次の第7表に示す。複合増殖培地 では、実際には幾つのものかまたは全てが使用されない。Vitamins are optional. If present, the vitamins present in the complex growth medium are those used in other cell and tissue cultures with some degree of variation It is similar to Specific vitamins and concentrations are shown in Table 7 below. complex growth medium In this case, some or all of them are not actually used.

ビオチン 0.01−1 0.1 リボフラビン 0.01−1 0.、I■−イノシトール 0.1−10 1. 0サイアミン 0.1−10 1.0 ナイアシン 0.1−10 1.0 コリン塩酸 0.1−10 1.0 葉 酸 0.1−10 1.0 アスコルビン酸 0.1 − 1 0.1ビタミンA(アセテート)0.1−1  0.1ピリドキシン 0.1−10 1.0 外套組織の近傍または関連して見い出されるホルモンが測定され、コルチコステ ロイド、アンドロゲンまたは変性エストロゲンとして分類され得る。これらのホ ルモン成分または代謝中間体が培地に添加され、これらのホルモンの生合成を促 進した。アンドロゲン抽出物は、販売先から入手可能であり、0.005〜0. 2■/1間の各挿置で使用することができる。Biotin 0.01-1 0.1 Riboflavin 0.01-1 0. , I■-Inositol 0.1-10 1. 0 Thiamine 0.1-10 1.0 Niacin 0.1-10 1.0 Choline hydrochloric acid 0.1-10 1.0 Folic acid 0.1-10 1.0 Ascorbic acid 0.1-1 0.1 Vitamin A (acetate) 0.1-1 0.1 Pyridoxine 0.1-10 1.0 Hormones found near or associated with mantle tissue are measured and are associated with corticosteroids. may be classified as roids, androgens or modified estrogens. These ho rumone components or metabolic intermediates are added to the culture medium to stimulate the biosynthesis of these hormones. advanced. Androgen extracts are available from commercial sources and range from 0.005 to 0.00. Can be used with each insertion between 2/1.

同一の軟体動物の再生可能な器官に由来する血清抽出物を含有する増殖培地は、 外套組織の複製増殖において最高の結果を与えることが観察されることがわかっ た。この血清抽出物は、外套組織の増殖を持続するのに必要なホルモン水準を与 えることが見い出された。この再生器官血清が存在せず、組織培養を持続するの に必須でないが、しかしながらホルモンの添加は組織増殖を高める上で好ましい ことがわかった。A growth medium containing serum extracts derived from renewable organs of the same mollusk was observed to give the best results in replicative growth of mantle tissue. Ta. This serum extract provides the hormone levels necessary to sustain growth of the mantle tissue. It was discovered that This regenerating organ has no serum present and can sustain tissue culture. However, the addition of hormones is preferable to enhance tissue growth. I understand.

特に興味深いものは、外套外植体に由来する組織または、特に生殖組織もしくは 凍結乾燥生殖組織を含んでなる他の関連種を使用することである。組織は、凍結 乾燥前または後のいずれかで細かく切り刻むかまたはすりつぶし、容易に分散し 得る形態、例えば粉末として提供することができる。使用される組織が細胞から 成る場合、組織中に存在する細胞断片や他の物質が原料から除去されてもよい。Of particular interest are tissues derived from mantle explants or especially reproductive tissues or Another related species is to use lyophilized reproductive tissue. tissue frozen Finely chopped or ground, either before or after drying, for easy dispersion. It can be provided in the form that it is obtained, for example as a powder. The tissue used is made from cells. If so, cell fragments and other materials present in the tissue may be removed from the source material.

凍結乾燥組織は、撹拌しながら緩和な条件下で栄養培地に分散され、生体親和性 ゲル、例えば寒天またはコラーゲンゲル中に組み込むことができる。凍結乾燥組 織の量は、広範に変動可能であり、栄養培地中の他の成分と関連して最適化が図 られ得る。有利な結果は、培地容量に対して凍結乾燥前の容量で約0.1〜2の 割合で使用することにより得ることができる。Lyophilized tissue is dispersed in a nutrient medium under mild conditions with agitation to ensure biocompatibility. Can be incorporated into gels, such as agar or collagen gels. freeze-dried group The amount of tissue can be varied over a wide range and can be optimized in conjunction with other components in the nutrient medium. It can be done. Advantageous results indicate that the volume before lyophilization is approximately 0.1 to 2 It can be obtained by using in proportion.

ペニシリンやストレプトマイシンのような抗生物質および抗カビ剤もまた、組織 抽出処理中に使用してもよく、外套組織培養中に汚染水準を抑制するために使用 してもよい。複合増殖培地で使用される抗生物質および抗カビ剤は、次の第■表 に列挙する。Antibiotics and antifungal agents, such as penicillin and streptomycin, also May be used during the extraction process and used to control contamination levels during mantle tissue culture You may. Antibiotics and antifungal agents used in complex growth media are listed in the following table. Listed in

第■表 ストレプトマイシン 50− 200 t=t/m1ペニシリンG、ナトリウム  100−2.000 U/rrL1外套組織の増殖および持続は、エネルギー 源の添加がなくとも成功したが、少なくとも1種の糖が細胞に対するさらなるエ ネルギー源を供給するために増殖培地に添加された。糖源としては、グルコース 、ガラクトース、グリコーゲン、シュクロースなどが挙げられる。Table ■ Streptomycin 50-200 t=t/ml Penicillin G, sodium 100-2.000 U/rrL1 The growth and maintenance of the mantle tissue requires energy Although success was achieved without the addition of sugars, at least one sugar provided an additional effect on the cells. added to the growth medium to provide an energy source. Glucose as a sugar source , galactose, glycogen, sucrose, etc.

1以上の調製増殖培地に使用される他の成分は、次の第■表に列挙される。他の 蛋白質源の不存在下では、乳アルブミン氷解物が顕著な利点を示した。Other ingredients used in one or more of the prepared growth media are listed in Table 1 below. other In the absence of protein sources, milk albumin thaw products showed significant benefits.

第■表 乳アルブミン氷解物 1.00− 20.Og/j’ 5.00g/j2軟体動 物/腹足類の血液1.00−100容量% 5容量%ウシ胎児血清 0.01− 10容量% 0.05容量%酵母抽出物 1.0 − 20.Og/ 1 10 .00g/ 1ガラクトース 0.05− 0.7g/l 、0.05g/fグ ルコース 1.00− 5.0g/(12,00g/12フェノールレッド 5 ■/rn1 この系は、緩衝化され生理学的に許容され得るpHにされる。Table ■ Milk albumin thawed product 1.00-20. Og/j’ 5.00g/j2 soft body movement Materials/Gastropod blood 1.00-100% by volume 5% by volume Fetal bovine serum 0.01- 10% by volume 0.05% by volume Yeast extract 1.0 - 20. Og/ 1 10 .. 00g/1 galactose 0.05-0.7g/l, 0.05g/fg Lucose 1.00-5.0g/(12,00g/12 Phenol Red 5 ■/rn1 The system is buffered and brought to a physiologically acceptable pH.

炭酸水素ナトリウム(無機塩)およびフェノールレッドが対照に添加され、溶液 のpHがモニターされる。好ましいp)I範囲は、7.2〜7.9である。しか しながら、pHが6.5程度の低さと9.3程度の高さでも外套組織の活性が持 続することが観察された。二酸化炭素の豊富な空気または炭酸化源が増殖培地に 添加され、全1体を通じてpH6,6〜8.9の範囲内に培地のpHが持続され た。Sodium bicarbonate (an inorganic salt) and phenol red were added to the control and the solution The pH of the sample is monitored. The preferred p)I range is 7.2-7.9. deer However, the activity of the mantle tissue remains even at pH levels as low as 6.5 and as high as 9.3. was observed to continue. Carbon dioxide-rich air or a carbonation source in the growth medium The pH of the medium was maintained within the range of pH 6.6 to 8.9 throughout the whole body. Ta.

市販の細胞培養培地(例えば、Gibco、 Inc、、 New York) が外套組織培養用に変性処理された。調製された変性物は、一般に、(i)炭酸 水素ナトリウムおよびグルコース添加、(ii)溶液の適正な侵透圧を得るだめ の適当濃度のNaCl2添加、ならびに(iii)Lばしば、溶液のpHを7. 4以上にするためにIMのNa叶が添加される。Commercially available cell culture media (e.g., Gibco, Inc., New York) were modified for mantle tissue culture. The prepared modified products generally include (i) carbonic acid addition of sodium hydrogen and glucose; (ii) to obtain the correct osmolarity of the solution; (iii) adding an appropriate concentration of NaCl2, and (iii) often adjusting the pH of the solution to 7. IM Na leaf is added to make it 4 or more.

各種の複合増殖培地組成物が、真珠の生産において成功裏に使用された。具体例 を以下の第■A表、第■B表および第10表に列挙する。Various complex growth media compositions have been successfully used in pearl production. Concrete example are listed in Tables ■A, ■B, and Table 10 below.

第■A表 NaCA 17.3 g/ll CaC721,55g/ (I Kl! 0.85 g/ l MgCA2・6H2010,45g/(INa)IPO−・)120 0.20  g/ INaHCOlo、 12 g / A’アスパラギン酸 0.6 g /l ガラクトース 0.7 ■/l グルコース 1.0 mg/ 1 ウシ胎児血清(Gibco Lab、、 NY) 10 容量%ナイアシン 1 、Omg/j’ ペニシリン 100 U/mf フェノールレッド 5.0 mg/ml第■B表 NaCl22,8 g/β KCl21.15 g/β Na2)IPO,−8200,9g/llCaCf 2 1.5 g/ A’ Na)Ic0. 0.72 g / A’アスパラギン酸 0.5.g/β メチオニン 0.05g/j? 第■B表(続き) ウシ胎児血清 2o 容量% アスコルビン酸 0.1 ■/l ビタミンA(アセテート)0.1 ■/lペニシリン 100 U/il ストレプトマイシン 5o 汀/− 第■C表 市販培地[すなわち、メディウム(Medium) 199: Gibc。Table ■A NaCA 17.3 g/ll CaC721,55g/(I Kl! 0.85 g/l MgCA2・6H2010, 45g/(INa)IPO-・)120 0.20 g / INaHCOlo, 12 g / A'aspartic acid 0.6 g /l Galactose 0.7 ■/l Glucose 1.0 mg/1 Fetal bovine serum (Gibco Lab, NY) 10% by volume Niacin 1 , Omg/j’ Penicillin 100 U/mf Phenol red 5.0 mg/ml Table ■B NaCl22,8 g/β KCl21.15 g/β Na2) IPO, -8200, 9g/llCaCf 2 1.5 g/A' Na) Ic0. 0.72 g/A'aspartic acid 0.5. g/β Methionine 0.05g/j? Table ■B (continued) Fetal bovine serum 2o volume% Ascorbic acid 0.1 ■/l Vitamin A (acetate) 0.1 ■/l Penicillin 100 U/il Streptomycin 5o /- Table ■C Commercial media [i.e., Medium 199: Gibc.

Laboratories、Inc、、Grand l5land、 NY]の 変性以下の添加剤を加えた: 酵母抽出物(Yeastolate: Gibco Lab) 10 g/ 1 ペニシリン 100 U/mj2 培地Aの塩組成物または海水および生殖器官抽出物を含む蒸留水を使用する増殖 培地用配合物が調製された。この生殖器官抽出物は、軟体動物の体全体から生殖 器を単離し、この生殖組織を凍結乾燥し次いでこの組織を粉末状にすりつぶすこ とによって得た。次に、粉末を撹拌することにより海水に均一分散した。生殖組 織の量は、その組織のもとの容量光たり水に対する容量の0.25〜1の割合で あった。他の配合物は、前述の配合物を組み合わせるか、または生殖組織に代え アンドロゲン抽出物(Sigma)を使用した。このアンドロゲン抽出物は、0 .01から0.1 mg/ 1までの量内に分布した。Laboratories, Inc., Grand Land, NY] Modified with the following additives: Yeast extract (Yeastolate: Gibco Lab) 10 g/1 Penicillin 100 U/mj2 Growth using the salt composition of medium A or distilled water with seawater and reproductive tract extracts A media formulation was prepared. This reproductive organ extract extracts reproductive organs from the entire mollusk body. By isolating the reproductive tissue, freeze-drying the reproductive tissue, and then grinding the tissue into a powder. Obtained by. Next, the powder was uniformly dispersed in seawater by stirring. reproductive group The amount of fabric is a ratio of 0.25 to 1 of the original capacity of the tissue for light and water. there were. Other formulations may combine the aforementioned formulations or substitute reproductive tissue. Androgen extract (Sigma) was used. This androgen extract contains 0 .. 0.01 to 0.1 mg/1.

発明の方法 生体外培養の目的下に、殻内で真珠質を産生ずる軟体動物または腹足類の属、例 えばアコヤ貝(P 1nctada)属、シロアオリ貝(I sognomon )属、マベ(Pteria)属、ハボウキ貝(Pinna)属、ミミ貝(Ha  1 iot is)属、アトリフ (Atrima)属など〔例えば、ビンクタ ーダ・マルテンシー(Pinctadamartensii)、ピンクターダー 7リグリテイフエラ(Pinctadamargr it if era)、ピ ンクターダー7キシ7 (Pinctada maxima)、ピンクターダ・ フルカタ(Pinctada fucata) 、ブチリア・マクロブテラ(P teria macroptera) 、アトリフ・ジャポニカ(Atrim  japonica) 、オステラ・ギガス(Ostrea gigas)、ウニ オ・マルグリティフェラ(Llnio margritifera) 、クリス タリア・ブリカータ(Cristaria plicata) 、)リダクナ・ ギガス(Tridacna gigas) 、ハリオチス・ギガンテア(Hal iotisgigantea)、ヒプリオブシス8シレゲリ(t(ypriop sis schlegeli)、ハリオチス・フルゲンス(Haliotis  fulgens) 、ハリオチス・コルゲータ(Haliotis corru gata) 、ハリオチス°クラシェロジ−(Haliotis crache rodii) 、ハリオチス・ジスカス・ハネイ (tlaliotis di scus hannai) 、リグミア・ナサタ(Ligumia nasut a) 、xリブチオ−mlムプラナタ(Ellipti。method of invention Genus of molluscs or gastropods that produce nacre in their shells for purposes of in vitro culture, e.g. For example, pearl oyster (P1 nctada) genus, white oyster (I sognomon) ) genus, Pteria genus, Pinna genus, ear shell (Ha) 1iot is), Atrima genus, etc. [for example, Vincta Pinctada martensii, Pinktada martensii 7 Ligrite Huera (Pinctadamargr it if era), Pi Pinctada 7kiss 7 (Pinctada maxima), Pinctada maxima Pinctada fucata, Butyria macrobutella (P teria macroptera), Atrim japonica (Atrim) japonica), Ostrea gigas, sea urchin Llnio margritifera, Chris Cristaria plicata,) Ridacna Gigas (Tridacna gigas), Haliotis gigantea (Hal) iotis gigantea), Hypriobsis 8 shillegeri (t(ypriop) sis schlegeli), Haliotis fulgens fulgens), Haliotis corru gata), Haliotis °cracheology (Haliotis crache) rodii), Haliotis discus haneyi (tlaliotis di scus hannai), Ligumia nasut a), x Ribthio-ml Muplanata (Ellipti.

complanata)、ストロフィタス・アンジュラタス(Strophit usundulatus)、アノピンク・カツラクタ(Anodonta ca turacta)およびラムシリス・ラジェタ(Lamsilis radia ta) ]に属する軟体動物または腹足類から外套組織の一部または全部を外植 し、真珠形成のための真珠質を産生ずる。complanata), Strophytus undulatus (Strophitus undulatus) usundulatus), Anodonta ca. turacta) and Lamsilis radia explanting part or all of the mantle tissue from a mollusk or gastropod belonging to and produces nacre for pearl formation.

外套組織断片の数片は、場合により抗生物質および/または抗カビ剤、例えば1 00ユニツトのペニシリンG(ナトリウム塩)/rrL1および10に/mfの ストレプトマイシンを含む海水で洗浄される。海水は実験室で調製してもよく、 一般にそれは前記第■表に示すようなそれらの濃度の無機塩を有する水から成る 。Several pieces of mantle tissue fragments are optionally treated with an antibiotic and/or antifungal agent, e.g. 00 units of penicillin G (sodium salt)/rrL1 and 10/mf Washed with seawater containing streptomycin. Seawater may be prepared in the laboratory; Generally it consists of water with inorganic salts in their concentrations as shown in Table 1 above. .

組織の一部または完全な外套組織が、無機塩、アミノ酸、ビタミンおよび成長因 子、ホルモン、抗生物質および抗カビ剤、動物血清抽出物ならびにグルコースを 含んでなる二酸化炭素または酸素の豊富な複合増殖培地中に移植される。Part of the tissue or the complete mantle tissue contains inorganic salts, amino acids, vitamins and growth factors. children, hormones, antibiotics and antifungal agents, animal serum extracts and glucose. The cells are transplanted into a complex growth medium containing carbon dioxide or oxygen.

生体親和性材料、例えばガラス、炭酸カルシウムから成る方解石および/または 霞石を含む古い貝殻、ならびに/あるいはスフェアまたはへミスフェア状のリン 酸カルシウムが、真珠質堆積のために培地に導入される。この材料は、真珠形成 のためのいずれかの形状を有してよく、通常は球形または長円体を有する核とし て機能する。一般に、核として機能する材料の最小の寸法は、通常少なくとも約 1画、一般に少なくとも約2Mであるが、20mm以上の大きさであってもよい 。Biocompatible materials such as glass, calcite made of calcium carbonate and/or Old shells containing nepheline and/or sphere- or hemisphere-like phosphorus Calcium acid is introduced into the medium for nacre deposition. This material is pearl-forming The nucleus may have any shape, usually spherical or ellipsoidal. It works. In general, the smallest dimension of the material that will serve as the core is usually at least about One stroke is generally at least about 2M, but may be larger than 20mm .

真珠用としては、一般に核は直径約2〜15、好ましくは7〜10mmを有する 。For pearls, the core generally has a diameter of about 2-15 mm, preferably 7-10 mm. .

本発明の方法の好ましい態様によれば、例えば、外套組織の1mm3未満の片が 成熟軟体動物から切断採取される。各断片は、前述の無機塩成分を含む海水で洗 浄され、予備殺菌された培養皿に置かれた。0.2> ミ!Jポアフィルター( Millipor。According to a preferred embodiment of the method of the invention, for example, a piece of mantle tissue of less than 1 mm3 is It is harvested by cutting from an adult mollusk. Each fragment was washed with seawater containing the aforementioned inorganic salt components. The cells were cleaned and placed in pre-sterilized culture dishes. 0.2> Mi! J pore filter ( Millipor.

Corp、、 Bedford、 MA 01730)を通して濾過した滅菌複 合増殖培地が、前記組織断片を含む容器に直に添加された。次に、小さな核、例 えばガラスピーズまたは二枚貝の殻から作製したスフェアが、組織との物理的接 触が最大になるように容器に設置された。培養物は、インキュベーション装置に より暗所で14℃〜23℃に持続された。しかしながら、実験は、本発明の方法 が8℃〜29℃の温度範囲に耐え得ることを示した。二酸化炭素の豊富な空気を 導入し、培地pHを実質的に6.6〜8.9に持続することが満足すべき品質を 引き出した。Corp., Bedford, MA 01730). Synthetic growth medium was added directly to the container containing the tissue fragments. Then a small nucleus, e.g. For example, spheres made from glass peas or bivalve shells can be used to make physical contact with tissue. It was placed in a container for maximum contact. Cultures are placed in an incubation device. It was maintained at 14°C to 23°C in a darker place. However, experiments have shown that the method of the present invention was shown to be able to withstand a temperature range of 8°C to 29°C. air rich in carbon dioxide introducing and maintaining the medium pH substantially between 6.6 and 8.9 ensures satisfactory quality. I pulled it out.

pH指示用フェノールレッドが色を変化させたとき、シリンジを用いて培地を補 供した。pHが7.4〜8に上昇するに従い鮮やかなフェノールレッドは青味を 帯びたレッドに変化する。When the pH indicator phenol red changes color, replenish the medium using a syringe. provided. As the pH increases from 7.4 to 8, the bright phenol red becomes blueish. Changes to a deep red color.

pHが7.4〜6.5に低下する場合、鮮やかなフェノールレッドは暗いピンク または黄色に変化する。しかしながら、この培地のpHは上昇する傾向にある。Bright phenol red turns dark pink when pH drops to 7.4-6.5 or turn yellow. However, the pH of this medium tends to increase.

1〜3日毎に古い培地を除去して新鮮な培地で置換し、目的の品質および大きさ の真珠が達成されるまで続けた。場合により、2日または/培地poが7.8以 上に上昇するときのどちらか早く生ずる毎であって、培地含量対組織量の割合に 応じて培地を交換してもよい。pHの正確な測定は、pH測定装置で行ってもよ い。真珠が目的の品質および/または大きさになった後、皿からそれを取り出し て付着した組織を除去した。除去した組織を切開し、その断片を別の真珠生産に 再度使用した。Remove old media and replace with fresh media every 1-3 days to achieve desired quality and size. Continue until the pearl is achieved. In some cases, for 2 days or/when the medium po is 7.8 or higher. when rising to the top, whichever occurs first, depending on the ratio of medium content to tissue volume. The medium may be replaced accordingly. Accurate measurement of pH can be done with a pH measuring device. stomach. Once the pearl has reached the desired quality and/or size, remove it from the dish. The attached tissue was removed. The removed tissue is incised and the pieces are used for other pearl production. Used again.

前述の態様は、本出願の単なる具体的説明にすぎないことが理解される。従って 、当業者により容易に導かれ得る他の態様は、本発明の本体に包含され、それら の精神および範囲内に入るにちがいない。添付する請求の範囲は、かかる変更お よび変形が本発明の真正の範囲および精神内にあることが意図されている。本明 細書に引用される公知文献および特許出願は、ちょうど個々の公知文献および特 許出願が具体的かつ個別に引用により本明細書の内容となると指摘されているか のごとく、引用により本明細書の内容となる。It is understood that the foregoing aspects are merely illustrative of the present application. Therefore , other embodiments that can be easily derived by a person skilled in the art are included in the main body of the present invention, and those must be within the spirit and scope of. The appended claims cover any such changes and It is intended that variations thereof be within the true scope and spirit of the invention. Honmei Publicly known documents and patent applications cited in the specification are just individual public documents and patent applications. Is it specified that the patent application is specifically and individually cited as the content of this specification? are incorporated herein by reference.

前述の発明は、理解を明瞭にする目的で具体的かつ例示によりある程度詳細に記 載してきたが、添付の請求の範囲の精神または範囲を逸脱することなくそれらに 一定の変更および改良がなされることは、本発明の技術に照らし、当業者に容易 に明白となろう。The foregoing invention has been described in some detail by way of specificity and example for clarity of understanding. described herein, but without departing from the spirit or scope of the appended claims. Certain modifications and improvements will readily occur to those skilled in the art in light of the technology of the present invention. It will be obvious.

国際調査報告international search report

Claims (13)

【特許請求の範囲】[Claims] 1.生体外培地中で真珠質により生体親和性核を被覆する方法であって、 軟体動物門に属する真珠質産生性メンバーの生きた外套組織を、適当な栄養培地 中で生体親和性核と接触させ、前記核を真珠質で被覆するのに前記組織にとって 十分な時間、増殖を持続する条件下で前記組織をインキュベーションし、そして 得られる真珠質で被覆された核を単離すること、を含んでなる前記方法。1. A method of coating biocompatible nuclei with nacre in an in vitro culture medium, the method comprising: Living mantle tissues of nacre-producing members of the phylum Mollusca are grown in a suitable nutrient medium. contacting the biocompatible nucleus within the tissue and coating the nucleus with nacre. incubating the tissue under conditions that sustain proliferation for a sufficient period of time; and said method comprising isolating the resulting nacre-coated nuclei. 2.前記培地が、軟体動物血清、軟体動物生殖組成物、ステロイド源、酵母抽出 物または胎児血清の少なくとも1つを含んでなる請求項1記載の方法。2. The medium may contain mollusc serum, mollusk reproductive composition, steroid source, yeast extract. 2. The method of claim 1, comprising at least one of: 3.前記培地が、資化性の糖および/またはアミノ酸を含んでなる請求項1記載 の方法。3. 2. The medium according to claim 1, wherein the medium contains assimilable sugars and/or amino acids. the method of. 4.前記培地が、前記軟体動物の天然媒体塩組成に模した塩組成を有する請求項 1〜3のいずれか一に記載の方法。4. 2. The medium has a salt composition that mimics the salt composition of the natural medium of the mollusc. 4. The method according to any one of 1 to 3. 5.培地中で真珠質により生体親和性核を被覆する方法であって、 真珠質産生性軟体動物または腹足類の生きた外套組織を適当な栄養培地中で生体 親和性核と接触させ、この培地が前記軟体動物または腹足類の天然媒体に模した 塩、アミノ酸源および/または資化性糖源を含んでおり、前記核を真珠質で被覆 するのに前記組織にとって十分な時間、増殖を持続する条件下で前記組織をイン キュベーションし、そして 得られる真珠質で被覆された核を単離すること、を含んでなる前記方法。5. A method of coating biocompatible nuclei with nacre in a culture medium, the method comprising: Live mantle tissue of nacre-producing molluscs or gastropods is grown in a suitable nutrient medium. The culture medium mimics the natural medium of the mollusk or gastropod. It contains salt, an amino acid source and/or an assimilable sugar source, and the core is coated with nacre. Incubating the tissue under conditions that sustain proliferation for a sufficient period of time for the tissue to cuveate, and said method comprising isolating the resulting nacre-coated nuclei. 6.前記核が、炭酸カルシウムからなる請求項5記載の方法。6. 6. The method of claim 5, wherein said core consists of calcium carbonate. 7.前記栄養培地が、さらに軟体動物血液、軟体動物生殖組成物、ステロイド源 または胎児血清の少なくとも1つを含んでなる請求項1〜6のいずれかに記載の 方法。7. The nutrient medium further comprises mollusk blood, mollusk reproductive composition, steroid source. or fetal serum. Method. 8.前記軟体動物が、ピンクターダ・マルテンシー(Pinctadamart ensii)、ピンクターダ・マリグリティフェラ(Pinctadamarg ritifera)、ピンクターダ・マキシマ(Pinctadamaxima )、ピンクターダ・フルカタ(Pinctadafucata)、プテリア・マ クロプテラ(Pteriamacroptera)、アトリマ・ジャポニカ(A trjmjaponica)、オステラ・ギガス(Ostreagigas)、 ウニオ・マリグリティフェラ(Uniomargritifera)、クリスタ リア・プリカータ(Cristariaplicata)、トリダクナ・ギガス (Tridacnagigas)、ハリオチス・ギガンテア(Haliotis gigantea)、ヒプリオプシス・シレゲリ(Hypriopsissch legeli)、ハリオチス・フルゲンス(Haliotisfulgens) 、ハリオチス・コルデータ(Haliotiscorrugata)、ハリオチ ス・クラシェロジー(Haliotiscracherodii)、ハリオチス ・ジスカス・ハネイ(Haliotis−discushannai)、リグミ ア・ナサタ(Ligumianasuta)、エリプチオ・コムプラナタ(El liptiocomplanata)、ストロフィタス・アンジュラタス(St rophitusundulatus)、アノドンタ・カツラクタ(Anodo ntacaturacta)またはラムシリス・ラジェタ(Lamsilisr adiata)である請求項1〜7のいずれかに記載の方法。8. The mollusk is Pinctada martensii (Pinctadamart). ensii), Pinctada marigritifera (Pinctadamarg) ritifera), Pinctada maxima ), Pinctada fucata, Pteria ma Croptera (Pteriamacroptera), Atolyma japonica (A trjmjaponica), Ostrea gigas, Uniomargritifera, Crista Cristaria plicata, Tridacna gigas (Tridacnagigas), Haliotis gigantea (Haliotis) gigantea), Hypriopsis silegeri (Hypriopsissch) legeli), Haliotis fulgens , Haliotis corrugata, Haliotis corrugata Haliotis cracherodii, Haliotis ・Haliotis-discushannai, ligumi A nasuta (Ligumiana suta), Elliptio complanata (El liptiocomplanata), Strophytus undulatus (St. rophitusundulatus), Anodonta cutulacta (Anodo ntacaturacta) or Lamsilisr. 8. The method according to any one of claims 1 to 7, wherein 9.請求項1〜8のいずれかに記載の方法により生産された真珠質被覆核。9. A nacre-coated core produced by the method according to any one of claims 1 to 8. 10.外套組織を使用して真珠質で生体親和性核を被覆するための栄養培地であ って、 前記外套組織に関連する天然媒体に模した塩、場合により、アミノ酸源または資 化性糖源、あるいは軟体動物血液、軟体動物生殖組成物、ステロイド源、酵母抽 出物または胎児血清の少なくとも1つを含んでなる前記培地。10. A nutrient medium for coating biocompatible nuclei with nacre using mantle tissue. So, Salts mimicking natural media associated with said mantle tissue, optionally amino acid sources or resources oxidative sugar sources, or mollusk blood, mollusk reproductive composition, steroid sources, yeast extracts, etc. said medium comprising at least one of fetal serum or fetal serum. 11.前記アミノ酸源が個々のアミノ酸少なくとも1つを含み、前記資化性糖が グルコースまたはガラクトース少なくとも1つを含みそしてさらに軟体動物生殖 組織物を含む請求項10記載の栄養培地。11. the amino acid source comprises at least one individual amino acid, and the assimilable sugar is containing at least one of glucose or galactose and further comprising mollusc reproduction The nutrient medium according to claim 10, comprising a tissue material. 12.前記アミノ酸源が個々のアミノ酸少なくとも1つを含み、前記資化性糖が グルコースまたはガラクトース少なくとも1つを含みそしてさらにステロイド源 を含む請求項10記載の栄養培地。12. the amino acid source comprises at least one individual amino acid, and the assimilable sugar is at least one glucose or galactose and further a steroid source The nutrient medium according to claim 10, comprising: 13.真珠質産生性軟体動物由来の生きた外套組織、生体親和性核および請求項 10〜12のいずれかに記載の栄養培地を含んでなる組成物。13. Living mantle tissue from nacreous molluscs, biocompatible nuclei and claims A composition comprising the nutrient medium according to any one of items 10 to 12.
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