JPH02286076A - ポリハロゲン化芳香族炭化水素の微生物学的分解 - Google Patents
ポリハロゲン化芳香族炭化水素の微生物学的分解Info
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Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C02—TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE
- C02F—TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE
- C02F3/00—Biological treatment of water, waste water, or sewage
- C02F3/02—Aerobic processes
- C02F3/12—Activated sludge processes
- C02F3/1205—Particular type of activated sludge processes
- C02F3/1231—Treatments of toxic sewage
-
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- C02F—TREATMENT OF WATER, WASTE WATER, SEWAGE, OR SLUDGE
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- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
- C12N1/20—Bacteria; Culture media therefor
- C12N1/205—Bacterial isolates
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- C—CHEMISTRY; METALLURGY
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- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02W—CLIMATE CHANGE MITIGATION TECHNOLOGIES RELATED TO WASTEWATER TREATMENT OR WASTE MANAGEMENT
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野]
本発明は、ポリハロゲン化芳香族炭化水累の微生物学的
分解に関するものである。
分解に関するものである。
ハロゲン化ジベンゾ−p−ジオキシンの微生物分解に関
する研究は、(1)バイエリンキア・スベシース(Be
ijerinckia 5pec、)を用いるケレン力
およびギブソン、並びに(2)白色腐敗菌Ph。
する研究は、(1)バイエリンキア・スベシース(Be
ijerinckia 5pec、)を用いるケレン力
およびギブソン、並びに(2)白色腐敗菌Ph。
クリソスポリウム(Ph、 chrysosporiu
m)を用いるブンバス等による2種の研究に限られてい
る。フレツカおよびギブソンは、コハク酸塩と共に培養
した後のバイエリンキア・スベシースによるジベンゾジ
オキシン、1−および2−クロルジベンゾジオキシンか
ら対応のジヒドロジオール誘導体への反応(脱塩素化な
し)を観察した。塩素の放出を伴う他の分解は観察され
なかった。ブンバス等(2)は、白色腐敗菌ファネロヒ
エタ・クリソスポリウム(Phanerochaete
chrysosporium)と共にグルコース(5
6ミリモル)での増殖に際し30日間の培養の後に1.
25 nモルの2.3,7,11TCDDからの27.
9 pモルの14CO□の生成を記載している(理論的
放出量の〜2%)。パイエリンキア・スペシースによる
分解反応の使用については何も知られていないのに対し
、ヒュ7テルマンおよびトロヤノウスキー(3)は、た
とえばワラを炭素源として使用することによる土壌汚染
除去のための白色腐敗菌の使用を経験した。
m)を用いるブンバス等による2種の研究に限られてい
る。フレツカおよびギブソンは、コハク酸塩と共に培養
した後のバイエリンキア・スベシースによるジベンゾジ
オキシン、1−および2−クロルジベンゾジオキシンか
ら対応のジヒドロジオール誘導体への反応(脱塩素化な
し)を観察した。塩素の放出を伴う他の分解は観察され
なかった。ブンバス等(2)は、白色腐敗菌ファネロヒ
エタ・クリソスポリウム(Phanerochaete
chrysosporium)と共にグルコース(5
6ミリモル)での増殖に際し30日間の培養の後に1.
25 nモルの2.3,7,11TCDDからの27.
9 pモルの14CO□の生成を記載している(理論的
放出量の〜2%)。パイエリンキア・スペシースによる
分解反応の使用については何も知られていないのに対し
、ヒュ7テルマンおよびトロヤノウスキー(3)は、た
とえばワラを炭素源として使用することによる土壌汚染
除去のための白色腐敗菌の使用を経験した。
他方、ハロゲン化ベンゼンの分解に関する本出願人自身
の研究は、ジベンゾジオキシン、ジベンゾフランおよび
2−ブロモジベンゾフランを高程度まで酸化しうる菌株
を見出したが、これら化合物を完全には分解することが
できなかった。
の研究は、ジベンゾジオキシン、ジベンゾフランおよび
2−ブロモジベンゾフランを高程度まで酸化しうる菌株
を見出したが、これら化合物を完全には分解することが
できなかった。
〔発明が解決しようとする課題)
したがって本発明の課題は、ジベンゾフラン、ジベンゾ
ジオキシンおよび2−ブロモジベンゾフランを炭素源と
して使用しうる微生物をmmすると共に分離し、かつハ
ロゲン化ジベンゾジオキシンでさえ効果的に分解しうる
菌株を得ることにある。
ジオキシンおよび2−ブロモジベンゾフランを炭素源と
して使用しうる微生物をmmすると共に分離し、かつハ
ロゲン化ジベンゾジオキシンでさえ効果的に分解しうる
菌株を得ることにある。
本発明によれば、この課題はブレビバクテリウム属のR
ST69−211、RST69−233およびR5T6
9−1361と命名された新規な微生物菌株をライン川
の水試料から濃縮しかつ分離することにより解決された
。これらの菌株は西ドイツ国、ゲッチンゲンD−340
0,グリセバッハストラーセ8番在、ドイツチエ・ザン
ムルング・ホン・ミクロオルガニスメン(DSM)に対
し特許目的の微生物寄託に関する国際承認のブタペスト
条約の規定に基づきDSM4714.4715および4
716として1988年7月20日付けで寄託されてい
る。
ST69−211、RST69−233およびR5T6
9−1361と命名された新規な微生物菌株をライン川
の水試料から濃縮しかつ分離することにより解決された
。これらの菌株は西ドイツ国、ゲッチンゲンD−340
0,グリセバッハストラーセ8番在、ドイツチエ・ザン
ムルング・ホン・ミクロオルガニスメン(DSM)に対
し特許目的の微生物寄託に関する国際承認のブタペスト
条約の規定に基づきDSM4714.4715および4
716として1988年7月20日付けで寄託されてい
る。
さらに本発明は、本発明を実施するのに必須の特徴およ
び性質を備えたこれら菌株の突然変異種および変異体に
も関するものである。
び性質を備えたこれら菌株の突然変異種および変異体に
も関するものである。
本発明によれば、これらの新規な菌株はポリハロゲン化
された多環式芳香族炭化水素(より詳細にはハロジベン
ゾ−p−ジオキシンおよびジベンゾフラン)を微生物分
解するために使用される。
された多環式芳香族炭化水素(より詳細にはハロジベン
ゾ−p−ジオキシンおよびジベンゾフラン)を微生物分
解するために使用される。
単環式芳香族炭化水素(好ましくはフェノールもしくは
トルエン)を誘導質として添加することができる。
トルエン)を誘導質として添加することができる。
新規な菌株の主たる用途は微生物学的な廃水処理および
土壌の汚染除去を包含する。これら2種の用途のうち第
2の用途は、ハロゲン化された多環式芳香族炭化水素で
汚染された古い塵捨場の汚染除去および修復につき極め
て重要である。
土壌の汚染除去を包含する。これら2種の用途のうち第
2の用途は、ハロゲン化された多環式芳香族炭化水素で
汚染された古い塵捨場の汚染除去および修復につき極め
て重要である。
以下、実施例により本発明を説明する。
の
ジベンゾ−p−ジオキシンおよびジベンゾフランを唯一
の炭素源として使用しうる細菌を、ライン川の水から分
離した。この目的で、ライン川の水に無機塩を添加し、
ジベンゾ−p−ジオキシンもしくはジベンゾフラン(0
,5g/Jりを唯一の炭素源として添加し、かつ全体を
25C1dづつl!の三角フラスコに導入し、そして2
50rp−で振とうしながら28℃にて数週間にわたり
培養した。黄色もしくは褐色の着色が出現した後、これ
らフラスコをジベンゾフランを有する新たな無機塩培地
に接種し、最後に細菌を無菌寒天培地における一連の希
釈により純粋培養物として分離した。
の炭素源として使用しうる細菌を、ライン川の水から分
離した。この目的で、ライン川の水に無機塩を添加し、
ジベンゾ−p−ジオキシンもしくはジベンゾフラン(0
,5g/Jりを唯一の炭素源として添加し、かつ全体を
25C1dづつl!の三角フラスコに導入し、そして2
50rp−で振とうしながら28℃にて数週間にわたり
培養した。黄色もしくは褐色の着色が出現した後、これ
らフラスコをジベンゾフランを有する新たな無機塩培地
に接種し、最後に細菌を無菌寒天培地における一連の希
釈により純粋培養物として分離した。
二の目的で、無機塩培地には酵母抽出物(0,5g/4
2)を補充すると共にジベンゾ−p−ジオキシンもしく
はジベンゾフラン(0,5g/l)を10%DMSO溶
液として添加し、さらにツイーン80(50■A0を不
溶性ジベンゾフランを均一分配するために導入した。ジ
ベンゾフラン−およびジベンゾ−p−ジオキシン分解す
る細菌は、培地の変色(黄色もしくは褐色)から識別す
ることができる。
2)を補充すると共にジベンゾ−p−ジオキシンもしく
はジベンゾフラン(0,5g/l)を10%DMSO溶
液として添加し、さらにツイーン80(50■A0を不
溶性ジベンゾフランを均一分配するために導入した。ジ
ベンゾフラン−およびジベンゾ−p−ジオキシン分解す
る細菌は、培地の変色(黄色もしくは褐色)から識別す
ることができる。
分離された純粋培養物を複合培地(メルク・スタンダー
ドI)を有する寒天板培地に保った。長期間の培養物を
液体窒素中に貯蔵した。
ドI)を有する寒天板培地に保った。長期間の培養物を
液体窒素中に貯蔵した。
ジベンゾフランおよびジベンゾ−p−ジオキシンを炭素
源として使用しうる10種の異なる純粋培養物をライン
川の水から濃縮しかつ分離した(第1表)、同じ条件下
での試験は、グラム陽性分離菌のみが2−ブロモジベン
ゾフランを分解しうろことを示した。したがって、これ
らのグラム陽性分離菌をその後の検討に用いた。何故な
ら、ハロジベンゾ−p−ジオキシンの分解が直ちに生す
ると予想されたからである。
源として使用しうる10種の異なる純粋培養物をライン
川の水から濃縮しかつ分離した(第1表)、同じ条件下
での試験は、グラム陽性分離菌のみが2−ブロモジベン
ゾフランを分解しうろことを示した。したがって、これ
らのグラム陽性分離菌をその後の検討に用いた。何故な
ら、ハロジベンゾ−p−ジオキシンの分解が直ちに生す
ると予想されたからである。
分離菌RST69−211、RST69−233および
RST69−1361の綿密な特性化は次の結果を与え
た二 グラム陽性;増殖初期における明確な小環コツカ
ス期を有する不動性コツカス小環。カタラーゼは陽性で
あり、オキシダーゼおよびKOH試験は陰性であった。
RST69−1361の綿密な特性化は次の結果を与え
た二 グラム陽性;増殖初期における明確な小環コツカ
ス期を有する不動性コツカス小環。カタラーゼは陽性で
あり、オキシダーゼおよびKOH試験は陰性であった。
菌体壁部の調製物は直接結合したP−DAPを含有した
。ムコール酸およびN−グリコリルエステルは存在しな
かった。全菌株は炭素源として次のものを利用した(第
2表): グルコース、蔗糖、グリセリン、ピルビン酸
、酢酸、安息香酸およびサリチル酸を利用したが、マニ
トールを利用しなかった。これらの結果は、ブレビバク
テリウム属に明らかに帰属する。これに対し、バージ−
・マニュアル・オブ・システマチック・バタテリオロジ
ーに記載された4種の菌株のそれぞれにつき明確な相違
が存在した。したがって、これら菌種をさらに決定する
ことは不可能であった。これら菌株をDSM4714.
4715および4716 (R3’r69−211
RST69−233およびR,S T 691361に
つき)として1988年7月20日イ寸けで特許菌株と
して寄託した。
。ムコール酸およびN−グリコリルエステルは存在しな
かった。全菌株は炭素源として次のものを利用した(第
2表): グルコース、蔗糖、グリセリン、ピルビン酸
、酢酸、安息香酸およびサリチル酸を利用したが、マニ
トールを利用しなかった。これらの結果は、ブレビバク
テリウム属に明らかに帰属する。これに対し、バージ−
・マニュアル・オブ・システマチック・バタテリオロジ
ーに記載された4種の菌株のそれぞれにつき明確な相違
が存在した。したがって、これら菌種をさらに決定する
ことは不可能であった。これら菌株をDSM4714.
4715および4716 (R3’r69−211
RST69−233およびR,S T 691361に
つき)として1988年7月20日イ寸けで特許菌株と
して寄託した。
これら3種の菌株の間の相違点は、フェノールとトルエ
ンと乳酸とを炭素源として使用することに見られた。ア
ニリンおよびクロルベンゼンは、使用した濃度で炭素源
として使用することができなかった。しかしながら、褐
色もしくは橙色の着色の出現は、これら化合物の不完全
な分解を示した。さらに、菌株233は、炭素源として
のベンゼンもしくは0−キシレンにより増殖することが
でき、かつ4−クロルフェノールと5−クロルサリチル
酸とを分解することができた。菌株233における特に
単環式ハロゲン化芳香族炭化水素を包含する広範な分解
スペクトルのため、さらにジオキシンの分解についても
この菌株を用いて試験した。
ンと乳酸とを炭素源として使用することに見られた。ア
ニリンおよびクロルベンゼンは、使用した濃度で炭素源
として使用することができなかった。しかしながら、褐
色もしくは橙色の着色の出現は、これら化合物の不完全
な分解を示した。さらに、菌株233は、炭素源として
のベンゼンもしくは0−キシレンにより増殖することが
でき、かつ4−クロルフェノールと5−クロルサリチル
酸とを分解することができた。菌株233における特に
単環式ハロゲン化芳香族炭化水素を包含する広範な分解
スペクトルのため、さらにジオキシンの分解についても
この菌株を用いて試験した。
分JIML隨
多環式芳香族炭化水素を用いた分解試験を、テフロン被
覆されたネジ栓を備えて対応の添加剤を含んだ20−の
無機培地を含有する11!の三角フラスコで行なった。
覆されたネジ栓を備えて対応の添加剤を含んだ20−の
無機培地を含有する11!の三角フラスコで行なった。
残留物の分析につき、フラスコの全内容物を後処理した
。低濃度においてさえ再現性のある測定を行なうことが
できるのは、この方法のみであった。
。低濃度においてさえ再現性のある測定を行なうことが
できるのは、この方法のみであった。
比較的多量の菌体を102のBE発酵装N(ブラウン、
メルスンゲン)で培養した。使用した培地は、フェノー
ル(0,8g/ε)を有する標準培地1または酵母抽出
物(0,5g/jりを有する無機培地とした。後者の場
合、さらに炭素源をDMSO溶液(2〜lO%、無菌濾
過)として溶剤(トルエン、ベンゼン、O−キシレン)
で飽和された別途の流入空気流を介して導入し、或いは
濃厚水溶液(フェノール、サリチル酸;20g/j2)
として導入した。醗酵条件は800rpm、28°C1
空気11/■inとした。
メルスンゲン)で培養した。使用した培地は、フェノー
ル(0,8g/ε)を有する標準培地1または酵母抽出
物(0,5g/jりを有する無機培地とした。後者の場
合、さらに炭素源をDMSO溶液(2〜lO%、無菌濾
過)として溶剤(トルエン、ベンゼン、O−キシレン)
で飽和された別途の流入空気流を介して導入し、或いは
濃厚水溶液(フェノール、サリチル酸;20g/j2)
として導入した。醗酵条件は800rpm、28°C1
空気11/■inとした。
芳香族化合物の残留分析はHPLCで行なった。
この目的で、lIl三角フラスコの全内容物(20d)
を30%Br135B溶液(DMSO中)の2−と共に
28°Cにて30分間振とうし、次いで20I11のジ
メチルホルムアミドを添加し、さらに30分間振とうし
た後に、混合物を50m1のファルコン遠沈管に導入し
た。4,000gにて15分間にわたり遠心分離した後
、試験すべき化合物の濃度を上澄相で測定した。H(l
によりpH2に調整した混合物を比較として使用した。
を30%Br135B溶液(DMSO中)の2−と共に
28°Cにて30分間振とうし、次いで20I11のジ
メチルホルムアミドを添加し、さらに30分間振とうし
た後に、混合物を50m1のファルコン遠沈管に導入し
た。4,000gにて15分間にわたり遠心分離した後
、試験すべき化合物の濃度を上澄相で測定した。H(l
によりpH2に調整した混合物を比較として使用した。
上澄相をRPBカラムにて、芳香族炭化水素の偏光度に
基づき組成の異なる8;2〜2:8の水/アセトニトリ
ル混合物を溶出剤として用いることにより分離した。試
験すべき化合物のUV最大にて可変波長のUV検出器(
シマズ社)を用いて検出を行なった。この残量分析の方
法は、極めて高価な抽出法よりも良好な回収率(〉90
%)を与えた。さらに結果を向上させるため(より低い
分1ily)、14−ジアミノアントラキノンを内部標
準としてジメチルホルムアミドと共に添加した。この場
合、上澄相はHPLC分析のため6N NaOHでア
ルカリ化せねばならなかった。HPLC分析の検出限界
は10〜100μg/I!であった。
基づき組成の異なる8;2〜2:8の水/アセトニトリ
ル混合物を溶出剤として用いることにより分離した。試
験すべき化合物のUV最大にて可変波長のUV検出器(
シマズ社)を用いて検出を行なった。この残量分析の方
法は、極めて高価な抽出法よりも良好な回収率(〉90
%)を与えた。さらに結果を向上させるため(より低い
分1ily)、14−ジアミノアントラキノンを内部標
準としてジメチルホルムアミドと共に添加した。この場
合、上澄相はHPLC分析のため6N NaOHでア
ルカリ化せねばならなかった。HPLC分析の検出限界
は10〜100μg/I!であった。
比較的少量の燐酸塩(10mM)を含有する塩化物フリ
ーの純無機培地を用いて、塩化物と臭化物とのバランス
を決定した。ハロゲンイオンの濃度を測定するため、試
料をH□S O4でpH2に調整し、遠心分離し、無菌
濾過し、かつその後の分析のため4℃に貯蔵した。HP
[CAS4A分離カラムとHPICAG4A予備カラム
とを用いて、グイオネックス2000i/SPイオンク
ロマトグラフィーにより濃度を決定した。1.7mM
N a tcOs/ 1.8 mM N a HC
Osを、臭化物の測定に関する溶出剤として用いた。塩
化物濃度については、先ず最初に塩化物を2mM N
aOHで溶出させた後、他のイオンをNa、CO。
ーの純無機培地を用いて、塩化物と臭化物とのバランス
を決定した。ハロゲンイオンの濃度を測定するため、試
料をH□S O4でpH2に調整し、遠心分離し、無菌
濾過し、かつその後の分析のため4℃に貯蔵した。HP
[CAS4A分離カラムとHPICAG4A予備カラム
とを用いて、グイオネックス2000i/SPイオンク
ロマトグラフィーにより濃度を決定した。1.7mM
N a tcOs/ 1.8 mM N a HC
Osを、臭化物の測定に関する溶出剤として用いた。塩
化物濃度については、先ず最初に塩化物を2mM N
aOHで溶出させた後、他のイオンをNa、CO。
/ N a HCO3で溶出せねばならなかった。この
ようにして基線分離を塩化物から容易に得ることができ
た。この方法の検出限界は0.1 u Mであり、すな
わち試料をイオンクロマトグラフィーにつき1:10の
比で希釈することができた。
ようにして基線分離を塩化物から容易に得ることができ
た。この方法の検出限界は0.1 u Mであり、すな
わち試料をイオンクロマトグラフィーにつき1:10の
比で希釈することができた。
各種のジベンゾ−p−ジオキシンの分解生成物をIII
しかつ単離するため、これら物質をDMSO/ツイーン
80(9:1)に高濃度(2〜10%)で溶解させ、1
1の三角フラスコ中における450dの0.1 M燐酸
塩緩衝液(、H7,2)に40■/2の最終濃度まで攪
拌しながら導入し、かつ活性菌体の菌体懸濁物5M(1
20dの0.1M燐酸塩緩衝液、p H7,2における
40gの遠心分離された菌体物質)を添加した。三角フ
ラスコを25Orpm+にて28℃で振とうし、その1
部を1時間間隔で取出し、出発化合物の濃度を決定した
。出発化合物のほぼ完全な変換の後、全混合物をn−へ
キサンもしくはジクロルメタンで反復抽出し、抽出物を
脱水し、濃縮しかつトルエン/ジオキサン/酢酸(90
: 25 : 5)における調製用TLCプレート(メ
ルク社)にてクロマトグラフ精製した。ホリン試薬を噴
霧して青色を示したバンドを掻き取り、溶出し、かつ構
造をさらにGC−MSおよびNMRにより検査した。
しかつ単離するため、これら物質をDMSO/ツイーン
80(9:1)に高濃度(2〜10%)で溶解させ、1
1の三角フラスコ中における450dの0.1 M燐酸
塩緩衝液(、H7,2)に40■/2の最終濃度まで攪
拌しながら導入し、かつ活性菌体の菌体懸濁物5M(1
20dの0.1M燐酸塩緩衝液、p H7,2における
40gの遠心分離された菌体物質)を添加した。三角フ
ラスコを25Orpm+にて28℃で振とうし、その1
部を1時間間隔で取出し、出発化合物の濃度を決定した
。出発化合物のほぼ完全な変換の後、全混合物をn−へ
キサンもしくはジクロルメタンで反復抽出し、抽出物を
脱水し、濃縮しかつトルエン/ジオキサン/酢酸(90
: 25 : 5)における調製用TLCプレート(メ
ルク社)にてクロマトグラフ精製した。ホリン試薬を噴
霧して青色を示したバンドを掻き取り、溶出し、かつ構
造をさらにGC−MSおよびNMRにより検査した。
H’−NMRの
プルカーAM360 360−MH2−スーパーコン−
FT−NMR分光光度計を用いて分析を行なった0分析
のため、クロマトグラフ分離され、かつ乾燥された試料
をC,D、に溶解した。32回の走査を積算した。化学
シフトは、内部標準のテトラメチルシラン(Oppgz
)に基づいた。これらの結果を、6〜1pp■範囲にお
ける芳香族プロトン信号に基づいて拡大スペクトル(1
0Hz/cm)につき評価した。
FT−NMR分光光度計を用いて分析を行なった0分析
のため、クロマトグラフ分離され、かつ乾燥された試料
をC,D、に溶解した。32回の走査を積算した。化学
シフトは、内部標準のテトラメチルシラン(Oppgz
)に基づいた。これらの結果を、6〜1pp■範囲にお
ける芳香族プロトン信号に基づいて拡大スペクトル(1
0Hz/cm)につき評価した。
11分lL度ユ
質量分光光度法による分析は、フィニガンMAT823
0型質量分光光度計を用いてGC−MSカップリングに
より行なった。先行するガスクロマトグラフは、パリア
ン3700型で行なった。
0型質量分光光度計を用いてGC−MSカップリングに
より行なった。先行するガスクロマトグラフは、パリア
ン3700型で行なった。
このガスクロマトグラフィーをスプリット1:130、
注入ブロック250℃かつ次の温度プログラムで行なっ
た: 3分間の等温70″C,,15°C/winにお
ける70〜320℃の勾配、17zlの注入容積につき
5E30毛細管(20m)、質量分光光度計への流入は
直接カップリングにより行なった。質量分光光度分析の
条件は次の通りとした: 70eVのイオン衝突活性
、および3kVの加速電圧。精度は1.000amuま
で+/−0゜2 amuであったe 歴IJ幻(社)4足 呼吸率を測定するため、新たに培養され或いは凍結され
た菌体を0.1M燐酸塩緩衝液(pH7,2)に10a
1当り0.2gDMの濃度で懸濁させた。ldのこの菌
体懸濁物をピペットで100−の加熱しうるシールおよ
び攪拌可能なオリオン0!電極を備えた培養槽に入れ、
5分間かけて基礎呼吸を記録し、100.j!の試験基
質溶液(10mg/d、DMSO中)を添加し、さらに
0□吸収を5分間測定した。これら2つの呼吸率の差か
ら芳香族試験基質につき特異的0.吸収率を計算するこ
とができた。
注入ブロック250℃かつ次の温度プログラムで行なっ
た: 3分間の等温70″C,,15°C/winにお
ける70〜320℃の勾配、17zlの注入容積につき
5E30毛細管(20m)、質量分光光度計への流入は
直接カップリングにより行なった。質量分光光度分析の
条件は次の通りとした: 70eVのイオン衝突活性
、および3kVの加速電圧。精度は1.000amuま
で+/−0゜2 amuであったe 歴IJ幻(社)4足 呼吸率を測定するため、新たに培養され或いは凍結され
た菌体を0.1M燐酸塩緩衝液(pH7,2)に10a
1当り0.2gDMの濃度で懸濁させた。ldのこの菌
体懸濁物をピペットで100−の加熱しうるシールおよ
び攪拌可能なオリオン0!電極を備えた培養槽に入れ、
5分間かけて基礎呼吸を記録し、100.j!の試験基
質溶液(10mg/d、DMSO中)を添加し、さらに
0□吸収を5分間測定した。これら2つの呼吸率の差か
ら芳香族試験基質につき特異的0.吸収率を計算するこ
とができた。
菌株233は2−ブロモジベンゾフラン(80#M)を
2gDM/j!の菌体密度につき24時間でl Ou
g / l (−40m M )未満まで分解すること
ができた。無機臭化物の放出における遅延は、中間生成
物の一次的1i11i1を示した。72時間後、約75
%の有機結合した使用臭素をi11離臭化物として回収
した。菌体培養法は、2−ブロモジベンゾフランの分解
に対し僅かな影響しか及ぼさなかった。
2gDM/j!の菌体密度につき24時間でl Ou
g / l (−40m M )未満まで分解すること
ができた。無機臭化物の放出における遅延は、中間生成
物の一次的1i11i1を示した。72時間後、約75
%の有機結合した使用臭素をi11離臭化物として回収
した。菌体培養法は、2−ブロモジベンゾフランの分解
に対し僅かな影響しか及ぼさなかった。
2.3−ジクロルジベンゾ−p−ジオキシンの分解には
、全く異なる結果が観察された。非誘導菌体は48時間
後に2,3−ジクロルジベンゾP−ジオキシンの部分的
分解しか示さなかったのに対し、フェノール−誘発菌体
の場合には僅か6時間後に出発物質の完全な消失が観察
された。しかしながら、この場合、塩化物の遊離の遅延
が一層明瞭に観察された。塩化物は、24時間後に行な
った測定の間に培養混合物においてのみ観察することが
でき、その濃度は120時間後に130μM以上に達し
た。これは有機結合した塩素から塩化物へのほぼ定量的
な放出に相当した。菌株233は、ハロジベンゾ−p−
ジオキシンを分解する酵素を誘発するには、明らかにた
とえばフェノールのような他の誘導質を必要とした。し
たがうて、フェノール誘発菌体による各種のへロジベン
ゾーp−ジオキシンおよび2−ブロモジベンゾフランの
分解を他の試験で比較測定した。環ハロゲン化基質は6
時間後に検出限界まで分解されたのに対し、2.7−ジ
クロルジベンゾ−p−ジオキシンの場合には30時間後
に出発物質の完全な消失が観察された。全ハロゲン化誘
導体につき、ハロゲン化物の放出はほぼ定量的であった
(第3表)。
、全く異なる結果が観察された。非誘導菌体は48時間
後に2,3−ジクロルジベンゾP−ジオキシンの部分的
分解しか示さなかったのに対し、フェノール−誘発菌体
の場合には僅か6時間後に出発物質の完全な消失が観察
された。しかしながら、この場合、塩化物の遊離の遅延
が一層明瞭に観察された。塩化物は、24時間後に行な
った測定の間に培養混合物においてのみ観察することが
でき、その濃度は120時間後に130μM以上に達し
た。これは有機結合した塩素から塩化物へのほぼ定量的
な放出に相当した。菌株233は、ハロジベンゾ−p−
ジオキシンを分解する酵素を誘発するには、明らかにた
とえばフェノールのような他の誘導質を必要とした。し
たがうて、フェノール誘発菌体による各種のへロジベン
ゾーp−ジオキシンおよび2−ブロモジベンゾフランの
分解を他の試験で比較測定した。環ハロゲン化基質は6
時間後に検出限界まで分解されたのに対し、2.7−ジ
クロルジベンゾ−p−ジオキシンの場合には30時間後
に出発物質の完全な消失が観察された。全ハロゲン化誘
導体につき、ハロゲン化物の放出はほぼ定量的であった
(第3表)。
ジベンゾ−p−ジオキシンの分解の誘発を明瞭にするた
め、菌株233を各種の芳香族化合物と共に培養し、か
つ各種の単環式および多環式芳香族炭化水素の呼吸を測
定した1分解結果から予想されるように、ジベンゾジオ
キシンオキシゲナーゼ活性は、2−ブロモジベンゾフラ
ンもしくは2゜3−ジクロルジベンゾ−p−ジオキシン
によりそれ自身に対し存在したとしても比較的弱くしか
誘発されない(第4表)、各種の単環式芳香族炭化水素
(フェノール、トルエン)は、ジベンゾジオキシンオキ
シナーゼの良好な誘導質として作用した。成長基質とし
てのベンゼンおよびサリチル酸は誘発効果を示さなかっ
た。
め、菌株233を各種の芳香族化合物と共に培養し、か
つ各種の単環式および多環式芳香族炭化水素の呼吸を測
定した1分解結果から予想されるように、ジベンゾジオ
キシンオキシゲナーゼ活性は、2−ブロモジベンゾフラ
ンもしくは2゜3−ジクロルジベンゾ−p−ジオキシン
によりそれ自身に対し存在したとしても比較的弱くしか
誘発されない(第4表)、各種の単環式芳香族炭化水素
(フェノール、トルエン)は、ジベンゾジオキシンオキ
シナーゼの良好な誘導質として作用した。成長基質とし
てのベンゼンおよびサリチル酸は誘発効果を示さなかっ
た。
フェノールを追加炭素源として使用した場合、唯一の炭
素源としてフェノールを用いた培養に対し明確な相違が
観察された。いずれの場合にも、フェノールヒドロキシ
ラーゼおよびサリチル酸オキシゲナーゼ活性をさらに測
定した。ベンゼン増殖菌体に関する結果は、単環式およ
び多環式芳香族炭化水素の酸化に関する各種の酵素を示
唆し、これはトルエンでの極めて高い変換率にも拘わら
ず、ジベンゾ−ρ−ジオキシンの酸化が測定されなかっ
たからである。芳香族炭化水素に関する全ての培養にお
いて、ピロカテコールによる高い環開裂活性が観察され
た。
素源としてフェノールを用いた培養に対し明確な相違が
観察された。いずれの場合にも、フェノールヒドロキシ
ラーゼおよびサリチル酸オキシゲナーゼ活性をさらに測
定した。ベンゼン増殖菌体に関する結果は、単環式およ
び多環式芳香族炭化水素の酸化に関する各種の酵素を示
唆し、これはトルエンでの極めて高い変換率にも拘わら
ず、ジベンゾ−ρ−ジオキシンの酸化が測定されなかっ
たからである。芳香族炭化水素に関する全ての培養にお
いて、ピロカテコールによる高い環開裂活性が観察され
た。
良好な誘導質(すなわちトルエン)と共に増殖させた後
の酸化系の基質特異性を検討すべく他の実験を行なった
(第5表)、多環式芳香族炭化水素のうち、フェノキサ
ジンが最高の割合で酸化されたのに対し、ジベンゾフラ
ンとジベンゾジオキシンとフェノチアジンとナフタレン
とインデンとは全て明らかに低い割合で酸化された。他
のハロゲン置換基も変換率を低下させた。O2消費はキ
サントン、カルバゾール、フェナジン、チオキサントン
、アントラキノンもしくは2,7−ジクロルジベンゾ−
p−ジオキシンにつき測定できなかった。この場合、酸
化率は部分的に測定範囲以下であった。何故なら、長い
培養時間により、たとえば2.7−ジクロルジベンゾ−
p−ジオキシンの遅い分解が測定されたからである。遅
延分解に関する他の証明は、チオキサントンとの長時間
培養の場合、変色(E、□−510nm)の出現であっ
た。著しく変色した分解生成物がフェノキサジン(El
l、=571nm)およびフェノチアジン(E、□=5
91 nm)の酸化においても生成された。
の酸化系の基質特異性を検討すべく他の実験を行なった
(第5表)、多環式芳香族炭化水素のうち、フェノキサ
ジンが最高の割合で酸化されたのに対し、ジベンゾフラ
ンとジベンゾジオキシンとフェノチアジンとナフタレン
とインデンとは全て明らかに低い割合で酸化された。他
のハロゲン置換基も変換率を低下させた。O2消費はキ
サントン、カルバゾール、フェナジン、チオキサントン
、アントラキノンもしくは2,7−ジクロルジベンゾ−
p−ジオキシンにつき測定できなかった。この場合、酸
化率は部分的に測定範囲以下であった。何故なら、長い
培養時間により、たとえば2.7−ジクロルジベンゾ−
p−ジオキシンの遅い分解が測定されたからである。遅
延分解に関する他の証明は、チオキサントンとの長時間
培養の場合、変色(E、□−510nm)の出現であっ
た。著しく変色した分解生成物がフェノキサジン(El
l、=571nm)およびフェノチアジン(E、□=5
91 nm)の酸化においても生成された。
4−クロルピロカテコールの高変換率および3゜5−ジ
クロルピロカテコールと5−クロルサリチル酸と4−ク
ロルフェノールとクロルベンゼンとの酸化は、分解試験
で観察された2〜ブロモジヘンゾフランおよびジクロル
ジベンゾ−p−ジオキシンからのハロゲン化物の放出と
一致した。菌株233は、明らかに単環式および多環式
芳香族ハロゲン化炭化水素の両者に関する完全分解のた
めの酵素を有する。
クロルピロカテコールと5−クロルサリチル酸と4−ク
ロルフェノールとクロルベンゼンとの酸化は、分解試験
で観察された2〜ブロモジヘンゾフランおよびジクロル
ジベンゾ−p−ジオキシンからのハロゲン化物の放出と
一致した。菌株233は、明らかに単環式および多環式
芳香族ハロゲン化炭化水素の両者に関する完全分解のた
めの酵素を有する。
の
2−ブロモジベンゾ−P−ジオキシンと2.3−ジクロ
ル−および2.7−ジクロルジベンゾ−p−ジオキシン
との分解に際し、中間生成物が添加後の最初の数時間で
出現し、長い培養時間の後に再び消失した。混合物をよ
り早い段階(3〜6時間)で抽出した場合、分解生成物
をこれら抽出物からクロマトグラフ精製することができ
、ホリン試薬をスプレーした際に芳香族ヒドロキシ化合
物の典型的な青色着色を示した。全分解生成物のGC−
MS質量スペクトルは、16の分子量の増加、すなわち
出発物質のモノヒドロキシ誘導体の増加を示した(第6
表)、シかしながら、分解パターンからヒドロキシル化
部位を確認することはできなかった。ヒドロキシ基の置
換部位を決定するため、2−ブロモジベンゾジオキシン
と2.7−ジブロモジベンゾジオキシンと未置換のジベ
ンゾジオキシンとの高磁場プロトンNMRスペクトルを
比較のため測定した。予想通り、未胃喚のジベンゾジオ
キシンは狭い化学シフト範囲を有するA、−B、スペク
トルを与えたのに対し、2.7−ジクロル誘導体はその
対称性の理由で芳香族l。
ル−および2.7−ジクロルジベンゾ−p−ジオキシン
との分解に際し、中間生成物が添加後の最初の数時間で
出現し、長い培養時間の後に再び消失した。混合物をよ
り早い段階(3〜6時間)で抽出した場合、分解生成物
をこれら抽出物からクロマトグラフ精製することができ
、ホリン試薬をスプレーした際に芳香族ヒドロキシ化合
物の典型的な青色着色を示した。全分解生成物のGC−
MS質量スペクトルは、16の分子量の増加、すなわち
出発物質のモノヒドロキシ誘導体の増加を示した(第6
表)、シかしながら、分解パターンからヒドロキシル化
部位を確認することはできなかった。ヒドロキシ基の置
換部位を決定するため、2−ブロモジベンゾジオキシン
と2.7−ジブロモジベンゾジオキシンと未置換のジベ
ンゾジオキシンとの高磁場プロトンNMRスペクトルを
比較のため測定した。予想通り、未胃喚のジベンゾジオ
キシンは狭い化学シフト範囲を有するA、−B、スペク
トルを与えたのに対し、2.7−ジクロル誘導体はその
対称性の理由で芳香族l。
2.4−プロトン系を示した。2−ブロモ誘導体は、臭
素化された環におけるAオB!部分と1,2゜4−置換
パターンとを示した。スペクトルのA2B2部分は、ヒ
ドロキシル化された2−ブロモジベンゾジオキシンの場
合には喪朱している。このことは、ヒドロキシル化が未
置換のベンゼン環で生じたことを示唆する。このスペク
トルは2−ブロモ−7−ヒドロキシジベンゾジオキシン
と2−ブロモー8−ヒドロキシジベンゾジオキシンとの
混合物として解釈することができる(4種の異なる芳香
族1,2.4−プロトン基)、ヒドロキシル化された生
成物の場合、NMR溶剤としてのへキサデユーテロベン
ゼンの使用がプロトン信号の分離につき臨界的であった
。
素化された環におけるAオB!部分と1,2゜4−置換
パターンとを示した。スペクトルのA2B2部分は、ヒ
ドロキシル化された2−ブロモジベンゾジオキシンの場
合には喪朱している。このことは、ヒドロキシル化が未
置換のベンゼン環で生じたことを示唆する。このスペク
トルは2−ブロモ−7−ヒドロキシジベンゾジオキシン
と2−ブロモー8−ヒドロキシジベンゾジオキシンとの
混合物として解釈することができる(4種の異なる芳香
族1,2.4−プロトン基)、ヒドロキシル化された生
成物の場合、NMR溶剤としてのへキサデユーテロベン
ゼンの使用がプロトン信号の分離につき臨界的であった
。
加しL表−
ジベンゾフランおよびジベンゾ−p−ジオキシンを分解
する各種微生物(ライン川の水分離菌)の分解特性、お
よびダラム特性 + + + + + + + + + + + 1■麦 2−ブロモジベンゾフラン分解性菌株RST69−21
1−233および−1361の生化学的性質、揮発性芳
香族炭化水素を用いる増殖試験のため、基質を蒸気相に
より添加した。
する各種微生物(ライン川の水分離菌)の分解特性、お
よびダラム特性 + + + + + + + + + + + 1■麦 2−ブロモジベンゾフラン分解性菌株RST69−21
1−233および−1361の生化学的性質、揮発性芳
香族炭化水素を用いる増殖試験のため、基質を蒸気相に
より添加した。
性質 69−21169−23369−1361ダラ
ム特性 + 十 十オキシダーゼ カタラーゼ + +7 +炭素源で
の増殖(g/ l ) ニ ゲルコース(10) 蔗II (10) マニトール(1) グリセリン(2) + + + + 十 ピルビン酸(2) 乳酸(2) 酢酸(2) 十 + 十 + + 安息香酸(2) サリチル酸(2) + + 11衷(つづき) フェノール(0,8) アニリン(0,8) ベンゼン トルエン 0−キシレン クロルベンゼン 分解(g/ It ) : 十 十 + 11表 5日後および10日後のフェノール誘発された69−2
33vIj体による2−ブロモジベンゾフランおよび各
種のハロジベンゾ−ρ−ジオキシンの分解におけるハロ
ゲン化物バランス、ハロゲン化芳香族物質を添加しない
比較におけるハロゲン化物濃度はく2μmとした。
ム特性 + 十 十オキシダーゼ カタラーゼ + +7 +炭素源で
の増殖(g/ l ) ニ ゲルコース(10) 蔗II (10) マニトール(1) グリセリン(2) + + + + 十 ピルビン酸(2) 乳酸(2) 酢酸(2) 十 + 十 + + 安息香酸(2) サリチル酸(2) + + 11衷(つづき) フェノール(0,8) アニリン(0,8) ベンゼン トルエン 0−キシレン クロルベンゼン 分解(g/ It ) : 十 十 + 11表 5日後および10日後のフェノール誘発された69−2
33vIj体による2−ブロモジベンゾフランおよび各
種のハロジベンゾ−ρ−ジオキシンの分解におけるハロ
ゲン化物バランス、ハロゲン化芳香族物質を添加しない
比較におけるハロゲン化物濃度はく2μmとした。
+
11裏
トルエンと共に・増殖した後の菌株69−233による
各種の単環式および多環式芳香族炭化水素に関する特異
的O1吸収率 0=<0.5nモル/sin X gDM。
各種の単環式および多環式芳香族炭化水素に関する特異
的O1吸収率 0=<0.5nモル/sin X gDM。
ジベンゾ−p−ジオキシン 3.8−p−ジオ
キシン 0.6 2.7−ジクロルジベンゾ ーp−ジオキシン O ジベンゾフラン 5.22−ブロモ
ジベンゾフラン 3.3フエノキサジン フェナジン カルバゾール 22.2 フェノチアジン チオキサントン m(つづき) キサンチン キサントン アントラキノン 6.6 ナフタレン インデン ベンゼン トルエン クロルベンゼン 16.9 52.1 1.6 フェノール クロルフェノール 62.5 16.3 サリチル酸 5−クロルサリチル酸 安息香酸 22.2 1.2 ピロカテコール 4−クロルピロカテコール 3.5−ジクロルビロカテ コーJし 312.5 160、2 16.9 jLL表 菌株69−233による2−ブロモジベンゾ−p−ジオ
キシン、2.3−ジクロル−および2.7ジクロルジベ
ンゾーP−ジオキシン並びにその分解生成物のGC−M
Sデータ 第6表(つづき) C0 C0 一〇1 文献 (1) G、 M、フレツカ、D、 T、ギプソン:バ
イエリンキア・スベシースによるジベンゾ−p−ジオキ
シンおよび塩素化ジベンゾ−P=ニジオキシン代謝、ア
プライド・エンバイロンメンタル・マイクロバイオロジ
ー 第39巻(1980)、第288頁。
キシン 0.6 2.7−ジクロルジベンゾ ーp−ジオキシン O ジベンゾフラン 5.22−ブロモ
ジベンゾフラン 3.3フエノキサジン フェナジン カルバゾール 22.2 フェノチアジン チオキサントン m(つづき) キサンチン キサントン アントラキノン 6.6 ナフタレン インデン ベンゼン トルエン クロルベンゼン 16.9 52.1 1.6 フェノール クロルフェノール 62.5 16.3 サリチル酸 5−クロルサリチル酸 安息香酸 22.2 1.2 ピロカテコール 4−クロルピロカテコール 3.5−ジクロルビロカテ コーJし 312.5 160、2 16.9 jLL表 菌株69−233による2−ブロモジベンゾ−p−ジオ
キシン、2.3−ジクロル−および2.7ジクロルジベ
ンゾーP−ジオキシン並びにその分解生成物のGC−M
Sデータ 第6表(つづき) C0 C0 一〇1 文献 (1) G、 M、フレツカ、D、 T、ギプソン:バ
イエリンキア・スベシースによるジベンゾ−p−ジオキ
シンおよび塩素化ジベンゾ−P=ニジオキシン代謝、ア
プライド・エンバイロンメンタル・マイクロバイオロジ
ー 第39巻(1980)、第288頁。
(2)J、A、ブンパス、M、T、D、 ライト、S
、 D、オースト:白色腐敗菌による残留環境汚染物
の酸化、サイエンス、第228巻(1985L第143
4頁。
、 D、オースト:白色腐敗菌による残留環境汚染物
の酸化、サイエンス、第228巻(1985L第143
4頁。
(3) A、 ヒュッテルマン、J、トラヤノウスキ
ー:分解に通した白色腐敗菌およびワラでの培養による
分解困難な芳香族物質含有土壌の現場での汚染除去に関
する検討。
ー:分解に通した白色腐敗菌およびワラでの培養による
分解困難な芳香族物質含有土壌の現場での汚染除去に関
する検討。
■、フランチウス(&i) :汚染現場の汚染除去(1
986)、[土壌浄化の新規な方法」、アップファール
ビルトシャフト・イン・ホルシュンク・ラント・プラク
シス、第18巻、第205〜218頁、ベルリン、E、
シュミット・フエアラーク出版<1987)。
986)、[土壌浄化の新規な方法」、アップファール
ビルトシャフト・イン・ホルシュンク・ラント・プラク
シス、第18巻、第205〜218頁、ベルリン、E、
シュミット・フエアラーク出版<1987)。
(4) W、スブリンガー、HoG、 ラスト:ポリハ
ロゲン化された単環式および多環式芳香族物質の微生物
分解、GWFワッサー/アップヮッサー、第129巻(
198B)、第70頁。
ロゲン化された単環式および多環式芳香族物質の微生物
分解、GWFワッサー/アップヮッサー、第129巻(
198B)、第70頁。
以下、本発明の実施態様を示せば次の通りである
1、ハロジベンゾジオキシンおよびジベンゾフランを含
有する土壌、沈降物および廃水を生物学的に処理するた
め、ジベンゾフランおよび2−ブロモジベンゾフランを
唯一の炭素源として使用しうるプロピバクテリウム属の
細菌。
有する土壌、沈降物および廃水を生物学的に処理するた
め、ジベンゾフランおよび2−ブロモジベンゾフランを
唯一の炭素源として使用しうるプロピバクテリウム属の
細菌。
2、微生物学的廃水処理および土壌汚染除去のための突
然変異種および変異体を包含する上記第1項記載の微生
物菌株RST69−211、RST69−233および
RST69−1361゜3、ポリハロゲン化された多環
式芳香族炭化水素を微生物学的に分解するための上記第
2項記載の菌株の使用。
然変異種および変異体を包含する上記第1項記載の微生
物菌株RST69−211、RST69−233および
RST69−1361゜3、ポリハロゲン化された多環
式芳香族炭化水素を微生物学的に分解するための上記第
2項記載の菌株の使用。
4、ハロジベンゾ−p−ジオキシンおよびジベンゾフラ
ンを分解するための上記第3項記載の使用。
ンを分解するための上記第3項記載の使用。
5、単環式芳香族炭化水素、好ましくはフェノールもし
くはトルエンを誘導質として添加する上記第4項記載の
使用。
くはトルエンを誘導質として添加する上記第4項記載の
使用。
代理人の氏名 川原1)−穂
Claims (3)
- (1)ハロジベンゾジオキシンおよびジベンゾフランを
含有する土壌、沈降物および廃水を生物学的に処理する
ため、ジベンゾフランおよび2−ブロモジベンゾフラン
を唯一の炭素源として使用しうるブレビバクテリウム属
の細菌。 - (2)微生物学的廃水処理および土壌汚染除去のための
突然変異種および変異体を包含する請求項1記載の微生
物菌株RST69−211、RST69−233および
RST69−1361。 - (3)ポリハロゲン化された多環式芳香族炭化水素を微
生物学的に分解するための請求項2記載の菌株の使用。
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---|---|---|---|
DE19893910682 DE3910682A1 (de) | 1989-04-03 | 1989-04-03 | Mikrobieller abbau von mehrfach halogenierten aromaten |
DE3910682.9 | 1989-04-03 |
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Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH02286076A true JPH02286076A (ja) | 1990-11-26 |
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Family Applications (1)
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JP2081483A Pending JPH02286076A (ja) | 1989-04-03 | 1990-03-30 | ポリハロゲン化芳香族炭化水素の微生物学的分解 |
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JP (1) | JPH02286076A (ja) |
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DE (1) | DE3910682A1 (ja) |
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CN111139196B (zh) * | 2018-11-02 | 2021-06-25 | 中国石油化工股份有限公司 | 一株厌氧嗜烃产气短杆菌tp-1及其应用 |
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JPS5499347A (en) * | 1978-01-23 | 1979-08-06 | Nagoya Daigaku Gakucho | Method of purifying waste water containing phosphorus by microorganisms |
US4447541A (en) * | 1983-06-06 | 1984-05-08 | Galson Research Corporation | Methods for decontaminating soil |
DE3545325A1 (de) * | 1985-12-20 | 1987-06-25 | Dechema | Verfahren zur bodendekontaminierung mittels mikroorganismen |
DE3601979A1 (de) * | 1986-01-21 | 1987-07-23 | Lfu Labor Fuer Umweltanalytik | Verfahren zur biotechnologischen sanierung von umweltschaeden im boden |
DE3731816C1 (de) * | 1987-09-22 | 1988-11-03 | Pfleiderer Fa G A | Verfahren zum Abbau schwer abbaubarer Aromaten in kontaminierten Boeden bzw. Deponiestoffen mit Mikroorganismen |
-
1989
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-
1990
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- 1990-03-22 EP EP19900105412 patent/EP0391151A3/de not_active Withdrawn
- 1990-03-30 CA CA 2013450 patent/CA2013450A1/en not_active Abandoned
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- 1990-03-30 JP JP2081483A patent/JPH02286076A/ja active Pending
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Publication number | Publication date |
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NO901273D0 (no) | 1990-03-20 |
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