JPH02150295A - 溶菌成分採取方法及び細菌検査法 - Google Patents
溶菌成分採取方法及び細菌検査法Info
- Publication number
- JPH02150295A JPH02150295A JP1016189A JP1016189A JPH02150295A JP H02150295 A JPH02150295 A JP H02150295A JP 1016189 A JP1016189 A JP 1016189A JP 1016189 A JP1016189 A JP 1016189A JP H02150295 A JPH02150295 A JP H02150295A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- bacteria
- filter
- sample
- membrane
- bacterial
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 title claims abstract description 52
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 47
- 230000001320 lysogenic effect Effects 0.000 title 1
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 claims abstract description 22
- 239000012528 membrane Substances 0.000 claims abstract description 17
- 239000000706 filtrate Substances 0.000 claims abstract description 14
- 238000001914 filtration Methods 0.000 claims abstract description 14
- 239000007787 solid Substances 0.000 claims abstract description 12
- 239000000725 suspension Substances 0.000 claims abstract description 12
- 239000012736 aqueous medium Substances 0.000 claims abstract description 6
- 239000011148 porous material Substances 0.000 claims description 16
- 239000006166 lysate Substances 0.000 claims description 14
- 210000003608 fece Anatomy 0.000 claims description 8
- 238000012360 testing method Methods 0.000 claims description 8
- 238000003752 polymerase chain reaction Methods 0.000 claims description 3
- 238000011282 treatment Methods 0.000 abstract description 18
- 239000003365 glass fiber Substances 0.000 abstract description 9
- 239000000835 fiber Substances 0.000 abstract description 4
- 239000011491 glass wool Substances 0.000 abstract description 4
- IDCBOTIENDVCBQ-UHFFFAOYSA-N TEPP Chemical compound CCOP(=O)(OCC)OP(=O)(OCC)OCC IDCBOTIENDVCBQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 abstract description 3
- 229920000728 polyester Polymers 0.000 abstract 1
- 239000000523 sample Substances 0.000 description 33
- 230000002101 lytic effect Effects 0.000 description 17
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M Sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 12
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 8
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 8
- 239000004094 surface-active agent Substances 0.000 description 8
- 230000001420 bacteriolytic effect Effects 0.000 description 7
- 239000012472 biological sample Substances 0.000 description 7
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 7
- 108020003215 DNA Probes Proteins 0.000 description 5
- 239000003298 DNA probe Substances 0.000 description 5
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 5
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 5
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 5
- 230000009089 cytolysis Effects 0.000 description 5
- 238000001514 detection method Methods 0.000 description 5
- 238000001962 electrophoresis Methods 0.000 description 5
- 229940088598 enzyme Drugs 0.000 description 5
- 239000004809 Teflon Substances 0.000 description 4
- 229920006362 Teflon® Polymers 0.000 description 4
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 4
- 238000012258 culturing Methods 0.000 description 4
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 4
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 4
- 238000012856 packing Methods 0.000 description 4
- 235000011121 sodium hydroxide Nutrition 0.000 description 4
- 241000193755 Bacillus cereus Species 0.000 description 3
- 230000003321 amplification Effects 0.000 description 3
- 239000011324 bead Substances 0.000 description 3
- 238000010586 diagram Methods 0.000 description 3
- 230000002934 lysing effect Effects 0.000 description 3
- 238000006386 neutralization reaction Methods 0.000 description 3
- 238000003199 nucleic acid amplification method Methods 0.000 description 3
- 230000008569 process Effects 0.000 description 3
- 238000011160 research Methods 0.000 description 3
- 230000000717 retained effect Effects 0.000 description 3
- 239000012488 sample solution Substances 0.000 description 3
- 230000035945 sensitivity Effects 0.000 description 3
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- 230000004520 agglutination Effects 0.000 description 2
- 239000003945 anionic surfactant Substances 0.000 description 2
- 230000003115 biocidal effect Effects 0.000 description 2
- 239000000872 buffer Substances 0.000 description 2
- 239000000356 contaminant Substances 0.000 description 2
- 230000007423 decrease Effects 0.000 description 2
- 238000009826 distribution Methods 0.000 description 2
- 230000002550 fecal effect Effects 0.000 description 2
- 239000004816 latex Substances 0.000 description 2
- 229920000126 latex Polymers 0.000 description 2
- 239000008363 phosphate buffer Substances 0.000 description 2
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 2
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 2
- 239000002759 woven fabric Substances 0.000 description 2
- 229920001817 Agar Polymers 0.000 description 1
- 101100428830 Caenorhabditis elegans mml-1 gene Proteins 0.000 description 1
- 241000589876 Campylobacter Species 0.000 description 1
- 102000029816 Collagenase Human genes 0.000 description 1
- 108060005980 Collagenase Proteins 0.000 description 1
- 230000004544 DNA amplification Effects 0.000 description 1
- 240000002834 Paulownia tomentosa Species 0.000 description 1
- 108091005804 Peptidases Proteins 0.000 description 1
- 239000004793 Polystyrene Substances 0.000 description 1
- 239000004365 Protease Substances 0.000 description 1
- 102100037486 Reverse transcriptase/ribonuclease H Human genes 0.000 description 1
- 239000007983 Tris buffer Substances 0.000 description 1
- 238000002835 absorbance Methods 0.000 description 1
- 238000011481 absorbance measurement Methods 0.000 description 1
- 230000009471 action Effects 0.000 description 1
- 239000008272 agar Substances 0.000 description 1
- 239000011543 agarose gel Substances 0.000 description 1
- 150000008051 alkyl sulfates Chemical class 0.000 description 1
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 1
- 230000001413 cellular effect Effects 0.000 description 1
- 210000003850 cellular structure Anatomy 0.000 description 1
- 239000007795 chemical reaction product Substances 0.000 description 1
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 1
- 238000004140 cleaning Methods 0.000 description 1
- 238000003759 clinical diagnosis Methods 0.000 description 1
- 229960002424 collagenase Drugs 0.000 description 1
- 238000012790 confirmation Methods 0.000 description 1
- 239000000470 constituent Substances 0.000 description 1
- 238000007796 conventional method Methods 0.000 description 1
- 238000012136 culture method Methods 0.000 description 1
- 238000011161 development Methods 0.000 description 1
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 1
- ZMMJGEGLRURXTF-UHFFFAOYSA-N ethidium bromide Chemical compound [Br-].C12=CC(N)=CC=C2C2=CC=C(N)C=C2[N+](CC)=C1C1=CC=CC=C1 ZMMJGEGLRURXTF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229960005542 ethidium bromide Drugs 0.000 description 1
- 239000012530 fluid Substances 0.000 description 1
- 239000010794 food waste Substances 0.000 description 1
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 1
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 description 1
- 238000009396 hybridization Methods 0.000 description 1
- 239000012535 impurity Substances 0.000 description 1
- 230000000968 intestinal effect Effects 0.000 description 1
- 239000002563 ionic surfactant Substances 0.000 description 1
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 1
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 1
- 239000003550 marker Substances 0.000 description 1
- 239000000463 material Substances 0.000 description 1
- 230000000813 microbial effect Effects 0.000 description 1
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 1
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 1
- 239000002736 nonionic surfactant Substances 0.000 description 1
- 239000004745 nonwoven fabric Substances 0.000 description 1
- 239000002245 particle Substances 0.000 description 1
- 229920001296 polysiloxane Polymers 0.000 description 1
- 229920002223 polystyrene Polymers 0.000 description 1
- 238000012545 processing Methods 0.000 description 1
- 235000015170 shellfish Nutrition 0.000 description 1
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 1
- 238000003860 storage Methods 0.000 description 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 1
- 229920003002 synthetic resin Polymers 0.000 description 1
- 239000000057 synthetic resin Substances 0.000 description 1
- 230000008685 targeting Effects 0.000 description 1
- 238000012546 transfer Methods 0.000 description 1
- LENZDBCJOHFCAS-UHFFFAOYSA-N tris Chemical compound OCC(N)(CO)CO LENZDBCJOHFCAS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000009281 ultraviolet germicidal irradiation Methods 0.000 description 1
- 239000002888 zwitterionic surfactant Substances 0.000 description 1
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
(イ)産業上の利用分野
この発明は、溶菌成分採取方法及び細菌検査法に関する
。さらに詳しくは、糞便等の水不溶性固型分と細菌を共
存する試料中の細菌の溶菌成分を迅速かつ簡便に採取し
うる方法、及びこの溶菌成分の特定のDNAの増幅に基
づいて試料中の細菌を同定しうる細菌検査法に関する。
。さらに詳しくは、糞便等の水不溶性固型分と細菌を共
存する試料中の細菌の溶菌成分を迅速かつ簡便に採取し
うる方法、及びこの溶菌成分の特定のDNAの増幅に基
づいて試料中の細菌を同定しうる細菌検査法に関する。
(ロ)従来の技術
臨床診断や研究の分野において、生物試料中の細菌の種
類を同定したり、その構成成分を分針するために、細菌
を種々の方法で溶菌させて各種分析処理に付すことが従
来から行われている。
類を同定したり、その構成成分を分針するために、細菌
を種々の方法で溶菌させて各種分析処理に付すことが従
来から行われている。
ここで生物試料の中でも、糞便等の水不溶性固型分(食
物残香や腸内剥離細胞等)を含む試料中の細菌の溶菌成
分を得る手法として試料の懸濁液を培地に植え付けて数
日間培養を行うことより得られたコロニーを採取し、こ
れを遠心分離に付して菌体を分離回収し、これを液中で
酵素もしくは界面活性剤あるいは苛性ソーダを用いて溶
菌させたり、液中で超音波によって破壊したり又はガラ
スピーズによってミルで破壊する方法が行われている。
物残香や腸内剥離細胞等)を含む試料中の細菌の溶菌成
分を得る手法として試料の懸濁液を培地に植え付けて数
日間培養を行うことより得られたコロニーを採取し、こ
れを遠心分離に付して菌体を分離回収し、これを液中で
酵素もしくは界面活性剤あるいは苛性ソーダを用いて溶
菌させたり、液中で超音波によって破壊したり又はガラ
スピーズによってミルで破壊する方法が行われている。
また細菌の種類の同定法としては、従来から例えば、1
)ある特定の抗生物質を含有した寒天等の培地に上記試
料をまき、その結果生えてくる菌体群を分別し、この分
別された菌体群をまた別の抗生物質によって分別するこ
とを繰返して分離する分離培養法、2)ラテックスビー
ズにある菌体に固有の抗体を充填し、これを上記試料中
に浸漬し、このビーズ表面の抗体が菌体を認識し、これ
が連鎖して凝集することにより検出するラテックス凝集
法、3)定まった個数の小孔を有するポリスチレン製プ
レートの」二記各小孔の表面に標早抗体をつけ、これに
菌体(または菌体成分)を作用させ、抗原−抗体反応に
より結合するものとしないものとをより分け、さらに酵
素標識された特異流体を作用させ、標識に対する発色に
より分離同定するEtlSA法、4)特異的なりNAの
断片に酵素標識されたDNAプローブを用いハイブリダ
イズさせて分離同定するDNAプ【1−ブ法等がある。
)ある特定の抗生物質を含有した寒天等の培地に上記試
料をまき、その結果生えてくる菌体群を分別し、この分
別された菌体群をまた別の抗生物質によって分別するこ
とを繰返して分離する分離培養法、2)ラテックスビー
ズにある菌体に固有の抗体を充填し、これを上記試料中
に浸漬し、このビーズ表面の抗体が菌体を認識し、これ
が連鎖して凝集することにより検出するラテックス凝集
法、3)定まった個数の小孔を有するポリスチレン製プ
レートの」二記各小孔の表面に標早抗体をつけ、これに
菌体(または菌体成分)を作用させ、抗原−抗体反応に
より結合するものとしないものとをより分け、さらに酵
素標識された特異流体を作用させ、標識に対する発色に
より分離同定するEtlSA法、4)特異的なりNAの
断片に酵素標識されたDNAプローブを用いハイブリダ
イズさせて分離同定するDNAプ【1−ブ法等がある。
(ハ)発明が解決しようとする課題
しかし上記従来法においては、培養に長時間を要するた
め、溶菌成分を迅速に得ることは困難であると共に、遠
心分離操作を必要とするため操作が煩雑で操作条件が変
動し易いという問題があった。
め、溶菌成分を迅速に得ることは困難であると共に、遠
心分離操作を必要とするため操作が煩雑で操作条件が変
動し易いという問題があった。
また上記のごとく試料中に含有される細菌または調製さ
れた溶菌成分の前記同定法においては、りの分離培養法
では検出感度は高いが培養を伴うので長時間(1週間程
度)を必要とすること、2)や3)の抗体を用いる方法
の場合はカンピロバクタ−ジエジュイ(Ca5pylo
bacter J ejui)4X10’個/g・5t
oolまでの検出の報告がある程度で検出感度が悪いこ
と、4)のD N Aプローブ法では細菌を対象とした
とき、通常の細菌ではゲノ1、 D N Aは1個であ
り、かなりのDNAft1tがないと検出が困難なこと
から大量の検体を必要とすること等、それぞれ試料のj
ltJ、同定法共に問題があった。
れた溶菌成分の前記同定法においては、りの分離培養法
では検出感度は高いが培養を伴うので長時間(1週間程
度)を必要とすること、2)や3)の抗体を用いる方法
の場合はカンピロバクタ−ジエジュイ(Ca5pylo
bacter J ejui)4X10’個/g・5t
oolまでの検出の報告がある程度で検出感度が悪いこ
と、4)のD N Aプローブ法では細菌を対象とした
とき、通常の細菌ではゲノ1、 D N Aは1個であ
り、かなりのDNAft1tがないと検出が困難なこと
から大量の検体を必要とすること等、それぞれ試料のj
ltJ、同定法共に問題があった。
この発明は、かかる状況下なされたらのであり、ことに
遠心分離等の煩雑な操作を用いることなく、迅速かつ簡
便に前記生物試料等の試料から溶菌成分を得ることがで
きる方法、及びこの溶菌成分を用いて簡便に同定しうる
細菌検査法を提供しようとするものである。
遠心分離等の煩雑な操作を用いることなく、迅速かつ簡
便に前記生物試料等の試料から溶菌成分を得ることがで
きる方法、及びこの溶菌成分を用いて簡便に同定しうる
細菌検査法を提供しようとするものである。
(ニ)課題を解決するための手段及び作用本発明者らは
上記観点から、濾紙等のフィルターを利用して菌体を分
離すると共に同じく濾紙等のフィルターを利用して簡便
に溶菌成分を採取する方法について鋭意研究を行った。
上記観点から、濾紙等のフィルターを利用して菌体を分
離すると共に同じく濾紙等のフィルターを利用して簡便
に溶菌成分を採取する方法について鋭意研究を行った。
その結果、特定のフィルターを用いることにより、極め
て短時間で効果良く溶菌成分が採取できる事実を見出し
た。
て短時間で効果良く溶菌成分が採取できる事実を見出し
た。
一方、近年ポリメラーゼ連鎖反応法(poly−ser
ase chain reaction、以下pcn法
という)なるDNAの増幅法が開発されており、この手
法を用いると目標画のDI’JAに特異的にハイブリダ
イズするプライマを選んで反応をすすめれば、目標画の
DNAのみ増幅され、検出することができ、1−100
個最初にあれば充分増幅可能なことから、供与する検体
量が少なくてすむという利点がある。
ase chain reaction、以下pcn法
という)なるDNAの増幅法が開発されており、この手
法を用いると目標画のDI’JAに特異的にハイブリダ
イズするプライマを選んで反応をすすめれば、目標画の
DNAのみ増幅され、検出することができ、1−100
個最初にあれば充分増幅可能なことから、供与する検体
量が少なくてすむという利点がある。
そこで、生物試料から簡便にDNAを回収する手法とP
CR法とを併せて用いることにより、生物試料中の菌を
高感度にかつ迅速簡便に検出することが可能であること
に想到し、この発明に到達した。
CR法とを併せて用いることにより、生物試料中の菌を
高感度にかつ迅速簡便に検出することが可能であること
に想到し、この発明に到達した。
かくしてこの発明によれば、水不溶性固型分と細菌を共
存する糞便等の試料を水系媒体に懸濁させ、この懸濁液
を孔径約0.45μ量以上の膜状フィルターを有する濾
過器で濾過処理し、得られた細菌含有濾液を孔径約0.
2〜1.6μ調の膜状フィルターに通過させてこの膜状
フィルターに細菌を保持させた後、この膜状フィルター
に溶菌液を流通させることにより、細菌の溶菌液を得る
ことを特徴とする溶菌成分採取方法、並びに、請求項1
の方法により得られた溶菌液をpH5〜9に調整後ポリ
メラーゼ連鎖反応法に付し、該方法のもとで増幅するD
NAに基づいて、試料中の細菌を検出することを特徴と
する細菌検査法が提供される。
存する糞便等の試料を水系媒体に懸濁させ、この懸濁液
を孔径約0.45μ量以上の膜状フィルターを有する濾
過器で濾過処理し、得られた細菌含有濾液を孔径約0.
2〜1.6μ調の膜状フィルターに通過させてこの膜状
フィルターに細菌を保持させた後、この膜状フィルター
に溶菌液を流通させることにより、細菌の溶菌液を得る
ことを特徴とする溶菌成分採取方法、並びに、請求項1
の方法により得られた溶菌液をpH5〜9に調整後ポリ
メラーゼ連鎖反応法に付し、該方法のもとで増幅するD
NAに基づいて、試料中の細菌を検出することを特徴と
する細菌検査法が提供される。
この発明の対象となる試料としては、糞便等の生物試料
が代表的であるが、これ以外にも比較的大きな水不溶性
固型分と細菌とを少なくと6含有する試料が適用できる
。
が代表的であるが、これ以外にも比較的大きな水不溶性
固型分と細菌とを少なくと6含有する試料が適用できる
。
この発明においては、まず上記試料の懸濁液が調製され
る。この懸濁液を調製するための水系媒体としては、溶
菌性を有さないものが適しており、例えば、その例とし
て希塩化ナトリウム水や中性リン酸緩衝液等が挙げられ
、細菌と固型分の分離分散性を向」二させるために、溶
菌しない程度の界面活性剤が含有されていてもよい。懸
濁させる試料の量は、通常、〜1009/fl程度が適
している。
る。この懸濁液を調製するための水系媒体としては、溶
菌性を有さないものが適しており、例えば、その例とし
て希塩化ナトリウム水や中性リン酸緩衝液等が挙げられ
、細菌と固型分の分離分散性を向」二させるために、溶
菌しない程度の界面活性剤が含有されていてもよい。懸
濁させる試料の量は、通常、〜1009/fl程度が適
している。
かかる懸濁液は次いで、濾過器による濾過処理に付され
る。この際、用いる濾過器は孔径約0.45μ拘以上の
膜状フィルタを主フィルターとして有するものが用いら
れる。このうち少なくとも菌体(細胞)1個を透過しう
る孔径0.45〜IOHのものが好ましい。0.454
s未満では懸濁液中の菌体を通過させることが実質的に
困難であって適さない。
る。この際、用いる濾過器は孔径約0.45μ拘以上の
膜状フィルタを主フィルターとして有するものが用いら
れる。このうち少なくとも菌体(細胞)1個を透過しう
る孔径0.45〜IOHのものが好ましい。0.454
s未満では懸濁液中の菌体を通過させることが実質的に
困難であって適さない。
また菌体が凝集しているときは、後の処理を考えて大体
100μ園未満までの孔径を有する膜状フィルタが好適
に用いられる。100μmを超えると懸濁液中の水不溶
性固型分が通過し易く菌体とこの固型分との分離性が著
しく低下するため好ましくない。
100μ園未満までの孔径を有する膜状フィルタが好適
に用いられる。100μmを超えると懸濁液中の水不溶
性固型分が通過し易く菌体とこの固型分との分離性が著
しく低下するため好ましくない。
かかる膜状フィルターとしては、ガラス111濾紙、グ
ラスウール等が好適に用いられる。なお、かかる濾過器
は、この膜状フィルターのみから構成されていてもよい
が、通常、上記水不溶性固型分による目詰まりを防止す
べく、この膜状フィルターの上に繊維の不織布状充填層
及び/又は織布層を積層し、この上方から懸濁液を供給
して濾過処理を行うのが袢している。ことに、多量の試
料を扱う場合には、前記膜状フィルターの上にガラス繊
維の充填層(不織布状充填層)と合成樹脂繊維のメツシ
ュ(織布層:例えばテトロンメツシュ)とをこの順に積
層した三層構造の濾過器を用いるのが好ましい。また、
濾過操作は減圧で行ってもよく加圧で行ってもよい。
ラスウール等が好適に用いられる。なお、かかる濾過器
は、この膜状フィルターのみから構成されていてもよい
が、通常、上記水不溶性固型分による目詰まりを防止す
べく、この膜状フィルターの上に繊維の不織布状充填層
及び/又は織布層を積層し、この上方から懸濁液を供給
して濾過処理を行うのが袢している。ことに、多量の試
料を扱う場合には、前記膜状フィルターの上にガラス繊
維の充填層(不織布状充填層)と合成樹脂繊維のメツシ
ュ(織布層:例えばテトロンメツシュ)とをこの順に積
層した三層構造の濾過器を用いるのが好ましい。また、
濾過操作は減圧で行ってもよく加圧で行ってもよい。
この濾過処理によって、水不溶性固型分が実質的に濾過
除去され、細菌と不溶性夾雑物とが含有された濾液が得
られる。かかる濾液は、次いで溶菌処理に付される。溶
菌処理は、孔径約0.2〜1.6μ転好ましくは0.2
〜1.2μ■の膜状フィルターに上記濾液を通過させて
該フィルターに細菌を保持させ、適宜洗浄処理等を行っ
た後、溶菌液をこのフィルターに流通させることにより
行うのが適している。ここで膜状フィルターの孔径が0
、2個m未満では、夾雑成分の濾過除去効率が低下す
るため適さず、1.6μmを超えると細菌のフィルター
への保持効率が低下するため適さない。かかるフィルタ
ーとしては、ガラス繊*m紙が好ましい。
除去され、細菌と不溶性夾雑物とが含有された濾液が得
られる。かかる濾液は、次いで溶菌処理に付される。溶
菌処理は、孔径約0.2〜1.6μ転好ましくは0.2
〜1.2μ■の膜状フィルターに上記濾液を通過させて
該フィルターに細菌を保持させ、適宜洗浄処理等を行っ
た後、溶菌液をこのフィルターに流通させることにより
行うのが適している。ここで膜状フィルターの孔径が0
、2個m未満では、夾雑成分の濾過除去効率が低下す
るため適さず、1.6μmを超えると細菌のフィルター
への保持効率が低下するため適さない。かかるフィルタ
ーとしては、ガラス繊*m紙が好ましい。
通常、上記フィルターへ細菌を保持させた後、溶菌液の
流通前に洗浄処理を行うのが、より精製された溶菌液が
得られる点で好ましい。ここで洗浄処理は、前述した懸
濁液U、1製時に用いた溶菌性を有さない水系媒体を流
通させることにより行われ、洗浄効率を向上させるため
に、溶菌しない程度の飛(通常0.5重量%以下)の界
面活性剤を含有したしのを用いるのが好ましい。
流通前に洗浄処理を行うのが、より精製された溶菌液が
得られる点で好ましい。ここで洗浄処理は、前述した懸
濁液U、1製時に用いた溶菌性を有さない水系媒体を流
通させることにより行われ、洗浄効率を向上させるため
に、溶菌しない程度の飛(通常0.5重量%以下)の界
面活性剤を含有したしのを用いるのが好ましい。
一方、上記で用いる溶菌液としては、溶菌用酵素(例え
ば、プロテアーゼ、コラゲナーゼ、リゾデーム等)、界
面活性剤あるいはアルカリ剤(例えば苛性ソーダ)を含
有する水系媒体を用いるのが適しており、迅速さ、簡便
さ、溶菌効率、安全性等の点で界面活性剤含有水を用い
るのが好ましい。この除用いる界面活性剤としては種々
のものが使用できるが、溶菌効率の点でアニオン界面活
性剤や双イオン性界面活性剤等のイオン性のもの及び非
イオン性界面活性剤が適している。この界面活性剤の濃
度は少なくとら保持された細菌が溶菌しうる程度の濃度
とされ、例えば、アルキル硫酸塩等のアニオン界面活性
剤を用いた場合には1〜20重量%とするのが適してい
る。かかる溶菌液による流通処理は、この細菌保持フィ
ルターに溶菌液を!又は複数回流通させることにより行
われ、複数回の流通は、このフィルターを往復流通して
行うのが適している。ただし、流通後通常5〜lG分程
度接触保持さ什るのが好ましい。
ば、プロテアーゼ、コラゲナーゼ、リゾデーム等)、界
面活性剤あるいはアルカリ剤(例えば苛性ソーダ)を含
有する水系媒体を用いるのが適しており、迅速さ、簡便
さ、溶菌効率、安全性等の点で界面活性剤含有水を用い
るのが好ましい。この除用いる界面活性剤としては種々
のものが使用できるが、溶菌効率の点でアニオン界面活
性剤や双イオン性界面活性剤等のイオン性のもの及び非
イオン性界面活性剤が適している。この界面活性剤の濃
度は少なくとら保持された細菌が溶菌しうる程度の濃度
とされ、例えば、アルキル硫酸塩等のアニオン界面活性
剤を用いた場合には1〜20重量%とするのが適してい
る。かかる溶菌液による流通処理は、この細菌保持フィ
ルターに溶菌液を!又は複数回流通させることにより行
われ、複数回の流通は、このフィルターを往復流通して
行うのが適している。ただし、流通後通常5〜lG分程
度接触保持さ什るのが好ましい。
この発明の細菌検査法において、上記のごとく調製され
る溶菌成分採取試料が用いられる。これはすなわち、上
記試料を所定のpHに調製した後r>cR法に付すこと
により、特定間の増幅に基づいてその閑の同定が行われ
ることとなる。このPOR法においては市販の専用機、
例えばDNA。
る溶菌成分採取試料が用いられる。これはすなわち、上
記試料を所定のpHに調製した後r>cR法に付すこと
により、特定間の増幅に基づいてその閑の同定が行われ
ることとなる。このPOR法においては市販の専用機、
例えばDNA。
T her@al Cycler (バーキンエルマー
シータス社製)等公知の装置を用いることができる。こ
のPCR法を用いるにあたり、上記のごとく得られる試
料はそのpHが5〜9に調製される。上記同定は、pH
Fl整された試料をPCR法に付して得られる試料液を
、電気泳動法、吸光度測定法等当該分野で公知の方法を
用いて行うことができる。またこれ以外にDNAプロー
ブを用いて確認する方法であってもよい。上記同定は後
述する実施例の記載が参照される。
シータス社製)等公知の装置を用いることができる。こ
のPCR法を用いるにあたり、上記のごとく得られる試
料はそのpHが5〜9に調製される。上記同定は、pH
Fl整された試料をPCR法に付して得られる試料液を
、電気泳動法、吸光度測定法等当該分野で公知の方法を
用いて行うことができる。またこれ以外にDNAプロー
ブを用いて確認する方法であってもよい。上記同定は後
述する実施例の記載が参照される。
この発明の溶菌成分採取方法によれば、水不溶性固型分
と細菌との分離が濾過器により行われ、かつ細菌の洗浄
や溶菌処理が膜状フィルターに細菌を担持した状態で行
われるため、従来のような培養や遠心分離処理等を行う
ことなく、迅速、簡便に溶菌成分を採取できることとな
る。そして、迅速、簡便ながら溶菌成分の採取効率も良
好である。
と細菌との分離が濾過器により行われ、かつ細菌の洗浄
や溶菌処理が膜状フィルターに細菌を担持した状態で行
われるため、従来のような培養や遠心分離処理等を行う
ことなく、迅速、簡便に溶菌成分を採取できることとな
る。そして、迅速、簡便ながら溶菌成分の採取効率も良
好である。
また、採取された溶菌成分を含有する試料は、所定のp
ttに調整された後PCR法に付すことにより、増幅さ
れるDNAに基づいて上記溶菌成分が同定されることと
なる。
ttに調整された後PCR法に付すことにより、増幅さ
れるDNAに基づいて上記溶菌成分が同定されることと
なる。
(ホ)実施例
実施例1
ヒト糞便0.59をlOi+Mリン酸緩衝液(pH7,
5)5xQに懸濁して試料液を得た。
5)5xQに懸濁して試料液を得た。
(濾過処理)
第1図に示すごとく上記試料液3をシリンジ2に吸引し
、フィルターホルダー1に取りつけた。
、フィルターホルダー1に取りつけた。
図中フィルターホルダー!は、テトロンメツジュロ (
225sesh) (47zm径)、グラスウール充填
層5 (0,1g) (47mm径)、グラス7フイパ
一濾紙4(ワットマンGF/D)(47mm径)を積層
した三層からなるもの(フィルターセット)であり、グ
ラスファイバー濾紙は厚さ0.65mm、孔径2゜7μ
朧のものである。
225sesh) (47zm径)、グラスウール充填
層5 (0,1g) (47mm径)、グラス7フイパ
一濾紙4(ワットマンGF/D)(47mm径)を積層
した三層からなるもの(フィルターセット)であり、グ
ラスファイバー濾紙は厚さ0.65mm、孔径2゜7μ
朧のものである。
上記試料液をこのフィルターセットを用いてシリンジで
加圧濾過した。得られた濾液は澄明で、細胞レベルで疎
大な物質がないことが顕微鏡で確認され、菌数はlOS
個15i+12であった。
加圧濾過した。得られた濾液は澄明で、細胞レベルで疎
大な物質がないことが顕微鏡で確認され、菌数はlOS
個15i+12であった。
なお、この濾液を好気的条件下標準培地で培養したコロ
ニー数と、濾過処理しない試料液のコロニー数との比較
により、菌数の約70%がこのフィルターセットを通過
することが判明した。
ニー数と、濾過処理しない試料液のコロニー数との比較
により、菌数の約70%がこのフィルターセットを通過
することが判明した。
なお、フィルターセットの直径を30mmとし、糞便の
量を19とし、さらに緩衝液量を10112とする以外
同様に処理しても、上記と同様な結果が得られた。
量を19とし、さらに緩衝液量を10112とする以外
同様に処理しても、上記と同様な結果が得られた。
(溶菌処理)
上記で得られた濾液を用いて溶菌処理を行った。
まず、第2図に示すごとくフィルターホルダー7に閑担
持用フィルターとして孔径0.45μm、厚さ0.65
xmのグラスファイバー濾紙8(ワットマンCF/A又
はCF/C;47mm径)をセットしこれに試料貯留用
のガラス円筒9を接続し、かつ濾過側に逆送可能な液移
送用ポンプ11による流路を接続した。
持用フィルターとして孔径0.45μm、厚さ0.65
xmのグラスファイバー濾紙8(ワットマンCF/A又
はCF/C;47mm径)をセットしこれに試料貯留用
のガラス円筒9を接続し、かつ濾過側に逆送可能な液移
送用ポンプ11による流路を接続した。
次いで円筒9に前記の濾液lOを入れ、フィルター8を
用いてポンプIIで吸引濾過し、次いでフィルターを5
DSO,1重量%を含有する0、5重量%N a Cl
−101Mリン酸緩衝液(pH7,5)20m12で洗
浄した。この際、フィルターには閑が60%担持される
ことを前述と同様の培養によるコロニー数の比較により
確認した。
用いてポンプIIで吸引濾過し、次いでフィルターを5
DSO,1重量%を含有する0、5重量%N a Cl
−101Mリン酸緩衝液(pH7,5)20m12で洗
浄した。この際、フィルターには閑が60%担持される
ことを前述と同様の培養によるコロニー数の比較により
確認した。
ついで溶菌液(1Qii量%SDS液)を円筒9に入れ
た。この時フィルターホルダー内が溶菌液で満たされる
ように、−度ボンプ1!で吸引し、ついで再び円筒9に
水面が現れるまで液を逆送しくこの時フィルターホルダ
ー内の空気は円筒9の方へ押し出される)、そのまま1
0分間放置した。
た。この時フィルターホルダー内が溶菌液で満たされる
ように、−度ボンプ1!で吸引し、ついで再び円筒9に
水面が現れるまで液を逆送しくこの時フィルターホルダ
ー内の空気は円筒9の方へ押し出される)、そのまま1
0分間放置した。
この流路処理後、溶菌液を回収し、260n−の吸光度
に基づいて溶菌成分の収率(対フィルター担持114)
を調べたところ、約70%であることが確認された。そ
して本実施例でこの溶菌液を得るまでの時間は合計約1
5分であった。
に基づいて溶菌成分の収率(対フィルター担持114)
を調べたところ、約70%であることが確認された。そ
して本実施例でこの溶菌液を得るまでの時間は合計約1
5分であった。
実施例2
バチルス セレウス(I3 acillus cere
us)をそれぞれto’、 to”、 to@、 to
”(個/g−6tool)の割合で含有する糞便懸濁液
(0,19/112)試料を4つ用意し、これらそれぞ
れについて第3図に示すごときフローチャートに従って
検査した。
us)をそれぞれto’、 to”、 to@、 to
”(個/g−6tool)の割合で含有する糞便懸濁液
(0,19/112)試料を4つ用意し、これらそれぞ
れについて第3図に示すごときフローチャートに従って
検査した。
まず、第4図のごとき構成のフィルターホルダー20を
それぞれ用い、実施例1の第1図と同様にして粗大夾雑
物を除去し濾液を得た(ステップl)。なお、上記フィ
ルターホルダー20はテフロンメツシュ21 (225
+eesh、 40φ)、グラスウール充填層22 (
0,1g、 40φ)、グララフアイバー濾紙23(ワ
ットマンCF/D、孔径2.7μm。
それぞれ用い、実施例1の第1図と同様にして粗大夾雑
物を除去し濾液を得た(ステップl)。なお、上記フィ
ルターホルダー20はテフロンメツシュ21 (225
+eesh、 40φ)、グラスウール充填層22 (
0,1g、 40φ)、グララフアイバー濾紙23(ワ
ットマンCF/D、孔径2.7μm。
44φ)の三層積層のフィルターセットを、0リング2
4、テフロンパツキン25 (0,5gm厚)、シリコ
ンパツキン2B(1mm厚)からなるアトバンチツク社
製DP−40を用いた。
4、テフロンパツキン25 (0,5gm厚)、シリコ
ンパツキン2B(1mm厚)からなるアトバンチツク社
製DP−40を用いた。
次に、上記各フィルターホルダー20により得られた各
濾液を用いて溶菌処理を行った。この処理は基本的には
実施例1の第2図と同様にしてまず第5図のごとき構成
のフィルターホルダー30にそれぞれ担持させた。なお
、上記フィルターホルダー30は、テフロンメツシュ3
1(サポートスクリーン、孔径0.3mm程度)、グラ
スファイバ濾紙32(ワットマンCF/A、孔径1.6
gm、 47φ)、グラスファイバー濾紙33(ワット
マンGF/C,孔径1.2μ1.44φ)の三層積層の
フィルターセットを、Oリング34、テフロンパツキン
35 (0,5xtlfE)からなるもので、ザラトリ
ウス社製S M I 62−54を多少改良して用いた
。このような構成の各フィルターボルダ−30に上記各
濾液中の菌を担持させ、これをTES(IOIMNaC
l、lOmMTris llCl、IIMEDTA。
濾液を用いて溶菌処理を行った。この処理は基本的には
実施例1の第2図と同様にしてまず第5図のごとき構成
のフィルターホルダー30にそれぞれ担持させた。なお
、上記フィルターホルダー30は、テフロンメツシュ3
1(サポートスクリーン、孔径0.3mm程度)、グラ
スファイバ濾紙32(ワットマンCF/A、孔径1.6
gm、 47φ)、グラスファイバー濾紙33(ワット
マンGF/C,孔径1.2μ1.44φ)の三層積層の
フィルターセットを、Oリング34、テフロンパツキン
35 (0,5xtlfE)からなるもので、ザラトリ
ウス社製S M I 62−54を多少改良して用いた
。このような構成の各フィルターボルダ−30に上記各
濾液中の菌を担持させ、これをTES(IOIMNaC
l、lOmMTris llCl、IIMEDTA。
pl■8.0) 2011+12で洗浄した(ステップ
2)。
2)。
その後、N−アセデルムラミンディス(生化学工業製)
60μ9h(lの濃度で各2.5x(lを、菌を担持さ
せた各フィルターボルダ−30に注入し、気泡を抜いて
、50℃で5分間放置後ポンプで吸引(−60mml1
g)除去し酵素処理をした。次いで0.2MNaOHを
2.5ytQずつ各フィルターホルダー30に注入し、
気泡を抜いて80℃でlO分間放置後ポンプで吸引(−
60mml1g) して吸引びんに回収しサンプルとし
た(ステップ3)。
60μ9h(lの濃度で各2.5x(lを、菌を担持さ
せた各フィルターボルダ−30に注入し、気泡を抜いて
、50℃で5分間放置後ポンプで吸引(−60mml1
g)除去し酵素処理をした。次いで0.2MNaOHを
2.5ytQずつ各フィルターホルダー30に注入し、
気泡を抜いて80℃でlO分間放置後ポンプで吸引(−
60mml1g) して吸引びんに回収しサンプルとし
た(ステップ3)。
上記各サンプル100μeニツイテ、0.2MI(CI
。
。
0.8MTris HCI pH8,0の中和液100
μ(を加え中和処理を行った(ステップ4)。
μ(を加え中和処理を行った(ステップ4)。
次に上記中和処理後の各サンプルをそれぞれ5μQずっ
とり、これらをPCR法にそれぞれ4時間付して各サン
プル中のDNAを増幅させた(ステップ5)。ここで上
記PCR法は以下の条件で行った。すなわち、水26,
5μC,tO倍緩衝液5μQ(バーキンエルマーシータ
ス社製)、dNTP8μQ (1,25i+M各dNT
P)、プライマ2.5μQ(20μM)2種、サンプル
5μg、タックポリメラーゼ0.5μe(同社製)の合
計50μQに鉱油100μQを重層して、DNA Th
ermal Cycler(同社製)にセットし、94
℃1分、37℃1分、60℃1分、lサイクル5.7分
、42サイクルで反応させた。
とり、これらをPCR法にそれぞれ4時間付して各サン
プル中のDNAを増幅させた(ステップ5)。ここで上
記PCR法は以下の条件で行った。すなわち、水26,
5μC,tO倍緩衝液5μQ(バーキンエルマーシータ
ス社製)、dNTP8μQ (1,25i+M各dNT
P)、プライマ2.5μQ(20μM)2種、サンプル
5μg、タックポリメラーゼ0.5μe(同社製)の合
計50μQに鉱油100μQを重層して、DNA Th
ermal Cycler(同社製)にセットし、94
℃1分、37℃1分、60℃1分、lサイクル5.7分
、42サイクルで反応させた。
上記PCR法に付して得られた各反応物をそれぞれ20
μQずつとり、アガロース2%ゲル(エチジウムブロマ
イド入り)で電気泳動に付しくステップ6)た後、それ
ぞれUV照射したところその蛍光について第6図に示す
結果を得た(ステップ7)。
μQずつとり、アガロース2%ゲル(エチジウムブロマ
イド入り)で電気泳動に付しくステップ6)た後、それ
ぞれUV照射したところその蛍光について第6図に示す
結果を得た(ステップ7)。
該図によれば104個/9・5toolの割合で含有す
るサンプルについては、さらにターゲットとしているも
のとしていないものとを例えばDNAプローブ法等によ
り識別することができる。
るサンプルについては、さらにターゲットとしているも
のとしていないものとを例えばDNAプローブ法等によ
り識別することができる。
」二記結果からこの発明の細菌検査法によれば、5時間
以内に104g7g・5toolまでバチルス セレウ
ス菌を検出できることがわかる。
以内に104g7g・5toolまでバチルス セレウ
ス菌を検出できることがわかる。
(へ)発明の効果
この発明の溶菌成分採取法によれば、培養や遠心分離等
の煩雑で時間を要する操作を行うことなく、迅速、簡便
に溶菌成分を試料から直接的に採取することができる。
の煩雑で時間を要する操作を行うことなく、迅速、簡便
に溶菌成分を試料から直接的に採取することができる。
従って、臨床判断や研究においてその有用性は極めて高
く、機械化や自動化も容易に行える点でも有利な方法で
ある。
く、機械化や自動化も容易に行える点でも有利な方法で
ある。
また、非常に短時間かつ簡便な操作で糞便中の細菌約1
0’l1M#・5toolを検出できる。またさらにプ
ローブ(プライマ)の作り方によって1つのサンプルで
多種の菌を電気泳動で検出できる。さらにまた採便の少
量化と前処理のP5貝の小型化が図れる。
0’l1M#・5toolを検出できる。またさらにプ
ローブ(プライマ)の作り方によって1つのサンプルで
多種の菌を電気泳動で検出できる。さらにまた採便の少
量化と前処理のP5貝の小型化が図れる。
第1図及び第2図は、各々この発明の清閑成分採取方法
を実施した過程を示す説明図、第3図はこの発明の清閑
成分採取方法から細菌検査法までの一連の手順の一例を
説明するフローチャート図、第4図は第3図のステップ
lで用いたフィルターホルダーの構成説明図、第5図は
第3図のステップ2で用いたフィルターホルダーの構成
説明図、第6図は第3図のステップ7で得られた電気泳
動の結果を示す泳動図である。 3・・・・・・試料液、 4、8.23.32.33・・・・・・グラスファイバ
ー濾紙、10・・・・・・濾液。 ス 3 [く 1−1イ史!!デ饗う液 Bacillus cereus +cy′:TOi
+O’、TO”((g、5tooL )5ちl(ステ・
)ブ1) ↓ Farrn*、TES 20m1+:よ舒先升(ステ・
7ア2)↓ @桑、NaOH知理(ステ1.)3) ↓ DNA才lI+出、尊堂0中相液τ′中細、(ステ1.
ア4)5る 第 ・桐 第1 第2図
を実施した過程を示す説明図、第3図はこの発明の清閑
成分採取方法から細菌検査法までの一連の手順の一例を
説明するフローチャート図、第4図は第3図のステップ
lで用いたフィルターホルダーの構成説明図、第5図は
第3図のステップ2で用いたフィルターホルダーの構成
説明図、第6図は第3図のステップ7で得られた電気泳
動の結果を示す泳動図である。 3・・・・・・試料液、 4、8.23.32.33・・・・・・グラスファイバ
ー濾紙、10・・・・・・濾液。 ス 3 [く 1−1イ史!!デ饗う液 Bacillus cereus +cy′:TOi
+O’、TO”((g、5tooL )5ちl(ステ・
)ブ1) ↓ Farrn*、TES 20m1+:よ舒先升(ステ・
7ア2)↓ @桑、NaOH知理(ステ1.)3) ↓ DNA才lI+出、尊堂0中相液τ′中細、(ステ1.
ア4)5る 第 ・桐 第1 第2図
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、水不溶性固型分と細菌を共存する糞便等の試料を水
系媒体に懸濁させ、この懸濁液を孔径約0.45μm以
上の膜状フィルターを有する濾過器で濾過処理し、得ら
れた細菌含有濾液を孔径約0.2〜1.6μmの膜状フ
ィルターに通過させてこの膜状フィルターに細菌を保持
させた後、この膜状フィルターに溶菌液を流通させるこ
とにより、細菌の溶菌液を得ることを特徴とする溶菌成
分採取方法。 2、請求項1の方法により得られた溶菌液をpH5〜9
に調整後ポリメラーゼ連鎖反応法に付し、該方法のもと
で増幅するDNAに基づいて、試料中の細菌を検出する
ことを特徴とする細菌検査法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP1016189A JPH0640840B2 (ja) | 1988-04-30 | 1989-01-19 | 溶菌成分採取方法及び細菌検査法 |
Applications Claiming Priority (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP63-108544 | 1988-04-30 | ||
JP10854488 | 1988-04-30 | ||
JP1016189A JPH0640840B2 (ja) | 1988-04-30 | 1989-01-19 | 溶菌成分採取方法及び細菌検査法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH02150295A true JPH02150295A (ja) | 1990-06-08 |
JPH0640840B2 JPH0640840B2 (ja) | 1994-06-01 |
Family
ID=26345373
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP1016189A Expired - Lifetime JPH0640840B2 (ja) | 1988-04-30 | 1989-01-19 | 溶菌成分採取方法及び細菌検査法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH0640840B2 (ja) |
-
1989
- 1989-01-19 JP JP1016189A patent/JPH0640840B2/ja not_active Expired - Lifetime
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH0640840B2 (ja) | 1994-06-01 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US20090043087A1 (en) | DNA purification and recovery from high particulate and solids samples | |
JP5723838B2 (ja) | 大容量微粒子サンプル中の病原体検出 | |
EP0406306B1 (en) | Method and apparatus for collecting and detecting microorganisms | |
US20180128722A1 (en) | Microorganism concentration process and device | |
US3635798A (en) | Blood and fluid culturing system | |
Li et al. | Rapid sample processing for detection of food-borne pathogens via cross-flow microfiltration | |
Benoit et al. | Methods for rapid separation and concentration of bacteria in food that bypass time-consuming cultural enrichment | |
WO2012078374A2 (en) | Microorganism concentration process and device | |
US20120282623A1 (en) | Rapid pathogen detection techniques and apparatus | |
US20050115903A1 (en) | Method and apparatus for extracting nucleic acids from a complex mixture | |
Bridle et al. | Sample processing | |
JP2015523081A (ja) | サンプルに存在する微生物を溶解するため、分析の目的のために微生物の核酸を抽出及び精製するための自動システム | |
JP5826436B2 (ja) | 微生物用のビスマス含有濃縮剤 | |
JPH02150295A (ja) | 溶菌成分採取方法及び細菌検査法 | |
JPH02255074A (ja) | 溶菌成分採取装置,溶菌成分採取方法及び細菌検査法 | |
EP0665893B1 (en) | A method and an apparatus for detecting cells | |
JPS6035262A (ja) | Atpの分解及び測定並びに細胞の分解及び濃縮方法 | |
US20110256576A1 (en) | Recovery and detection of microorganisms from mixed cellulose ester filtration supports by sequential treatment with methanol and acetone | |
JPH08280384A (ja) | 有核細胞を含む試料から核酸または蛋白質を回収する方法 | |
Campbell et al. | Purification of Chlamydia trachomatis by a simple and rapid filtration method | |
JPH03228695A (ja) | 溶菌成分採取方法及びそれを用いた細菌検査法 | |
JP2003174873A (ja) | 酵素的遺伝子増幅反応の阻害物質の除去方法 | |
JP2009089612A (ja) | 細胞情報分離方法 |