JPH02111789A - 合成ペプチド、その抗体およびその抗体の製法 - Google Patents
合成ペプチド、その抗体およびその抗体の製法Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は、ヒトMnスーパーオキシドジスムターゼ(以
下、ヒトMn−5ODと略記する。)および特定の合成
ペプチドと反応性を有する抗体、並びに、前記特定の合
成ペプチドを動物に用いる前記抗体の製造法に関するも
のである。
下、ヒトMn−5ODと略記する。)および特定の合成
ペプチドと反応性を有する抗体、並びに、前記特定の合
成ペプチドを動物に用いる前記抗体の製造法に関するも
のである。
ヒトMn−3ODは、ミトコンドリアのマトリックス部
分に存在する酵素(1ドメインの分子量が約25,00
0であり、そのダイマーまたはテトラマーからなると考
えられている。)であり、次に示すように、毒性酸素の
主要な分子種であるスーパーオキシドアニオンラジカル
(0□−)を不均化する反応を触媒する。
分に存在する酵素(1ドメインの分子量が約25,00
0であり、そのダイマーまたはテトラマーからなると考
えられている。)であり、次に示すように、毒性酸素の
主要な分子種であるスーパーオキシドアニオンラジカル
(0□−)を不均化する反応を触媒する。
20z + 2 H−〉Hz Ot + 02と
ころで、肝疾患における血清中のヒトMn−3OD濃度
の測定には、ポリクローナル抗体を用いた検討によって
、高い診断的意義が存在すると考えられている(医薬ジ
ャーナル;稲垣、訳本、1度、1.1984年。第5回
腫瘍マーカー研究会;飯塚、新井ら、1985年)。ま
た、呑口らも、ヤギに免疫して作製したポリクローナル
抗体を用いた免疫学的な方法で、ヒトMn−3OD濃度
が肺癌で高いことを示しており〔ジャーナル・オプ・ナ
ショナル・カンサー・インスチチュート(Journa
l of National Cancer In5t
itute) 、7叉、5.1984年〕、血清中のヒ
トMn−3゜D濃度の測定の重要性が指摘されている。
ころで、肝疾患における血清中のヒトMn−3OD濃度
の測定には、ポリクローナル抗体を用いた検討によって
、高い診断的意義が存在すると考えられている(医薬ジ
ャーナル;稲垣、訳本、1度、1.1984年。第5回
腫瘍マーカー研究会;飯塚、新井ら、1985年)。ま
た、呑口らも、ヤギに免疫して作製したポリクローナル
抗体を用いた免疫学的な方法で、ヒトMn−3OD濃度
が肺癌で高いことを示しており〔ジャーナル・オプ・ナ
ショナル・カンサー・インスチチュート(Journa
l of National Cancer In5t
itute) 、7叉、5.1984年〕、血清中のヒ
トMn−3゜D濃度の測定の重要性が指摘されている。
従来、ヒトMn−3ODに対するポリクローナル抗体を
作製するためには、ヤギなどの動物に免疫原として用い
るヒトMn−3ODを、ヒトの胎盤、肝臓、肺などのヒ
ト臓器から分離精製して用いる必要があった。しかし、
それらの臓器からヒトM n −S ODを分離精製す
るのは容易でなく、また、たとえそれらの臓器を得るこ
とができても人道的には好ましくないという問題があっ
た。
作製するためには、ヤギなどの動物に免疫原として用い
るヒトMn−3ODを、ヒトの胎盤、肝臓、肺などのヒ
ト臓器から分離精製して用いる必要があった。しかし、
それらの臓器からヒトM n −S ODを分離精製す
るのは容易でなく、また、たとえそれらの臓器を得るこ
とができても人道的には好ましくないという問題があっ
た。
本発明の目的は、ヒトMn−3ODと反応性を有する抗
体を生産する時に使用される抗原であるヒトMn−3O
Dのかわりに使用することができるヒトMn−3ODの
アミノ末端側のアミノ酸配列の一部分に対応した合成ペ
プチドを動物に免疫することによってヒトMn−3OD
と反応性を有する抗体を生産する方法を提供することで
ある。
体を生産する時に使用される抗原であるヒトMn−3O
Dのかわりに使用することができるヒトMn−3ODの
アミノ末端側のアミノ酸配列の一部分に対応した合成ペ
プチドを動物に免疫することによってヒトMn−3OD
と反応性を有する抗体を生産する方法を提供することで
ある。
本発明者らは、前記の問題点を解決するために鋭意研究
した結果、本発明の合成ペプチドを動物に免疫すること
によって、ヒトMn−8ODと抗原抗体反応する抗体を
生産できることを見出し、本発明を完成するに至った。
した結果、本発明の合成ペプチドを動物に免疫すること
によって、ヒトMn−8ODと抗原抗体反応する抗体を
生産できることを見出し、本発明を完成するに至った。
即ち、本発明は、
(1)次式;
%式%
で示されるL体のアミノ酸配列を有する合成ペプチド
(2)前記(1)の合成ペプチドを動物に免疫すること
によって生産された抗体 (3)前記(1)の合成ペプチドを動物に免疫すること
を特徴とする抗体の製造法 に関するものである。
によって生産された抗体 (3)前記(1)の合成ペプチドを動物に免疫すること
を特徴とする抗体の製造法 に関するものである。
以下、本発明の詳細な説明する。
本発明の合成ペプチドは、ヒトMn−3ODのN末端側
(アミノ末端側)のアミノ酸配列に対応したL体のアミ
ノ酸からなるペプチドのLys−His−3er−Le
u−Pro−Asp−f、eu−Pro−Tyr−As
p−Tyr−Gly Ala−Leu−Glu−Pr
o(カルボキシル末端側) である。
(アミノ末端側)のアミノ酸配列に対応したL体のアミ
ノ酸からなるペプチドのLys−His−3er−Le
u−Pro−Asp−f、eu−Pro−Tyr−As
p−Tyr−Gly Ala−Leu−Glu−Pr
o(カルボキシル末端側) である。
本発明における合成ペプチドの作製は、液相法または固
相法などの通常の方法によって行うことができるが、好
ましくは、固相法によってポリマー性の固相支持体へ前
記ペプチドのC末端側(カルボキシル末端側)からその
アミノ酸残基に対応したL体のアミノ酸を順次ペプチド
結合によって結合して行くのが良い。
相法などの通常の方法によって行うことができるが、好
ましくは、固相法によってポリマー性の固相支持体へ前
記ペプチドのC末端側(カルボキシル末端側)からその
アミノ酸残基に対応したL体のアミノ酸を順次ペプチド
結合によって結合して行くのが良い。
そして、そのようにして得られた合成ペプチドは、トリ
フルオロメタンスルホン酸(以下、TFMSAと略記す
る。)、フッ化水素などを用いてポリマー性の固相支持
体から切断した後、アミノ酸側鎖の保護基を除去し、逆
相系のカラムを用いた高速液体クロマトグラフィー(H
PLC)などを用いた通常の方法で精製することができ
る。そして、その合成ペプチドのアミノ酸配列は、アミ
ノ酸分析によって確認することができる。
フルオロメタンスルホン酸(以下、TFMSAと略記す
る。)、フッ化水素などを用いてポリマー性の固相支持
体から切断した後、アミノ酸側鎖の保護基を除去し、逆
相系のカラムを用いた高速液体クロマトグラフィー(H
PLC)などを用いた通常の方法で精製することができ
る。そして、その合成ペプチドのアミノ酸配列は、アミ
ノ酸分析によって確認することができる。
本発明のヒhMn−3ODと抗原抗体反応することがで
きる抗体は、本発明の合成ペプチドを動物に免疫するこ
とによって、その免疫動物から抗血清あるいは精製抗体
として得ることができる。
きる抗体は、本発明の合成ペプチドを動物に免疫するこ
とによって、その免疫動物から抗血清あるいは精製抗体
として得ることができる。
本発明の合成ペプチドの免疫方法は、本発明の目的を達
成することができる限り特に限定されないが、例えば、
本発明の合成ペプチドを水、中性の緩衝液(例えば、ト
リス−塩酸緩衝液、リン酸緩衝液など。)などの溶媒に
適当量溶解したもの(例えば、数μg / m 1〜数
m g / m lで、被免疫動物あたり数μg〜数m
g、)を数週間〜数カ月間隔で数回投与することで行う
ことができる(なお、この方法だけで該合成ペプチドに
対して十分量の抗体を得ることができない場合には、ミ
ヨウパン、結核死菌体および/または核酸などを含むア
ジュバントを混合して得られたエマルジョンを用いるこ
ともできる。)。
成することができる限り特に限定されないが、例えば、
本発明の合成ペプチドを水、中性の緩衝液(例えば、ト
リス−塩酸緩衝液、リン酸緩衝液など。)などの溶媒に
適当量溶解したもの(例えば、数μg / m 1〜数
m g / m lで、被免疫動物あたり数μg〜数m
g、)を数週間〜数カ月間隔で数回投与することで行う
ことができる(なお、この方法だけで該合成ペプチドに
対して十分量の抗体を得ることができない場合には、ミ
ヨウパン、結核死菌体および/または核酸などを含むア
ジュバントを混合して得られたエマルジョンを用いるこ
ともできる。)。
本発明の合成ペプチドを免疫するために用いる動物とし
ては、マウス、ラット、ウサギ、ヤギ、イヌ、ネコなど
の動物を挙げることができる。
ては、マウス、ラット、ウサギ、ヤギ、イヌ、ネコなど
の動物を挙げることができる。
以下、本発明を実施例によって具体的に説明する。
なお、これらの実施例は、本発明を例示するためのもの
であって、本発明の範囲を限定するものではない。
であって、本発明の範囲を限定するものではない。
実施例1
〔合成ペプチドの作製〕
N−t−ブトキシカルボニル−3−p−メトキシベンジ
ルシスティン樹脂686mg(システィン含量; O−
73m m OIl Z g sスチレン−1%−ジビ
ニルベンゼン共重合体)を出発原料とし、ペプチド自動
合成装置(アプライド・バイオシステムズ社製)を用い
た固相法によってヒトMn−50DのN末端側のアミノ
酸配列に相当する16個のアミノ酸残基からなる合成ペ
プチド Lys−Hi 5−3er−Leu−Pr−o−Asp
−Leu−Pro−Tyr−Asp−Tyr−C;1y
−Al a−Leu−Glu−Pro(C末端側) を作製した。
ルシスティン樹脂686mg(システィン含量; O−
73m m OIl Z g sスチレン−1%−ジビ
ニルベンゼン共重合体)を出発原料とし、ペプチド自動
合成装置(アプライド・バイオシステムズ社製)を用い
た固相法によってヒトMn−50DのN末端側のアミノ
酸配列に相当する16個のアミノ酸残基からなる合成ペ
プチド Lys−Hi 5−3er−Leu−Pr−o−Asp
−Leu−Pro−Tyr−Asp−Tyr−C;1y
−Al a−Leu−Glu−Pro(C末端側) を作製した。
まず、前記の16個のアミノ酸配列からなるペプチドを
、常法通り、そのC末端側のPro側からアミノ酸を順
次1個づつ前記の出発原料と反応させることによって、
1.5gの保護したペプチド結合樹脂を得た(なお、こ
のとき用いたアミノ酸の側鎖官能基は、Hisではトシ
ル基で、AspまたはGluではベンジルエステルで、
Lysでは2−クロロベンジルオキシカルボニル基で、
Tyrは2−ブロモベンジルオキシカルボニル基で保護
した。)。
、常法通り、そのC末端側のPro側からアミノ酸を順
次1個づつ前記の出発原料と反応させることによって、
1.5gの保護したペプチド結合樹脂を得た(なお、こ
のとき用いたアミノ酸の側鎖官能基は、Hisではトシ
ル基で、AspまたはGluではベンジルエステルで、
Lysでは2−クロロベンジルオキシカルボニル基で、
Tyrは2−ブロモベンジルオキシカルボニル基で保護
した。)。
この保護したペプチド結合樹脂1gを、500μlのエ
タンジチオールと1mfのエタンジオールからなる混合
液に懸濁して、室温で10分間攪拌後、水冷下で10m
lのトリフルオロ酢酸(以下、TFAと略記する。)を
加え、さらに10分間攪拌した。
タンジチオールと1mfのエタンジオールからなる混合
液に懸濁して、室温で10分間攪拌後、水冷下で10m
lのトリフルオロ酢酸(以下、TFAと略記する。)を
加え、さらに10分間攪拌した。
この混合物にTFMSA ()リフルオロメタンスルホ
ン酸)を1m1滴下し、室温で30分間攪拌した後、3
0mfの無水エーテルを加えてその生成物を沈澱させて
分離し、その沈澱物を無水エーテルで数回洗浄した後、
減圧下で乾燥した。
ン酸)を1m1滴下し、室温で30分間攪拌した後、3
0mfの無水エーテルを加えてその生成物を沈澱させて
分離し、その沈澱物を無水エーテルで数回洗浄した後、
減圧下で乾燥した。
このようにして得られた粗生成の合成ペプチド100m
gを2mj2の蒸留水に溶解した後、濾過して得られた
濾液をAQUAPORE RP−300(10X10
0mm)(アプライド・バイオシステムズ社製)にのせ
、(A)0.1%TFA含有蒸留水および(B)0.1
%TFAを含有した70%CH3CNからなる溶媒を用
いて、60分間で(A)が95#0%のリニアグラデイ
エンドモードで溶出した。
gを2mj2の蒸留水に溶解した後、濾過して得られた
濾液をAQUAPORE RP−300(10X10
0mm)(アプライド・バイオシステムズ社製)にのせ
、(A)0.1%TFA含有蒸留水および(B)0.1
%TFAを含有した70%CH3CNからなる溶媒を用
いて、60分間で(A)が95#0%のリニアグラデイ
エンドモードで溶出した。
3つの大きなピークを示した溶出画分のうちの最初の溶
出画分を分取し、濃縮後凍結乾燥することによって目的
とする合成ペプチドを30mg得た。
出画分を分取し、濃縮後凍結乾燥することによって目的
とする合成ペプチドを30mg得た。
この合成ペプチドは、HPLCによる分析では99%以
上の純度であり、そのアミノ酸配列は前記に示したヒト
Mn−3ODのN末端側のアミノ酸配列に相当する16
個のアミノ酸残基からなるペプチドであることを確認で
きた。
上の純度であり、そのアミノ酸配列は前記に示したヒト
Mn−3ODのN末端側のアミノ酸配列に相当する16
個のアミノ酸残基からなるペプチドであることを確認で
きた。
実施例2
〔合成ペプチドに対する抗体の作製〕
実施例1で作製した免疫原である1mgの合成ペプチド
を溶解した1mlのPBS (リン酸緩衝液、p H7
,4)と1mfのフロイントの完全アジュバントとを十
分に混合して得られたエマルジョンをウサギ(日本白色
種糸、生後4力月)の背部皮下に投与した。
を溶解した1mlのPBS (リン酸緩衝液、p H7
,4)と1mfのフロイントの完全アジュバントとを十
分に混合して得られたエマルジョンをウサギ(日本白色
種糸、生後4力月)の背部皮下に投与した。
さらに、1力月後に、あらたに前記と同様にして調製し
たエマルジョンを同ウサギの背部皮下に投与した。
たエマルジョンを同ウサギの背部皮下に投与した。
さらに、1力月後に、最終免疫として、フロイントの完
全アジュバントのかわりにフロイントの不完全アジュバ
ントを用いて前記と同様にして調製したエマルジョンを
同ウサギの背部皮下に投与した。
全アジュバントのかわりにフロイントの不完全アジュバ
ントを用いて前記と同様にして調製したエマルジョンを
同ウサギの背部皮下に投与した。
最終免疫から1週間後に、このようにして免疫されたウ
サギの心臓から注射器を用いて採血し、50mj2の抗
血清(−次元平板免疫拡散法によって測定した抗体量は
、500mgであった。)を得た。
サギの心臓から注射器を用いて採血し、50mj2の抗
血清(−次元平板免疫拡散法によって測定した抗体量は
、500mgであった。)を得た。
この血清中に含有された抗体とヒ)Mn−3゜Dとの抗
原抗体の反応性を、次のようなELISA(エンザイム
・リンクド・イムノソーベント・アッセイ)で検討した
。
原抗体の反応性を、次のようなELISA(エンザイム
・リンクド・イムノソーベント・アッセイ)で検討した
。
まず、96ウエル平底ELISAプレート(以下、EL
ISAプレートと略す。)の各ウェルにヒトMn−3O
D溶液(10u g/ml、 p H9゜6の0.05
M炭酸ナトリウム緩衝液に溶解)を50μ!づつ分注
し、4°Cで1晩静置した(このような処置によって、
ヒトMn−3ODが各ウェルの接触面に非特異的に吸着
する。)。
ISAプレートと略す。)の各ウェルにヒトMn−3O
D溶液(10u g/ml、 p H9゜6の0.05
M炭酸ナトリウム緩衝液に溶解)を50μ!づつ分注
し、4°Cで1晩静置した(このような処置によって、
ヒトMn−3ODが各ウェルの接触面に非特異的に吸着
する。)。
次に、それらの各ウェルを洗浄液(0,05%のTwe
en20を含むPBS、)で洗浄した後、0.5%の卯
白アルブミン溶液(0,1%NaN、を含有する。)を
各ウェルに100μlづつ分注して室温で30分間静置
した。これらの各ウェルを同洗浄液で洗浄し、前記のウ
サギ血清をPBSで200.500.1000.200
0.5000倍に希釈した溶液をそれらの各ウェルに5
0μ2づつ分注して1時間静置した(陰性対照試料には
、非免疫ウサギの血清を同様に希釈して用いた。)。
en20を含むPBS、)で洗浄した後、0.5%の卯
白アルブミン溶液(0,1%NaN、を含有する。)を
各ウェルに100μlづつ分注して室温で30分間静置
した。これらの各ウェルを同洗浄液で洗浄し、前記のウ
サギ血清をPBSで200.500.1000.200
0.5000倍に希釈した溶液をそれらの各ウェルに5
0μ2づつ分注して1時間静置した(陰性対照試料には
、非免疫ウサギの血清を同様に希釈して用いた。)。
次に、前記の各ウェルを同洗浄液で洗浄し、ウサギ免疫
グロブリンに対する西洋ワサビペルオキシダーゼ標識抗
体溶液を、各ウェルに50μpづつ分注し、室温で1時
間静置した。そして、これらの各ウェルを同洗浄液で洗
浄後、0−フェニレンジアミン溶液(20mgの0−フ
ェニレンジアミン、10μ!35%H,O□をP H5
,0の0.1Mクエン酸緩衝液50m1に溶解)を10
0μεづつ分注し、室温で30分間反応後、2NのH2
SO4を50μβづつ分注して西洋ワサビペルオキシダ
ーゼの反応を停止し、このELATSAプレート用の吸
光度測定装置を用いて各ウェルの492nmにおける吸
光度を測定した結果、本発明の合成ペプチドを免疫原に
用いて作製された抗体は、ヒトMn−3ODと抗原抗体
反応することがわかった。その結果を第1図に示す。
グロブリンに対する西洋ワサビペルオキシダーゼ標識抗
体溶液を、各ウェルに50μpづつ分注し、室温で1時
間静置した。そして、これらの各ウェルを同洗浄液で洗
浄後、0−フェニレンジアミン溶液(20mgの0−フ
ェニレンジアミン、10μ!35%H,O□をP H5
,0の0.1Mクエン酸緩衝液50m1に溶解)を10
0μεづつ分注し、室温で30分間反応後、2NのH2
SO4を50μβづつ分注して西洋ワサビペルオキシダ
ーゼの反応を停止し、このELATSAプレート用の吸
光度測定装置を用いて各ウェルの492nmにおける吸
光度を測定した結果、本発明の合成ペプチドを免疫原に
用いて作製された抗体は、ヒトMn−3ODと抗原抗体
反応することがわかった。その結果を第1図に示す。
本発明の合成ペプチドは、ヒト疾患の診断に有効と考え
られているヒトMn−3OD濃度の測定時に用いるポリ
クローナル抗体の作製において、免疫原として従来用い
られていた貴重なヒトMn−3ODのかわりとして使用
できるものである。
られているヒトMn−3OD濃度の測定時に用いるポリ
クローナル抗体の作製において、免疫原として従来用い
られていた貴重なヒトMn−3ODのかわりとして使用
できるものである。
第1図は、本発明の合成ペプチドを免疫原に用いて作製
された抗体とヒトMn−3ODとの反応性を示す(・)
〔非免疫ウサギの血清を用いた時の陰性対照も同時に示
した(○)。〕。 第1図 特許出願人 宇部興産株式会社 血清の希釈倍率
された抗体とヒトMn−3ODとの反応性を示す(・)
〔非免疫ウサギの血清を用いた時の陰性対照も同時に示
した(○)。〕。 第1図 特許出願人 宇部興産株式会社 血清の希釈倍率
Claims (3)
- (1)次式; 【遺伝子配列があります】 で示されるL体のアミノ酸配列を有する合成ペプチド。
- (2)請求項1の合成ペプチドを動物に免疫することに
よって生産された抗体。 - (3)請求項1の合成ペプチドを動物に免疫することを
特徴とする抗体の製造法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP26397288A JPH02111789A (ja) | 1988-10-21 | 1988-10-21 | 合成ペプチド、その抗体およびその抗体の製法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP26397288A JPH02111789A (ja) | 1988-10-21 | 1988-10-21 | 合成ペプチド、その抗体およびその抗体の製法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH02111789A true JPH02111789A (ja) | 1990-04-24 |
Family
ID=17396775
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP26397288A Pending JPH02111789A (ja) | 1988-10-21 | 1988-10-21 | 合成ペプチド、その抗体およびその抗体の製法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH02111789A (ja) |
-
1988
- 1988-10-21 JP JP26397288A patent/JPH02111789A/ja active Pending
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