JPH0160038B2 - - Google Patents

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JPH0160038B2
JPH0160038B2 JP56133129A JP13312981A JPH0160038B2 JP H0160038 B2 JPH0160038 B2 JP H0160038B2 JP 56133129 A JP56133129 A JP 56133129A JP 13312981 A JP13312981 A JP 13312981A JP H0160038 B2 JPH0160038 B2 JP H0160038B2
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JP
Japan
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ser
peptide
leu
glu
add
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Expired
Application number
JP56133129A
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Japanese (ja)
Other versions
JPS5835155A (en
Inventor
Fumio Shimizu
Yasukazu Oomoto
Kenichi Imagawa
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Otsuka Pharmaceutical Co Ltd
Original Assignee
Otsuka Pharmaceutical Co Ltd
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Publication date
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Priority to SE8202012A priority patent/SE457352B/en
Priority to CH1961/82A priority patent/CH652411A5/en
Priority to US06/363,505 priority patent/US4474754A/en
Priority to FR8205522A priority patent/FR2503145B1/en
Priority to GB08209538A priority patent/GB2102810B/en
Publication of JPS5835155A publication Critical patent/JPS5835155A/en
Publication of JPH0160038B2 publication Critical patent/JPH0160038B2/ja
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    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02PCLIMATE CHANGE MITIGATION TECHNOLOGIES IN THE PRODUCTION OR PROCESSING OF GOODS
    • Y02P20/00Technologies relating to chemical industry
    • Y02P20/50Improvements relating to the production of bulk chemicals
    • Y02P20/55Design of synthesis routes, e.g. reducing the use of auxiliary or protecting groups

Description

【発明の詳細な説明】[Detailed description of the invention]

本発明は新規なヒトリムホブラストイドインタ
ーフエロンのC末端ペプチドに関する。 本明細書において、アミノ酸、ペプチド、保護
基、活性基、その他に関し略号で表示する場合
IUPAC、IUBの規定或いは当該分野における慣
用記号に従うものとし、その例を次に挙げる。ま
たアミノ酸などに関し光学異性体がありうる場合
は、特に明示しなければL体を示すものとする。 Ser:セリン Leu:ロイシン Thr:スレオニン Asn:アスパラギン Gln;グルタミン Glu:グルタミン酸 Arg:アルギニン Lys:リジン Tyr:チロシン OBzl:ベンジルオキシ基 Z:カルボベンゾキシ基 NHS:N―ヒドロキシコハク酸イミド基 Tos:p―トルエンスルホニル基 Boc:第3級ブトキシカルボニル基 インターフエロンは、生体の細胞がウイルス感
染を受けた時に産生する抗ウイルス性糖蛋白質乃
至は蛋白質であり、その利用によればウイルス性
疾患の予防または治療が可能であるとされ、近年
注目を集めつつある。現在解明されているヒトの
インターフエロンは、β型インターフエロン
(Fibro blast interferon)、α型インターフエロ
ン(Leucocytes interferon,Lympho blastoid
interferon)及びγ型インターフエロン
(Immune interferon)に分類される。しかしな
がらこれらのインターフエロンを単一な糖蛋白質
乃至は蛋白質にまで精製する技術は未だ確立され
ていないのが現状である。 本発明者らはヒトのα型インターフエロンに対
して特異的に反応する抗体を利用すれば、抗原―
抗体反応によつてヒトα型インターフエロンを精
製出来ると考え、この着想から感度よくヒトα型
インターフエロンを選択し、該インターフエロン
に対して特異的反応性を示す抗体を得るべく鋭意
研究を進めてきた。その過程において、ヒトα型
インターフエロンの1種であるヒトリムホブラス
トイドインターフエロンのC末端ペプチド鎖を有
するある種のペプチドを合成し、これをハプテン
として抗原を合成した所、該抗原からヒトα型イ
ンターフエロンに対し特異的反応性を有する所望
の抗体が収得できることを見い出した。本発明は
この新しい知見に基づき完成されたものである。 即ち本発明は、一般式 R―Glu―Ser―Leu―Arg―Ser―Lys―Glu (1) 〔式中Rは水素原子、H―Thr―Asn―Leu―
Gln基、H―Ser―Leu―Ser―Thr―Asn―Leu―
Gln基、又はH―Tyr―Ser―Leu―Ser―Thr―
Asn―Leu―Gln基を示す。〕 で表わされるヒトリムホブラストイドインターフ
エロンのC末端ペプチドに係る。 本発明の上記一般式(1)で表わされるペプチドは
従来合成された例はない。これは入手容易な市販
のアミノ酸を利用して、簡単な操作で容易に合成
できることは勿論のこと、特定のアミノ酸配列を
有しており、認識部位が明確な一定の抗原を大量
に製造できる。しかも上記ペプチドをハプテンと
して得られる抗原からは、天然のα型インターフ
エロンを抗原とする場合に比し、大量にしかも常
に安定して、ヒトα型インターフエロンに対し特
異性の高い抗体を得ることができる。従つて該抗
体はこれを例えばアフイニテイ―クロマトグラフ
イー用担体と結合させて該クロマトグラフに利用
してヒトα型インターフエロンの精製に利用でき
る。 本発明の上記一般式(1)で表わされるペプチド
は、ヒトリムホブラストイドインターフエロンの
C末端ペプチド鎖に相当するペプチドである。こ
れは通常のペプチド合成法、具体的には、「ザ
ペプチド(The Peptides)」第1巻(1966年)
〔Schro¨der and Luhke著、Academic Press,
NewYork,U.S.A.〕あるいは「ペプチド合成」
〔泉屋ら著、丸善株式会社(1975年)〕に記載され
る如き方法に従い、たとえばアジド法、クロライ
ド法、酸無水物法、混酸無水物法、DCC法、活
性エステル法(p―ニトロフエニルエステル法、
N―ヒドロキシコハク酸イミドエステル法、シア
ノメチルエステル法等)、ウツドワード試薬Kを
用いる方法、カルボジイミダゾール法、酸化還元
法、DCC/アデイテイブ(HONB,HOBt,
HoSu)法などにより製造できる。上記方法にお
いては、固相合成法及び液相合成法のいずれをも
適用できるが、液相合成法が好ましい。通常本発
明ペプチドは、上記した一般のポリペプチドの合
成法に従い、例えば末端アミノ酸に順次1個づつ
アミノ酸を縮合させる所謂ステツプワイズ法によ
り、又は数個のフラグメントに分けてカツプリン
グさせていく方法により製造される。より詳細に
は上記ペプチドは、その結合の任意の位置で2分
される2種のフラグメントの一方に相当する反応
性カルボキシル基を有する原料と、他方のフラグ
メントに相当する反応性アミノ基を有する原料と
を、ペプチド合成の常套手段で縮合させ、生成す
る縮合物が保護基を有する場合、その保護基を常
套手段で脱離させることにより製造し得る。 上記本発明ペプチドの合成反応工程でリジンは
通常保護しておくのが望ましい場合が多い。また
上記反応の最終工程では、通常ペプチドの構成ア
ミノ酸残基の少なくとも一つが保護された保護ペ
プチドからすべての保護基を脱離する。更に上記
合成反応工程では、反応に関与すべきでない官能
基は、通常の保護基により保護され、反応終了後
該保護基は脱離される。また反応に関与する官能
基は、通常活性化される。之等各反応方法は公知
であり、それに用いられる試薬等も公知のものか
ら適宜選択し得る。 アミノ基の保護基としては、例えばカルボベン
ゾキシ、tert―ブチルオキシカルボニル、tert―
アミルオキシカルボニル、イソボルニルオキシカ
ルボニル、p―メトキシベンジルオキシカルボニ
ル、2―クロル―ベンジルオキシカルボニル、ア
ダマンチルオキシカルボニル、トリフルオロアセ
チル、フタリル、ホルミル、o―ニトロフエニル
スルフエニル、ジフエニルホスフイノチオイルな
どが挙げられる。カルボキシル基の保護基として
は、例えばアルキルエステル(例メチル、エチ
ル、プロピル、ブチル、tert―ブチルなどのアル
キルエステル)、ベンジルエステル、p―ニトロ
ベンジルエステル、p―メトキシベンジルエステ
ル、p―クロルベンジルエステル、ベンズヒドリ
ルエステル、カルボベンゾキシヒドラジド、tert
―ブチルオキシカルボニルヒドラジド、トリチル
ヒドラジド等を形成し得る基を例示できる。 アルギニンのグアニジノ基保護基としては、例
えばニトロ、トシル、p―メトキシベンゼンスル
ホニル、カルボベンゾキシ、イソボルニルオキシ
カルボニル、アダマンチルオキシカルボニル等が
挙げられる。また、そのグアニジノ基は適当な酸
例えばベンゼンスルホン酸、トルエンスルホン
酸、塩酸、硫酸などの塩の形で保護してもよい。 スレオニン及びセリンの水酸基は、例えばエス
テル化またはエーテル化によつて保護することが
できるが必ずしも保護する必要はない。このエス
テル化に適する基としては、例えばアセチル等の
低級アルカノイル、ベンゾイル等のアロイル、ベ
ンゾイルオキシカルボニル、エチルオキシカルボ
ニル等の炭酸から誘導される基等が挙げられる。
またエーテル化に適する基としては、例えばベン
ジル、テトラヒドロピラニル、tert―ブチル等で
ある。 カルボキシル基の活性化されたものとしては、
例えば対応する酸クロライド、酸無水物又は混合
酸無水物、アジド、活性エステル(メチルアルコ
ール、エチルアルコール、ベンジルアルコール、
ペンタクロロフエノール、p―ニトロフエノー
ル、N―ヒドロキシサクシンイミド、N―ヒドロ
キシベンズトリアゾール、N―ヒドロキシ―5―
ノルボルネン―2,3―ジカルボキシイミド等と
のエステル)等が挙げれる。尚ペプチド結合形成
反応は、縮合剤例えばジシクロヘキシルカルボジ
イミド、カルボジイミダゾール等のカルボジイミ
ド試薬やテトラエチルピロホスフイト等の存在下
に実施し得る場合もある。 上記一般式(1)で表わされる本発明ペプチドは、
Rで示される基の種類に応じて、より具体的には
以下に示す〔〕〜〔〕の方法に従い製造され
る。
The present invention relates to a novel human limboblastoid interferon C-terminal peptide. In this specification, when amino acids, peptides, protective groups, active groups, etc. are indicated by abbreviations
The IUPAC, IUB regulations or common symbols in the field shall be followed, examples of which are listed below. Furthermore, when an amino acid or the like can have optical isomers, the L-isomer is indicated unless otherwise specified. Ser: Serine Leu: Leucine Thr: Threonine Asn: Asparagine Gln; Glutamine Glu: Glutamic acid Arg: Arginine Lys: Lysine Tyr: Tyrosine OBzl: Benzyloxy group Z: Carbobenzoxy group NHS: N-hydroxysuccinimide group Tos: p -Toluenesulfonyl group Boc: tertiary butoxycarbonyl group Interferon is an antiviral glycoprotein or protein that is produced when living cells are infected with a virus, and its use can be used to prevent or prevent viral diseases. It is thought to be treatable and has been attracting attention in recent years. The currently elucidated human interferons are β-type interferon (Fibro blast interferon), α-type interferon (Leucocyte interferon, Lympho blastoid interferon).
It is classified into γ-type interferon (interferon) and γ-type interferon (immune interferon). However, at present, a technique for purifying these interferons into a single glycoprotein or protein has not yet been established. The present inventors believe that by using an antibody that specifically reacts with human α-type interferon, the antigen-
We believed that human α-type interferon could be purified by antibody reaction, and based on this idea, we selected human α-type interferon with high sensitivity and conducted intensive research to obtain antibodies that showed specific reactivity against the interferon. It's here. In the process, a certain type of peptide having the C-terminal peptide chain of human limphoblastoid interferon, which is a type of human α-type interferon, was synthesized and an antigen was synthesized using this as a hapten. It has been found that desired antibodies having specific reactivity against type interferon can be obtained. The present invention was completed based on this new knowledge. That is, the present invention provides the general formula R-Glu-Ser-Leu-Arg-Ser-Lys-Glu (1) [wherein R is a hydrogen atom, H-Thr-Asn-Leu-
Gln group, H-Ser-Leu-Ser-Thr-Asn-Leu-
Gln group, or H-Tyr-Ser-Leu-Ser-Thr-
Indicates Asn-Leu-Gln group. ] This relates to the C-terminal peptide of human limphoblastoid interferon represented by: The peptide represented by the above general formula (1) of the present invention has not been synthesized to date. Not only can it be easily synthesized by simple operations using readily available commercially available amino acids, but it also has a specific amino acid sequence and can be used to produce large quantities of a certain antigen with a defined recognition site. Moreover, from the antigen obtained using the above-mentioned peptide as a hapten, compared to the case where natural α-type interferon is used as an antigen, it is possible to obtain antibodies with high specificity for human α-interferon in large quantities and constantly stably. Can be done. Therefore, the antibody can be used for the purification of human α-interferon by binding it to, for example, an affinity chromatography carrier and using the chromatography. The peptide represented by the above general formula (1) of the present invention is a peptide corresponding to the C-terminal peptide chain of human limboblastoid interferon. This is a conventional peptide synthesis method, specifically,
The Peptides, Volume 1 (1966)
[Schroder and Luhke, Academic Press,
NewYork, USA] or “Peptide Synthesis”
For example, the azide method, chloride method, acid anhydride method, mixed acid anhydride method, DCC method, active ester method (p-nitrophenyl ester method,
N-hydroxysuccinimide ester method, cyanomethyl ester method, etc.), method using Woodward reagent K, carbodiimidazole method, redox method, DCC/additive (HONB, HOBt,
It can be manufactured by methods such as HoSu). In the above method, both solid phase synthesis method and liquid phase synthesis method can be applied, but liquid phase synthesis method is preferable. Usually, the peptide of the present invention is produced according to the general polypeptide synthesis method described above, for example, by the so-called stepwise method in which amino acids are sequentially condensed one by one to the terminal amino acid, or by a method in which the peptides are divided into several fragments and coupled together. be done. More specifically, the above-mentioned peptide consists of a raw material having a reactive carboxyl group corresponding to one of two types of fragments that are divided into two at an arbitrary position of the bond, and a raw material having a reactive amino group corresponding to the other fragment. If the resulting condensate has a protecting group, it can be produced by removing the protecting group using a conventional method. In many cases, it is usually desirable to protect lysine in the synthesis reaction step of the peptide of the present invention. Further, in the final step of the above reaction, all protecting groups are usually removed from the protected peptide in which at least one of the constituent amino acid residues of the peptide is protected. Furthermore, in the above synthetic reaction step, functional groups that should not participate in the reaction are protected with a conventional protecting group, and the protecting group is removed after the reaction is completed. Furthermore, the functional groups involved in the reaction are usually activated. These reaction methods are known, and the reagents used therein can be appropriately selected from known methods. Examples of protecting groups for amino groups include carbobenzoxy, tert-butyloxycarbonyl, tert-
amyloxycarbonyl, isobornyloxycarbonyl, p-methoxybenzyloxycarbonyl, 2-chloro-benzyloxycarbonyl, adamantyloxycarbonyl, trifluoroacetyl, phthalyl, formyl, o-nitrophenylsulfenyl, diphenylphosphinothioyl Examples include. Examples of protective groups for carboxyl groups include alkyl esters (e.g. alkyl esters such as methyl, ethyl, propyl, butyl, tert-butyl, etc.), benzyl esters, p-nitrobenzyl esters, p-methoxybenzyl esters, and p-chlorobenzyl esters. , benzhydryl ester, carbobenzoxyhydrazide, tert
Examples include groups that can form -butyloxycarbonyl hydrazide, trityl hydrazide, etc. Examples of the guanidino group-protecting group for arginine include nitro, tosyl, p-methoxybenzenesulfonyl, carbobenzoxy, isobornyloxycarbonyl, adamantyloxycarbonyl, and the like. The guanidino group may also be protected in the form of a salt of a suitable acid such as benzenesulfonic acid, toluenesulfonic acid, hydrochloric acid, sulfuric acid, and the like. The hydroxyl groups of threonine and serine can be, but do not necessarily need to be protected, for example by esterification or etherification. Examples of groups suitable for this esterification include lower alkanoyl such as acetyl, aroyl such as benzoyl, and groups derived from carbonic acid such as benzoyloxycarbonyl and ethyloxycarbonyl.
Examples of groups suitable for etherification include benzyl, tetrahydropyranyl, and tert-butyl. Examples of activated carboxyl groups include:
For example, the corresponding acid chlorides, acid anhydrides or mixed acid anhydrides, azides, active esters (methyl alcohol, ethyl alcohol, benzyl alcohol,
Pentachlorophenol, p-nitrophenol, N-hydroxysuccinimide, N-hydroxybenztriazole, N-hydroxy-5-
Examples include esters with norbornene-2,3-dicarboximide, etc. The peptide bond forming reaction may be carried out in the presence of a condensing agent such as a carbodiimide reagent such as dicyclohexylcarbodiimide or carbodiimidazole, or tetraethylpyrophosphite. The peptide of the present invention represented by the above general formula (1) is
Depending on the type of group represented by R, it is more specifically produced according to the methods [] to [] shown below.

【表】【table】

【表】【table】

【表】【table】

【表】 ↓
[Table] ↓

【表】【table】

【表】 〔上記〔〕〜〔〕において、Aはアミノ基
の保護基、Bは水酸基又はカルボキシル基の活性
基、Cはアルギニンのグアニジノ基の保護基、D
はリジンのε―アミノ基の保護基、Eはグルタミ
ン酸のγ―カルボキシル基の保護基及びFはカル
ボキシル基の保護基を示す。〕 上記においてAの好ましいものとしては、
Boc,Z,p―メトキシベンジルオキシカルボニ
ル基等を、Bの好ましいものとしては、N―ヒド
ロキシサクシンイミド、p―ニトロフエニルエス
テル等の活性エステル残基、イソブチルオキシカ
ルボニル基等の混合酸無水物残基、アジド等を、
Cの好ましいものとしては、ニトロ、トシル等
を、Dの好ましいものとしては、トシル等を、E
の好ましいものとしては、ベンジルオキシ等を、
またFの好ましいものとしてはアルキルエステル
残基、tert―ブトキシカルボニルヒドラジド等を
夫々挙げることができる。 上記方法〔〕においてアミノ酸(2)とアミノ酸
(3)との反応は、溶媒の存在下に行なうことができ
る。溶媒としては、ペプチド縮合反応に使用し得
ることが知られている各種のもの例えば無水また
は含水のジメチルホルムアミド、ジメチルスルホ
キシド、ピリジン、クロロホルム、ジオキサン、
ジクロルメタン、テトラヒドロフラン、酢酸エチ
ル、N―メチルピロリドン、ヘキサメチルリン酸
トリアミド或いはこれらの混合溶媒等を用い得
る。アミノ酸(3)とアミノ酸(2)との使用割合として
は、特に限定されず広い範囲内で適宜選択するこ
とができるが、通常前者に対して後者を等量〜5
倍量、好ましくは等量〜1.5倍量使用するのがよ
い。反応温度はペプチド結合形成反応に使用され
得ることが知られている範囲、通常約−40〜約60
℃、好ましくは約−20〜約40℃の範囲から適宜選
択される。反応時間は一般に数分〜30時間程度で
ある。 方法〔〕におけるペプチド(5)とアミノ酸(6)と
の反応、ペプチド(8)とアミノ酸(9)との反応、ペプ
チド(11)とアミノ酸(12)との反応、ペプチド(14)とア
ミノ酸(15)との反応及びアミノ酸(6)とアミノ酸(4
5)との反応は、上記アミノ酸(2)とアミノ酸(3)との
反応と同様にして行なうことができる。また方法
〔〕におけるアミノ酸(18)とアミノ酸(19)との反
応、ペプチド(21)とアミノ酸(22)との反応、ペプ
チド(24)とアミノ酸(25)との反応及びペプチド(27)
とペプチド(28)との反応、方法〔〕におけるア
ミノ酸(19)とアミノ酸(31)との反応、ペプチド(33)
とアミノ酸(6)との反応及びペプチド(35)とペプチ
ド(36)との反応、並びに方法〔〕におけるペプ
チド(39)とアミノ酸(40)との反応及びペプチド(42)
とペプチド(36)との反応も亦上記と同様にして行
ない得る。 上記各反応により得られるペプチド(4),(7),
(10),(13),(16),(20),(23),(26),(29),(32),(3
4),(37)及び(43)の有する保護基Aの離脱反応は、
常法により行なわれる。該方法としては、例えば
還元的方法(例パラジウム、パラジウム黒等の触
媒を用いる水素添加、液体アンモニア中金属ナト
リウムによる還元)、アシドリシス(例トリフル
オロ酢酸、弗化水素、メタンスルホン酸、臭化水
素酸等の強酸によるアシドリシス)等が挙げられ
る。 上記触媒を用いる水素添加は、例えば水素圧1
気圧、0〜40℃にて行ない得る。触媒の使用量
は、通常100mg〜1g程度でよく、一般に1〜48
時間程度で反応は終了する。また上記アシドリシ
スは、無溶媒下、通常0〜30℃程度好ましくは0
〜20℃にて約15分〜1時間程度を要して行ない得
る。酸の使用量は原料化合物に対し通常5〜10倍
量程度とするのがよい。更に上記液体アンモニア
中金属ナトリウムによる還元は、反応溶液がパー
マネントブルーに30秒〜10分間程度呈色している
ような量の金属ナトリウムを用い、通常−40〜−
70℃程度にて行ない得る。 またペプチド(10)の保護基C及びペプチド(16),
(29),(37)及び(45)の保護基D、ペプチド(4)及び(
6)
の保護基E並びにペプチド(26),(34),(43)及び(4
6)の保護基Fは、夫々上記還元的方法によつて、
同様に脱保護することができる。 上記方法(〕乃至()に利用されるアミノ
酸(2),(3),(6),(9),(15),(18),(19),(22),(25)

(31),(40)及び(45)は、公知の市販品でよく、また
ペプチド(12),(27),(35)及び(42)は公知の市販品又
は混合酸無水物法、アジド化法等により得られる
ものを利用できる。 上記混合酸無水物法は、適当な溶媒中塩基性化
合物の存在下、アルキルハロカルボン酸、例えば
クロロ蟻酸メチル、ブロモ蟻酸メチル、クロロ蟻
酸エチル、ブロモ蟻酸エチル、クロロ蟻酸イソブ
チル等を用いて行なわれる。塩基性化合物として
は、例えばトリエチルアミン、トリメチルアミ
ン、ピリジン、ジメチルアニリン、N―メチルモ
ルホリン、1,5―ジアザビシクロ〔4,3,
0〕ノネン―5(DBN)、1,5―ジアザビシク
ロ〔5,4,0〕ウンデセン―5(DBU)、1,
4―ジアザビシクロ〔2,2,2〕オクタン
(DABCO)等の有機塩基や炭酸カリウム、炭酸
ナトリウム、炭酸水素カリウム、炭酸水素ナトリ
ウム等の無機塩基を使用できる。また溶媒として
は、混合酸無水物法に慣用の各種溶媒、具体的に
は塩化メチレン、クロロホルム、ジクロロエタン
等のハロゲン化炭化水素類、ベンゼン、トルエ
ン、キシレン等の芳香族炭化水素類、ジエチルエ
ーテル、テトラヒドロフラン、ジメトキシエタン
等のエーテル類、酢酸メチル、酢酸エチル等のエ
ステル類、N,N―ジメチルホルムアミド、ジメ
チルスルホキシド、ヘキサメチルリン酸トリアミ
ド等の非プロトン性極性溶媒などを使用できる。
反応は通常−20〜100℃好ましくは−20〜50℃に
おいて行なわれ、反応時間は一般に5分〜10時間
好ましくは5分〜2時間である。 またアジド化法は、まず活性化されたカルボキ
シル基、例えばメチルアルコール、エチルアルコ
ール、ベンジルアルコール等のアルコールで活性
化されたカルボキシル基にヒドラジン水和物を適
当な溶媒中にて反応させることにより行なわれ
る。溶媒としては例えばジオキサン、ジメチルホ
ルムアミド、ジメチルスルホキシド又はこれらの
混合溶媒等を使用できる。ヒドラジン水和物の使
用量は、活性化されたカルボキシル基に対して通
常5〜20倍モル量好ましくは5〜10倍モル量とす
るのがよい。反応は通常50℃以下、好ましくは−
20〜30℃にて行なわれる。斯くして末端アミノ酸
のカルボキシル基部分がヒドラジンで置換された
化合物(ヒドラジン誘導体)を製造し得る。末端
アミノ酸のカルボキシル基部分がアジドで置換さ
れた化合物は、酸の存在下、適当な溶媒中、上記
で得られるヒドラジン誘導体と亜硝酸化合物を反
応させることにより製造される。酸としては通常
塩酸が用いられる。溶媒としては例えばジオキサ
ン、ジメチルホルムアミド、ジメチルスルホキシ
ド又はこれらの混合溶媒等を使用できる。また亜
硝酸化合物としては例えば亜硝酸ナトリウム、亜
硝酸イソアミル、塩化ニトロシル等を使用するこ
とができる。斯かる亜硝酸化合物は、ヒドラジン
誘導体に対して通常等モル〜2倍モル量好ましく
は等モル〜1.5倍モル量用いられる。反応は通常
−20〜0℃、好ましくは−20〜−10℃にて行なわ
れ、一般に5〜10分程度で反応は終了する。 前記方法〔〕におけるペプチド(28)は、ペプ
チド(16)の保護基A及びEを脱離することによ
り、また前記方法〔〕におけるペプチド(36)
は、ペプチド(29)の保護基Aを脱離することによ
り夫々収得できる。之等の脱保護基反応は、上述
した方法に従えばよい。 上記のようにして製造された一般式(1)のペプチ
ドは反応混合物からペプチドの分離手段例えば抽
出、分配、カラムクロマトグラフイー等により単
離精製される。 かくして本発明の一般式(1)で表わされる合成ペ
プチド即ちヒトリンホブラストイドインターフエ
ロンのC末端ペプチドを得る。 かくして得られる合成ペプチドは、これに
I125,I131等の放射性ヨードを導入することによ
り、ラジオイム アツセイ法(RIA法)において
用いられる標識抗原の製造用原料である標識ペプ
チドとして利用できる。上記放射性ヨードの導入
は、通常のヨード化法、例えばクロラミンTを用
いる酸化的ヨード化法〔W.M.Hunter and F.C.
Greenwood;Nature,194,P495(1962)、
Biochem.J.89,P114(1963)参照〕等により行な
われる。具体的には例えば適当な溶媒例えば
0.2Mリン酸緩衝液(PH=7.4)等の溶媒中、クロ
ラミンTの存在下室温付近にて10〜30秒程度で行
なわれる。ペプチド、放射性ヨード及びクロラミ
ンTの使用割合は、例えばチロシン当り放射性ヨ
ード1個を導入する場合には、ペプチド中に含ま
れるチロシン分子1ナノモルに対して放射性ヨー
ドを1ミリキユーリー程度、クロラミンTを10〜
100ナノモル程度用いるのがよく、またチロシン
当り放射性ヨード2個を導入する場合には、ペプ
チド中に含まれるチロシン分子1ナノモルに対し
て放射性ヨードを2ミリキユーリー程度、クロラ
ミンTを10〜100ナノモル程度用いるのがよい。
斯くして製造される放射性ヨードにより標識化さ
れたペプチドは、通常の分離手段例えば抽出、分
配、カラムクロマトグラフイー、透析等により単
離精製される。このようにして得られるペプチド
は必要ならば凍結乾燥させて保存しておくことも
できる。 また上記一般式(1)で表わされる本発明の合成ペ
プチドは、ヒトα型インターフエロン抗原の製造
用ハプテンとして利用できる。 以下上記ヒトα型インターフエロン抗原の製造
方法につき詳述する。 ヒトα型インターフエロン抗原は、本発明のペ
プチドの少なくとも1種をハプテンとし、これを
ハプテン―担体結合試薬の存在下に、適当な担体
と反応させることにより製造される。 上記方法においてハプテンに結合される担体と
しては、通常抗原の作成に当り慣用される高分子
の天然若しくは合成蛋白質を広く使用できる。該
担体としては、例えば馬血清アルブミン、牛血清
アルブミン、ウサギ血清アルブミン、人血清アル
ブミン、ヒツジ血清アルブミン等の動物の血清ア
ルブミン類、馬血清グロブリン、牛血清グロブリ
ン、ウサギ血清グロブリン、人血清グロブリン、
ヒツジ血清グロブリン等の動物の血清グロブリン
類、馬チログロブリン、牛チログロブリン、ウサ
ギチログロブリン、人チログロブリン、ヒツジチ
ログロブリン等の動物のチログロブリン類、馬ヘ
モグロブリン、牛ヘモグロブリン、ウサギヘモグ
ロブリン、人ヘモグロブリン、ヒツジヘモグロブ
リン等の動物のヘモグロブリン類、動物のヘモシ
アニン類、回虫より抽出された蛋白質(アスカー
リス抽出物、特開昭56―16414号公報、J.
Immun.,111,260〜268(1973)、J.Immun.,
122,302〜308(1979)、J.Immun.,98,893〜900
(1967)及びAm.J.Physiol.,199,575〜578
(1960)に記載されたものまたはこれらを更に精
製したもの)、ポリリジン、ポリグルタミン酸、
リジン―グルタミン酸共重合体、リジン又はオル
ニチンを含む共重合体等を挙げることができる。 ハプテン―担体結合試薬としては、通常抗原の
作成に当り慣用されているものを広く使用でき
る。具体的にはアミノ基とアミノ基とを架橋結合
させる、例えばグリオキサール、マロンジアルデ
ヒド、グルタールアルデヒド、スクシンアルデヒ
ド、アジポアルデヒド等の脂肪族ジアルデヒド
類、チオール基とチオール基とを架橋結合させ
る、例えばN,N′―o―フエニレンジマレイミ
ド、N,N′―m―フエニレンジマレイミド等の
ジマレイミド化合物、アミノ基とチオール基とを
架橋結合させる、例えばメタマレイミドベンゾイ
ル―N―ヒドロキシスクシンイミドエステル、4
―(マレイミドメチル)―シクロヘキサン―1―
カルボキシル―N′―ヒドロキシスクシンイミド
エステル等のマレイミドカルボキシル―N―ヒド
ロキシスクシンイミドエステル化合物、アミノ基
とカルボキシル基とをアミド結合させる通常のペ
プチド結合形成反応に用いられる試薬、例えば
N,N―ジシクロヘキシルカルボジイミド、N―
エチル―N′―ジメチルアミノカルボジイミド、
1―エチル―3―ジイソプロピルアミノカルボジ
イミド、1―シクロヘキシル―3―(2―モルホ
リニル―4―エチル)カルボシイミド等のカルボ
ジイミド類等の脱水縮合剤を挙げることができ
る。また上記ハプテン―担体結合試薬としては、
p―ジアゾニウムフエニル酢酸等のジアゾニウム
アリールカルボン酸類と通常のペプチド結合形成
反応試薬、例えば上記脱水縮合剤とを組み合わせ
たものも使用可能である。 上記抗原の製造反応は、例えば水溶液もしくは
PH7〜10の通常の緩衝液中好ましくはPH8〜9の
緩衝液中で、0〜40℃好ましくは室温付近で行な
われる。該反応は通常約1〜24時間好ましくは3
〜5時間で完結する。上記において用いられる代
表的緩衝液としては、次のものを例示できる。 0.2N水酸化ナトリウム―0.2Mホウ酸―0.2M塩
化カリウム緩衝液、 0.2M炭酸ナトリウム―0.2Mホウ酸―0.2M塩化
カリウム緩衝液、 0.05M四ホウ酸ナトリウム―0.2Mホウ酸―
0.05M塩化ナトリウム緩衝液、 0.1Mリン酸二水素カリウム―0.05M四ホウ酸
ナトリウム緩衝液 上記においてハプテン、ハプテン―担体結合試
薬及び担体の使用割合は、適宜に決定できるが、
通常ハプテンに対して担体を2〜6倍重量好まし
くは3〜5倍重量、及びハプテン―担体結合試薬
を5〜10倍モル程度用いるのがよい。上記反応に
よりハプテン―担体結合試薬を仲介させて担体と
ハプテンとが結合したペプチド―担体複合体から
成るヒトα型インターフエロン抗原が収得され
る。 反応終了後得られる抗原は常法に従い、例えば
透析法、ゲル過法、分別沈殿法等により容易に
単離精製できる。また該抗原は通常の凍結乾燥法
により保存できる。 かくして本発明のヒトα型インターフエロンの
C末端ペプチドの少なくとも1種と、担体との複
合体から成るヒトα型インターフエロン抗原を得
る。該抗原は、通常蛋白質1モルに対しペプチド
が平均5〜20モル結合したものであり、いずれも
引き続き再現性よく、ヒトα型インターフエロン
に対する特異性の高い抗体の作成を可能とするも
のである。特に上記蛋白質に対するペプチドの結
合モル比が1:8〜15のものは、特異性が一層高
く高力価、高感度の抗体を作成し得るものであり
好ましい。 上記で得られる抗原による抗体の作成は、以下
の如くして行なわれる。即ち上記抗原を哺乳動物
に投与し、生体内に産生される抗体を採取するこ
とにより行なわれる。 抗体の製造に供せられる
哺乳動物としては、特に制限はないが、通常兎や
モルモツトを用いるのが望ましい。抗体の産生に
当つては、上記により得られる抗原の所定量を生
理食塩水で適当濃度に希釈し、フロインドの補助
液(Complete Freubd′s Adjuvant)と混合して
懸濁液を調整し、之を哺乳動物体に投与すればよ
い。例えば兎に上記懸濁液を皮内注射(抗原の量
として0.5〜5mg/回)し、以後2週間毎に2〜
10ケ月好ましくは4〜6ケ月間投与し免疫化させ
ればよい。抗体の採取は、上記懸濁液の最終投与
後抗体が多量産出される時期、通常上記最終投与
1〜2週間経過後、免疫化された動物から採血
し、之を遠心分離後血清を分離採取することによ
り行なわれる。上記によれば、用いる抗原の特殊
性に基づいて、ヒトα型インターフエロンに対し
て優れた特異性を有し、高力価、高感度の抗体を
収得できる。 かくして得られるヒトα型インターフエロン抗
体は、例えばこれをRIA法に利用してヒトα型イ
ンターフエロンの定量を高精度をもつて可能とす
る。また該抗体は、これを酵素または螢光物質で
標識することによつてエンザイムイムノアツセイ
(EIA)法、フローレツセンスイムノアツセイ
(FIA)法等に使用できる。さらに該抗体は公知
の不溶化させる物質と反応させて不溶化抗体とす
ることもできる。 以下本発明を更に詳しく説明するため、本発明
ペプチド、これを利用した抗原及び該抗原からの
抗体の製造例を挙げるが、本発明はこれに限定さ
れるものではない。 尚各製造例におけるRf値はシリカゲル上の薄
層クロマトグラフイーにて下記混合溶媒を用いて
測定したものである。 Rf〓……1―ブタノール―酢酸―水(4:1:
5) Rf〓……1ブタノール―ピリジン―酢酸―水
(15:10:3:12) <ペプチドの合成> 製造例 1 1 Z―Lys(Tos)―Glu(OBzl)―OBzlの製造 H―Glu(OBzl)―OBzl・Tos4.18gをジメチ
ルホルムアミド(DMF)30mlに溶解し、トリエ
チルアミン(TEA)1.21mlを加え、撹拌下冷却
する。一方Z―Lys(Tos)―OH4.35gをテトラ
ヒドロフラン(THF)30mlに溶解し、N―メチ
ルモルホリン0.98mlを加え−15℃に冷却し、撹拌
下クロロ蟻酸イソブチル1.27mlを滴下する。滴下
30秒後該液に上記で調製した冷DMF溶液を加え、
この混合液を0℃下に5分間、次いで40℃の水浴
中で1分間、更に15℃下に30分間撹拌する。反応
液よりTHF及びDMFを減圧留去し、残渣を酢酸
エチルで抽出する。抽出液を1Nクエン酸、飽和
食塩水、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液及び飽和
食塩水で順次洗浄し、無水硫酸ナトリウムで乾燥
後、酢酸エチルを留去する。得られる油状残渣に
エチルエーテルを加えて固化させ、これを酢酸エ
チル―エーテルより再沈殿させて目的物5.37gを
得る。 Rf〓=0.96 Rf〓=0.90 元素分析値(C40H45N3O9Sとして) 計算値(%) C64.59 H6.10 N5.65 実測値(%) C64.13 H5.95 N5.63 2(a) H―Lys(Tos)―Glu―OHの製造 Z―Lys(Tos)―Glu(OBzl)―OBzl5.21gを
メタノール80mlと10%酢酸20mlとの混液に溶解
し、パラジウムブラツク少量を加えH2ガス導入
下1夜撹拌する。反応終了後触媒を吸引過によ
り去し、液を減圧蒸留し、残渣を水に注ぎ凍
結乾燥して目的物を得る。 Rf〓=0.29 Rf〓=0.52 2(b) Z―Ser―Lys(Tos)―Glu―OHの製造 Z―Ser―NHNH22.13gをDMF20mlに溶解
し、6N塩酸/ジオキサン4.20mlを加え、−15℃に
冷却し、撹拌下亜硝酸イソアミル1.13mlをえる。
反応液がヒドラジドテスト陰性になつた後
TEA3.53mlの冷DMF1.20ml溶液を少量宛滴下し
中和させる。このアジドを含む溶液を、上記(a)で
得たH―Lys(Tos)―Glu―OH及びTEA1.96ml
の冷DMF溶液に加え、混合液を−10〜−15℃下
2時間、次いで4℃下20時間撹拌する。DMFを
減圧留去し、残渣を酢酸エチルで抽出し、酢酸エ
チル層を1Nクエン酸及び飽和食塩水で洗浄し、
無水硫酸ナトリウムで乾燥後、酢酸エチルを減圧
留去する。得られる残渣にエチルエーテルを加え
て固化させ、酢酸エチル―エーテルより再沈殿さ
せて、目的物4.14gを得る。 Rf〓=0.64 Rf〓=0.65 元素分析値(C29H38N4O11S・1/2H2Oとして) 計算値(%) C52.80 H5.96 N8.49 実測値(%) C52.87 H5.69 N8.46 3(a) H―Ser―Lys(Tos)―Glu―OHの製造 Z―Ser―Lys(Tos)―Glu―OH4.03gをメタ
ノール60mlと10%酢酸40mlとの混液に溶解し、パ
ラジウムブラツク少量を加えH2ガス導入下1夜
撹拌する。反応終了後触媒を吸引過により去
し、液を減圧蒸留し、残渣を水に注ぎ凍結乾燥
して目的物を得る。 Rf〓=0.23 Rf〓=0.48 3(b) Z―Arg(NO2)―Ser―Lys(Tos)―Glu
―OHの製造 上記(a)で得たH―Ser―Lys(Tos)―Glu―OH
をDMF20mlに溶解し、TEA1.74mlを加え、撹拌
下冷却する。一方Z―Arg(NO2)―OH2.41gを
THF20mlに溶解し、N―メチルモルホリン0.70
mlを加え−15℃に冷却し、撹拌下クロロ蟻酸イソ
ブチル0.86mlを滴下する。滴下30秒後該液に上記
で調製した冷DMF溶液を加え、この混合液を0
℃下に5分間、次いで40℃の水浴中で1分間、更
に15℃下に30分間撹拌する。反応液よりTHF及
びDMFを減圧留去し、残渣を2%酢酸飽和ブタ
ノールで抽出する。抽出液をn―ブタノール飽和
の2%酢酸で5回洗浄し、減圧蒸留し、水に置き
変えて酢酸を留去し、更にメタノールに置き変え
て水を留去する。得られる油状残渣にエチルエー
テルを加えて固化させ、これを酢酸エチル―メタ
ノールより再沈殿させて目的物4.09gを得る。 Rf〓=0.42 Rf〓=0.65 元素分析値(C35H49N9O14S・1/2H2Oとして) 計算値(%) C48.83 H5.85 N14.64 実測値(%) C49.22 H6.05 N14.11 4 Z―Ser―Leu―NHNH2の製造 Z―Ser―NHNH22.54gをDMF20mlに溶解
し、6N塩酸/ジオキサン5.00mlを加え、−15℃に
冷却し、撹拌下亜硝酸イソアミル1.34mlを加え
る。反応液がヒドラジドテスト陰性になつた後
TEA4.20mlの冷DMF1.40ml溶液を少量宛滴下し
中和させる。このアジドを含む溶液を、H―Leu
―OC2H5・HCl1.96g及びTEA1.40mlの冷DMF
溶液15mlに加え、混合液を−10〜−15℃下2時
間、次いで4℃下20時間撹拌する。DMFを減圧
留去し、残渣を酢酸エチルで抽出し、酢酸エチル
層を1Nクエン酸、飽和食塩水、飽和炭酸水素ナ
トリウム水溶液及び飽和食塩水で順次洗浄し、無
水硫酸ナトリウムで乾燥後、酢酸エチルを減圧留
去する。得られる残渣に石油エーテルを加えデカ
ンテーシヨンにより洗浄する。油状物質をデシケ
ーター内で減圧乾燥し、乾燥物をメタノール50ml
に溶かし、氷冷下100%ヒドラジン1水和物2.50
mlを加え、室温下20時間放置し、メタノールを減
圧留去する。残渣にエチルエーテルを加えて固化
させ、これをデシケーター内で乾燥後、水洗過
して過剰のヒドラジン1水和物を除去し、メタノ
ール―酢酸エチルから再沈殿させて、目的物2.68
gを得る。 Rf〓=0.73 Rf〓=0.76 元素分析値(C17H26N4O5として) 計算値(%) C55.73 H7.15 N15.29 実測値(%) C55.72 H7.01 N15.42 5(a) H―Arg―Ser―Lys(Tos)―Glu―OHの
製造 Z―Arg(NO2)―Ser―Lys(Tos)―Glu―
OH2.00gをメタノール30mlと50%酢酸30mlとの
混液に懸濁し、パラジウムブラツク少量を加え
H2ガス導入下36時間撹拌する。反応終了後触媒
を吸引過により去し、液を減圧蒸留し、残
渣を水に注ぎ凍結乾燥し、18時間後再度水に溶か
して凍結乾燥して目的物を得る。 Rf〓=0.05 Rf〓=0.41 5(b) Z―Ser―Leu―Arg―Ser―Lys(Tos)―
Glu―OHの製造 Z―Ser―Leu―NHNH21.03gをDMF15mlに
溶解し、6N塩酸/ジオキサン1.41mlを加え、−15
℃に冷却し、撹拌下亜硝酸イソアミル0.38mlを加
える。反応液がヒドラジドテスト陰性になつた後
TEA1.18mlの冷DMF0.40ml溶液を少量宛滴下し
中和させる。このアジドを含む溶液を、上記(a)で
得たH―Arg―Ser―Lys(Tos)―Glu―OH及び
TEA0.66mlの冷DMF溶液10mlに加え、混合液を
−10〜−15℃下2時間、次いで4℃下20時間撹拌
する。DMFを減圧留去し、残渣を水飽和のn―
ブタノールで抽出し、ブタノール層をn―ブタノ
ール飽和水で5回洗浄し、減圧留去する。得られ
る残渣にエチルエーテルを加えて固化させ、メタ
ノール―酢酸エチルより再沈殿させて、目的物
1・92gを得る。 Rf〓=0.33 Rf〓=0.69 元素分析値(C44H66N10O15S・2H2Oとして) 計算値(%) C50.66 H6.76 N13.43 実測値(%) C50.57 H6.51 N15.34 6(a) H―Ser―Leu―Arg―Ser―Lys(Tos)―
Glu―OHの製造 Z―Ser―Leu―Ser―Lys(Tos)―Glu―
OH1.84gをメタノール30mlと10%酢酸30mlとの
混液に懸濁し、パラジウムブラツク少量を加え
H2ガス導入下13時間撹拌する。反応終了後触媒
を吸引過により去し、液を減圧蒸留し、残
渣を水に注ぎ凍結乾燥して目的物を得る。 Rf〓=0.09 Rf〓=0.53 6(b) Boc―Glu(OBzl)―Ser―Leu―Arg―Ser
―Lys(Tos)―Glu―OHの製造 上記(a)で得たH―Ser―Leu―Arg―Ser―Lys
(Tos)―Glu―OHをDMF20mlに溶解し、
TEA0.51mlを氷冷下に加え、更にBoc―Glu
(OBzl)―ONHS0.95gを加え、混合液を室温下
24時間撹拌する。DMFを減圧留去し、残渣を水
飽和のn―ブタノールで抽出し、ブタノール層を
n―ブタノール飽和の水で5回洗浄する。ブタノ
ール層を減圧留去し、得られる残渣にエチルエー
テルを加えて固化させ、メタノール―酢酸エチル
より再沈殿させて、目的物1.70gを得る。 Rf〓=0.42 Rf〓=0.60 元素分析値(C53H81N11O18S・2H2Oとして) 計算値(%) C51.82 H6.97 N12.55 実測値(%) C51.27 H6.58 N15.47 7(a) Boc―Glu―Ser―Leu―Arg―Ser―Lys
(Tos)―Glu―OHの製造 Boc―Glu(OBzl)―Ser―Leu―Arg―Ser―
Lys(Tos)―Glu―OH150mgをメタノール30mlと
10%酢酸30mlとの混液に溶解し、パラジウムブラ
ツク少量を加えH2ガス導入下18時間撹拌する。
反応終了後触媒を吸引過により去し、液を
減圧蒸留し、残渣に水を注ぎ凍結乾燥して目的物
を得る。 7(b) H―Glu―Ser―Leu―Arg―Ser―Lys
(Tos)―Glu―OHの製造 上記(a)で得たBoc―Glu―Ser―Leu―Arg―
Ser―Lys(Tos)―Glu―OHをTHFに溶解し、
室温で15分間放置する。無水エーテル約30mlを加
え、析出物を過し、無水エーテルで洗浄後、水
酸化カリウム―五酸化リンを入れたデシケーター
内で減圧乾燥して、目的物を得る。 7(c) H―Glu―Ser―Leu―Arg―Ser―Lys―
Glu―OHの製造 上記(b)で得たH―Glu―Ser―Leu―Arg―Ser
―Lys(Tos)―Glu―OHを、予め金属ナトリウ
ムで乾燥した液体アンモニアに溶解し、撹拌下に
金属ナトリウムの小片を溶液が青色を30秒〜1分
間保つまで加える。更に結晶NH4Clを加え、過
剰のナトリウムを中和し、室温でアンモニアを完
全に蒸発留去後、溶出液に50%酢酸を用いたセフ
アデツクスG―25ゲルによりゲル過して、目的
物(本発明ペプチド)58mgを得る。これを「ペプ
チドA」と呼ぶ。 Rf〓=0.04 Rf〓=0.34 元素分析値(C34H61N11O14・C2H4O2・3H2Oと
して) 計算値(%) C44.95 H7.44 N16.02 実測値(%) C45.05 H7.11 N15.84 8(a) H―Gln―NHNHBocの製造 Z―Gln―NHNHBoc16.00gをメタノール100
mlに懸濁し、パラジウムブラツク少量を加えH2
ガス導入下18時間撹拌する。反応終了後触媒を吸
引過により去し、液を減圧蒸留し、残渣を
デシケーター内で減圧乾燥して目的物を得る。 Rf〓=0.37 Rf〓=0.58 8(b) Z―Leu―Gln―NHNHBocの製造 上記(a)で得たH―Gln―NHNHBocをTHF50
mlに溶解し、氷冷下Z―Leu―ONHS5.51gを加
え、室温下18時間撹拌する。THFを減圧留去し、
残渣を酢酸エチルで抽出し、酢酸エチル層を1N
クエン酸、飽和食塩水、飽和炭酸水素ナトリウム
水溶液及び飽和食塩水で順次洗浄し、無水硫酸ナ
トリウムで乾燥後、酢酸エチルを留去する。得ら
れる油状残渣にエチルエーテルを加えて固化さ
せ、これをメタノール―エチルエーテルより再沈
殿させて目的物6.04gを得る。 Rf〓=0.81 Rf〓=0.86 元素分析値(C24H37N5O7として) 計算値(%) C56.79 H7.35 N13.80 実測値(%) C56.67 H7.15 N13.75 9(a) H―Leu―Glu―NHNHBocの製造 Z―Leu―Gln―NHNHBoc2.79gをメタノー
ル80mlに懸濁し、パラジウムブラツク少量を加え
H2ガス導入下32時間撹拌する。反応終了後触媒
を吸引過により去し、液を減圧留去し、残
渣をデシケーター内で減圧乾燥して、目的物を得
る。 Rf〓=0.33 Rf〓=0.66 9(b) Z―Asn―Leu―Gln―NHNHBocの製造 上記(a)で得たH―Leu―Gln―NHNHBocを
DMF30mlに溶解し、撹拌下冷却する。一方Z―
Asn―OH1.61gをTHF30mlに溶解し、N―メチ
ルモルホリン0.62mlを加え−15℃に冷却し、撹拌
下クロロ蟻酸イソブチル0.80mlを滴下する。滴下
30秒後該液に上記で調製した冷DMF溶液を加え、
この混合液を0℃下に5分間、次いで40℃の水浴
中で1分間、更に15℃下に30分間撹拌する。反応
液よりTHF及びDMFを減圧留去し、残渣を酢酸
エチルで抽出する。抽出液を1Nクエン酸、飽和
食塩水、飽和炭酸水素ナトリウム水溶液及び飽和
食塩水で順次洗浄し、無水硫酸ナトリウムで乾燥
後、酢酸エチルを留去する。得られる油状残渣に
エチルエーテルを加えて固化させ、メタノール―
酢酸エチルで再沈殿させて目的物2.55gを得る。 Rf〓=0.63 Rf〓=0.77 元素分析値(C28H43N7O9として) 計算値(%) C53.10 H6.97 N15.77 実測値(%) C53.67 H6.63 N15.68 10(a) Z―Thr―ONHSの製造 Z―Thr―OH1.28gをTHF30mlに溶解し、こ
れにNHS0.58gを加え、氷冷し、次いでN,N
―ジシクロヘキシルカルボジイミド(DCC)1.05
gを加える。この混合液を4℃で24時間撹拌し、
析出物を去し、液を減圧留去し、残渣にエチ
ルエーテルを加え、デカンテーシヨン洗浄する。
得られる油状物質をデシケーター内にて減圧乾燥
して目的物を得る。 10(b) H―Asn―Leu―Gln―NHNHBocの製造 Z―Asn―Leu―Gln―NHNHBoc2.43gをメ
タノール80mlに懸濁し、パラジウムブラツク少量
を加え、H2ガス導入下18時間撹拌する。反応終
了後触媒を吸引過により去し、液を減圧留
去し、デシケーター内で減圧乾燥して目的物を得
る。 Rf〓=0.31 Rf〓=0.64 10(c) Z―Thr―Asn―Leu―Gln―NHNHBoc
の製造 上記(b)で得たH―Asn―Leu―Gln―
NHNHBocをDMF30mlに溶解し、この溶液に上
記(a)で得たZ―Thr―ONHSのDMF20ml溶液を
氷冷下に加え、混合液を室温下18時間撹拌する。
DMFを減圧留去して得られた残渣に1Nクエン酸
を加えて固化し、メタノール―酢酸エチルより再
沈殿させて、目的物2.12gを得る。 Rf〓=0.82 Rf〓=0.79 元素分析値(C32H50N8O11として) 計算値(%) C53.18 H6.97 N15.50 実測値(%) C52.85 H6.95 N15.28 11(a) Z―Thr―Asn―Leu―Gln―NHNH2の製
造 Z―Thr―Asn―Leu―Gln―NHNHBoc0.91
gをTFA8mlに溶解し、室温下15分間放置する。
無水エーテル80mlを加えて析出物をすばやく過
し、無水エーテルで洗浄後、水酸化カリウム―五
酸化リンを入れたデシケーター内で減圧乾燥して
目的物を得る。 Rf〓=0.34 11(b) H―Glu(OBzl)―Ser―Leu―Arg―Ser
―Lys(Tos)―Glu―OHの製造 Boc―Glu(OBzl)―Ser―Leu―Arg―Ser―
Lys(Tos)―Glu―OH1.00gをTFA8mlに溶解
し、室温下15分間放置する。無水エーテル80mlを
加えて析出物をすばやく過し、無水エーテルで
洗浄後、水酸化カリウム―五酸化リンを入れたデ
シケーター内で減圧乾燥して目的物を得る。 Rf〓=0.24 Rf〓=0.44 11(c) Z―Thr―Asn―Leu―Gln―Glu(OBzl)
―Ser―Leu―Arg―Ser―Lys(Tos)―Glu―
OHの製造 上記(a)で得たZ―Thr―Asn―Leu―Gln―
NHNH2をDMF10mlに溶解し、6N塩酸/ジオキ
サン0.63mlを加え、−15℃に冷却し、撹拌下亜硝
酸イソアミル0.17mlを加える。反応液がヒドラジ
ドテスト陰性になつた後TEA0.53mlの冷
DMF0.40ml溶液を少量宛滴下し中和させる。こ
のアジドを含む溶液を、上記(b)で得たH―Glu
(OBzl)―Ser―Leu―Arg―Ser―Lys(Tos)―
Glu―OH及びTEA0.24mlの冷DMF溶液10mlに加
え、混合液を−10〜−15℃下2時間、次いで4℃
下18時間撹拌反応させる。さらに上記(a)と同様に
してZ―Thr―Asn―Leu―Gln―
NHNHBoc1.16gをTFAで処理して得た反応物
を上記反応混合物に加え24時間同温度下に撹拌反
応させる。DMFを減圧留去し、残渣を水飽和の
n―ブタノールで抽出し、n―ブタノール飽和の
水で5回洗浄し、減圧蒸留する。残渣にエチルエ
ーテルを加えて固化させ、メタノール―酢酸エチ
ルより再沈殿させ更に熱メタノールで洗浄して、
目的物を得る。 11(d) H―Thr―Asn―Leu―Gln―Glu―Ser―
Leu―Arg―Ser―Lys(Tos)―Glu―OHの製
造 上記(c)で得たZ―Thr―Asn―Leu―Gln―Glu
(OBzl)―Ser―Leu―Arg―Ser―Lys(Tos)―
Glu―OHをメタノール50ml及び30%酢酸50mlと
の混液に懸濁させ、パラジウムブラツク少量を加
え、H2ガス導入下18時間撹拌する。反応終了後
触媒を吸引過により去し、液を減圧濃縮
し、メタノールを完全に留去後、得られる濃縮液
を、50%酢酸を溶出液とするセフアデツクスG―
25によりゲル過して、目的とするフラクシヨン
を集め凍結乾燥して目的物740mgを得る。 Rf〓=0.17 Rf〓=0.35 元素分析値(C66H99N17O23・C2H4O2・2H2Oと
して) 計算値(%) C48.91 H7.08 N15.64 実測値(%) C48.82 H6.63 N15.74 12 H―Thr―Asn―Gln―Glu―Ser―Leu―
Arg―Ser―Lys―Glu―OHの製造 H―Thr―Asn―Gln―Glu―Ser―Leu―Arg
―Ser―Lys(Tos)―Glu―OH51.0mgを、予め金
属ナトリウムで乾燥した液体アンモニアに溶解
し、撹拌下に金属ナトリウムの小片を溶液が青色
を30秒〜1分間保つまで加える。更に結晶
NH4Clを加え、過剰のナトリウムを中和し、室
温でアンモニアを完全に蒸発留去後、溶出液に50
%酢酸を用いたセフアデツクスG―25ゲルにより
ゲル過して、目的とするフラクシヨンを集め、
これを濃縮後水を加えて凍結乾燥して、目的物
(本発明ペプチド)32mgを得る。これを「ペプチ
ドB」と呼ぶ。 Rf〓=0.01 Rf〓=0.37 元素分析値(C53H93N17O21・C2H4O・3H2Oとし
て) 計算値(%) C46.57 H7.32 N16.79 実測値(%) C46.10 H6.98 N16.82 13 Z―Leu―Ser―OCH3の製造 H―Ser―OCH3・HCl1.81gのDMF25mlに溶
解し、TEA1.62mlを加え−10℃に氷冷する。撹
拌下Z―Leu―ONHS4.21gを加え、室温で18時
間撹拌を続ける。DMFを減圧留去し、残渣を酢
酸エチルで抽出し、酢酸エチル層を水洗し、無水
硫酸ナトリウムで乾燥後、酢酸エチルを減圧留去
する。得られる残渣にエチルエーテルを加えて固
化させ、酢酸エチル―エーテルより再沈殿させ
て、目的物2.68gを得る。 Rf〓=0.81 Rf〓=0.82 元素分析値(C18H26N2O6として) 計算値(%) C59.00 H7.15 N7.65 実測値(%) C58.62 H7.03 N7.65 14(a) H―Leu―Ser―OCH3・HClの製造 Z―Leu―Ser―OCH34.20gをメタノール40ml
と1N塩酸11.46mlとの混液に懸濁させ、パラジウ
ムブラツク少量を加え、H2ガス導入下18時間撹
拌する。反応終了後触媒を吸引過により去
し、液を減圧蒸留し、更に水を加え減圧蒸留す
る操作を3回繰返す。残渣を五酸化リンを入れた
デシケーター内で減圧乾燥して目的物を得る。 Rf〓=0.38 14(b) Z―Ser―Leu―Ser―OCH3の製造 Z―Ser―NHNH23.19gをDMF25mlに溶解
し、6N HCl/ジオキサン6.30mlを加え、−15℃
に冷却し、撹拌下亜硝酸イソアミル1.69mlを加え
る。反応液がヒドラジドテスト陰性になつた後
TEA5.29mlの冷DMF1.76ml溶液を少量宛滴下し
中和させる。このアジドを含む溶液を、上記(a)で
得たH―Leu―Ser―OCH3・HCl及びTEA1.60ml
の冷DMF溶液20mlに加え、混合液を−10〜−15
℃下2時間、次いで4℃下18時間撹拌する。
DMFを減圧留去し、残渣に水を加えて固化させ、
メタノール―酢酸エチルより再沈殿させて、目的
物4.11gを得る。 Rf〓=0.76 Rf〓=0.79 元素分析値(C21H31N3O8として) 計算値(%) C55.62 H6.89 N9.27 実測値(%) C55.48 H6.92 N9.18 15 Z―Ser―Leu―Ser―NHNH2の製造 Z―Ser―Leu―Ser―OCH32.00gをメタノー
ル40mlに溶解し、氷冷下100%NH2NH2
H2O1.10mlを加え、室温で18時間放置する。反応
終了後、溶媒を減圧留去し、エーテルを加えて固
化させ、過剰のNH2NH2・H2Oを水を加えて除
去し、メタノール―酢酸エチルより再沈殿させて
目的物1.91gを得る。 Rf〓=0.43 Rf〓=0.73 元素分析値(C20H31N5O7として) 計算値(%) C52.97 H6.89 N15.44 実測値(%) C52.85 H6.70 N15.44 16(a) Z―Ser―Leu―Ser―Thr―Asn―Leu―
Gln―Glu―Ser―Leu―Arg―Ser―Lys(Tos)
―Glu―OHの製造 Z―Ser―Leu―Ser―NHNH270.42mgをDMF5
mlに溶解し、6N塩酸/ジオキサンのDMF10倍希
釈液0.78mlを加え、−15℃に冷却し、撹拌下亜硝
酸イソアミルのDMF10倍希釈液0.20mlを加え、
反応液がヒドラジドテスト陰性になつた後、
TEAのDMF10倍希釈液0.65mlを少量宛滴下し中
和させる。このアジドを含む溶液を、上記11(d)で
得たH―Thr―Asn―Leu―Gln―Glu―Ser―Leu
―Arg―Ser―Lys(Tos)―Glu―OH151mgと
TEAのDMF10倍希釈液0.29mlの冷DMF5ml溶液
に加え、混合液を−10〜−15℃下2時間、次いで
4℃下18時間撹拌する。更にZ―Ser―Leu―Ser
―NHNH2117.36mgを加え、24時間反応させる。 DMFを減圧留去し、残渣を水飽和のn―ブタ
ノールで抽出し、n―ブタノール飽和の水で10
回、更にn―ブタノール飽和の2%酢酸で5回洗
浄し、減圧濃縮し、水を加えて更に減圧濃縮し、
完全にn―ブタノールを留去後、凍結乾燥する。
これを酢酸エチル―エーテルで再沈殿させて目的
物を得る。 16(b) H―Ser―Leu―Ser―Thr―Asn―Leu―
Gln―Glu―Ser―Leu―Arg―Ser―Lys―Glu
―OHの製造 Z―Ser―Leu―Ser―Thr―Asn―Leu―Gln―
Glu―Ser―Leu―Arg―Ser―Lys(Tos)―Glu―
OH150mgを予め金属ナトリウムで乾燥した液体
アンモニアに溶解し、撹拌下金属ナトリウムの小
片を溶液が青色を30秒〜1分間保つまで加える。
更に結晶NH4Clを加え、過剰のナトリウムを中
和し、室温でアンモニアを完全に蒸発後、溶出液
に50%酢酸を用いたセフアデツクスG―25ゲルに
よりゲル過して、フラクシヨンを集めこれを濃
縮後水を加えて凍結乾燥して、目的物(本発明ペ
プチド)94mgを得る。これを「ペプチドC」と呼
ぶ。 Rf〓=0.02 Rf〓=0.39 元素分析値(C65H120N20O26・C2H4O2・H2Oと
して) 計算値(%) C48.19 H7.24 N16.78 実測値(%) C47.93 H6.93 N16.49 17(a) Z―Tyr―Osuの製造 Z―Tyr―OH1.04gをTHF30mlに溶解し、N
―ヒドロキシサクシンイミド0.38gを加え、氷冷
後更にDCC0.68gを氷冷下に加え、混合物を4℃
で18時間撹拌する。析出物を吸引過により除
き、液を減圧濃縮し、残渣にエチルエーテルと
石油エーテルとを加えてデカンテーシヨン、乾燥
して目的物を得る。 17(b) H―Ser―Leu―Ser―OCH3の製造 参考例14(b)で得たZ―Ser―Leu―Ser―
OCH31.00gをメタノール20mlと10%酢酸20mlに
懸濁し、パラジウムブラツク少量を加え、H2
ス導入下14時間撹拌する。反応終了後触媒を吸引
過により去し、液を減圧濃縮後水を加えて
凍結乾燥して目的物を得る。 Rf〓=0.35 Rf〓=0.65 17(c) Z―Tyr―Ser―Leu―Ser―OCH3の製造 上記(b)で得たH―Ser―Leu―Ser―OCH3
DMF10mlに溶解し、TEA0.31mlを氷冷下に加
え、この溶液に上記(a)で得たZ―Tyr―OSuの冷
DMF溶液を撹拌下に加える。混合液を室温下18
時間撹拌し、DMFを減圧留去し、残渣に水を加
えて固化させ、メタノール―エーテル次いでメタ
ノール―酢酸エチルから再沈殿させて目的物1.08
gを得る。 Rf〓=0.78 Rf〓=0.82 元素分析値(C30H40N4O10として) 計算値(%) C58.43 H6.54 N9.09 実測値(%) C58.14 H6.58 N9.16 17(d) Z―Tyr―Ser―Leu―NHNH2の製造 Z―Tyr―Ser―Leu―Ser―OCH31.00gをメ
タノールに溶解し、氷冷下100%NH2NH2
H2O0.82mlを加え、室温で18時間放置する。メタ
ノールを減圧留去し、残渣にエチルエーテルを加
えて固化させ、水洗により過剰のNH2NH2
H2Oを除去し、メタノール―エーテルで再沈殿
後熱メタノールで洗浄して目的物0.81gを得る。 Rf〓=0.45 Rf〓=0.76 元素分析値(C29H40N6O9として) 計算値(%) C56.48 H6.54 N13.63 実測値(%) C56.12 H6.57 N13.58 18(a) Z―Tyr―Ser―Leu―Thr―Asn―Leu―
Gln―Glu―Ser―Leu―Arg―Ser―Lys(Tos)
―Glu―OHの製造 Z―Tyr―Ser―Leu―Ser―NHNH242.3mgを
DMF4mlに溶解し、6N塩酸/ジオキサンの
DMF10倍希釈液0.34mlを加え、−15℃に冷却し、
撹拌下亜硝酸イソアミルのDMF10倍希釈液0.09
mlを加え、反応液がヒドラジンテスト陰性になつ
た後、TEAのDMF10倍希釈液0.29mlを少量ずつ
滴下し中和させる。このアジドを含む溶液を、H
―Thr―Asn―Leu―Gln―Glu―Ser―Leu―Arg
―Ser―Lys(Tos)―Glu―OH50.0mgとTEAの
DMF10倍希釈液0.10の冷DMF4ml溶液に加え、
混合液を−10〜−15℃下2時間、次いで4℃下18
時間撹拌する。更にZ―Tyr―ser―Leu―Ser―
NHNH242.3mgを加え24時間反応させる。DMF
を減圧留去し、残渣を水飽和のn―ブタノール30
mlで抽出し、抽出液をn―ブタノール飽和水で10
回、次いでn―ブタノール飽和の2%酢酸で5回
洗浄する。有機層を集め減圧濃縮し、n―ブタノ
ールを留去後、凍結乾燥し、酢酸エチル―エーテ
ルで再沈殿させて目的物を得る。 18(b) H―Tyr―Ser―Leu―Ser―Thr―Asn―
Leu―Gln―Glu―Ser―Leu―Arg―Ser―Lys
―Glu―OHの製造 上記(a)で得たZ―Tyr―Ser―Leu―Ser―Thr
―Asn―Leu―Gln―Glu―Ser―Leu―Arg―Ser
―Lys(Tos)―Glu―OHを予め金属ナトリウム
で乾燥した液体アンモニアに溶解し、撹拌下金属
ナトリウムの小片を溶液が青色を30秒〜1分間保
つまで加える。更に結晶NH4Clを加え、過剰の
ナトリウムを中和し、室温でアンモニアを完全に
蒸発後、溶出液に50%酢酸を用いたセフアデツク
スG―25ゲルによりゲル過して、フラクシヨン
を集め目的物(本発明ペプチド)33mgを得る。こ
れを「ペプチドD」と呼ぶ。 Rf〓=0.02 Rf〓=0.35 元素分析値(C74H123N21O28・C2H4O2・4H2Oと
して) 計算値(%) C47.71 H7.30 N15.79 実測値(%) C47.32 H7.24 N15.82 <抗原の製造> 製造例 1 ペプチドの合成製造例7(c)で得たペプチドAの
5mg及び牛血清アルブミン(以下「BSA」と略
記する)の15mgを酢酸アンモニア緩衝液(0.1モ
ル、PH7.0)2mlにとかす。この溶液に0.1モルの
グルタールアルデヒド溶液0.11mlを加え、室温で
5時間撹拌する。その後反応混合物を48時間、4
℃で水1で透析する。透析中5回水を交換す
る。その後、ペプチド―蛋白質複合体を含有する
溶液を凍結乾燥してヒトα型インターフエロン抗
原(以下「抗原」と呼ぶ)15mgを得る。 この抗原は、BSA1モルに対してペプチドA
が平均10モル結合したものである。尚このペプチ
ドAとBSAとの結合率は、得られる抗原を更
にセフアデツクスG―50(溶出液:生理食塩水、
検出:0D280nm、流出速度:3ml/時間、分取
量:1mlずつ)でゲル過した際、未反応BSA
及びペプチドAの存在は認められないことより、
該ゲル過によつてBSAに結合したペプチドA
のフラクシヨンと他の生成体(ペプチドAの2量
体)のフラクシヨンとを分離し、ペプチド2量体
の標準濃度の検量線を作成して、上記2量体の量
を求め、これを出発原料として用いたペプチドA
の量から差し引いた値がすべてBSAに結合して
いるとして求めたものである。以下の抗原製造例
により得られる各抗原についても同様である。 製造例 2 ペプチド合成製造例12で得たペプチドBの5mg
及びBSAの5mgを酢酸アンモニウム緩衝液(0.1
モル、PH7.0)2mlにとかす。この溶液に0.1モル
のグルタールアルデヒド溶液0.11mlを加え、室温
で5時間撹拌する。その後反応混合物を48時間、
4℃で水1で透析する。透析中5回水を交換す
る。その後、ペプチド―蛋白質複合体を含む溶液
を凍結乾燥してヒトα型インターフエロン抗原
(以下「抗原」と呼ぶ)9mgを得る。 得られた抗原は、BSA1モルに対してペプチ
ドBが平均9モル結合したものである。 製造例 3 ペプチド合成製造例16(b)で得たペプチドCの5
mg及びBSA25mgを水4mlに溶解する。この溶液
にジシクロヘキシルカーボジイミド(DCC)200
mgを加え、室温で5時間撹拌する。次に反応混合
物を水2を用い4℃にて48時間要して透析す
る。透析中5回水を交換する。その後ペプチド―
蛋白質複合体を含む溶液を凍結乾燥してヒトα型
インターフエロン抗原(以下「抗原」と呼ぶ)
28mgを得る。 得られた抗原は、BSA1モルに対してペプチ
ドCが平均12モル結合したものである。 製造例 4 ペプチド合成製造例18(b)で得たペプチドDの4
mg及びBSAの20mgを酢酸アンモニウム緩衝液
(0.1モル、PH7.0)2mlに溶かす。この溶液に0.1
モルのグルタールアルデヒド溶液0.11mlを加え、
室温で5時間撹拌する。その後反応混合物を48時
間、4℃で水1で透析する。透析中5回水を交
換する。その後、ペプチド―蛋白質複合体を含む
溶液を凍結乾燥してヒトα型インターフエロン抗
原(以下「抗原」と呼ぶ)22mgを得る。 得られた抗原は、BSA1モルに対してペプチ
ドDが平均9モル結合したものである。 <抗体の製造> 抗原の製造例3で得た抗原の100μgを1.5ml
の生理食塩水に溶解後、之にフロインドの補助液
1.5mlを加えて調製した懸濁液を、7羽の兎(2.5
〜3.0Kg)に皮下投与し、2週間毎に6回同量投
与する。更にその後1カ月毎に3回、最初投与し
た量と同量を投与する。最終投与後7日経過して
のち試験動物から採血し、遠心分離して抗血清を
採取して、ヒトα型インターフエロン抗体(以下
「抗原」と呼ぶ)を得る。 製造例 2〜4 抗原の製造例1,2及び4で得た抗原,及
びを用い、上記製造例1と夫々同様にしてヒト
α型インターフエロン抗体(抗体,及び)
を夫々得る。 ・ 標識ペプチドの製造 H―Tyr―Ser―Leu―Ser―Thr―Ans―Leu
―Gln―Glu―Ser―Leu―Arg―Ser―Lys―Glu
―OH即ちペプチドDをクロラミンTを用いる方
法で以下の通り標識化する。 即ち上記ペプチド5μgの0.5モルのリン酸塩緩
衝液(PH7.0)20μにNa〔125〕(carrier free
N.E.N.)1ミリキユーリーの0.5モルリン酸塩緩
衝液を加え、次にクロラミンT70mg/mlの0.5モ
ルリン酸塩緩衝液20μを加える。室温で30秒間
撹拌して60mg/mlのメタ重亜硫酸ナトリウム
(Na2S2O5)の0.5Mリン酸塩緩衝液50μを加え
ることで反応を終わらせる。次いで反応液に1%
の冷沃化ナトリウム水溶液100μを加え、反応
混合物をセフアデツクスG―25のカラム(1.0×
30cm)にかけ(溶出液0.25%BSA、10mM
EDTA及び0.02%NaN3を含む0.05モルリン酸塩
緩衝液、PH7.4)、125で標識されたペプチドDを
得る。 ・ 力価の測定 上記で得られる抗体の力価を次の通り測定す
る。即ち抗体をそれぞれ生理食塩水で10,102
103,104,105……倍に希釈(イニシヤル)し、
これらの夫々100μに、125標識ペプチド(上
記で得られる標識ペプチドを約9500cpmになるよ
うに希釈したもの)0.1ml及び0.05モルリン酸塩
緩衝液(PH=7.4)〔0.25%BSA、10mM EDTA
及び0.02%NaN3を含む〕0.2mlを加え、4℃で24
時間インキユベートし、生成した抗体と125
識抗原との結合体を、デキストラン―活性炭法及
び遠心分離法(4℃、30分間、3000rpm)により
未反応(結合しない)125標識ペプチドから分
離し、その放射線をカウントし、各希釈濃度にお
ける抗体の125標識ペプチドとの結合率(%)
を測定する。縦軸に抗体の125標識ペプチドと
の結合率(%)及び横軸に抗体の希釈倍率(イニ
シヤル濃度)をとり、各々の濃度において結合率
をプロツトする。結合率が50%となる抗体の希釈
倍率即ち抗体の力価を求める。その結果抗体の
力価は、50000であつた。 ・ 抗体のヒトα型インターフエロン特異性試験 供試試料として各種濃度のヒトβ型インターフ
エロン(東京都総合臨床研究所製、比活性3×
106U/mgプロテイン)、ペプチドの合成製造例16
(b)で得たペプチドC即ちヒトα型インターフエロ
ンのペプチド鎖及びヒトα型インターフエロン
〔林原研究所製、リムホブラストイドインターフ
エロン〕を使用する。また標準希釈剤として0.25
%BSA、5mM EDTA及び0.02%のNaN3を含
む0.05モルリン酸塩緩衝液(PH7.4)を使用する。 各々の試験管に、標準希釈剤0.2ml、供試試料
0.1ml、抗体の製造例3で得た抗体の0.1ml及び
125標識ペプチド(上記で得られる標識ペプチ
ドを約2800cpmになるように希釈したもの)0.1
mlを入れ、4℃で72時間インキユベートした後、
ノーマルブタ血清(normal porcine serum)を
0.1ml加え、次いでデキストランで被膜した活性
炭の懸濁液0.5mlを加え、4℃で30分間放置し、
次に4℃、3000rpmの条件下に30分間遠心分離を
行ない、抗体と125標識ペプチドとの結合体及
び未反応(結合しない)125標識ペプチドを分
離し、その放射線をカウントし、用いた抗体の力
価に相当する結合率(Bo)を100%として、供試
試料の濃度及び希釈率における抗体と125標識
ペプチドとの結合体(B)の百分率を求める。得られ
る結果より抗体は、ヒトα型インターフエロン
に対する反応性とヒトβ型インターフエロンに対
する反応性において明確に区別され、このことよ
りβ型インターフエロンに低交叉性の、特異性の
高い抗体であることが判る。 また抗体,及びについても同様の試験を
行なつた結果抗体と略々同様にヒトα型インタ
ーフエロンに対し特異性の高い抗体であることが
確認された。
[Table] [In the above [] to [], A is a protecting group for an amino group, B is an active group for a hydroxyl group or a carboxyl group, C is a protecting group for a guanidino group of arginine, D
represents a protecting group for the ε-amino group of lysine, E represents a protective group for the γ-carboxyl group of glutamic acid, and F represents a protective group for the carboxyl group. ] In the above, preferable A is:
Boc, Z, p-methoxybenzyloxycarbonyl group, etc., B is preferably an active ester residue such as N-hydroxysuccinimide, p-nitrophenyl ester, or a mixed acid anhydride such as isobutyloxycarbonyl group. residues, azides, etc.
Preferred examples of C include nitro, tosyl, etc., preferred examples of D include tosyl, E.
Preferred examples include benzyloxy, etc.
Preferred examples of F include alkyl ester residues and tert-butoxycarbonyl hydrazide. In the above method [], amino acid (2) and amino acid
The reaction with (3) can be carried out in the presence of a solvent. As the solvent, various solvents known to be usable in the peptide condensation reaction, such as anhydrous or hydrous dimethylformamide, dimethyl sulfoxide, pyridine, chloroform, dioxane,
Dichloromethane, tetrahydrofuran, ethyl acetate, N-methylpyrrolidone, hexamethylphosphoric triamide, or a mixed solvent thereof may be used. The ratio of amino acid (3) and amino acid (2) to be used is not particularly limited and can be appropriately selected within a wide range, but usually the latter is used in an equal amount to 50% of the former.
It is best to use twice the amount, preferably the same amount to 1.5 times the amount. The reaction temperature is within the range known to be usable for peptide bond-forming reactions, usually from about -40 to about 60
℃, preferably selected from the range of about -20 to about 40℃. The reaction time is generally about several minutes to 30 hours. In method [], the reaction between peptide (5) and amino acid (6), the reaction between peptide (8) and amino acid (9), the reaction between peptide (11) and amino acid (12), and the reaction between peptide (14) and amino acid ( Reaction with amino acid (6) and amino acid (4)
The reaction with 5) can be carried out in the same manner as the reaction between amino acid (2) and amino acid (3) above. Also, in method [], the reaction between amino acid (18) and amino acid (19), the reaction between peptide (21) and amino acid (22), the reaction between peptide (24) and amino acid (25), and peptide (27)
Reaction between and peptide (28), reaction between amino acid (19) and amino acid (31) in method [], peptide (33)
Reaction of and amino acid (6) and reaction of peptide (35) and peptide (36), and reaction of peptide (39) and amino acid (40) and peptide (42) in method []
The reaction between peptide (36) and peptide (36) can also be carried out in the same manner as above. Peptides (4), (7), obtained by each of the above reactions
(10), (13), (16), (20), (23), (26), (29), (32), (3
The elimination reaction of protecting group A in 4), (37) and (43) is as follows:
It is carried out in the usual manner. Such methods include, for example, reductive methods (e.g. hydrogenation using catalysts such as palladium or palladium black, reduction with metallic sodium in liquid ammonia), acidolysis (e.g. trifluoroacetic acid, hydrogen fluoride, methanesulfonic acid, hydrogen bromide, etc.). Acidolysis with strong acids such as acids), etc. Hydrogenation using the above catalyst can be carried out, for example, at a hydrogen pressure of 1
It can be carried out at atmospheric pressure and 0 to 40°C. The amount of catalyst used is usually about 100 mg to 1 g, and generally 1 to 48 g.
The reaction completes in about an hour. In addition, the above acidolysis is carried out without a solvent, usually at about 0 to 30°C, preferably at 0.
This can be carried out at ~20°C for about 15 minutes to 1 hour. The amount of acid used is usually about 5 to 10 times the amount of the raw material compound. Furthermore, the above reduction with metallic sodium in liquid ammonia is carried out using such amount of metallic sodium that the reaction solution is colored permanent blue for about 30 seconds to 10 minutes, and is usually carried out at -40 to -
It can be carried out at around 70℃. Also, protecting group C of peptide (10) and peptide (16),
Protecting group D of (29), (37) and (45), peptide (4) and (
6)
protecting group E and peptides (26), (34), (43) and (4
The protecting group F in 6) can be prepared by the above-mentioned reductive method, respectively.
It can be deprotected similarly. Amino acids (2), (3), (6), (9), (15), (18), (19), (22), (25) used in the above methods () to ()

(31), (40) and (45) may be known commercial products, and peptides (12), (27), (35) and (42) may be known commercial products or mixed acid anhydride method, azide It is possible to use those obtained by chemical methods. The above mixed acid anhydride method is carried out using an alkylhalocarboxylic acid such as methyl chloroformate, methyl bromoformate, ethyl chloroformate, ethyl bromoformate, isobutyl chloroformate, etc. in the presence of a basic compound in a suitable solvent. . Examples of basic compounds include triethylamine, trimethylamine, pyridine, dimethylaniline, N-methylmorpholine, 1,5-diazabicyclo[4,3,
0] nonene-5 (DBN), 1,5-diazabicyclo[5,4,0] undecene-5 (DBU), 1,
Organic bases such as 4-diazabicyclo[2,2,2]octane (DABCO) and inorganic bases such as potassium carbonate, sodium carbonate, potassium bicarbonate, and sodium bicarbonate can be used. Examples of solvents include various solvents commonly used in the mixed acid anhydride method, specifically halogenated hydrocarbons such as methylene chloride, chloroform, and dichloroethane, aromatic hydrocarbons such as benzene, toluene, and xylene, diethyl ether, Ethers such as tetrahydrofuran and dimethoxyethane, esters such as methyl acetate and ethyl acetate, aprotic polar solvents such as N,N-dimethylformamide, dimethyl sulfoxide, and hexamethylphosphoric triamide, etc. can be used.
The reaction is usually carried out at -20 to 100°C, preferably -20 to 50°C, and the reaction time is generally 5 minutes to 10 hours, preferably 5 minutes to 2 hours. The azidation method is carried out by first reacting an activated carboxyl group with an alcohol such as methyl alcohol, ethyl alcohol, or benzyl alcohol with hydrazine hydrate in an appropriate solvent. It will be done. As the solvent, for example, dioxane, dimethylformamide, dimethyl sulfoxide, or a mixed solvent thereof can be used. The amount of hydrazine hydrate to be used is usually 5 to 20 times, preferably 5 to 10 times, by molar amount relative to the activated carboxyl group. The reaction is usually carried out at 50°C or lower, preferably -
It is carried out at 20-30°C. In this way, a compound (hydrazine derivative) in which the carboxyl group of the terminal amino acid is substituted with hydrazine can be produced. A compound in which the carboxyl group of the terminal amino acid is substituted with azide is produced by reacting the hydrazine derivative obtained above with a nitrite compound in a suitable solvent in the presence of an acid. Hydrochloric acid is usually used as the acid. As the solvent, for example, dioxane, dimethylformamide, dimethyl sulfoxide, or a mixed solvent thereof can be used. Further, as the nitrite compound, for example, sodium nitrite, isoamyl nitrite, nitrosyl chloride, etc. can be used. The nitrite compound is generally used in an equimolar to 2-fold molar amount, preferably in an equimolar to 1.5-fold molar amount, relative to the hydrazine derivative. The reaction is usually carried out at -20 to 0°C, preferably -20 to -10°C, and is generally completed in about 5 to 10 minutes. The peptide (28) in the above method [] can be obtained by removing the protecting groups A and E of the peptide (16), and the peptide (36) in the above method []
can be obtained by removing the protecting group A of peptide (29). Such deprotecting group reactions may be carried out in accordance with the method described above. The peptide of general formula (1) produced as described above is isolated and purified from the reaction mixture by peptide separation means such as extraction, partitioning, column chromatography, etc. In this way, the synthetic peptide of the present invention represented by general formula (1), ie, the C-terminal peptide of human lymphoblastoid interferon, is obtained. The synthetic peptide thus obtained is
By introducing radioactive iodine such as I 125 or I 131 , it can be used as a labeled peptide, which is a raw material for producing labeled antigens used in radioim assay (RIA method). The above radioactive iodine can be introduced by a conventional iodination method, for example, an oxidative iodination method using chloramine T [WMHunter and FC
Greenwood; Nature, 194 , P495 (1962),
Biochem. J. 89 , P114 (1963)]. Specifically, for example, a suitable solvent such as
This is carried out in a solvent such as 0.2M phosphate buffer (PH=7.4) in the presence of chloramine T at around room temperature for about 10 to 30 seconds. The ratio of peptide, radioactive iodine, and chloramine T to be used is, for example, when introducing one radioactive iodine per tyrosine, approximately 1 millicury of radioactive iodine and 10 millicuries of chloramine T per nanomole of tyrosine molecules contained in the peptide. ~
It is best to use about 100 nanomoles of radioactive iodine, and when introducing two radioactive iodines per tyrosine, use about 2 millicuries of radioactive iodine and about 10 to 100 nanomoles of chloramine T per 1 nanomol of tyrosine molecules contained in the peptide. Good to use.
The radioactive iodine-labeled peptide thus produced is isolated and purified by conventional separation means such as extraction, partitioning, column chromatography, dialysis, etc. The peptides thus obtained can be stored by lyophilization, if necessary. Furthermore, the synthetic peptide of the present invention represented by the above general formula (1) can be used as a hapten for producing human α-type interferon antigen. The method for producing the human α-type interferon antigen will be described in detail below. The human α-type interferon antigen is produced by using at least one peptide of the present invention as a hapten and reacting this with a suitable carrier in the presence of a hapten-carrier binding reagent. As the carrier bound to the hapten in the above method, a wide range of high-molecular natural or synthetic proteins commonly used in the preparation of antigens can be used. Examples of the carrier include animal serum albumins such as horse serum albumin, bovine serum albumin, rabbit serum albumin, human serum albumin, and sheep serum albumin, horse serum globulin, bovine serum globulin, rabbit serum globulin, human serum globulin,
Animal serum globulin such as sheep serum globulin, horse thyroglobulin, bovine thyroglobulin, rabbit thyroglobulin, human thyroglobulin, animal thyroglobulin such as ovine thyroglobulin, horse hemoglobulin, bovine hemoglobulin, rabbit hemoglobulin, Animal hemoglobulins such as human hemoglobulin and sheep hemoglobulin, animal hemocyanins, and proteins extracted from roundworms (Ascaris extract, Japanese Patent Application Laid-Open No. 16414/1983, J.
Immun., 111 , 260-268 (1973), J.Immun.
122, 302-308 (1979), J.Immun., 98 , 893-900
(1967) and Am.J.Physiol., 199 , 575-578
(1960) or further purified versions of these), polylysine, polyglutamic acid,
Examples include lysine-glutamic acid copolymers, copolymers containing lysine or ornithine, and the like. As the hapten-carrier binding reagent, a wide variety of those commonly used in the production of antigens can be used. Specifically, crosslinking between amino groups, aliphatic dialdehydes such as glyoxal, malondialdehyde, glutaraldehyde, succinaldehyde, and adipaldehyde, and crosslinking between thiol groups. For example, dimaleimide compounds such as N,N'-o-phenylene dimaleimide and N,N'-m-phenylene dimaleimide, for example, metamaleimide benzoyl-N-hydroxy for crosslinking amino groups and thiol groups. Succinimide ester, 4
-(maleimidomethyl)-cyclohexane-1-
Maleimide carboxyl-N-hydroxysuccinimide ester compounds such as carboxyl-N'-hydroxysuccinimide ester, reagents used in the usual peptide bond-forming reaction to form an amide bond between an amino group and a carboxyl group, such as N,N-dicyclohexylcarbodiimide, N ―
Ethyl-N'-dimethylaminocarbodiimide,
Examples include dehydration condensation agents such as carbodiimides such as 1-ethyl-3-diisopropylaminocarbodiimide and 1-cyclohexyl-3-(2-morpholinyl-4-ethyl)carbosiimide. In addition, as the above hapten-carrier binding reagent,
It is also possible to use a combination of a diazonium arylcarboxylic acid such as p-diazonium phenylacetic acid and a conventional peptide bond-forming reaction reagent, such as the above dehydration condensation agent. The above antigen production reaction can be carried out, for example, in an aqueous solution or
The reaction is carried out in a normal buffer solution having a pH of 7 to 10, preferably a buffer solution having a pH of 8 to 9, at a temperature of 0 to 40°C, preferably around room temperature. The reaction is usually carried out for about 1 to 24 hours, preferably 3
Completed in ~5 hours. Typical buffer solutions used in the above may include the following. 0.2N sodium hydroxide - 0.2M boric acid - 0.2M potassium chloride buffer, 0.2M sodium carbonate - 0.2M boric acid - 0.2M potassium chloride buffer, 0.05M sodium tetraborate - 0.2M boric acid -
0.05M sodium chloride buffer, 0.1M potassium dihydrogen phosphate-0.05M sodium tetraborate buffer In the above, the proportions of hapten, hapten-carrier binding reagent, and carrier can be determined as appropriate;
Generally, it is preferable to use the carrier in an amount of 2 to 6 times the weight of the hapten, preferably 3 to 5 times the weight, and the hapten-carrier binding reagent to be used in an amount of about 5 to 10 times the weight. Through the above reaction, a human α-type interferon antigen consisting of a peptide-carrier complex in which a carrier and a hapten are bound is obtained through the mediation of a hapten-carrier binding reagent. The antigen obtained after completion of the reaction can be easily isolated and purified by conventional methods such as dialysis, gel filtration, and fractional precipitation. Moreover, the antigen can be preserved by conventional freeze-drying methods. In this way, a human α-interferon antigen consisting of a complex of at least one C-terminal peptide of human α-interferon of the present invention and a carrier is obtained. The antigen usually has an average of 5 to 20 moles of peptide bound to 1 mole of protein, and all of these antigens are highly reproducible and enable the production of highly specific antibodies against human α-type interferon. . Particularly preferred is one in which the binding molar ratio of the peptide to the above-mentioned protein is 1:8 to 15 because it has even higher specificity and can produce antibodies with high titer and high sensitivity. Preparation of antibodies using the antigen obtained above is carried out as follows. That is, it is carried out by administering the above-mentioned antigen to a mammal and collecting antibodies produced in the living body. There are no particular restrictions on the mammal used for antibody production, but it is usually desirable to use rabbits or guinea pigs. For antibody production, a predetermined amount of the antigen obtained above is diluted with physiological saline to an appropriate concentration and mixed with Complete Freubd's Adjuvant to prepare a suspension. may be administered to a mammal. For example, the above suspension is injected intradermally (antigen amount: 0.5-5 mg/time) into rabbits, and then every two weeks,
Immunization may be carried out by administering for 10 months, preferably 4 to 6 months. Antibodies are collected by collecting blood from the immunized animal at a time when large amounts of antibodies are produced after the final administration of the suspension, usually 1 to 2 weeks after the final administration, and centrifuging the blood, followed by separating and collecting the serum. It is done by doing. According to the above, based on the specificity of the antigen used, it is possible to obtain antibodies with excellent specificity for human α-type interferon, high titer, and high sensitivity. The thus obtained human α-interferon antibody can be used, for example, in the RIA method to quantify human α-interferon with high accuracy. Further, the antibody can be used in enzyme immunoassay (EIA) method, florescence immunoassay (FIA) method, etc. by labeling it with an enzyme or a fluorescent substance. Furthermore, the antibody can be made into an insolubilized antibody by reacting with a known insolubilizing substance. In order to explain the present invention in more detail, examples of the production of the peptide of the present invention, an antigen using the same, and an antibody from the antigen will be given below, but the present invention is not limited thereto. The Rf value in each production example was measured by thin layer chromatography on silica gel using the following mixed solvent. Rf〓...1-butanol-acetic acid-water (4:1:
5) Rf =...1 Butanol-pyridine-acetic acid-water (15:10:3:12) <Synthesis of peptide> Production example 1 1 Production of Z-Lys (Tos)-Glu (OBzl)-OBzl H-Glu (OBzl) - Dissolve 4.18 g of OBzl.Tos in 30 ml of dimethylformamide (DMF), add 1.21 ml of triethylamine (TEA), and cool while stirring. Separately, 4.35 g of Z-Lys(Tos)-OH was dissolved in 30 ml of tetrahydrofuran (THF), 0.98 ml of N-methylmorpholine was added, the mixture was cooled to -15°C, and 1.27 ml of isobutyl chloroformate was added dropwise with stirring. dripping
After 30 seconds, add the cold DMF solution prepared above to the solution,
The mixture was stirred at 0°C for 5 minutes, then in a 40°C water bath for 1 minute, and then at 15°C for 30 minutes. THF and DMF are distilled off from the reaction solution under reduced pressure, and the residue is extracted with ethyl acetate. The extract is washed successively with 1N citric acid, saturated brine, saturated aqueous sodium bicarbonate, and saturated brine, dried over anhydrous sodium sulfate, and then ethyl acetate is distilled off. Ethyl ether is added to the obtained oily residue to solidify it, and this is reprecipitated from ethyl acetate-ether to obtain 5.37 g of the desired product. Rf = 0.96 Rf = 0.90 Elemental analysis value (as C 40 H 45 N 3 O 9 S) Calculated value (%) C64.59 H6.10 N5.65 Actual value (%) C64.13 H5.95 N5. 63 2(a) Production of H-Lys(Tos)-Glu-OH Dissolve 5.21 g of Z-Lys(Tos)-Glu(OBzl)-OBzl in a mixture of 80 ml of methanol and 20 ml of 10% acetic acid, and add a small amount of palladium black. and stir overnight under H 2 gas introduction. After the reaction is completed, the catalyst is removed by suction, the liquid is distilled under reduced pressure, and the residue is poured into water and freeze-dried to obtain the desired product. Rf=0.29 Rf=0.52 2(b) Production of Z-Ser-Lys(Tos)-Glu-OH Dissolve 2.13 g of Z-Ser-NHNH 2 in 20 ml of DMF, add 4.20 ml of 6N hydrochloric acid/dioxane, and - Cool to 15°C and add 1.13 ml of isoamyl nitrite while stirring.
After the reaction solution becomes hydrazide test negative
Neutralize by dropping a small amount of a solution of 3.53 ml of TEA and 1.20 ml of cold DMF. This azide-containing solution was mixed with H-Lys(Tos)-Glu-OH obtained in (a) above and 1.96 ml of TEA.
The mixture was stirred at -10 to -15°C for 2 hours and then at 4°C for 20 hours. DMF was distilled off under reduced pressure, the residue was extracted with ethyl acetate, the ethyl acetate layer was washed with 1N citric acid and saturated brine,
After drying over anhydrous sodium sulfate, ethyl acetate was distilled off under reduced pressure. Ethyl ether is added to the resulting residue to solidify it, and reprecipitation is performed from ethyl acetate-ether to obtain 4.14 g of the desired product. Rf=0.64 Rf=0.65 Elemental analysis value (as C 29 H 38 N 4 O 11 S・1/2H 2 O) Calculated value (%) C52.80 H5.96 N8.49 Actual value (%) C52. 87 H5.69 N8.46 3(a) Production of H-Ser-Lys (Tos)-Glu-OH Mix 4.03 g of Z-Ser-Lys (Tos)-Glu-OH with 60 ml of methanol and 40 ml of 10% acetic acid. Add a small amount of palladium black and stir overnight while introducing H 2 gas. After the reaction is completed, the catalyst is removed by suction, the liquid is distilled under reduced pressure, and the residue is poured into water and freeze-dried to obtain the desired product. Rf=0.23 Rf=0.48 3(b) Z―Arg(NO 2 )―Ser―Lys(Tos)―Glu
-Production of OH H-Ser-Lys (Tos)-Glu-OH obtained in (a) above
Dissolve in 20 ml of DMF, add 1.74 ml of TEA, and cool while stirring. On the other hand, Z―Arg(NO 2 )―OH2.41g
Dissolved in THF20ml, N-methylmorpholine 0.70
ml and cooled to -15°C, and 0.86 ml of isobutyl chloroformate was added dropwise while stirring. After 30 seconds of dropping, the cold DMF solution prepared above was added to the solution, and the mixture was reduced to 0.
Stir at 15°C for 5 minutes, then in a 40°C water bath for 1 minute, and then at 15°C for 30 minutes. THF and DMF are distilled off from the reaction solution under reduced pressure, and the residue is extracted with 2% acetic acid-saturated butanol. The extract is washed five times with 2% acetic acid saturated with n-butanol, distilled under reduced pressure, replaced with water to remove acetic acid, and further replaced with methanol to remove water. Ethyl ether is added to the resulting oily residue to solidify it, and this is reprecipitated from ethyl acetate-methanol to obtain 4.09 g of the desired product. Rf=0.42 Rf=0.65 Elemental analysis value (as C 35 H 49 N 9 O 14 S・1/2H 2 O) Calculated value (%) C48.83 H5.85 N14.64 Actual value (%) C49. 22 H6.05 N14.11 4 Production of Z-Ser-Leu-NHNH 2 Dissolve 2.54 g of Z-Ser-NHNH 2 in 20 ml of DMF, add 5.00 ml of 6N hydrochloric acid/dioxane, cool to -15°C, and stir. Add 1.34 ml of isoamyl nitrite. After the reaction solution becomes hydrazide test negative
Drop a small amount of a solution of 4.20 ml of TEA and 1.40 ml of cold DMF to neutralize. This azide-containing solution was mixed with H-Leu
-Cold DMF with 1.96 g of OC 2 H 5 HCl and 1.40 ml of TEA
Add to 15 ml of solution and stir the mixture at -10 to -15°C for 2 hours, then at 4°C for 20 hours. DMF was distilled off under reduced pressure, the residue was extracted with ethyl acetate, the ethyl acetate layer was washed successively with 1N citric acid, saturated brine, saturated aqueous sodium bicarbonate solution and saturated brine, dried over anhydrous sodium sulfate, and then washed with ethyl acetate. is distilled off under reduced pressure. Petroleum ether is added to the resulting residue and washed by decantation. Dry the oily substance under reduced pressure in a desiccator, and add 50ml of methanol to the dried substance.
Dissolve 100% hydrazine monohydrate 2.50% under ice cooling.
ml and left at room temperature for 20 hours, then methanol was distilled off under reduced pressure. Ethyl ether was added to the residue to solidify it, which was dried in a desiccator, washed with water to remove excess hydrazine monohydrate, and reprecipitated from methanol-ethyl acetate to obtain the desired product 2.68.
get g. Rf = 0.73 Rf = 0.76 Elemental analysis value (as C 17 H 26 N 4 O 5 ) Calculated value (%) C55.73 H7.15 N15.29 Actual value (%) C55.72 H7.01 N15.42 5(a) Production of H-Arg-Ser-Lys(Tos)-Glu-OH Z-Arg(NO 2 )-Ser-Lys(Tos)-Glu-
Suspend 2.00 g of OH in a mixture of 30 ml of methanol and 30 ml of 50% acetic acid, and add a small amount of palladium black.
Stir for 36 hours under H2 gas introduction. After the reaction is complete, the catalyst is removed by suction, the liquid is distilled under reduced pressure, the residue is poured into water and freeze-dried, and after 18 hours it is dissolved in water again and freeze-dried to obtain the desired product. Rf = 0.05 Rf = 0.41 5(b) Z―Ser―Leu―Arg―Ser―Lys (Tos)―
Production of Glu-OH Dissolve 1.03 g of Z-Ser-Leu-NHNH 2 in 15 ml of DMF, add 1.41 ml of 6N hydrochloric acid/dioxane, and -15
Cool to ℃ and add 0.38 ml of isoamyl nitrite while stirring. After the reaction solution becomes hydrazide test negative
Drop a small amount of a solution of 1.18 ml of TEA and 0.40 ml of cold DMF to neutralize. This azide-containing solution was mixed with the H-Arg-Ser-Lys(Tos)-Glu-OH obtained in (a) above and
Add 0.66 ml of TEA to 10 ml of cold DMF solution and stir the mixture for 2 hours at -10 to -15°C and then for 20 hours at 4°C. DMF was distilled off under reduced pressure, and the residue was converted into a water-saturated n-
Extract with butanol, wash the butanol layer five times with n-butanol saturated water, and evaporate under reduced pressure. Add ethyl ether to the resulting residue to solidify it, and reprecipitate from methanol-ethyl acetate to obtain 1.92 g of the desired product. Rf=0.33 Rf=0.69 Elemental analysis value (as C 44 H 66 N 10 O 15 S・2H 2 O) Calculated value (%) C50.66 H6.76 N13.43 Actual value (%) C50.57 H6 .51 N15.34 6(a) H―Ser―Leu―Arg―Ser―Lys(Tos)―
Production of Glu-OH Z-Ser-Leu-Ser-Lys(Tos)-Glu-
Suspend 1.84 g of OH in a mixture of 30 ml of methanol and 30 ml of 10% acetic acid, and add a small amount of palladium black.
Stir for 13 hours under H2 gas introduction. After the reaction is completed, the catalyst is removed by suction, the liquid is distilled under reduced pressure, and the residue is poured into water and freeze-dried to obtain the desired product. Rf = 0.09 Rf = 0.53 6(b) Boc―Glu(OBzl)―Ser―Leu―Arg―Ser
-Lys(Tos)-Glu-OH production H-Ser-Leu-Arg-Ser-Lys obtained in (a) above
Dissolve (Tos)-Glu-OH in 20ml of DMF,
Add 0.51ml of TEA under ice-cooling and add Boc-Glu.
(OBzl) - Add 0.95g of ONHS and stir the mixture at room temperature.
Stir for 24 hours. DMF is distilled off under reduced pressure, the residue is extracted with water-saturated n-butanol, and the butanol layer is washed five times with n-butanol-saturated water. The butanol layer was distilled off under reduced pressure, and ethyl ether was added to the resulting residue to solidify it, followed by reprecipitation from methanol-ethyl acetate to obtain 1.70 g of the desired product. Rf=0.42 Rf=0.60 Elemental analysis value (as C 53 H 81 N 11 O 18 S・2H 2 O) Calculated value (%) C51.82 H6.97 N12.55 Actual value (%) C51.27 H6 .58 N15.47 7(a) Boc―Glu―Ser―Leu―Arg―Ser―Lys
Production of (Tos)-Glu-OH Boc-Glu(OBzl)-Ser-Leu-Arg-Ser-
Lys(Tos)-Glu-OH150mg with methanol 30ml
Dissolve in a mixture with 30 ml of 10% acetic acid, add a small amount of palladium black, and stir for 18 hours while introducing H 2 gas.
After the reaction is completed, the catalyst is removed by suction, the liquid is distilled under reduced pressure, and the residue is poured with water and freeze-dried to obtain the desired product. 7(b) H-Glu-Ser-Leu-Arg-Ser-Lys
Production of (Tos)-Glu-OH Boc-Glu-Ser-Leu-Arg- obtained in (a) above
Dissolve Ser―Lys(Tos)―Glu―OH in THF,
Leave at room temperature for 15 minutes. Add about 30 ml of anhydrous ether, filter the precipitate, wash with anhydrous ether, and dry under reduced pressure in a desiccator containing potassium hydroxide-phosphorus pentoxide to obtain the desired product. 7(c) H-Glu-Ser-Leu-Arg-Ser-Lys-
Production of Glu-OH H-Glu-Ser-Leu-Arg-Ser obtained in (b) above
-Lys(Tos)-Glu-OH is dissolved in liquid ammonia previously dried with sodium metal and small pieces of sodium metal are added under stirring until the solution remains blue for 30 seconds to 1 minute. Further, crystalline NH 4 Cl was added to neutralize excess sodium, and ammonia was completely evaporated and distilled at room temperature. The target product ( 58 mg of the peptide of the present invention is obtained. This is called "peptide A". Rf=0.04 Rf=0.34 Elemental analysis value (as C 34 H 61 N 11 O 14・C 2 H 4 O 2・3H 2 O) Calculated value (%) C44.95 H7.44 N16.02 Actual value ( %) C45.05 H7.11 N15.84 8(a) Production of H-Gln-NHNHBoc 16.00 g of Z-Gln-NHNHBoc in 100 g of methanol
ml, add a small amount of palladium black and add H2
Stir for 18 hours under gas introduction. After the reaction is completed, the catalyst is removed by suction, the liquid is distilled under reduced pressure, and the residue is dried under reduced pressure in a desiccator to obtain the desired product. Rf = 0.37 Rf = 0.58 8(b) Production of Z-Leu-Gln-NHNHBoc H-Gln-NHNHBoc obtained in (a) above is added to THF50
ml, add 5.51 g of Z-Leu-ONHS under ice cooling, and stir at room temperature for 18 hours. THF was distilled off under reduced pressure,
The residue was extracted with ethyl acetate, and the ethyl acetate layer was diluted with 1N
The mixture is washed successively with citric acid, saturated brine, saturated aqueous sodium bicarbonate, and saturated brine, dried over anhydrous sodium sulfate, and then ethyl acetate is distilled off. Ethyl ether is added to the obtained oily residue to solidify it, and this is reprecipitated from methanol-ethyl ether to obtain 6.04 g of the desired product. Rf = 0.81 Rf = 0.86 Elemental analysis value (as C 24 H 37 N 5 O 7 ) Calculated value (%) C56.79 H7.35 N13.80 Actual value (%) C56.67 H7.15 N13.75 9(a) Production of H-Leu-Glu-NHNHBoc Suspend 2.79 g of Z-Leu-Gln-NHNHBoc in 80 ml of methanol and add a small amount of palladium black.
Stir for 32 hours under H2 gas introduction. After the reaction is completed, the catalyst is removed by suction, the liquid is distilled off under reduced pressure, and the residue is dried under reduced pressure in a desiccator to obtain the desired product. Rf = 0.33 Rf = 0.66 9(b) Production of Z-Asn-Leu-Gln-NHNHBoc H-Leu-Gln-NHNHBoc obtained in (a) above
Dissolve in 30 ml of DMF and cool while stirring. On the other hand, Z-
Dissolve 1.61 g of Asn-OH in 30 ml of THF, add 0.62 ml of N-methylmorpholine, cool to -15°C, and dropwise add 0.80 ml of isobutyl chloroformate while stirring. dripping
After 30 seconds, add the cold DMF solution prepared above to the solution,
The mixture was stirred at 0°C for 5 minutes, then in a 40°C water bath for 1 minute, and then at 15°C for 30 minutes. THF and DMF are distilled off from the reaction solution under reduced pressure, and the residue is extracted with ethyl acetate. The extract is washed successively with 1N citric acid, saturated brine, saturated aqueous sodium bicarbonate, and saturated brine, dried over anhydrous sodium sulfate, and then ethyl acetate is distilled off. Ethyl ether was added to the resulting oily residue to solidify it, and methanol-
Reprecipitate with ethyl acetate to obtain 2.55 g of the desired product. Rf = 0.63 Rf = 0.77 Elemental analysis value (as C 28 H 43 N 7 O 9 ) Calculated value (%) C53.10 H6.97 N15.77 Actual value (%) C53.67 H6.63 N15.68 10(a) Production of Z-Thr-ONHS Dissolve 1.28 g of Z-Thr-OH in 30 ml of THF, add 0.58 g of NHS, cool on ice, and then dissolve in N, N
-Dicyclohexylcarbodiimide (DCC) 1.05
Add g. This mixture was stirred at 4°C for 24 hours,
The precipitate was removed, the liquid was distilled off under reduced pressure, ethyl ether was added to the residue, and the residue was washed by decantation.
The obtained oily substance is dried under reduced pressure in a desiccator to obtain the desired product. 10(b) Production of H-Asn-Leu-Gln-NHNHBoc 2.43 g of Z-Asn-Leu-Gln-NHNHBoc is suspended in 80 ml of methanol, a small amount of palladium black is added, and the suspension is stirred for 18 hours while introducing H 2 gas. After the reaction is completed, the catalyst is removed by suction, the liquid is distilled off under reduced pressure, and the product is dried under reduced pressure in a desiccator to obtain the desired product. Rf = 0.31 Rf = 0.64 10(c) Z―Thr―Asn―Leu―Gln―NHNHBoc
Production of H-Asn-Leu-Gln- obtained in (b) above
NHNHBoc is dissolved in 30 ml of DMF, and to this solution is added the 20 ml DMF solution of Z-Thr-ONHS obtained in (a) above under ice cooling, and the mixture is stirred at room temperature for 18 hours.
1N citric acid is added to the residue obtained by distilling off DMF under reduced pressure to solidify it, and reprecipitation is performed from methanol-ethyl acetate to obtain 2.12 g of the desired product. Rf = 0.82 Rf = 0.79 Elemental analysis value (as C 32 H 50 N 8 O 11 ) Calculated value (%) C53.18 H6.97 N15.50 Actual value (%) C52.85 H6.95 N15.28 11(a) Production of Z―Thr―Asn―Leu―Gln―NHNH 2 Z―Thr―Asn―Leu―Gln―NHNHBoc0.91
Dissolve g in 8 ml of TFA and leave at room temperature for 15 minutes.
Add 80 ml of anhydrous ether to quickly filter out the precipitate, wash with anhydrous ether, and dry under reduced pressure in a desiccator containing potassium hydroxide-phosphorus pentoxide to obtain the desired product. Rf = 0.34 11(b) H-Glu(OBzl)-Ser-Leu-Arg-Ser
-Lys(Tos)-Glu-OH production Boc-Glu(OBzl)-Ser-Leu-Arg-Ser-
Dissolve 1.00g of Lys(Tos)-Glu-OH in 8ml of TFA and leave at room temperature for 15 minutes. Add 80 ml of anhydrous ether to quickly filter out the precipitate, wash with anhydrous ether, and dry under reduced pressure in a desiccator containing potassium hydroxide-phosphorus pentoxide to obtain the desired product. Rf = 0.24 Rf = 0.44 11(c) Z―Thr―Asn―Leu―Gln―Glu (OBzl)
―Ser―Leu―Arg―Ser―Lys(Tos)―Glu―
Production of OH Z-Thr-Asn-Leu-Gln- obtained in (a) above
Dissolve NHNH 2 in 10 ml of DMF, add 0.63 ml of 6N hydrochloric acid/dioxane, cool to -15°C, and add 0.17 ml of isoamyl nitrite while stirring. After the reaction solution becomes negative for the hydrazide test, cool 0.53 ml of TEA.
Add a small amount of DMF 0.40ml solution dropwise to neutralize. This azide-containing solution was mixed with the H-Glu obtained in (b) above.
(OBzl)-Ser-Leu-Arg-Ser-Lys(Tos)-
Add 0.24 ml of Glu-OH and TEA to 10 ml of cold DMF solution and heat the mixture at -10 to -15°C for 2 hours, then at 4°C.
Stir and react for 18 hours. Furthermore, in the same way as in (a) above, Z―Thr―Asn―Leu―Gln―
A reaction product obtained by treating 1.16 g of NNHHBoc with TFA is added to the above reaction mixture, and the mixture is stirred and reacted at the same temperature for 24 hours. DMF is distilled off under reduced pressure, and the residue is extracted with water-saturated n-butanol, washed five times with n-butanol-saturated water, and distilled under reduced pressure. Add ethyl ether to the residue to solidify it, reprecipitate from methanol-ethyl acetate, wash with hot methanol,
get the object. 11(d) H―Thr―Asn―Leu―Gln―Glu―Ser―
Production of Leu-Arg-Ser-Lys(Tos)-Glu-OH Z-Thr-Asn-Leu-Gln-Glu obtained in (c) above
(OBzl)-Ser-Leu-Arg-Ser-Lys(Tos)-
Glu-OH is suspended in a mixture of 50 ml of methanol and 50 ml of 30% acetic acid, a small amount of palladium black is added, and the mixture is stirred for 18 hours while introducing H 2 gas. After the reaction was completed, the catalyst was removed by suction, the liquid was concentrated under reduced pressure, and methanol was completely distilled off.
25, collect the desired fractions, and freeze-dry to obtain 740 mg of the desired product. Rf=0.17 Rf=0.35 Elemental analysis value (as C 66 H 99 N 17 O 23・C 2 H 4 O 2・2H 2 O) Calculated value (%) C48.91 H7.08 N15.64 Actual value ( %) C48.82 H6.63 N15.74 12 H―Thr―Asn―Gln―Glu―Ser―Leu―
Production of Arg-Ser-Lys-Glu-OH H-Thr-Asn-Gln-Glu-Ser-Leu-Arg
Dissolve 51.0 mg of -Ser-Lys(Tos)-Glu-OH in liquid ammonia previously dried with sodium metal and add small pieces of sodium metal under stirring until the solution maintains a blue color for 30 seconds to 1 minute. More crystals
NH 4 Cl was added to neutralize excess sodium, and ammonia was completely distilled off at room temperature.
Collect the desired fraction by gel filtration with Sephadex G-25 gel using % acetic acid.
After concentrating this, water is added and freeze-dried to obtain 32 mg of the target product (peptide of the present invention). This is called "peptide B". Rf=0.01 Rf=0.37 Elemental analysis value (as C 53 H 93 N 17 O 21・C 2 H 4 O・3H 2 O) Calculated value (%) C46.57 H7.32 N16.79 Actual value (% ) C46.10 H6.98 N16.82 13 Production of Z-Leu-Ser-OCH 3 Dissolve 1.81 g of H-Ser-OCH 3.HCl in 25 ml of DMF, add 1.62 ml of TEA, and cool on ice to -10°C. While stirring, add 4.21 g of Z-Leu-ONHS and continue stirring at room temperature for 18 hours. DMF was distilled off under reduced pressure, the residue was extracted with ethyl acetate, the ethyl acetate layer was washed with water, dried over anhydrous sodium sulfate, and then ethyl acetate was distilled off under reduced pressure. Ethyl ether is added to the resulting residue to solidify it, and reprecipitated from ethyl acetate-ether to obtain 2.68 g of the desired product. Rf = 0.81 Rf = 0.82 Elemental analysis value (as C 18 H 26 N 2 O 6 ) Calculated value (%) C59.00 H7.15 N7.65 Actual value (%) C58.62 H7.03 N7.65 14(a) Production of H-Leu-Ser-OCH 3・HCl Add 4.20 g of Z-Leu-Ser-OCH 3 to 40 ml of methanol.
and 11.46 ml of 1N hydrochloric acid, add a small amount of palladium black, and stir for 18 hours while introducing H 2 gas. After the reaction is completed, the catalyst is removed by suction, the liquid is distilled under reduced pressure, and water is further added and distilled under reduced pressure, which is repeated three times. The residue is dried under reduced pressure in a desiccator containing phosphorus pentoxide to obtain the desired product. Rf=0.38 14(b) Production of Z-Ser-Leu-Ser-OCH 3 Dissolve 3.19 g of Z-Ser-NHNH 2 in 25 ml of DMF, add 6.30 ml of 6N HCl/dioxane, and heat at -15°C.
Cool and add 1.69 ml of isoamyl nitrite while stirring. After the reaction solution becomes hydrazide test negative
Add a small amount of a solution of 5.29 ml of TEA and 1.76 ml of cold DMF to neutralize. Add this azide-containing solution to the H-Leu-Ser-OCH 3.HCl obtained in (a) above and 1.60 ml of TEA.
Add the mixture to 20 ml of cold DMF solution at -10 to -15
Stir at 4°C for 2 hours, then at 4°C for 18 hours.
DMF was distilled off under reduced pressure, water was added to the residue to solidify it,
Reprecipitation from methanol-ethyl acetate yields 4.11 g of the desired product. Rf = 0.76 Rf = 0.79 Elemental analysis value (as C 21 H 31 N 3 O 8 ) Calculated value (%) C55.62 H6.89 N9.27 Actual value (%) C55.48 H6.92 N9.18 15 Production of Z-Ser-Leu-Ser-NHNH 2 Dissolve 2.00 g of Z-Ser-Leu-Ser-OCH 3 in 40 ml of methanol and add 100% NH 2 NH 2 under ice cooling.
Add 1.10 ml of H 2 O and leave at room temperature for 18 hours. After the reaction was completed, the solvent was distilled off under reduced pressure, ether was added to solidify, excess NH 2 NH 2 .H 2 O was removed by adding water, and reprecipitation was performed from methanol-ethyl acetate to obtain 1.91 g of the target product. obtain. Rf = 0.43 Rf = 0.73 Elemental analysis value (as C 20 H 31 N 5 O 7 ) Calculated value (%) C52.97 H6.89 N15.44 Actual value (%) C52.85 H6.70 N15.44 16(a) Z―Ser―Leu―Ser―Thr―Asn―Leu―
Gln-Glu-Ser-Leu-Arg-Ser-Lys (Tos)
-Production of Glu-OH Z-Ser-Leu-Ser-NHNH 2 70.42mg in DMF5
ml, add 0.78 ml of a 10-fold dilution of 6N hydrochloric acid/dioxane in DMF, cool to -15°C, add 0.20 ml of a 10-fold dilution of isoamyl nitrite in DMF with stirring,
After the reaction solution becomes negative for hydrazide test,
Drop a small amount of 0.65 ml of TEA 10 times diluted in DMF to neutralize. This azide-containing solution was added to the H-Thr-Asn-Leu-Gln-Glu-Ser-Leu obtained in 11(d) above.
-Arg-Ser-Lys(Tos)-Glu-OH151mg
Add 0.29 ml of a 10-fold dilution of TEA in DMF to 5 ml of cold DMF, and stir the mixture at -10 to -15°C for 2 hours, then at 4°C for 18 hours. Furthermore, Z-Ser-Leu-Ser
- Add 117.36 mg of NHNH 2 and react for 24 hours. DMF was distilled off under reduced pressure, and the residue was extracted with water-saturated n-butanol.
Washed twice with 2% acetic acid saturated with n-butanol five times, concentrated under reduced pressure, added water and further concentrated under reduced pressure,
After completely distilling off n-butanol, it is freeze-dried.
This is reprecipitated with ethyl acetate-ether to obtain the desired product. 16(b) H―Ser―Leu―Ser―Thr―Asn―Leu―
Gln―Glu―Ser―Leu―Arg―Ser―Lys―Glu
-Manufacture of OH Z-Ser-Leu-Ser-Thr-Asn-Leu-Gln-
Glu―Ser―Leu―Arg―Ser―Lys(Tos)―Glu―
Dissolve 150 mg of OH in liquid ammonia previously dried with sodium metal and add small pieces of sodium metal under stirring until the solution maintains a blue color for 30 seconds to 1 minute.
Further, crystalline NH 4 Cl was added to neutralize excess sodium, and after completely evaporating ammonia at room temperature, the eluate was filtered through Sephadex G-25 gel using 50% acetic acid, and the fractions were collected. After concentration, water is added and lyophilized to obtain 94 mg of the target product (peptide of the present invention). This is called "peptide C". Rf=0.02 Rf=0.39 Elemental analysis value (as C 65 H 120 N 20 O 26・C 2 H 4 O 2・H 2 O) Calculated value (%) C48.19 H7.24 N16.78 Actual value ( %) C47.93 H6.93 N16.49 17(a) Production of Z-Tyr-Osu Dissolve 1.04g of Z-Tyr-OH in 30ml of THF,
- Add 0.38g of hydroxysuccinimide, cool on ice, add 0.68g of DCC under ice-cooling, and cool the mixture at 4℃.
Stir for 18 hours. The precipitate is removed by suction filtration, the liquid is concentrated under reduced pressure, and ethyl ether and petroleum ether are added to the residue, followed by decantation and drying to obtain the desired product. 17(b) Production of H-Ser-Leu-Ser-OCH 3 Z-Ser-Leu-Ser- obtained in Reference Example 14(b)
Suspend 1.00 g of OCH 3 in 20 ml of methanol and 20 ml of 10% acetic acid, add a small amount of palladium black, and stir for 14 hours while introducing H 2 gas. After the reaction is completed, the catalyst is removed by suction, and the liquid is concentrated under reduced pressure, then water is added and freeze-dried to obtain the desired product. Rf = 0.35 Rf = 0.65 17(c) Production of Z-Tyr-Ser-Leu-Ser-OCH 3 H-Ser-Leu-Ser-OCH 3 obtained in (b) above
Dissolved in 10ml of DMF, added 0.31ml of TEA under ice cooling, and added the cold Z-Tyr-OSu obtained in (a) above to this solution.
Add DMF solution under stirring. Store the mixture at room temperature for 18
After stirring for an hour, DMF was distilled off under reduced pressure, water was added to the residue to solidify it, and reprecipitation was performed from methanol-ether and then methanol-ethyl acetate to obtain the desired product (1.08 g).
get g. Rf = 0.78 Rf = 0.82 Elemental analysis value (as C 30 H 40 N 4 O 10 ) Calculated value (%) C58.43 H6.54 N9.09 Actual value (%) C58.14 H6.58 N9.16 17(d) Production of Z-Tyr-Ser-Leu-NHNH 2 Dissolve 1.00 g of Z-Tyr-Ser-Leu-Ser-OCH 3 in methanol and add 100% NH 2 NH 2 under ice cooling.
Add 0.82 ml of H 2 O and leave at room temperature for 18 hours. Methanol was distilled off under reduced pressure, ethyl ether was added to the residue to solidify it, and excess NH 2 NH 2 was removed by washing with water.
After removing H 2 O and reprecipitating with methanol-ether, the product was washed with hot methanol to obtain 0.81 g of the desired product. Rf = 0.45 Rf = 0.76 Elemental analysis value (as C 29 H 40 N 6 O 9 ) Calculated value (%) C56.48 H6.54 N13.63 Actual value (%) C56.12 H6.57 N13.58 18(a) Z―Tyr―Ser―Leu―Thr―Asn―Leu―
Gln-Glu-Ser-Leu-Arg-Ser-Lys (Tos)
-Production of Glu-OH Z-Tyr-Ser-Leu-Ser-NHNH 2 42.3mg
Dissolved in 4ml of DMF and 6N hydrochloric acid/dioxane.
Add 0.34ml of DMF 10 times diluted solution, cool to -15℃,
10 times diluted solution of isoamyl nitrite in DMF 0.09 under stirring
After the reaction solution becomes negative in the hydrazine test, add 0.29 ml of a 10-fold dilution of TEA in DMF little by little to neutralize it. The solution containing this azide was
―Thr―Asn―Leu―Gln―Glu―Ser―Leu―Arg
-Ser-Lys(Tos)-Glu-OH50.0mg and TEA
Add to 4ml of cold DMF solution of 10x DMF dilution 0.10,
The mixture was heated at -10 to -15℃ for 2 hours, then at 4℃ for 18 hours.
Stir for an hour. Furthermore, Z-Tyr-ser-Leu-Ser-
Add 42.3 mg of NHNH 2 and react for 24 hours. DMF
was distilled off under reduced pressure, and the residue was dissolved in water-saturated n-butanol 30
ml, and dilute the extract with n-butanol saturated water for 10 min.
twice and then five times with 2% acetic acid saturated with n-butanol. The organic layers are collected and concentrated under reduced pressure, and after distilling off n-butanol, they are freeze-dried and reprecipitated with ethyl acetate-ether to obtain the desired product. 18(b) H―Tyr―Ser―Leu―Ser―Thr―Asn―
Leu―Gln―Glu―Ser―Leu―Arg―Ser―Lys
-Production of Glu-OH Z-Tyr-Ser-Leu-Ser-Thr obtained in (a) above
―Asn―Leu―Gln―Glu―Ser―Leu―Arg―Ser
-Lys(Tos)-Glu-OH is dissolved in liquid ammonia previously dried with sodium metal and a small piece of sodium metal is added under stirring until the solution remains blue for 30 seconds to 1 minute. Further, crystalline NH 4 Cl was added to neutralize excess sodium, and after completely evaporating ammonia at room temperature, the eluate was filtered through Sephadex G-25 gel using 50% acetic acid, and the fractions were collected to obtain the desired product. (Peptide of the present invention) 33 mg is obtained. This is called "peptide D". Rf=0.02 Rf=0.35 Elemental analysis value (as C 74 H 123 N 21 O 28・C 2 H 4 O 2・4H 2 O) Calculated value (%) C47.71 H7.30 N15.79 Actual value ( %) C47.32 H7.24 N15.82 <Production of antigen> Production example 1 Peptide synthesis 5 mg of peptide A obtained in Production Example 7(c) and 15 mg of bovine serum albumin (hereinafter abbreviated as "BSA") Dissolve in 2 ml of ammonia acetate buffer (0.1 mol, pH 7.0). Add 0.11 ml of 0.1 molar glutaraldehyde solution to this solution and stir at room temperature for 5 hours. The reaction mixture was then stirred for 48 h, 4
Dialyze against 1 ml of water at °C. Change the water 5 times during dialysis. Thereafter, the solution containing the peptide-protein complex is freeze-dried to obtain 15 mg of human α-type interferon antigen (hereinafter referred to as "antigen"). This antigen has peptide A for 1 mole of BSA.
is combined with an average of 10 moles. The binding rate of this peptide A and BSA can be determined by further adding the obtained antigen to Cephadex G-50 (eluent: physiological saline,
Detection: 0D280nm, flow rate: 3ml/hour, fractional amount: 1ml each)
And since the presence of peptide A is not recognized,
Peptide A bound to BSA by the gel filtration
The fraction of peptide A and the fraction of other products (dimer of peptide A) are separated, a calibration curve of the standard concentration of peptide dimer is created, the amount of the dimer is determined, and this is used as the starting material. Peptide A used as
It was calculated assuming that the value subtracted from the amount is all bound to BSA. The same applies to each antigen obtained in the following antigen production examples. Production Example 2 5 mg of peptide B obtained in Peptide Synthesis Production Example 12
and 5 mg of BSA in ammonium acetate buffer (0.1
Mol, PH7.0) Dissolve to 2 ml. Add 0.11 ml of 0.1 molar glutaraldehyde solution to this solution and stir at room temperature for 5 hours. The reaction mixture was then heated for 48 hours.
Dialyze against 1 part water at 4°C. Change the water 5 times during dialysis. Thereafter, the solution containing the peptide-protein complex is freeze-dried to obtain 9 mg of human α-type interferon antigen (hereinafter referred to as "antigen"). The obtained antigen has an average of 9 moles of peptide B bound to 1 mole of BSA. Production Example 3 Peptide C 5 obtained in Peptide Synthesis Production Example 16(b)
mg and 25 mg of BSA are dissolved in 4 ml of water. Add 200% dicyclohexyl carbodiimide (DCC) to this solution.
mg and stirred at room temperature for 5 hours. The reaction mixture is then dialyzed against water 2 at 4° C. for 48 hours. Change the water 5 times during dialysis. Then the peptide-
Human alpha interferon antigen (hereinafter referred to as "antigen") is obtained by freeze-drying the solution containing the protein complex.
Get 28mg. The obtained antigen has an average of 12 moles of peptide C bound to 1 mole of BSA. Production Example 4 Peptide D-4 obtained in Peptide Synthesis Production Example 18(b)
mg and 20 mg of BSA are dissolved in 2 ml of ammonium acetate buffer (0.1 molar, PH 7.0). 0.1 in this solution
Add 0.11 ml of molar glutaraldehyde solution,
Stir at room temperature for 5 hours. The reaction mixture is then dialyzed against 1 part water at 4°C for 48 hours. Change the water 5 times during dialysis. Thereafter, the solution containing the peptide-protein complex is freeze-dried to obtain 22 mg of human α-type interferon antigen (hereinafter referred to as "antigen"). The obtained antigen has an average of 9 moles of peptide D bound to 1 mole of BSA. <Production of antibody> 100 μg of the antigen obtained in Antigen production example 3 was added to 1.5 ml.
After dissolving in physiological saline, add Freund's auxiliary solution to
The suspension prepared by adding 1.5 ml to 7 rabbits (2.5
~3.0Kg), and the same amount is administered 6 times every 2 weeks. Thereafter, the same amount as the first dose was administered three times every month. Seven days after the final administration, blood is collected from the test animal and centrifuged to collect antiserum to obtain human α-type interferon antibody (hereinafter referred to as "antigen"). Production Examples 2 to 4 Using the antigens obtained in Antigen Production Examples 1, 2, and 4, human α-interferon antibodies (antibodies, and) were prepared in the same manner as in Production Example 1 above, respectively.
are obtained respectively.・ Production of labeled peptide H-Tyr-Ser-Leu-Ser-Thr-Ans-Leu
―Gln―Glu―Ser―Leu―Arg―Ser―Lys―Glu
-OH, ie, peptide D, is labeled using chloramine T as follows. That is, 5 μg of the above peptide was added to 20 μg of 0.5M phosphate buffer (PH7.0) with Na[ 125 ] (carrier free
NEN) Add 1 millicurie of 0.5 molar phosphate buffer, then add 20 μ of 0.5 molar phosphate buffer of 70 mg chloramine T/ml. The reaction is terminated by stirring for 30 seconds at room temperature and adding 50 μ of 60 mg/ml sodium metabisulfite (Na 2 S 2 O 5 ) in 0.5 M phosphate buffer. Then add 1% to the reaction solution.
100μ of a cold sodium iodide aqueous solution was added, and the reaction mixture was transferred to a Sephadex G-25 column (1.0×
30cm) (eluent 0.25% BSA, 10mM
0.05 molar phosphate buffer containing EDTA and 0.02% NaN3 , PH 7.4) to obtain 125 -labeled peptide D. - Measurement of titer Measure the titer of the antibody obtained above as follows. That is, the antibody was dissolved in physiological saline at 10, 10 2 ,
10 3 , 10 4 , 10 5 ... dilute (initial) twice,
To 100μ of each of these, add 0.1ml of 125- labeled peptide (the labeled peptide obtained above was diluted to about 9500cpm) and 0.05M phosphate buffer (PH = 7.4) [0.25% BSA, 10mM EDTA.
and 0.02% NaN 3 ] and incubated at 4℃ for 24 hours.
After incubation for hours, the resulting conjugate of antibody and 125- labeled antigen is separated from unreacted (unbound) 125- labeled peptide by the dextran-activated charcoal method and centrifugation method (4°C, 30 minutes, 3000 rpm), and the Count the binding rate (%) of the antibody to the 125- labeled peptide at each dilution concentration.
Measure. The binding rate (%) of the antibody to the 125- labeled peptide is plotted on the vertical axis, and the dilution factor (initial concentration) of the antibody is plotted on the horizontal axis, and the binding rate is plotted at each concentration. Determine the antibody dilution ratio at which the binding rate is 50%, that is, the antibody titer. As a result, the antibody titer was 50,000.・Human α-type interferon specificity test of antibodies Human β-type interferon at various concentrations (manufactured by Tokyo Metropolitan Clinical Research Institute, specific activity 3×) was used as a test sample.
10 6 U/mg protein), peptide synthesis production example 16
Peptide C obtained in (b), ie, the peptide chain of human α-type interferon, and human α-type interferon (manufactured by Hayashibara Institute, Limphoblastoid Interferon) are used. Also as a standard diluent 0.25
A 0.05 molar phosphate buffer (PH 7.4) containing %BSA, 5mM EDTA and 0.02% NaN3 is used. Add 0.2 ml of standard diluent and sample to each test tube.
0.1 ml, 0.1 ml of the antibody obtained in antibody production example 3, and
125 labeled peptide (labeled peptide obtained above diluted to approximately 2800 cpm) 0.1
ml and incubated at 4℃ for 72 hours.
Normal porcine serum
Add 0.1 ml, then add 0.5 ml of a suspension of activated carbon coated with dextran, and leave at 4°C for 30 minutes.
Next, centrifugation was performed for 30 minutes at 4°C and 3000 rpm to separate the conjugate between the antibody and the 125- labeled peptide and the unreacted (unbound) 125- labeled peptide, and the radiation was counted. Assuming that the binding rate (Bo) corresponding to the titer is 100%, determine the percentage of the conjugate (B) between the antibody and the 125- labeled peptide at the concentration and dilution rate of the test sample. The obtained results show that the antibody is clearly differentiated in its reactivity to human α-type interferon and reactivity to human β-type interferon, and this indicates that it is a highly specific antibody with low cross-reactivity to β-type interferon. I understand that. Similar tests were also conducted on the antibody and, as a result, it was confirmed that it was highly specific for human α-type interferon, almost the same as the antibody.

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1 一般式 R―Glu―Ser―Leu―Arg―Ser―Lys―Glu―
OH 〔式中Rは水素原子、H―Thr―Asn―Leu―
Gln基、H―Ser―Leu―Ser―Thr―Asn―Leu―
Gln基又はH―Tyr―Ser―Leu―Ser―Thr―Asn
―Leu―Gln基を示す〕 で表わされるヒトリムホブラストイドインターフ
エロンのC末端ペプチド。
[Claims] 1 General formula R-Glu-Ser-Leu-Arg-Ser-Lys-Glu-
OH [In the formula, R is a hydrogen atom, H-Thr-Asn-Leu-
Gln group, H-Ser-Leu-Ser-Thr-Asn-Leu-
Gln group or H-Tyr-Ser-Leu-Ser-Thr-Asn
-Leu-Gln group] C-terminal peptide of human limphoblastoid interferon.
JP56133129A 1981-03-31 1981-08-24 Peptide at terminal c of human lymphoblastoid interferon and its derivative Granted JPS5835155A (en)

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Citations (2)

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Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS55113753A (en) * 1979-02-22 1980-09-02 Toyo Jozo Co Ltd Parathyroid hormone derivative
JPS5657753A (en) * 1979-10-16 1981-05-20 Toyo Jozo Co Ltd Novel glucagon fragment, and its use

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JPS5835155A (en) 1983-03-01

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