JPH0158197B2 - - Google Patents

Info

Publication number
JPH0158197B2
JPH0158197B2 JP57090430A JP9043082A JPH0158197B2 JP H0158197 B2 JPH0158197 B2 JP H0158197B2 JP 57090430 A JP57090430 A JP 57090430A JP 9043082 A JP9043082 A JP 9043082A JP H0158197 B2 JPH0158197 B2 JP H0158197B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
absorption spectrum
phosphonochlorin
water
measured
fusarium
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired
Application number
JP57090430A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JPS58209986A (en
Inventor
Tatsuo Haishi
Kohei Furuya
Mutsuo Nakajima
Masatoshi Inukai
Kentaro Kodama
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Sankyo Co Ltd
Original Assignee
Sankyo Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Sankyo Co Ltd filed Critical Sankyo Co Ltd
Priority to JP57090430A priority Critical patent/JPS58209986A/en
Publication of JPS58209986A publication Critical patent/JPS58209986A/en
Publication of JPH0158197B2 publication Critical patent/JPH0158197B2/ja
Granted legal-status Critical Current

Links

Description

【発明の詳細な説明】[Detailed description of the invention]

本発明は新抗生物質ホスホノクロリン(fos―
fonochlorin)およびその製造法に関するもので
ある。 本発明者らは土壌分離糸状菌SANK15680株、
SANK10182号株、SANK10282株および
SANK10382株がグラム陽性およびグラム陰性細
菌に対して有効な新規抗生物質ホスホノクロリン
を生産することを見い出した。 従つてホスホノクロリンはこれら細菌に起因す
るヒト、動物、又は植物の疾病の予防あるいは治
療に用いられる。本発明においてはホスホノクロ
リンの薬理上許容しうる塩も包含される。このよ
うな塩としてはナトリウム、カリウムのようなア
ルカリ金属塩、カルシウム、マグネシウムのよう
なアルカリ土類金属塩、アルミニウム塩などをあ
げることができる。 ホスホノクロリンを生産する菌株の菌学的性状
は次の通りである。 1 タラロマイセス・フラバス(Talaromyces
flavus)SANK15680は本発明者らにより滋賀
県犬山群多賀町で採取した土壌より分離された
子のう菌である。 CYA培地上での生育は非常に良好で25℃、
7日でコロニーの径は33〜35mmに達する。コロ
ニー表面は羊毛状で淡橙黄色、裏面は灰黄色を
呈する。子のう果(Gymnothecia)を多数形
成するが分生子の形成は少い。また、淡黄色の
可溶性色素を産生する。子のう果は黄色の菌糸
網よりなり球形で口孔はなく、径200〜500μm
である。子のう果原基は太くて長い造のう器と
それに巻きついた細い造精器より成る。造のう
器の多くはこん棒状で長さ30〜200μm、径3〜
5μmである。子のうはほぼ球形で無色、8胞子
性、その径は8〜13μmで消失性である。子の
う胞子は黄色、楕円形、3.5〜5.5×2.5〜3.0μm
で全体に刺を有する。 分生子柄は滑面で基底菌糸層から発達し、20
〜70×1.5〜2.0μmである。ペニシリは単輪生体
または複輪生体である。メトレは2〜3本群生
し、10〜15×2〜2.3μmである。フイアライド
はペン型でメトレあたり2〜5本輪生し、7.5
〜15×2.0〜2.5μmである。分生子の多くは楕円
形、2.0〜4.0×1.5〜2.5μm、滑面で連鎖する。 CYA培地上、37℃では25℃の場合より生育
はやや悪く、コロニーの径は32〜33mmである。
子のう果の形成は非常に少く、可溶性色素は産
生しない。裏面は灰黄色ないし橙褐色である。 CYA培地上、5℃では胞子および分生子は
発芽しない。 MEA培地ではCYA培地上での場合に近似す
るが、子のう果の形成はそれより良好であり、
可溶性色素を産生しない。 G25N培地では生育は極めて悪く、コロニー
の径は7日間で4〜5mmであり、分生子は形成
するが、子のう果は形成しない。 上記の如き性状を有する菌株につき検索をし
た結果、J.I.Pitt著、“The genus Penicillium
andits teleomorphic states Eupenicillium
and Telaromyces”(1979年Academic Press
発行)に詳細に記載されているタラロマイセ
ス・フラバスの菌学的性状とよく一致した。従
つて、SANK15680株をタラロマイセス・フラ
バス(Talaromyces flavus(Klo¨cker)Stolk
et Samson)と同定した。尚、ここで用いた培
地の組成、作製法は上記文献に記載されてい
る。 2 フザリウム・オキシスポラン(Fusarium
oxysporum)SANK10182は秋田県仙北群田沢
湖町で採取した土壌より分離された不完全菌で
ある。 ポテト・シユークロース寒天培地(以下、
PSAと略記する)上における生育は良好で26
℃、4日目でコロニーの直径は4.5〜5.0cmに達
する。コロニーの中心部は淡紫色を呈し、周辺
部はほぼ白色、ビロード状、裏面はクリーム色
である。完全世代は観察されないが、大型分生
子および小型分生子を多数形成する。 大型分生子は半透明で鎌形を示し、両側が細
まる。また、しばしば一端または両端が内側に
かぎ形に曲り、2〜6隔壁を有する。そのサイ
ズは2隔壁を有するものは20〜28×4.5〜
5.5μm、3隔壁を有するものは25〜35×4.5〜
5.0μm、4隔壁を有するものは25〜40×4.5〜
5.5μm、5隔壁を有するものは35〜50×4.5〜
5.5μm、6隔壁を有するものは40〜50×4.5〜
5.5μmである。 大型分生子柄は菌糸上にメトレまたは直接フ
イアライドを形成し、10〜30×3〜5μmであ
る。 小型分生子は無色、長楕円形でやや湾曲する
ものもあり、隔壁はなく、5〜10×3〜5μmで
連鎖することはない。 小型分生子柄は気菌糸上に単純なフイアライ
ドを形成し5〜30×2.5〜4.5μmである。 厚膜胞子を多数形成し亜球形、平滑または粗
面で8〜12μmである。厚膜胞子はほとんどは
頂生し通常は単生であるが、まれに2〜3連鎖
することがある。 一方、37℃では生育しない。 上記の如き性状を有する菌株につき検索をし
た結果、C.Booth著“The genus Fusarium”
130〜154頁、1971年発行、Commonwealth
Mycolo―gical Institute,Kew,Englandに
詳細に記載されているフザリウム・オキシスポ
ラムの菌学的性状とよく一致した。従つて、
SANK10182株をフザリウム・オキシスポラム
(Fusarium oxysporum)と同定した。 3 フザリウム・アベナセウム(Fusarium
avenaceum)SANK10282は東京都府中市内で
採取した柿の種より分離された不完全菌であ
る。 PSA上における生育は良好で26℃、4日目
でコロニーの直径は約5cmに達する。コロニー
は淡赤紫色を呈し、羊毛状で裏面は赤紫色であ
る。中心部に大型分生子をよく形成するが小型
分生子の形成は全く見られない。 大型分生子は半透明で長紡錘形、先端が内側
に湾曲し尖頭状を呈するものが多く、3〜5(6)
隔壁を有する。そのサイズは3隔壁のものが28
〜45×3.5〜4.5μm、4隔壁のものが40〜50×4
〜5μm、5隔壁を有するものが45〜63×4〜
5μmである。 大型分生子柄はポリブラステツク型とフイア
ライド型があり、気菌糸から直接形成される場
合と、太いプライマリー分生子柄(径4.5〜
7.0μm)の先に形成される場合がある。 厚膜胞子は形成されず、また、完全世代も形
成されない。 一方、37℃では生育しない。 上記の如き性状を有する菌株につき検索をし
た結果、C.Booth著“The genus Fusarium”
91〜94頁、1971年発行、Commonwealth
Mycological Institute,Kew,Englandに詳
細に記載されているフザリウム・アベナセウム
の菌学的性状とよく一致した。従つて
SANK10282株をフザリウム・アベナセウム
(Fusarium avenaceum)と同定した。 4 フザリウム・トリシンクタム(Fusarium
tricinctum)SANK10382は東京都府中市内で
採取した柿のヘタより分離された不完全菌であ
る。 PSA上における生育は良好で26℃、4日目
でコロニーの直径は約4cmに達する。コロニー
は羊毛状で中心部が淡紫赤色、周辺はほぼ白
色、裏面は赤紫色である。大型分生子は中心部
に特に多数形成されるが、小型分生子はごくわ
ずかに形成されるのみである。 大型分生子は半透明、鎌形で(2)3〜4(5)個の
隔壁を有する。大きさは2隔壁を有するものが
15〜25×2.5〜4.5μm、3隔壁を有するものが20
〜25×2.5〜4.5μm、4隔壁を有するものが26〜
35×3.0〜4.5μm、5隔壁を有するものが26〜35
×2.5〜4.5μmである。 大型分生子柄は菌糸上に直接またはメトレを
形成したフイアライドからなり、10〜30×3〜
5μmである。 小型分生子は無色、平滑で連鎖することはな
く7.5〜15.0×5.0〜7.5μmでほとんど洋なし型で
あるが、楕円形ないしは亜球形のものも混存す
る。 小型分生子柄は菌糸上にフイアライドを形成
し、5〜20×2.5〜4.5μmである。 厚膜胞子も完全世代も観察されない。 一方、37℃では生育しない。 上記の如き性状を有する菌株につき検索をし
た結果、C.Booth著“The genus Fasarium”
83〜84頁、1971年発行、Commonwealth
Mycological Institute,Kew,Englandに詳
細に記載されているフザリウム・トリシンクタ
ムの菌学的性状とよく一致した。従つて、
SANK10382株をフザリウム・トリシンクタム
(Fusarium tricinctum)と同定した。 そしてSANK15680株、SANK10182株、
SANK10282株およびSANK10382株は工業技
術院微生物工業技術研究所に寄託されておりそ
の微生物寄託番号はそれぞれ第6534号、第6535
号、第6536号および第6537号である。 以上ホスホノクロリンの生産菌について説明し
たが、これら菌類の諸性質は一定したものではな
く自然的、人工的に容易に変化することは周知の
通りであり本発明で使用しうる菌株はタラロマイ
セス属またはフザリウム属に属するホスホノクロ
リンを生産するすべての菌株を包含するものであ
る。 更にタラロマイセス・フラバスの不完全世代は
ペニシリウム・ダンゲルデイとして周知であり、
またフザリウム・アベナセウムの完全世代はジベ
レラ・アベナセアとして周知であるので、これら
の菌株も当然ホスホノクロリンを生産し得るもの
であり、本発明のホスホノクロリン生産菌に含ま
れる。 本発明における培養は一般微生物における培養
方法に準じて行われ、液体培地中での振盪培養あ
るいは通気撹拌培養によるのが好ましい。培地成
分としてはたとえば炭素源としてブドウ糖、マル
トース、シユクロース、マンニツト、糖密、グリ
セリン、デキストリン、澱粉、大豆油、綿実油な
どが、窒素源としては大豆粉、落花生粉、綿実
粉、カザミノ酸、フアーマミン、魚粉、コーン・
スチープ・リカー、ペプトン、肉エキス、イース
ト、イースト・エキス、硝酸ソーダ、硝酸アンモ
ニウム、硫酸アンモニウム等が又無機塩として食
塩、燐酸塩、炭酸カルシウム、微量金属塩などが
必要に応じて適宜添加される。液体培養に際して
はシリコン油、植物油、界面活性剤等が消泡剤と
して適宜使用される。培地のPHは弱酸性ないし中
性附近、培養温度は20℃から30℃、特に24℃前後
が好ましい。培養の経過に伴つて生産されるホス
ホノクロリンの力価の経時的変化プロテウス・ミ
ラビリス(Proteus mirabillis)SANK70461を
被検菌としたペーパーデイスク(東洋科学産業〓
製、直径8mmThick)検定法により測定した。通
常120〜130時間の培養でホスホノクロリンの生産
量は最高値に達する。主として培養液中の液体部
分に存在するホスホノクロリンは、培養終了後菌
体その他の固型部分をけいそう土等を過助剤と
する過操作、あるいは遠心分離によつて除去
し、その液あるいは上清中から抽出・精製され
る。ホスホノクロリンはその物理化学的性状を利
用することにより、たとえば吸着剤を用いて採取
することができる。吸着剤としてはたとえば活性
炭、あるいは吸着用樹脂であるアンバーライト
XAD―2、XAD―4、XAD―7等(ローム・
アンド・ハース社製)やダイヤイオンHP10、
HP20、HP20AG、HP50等(三菱化成工業(株)製)
が使用されホスホノクロリンを含む液から上記の
如き吸着剤の層を通過させて含まれる不純物を吸
着させて取りのぞくか、ホスホノクロリンを吸着
させた後、メタノール水、アセトン水、n―ブタ
ノール水などを用いて溶出する。酸性物質として
挙動することを利用して陰又は陽イオン交換体に
吸脱着させて精製することができる。陰イオン交
換体としてはDEAE―セルロース(ブラウン社
製)、DEAE―セフアデツクス、QAE―セフアデ
ツクス(フアルマシア社製)、デユオライトA―
2、A―2(ダイアモンド・シヤムロツク・ケミ
カル社製)、アンバーライト IRA―68(ローム・
アンド・ハース社製)、ダウエツクス1×4、
21K(ダウ・ケミカル社製)等が利用出来る。又、
陽イオン交換体としてはアンバーライトIRC―
50、ダウエツクス50W等が利用出来る。また、上
記のごとき酸性物質の性質を利用して、ジメチ
ル・ベンジル・セチル・アンモニウムクロライド
の如き4級アンモニウム塩を水と混合しない溶
媒、たとえばジクロルメタン等に溶解しホスホノ
クロリンを水溶液から4級アンモニウム塩として
抽出する方法も用いられる。 更にホスホノクロリンを精製するためにはアビ
セル(旭化成工業(株)製)などのセルロースあるい
はセフアデツクスLH―20(フアルマシア社製)
などを用いた分配カラムクロマトグラフイーやシ
リカゲル、アルミナ、フロリジルのような担体を
用いた吸着カラムクロマトグラフイー、又は逆相
用担体を用いた逆相カラムクロマトグラフイー、
ホスホノクロリンと混在する不純物との溶媒に対
する分配率の差を利用した抽出法、あるいは向流
分配法などが有効な方法といえる。以上の精製手
段を単独あるいは適宜組み合せ、反復用いること
によりホスホノクロリンを精製することができ
る。 そして、このようにして得られたホスホノクロ
リンは所望により常法に従つて薬理上許容しうる
塩に変換することができる。 このようにして得られたホスホノクロリンは次
の物理化学的性状を有する。 1 物質の性状:酸性、水溶性の無色油状物質 2 比旋光度:[α]25 D O(C,0.56、水) 3 分子式:C2H4O4PCl(トリメチルシリル誘導
体の高分解能マススペクトル法により測定) 4 分子量:158(トリメチルシリル誘導体のマス
スペクトル法により測定) 5 紫外線吸収スペクトル:λnaxnm(E1% 1cm) 水溶液中で測定した紫外線吸収スペクトルは
第1図に示した通り276nm(E1% 1cm=19.7)に
極大吸収を示す。 6 赤外線吸収スペクトル:νKBr naxcm-1 KBrデイスクで測定したナトリウム塩の赤
外線吸収スペクトルは第2図に示す通りであ
る。 3150,1690,1620,1400,1200〜1050,910 7 核磁気共鳴吸収スペクトル:δ:ppm DMSO―d6中内部基準にTMS(テトラメチ
ルシラン)を使用して測定した核磁気共鳴吸収
スペクトル(90MHz)は第3図に示す通りであ
る。 3.7(2H,d) 8 溶解性: 水、メタノールに可溶、アセトン、クロロホ
ルム、酢酸エチルに不溶。 9 呈色反応: 1%モリブデン酸アンモニウム溶液―50%硫
酸、ヨード、ブロモ・クレゾール・グリーンに
陽性。 10 薄層クロマトグラフイー:Rf値 0.46 吸着剤:メルク社製シリカゲルプレートNo.5715 展開溶媒:70%n―プロパノール―水 11 抗菌力:ホスホノクロリンの種々の微生物に
対する最小阻止濃度(MIC)は第1表に示す
通りである。 デイフコ社製普通寒天培地を用いた寒天稀釈法
で行い、37℃、24時間培養後にそれぞれの微生物
に対するMIC値を測定した。
The present invention describes the new antibiotic phosphonochlorin (fos-
Fonochlorin) and its production method. The present inventors isolated a soil-isolated filamentous fungus SANK15680 strain,
SANK10182 stock, SANK10282 stock and
We found that strain SANK10382 produces a novel antibiotic, phosphonochlorin, that is effective against Gram-positive and Gram-negative bacteria. Therefore, phosphonochlorin is used for the prevention or treatment of human, animal, or plant diseases caused by these bacteria. The present invention also includes pharmaceutically acceptable salts of phosphonochlorin. Examples of such salts include alkali metal salts such as sodium and potassium, alkaline earth metal salts such as calcium and magnesium, and aluminum salts. The mycological properties of the phosphonochlorin-producing strain are as follows. 1 Talaromyces flavus (Talaromyces
flavus) SANK15680 is an ascomycete isolated from soil collected by the present inventors in Taga-cho, Inuyama-gun, Shiga Prefecture. Growth on CYA medium is very good at 25°C.
The colony diameter reaches 33-35 mm in 7 days. The surface of the colony is woolly and pale orange-yellow, and the underside is gray-yellow. It forms many ascocarps (gymnothecia) but few conidia. It also produces a pale yellow soluble pigment. The ascus is made of a yellow mycelial network, spherical, has no opening, and has a diameter of 200 to 500 μm.
It is. The ascocarp primordium consists of a thick, long ospore and a thin sperm wrapped around it. Most of the cysts are club-shaped, with a length of 30 to 200 μm and a diameter of 3 to 200 μm.
It is 5μm. The asci are almost spherical, colorless, octosporous, 8-13 μm in diameter, and effacement. Ascospores yellow, oval, 3.5-5.5 x 2.5-3.0 μm
It has thorns all over. The conidiophore is smooth and develops from the basal hyphal layer, 20
~70 x 1.5-2.0 μm. Penicilli are unilobed or bilobed. Metole grows in clusters of 2 to 3, and is 10 to 15 x 2 to 2.3 μm. Fireride is pen-shaped with 2 to 5 whorls per metre, 7.5
~15 x 2.0~2.5μm. Most of the conidia are oval, 2.0-4.0 x 1.5-2.5 μm, smooth and chained. On CYA medium, growth is slightly slower at 37°C than at 25°C, and the colony diameter is 32 to 33 mm.
Asci formation is very low and no soluble pigments are produced. The underside is grayish-yellow to orange-brown. Spores and conidia do not germinate on CYA medium at 5°C. On MEA medium, ascocarp formation approximates but is better than on CYA medium;
Does not produce soluble pigments. Growth was extremely poor on G25N medium, with colony diameter being 4 to 5 mm in 7 days, forming conidia but not asci. As a result of searching for strains with the above-mentioned characteristics, I found a copy of “The genus Penicillium” by JIPitt.
andits teleomorphic states Eupenicillium
and Telaromyces” (Academic Press, 1979)
The results were in good agreement with the mycological characteristics of Talaromyces flavus as described in detail in the publication. Therefore, the SANK15680 strain was transformed into Talaromyces flavus (Klo¨cker) Stolk.
et Samson). The composition and preparation method of the medium used here are described in the above-mentioned document. 2 Fusarium oxysporan (Fusarium
oxysporum) SANK10182 is a deficient bacterium isolated from soil collected in Tazawako-cho, Semboku-gun, Akita Prefecture. Potato sucrose agar medium (hereinafter referred to as
PSA (abbreviated as PSA) has good growth on 26
℃, the colony diameter reaches 4.5-5.0 cm on the 4th day. The center of the colony is pale purple, the periphery is almost white and velvety, and the underside is cream-colored. Although complete generations are not observed, large numbers of large and small conidia are formed. Large conidia are translucent and sickle-shaped, tapering on both sides. It is also often hooked inward at one or both ends and has 2 to 6 septa. Its size is 20 to 28 x 4.5 with two partitions.
5.5μm, 25~35×4.5~ with 3 partitions
5.0μm, 25~40×4.5~ with 4 partitions
5.5μm, 35~50×4.5~ with 5 partitions
5.5μm, 40~50×4.5~ with 6 partitions
It is 5.5 μm. Large conidiophores form metres or direct phialides on the hyphae and are 10-30 x 3-5 μm. The small conidia are colorless, oblong and slightly curved, have no septa, and are 5-10 x 3-5 μm in size and are not linked together. Small conidiophores form simple phialides on aerial hyphae and are 5-30 x 2.5-4.5 μm. It forms numerous chlamydospores, subglobular, smooth or rough, and 8-12 μm in size. Chlamydospores are mostly apical and usually solitary, but in rare cases they may form chains of 2 or 3. On the other hand, it does not grow at 37℃. As a result of searching for strains with the above characteristics, I found "The genus Fusarium" by C. Booth.
pp. 130-154, published 1971, Commonwealth
The mycological characteristics of Fusarium oxysporum were in good agreement with those described in detail in Mycolo-gical Institute, Kew, England. Therefore,
The SANK10182 strain was identified as Fusarium oxysporum. 3 Fusarium avenaceum (Fusarium
avenaceum) SANK10282 is a deficient bacterium isolated from persimmon seeds collected in Fuchu City, Tokyo. Growth on PSA was good, with colonies reaching approximately 5 cm in diameter on the 4th day at 26°C. Colonies are pale reddish-purple, woolly, and have a reddish-purple underside. Large conidia are often formed in the center, but no small conidia are observed. Large conidia are translucent, long spindle-shaped, and the tip is often inwardly curved and pointed, 3 to 5 (6)
It has a partition wall. Its size is 28 with 3 partitions.
~45×3.5~4.5μm, 40~50×4 with 4 partitions
~5μm, 45~63×4~ with 5 partitions
It is 5μm. Large conidiophores are of the polyblastic type and phialide type, and some are formed directly from aerial hyphae, while others are formed directly from aerial hyphae (4.5 to 4.5 in diameter).
7.0 μm). No chlamydospores are formed, nor are full generations formed. On the other hand, it does not grow at 37℃. As a result of searching for strains with the above characteristics, I found "The genus Fusarium" by C. Booth.
pages 91-94, published 1971, Commonwealth
The mycological characteristics of Fusarium avenaceum were in good agreement with those described in detail in the Mycological Institute, Kew, England. Accordingly
The SANK10282 strain was identified as Fusarium avenaceum. 4 Fusarium tricintum (Fusarium
tricinctum) SANK10382 is a deficient bacterium isolated from persimmon stems collected in Fuchu City, Tokyo. Growth on PSA was good, with colonies reaching approximately 4 cm in diameter on the 4th day at 26°C. The colony is woolly, pale purple-red in the center, almost white on the periphery, and reddish-purple on the underside. Large conidia are formed in large numbers especially in the center, but only a small number of small conidia are formed. Large conidia are translucent, sickle-shaped, and have (2)3-4(5) septa. The size is the one with two partitions.
15-25 x 2.5-4.5μm, 20 with 3 partitions
〜25×2.5~4.5μm, 26 with 4 partitions
35×3.0~4.5μm, 26~35 with 5 partitions
×2.5 to 4.5 μm. Large conidiophores consist of phialides directly on the hyphae or formed into metres, 10-30 x 3-
It is 5μm. The small conidia are colorless, smooth, unchained, 7.5-15.0 x 5.0-7.5 μm, and are mostly pear-shaped, although elliptical or subglobular ones are also present. Small conidiophores form phialides on hyphae and are 5-20 x 2.5-4.5 μm. Neither chlamydospores nor complete generations are observed. On the other hand, it does not grow at 37℃. As a result of searching for strains with the above characteristics, I found "The genus Fasarium" by C. Booth.
pp. 83-84, published 1971, Commonwealth
The mycological characteristics of Fusarium tricintum were in good agreement with those described in detail in the Mycological Institute, Kew, England. Therefore,
The SANK10382 strain was identified as Fusarium tricinctum. And SANK15680 stock, SANK10182 stock,
SANK10282 strain and SANK10382 strain have been deposited with the Institute of Microbial Technology, Agency of Industrial Science and Technology, and their microbial deposit numbers are No. 6534 and 6535, respectively.
No. 6536 and No. 6537. Although the phosphonochlorin-producing bacteria have been explained above, it is well known that the properties of these fungi are not constant and can easily change naturally or artificially, and the strains that can be used in the present invention are of the genus Talaromyces. It also includes all strains that produce phosphonochlorin belonging to the genus Fusarium. Furthermore, the incomplete generation of Talaromyces flavus is known as Penicillium dangeldei;
Furthermore, since the complete generation of Fusarium avenaceum is well known as Gibberella avenacea, these strains are naturally capable of producing phosphonochlorin and are included in the phosphonochlorin-producing bacteria of the present invention. Cultivation in the present invention is carried out in accordance with the cultivation method for general microorganisms, and is preferably carried out by shaking culture in a liquid medium or aerated agitation culture. Examples of medium components include carbon sources such as glucose, maltose, sucrose, mannitol, molasses, glycerin, dextrin, starch, soybean oil, and cottonseed oil, and nitrogen sources such as soybean flour, peanut flour, cottonseed flour, casamino acids, and firmamine. , fishmeal, corn
Steep liquor, peptone, meat extract, yeast, yeast extract, sodium nitrate, ammonium nitrate, ammonium sulfate, etc., and inorganic salts such as common salt, phosphate, calcium carbonate, trace metal salts, etc. are added as appropriate. During liquid culture, silicone oil, vegetable oil, surfactant, etc. are appropriately used as antifoaming agents. The pH of the medium is weakly acidic to near neutral, and the culture temperature is preferably 20°C to 30°C, particularly around 24°C. Time-dependent changes in the titer of phosphonochlorin produced as the culture progresses Paper disc with Proteus mirabilis SANK70461 as the test bacterium (Toyo Kagaku Sangyo)
It was measured using the 8mm diameter test method. The production of phosphonochlorin usually reaches its maximum value after 120 to 130 hours of culture. Phosphonochlorin, which mainly exists in the liquid part of the culture solution, can be removed by removing the bacterial cells and other solid parts after the culture is over by over-operation using diatomaceous earth as an aid, or by centrifugation. Alternatively, it is extracted and purified from the supernatant. Phosphonochlorin can be collected by utilizing its physicochemical properties, for example, using an adsorbent. Examples of adsorbents include activated carbon or adsorption resin Amberlite.
XAD-2, XAD-4, XAD-7, etc. (ROHM
and Haas), Diaion HP10,
HP20, HP20AG, HP50, etc. (manufactured by Mitsubishi Chemical Industries, Ltd.)
The solution containing phosphonochlorin is passed through a layer of adsorbent as mentioned above to adsorb and remove the contained impurities, or after adsorbing phosphonochlorin, methanol water, acetone water, n-butanol is used. Elute using water etc. Utilizing the fact that it behaves as an acidic substance, it can be purified by adsorption and desorption onto an anion or cation exchanger. Examples of anion exchangers include DEAE-cellulose (manufactured by Braun), DEAE-cephadex, QAE-cephadex (manufactured by Pharmacia), Duolite A-
2. A-2 (manufactured by Diamond Shamrock Chemical Co.), Amberlite IRA-68 (ROHM
& Haas), Dowex 1×4,
21K (manufactured by Dow Chemical Company) etc. can be used. or,
Amberlite IRC as a cation exchanger
50, Dowex 50W, etc. can be used. In addition, by utilizing the properties of acidic substances as mentioned above, phosphonochlorin can be extracted from an aqueous solution by dissolving a quaternary ammonium salt such as dimethyl benzyl cetyl ammonium chloride in a solvent that is immiscible with water, such as dichloromethane. A method of extraction as a salt is also used. To further purify phosphonochlorin, use cellulose such as Avicel (manufactured by Asahi Kasei Corporation) or Cephadex LH-20 (manufactured by Pharmacia).
partition column chromatography using a carrier such as silica gel, alumina, or adsorption column chromatography using a carrier such as Florisil, or reverse phase column chromatography using a carrier for reversed phase,
Effective methods include an extraction method that utilizes the difference in the distribution ratio of phosphonochlorin and mixed impurities to the solvent, or a countercurrent distribution method. Phosphonochlorin can be purified by repeatedly using the above purification means alone or in appropriate combinations. The phosphonochlorin thus obtained can be converted into a pharmacologically acceptable salt according to a conventional method, if desired. The phosphonochlorin thus obtained has the following physicochemical properties. 1. Properties of the substance: acidic, water-soluble colorless oily substance 2. Specific optical rotation: [α] 25 D O (C, 0.56, water) 3. Molecular formula: C 2 H 4 O 4 PCl (high-resolution mass spectrometry of trimethylsilyl derivatives) 4 Molecular weight: 158 (measured by mass spectrometry of trimethylsilyl derivatives) 5 Ultraviolet absorption spectrum: λ nax nm (E1% 1cm) The ultraviolet absorption spectrum measured in an aqueous solution was 276nm (E1%) as shown in Figure 1. Maximum absorption is shown at 1 cm = 19.7). 6 Infrared absorption spectrum: ν KBr nax cm -1 The infrared absorption spectrum of the sodium salt measured with a KBr disk is shown in FIG. 3150, 1690, 1620, 1400, 1200 - 1050, 910 7 Nuclear magnetic resonance absorption spectrum: δ: ppm Nuclear magnetic resonance absorption spectrum (90MHz) measured using TMS (tetramethylsilane) as an internal standard in DMSO- d6 ) is as shown in Figure 3. 3.7 (2H, d) 8 Solubility: Soluble in water and methanol, insoluble in acetone, chloroform, and ethyl acetate. 9 Color reaction: 1% ammonium molybdate solution - positive for 50% sulfuric acid, iodine, bromo cresol green. 10 Thin layer chromatography: R f value 0.46 Adsorbent: Merck silica gel plate No. 5715 Developing solvent: 70% n-propanol-water11 Antibacterial activity: Minimum inhibitory concentration (MIC) of phosphonochlorin against various microorganisms is shown in Table 1. The MIC values for each microorganism were measured after culturing at 37°C for 24 hours using the agar dilution method using an ordinary agar medium manufactured by Difco.

【表】 上記の如きホスホノクロリンの特性を既知抗生
物質の諸性状と比較した結果新規抗生物質と判定
された。 ホスホノクロリンはグラム陽性細菌およびグラ
ム陰性細菌に起因する感染症、例えば敗血症、呼
吸器感染症、尿路感染症などに使用される。投与
形態としては経口または非経口投与である。経口
投与としては、例えば錠剤、カプセル剤、散剤、
顆粒剤であり、非経口投与としては例えば注射剤
である。注射剤の調製時にはオートクレーブによ
る滅菌よりもミリポアフイルターなどを用いて除
菌するのが好ましい。投与量は症状、年令、体重
その他により異なるが、通常成人に対して1日約
200mg乃至2000mgを1回または数回に分けて投与
するのが好ましい。必要に応じてこの投与量は更
に増減できる。 次に実施例をあげて本発明を更に詳しく説明す
るが、本発明はこれらの実施例に限定されるもの
ではない。 実施例 1 フザリウム・オキシスポラムSANK10182株を
マツシユポテト2.5%、シユクロース2.0%、カザ
ミノ酸1.0%、リン酸―カリウム0.5%、硫酸マグ
ネシウム0.25%(滅菌前PH無調整)からなる培地
80mlを含む500ml容三角フラスコ(ヘソ付)10本
にそれぞれ一白金耳ずつ接種し24℃で120時間培
養した。この培養液600mlをダウエツクス1×
4(CH3COO-型)40mlのカラムに吸着させた。
カラムと2.5%酢酸で洗浄後、PH5.0の2.5%酢酸、
ピリジン緩衝液で溶出し活性分画200mlを得た。
この活性分画を減圧下濃縮しPH3.0に調整後、ア
ンバーライトCG―50(H+型)100mlのカラムに吸
着させ、水で展開し活性分画45mlを得た。得られ
た活性分画を稀水酸化ナトリウム水溶液でPH7.0
に調整後、凍結乾燥することによりホスホノクロ
リン7mgを含む粗粉末55mgを得た。 実施例 2 タラロマイセス・フラバスSANK15680株をマ
ツシユポテト2.5%、シユクロース2.0%、カザミ
ノ酸1.0%、リン酸―カリウム0.5%、硫酸マグネ
シウム0.25%(滅菌前PH無調整)からなる培地80
mlを含む500ml容三角フラスコ(ヘソ付)10本に
それぞれ一白金耳ずつ接種し、220rpmの回転振
盪培養機により24℃にて96時間培養した。この培
養液を同一の培地80mlを含む500ml容三角フラス
コ(ヘソ付)125本に5%接種し220rpmの回転振
盪培養機により24℃にて120時間培養した。得ら
れた培養液を合わせ、セライトを加えて過し、
液10を得た。この液をクロマト用活性炭1
のカラムを通過させ、通過液をダウエツクス
21K(CH3COO-型)600mlのカラムに吸着させた。
カラムを2.5%酢酸で洗浄後、PH5.0の2.5%酢酸―
ピリジン緩衝液で溶出し活性分画約1700mlを得
た。この活性分画を減圧下で濃縮し、酢酸・ピリ
ジン緩衝液を留去後ダウエツクス50W×4(H+
型)200mlのカラムに吸着させ水で展開し、活性
分画140mlを得た。更にこの活性分画を減圧下濃
縮しアンバーライトCG―50(H+型)400mlのカラ
ムに吸着させ水で展開し活性分画150mlを得た。
更に活性分画を減圧下で濃縮し、ダウエツクス
50W×4(H+型)1のカラムに吸着させ水で展
開し得られた活性分画80mlを減圧下濃縮乾固して
ホスホノクロリン450mgを得た。 実施例 3 タラロマイセス・フラバスSANK15680株を実
施例1と同様に培養し得られた培養液30をダ
ウエツクス21K(CH3COO-型)1.8に吸着せし
め、2.5%酢酸水で洗浄後、PH5.0の2.5%酢酸・ピ
リジン緩衝液で溶出し活性分画として15を得
た。この活性分画を減圧不濃縮して酢酸・ピリジ
ン緩衝液を留去した。500mlに濃縮しダウエツク
ス50W×4(H+型)1000mlのカラムに吸着させ、
水で展開し活性分画327mlを得た。この活性分画
を減圧下濃縮しアンバーライトCG―50(H+型)
1000mlのカラムに吸着後、水で展開し活性分画
445mlを得た。この活性分画を0.05M、PH5.0をト
リエチルアミン・酢酸緩衝液で緩衝化したDEAE
―セフアデツクスA―25 150mlのカラムに吸着せ
しめPH5.0の0.05Mから0.1Mのトリエチルアミ
ン・酢酸緩衝液で順次溶出し5の活性分画を得
た。更にこの活性分画を減圧下で濃縮し、ダウエ
ツクス50W×4(H+型)1のカラムに吸着させ
水で展開し活性分画300mlを得た。更にこの活性
分画を減圧下で濃縮し、アンバーライトCG―50
(H+型)1のカラムに吸着させ水で溶出した。
得られた活性分画420mlを減圧下で濃縮乾固して
油状物1.4gを得た。得られた油状物185mgをメル
ク社製シリカゲルプレートNo.5715(20×20cm)10
枚に吸着せしめ、70%n―プロパノール―水で15
cm展開させヨードによる呈色反応で陽性の部分を
かき取り80%メタノール―水で溶出した。溶出液
を減圧下で濃縮してメタノールを留去後、ダウエ
ツクス50W×4(H+型)1のカラムに吸着させ
水で溶出を行いフラクシヨン33〜38(分画10ml)
の活性分画60mlを集めた。この活性分画を1/25N
NaOHでPHを7.0に調整し、次いで減圧下で濃
縮し凍結乾燥を行つて白色粉末のホスホノクロリ
ンのナトリウム塩71.2mgを得た。
[Table] As a result of comparing the properties of phosphonochlorin with those of known antibiotics, it was determined to be a new antibiotic. Phosphonochlorins are used for infections caused by Gram-positive and Gram-negative bacteria, such as sepsis, respiratory infections, and urinary tract infections. The mode of administration is oral or parenteral. For oral administration, for example, tablets, capsules, powders,
It is a granule, and for parenteral administration, for example, an injection. When preparing injections, it is preferable to sterilize using a Millipore filter or the like rather than sterilizing with an autoclave. The dosage varies depending on symptoms, age, weight, etc., but is usually about 1 day per day for adults.
It is preferable to administer 200 mg to 2000 mg once or in divided doses. This dosage can be further increased or decreased as necessary. Next, the present invention will be explained in more detail with reference to Examples, but the present invention is not limited to these Examples. Example 1 Fusarium oxysporum SANK10182 strain was grown in a medium consisting of 2.5% pine potato, 2.0% sucrose, 1.0% casamino acid, 0.5% potassium phosphate, and 0.25% magnesium sulfate (no PH adjustment before sterilization).
One platinum loopful was inoculated into ten 500 ml Erlenmeyer flasks (with navels) each containing 80 ml, and cultured at 24°C for 120 hours. Add 600ml of this culture solution to Dowex 1x.
4 (CH 3 COO - form) was adsorbed onto a 40 ml column.
After washing the column and 2.5% acetic acid, 2.5% acetic acid at PH5.0;
Elution was carried out with pyridine buffer to obtain 200 ml of active fraction.
After concentrating this active fraction under reduced pressure and adjusting the pH to 3.0, it was adsorbed on a 100 ml column of Amberlite CG-50 (H + type) and developed with water to obtain 45 ml of an active fraction. The obtained active fraction was diluted to pH7.0 with dilute aqueous sodium hydroxide solution.
After adjustment, 55 mg of crude powder containing 7 mg of phosphonochlorin was obtained by freeze-drying. Example 2 Talaromyces flavus SANK15680 strain was grown in a medium 80 containing 2.5% mash potato, 2.0% sucrose, 1.0% casamino acid, 0.5% potassium phosphate, and 0.25% magnesium sulfate (no PH adjustment before sterilization).
One platinum loopful was inoculated into ten 500 ml Erlenmeyer flasks (with navels) each containing 500 ml, and cultured at 24°C for 96 hours in a rotary shaking incubator at 220 rpm. This culture solution was inoculated at 5% into 125 500 ml Erlenmeyer flasks (with navel attachments) containing 80 ml of the same medium, and cultured at 24°C for 120 hours in a rotary shaking incubator at 220 rpm. Combine the obtained culture solutions, add celite and filter.
Liquid 10 was obtained. Activated carbon for chromatography
column and dowex the passing liquid.
It was adsorbed onto a 600 ml column of 21K (CH 3 COO - type).
After washing the column with 2.5% acetic acid, wash the column with 2.5% acetic acid at pH 5.0.
About 1700 ml of active fraction was obtained by elution with pyridine buffer. This active fraction was concentrated under reduced pressure, and after distilling off the acetic acid/pyridine buffer, Dowex 50W x 4 (H +
It was adsorbed onto a 200 ml column (type) and developed with water to obtain 140 ml of active fraction. Further, this active fraction was concentrated under reduced pressure, adsorbed onto a 400 ml column of Amberlite CG-50 (H + type), and developed with water to obtain 150 ml of an active fraction.
The active fraction was further concentrated under reduced pressure and
The active fraction (80 ml) was adsorbed on a 50 W x 4 (H + type) column and developed with water, and the resulting active fraction was concentrated to dryness under reduced pressure to obtain 450 mg of phosphonochlorin. Example 3 Talaromyces flavus SANK15680 strain was cultured in the same manner as in Example 1, and the resulting culture solution 30 was adsorbed on Dowex 21K (CH 3 COO - type) 1.8, washed with 2.5% acetic acid water, and then adjusted to pH 5.0. 15 was obtained as an active fraction by elution with 2.5% acetic acid/pyridine buffer. This active fraction was concentrated under reduced pressure to remove the acetic acid/pyridine buffer. Concentrate to 500ml and adsorb onto a 1000ml column of Dowex 50W x 4 (H + type).
It was developed with water to obtain 327 ml of active fraction. This active fraction was concentrated under reduced pressure to form Amberlite CG-50 (H + type).
After adsorption on a 1000ml column, develop with water and separate the active fraction.
Obtained 445ml. DEAE buffered this active fraction with triethylamine/acetate buffer at 0.05M and pH5.0.
-Sephadex A-25 It was adsorbed onto a 150ml column and sequentially eluted with 0.05M to 0.1M triethylamine/acetic acid buffer at pH 5.0 to obtain active fraction 5. Further, this active fraction was concentrated under reduced pressure, adsorbed onto a column of Dowex 50W x 4 (H + type) and developed with water to obtain 300 ml of an active fraction. Furthermore, this active fraction was concentrated under reduced pressure, and Amberlite CG-50
(H + form) was adsorbed onto a column of 1 and eluted with water.
420 ml of the obtained active fraction was concentrated to dryness under reduced pressure to obtain 1.4 g of an oil. 185 mg of the obtained oil was transferred to Merck's silica gel plate No. 5715 (20 x 20 cm) 10
Adsorb it onto a sheet and add 70% n-propanol-water for 15 minutes.
After cm development, the positive part was scraped off by color reaction with iodine and eluted with 80% methanol-water. After concentrating the eluate under reduced pressure to remove methanol, it was adsorbed onto a column of Dowex 50W x 4 (H + type) and eluted with water to obtain fractions 33 to 38 (fraction 10 ml).
60 ml of the active fraction was collected. This active fraction is 1/25N
The pH was adjusted to 7.0 with NaOH, and then concentrated under reduced pressure and freeze-dried to obtain 71.2 mg of the sodium salt of phosphonochlorin as a white powder.

【図面の簡単な説明】[Brief explanation of drawings]

第1図はホスホノクロリンの紫外線吸収スペク
トルを示す。図中、1は0.01N塩酸水溶液、2は
PH7.0、3は0.01N水酸化ナトリウム水溶液を示
す。第2図は同物質の赤外線吸収スペクトルを示
し、第3図は同物質の核磁気共鳴吸収スペクトル
を示す。
FIG. 1 shows the ultraviolet absorption spectrum of phosphonochlorin. In the figure, 1 is 0.01N hydrochloric acid aqueous solution, 2 is
PH7.0, 3 indicates 0.01N sodium hydroxide aqueous solution. FIG. 2 shows the infrared absorption spectrum of the same material, and FIG. 3 shows the nuclear magnetic resonance absorption spectrum of the same material.

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1 抗生物質ホスホノクロリンおよびその薬理上
許容される塩。ここにホスホノクロリンは下記の
特性を有する。 1 物質の性状:酸性、水溶性の無色油状物質 2 比旋光度:[α]25 D O(C、0.56、水) 3 分子式:C2H4O4PCl(トリメチルシリル誘導
体の高分解能マススペクトル法により測定) 4 分子量:158(トリメチルシリル誘導体のマス
スペクトル法により測定) 5 紫外線吸収スペクトル:λnaxnm(E1% 1cm) 水溶液中で測定した紫外線吸収スペクトルは
276nm(E1% 1cm=19.7)に極大吸収を示す。 6 赤外線吸収スペクトル:νKBr naxcm-1 KBrデイスクで測定したナトリウム塩の赤
外線吸収スペクトルは次の通りである。 3150,1690,1620,1400,1200〜1050,910 7 核磁気共鳴吸収スペクトル:δ:ppm DMSO―d6中内部基準にTMS(テトラメチ
ルシラン)を使用して測定した核磁気共鳴吸収
スペクトル(90MHz)は次の通りである。 3.7(2H,d) 8 溶解性: 水、メタノールに可溶、アセトン、クロロホ
ルム、酢酸エチルに不溶。 9 呈色反応: 1%モリブデン酸アンモニウム溶液―50%硫
酸、ヨード、ブロモ・クレゾール・グリーンに
陽性。 10 薄層クロマトグラフイー:Rf値 0.46 吸着剤:メルク社製シリカゲルプレートNo.5715 展開溶媒:70%n―プロパノール―水 2 タラロマイセス属またはフザリウム属に属す
るホスホノクロリン生産菌を培養してその培養物
よりホスホノクロリンを採取することよりなるホ
スホノクロリンの製造法。ここにホスホノクロリ
ンは次の理化学的性状を有する。 1 物質の性状:酸性、水溶性の無色油状物質 2 比旋光度:[α]25 D O(C、0.56、水) 3 分子式:C2H4O4PCl(トリメチルシリル誘導
体の高分解能マススペクトル法により測定) 4 分子量:158(トリメチルシリル誘導体のマス
スペクトル法により測定) 5 紫外線吸収スペクトル:λnaxnm(E1% 1cm) 水溶液中で測定した紫外線吸収スペクトルは
276nm(E1% 1cm=19.7)に極大吸収を示す。 6 赤外線吸収スペクトル:νKBr naxcm-1 KBrデイスクで測定したナトリウム塩の赤
外線吸収スペクトルは次の通りである。 3150,1690,1620,1400,1200〜1050,910 7 核磁気共鳴吸収スペクトル:δ:ppm DMSO―d6中内部基準にTMS(テトラメチ
ルシラン)を使用して測定した核磁気共鳴吸収
スペクトル(90MHz)は次の通りである。 3.7(2H,d) 8 溶解性: 水、メタノールに可溶、アセトン、クロロホ
ルム、酢酸エチルに不溶。 9 呈色反応: 1%モリブデン酸アンモニウム溶液―50%硫
酸、ヨード、ブロモ・クレゾール・グリーンに
陽性。 10 薄層クロマトグラフイー:Rf値 0.46 吸着剤:メルク社製シリカゲルプレートNo.5715 展開溶媒:70%n―プロパノール―水 3 タラロマイセス属、またはフザリウム属に属
するホスホノクロリン生産菌がタラロマイセス・
フラバス SANK15680株(微工研菌寄第6534
号)、フザリウム・オキシスポラム
SANK10182株(微工研菌寄第6535号)、フザリ
ウム・アベナセウム SANK10282株(微工研菌
寄第6536号)およびフザリウム・トリシンクタム
SANK10382株(微工研菌寄第6537号)である
特許請求の範囲第2項記載の製造法。
[Claims] 1. Antibiotic phosphonochlorin and its pharmacologically acceptable salts. Here, phosphonochlorin has the following properties. 1. Properties of substance: acidic, water-soluble colorless oily substance 2. Specific rotation: [α] 25 D O (C, 0.56, water) 3. Molecular formula: C 2 H 4 O 4 PCl (high-resolution mass spectrometry of trimethylsilyl derivatives) 4 Molecular weight: 158 (measured by mass spectrometry of trimethylsilyl derivatives) 5 Ultraviolet absorption spectrum: λ nax nm (E1% 1cm) The ultraviolet absorption spectrum measured in an aqueous solution is
It exhibits maximum absorption at 276 nm (E1% 1 cm = 19.7). 6 Infrared absorption spectrum: ν KBr nax cm -1 The infrared absorption spectrum of the sodium salt measured with a KBr disk is as follows. 3150, 1690, 1620, 1400, 1200 - 1050, 910 7 Nuclear magnetic resonance absorption spectrum: δ: ppm Nuclear magnetic resonance absorption spectrum (90MHz) measured using TMS (tetramethylsilane) as an internal standard in DMSO- d6 ) is as follows. 3.7 (2H, d) 8 Solubility: Soluble in water and methanol, insoluble in acetone, chloroform, and ethyl acetate. 9 Color reaction: 1% ammonium molybdate solution - positive for 50% sulfuric acid, iodine, bromo cresol green. 10 Thin layer chromatography: R f value 0.46 Adsorbent: Merck silica gel plate No. 5715 Developing solvent: 70% n-propanol-water 2 Phosphonochlorin-producing bacteria belonging to the genus Talaromyces or Fusarium were cultured. A method for producing phosphonochlorin, which comprises collecting phosphonochlorin from a culture. Here, phosphonochlorin has the following physical and chemical properties. 1. Properties of substance: acidic, water-soluble colorless oily substance 2. Specific rotation: [α] 25 D O (C, 0.56, water) 3. Molecular formula: C 2 H 4 O 4 PCl (high-resolution mass spectrometry of trimethylsilyl derivatives) 4 Molecular weight: 158 (measured by mass spectrometry of trimethylsilyl derivatives) 5 Ultraviolet absorption spectrum: λ nax nm (E1% 1cm) The ultraviolet absorption spectrum measured in an aqueous solution is
It exhibits maximum absorption at 276 nm (E1% 1 cm = 19.7). 6 Infrared absorption spectrum: ν KBr nax cm -1 The infrared absorption spectrum of the sodium salt measured with a KBr disk is as follows. 3150, 1690, 1620, 1400, 1200 - 1050, 910 7 Nuclear magnetic resonance absorption spectrum: δ: ppm Nuclear magnetic resonance absorption spectrum (90MHz) measured using TMS (tetramethylsilane) as an internal standard in DMSO- d6 ) is as follows. 3.7 (2H, d) 8 Solubility: Soluble in water and methanol, insoluble in acetone, chloroform, and ethyl acetate. 9 Color reaction: 1% ammonium molybdate solution - positive for 50% sulfuric acid, iodine, bromo cresol green. 10 Thin layer chromatography: R f value 0.46 Adsorbent: Merck silica gel plate No. 5715 Developing solvent: 70% n-propanol-water 3 Phosphonochlorin-producing bacteria belonging to the genus Talaromyces or the genus Fusarium are Talaromyces.
Flavus SANK15680 strain (Feikoken Bacteria No. 6534
), Fusarium oxysporum
SANK10182 strain (Feikoken Bacillus No. 6535), Fusarium avenaceum SANK10282 strain (Feikoku Kenkyori No. 6536), and Fusarium tricincumum
The production method according to claim 2, which is the SANK10382 strain (Feikoken Bibori No. 6537).
JP57090430A 1982-05-27 1982-05-27 Antibiotic substance fosfonochlorin and its preparation Granted JPS58209986A (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP57090430A JPS58209986A (en) 1982-05-27 1982-05-27 Antibiotic substance fosfonochlorin and its preparation

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP57090430A JPS58209986A (en) 1982-05-27 1982-05-27 Antibiotic substance fosfonochlorin and its preparation

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JPS58209986A JPS58209986A (en) 1983-12-07
JPH0158197B2 true JPH0158197B2 (en) 1989-12-11

Family

ID=13998387

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP57090430A Granted JPS58209986A (en) 1982-05-27 1982-05-27 Antibiotic substance fosfonochlorin and its preparation

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JPS58209986A (en)

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AU2000228300A1 (en) * 2000-03-06 2001-09-17 The Kitasato Institute Novel substance fki-0076 and process for producing the same

Also Published As

Publication number Publication date
JPS58209986A (en) 1983-12-07

Similar Documents

Publication Publication Date Title
NO149239B (en) OFFSHORE CONSTRUCTION.
JP2860370B2 (en) Antibiotics BU-3608D and BU-3608E
JPH0158197B2 (en)
JP2768829B2 (en) Antibiotics
KR950013857B1 (en) Preparation method of new antibiotics called mureidomycins a,b,c and d and their therapeutic use
JPH0637486B2 (en) Novel antibiotic phthalexin and method for producing the same
JP2863934B2 (en) Antibiotic plus basin
JPH05170784A (en) Antifungal substance be-29602
JP4342048B2 (en) Antibiotics tuberacutomycin B, D and E and methods for their production
CA1108075A (en) Process for preparing cephamycin c
JPS6113798B2 (en)
JPH0474163A (en) New physiologically active substance mbp049-13 and production thereof
WO1994012458A1 (en) Saintopin derivative
JP2003012687A (en) Antibiotic substance caprazamycin d, g, d1, and g1 and method for producing the same
JPH05239023A (en) Physiologically active substance mbp039-06 and its production
JPH05155876A (en) Novel antibiotics: mer-af1032a and mer-af1032b
JPH0432816B2 (en)
JPH0585998A (en) New compounds ca39-a and ca39-b, their use and production
JPS634834B2 (en)
JPS6125355B2 (en)
JPS59120095A (en) Antibiotic oxirapentyn and its preparation
JPH0680607A (en) Malbranicin
JPH1112296A (en) Antifungal compound afa0424
NO118146B (en)
JPS62164679A (en) Antibiotic oxaspirol c