JPH0155416B2 - - Google Patents

Info

Publication number
JPH0155416B2
JPH0155416B2 JP57135952A JP13595282A JPH0155416B2 JP H0155416 B2 JPH0155416 B2 JP H0155416B2 JP 57135952 A JP57135952 A JP 57135952A JP 13595282 A JP13595282 A JP 13595282A JP H0155416 B2 JPH0155416 B2 JP H0155416B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
blood
serum
polyamine sulfone
separating
weight
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired
Application number
JP57135952A
Other languages
Japanese (ja)
Other versions
JPS5926062A (en
Inventor
Hideo Anraku
Kazuhiko Kamyoshi
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Sekisui Chemical Co Ltd
Original Assignee
Sekisui Chemical Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Sekisui Chemical Co Ltd filed Critical Sekisui Chemical Co Ltd
Priority to JP57135952A priority Critical patent/JPS5926062A/en
Publication of JPS5926062A publication Critical patent/JPS5926062A/en
Publication of JPH0155416B2 publication Critical patent/JPH0155416B2/ja
Granted legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/5002Partitioning blood components

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)

Description

【発明の詳細な説明】 本発明は血清と血餅との分離方法に関し、群し
くはヘパリン投与を受けている被検者の全血試料
から遠心分離により血清と血餅を分離する方法に
関する。 近年、検査技術の目ざましい進歩と相俟つて、
血清生化学検査、血清免疫学検査、血球検査等の
血液検査が広く普及し、病気予防や早期診断に大
きく貢献するに至つている。血清検査は、血液検
査の主体をなしており、検査に要する血清は通
常、血液検査用容器に採取した血液を凝固させた
後、遠心分離によつて、比重の異なる血餅(フイ
プリンと血球が混合したゲル様塊状物)から分離
している。 そして血液を遠心分離操作に付して血清と血餅
とに分けた後、血清部分をピペツトで吸上げた
り、デカンテーシヨンにより採取することが行な
われている。血清部分の採取は、血液に凝固を持
つて行なわれるが、凝固迄にかなりの時間を必要
とし、迅速に検査を実施できない点が問題となつ
ている。 正常健康人の血液においても血液凝固に時間が
かゝる点は大きな問題であるが、人工透析を受け
ている患者や血栓症の患者の場合は、血栓防止の
為にヘパリン投与を受けており、このような患者
の血液中にはかなりの濃度のヘパリンが混入して
おり、臨床検査に当つて血液凝固が起り難いため
に血清を分離採取することが困難であつた。 本発明はこのような患者血液に対しても血液凝
固に要する時間を大幅に短縮させると共に、血清
成分と血餅成分を良好に分離する方法を提供する
ことを目的とする。 本発明の要旨は、 1 血液を遠心分離操作に付して血清と血餅とに
分離する方法において、血液検査用容器内に血
液を採取した後、該血液中に、 式 (但し式中R1乃至R4は水素原子、メチル基又
はエチル基、Xは塩素又は臭素、nは正の整数
を示す。)で表わされ、平均分子量が2000乃至
35万であるポリアミンスルホンを、血液量10c.c.
当り0.005mgないし5mgの範囲で添加すること
により、血液中にポリアミンスルホンを存在さ
せることを特徴とする、血清と血餅との分離方
法 2 血液を遠心分離操作に付して血清と血餅とに
分離する方法において、血液検査用容器内に血
液を採取した後、該血液中に、 式 (但し式中R1乃至R4は水素原子、メチル基又
はエチル基、Xは塩素又は臭素、nは正の整数
を示す。)で表わされ、平均分子量が2000乃至
35万であるポリアミンスルホン(イ)と、ガラス、
シリカ、、カオリン、セライトおよびベントナ
イトからなる群から選ばれ、粒径が50μm以下
であつて、平均粒径が10μm以下のものであ
り、アマニ油吸油量が20〜40ml/100g、BET
比表面積値が5000〜30000cm2/g、比抵抗値が
1×1010Ω・cm以下である吸着性無機物(ロ)と
を、該(イ)と該(ロ)の割合が0.0005乃至10重量部:
1重量部の範囲内で添加し、且つ、該(イ)の添加
量を血液量10c.c.当り0.005mgないし5mgの範囲
となすことにより、血液中にポリアミンスルホ
ンと吸着性無機物を存在させることを特徴とす
る、血清と血餅との分離方法 3 血液を遠心分離操作に付して血清と血餅とに
分離する方法において、血液検査用容器内に血
液を採取した後、該血液中に、 式 (但し式中R1乃至R4は水素原子、メチル基又
はエチル基、Xは塩素又は臭素、nは正の整数
を示す。)で表わされ、平均分子量が2000乃至
35万であるポリアミンスルホン(イ)と、エラジン
酸(ロ)とを、該(イ)と該(ロ)の割合が0.0003乃至6重
量部:1重量部の範囲内で添加し、且つ、該(イ)
の添加量を血液量10c.c.当り0.005mgないし5mg
の範囲となすことにより、血液中にポリアミン
スルホンとエラジン酸を存在させることを特徴
とする、血清と血餅との分離方法に存する。 次に本発明血清と血餅との分離方法について更
に詳細に説明する。 被検者の全血試料を遠心分離操作に付して血清
と血餅を分離するために、血液は検査用容器に入
れられて凝固される。 しかし正常健康人においても、そのまゝ枚置し
ただけでは凝固に時間がかゝるが、人工透析を受
けている患者や血栓症の患者の場合はヘパリン投
与を受けているため血液中にヘパリンが存在しそ
の作用によつて血液凝固を起しにくい。 このため、本発明においては検査用容器内に血
液を採取した後、該血液中のポリアミンスルホン
を添加する。ポリアミンスルホンはジアリルアミ
ン系モノマーと二酸化イオウを共重合させて得ら
れるものであり、次式で表わされるものが使用さ
れる。 (但し式中R1乃至R4は水素原子、メチル基又は
エチル基、Xは塩素又は臭素、nは正の整数を示
す。) 本発明において、ポリアミンスルホンの分子量
は、平均分子量が2000乃至35万の範囲のものが使
用される。 ポリアミンスルホンは、例えばジアリルアミ
ン、ジメタアリルアミン又はこれらの誘導体の塩
素化物又は臭素化物等のジアリルアミン系モノマ
ーと、二酸化イオウを、水、メチルアルコール、
エチルアルコール、ジメチルホルムアミド、ジメ
チルスルホキシド等の溶媒中に溶解させ、t―ブ
チルヒドロパーオキシド、アゾビスイソブチロニ
トリル、過硫酸アンモニウム等を重合触媒とし、
30℃程度に加温してラジカル重合を行なわせるこ
とにより得ることができる。 ポリマーの末端には触媒切片が付くので、例え
ばt―ブチルヒドロパーオキシドを触媒とした場
合は、一方の末端にt―ブチルオキシ基、他方の
末端に水酸基が付くことになる。 上記のポリアミンスルホンにおいて最適なもの
は、R1、R2が水素原子、R3、R4がメチル基、X
が塩素原子の場合であつて、平均分子量が2000乃
至35万の範囲内に存するものである。血液検査容
器に入れられた血液中に添加されたポリアミンス
ルホンはヘパリンを含有する血液と接触するさ
い、速やかにヘパリンの作用を消失せしめ、血液
の正常な凝固機能を回復させることによつて、血
液検査容器中の血液を短時間内に凝固させ、凝固
完了後、遠心分離等の手段によつて血餅と血清に
分離させることにより、血清を容易に採取するこ
とができる。 この点を更に詳述すると、通常の血液に於いて
は血液容器の内壁面との接触により、直ちに凝固
因子中の第XII因子の活性化が進み、これが起点と
なつて、連鎖反応的に凝固が進行し、最終的に
は、プロトロンビンの活性化により生成されたト
ロンビンがフイブリノーゲンに働いて不溶性のフ
イブリン網を形成し、凝固は完了する。一方ヘパ
リンが添加されている血液では、ヘパリンが血液
中に存在するアンチトロンビンと協同的に作用し
てトロンビンの働らきを顕著に阻害する。ヘパリ
ンはトロンビンの作用を阻害するのみならず、第
XII因子をはじめ、その他の凝固因子の作用をも阻
害すると言われている。従つて、通常の手段では
ヘパリン含有血液においてはフイブリノーゲンの
フイブリンへの転化は起らず、凝固が行なわれな
いために血清を分離採取することができない。 ヘパリン投与を受けている人工透析患者あるい
は血栓症患者の血液中には血液10c.c.当り1単位な
いし10単位のヘパリンが存在するものと考えられ
る。このようなヘパリン含有血液中にポリアミン
スルホンを存在させると、ヘパリンは吸着され、
血中から除去されるため、トロンビンをはじめ他
の血液凝固因子は正常な作用を取戻すに至る。 ポリアミンスルホンの適正な添加量は血液量10
c.c.当り0.005mgないし5mgの範囲にある。この範
囲より少ない場合には、ヘパリンを吸着する作用
が不足し、充分な血液凝固がもたらされない。ま
たこの範囲を越えると血清生化学検査等の臨床検
査値に異常値が出るおそれがある。ポリアミンス
ルホンと併用されることにより相乗的に血液凝固
促進効果を発揮する物質の一つは吸着性無機物で
ある。 吸着性無機物としては、吸着剤として使用され
ていたような無機物、すなわちガラス、シリカ、
カオリン、セライト、ベントナイト等の水不溶性
の無機質微粉末から選ばれる。 又、吸着性無機物は粒径が50μm以下であつ
て、平均粒径が10μm以下のものを使用する。そ
して特に血液凝固時間を短縮させるに有効な吸着
性無機物はシリカであり、とり分け無定形成分を
20重量%以上含有する多孔性のシリカがすぐれた
効果を発揮する。かゝる吸着性無機物は、血液と
接触した場合に血液凝固因子の活性化を促進し、
又血小板の凝固を促がす作用を有する。しかしな
がら吸着性無機物が血液凝固促進作用を効果的に
発揮するためには、アマニ油吸油量、BET比表
面積値、比抵抗値が一定の範囲内に存在すること
が好ましい。 アマニ油吸油量及びBET比表面積値は、吸着
性無機物の表面積の程度を表わし、又表面積は吸
着性無機物の有する表面孔〓の程度と関連するの
で、吸油量及び比表面積によつて表面孔〓の程度
を知ることができる。そして本発明における吸着
性無機物は、アマニ油吸油量が20〜40ml/100g、
BET比表面積値が5000〜30000cm2/gであるもの
が使用される。 アマニ油吸油量は日本工業規格K―5101に準拠
して測定される値を示す。BET比表面積値は、
吸着性無機物の表面に吸着される気体の吸着量、
その時の平衡圧、吸着ガスの飽和蒸気圧から単分
子層として表面をおゝい切る気体量を求め、これ
に吸着気体分子の平均断面積を乗じて算出された
値を指すものであり、吸着気体としては窒素ガ
ス、酸素ガス、アルゴンガス、メタンガス等が使
用される。そしてこの方法によれば、アマニ油吸
油量の測定によつては測定できない細孔を含めた
表面積値が測定される。血液凝固に際しては、第
XII因子、すなわち接触因子が活性化されるが、こ
のためには異物表面上に第XII因子、プレカリクレ
イン、高分子キニノーゲンの3種の物質が錯体を
形成して吸着されることが必要であり、これらの
一つ又は二つが欠けた状態での吸着は活性化に至
らないとされている。ところで、血液凝固促進作
用を期待して吸着性無機物を使用した場合に、表
面積が非常に大きなものであると、吸着性無機物
の表面上には錯体を形成しない状態での第XII因
子、プレカリクレイン、高分子キニノーゲンの吸
着の割合が高まることにより、言え換えると、第
XII因子の活性化に必要な三者の錯体形成割合は減
少することになり、かえつて血液凝固促進作用は
滅殺されることになる。 また逆に吸着性無機物の表面積が小さすぎる
と、凝固因子の吸着の確率が小さくなり、血液凝
固促進作用を期待することができなくなる。この
ために本発明における吸着性無機物はアマニ油吸
油量が20〜40ml/100g、BET比表面積値が5000
〜30000cm2/gの範囲の表面積を有するものが使
用される。 又、本発明における吸着性無機物の比抵抗値は
1×1010Ω・cm以下のものが使用され、最適には
5×104Ω・cm以下であるものが使用される。比
抵抗値は電気伝導度の逆数であり、常温における
値である。 使用割合は吸着性無機物1重量部当りポリアミ
ンスルホンが0.0005乃至10重量部の範囲内とされ
る。 ポリアミンスルホンと併用されることによつて
相乗的に血液凝固促進効果を発揮する他の物質は
エラジン酸である。 エラジン酸は次の化学構造式を有する物質であ
る。 エラジン酸は、血液凝固因子の一である第XII因
子を活性化する物質として知られているが、ポリ
アミンスルホンと併用する場合は、これらを単独
で使用する場合に比して一層優れた血液凝固促進
作用を有することが確認された。 使用割合は、エラジン酸1重量部当りポリアミ
ンスルホンが0.0003乃至6重量部の範囲内とされ
る。 ポリアミンスルホン又はこれと吸着性無機物エ
ラジン酸を血液中に存在させるためには、例えば
検査用容器内の血液中に直接添加してもよいし、
水等の分散媒に分散させたものを血液中に滴下し
てもよいし、比重が1.04〜1.06程度の担体に付着
させたものを血液中に添加してもよい。 本発明においてはポリアミンスルホン又はこれ
と吸着性無機物、エラジン酸を、血液検査用容器
内に血液を採取した後、該血液中に添加すること
により、血液中にポリアミンスルホン又はこれと
吸着性無機物、エラジン酸が存在されることによ
つて正常健康人の血清に対する血液凝固促進作用
がすぐれているだけでなく、人工透析を受けてい
る患者や血栓症の患者のように、ヘパリン投与を
受けている為に凝固を起し難い血液の場合におい
ても、すぐれた血液凝固促進作用を有し、遠心分
離にかけた際に血清と血餅との分離が容易に行な
われ、血清が良好な収量で得られる。 又、ポリアミンスルホンは耐熱性がすぐれてい
るので、オートクレーブを用いた滅菌処理にも耐
えることができ、滅菌処理を行つた後も血液検査
値に影響を与えることがない。 実施例 1 上式で表わされるポリアミンスルホン(分子量
2000乃至5000)について、0.2重量%の水溶液を
調整した。 10ml容量のガラス製スピツツに、ヘパリンが血
液1ml当り1.5単位含有されている人新鮮血5ml
を注入した後、直ちに前記ポリアミンスルホン水
溶液を0.05ml添加し、ゆるやかに混和後23℃で静
置した。この後、全血が完全に流動しなくなる迄
に要した時間を血液凝固時間として測定し、血液
凝固性を評価した。また血液凝固後、直ちに3000
回転/毎分の回転速度で5分間遠心分離を行ない
血清分離状態を観察した。また分離状態について
は24時間後再度観察し、フイブリンに析出の有無
を調べた。尚、血清分離状態は血清層における容
器壁面での残存血餅付着の有無及びフイブリン網
の析出の有無により評価した。 又、上記のポリアミンスルホン水溶液を10ml容
量のガラススピツツに0.05ml添加し、これを121
℃で20分間オートクレーブで滅菌処理した。これ
に前記ヘパリン含有血液5mlを注入し、23℃で静
置し、実施例1と同様にして血液凝固性、血清分
離状態、24時間後のフイブリン析出の有無を調べ
たが、オートクレーブ滅菌しない場合と差異は生
じなかつた。 実施例 2 実施例1における式で表わされるポリアミンス
ルホンについては分子量が17万乃至23万の範囲に
あるものを使用した以外は実施例1におけると同
様にして血液凝固時間、血清分離状態、24時間後
のフイブリンに析出の有無を調べた。その結果を
表1の実施例2の欄に示す。 実施例 3 実施例1において使用したと同じ分子量2000乃
至5000のポリアミンスルホンの0.2重量%水溶液
に吸着性無機物として微粉末シリカ(平均粒径
5μm、アマニ油吸油量30ml/100g、BET比表面
積値1.2×104cm2/g、比抵抗値2.6×104Ω・cm)
を2.0重量%量分散させたものを調整した。 10ml容量のポリエチレン樹脂製スピツツに、1
ml当り1.5単位の割合でヘパリンを含む人新鮮血
5mlを採血し、直ちに前記のシリカを分散させた
ポリアミンスルホン水溶液0.05mlを添加し、緩や
かに混和した後23℃で放置し、実施例1と同様に
して血液凝固時間、血清分離状態、24時間後のフ
イブリン析出の有無を調べた。その結果を表1の
実施例3の欄に示す。 実施例 4 実施例3において調整した微粉末シリカを分散
させたポリアミンスルホン水溶液をセルロース系
不織布に含浸、乾燥させて1cm2当りポリアミンス
ルホン0.1mg、微粉末シリカ1mgを含む不織布を
得た。 10ml容量のポリエチレン樹脂製スピツツに、1
ml当り1.5単位の割合でヘパリンを含む人新鮮血
5mlを採血し、直ちに前記不織布を1cm2投入し、
ゆるやかに混和して23℃で静置し、実施例1と同
様にして血液凝固性、血清分離状態、24時間後の
フイブリン析出の有無を調べた。その結果を表1
の実施例4の欄に記す。 実施例 5 実施例1において使用したと同じ分子量2000乃
至5000のポリアミンスルホンの2.0重量%水溶液
にエラジン酸を2.0重量%分散させたものを調整
した。 10ml容量のポリエチレン樹脂製スピツツに、1
ml当り1.5単位の割合でヘパリンを含む人新鮮血
5mlを採血し、直ちに前記のエラジン酸を分散さ
せたポリアミンスルホン水溶液0.05mlを添加し、
緩やかに混和した後23℃で放置し、実施例1と同
様にして血液凝固時間、血清分離状態、24時間後
のフイブリンの析出の有無を調べた。その結果を
表1の実施例5の欄に示す。 【表】
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION The present invention relates to a method for separating serum and blood clots, and more particularly, to a method for separating serum and blood clots from a whole blood sample of a subject receiving heparin administration by centrifugation. In recent years, coupled with the remarkable progress in inspection technology,
Blood tests such as serum biochemical tests, serum immunological tests, and hematology tests have become widely used, and have come to greatly contribute to disease prevention and early diagnosis. Serum tests are the main body of blood tests, and the serum required for tests is usually obtained by coagulating blood collected in a blood test container and then centrifuging it to form blood clots with different specific gravities (fibrin and blood cells). separated from the mixed gel-like mass). After the blood is separated into serum and blood clots by centrifugation, the serum portion is sucked up with a pipette or collected by decantation. The serum portion is collected by coagulating the blood, but the problem is that it takes a considerable amount of time for the blood to coagulate, making it impossible to perform tests quickly. It is a big problem that blood coagulation takes time even in the blood of normal healthy people, but patients undergoing artificial dialysis or patients with thrombosis are given heparin to prevent blood clots. The blood of such patients contains a considerable concentration of heparin, making it difficult to separate and collect serum during clinical tests because blood coagulation is difficult to occur. It is an object of the present invention to provide a method for significantly shortening the time required for blood coagulation even for such patient blood, and for satisfactorily separating serum components and blood clot components. The gist of the present invention is as follows: 1. In a method for separating blood into serum and blood clots by centrifuging blood, after collecting blood in a blood test container, the following formula is present in the blood: (However, in the formula, R 1 to R 4 are hydrogen atoms, methyl groups, or ethyl groups, X is chlorine or bromine, and n is a positive integer.), and has an average molecular weight of 2000 to
350,000 polyamine sulfone, blood volume 10c.c.
A method for separating serum and blood clots, characterized by adding polyamine sulfone in the range of 0.005 mg to 5 mg per blood, to separate serum and blood clots. In the method of separating blood into a blood test container, after collecting blood into a blood test container, the formula (However, in the formula, R 1 to R 4 are hydrogen atoms, methyl groups, or ethyl groups, X is chlorine or bromine, and n is a positive integer.), and has an average molecular weight of 2000 to
350,000 polyamine sulfone (a) and glass,
Selected from the group consisting of silica, kaolin, celite, and bentonite, with a particle size of 50 μm or less, an average particle size of 10 μm or less, and a linseed oil absorption of 20 to 40 ml/100 g, BET
An adsorbent inorganic substance (b) having a specific surface area value of 5000 to 30000 cm 2 /g and a specific resistance value of 1×10 10 Ω·cm or less, and the ratio of said (a) to said (b) is 0.0005 to 10% by weight. Department:
Polyamine sulfone and adsorptive inorganic substances are made to exist in blood by adding within the range of 1 part by weight, and by adjusting the amount of (a) added in the range of 0.005 mg to 5 mg per 10 c.c. of blood volume. Method 3 for separating serum and blood clots, characterized by In the formula (However, in the formula, R 1 to R 4 are hydrogen atoms, methyl groups, or ethyl groups, X is chlorine or bromine, and n is a positive integer.), and has an average molecular weight of 2000 to
350,000 polyamine sulfone (a) and ellagic acid (b) in a ratio of 0.0003 to 6 parts by weight: 1 part by weight, and (stomach)
Addition amount of 0.005mg to 5mg per 10c.c. of blood volume
The present invention relates to a method for separating blood serum and blood clots, which is characterized in that polyamine sulfone and ellagic acid are present in blood. Next, the method of separating serum and blood clots of the present invention will be explained in more detail. A whole blood sample of a subject is subjected to a centrifugation operation to separate serum and blood clots, and the blood is placed in a test container and allowed to clot. However, even in normal healthy people, it takes time for the clot to clot if the plate is placed as is, but in the case of patients receiving artificial dialysis or patients with thrombosis, heparin is present in the blood because they are receiving heparin. Due to its presence, blood coagulation is less likely to occur. Therefore, in the present invention, after blood is collected into a test container, the polyamine sulfone in the blood is added. Polyamine sulfone is obtained by copolymerizing a diallylamine monomer and sulfur dioxide, and is represented by the following formula. (However, in the formula, R 1 to R 4 are hydrogen atoms, methyl groups or ethyl groups, X is chlorine or bromine, and n is a positive integer.) In the present invention, the average molecular weight of the polyamine sulfone is 2000 to 35 A range of 10,000 is used. Polyamine sulfone is produced by combining a diallylamine monomer such as diallylamine, dimethallylamine, or a chlorinated or bromated derivative thereof, sulfur dioxide, water, methyl alcohol,
Dissolved in a solvent such as ethyl alcohol, dimethylformamide, dimethyl sulfoxide, etc., and using t-butyl hydroperoxide, azobisisobutyronitrile, ammonium persulfate, etc. as a polymerization catalyst,
It can be obtained by heating to about 30°C to carry out radical polymerization. Since catalyst fragments are attached to the ends of the polymer, for example, if t-butyl hydroperoxide is used as a catalyst, a t-butyloxy group will be attached to one end and a hydroxyl group will be attached to the other end. The optimal polyamine sulfone mentioned above is that R 1 and R 2 are hydrogen atoms, R 3 and R 4 are methyl groups, and
is a chlorine atom, and the average molecular weight is within the range of 2,000 to 350,000. When the polyamine sulfone added to the blood in the blood test container comes into contact with blood containing heparin, it quickly eliminates the effect of heparin and restores the normal coagulation function of the blood. Blood in a test container is coagulated within a short period of time, and after coagulation is completed, blood clot and serum are separated by means such as centrifugation, whereby serum can be easily collected. To explain this point in more detail, when normal blood comes into contact with the inner wall of the blood container, activation of factor Eventually, thrombin generated by activation of prothrombin acts on fibrinogen to form an insoluble fibrin network, and coagulation is completed. On the other hand, in blood to which heparin has been added, heparin acts cooperatively with antithrombin present in the blood, significantly inhibiting the action of thrombin. Heparin not only inhibits the action of thrombin but also
It is said to inhibit the effects of other coagulation factors, including factor XII. Therefore, by normal means, fibrinogen does not convert to fibrin in heparin-containing blood, and serum cannot be separated and collected because coagulation does not occur. It is thought that 1 to 10 units of heparin are present per 10 c.c. of blood in the blood of artificial dialysis patients or thrombosis patients receiving heparin administration. When polyamine sulfone is present in such heparin-containing blood, heparin is adsorbed and
Since it is removed from the blood, thrombin and other blood coagulation factors resume their normal functions. The appropriate amount of polyamine sulfone to add is blood volume 10
It ranges from 0.005mg to 5mg per cc. If the amount is less than this range, the effect of adsorbing heparin will be insufficient and sufficient blood coagulation will not be achieved. Moreover, if it exceeds this range, abnormal values may appear in clinical test values such as serum biochemical tests. One of the substances that synergistically exhibits a blood coagulation promoting effect when used in combination with polyamine sulfone is an adsorbent inorganic substance. Adsorptive inorganic substances include inorganic substances used as adsorbents, such as glass, silica,
Selected from water-insoluble inorganic fine powders such as kaolin, celite, and bentonite. Furthermore, the adsorptive inorganic substance used has a particle size of 50 μm or less, and an average particle size of 10 μm or less. In particular, silica is an adsorbent inorganic material that is effective in shortening blood coagulation time.
Porous silica containing 20% by weight or more exhibits excellent effects. Such adsorbent inorganic substances promote the activation of blood coagulation factors when they come into contact with blood,
It also has the effect of promoting coagulation of platelets. However, in order for the adsorbent inorganic substance to effectively exhibit a blood coagulation promoting effect, it is preferable that the linseed oil absorption amount, BET specific surface area value, and specific resistance value exist within certain ranges. The linseed oil absorption amount and BET specific surface area value represent the degree of surface area of the adsorbent inorganic material, and since the surface area is related to the degree of surface pores of the adsorbent inorganic material, the surface pores are determined by the oil absorption amount and specific surface area. You can know the extent of The adsorbent inorganic material in the present invention has a linseed oil absorption of 20 to 40 ml/100 g,
Those having a BET specific surface area value of 5,000 to 30,000 cm 2 /g are used. Linseed oil absorption indicates a value measured in accordance with Japanese Industrial Standard K-5101. The BET specific surface area value is
The amount of gas adsorbed on the surface of an adsorbent inorganic material,
This is the value calculated by calculating the amount of gas that cuts through the surface as a monomolecular layer from the equilibrium pressure at that time and the saturated vapor pressure of the adsorbed gas, and multiplying this by the average cross-sectional area of the adsorbed gas molecules. As the gas, nitrogen gas, oxygen gas, argon gas, methane gas, etc. are used. According to this method, the surface area value including pores, which cannot be measured by measuring linseed oil absorption, can be measured. During blood coagulation,
Factor XII, a contact factor, is activated, but for this to occur, three substances, factor XII, prekallikrein, and high-molecular-weight kininogen, must form a complex and be adsorbed on the surface of the foreign object. It is said that adsorption in the absence of one or two of these will not lead to activation. By the way, when an adsorbent inorganic substance is used in the hope of promoting blood coagulation, if the surface area is extremely large, factor In other words, by increasing the adsorption rate of polymeric kininogen,
The rate of complex formation among the three components necessary for activation of factor XII will be reduced, and the blood coagulation promoting effect will be abolished. On the other hand, if the surface area of the adsorbent inorganic material is too small, the probability of adsorption of coagulation factors will be low, making it impossible to expect a blood coagulation promoting effect. For this reason, the adsorbent inorganic material in the present invention has a linseed oil absorption of 20 to 40 ml/100 g and a BET specific surface area of 5000.
Those having a surface area in the range ˜30000 cm 2 /g are used. Further, in the present invention, the adsorptive inorganic material has a specific resistance value of 1×10 10 Ω·cm or less, and most preferably 5×10 4 Ω·cm or less. The specific resistance value is the reciprocal of electrical conductivity, and is the value at room temperature. The proportion of polyamine sulfone used is within the range of 0.0005 to 10 parts by weight per 1 part by weight of adsorbent inorganic material. Another substance that exhibits a synergistic blood coagulation promoting effect when used in combination with polyamine sulfone is ellagic acid. Elazinic acid is a substance with the following chemical structural formula. Elazinic acid is known as a substance that activates factor XII, which is one of the blood coagulation factors, but when used in combination with polyamine sulfone, it has an even better effect on blood coagulation than when used alone. It was confirmed that it has a promoting effect. The proportion of polyamine sulfone used is within the range of 0.0003 to 6 parts by weight per 1 part by weight of ellagic acid. In order to make the polyamine sulfone or the inorganic substance ellagic acid adsorbable with it present in the blood, it may be added directly to the blood in the test container, for example,
A dispersion in a dispersion medium such as water may be dropped into the blood, or a carrier having a specific gravity of about 1.04 to 1.06 may be attached to the blood. In the present invention, polyamine sulfone or an inorganic substance adsorbable thereto, and ellagic acid, are added to the blood after blood is collected in a blood test container. Due to the presence of ellagic acid, it not only has an excellent blood coagulation promoting effect on the serum of normal healthy people, but also helps patients receiving heparin, such as patients undergoing artificial dialysis or patients with thrombosis. Therefore, even in the case of blood that is difficult to coagulate, it has an excellent blood coagulation promoting effect, and when centrifuged, serum and blood clots are easily separated, and serum can be obtained in a good yield. . Furthermore, since polyamine sulfone has excellent heat resistance, it can withstand sterilization using an autoclave and does not affect blood test values even after sterilization. Example 1 Polyamine sulfone (molecular weight
2000 to 5000), 0.2% by weight aqueous solutions were prepared. 5 ml of fresh human blood containing 1.5 units of heparin per ml of blood in a 10 ml glass spittoon
Immediately after the injection, 0.05 ml of the above polyamine sulfone aqueous solution was added, mixed gently, and then allowed to stand at 23°C. Thereafter, the time required until the whole blood stopped flowing completely was measured as blood coagulation time, and blood coagulability was evaluated. Also, immediately after blood coagulation, 3000
Centrifugation was performed for 5 minutes at a rotational speed of revolutions per minute, and the state of serum separation was observed. In addition, the state of separation was observed again 24 hours later, and the presence or absence of precipitation on fibrin was examined. The state of serum separation was evaluated by the presence or absence of residual blood clot adhesion on the wall of the container in the serum layer and the presence or absence of fibrin network precipitation. Also, add 0.05 ml of the above polyamine sulfone aqueous solution to a 10 ml glass spittoon, and add this to 121
Sterilize by autoclaving at ℃ for 20 minutes. 5 ml of the heparin-containing blood was injected into this, left to stand at 23°C, and blood coagulation, serum separation status, and presence or absence of fibrin precipitation after 24 hours were examined in the same manner as in Example 1, but without autoclave sterilization. There was no difference. Example 2 The blood coagulation time, serum separation state, and 24-hour test were carried out in the same manner as in Example 1, except that the polyamine sulfone represented by the formula in Example 1 had a molecular weight in the range of 170,000 to 230,000. The presence or absence of precipitation on the subsequent fibrin was examined. The results are shown in the column of Example 2 in Table 1. Example 3 Finely powdered silica (average particle size
5μm, linseed oil absorption 30ml/100g, BET specific surface area value 1.2×10 4 cm 2 /g, specific resistance value 2.6×10 4 Ω・cm)
A dispersion of 2.0% by weight was prepared. In a polyethylene resin spittoon with a capacity of 10ml, 1
5 ml of fresh human blood containing heparin at a rate of 1.5 units per ml was collected, and immediately 0.05 ml of the polyamine sulfone aqueous solution in which silica was dispersed was added, mixed gently, and left at 23°C. In the same manner, blood coagulation time, serum separation status, and presence or absence of fibrin precipitation after 24 hours were examined. The results are shown in the column of Example 3 in Table 1. Example 4 A cellulose nonwoven fabric was impregnated with an aqueous solution of polyaminesulfone in which the finely powdered silica prepared in Example 3 was dispersed and dried to obtain a nonwoven fabric containing 0.1 mg of polyaminesulfone and 1 mg of finely powdered silica per 1 cm 2 . In a polyethylene resin spittoon with a capacity of 10ml, 1
Collect 5 ml of fresh human blood containing heparin at a rate of 1.5 units per ml, immediately insert 1 cm 2 of the nonwoven fabric,
The mixture was mixed gently and allowed to stand at 23°C, and the blood coagulability, serum separation state, and presence or absence of fibrin precipitation after 24 hours were examined in the same manner as in Example 1. Table 1 shows the results.
It is described in the column of Example 4. Example 5 A 2.0% by weight aqueous solution of polyamine sulfone having the same molecular weight of 2,000 to 5,000 as used in Example 1 was prepared by dispersing 2.0% by weight of ellagic acid. In a polyethylene resin spittoon with a capacity of 10ml, 1
Collect 5 ml of fresh human blood containing heparin at a rate of 1.5 units per ml, immediately add 0.05 ml of the polyamine sulfone aqueous solution in which ellagic acid is dispersed,
After gentle mixing, the mixture was left at 23° C., and the blood coagulation time, serum separation state, and presence or absence of fibrin precipitation after 24 hours were examined in the same manner as in Example 1. The results are shown in the column of Example 5 in Table 1. 【table】

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1 血液を遠心分離操作に付して血清と血餅とに
分離する方法において、血液検査用容器内に血液
を採取した後、該血液中に、 式 (但し式中R1乃至R4は水素原子、メチル基又は
エチル基、Xは塩素又は臭素、nは正の整数を示
す。)で表わされ、平均分子量が2000乃至35万で
あるポリアミンスルホンを、血液量10c.c.当り
0.005mgないし5mgの範囲で添加することにより、
血液中にポリアミンスルホンを存在させることを
特徴とする、血清と血餅との分離方法。 2 血液を遠心分離操作に付して血清と血餅とに
分離する方法において、血液検査用容器内に血液
を採取した後、該血液中に、 式 (但し式中R1乃至R4は水素原子、メチル基又は
エチル基、Xは塩素又は臭素、nは正の整数を示
す。)で表わされ、平均分子量が2000乃至35万で
あるポリアミンスルホン(イ)と、ガラス、シリカ、
カオリン、セライトおよびベントナイトからなる
群から選ばれ、粒径が50μm以下であつて、平均
粒径が10μm以下のものであり、アマニ油吸油量
が20〜40ml/100g、BET比表面積値が5000〜
30000cm2/g、比抵抗値が1×1010Ω・cm以下で
ある吸着性無機物(ロ)とを、該(イ)と該(ロ)の割合が
0.0005乃至10重量部:1重量部の範囲内で添加
し、且つ、該(イ)の添加量を血液量10c.c.当り0.005
mgないし5mgの範囲となすことにより、血液中に
ポリアミンスルホンと吸着性無機物を存在させる
ことを特徴とする、血清と血餅との分離方法。 3 血液を遠心分離操作に付して血清と血餅とに
分離する方法において、血液検査用容器内に血液
を採取した後、該血液中に、 式 (但し式中R1乃至R4は水素原子、メチル基又は
エチル基、Xは塩素又は臭素、nは正の整数を示
す。)で表わされ、平均分子量が2000乃至35万で
あるポリアミンスルホン(イ)と、エラジン酸(ロ)と
を、該(イ)と該(ロ)の割合が0.0003乃至6重量部:1
重量部の範囲内で添加し、且つ、該(イ)の添加量を
血液量10c.c.当り0.005mgないし5mgの範囲となす
ことにより、血液中にポリアミンスルホンとエラ
ジン酸を存在させることを特徴とする、血清と血
餅との分離方法。
[Scope of Claims] 1. In a method of separating blood into serum and blood clots by centrifuging blood, after blood is collected in a blood test container, the following formula is present in the blood: (However, in the formula, R 1 to R 4 are hydrogen atoms, methyl groups or ethyl groups, X is chlorine or bromine, and n is a positive integer.) Polyamine sulfone having an average molecular weight of 2,000 to 350,000 , per 10 c.c. of blood volume
By adding in the range of 0.005mg to 5mg,
A method for separating serum and blood clots, which is characterized by the presence of polyamine sulfone in blood. 2. In a method of separating blood into serum and blood clots by subjecting it to centrifugation, after blood is collected in a blood test container, the following formula is added to the blood: (However, in the formula, R 1 to R 4 are hydrogen atoms, methyl groups or ethyl groups, X is chlorine or bromine, and n is a positive integer.) Polyamine sulfone having an average molecular weight of 2,000 to 350,000 (a), glass, silica,
It is selected from the group consisting of kaolin, celite, and bentonite, has a particle size of 50 μm or less, an average particle size of 10 μm or less, has a linseed oil absorption of 20 to 40 ml/100 g, and a BET specific surface area value of 5000 to 5000.
30000cm 2 /g and an adsorbent inorganic substance (b) with a specific resistance value of 1×10 10 Ω・cm or less, and the ratio of said (a) and said (b) is
0.0005 to 10 parts by weight: Add within the range of 1 part by weight, and the amount of (a) added is 0.005 per 10 c.c. of blood volume.
A method for separating blood serum and blood clots, characterized in that polyamine sulfone and an adsorbent inorganic substance are present in blood by controlling the amount of the polyamine sulfone to be in the range of 5 mg to 5 mg. 3. In a method of separating blood into serum and blood clots by subjecting it to centrifugation, after blood is collected into a blood test container, the following formula is added to the blood: (However, in the formula, R 1 to R 4 are hydrogen atoms, methyl groups or ethyl groups, X is chlorine or bromine, and n is a positive integer.) Polyamine sulfone with an average molecular weight of 2,000 to 350,000 (a) and ellagic acid (b) in a ratio of 0.0003 to 6 parts by weight: 1
The presence of polyamine sulfone and ellagic acid in the blood can be achieved by adding the polyamine sulfone and ellagic acid within the range of parts by weight, and by adjusting the amount of (a) added in the range of 0.005 mg to 5 mg per 10 c.c. of blood volume. Characteristic method for separating serum and blood clots.
JP57135952A 1982-08-03 1982-08-03 Separation of serum and blood clot Granted JPS5926062A (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP57135952A JPS5926062A (en) 1982-08-03 1982-08-03 Separation of serum and blood clot

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP57135952A JPS5926062A (en) 1982-08-03 1982-08-03 Separation of serum and blood clot

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JPS5926062A JPS5926062A (en) 1984-02-10
JPH0155416B2 true JPH0155416B2 (en) 1989-11-24

Family

ID=15163672

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP57135952A Granted JPS5926062A (en) 1982-08-03 1982-08-03 Separation of serum and blood clot

Country Status (1)

Country Link
JP (1) JPS5926062A (en)

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN118076891A (en) 2021-09-21 2024-05-24 日东纺绩株式会社 Blood cell separating agent and blood cell separating method using same
CN118076892A (en) 2021-09-21 2024-05-24 日东纺绩株式会社 Blood cell separating agent for analysis and blood cell separating method

Also Published As

Publication number Publication date
JPS5926062A (en) 1984-02-10

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Liu et al. Surface characteristics and hemocompatibility of PAN/PVDF blend membranes
KR930011033B1 (en) Vacuum type blood collecting tube
JPH105329A (en) Carrier for adsorbent used for direct blood perfusion and its grain size reduction method
BRPI0714378A2 (en) Method of removing an abnormal prion protein from a blood product
GB1560556A (en) Coated activated carbon beads for purifying blood
Yin et al. Molecularly-imprinted hydrogel beads via self-sacrificing micro-reactors as safe and selective bilirubin adsorbents
JPH0155416B2 (en)
Deng et al. Poly (ether sulfone)/activated carbon hybrid beads for creatinine adsorption
Cheung Adsorption of unactivated complement proteins by hemodialysis membranes
CN113817712B (en) Process for preparing thrombin
JP5424688B2 (en) Selective removal material for granulocytes and monocytes
JP3633979B2 (en) Endotoxin adsorbent, adsorption removal method and adsorber
JPH0126502B2 (en)
JPS58196457A (en) Separation of serum from blood clot
Alula et al. Preparation characterization and blood compatibility studies of silk fibroin/gelatin/curcumin injectable hydrogels
Denizli et al. Competitive adsorption of blood proteins on gamma-irradiated-polycarbonate films
JPH039421B2 (en)
Kung et al. In vitro evaluation of cellulose acetate hemodialyzer immobilized with heparin
Schultze et al. Formation of thrombin-antithrombin III complex using polyamide and hemophan dialyzers
JP4779190B2 (en) Inflammatory disease treatment column
JP3633978B2 (en) Tumor necrosis factor-α adsorbent, adsorption removal method and adsorber
JPS58195151A (en) Vessel for blood examination
JPH0319776B2 (en)
CN116510696A (en) Hydrogel for adsorbing hemoglobin and preparation method thereof
JP4402236B2 (en) Lipoprotein adsorption removal method