JPH01233298A - Antibody, its production, reagent for measuring hmlc and monocronal antibody - Google Patents
Antibody, its production, reagent for measuring hmlc and monocronal antibodyInfo
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- JPH01233298A JPH01233298A JP63056466A JP5646688A JPH01233298A JP H01233298 A JPH01233298 A JP H01233298A JP 63056466 A JP63056466 A JP 63056466A JP 5646688 A JP5646688 A JP 5646688A JP H01233298 A JPH01233298 A JP H01233298A
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Abstract
Description
【発明の詳細な説明】
産業上の利用分野
本発明は、心筋ミオシン−L鎖(HMLC)に対する特
異的抗体、その製造法および該抗体をBMLOの測定の
ための免疫試薬に使用することに関する。DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION Field of the Invention The present invention relates to a specific antibody against cardiac myosin light chain (HMLC), a method for producing the same, and the use of the antibody in an immunoreagent for measuring BMLO.
従来の技術
ミオシンは、約500000の分子量を有する蛋白質で
ある。ミオシンは、約200000の分子量を有する2
個のE鎖、約26000の分子量を有する2個のL鎖1
(HMLC1)および約180(70の分子量を有す
る2個のL鎖B(HMLCl )からなる。ミオシンは
、心筋および骨格筋の太いクイ2メント中に存在する。Prior Art Myosin is a protein with a molecular weight of approximately 500,000. Myosin has a molecular weight of about 200,000 2
2 E chains, 2 L chains with a molecular weight of about 26,000 1
(HMLC1) and two light chains B (HMLC1) with molecular weights of approximately 180 (70). Myosin is present in the thick quarters of cardiac and skeletal muscles.
梗!1に不可避の心筋壊死によりミオシンが分解するこ
とがらHMLCは、血漿中に達し、それ故に心筋梗塞の
診断および経過制御に適当であると思われるのみならず
、心筋損傷の程度を越えて壊変をも生じうる特異的パラ
メーターを生じる(サーキュレーション(C1rcul
ation )58 (1968) 11301.Ta
p、 Cardio、 !。Ryo! 1. HMLC reaches the plasma because myosin is degraded due to inevitable myocardial necrosis, and therefore it is considered suitable not only for the diagnosis and course control of myocardial infarction, but also for myosin disintegration beyond the degree of myocardial damage. (Circulation (C1rcul)
ation) 58 (1968) 11301. Ta
p, Cardio,! .
44(1980) 185、Am、 J、 Cardi
ol。44 (1980) 185, Am, J, Cardi
ol.
41 (1978)641、サーキュレーション(01
rculatiOn ) 60 C補遺1)(1979
)169)。41 (1978) 641, Circulation (01
rculatiOn) 60 C Addendum 1) (1979
)169).
血漿中のHMLCの半減期は約70〜80分間で極めて
僅かであるので、梗塞の確率事象ないしは広幅の経過曲
線による後の減少により、HMLC!の放出は持続して
いるものと推測することができる。従って、兎に角一定
の1梗塞酵素′OX、OK−MBX GOTおよびLD
Hとは異なり、HMLCを測定することにより確実な診
断および経過制御が可能となる。更に、不安定な狭心症
の判断を確実に明言することも可能になると思われる。Since the half-life of HMLC in the plasma is very short, approximately 70-80 minutes, a subsequent decline due to the stochastic event of infarction or a broad course of time can cause HMLC! It can be assumed that the release of is continuous. Therefore, one infarction enzyme 'OX, OK-MBX GOT and LD
Unlike H, reliable diagnosis and progress control are possible by measuring HMLC. Furthermore, it would also be possible to reliably state the diagnosis of unstable angina.
それというのも、このような場合には、恐らく存在する
であろうと思われる心筋梗塞によって同様にHMLCは
一掃されるからである( Am、 J、 0ardio
l 54 C1984) 964 )。For in such cases the HMLC would likewise be wiped out by the myocardial infarction that would probably be present (Am, J, 0ardio
l 54 C1984) 964).
しかし、この場合には僅かなBMLO量のみが血漿中に
到達するので、敏感で特殊な測定法が必要とされる。通
常、このような場合には、殊に免疫測定法が検出法とし
て適当である。However, in this case only a small amount of BMLO reaches the plasma, so that sensitive and special measurement methods are required. Usually, in such cases, in particular immunoassays are suitable as a detection method.
BMLOのラジオイムノアッセイは、既にAm。BMLO's radioimmunoassay has already been used in Am.
J、01ln、 Path、 71 (1978) 3
09〜318に記載されている。これは、競合的ラジオ
イムノアッセイであり、この場合試料からのHMLCお
よび沃素化HMLCは、固体相に吸嘴されているポリク
ローナル抗体の8囲で競争的阻害する。しかし、この方
法の欠点は、HML(3と骨格筋−L鎖(SMLC)と
の交叉反応性が使用感れる抗血清に対して3、8%であ
ることKある。J, 01ln, Path, 71 (1978) 3
09-318. This is a competitive radioimmunoassay in which HMLC and iodinated HMLC from a sample are competitively inhibited by a polyclonal antibody that is beaked onto a solid phase. However, a drawback of this method is that the cross-reactivity between HML (3) and skeletal muscle light chain (SMLC) is 3.8% with respect to the used antiserum.
実際に、HMLCに対する抗血清i SMLC抗体を除
去することによって浄化するか或いはアフイ;ティクロ
マトグラフィーで分取することによつて浄化することが
提案されているが、それによってこれまでにSMLCと
の十分に僅かな交叉反応を示す、HMLCに対する抗体
を提供することはできなかった。すなわち、Jap、
01rcu1atiOn44(1980)185〜18
6には、免疫サン間インチ試験で交叉反応率は8%であ
ることがa認されていた。01rculation 5
8 (1978)1130〜1136には、免疫サン間
インチ試験で交叉反応率は2.9〜10%であることが
報告されて込る。それに応じて実際の交叉反応率は、本
質的に高い。2.9%の免疫サンVインチ試験で測定さ
れた値については、実際の交叉反応率は、(2,9)”
%、すなわち8.4%である。In fact, it has been proposed to purify the antiserum against HMLC by removing SMLC antibodies or to purify it by fractionating it by chromatography; It has not been possible to provide antibodies against HMLC that exhibit sufficiently low cross-reactivity. That is, Jap,
01rcu1atiOn44 (1980) 185-18
In No. 6, it was recognized that the cross-reactivity rate was 8% in the immunoscan test. 01rculation 5
8 (1978) 1130-1136, it was reported that the cross-reactivity rate was 2.9-10% in the immunoscan test. The actual cross-reactivity rate is correspondingly high. For the value measured in the Immunosan V inch test of 2.9%, the actual cross-reactivity rate is (2,9)”
%, or 8.4%.
モレキュラー・イムノロジー(Mo1ecular工m
munolOg7 ) 19 (1982) 451〜
455には、前記欠点を、ポリクローナル抗体の代りに
モノクローナル抗体を使用することによって克服するこ
とが試みられてbる。しかし、またこの抗体は、不満足
な交叉反応率(17%)のみを示す。また、欧州特許第
205177号鞠細書釦記載されたモノクローナル抗体
は、特異的11MLO−測定には不適当である。患者の
血清からのHMLCど反応する、前記欧州特許明細書に
記載された全部の抗体は、十分KIIIIMLCiとも
反応する。Molecular immunology
munolOg7) 19 (1982) 451~
455 attempts to overcome said drawbacks by using monoclonal antibodies instead of polyclonal antibodies. However, this antibody also shows only an unsatisfactory cross-reactivity rate (17%). Furthermore, the monoclonal antibody described in European Patent No. 205177 is unsuitable for specific 11MLO measurement. All antibodies described in the European patent specification which react with HMLC from patient serum also react well with KIII MLCi.
発明を達成するための手段
本発明の目的は、前記欠点を克服しかつSMLCIc比
して僅かな交叉反応率を有するHMI、(:!に対する
抗体およびこの種の抗体の製造法を提供するととくある
。Means for Accomplishing the Invention The object of the present invention is to provide an antibody against HMI, (:!), which overcomes the above-mentioned drawbacks and has a low cross-reactivity rate compared to SMLCIc, and a method for producing antibodies of this type. .
本発明の対象は、5%以下、有利に2%以下、特に有利
に1%以下のSMLCK比しての交叉反応率を有するH
MLCに対する抗体である。この種の抗体は、次に記載
した本発明方法により得ることができる。A subject of the invention is a H
This is an antibody against MLC. Antibodies of this type can be obtained by the method of the invention described below.
本発明の他の対象は、1つの動物種をヒトHMLCで免
疫化しかつ粗製血清を取得することによってHMI、O
に対する抗体をシ造する方法であり、この方法は、粗裂
血−at場合によっては予備n羨後に1珪R#Aを基礎
とするSMLC−免疫吸着剤でのネガティブの免疫吸着
により精製することを特徴とする。Another object of the present invention is to immunize one animal species with human HMLC and obtain crude serum so that HMI, O
A method for producing antibodies against crude hemocytogens, which may be purified by negative immunoadsorption with a R#A-based SMLC-immunoadsorbent, optionally after preliminary preparation. It is characterized by
意外なことに、本発明方法によれは、SMLCに対する
交叉反応率が5%以下、有利に2%以下、特に有利に1
%以下にある、HMLCに対する抗体t−得ることがで
きることが判明した。Surprisingly, the method according to the invention provides cross-reactivity rates for SMLC of less than 5%, preferably less than 2%, particularly preferably less than 1
It has been found that it is possible to obtain antibodies against HMLC of less than %.
交叉反応率の測定は、HMLCもしくはEIMLOを固
定相として使用しかつSMLCに対する抗体を試料につ
き最大0.1μμ使用する際に行なわれた。検出反応は
、l(MLC!−抗体のFcr一部分の方向に向いた抗
体と、測定可能な基(例えば、POD )とからの結合
体により行なわれた。Cross-reactivity measurements were performed using HMLC or EIMLO as the stationary phase and using up to 0.1 μμ of antibody against SMLC per sample. The detection reaction was performed with a conjugate of an antibody directed toward the Fcr portion of the l(MLC!-antibody) and a measurable group (eg, POD).
HMLCおよびSMLCは、例えばC1rcu1. R
ag。HMLC and SMLC are, for example, C1rcu1. R
ag.
19(1985)611およびBioehem、 J。19 (1985) 611 and Bioehem, J.
119(1970)31に記載逼れているように当業者
に周知の方法により、心筋ないしは骨格筋から単離する
ことができる。免疫化するためには、HMLCl 、
l(MLOlまたはHMI、Olと■とからなる混合物
は免疫原として使用することができる。免疫化は、全て
の任意の動物独につき当業者に周知の方法により行なう
ことができる。119 (1970) 31, by methods well known to those skilled in the art, such as from cardiac or skeletal muscle. For immunization, HMLCl,
Immunization can be carried out in any animal by methods well known to those skilled in the art.
この場合に得られる粗製血清は、珪酸塩を基礎とするS
MLC−免疫吸着剤でのネガティブな免疫吸着に直接に
使用することができる。The crude serum obtained in this case is a silicate-based S
It can be used directly for negative immunoadsorption with MLC-immunoadsorbents.
しかし、差当り、例えばイオン交換クロマドグ2フイー
および透析により予備精製を実施することは有利である
。However, for the time being it is advantageous to carry out a preliminary purification, for example by ion exchange chromatography and dialysis.
場合によっては、こうして前処理された粗製血清は、珪
酸塩を基礎とするSMLC−免疫吸着剤でネガティブに
免疫吸着される。このために、粗製血清は、カラム上に
与えられ、この場合、意外なことに、5%以下、有利に
2%以下、特に有利に1%以下の交叉反応率を有するよ
うなHMLCK対する抗体は、結合芒れす、より高い交
叉反応率を有する抗体が結合でれる。引続き、カラムは
、このために常用の試薬(例えば、燐酸塩緩衝液−7,
5、PBS )で蛋白質不含になるように洗浄される。Optionally, the crude serum thus pretreated is negatively immunoadsorbed with a silicate-based SMLC-immunoadsorbent. For this purpose, crude serum is applied onto a column, in which case it is surprising that antibodies against HMLCK have a cross-reactivity of less than 5%, preferably less than 2%, particularly preferably less than 1%. , the more conjugated, the more antibodies with higher cross-reactivity can be conjugated. Subsequently, the column is filled with the reagents customary for this purpose (e.g. phosphate buffer-7,
5. Wash with PBS to make it protein-free.
こうして得られた溶出液は、HMLC−試験のための試
薬を製造するために使用することができる。しかし、溶
出液は、殊にHMLC−免疫吸着剤でのポジティブな免
疫吸着によって後精製を行なうのが有利である。The eluate thus obtained can be used to prepare reagents for HMLC tests. However, it is advantageous to carry out further purification of the eluate, in particular by positive immunoadsorption with an HMLC immunoadsorbent.
BMLO−免疫吸着剤のための担体としては、珪酸塩を
基礎とする当業者に周知の吸着剤が適当である。この媒
体は、例えばグルとして粉末状または顆粒状の形で存在
することができる。Suitable carriers for the BMLO immunoadsorbents are silicate-based adsorbents which are well known to those skilled in the art. This medium can be present in powdered or granular form, for example as a glue.
適当な担体は、例えばス7エロシル(spherosi
、1■)(,1Lii造元二ローヌーボウラン(R,h
’The−pou18nc ) )、セレクテイスペル
(13rlecti 8pero) (ビールツエーオ
イロヒエミー(Pierce Eurochemie)
)またはベーカーーヒエム(J、 T、 Baker
Chem)のシリカゲルである。担体には、常法により
SMLCが場合によってはスペーサー/リンカ〜を介し
て共有結合される。Suitable carriers include, for example, spherosil.
, 1 ■)
'The-pou18nc) ), selecti spell (13rlecti 8pero) (Pierce Eurochemie)
) or Baker-Hiem (J, T, Baker
Chem) silica gel. SMLC is covalently bonded to the carrier by a conventional method, optionally via a spacer/linker.
珪酸塩へのBMLOの結合を可能ならしめるために、こ
の珪酸塩は、有利に結合可能な基を有しなければならな
い。このためには、珪酸塩は、例えばトリクロル7ミ7
7″′c2ビルジ2ンまたは3−(トリエトキシシリル
)プロピルアミノのような反応性シラ/と反応させるの
が有利である。この場合、これによって担体に接して生
成された官能基には、直接8MLOを結合させることが
できる。1つの好ましい構成の場合には、官能基に差轟
り二官能性試薬がスペーサーとして結合され、引続きそ
れにBMLOが結合される。In order to enable the bonding of BMLO to the silicate, the silicate must advantageously have a bondable group. For this purpose, silicates can be used, for example trichlor7m7
It is advantageous to react with a reactive silane such as 7'''c2 virdine or 3-(triethoxysilyl)propylamino, in which case the functional groups thus formed on the support have It is possible to attach 8MLO directly. In one preferred configuration, a difunctional reagent is attached as a spacer to the functional group, and subsequently BMLO is attached to it.
この場合、SMLClと!3MLo lとからなる混合
物を使用することは、有利であることが判明した。In this case, SMLCl and! It has proven advantageous to use a mixture consisting of 3MLo1.
この場合、BMLOl : 8ML(3lの比は、IK
要でない。しかし、はぼ1:1の比またはSMLClの
過剰量は、使用するのが有利である。In this case, BMLOl: 8ML (the ratio of 3l is IK
Not necessary. However, it is advantageous to use a ratio of more than 1:1 or an excess of SMLCl.
媒体としては、特に次のものが好適であるニアミノプロ
ぎル基、スクシノイルアミノプロビル基、ヘキサメチレ
ンジアミノ基、ジオール基、ジアゾフルオロボレート基
、p−ニトロフェニル基、エポキシゾロビル基、グルタ
ルアルデヒド基および/またはグリシドオキシプロビル
基を有する珪酸塩。場合によっては、担体材料に結合す
る前にスペーサー/リンカ−が導入芒れる。例えば、次
のような当業者に周知の二官能性リンカ−が適当である
ニ
ゲルタルジアルデヒド、
N−スクシンイミジル6−(2−ピリジルジチオ)プロ
ピオネート、
エチル4−アジドフェニル−1,4−ジチオプチルイミ
デー) X HOI、
4−フルオロ−6−ニトロフェニル基シr。As the medium, the following are particularly suitable: niaminoprogyl group, succinoylaminopropyl group, hexamethylene diamino group, diol group, diazofluoroborate group, p-nitrophenyl group, epoxyzorobyl group, glutaric group. Silicates with aldehyde groups and/or glycidoxyprobyl groups. Optionally, a spacer/linker is introduced prior to bonding to the carrier material. For example, difunctional linkers well known to those skilled in the art such as nigertaldialdehyde, N-succinimidyl 6-(2-pyridyldithio)propionate, ethyl 4-azidophenyl-1,4-dithioptyl imide are suitable. D) X HOI, 4-fluoro-6-nitrophenyl group sil.
N−ヒドロキシスクシンイミジル−4−アジドベンゾエ
ート、
m−マレイミドベンゾイル−N−ヒドロキシスクシンイ
ミrエステル、
N−スクシンイミジル−6(4′−アジド−2′−二ト
ロフェニルーアミノ)へ=?f’/エート、スクシンイ
ミジル(4−ヨードアセチル)アミノベンゾエート
または
スクシンイミジル−4−(p−マレイミドフェニル)ブ
チレート。N-hydroxysuccinimidyl-4-azidobenzoate, m-maleimidobenzoyl-N-hydroxysuccinimir ester, N-succinimidyl-6 (4'-azido-2'-nitrophenyl-amino)=? f'/ate, succinimidyl (4-iodoacetyl) aminobenzoate or succinimidyl-4-(p-maleimidophenyl) butyrate.
珪酸塩担体とSMLCとの間の距離は、20個以下の原
子であるのが好ましいことが判明する。It turns out that the distance between the silicate support and the SMLC is preferably less than or equal to 20 atoms.
7〜12個の原子の距離は、特に好ましいことが判明し
た。A distance of 7 to 12 atoms has been found to be particularly favorable.
珪酸塩としては、トリクロルアミノプロピルシランまた
は3−()リエトキシシリル)プロピルアミノで活性化
されているスフエロシル(8pherosi1)を使用
し、このアミノス7エロシルを二官能性試薬としてのグ
ルタルジアルデヒrと反応させ、かつこうして予備調製
された担体にBMLOを結合させるのが特に好ましいこ
とが判明した。As the silicate, we used spherosyl activated with trichloraminopropylsilane or 3-()ethoxysilyl)propylamino, and combined this aminos 7erosyl with glutardialdehyr as a bifunctional reagent. It has proven particularly advantageous to react and to bind BMLO to a support prepared in this way.
BMLO−カラムによる浄化後に場合によっては透析退
場の中間接続下にさらにBMLO−免疫吸着剤での免疫
吸y#精裂を接続することは、有利であることが判明す
る。担体としては、当業者に周知の担体が適当である。After purification with the BMLO column, it may prove advantageous to additionally connect the immunosorbent with the BMLO immunoadsorbent to the intermediate connection of the dialysis outlet. As the carrier, carriers well known to those skilled in the art are suitable.
しかし、この場合も珪酸塩を基礎とする免役吸着剤を使
用することは、特に有利である。HMLCt−前記担体
に結合嘔せるには、BMLO−免疫吸着剤を意味的に構
成させることが当てはまる。However, here too it is particularly advantageous to use silicate-based immune adsorbents. For HMLCt-conjugation to the carrier, the BMLO-immunoadsorbent is meaningfully structured.
本発明の他の対象は、SMLCに対して5%以下、有利
に2%以下、特に有利に1%の交叉反応率を有するHM
LC−抗体を使用しながらHMLCを測定するための免
疫試薬である。Another subject of the invention is HM with a cross-reactivity of less than 5%, preferably less than 2%, particularly preferably less than 1%, relative to SMLC.
This is an immunoreagent for measuring HMLC using LC-antibody.
この種の試薬を用いると、例えばサンドイッチ試験また
は拮抗試験を実施することができる。With reagents of this kind it is possible, for example, to carry out sandwich tests or competitive tests.
サンドイッチ試験の場合には、HMLCに対し【不動態
化された抗体およびHMLC−抗体と測定可能な基とか
らなる結合体が使用される。この場合には、使用すべき
抗体の1個だけでも2個でも本発明方法により得ること
かできる。In the case of sandwich tests, HMLC-passivated antibodies and conjugates of HMLC-antibodies and measurable groups are used. In this case, only one or two of the antibodies to be used can be obtained by the method of the present invention.
測定可能な基は、例えば酵素、螢光染料および放射性標
識物質のような当業者に周知の基である。Measurable groups are groups well known to those skilled in the art, such as enzymes, fluorescent dyes and radiolabels.
この糧のサンドイッチ試験を用いると、5#間以下の恒
温保持時間でなお2 HE/LtのHMLC濃度を検出
することができるが、この場合には、SMLCとの交叉
反応率は測定することができない。Using this sandwich test, HMLC concentrations of 2 HE/Lt can still be detected with incubation times of 5 or less, but in this case the cross-reactivity with SMLC cannot be measured. Can not.
試薬は、溶液中ならびに乾燥試薬担体上もしくは乾燥試
薬担体中に存在することができる。The reagents can be in solution as well as on or in dry reagent carriers.
これにより、乾燥試薬担体に対しては試料を希釈させる
必要がないので、より短い恒温保持時間を達成すること
ができる。This allows shorter incubation times to be achieved since there is no need to dilute the sample for dry reagent carriers.
試薬の1つの好ましb構成は、本発明方法により得られ
た、HMLCに対して不動態化された抗体およびモノク
ローナル抗体と測定可能な基とからなる結合体を含有す
る。意外なことに、この糧の組合せ物を含有する試薬は
、試験の場合に高論感度およびHML○測定の際に僅か
な空試験値を生じることが判明した。One preferred configuration of the reagent contains an HMLC-passivated antibody obtained by the method of the invention and a conjugate of a monoclonal antibody and a measurable group. Surprisingly, it was found that a reagent containing this food combination produced a high theoretical sensitivity in the case of testing and a low blank value in the HML○ measurement.
モノクローナル抗体は、当業者に周知の方法によりHM
LCで免疫化した後に得られる。抗体MAK4D12お
よび1B10は、特に好適であることが判明した。この
モノクローナル抗体に相当する細胞系は、ヨーロツビア
ン・コレクション・オプ・アニマル・セル・カルチャー
ズ(European Co11ection Of
Animal Ce1lOultures ) (KO
AO(1! )、英国、ボートンダウy (Porto
n Down )在、に寄託番号4D12−丘chca
88[]22503およびI B 10− wcAo
。Monoclonal antibodies can be prepared by methods well known to those skilled in the art.
Obtained after immunization with LC. Antibodies MAK4D12 and 1B10 were found to be particularly suitable. The cell line corresponding to this monoclonal antibody is available from the European Collection of Animal Cell Cultures.
Animal Ce1l Cultures ) (KO
AO (1!), Bourtondon, UK (Porto
n Down) Currently, Deposit number 4D12-hill chca
88[]22503 and I B 10-wcAo
.
88022504で寄託されている。It has been deposited under No. 88022504.
本発明の他の対象は、HMLCを測定する方法であり、
この方法は、試料を不動態化されている、HMLCに対
する本発明により得られた抗体およびモノクローナル抗
体と測定可能な基とからなる結合体と一緒にすることを
特徴とする。Another object of the invention is a method for measuring HMLC,
This method is characterized in that the sample is combined with a passivated antibody obtained according to the invention against HMLC and a conjugate consisting of a monoclonal antibody and a measurable group.
この場合、添加の順序は任意である。場合によっては、
恒温保持後に固体相と液状相とは分離され、かつ測定可
能な基は、2つの相の一方の相中で測定される。In this case, the order of addition is arbitrary. In some cases,
After incubation, the solid and liquid phases are separated and the measurable groups are measured in one of the two phases.
実施例
次に、本発明を実施例および図面につきさらに詳説する
。EXAMPLES The invention will now be explained in more detail with reference to examples and drawings.
例 1
ミオ’/7−LQ(HMLCオヨヒ13MLO)ノED
造および単離
HMLCおよびSMLCf:01rcul Rea、
i 9(1965)611およびず・バイオケミカル・
ジャーナル(Biochem、 J、 ) 119(1
970)31に記載の方法によりヒト−骨格筋組織およ
びヒト−心筋組織から単離した。Example 1 Mio'/7-LQ (HMLC Oyohi 13MLO) no ED
Preparation and isolation HMLC and SMLCf: 01rcul Rea,
i 9 (1965) 611 andzu・biochemical・
Journal (Biochem, J, ) 119(1
It was isolated from human skeletal muscle tissue and human cardiac muscle tissue by the method described in 970) 31.
例 2
抗血清の取得
HMLCl (分子量26000)および11MLOl
[(分子量18000)の混合物を免疫原として使用し
た。羊を完全70インドアジユバント(OVA )中の
HMLClおよび!0.1ダ/―の溶液55μjで第1
免疫化した。更に、免疫化を7日月、14日目および6
0日目に行なった。Example 2 Obtaining antiserum HMLCl (molecular weight 26000) and 11MLOl
A mixture of [(molecular weight 18000) was used as an immunogen. Sheep were completely treated with HMLCl in 70 indoor adjuvant (OVA) and! The first with 55μj of 0.1 da/- solution
Immunized. Additionally, immunization was carried out on days 7, 14 and 6.
This was done on day 0.
更に、全部で60日間免疫化した。この逐次注射する場
合には、そのつどOVA中のHMI、CO,CI 51
1Mj/*o溶液28117&使用した。6ケ月後、粗
製血清が得られた。Additionally, immunization was carried out for a total of 60 days. In this case of sequential injection, HMI, CO, CI 51 in OVA each time.
1Mj/*o solution 28117& was used. After 6 months, crude serum was obtained.
例 6
粗製血清からのHMLCK対するポリクローナル羊−工
gG−抗体の単離
粗製血清11にエーロジル159(製造元:デグツf
(Degussa )、 )を添加し、これを室温で1
時間攪拌し、かつ遠心分離する。引続き、上澄液に硫酸
アンモニウム1.7モル/lを添加し、これを室温で2
時間緩徐に攪拌する。引続き、沈殿物を遠心分離し、透
析緩衝液0.2j(a酸カリウム15ミリモル/l、塩
化ナトリウム50ミリモル/l、pH7,0)中で均質
化し、かつ4℃で4回透析緩衝液101を透析する。Example 6 Isolation of polyclonal sheep engineered gG-antibody against HMLCK from crude serum Crude serum 11 was mixed with Aerosil 159 (manufacturer: Degutsu
(Degussa), ) was added at room temperature for 1 hour.
Stir for an hour and centrifuge. Subsequently, 1.7 mol/l of ammonium sulfate was added to the supernatant, and this was diluted at room temperature for 2 hours.
Stir slowly for an hour. Subsequently, the precipitate was centrifuged, homogenized in dialysis buffer 0.2j (potassium a-acid 15 mmol/l, sodium chloride 50 mmol/l, pH 7.0) and diluted 4 times with dialysis buffer 101 at 4°C. Dialyze.
再び遠心分離した後、透析されたγ−グロブリンをpx
52−セルロースを介して溶離下に透析緩衝液で精製す
る。After centrifugation again, the dialyzed γ-globulin was transferred to px
Purify with dialysis buffer under elution through 52-cellulose.
こうして精製ケれたPAK、 (HMLC)のSMLC
iC対する交叉反応率は、100%にまでである(例6
による測定)。PAK purified in this way, SMLC of (HMLC)
The cross-reactivity rate for iC is up to 100% (Example 6
(measured by).
、例 4
SMLC−免疫吸着剤に対するPAK (HMLC〉の
ネガティブな免疫吸着
例6により精製されたPAN < HMLC! )溶液
を燐酸カリウム50ミリモル/1..…7゜5;塩化ナ
トリウム150ミリモル/z(pns);アジド0.1
%になるまで上昇埴せ、約15ダ/dの濃度で室温でH
MLC−免疫吸着剤−カラム(製造、例88照)の上に
入れ、かつPBS /アジrO11%で蛋白質不含にな
るように洗浄する( PBS :燐酸緩衝液)。, Example 4 PAK to SMLC-Immunodsorbent (HMLC〉 Negative Immunoadsorption of PAN purified by Example 6 <HMLC!) solution with 50 mmol potassium phosphate/1. .. ...7゜5; Sodium chloride 150 mmol/z (pns); Azide 0.1
%, and H at room temperature at a concentration of about 15 Da/d.
Place on top of the MLC-immunodsorbent-column (manufactured, see Example 88) and wash protein-free with PBS/AzylO 11% (PBS: phosphate buffer).
例 5
EMLO−免疫吸着剤に対するPAK (HM’LrO
)のポジティブな免疫吸着
例4により得られた溶出液を例4に記載の条件でHML
C−免疫吸着剤上K11m布プる(製造、例8と同様)
。アBB /アジPO31%で洗浄した後、プロピオン
酸1モル/!で室温で溶離する。Example 5 PAK against EMLO-immunodsorbent (HM'LrO
) was subjected to HML under the conditions described in Example 4.
C-K11m cloth pull on immunoadsorbent (manufactured as in Example 8)
. After washing with ABB/AdiPO31%, propionic acid 1 mol/! Elute at room temperature.
引続き、溶出液を4℃で2時間VK−水に対して透析し
、その後に4°Oで1晩中炭酸塩/l炭酸塩緩衝液1ミ
リモル/1(pH9,5)に対して透析する。Subsequently, the eluate is dialyzed against VK-water for 2 hours at 4°C and then against carbonate/l carbonate buffer 1 mmol/1 (pH 9,5) overnight at 4°O. .
例 6
交叉及比率の測定
交叉反応率を測定するために、PODに結合ちれた、不
動態化HMLCと、羊−Farに対するポリクローナル
抗体(く羊〜Far ) −PAW )とからなる試験
系を使用した。Example 6 Measurement of cross-reactivity ratio In order to measure the cross-reactivity rate, a test system consisting of passivated HMLC bound to POD and a polyclonal antibody against Sheep-Far (Sheep-Far)-PAW) was used. used.
a)固体相の製造
担体とし2てコスタ−社(0ostar ) (pvc
)の微細滴定板を使用した。1個のキャビティーにつ
き、炭酸塩緩衝液0.2モル/V、PJ49.4中のH
MLC5μ/l/lの溶液0,11全与え、かつ4℃で
1晩中恒温保持した。PBSで2回洗浄した後、1個の
キャビティーにつき0.21117で、R8A 1%お
よびMail 0.9%を含有する燐酸塩緩衝液50
ミリモル/l、−7,aを添加し、かつ室温で1時間恒
温保持した。a) Ostar (pvc) as solid phase production carrier 2
) was used. per cavity, carbonate buffer 0.2 mol/V, H in PJ49.4
A total of 0.11 of a solution of MLC 5 μ/l/l was added and the temperature was kept constant at 4° C. overnight. After washing twice with PBS, phosphate buffer 50 containing 1% R8A and 0.9% Mail at 0.21117 per cavity.
mmol/l, -7,a was added and kept at room temperature for 1 hour.
1:i) POD−結合体の製造
Fcγに対する家兎からのポリクローナル抗体〔く羊−
Far) −PAK )をメンツズーイン・エンデイモ
ロジー(Meth、 in Knzymo’logy
) 7 Q(1980)104〜142により西洋ワサ
ビの根−POD (ペルオキシダーゼ)に結合させる。1:i) Production of POD-conjugate Polyclonal antibody from domestic rabbit against Fcγ
Far) -PAK) in Knzymo'logy
) 7 Q (1980) 104-142 to horseradish root-POD (peroxidase).
C)測定の実施
試料を燐酸塩緩衝液50ミリモル/l、pk47.4で
希釈して例6および例4によればPAN< HMI、O
> 1.0βI/ゴに変えるかないしは例5によればP
Aに< HML□ ) 0.1μ、9/1に変える。C) Carrying out the measurement The sample was diluted with phosphate buffer 50 mmol/l, pk 47.4 and according to Example 6 and Example 4 PAN < HMI, O
> 1.0βI/Go or according to Example 5, P
Change A to <HML□) 0.1μ, 9/1.
こうして調製された試料0゜1aをキャビティー1個に
つき添加し、かつ室温で1時間恒温保持する。PBSで
2回洗浄した後、キャぎティー1個につきく羊−Far
〉−PAK −POD−結合体Q、1d (POD−
活性0゜2U/′ILt)を添加し、かつ室温で1時間
恒温保持する。The sample 0°1a thus prepared is added to each cavity and kept constant at room temperature for 1 hour. After washing twice with PBS, one sheep-Far
〉-PAK-POD-conjugate Q, 1d (POD-
0.2 U/'ILt) was added and the mixture was incubated at room temperature for 1 hour.
PB13で2回洗浄した後、ABTS■(2,2’−7
ジノージー〔6−ニテルーベンズテアゾリンースルホン
酸(6))−ジアンモニウム塩)キャビティー1個につ
き0.1 at/ (燐酸/クエン酸緩衝液100ミリ
モル/A’、pJ(4,4、過鋤酸ナトリウム3、2ミ
リモル/j中1.9ミリモル/lり全添加する。45分
間の恒温時間後、空試験値に対する吸光度の差を405
nmで測定する。After washing twice with PB13, ABTS■ (2,2'-7
Ginogy [6-niterubenztheazoline-sulfonic acid (6))-diammonium salt] 0.1 at/(phosphoric acid/citrate buffer 100 mmol/A', pJ(4,4, Totally add 1.9 mmol/l in 3.2 mmol/j of sodium peroxate. After 45 minutes of incubation, the difference in absorbance from the blank value was 405.
Measured in nm.
交叉反応率を吸光値から測定し、この吸光値は、同じ試
料に対してHMLCで植種された固体相およびHMLC
で植種された固体相を用いて得られる。The cross-reactivity rate is determined from the absorbance value, which is the same as that of the solid phase inoculated with HMLC and HMLC for the same sample.
obtained using a solid phase seeded with
この場合には、SMLCでのネガティブな免疫吸着およ
びHMLCでのポジティブな免疫吸着によりSMLCに
対してPAK < HMLc )の交叉反応出は検出不
可能であることが判明した(第1表)。In this case, due to the negative immunoadsorption on SMLC and the positive immunoadsorption on HMLC, no cross-reactivity of PAK<HMLc) with respect to SMLC was found to be undetectable (Table 1).
第1表:
工S:免疫吸着
例 7
EL、T日A−サ/rインチ試験によるHMT、O−測
定
測定するためには、不動態化きれた
< nMLa ) −PAK (例5により得られた)
と、(NiMLO、、> −PAKおよびPODからの
結合体とからなる試験系を使用した(例6bと同様の結
合体の製造)。Table 1: Immunoadsorption Example 7 EL, HMT, O-measurement by TdayA-sa/r-inch test To measure the fully passivated <nMLa)-PAK (obtained according to Example 5) Ta)
A test system consisting of conjugates from (NiMLO, , > -PAK and POD) was used (preparation of conjugates similar to Example 6b).
a)固体相ニ
アvo−微細滴定板、コスタ−社(0oatar )b
)植種(< HMLC) −PANの不動態化)二〇、
1 mu/キャビティー クエン数基緩衝液0.1モル
/l!、pJ(4−0中の
< HMLC) −PAW 5μμ/1(例5)を1晩
中4℃で恒
温保持し、かつ2回PBS
(fa酸緩衝塩)で洗浄する。a) Solid phase near vo-micro titration plate, Kostar (0oatar)b
) Inoculation (< HMLC) - PAN passivation) 20,
1 mu/cavity Citric buffer 0.1 mol/l! , pJ (< HMLC in 4-0) -PAW 5 μμ/1 (Example 5) are incubated overnight at 4° C. and washed twice with PBS (fa acid buffered saline).
0)後負荷:
0.27/キヤビテイー エP:(燐酸塩緩衝液50ミ
リモル/l、…7.4.
1Jao’l 0.9%、R8A1%〔牛血清アルブ
ミン〕で洗
浄し、2回PBBで洗浄する・
d)試験の実施:
0.1ゴ/キヤビテイー IP中の試料(EMLOもし
くはsMLc O〜100 n、19.Ad)を添加し
、かつ室温で2時
間恒温保持する。2回P13B
で洗浄する。0) Afterload: 0.27/Cavity EP: (phosphate buffer 50 mmol/l,...7.4.1 Wash with Jao'l 0.9%, R8A 1% [bovine serum albumin], twice with PBB d) Carrying out the test: Add the sample (EMLO or sMLc O~100 n, 19.Ad) in 0.1g/cavity IP and incubate for 2 hours at room temperature. Wash twice with P13B.
0、I II//キャビアイー エア中の(HMLC>
−蹴(例5)とPOD (例6bと
同様に製造)とからなる結
合体(活性Q、1ty /rsJ )を添加し、かつ室
温で2時間
恒温保持する。2回PBBで
洗浄する。0, I II//Caviar E Air (HMLC>
- Add the conjugate (activity Q, 1ty /rsJ) of KET (Example 5) and POD (prepared analogously to Example 6b) and incubate for 2 hours at room temperature. Wash twice with PBB.
0.1ゴ/キヤビテイー 基3[溶液(クエン酸塩it
s液0.1モル/ J、 p)i4.4、過硼酸ナトリ
ウム3、2ミリ
モル/l中ABTB■1.9ミリ
モル/l)を室温で45分
間恒温保持する。0.1 go/cavity group 3 [solution (citrate it
s solution 0.1 mol/J, p) i4.4, ABTB (1.9 mmol/l) in sodium perborate 3, 2 mmol/l) is kept constant at room temperature for 45 minutes.
波長 KItISA−胱取り機で405
/ 490 nmで測定。Wavelength: 405 with KItISA-bladder removal machine
/ Measured at 490 nm.
結果は、第2表から認めることができる。The results can be seen from Table 2.
第2表
例 8
EIMLO−免疫吸着剤の製造
15%の硝酸およびE、Oで洗浄したスフエロシル(8
pherosil ) (o−ヌeボウラン社(Rho
ne Po+rlenc )、xoc005)e乾燥後
にDMSO中の6(トリエトキシシリル)プロピルアミ
ノ10(v/v′)%と、85℃で1晩中反応嘔せ、ス
7エロシルーNH2に変える。反応波、遊離試薬をDM
80およびインプロパツールで洗浄除去し、吸漕剤t−
50℃で乾燥する。Table 2 Example 8 EIMLO - Preparation of immunoadsorbent Spherosil (8
pherosil) (O-Nebouran (Rho)
After drying, react with 10 (v/v')% 6(triethoxysilyl)propylamino in DMSO at 85° C. overnight to convert to 7-erosilyl-NH2. DM reaction wave, free reagent
Wash and remove with 80 and Improper Tools and absorbent t-
Dry at 50°C.
ス7エロシルーNH2t I Q % ノfルタルアル
デヒド溶液pH3,7と混合し、かつ55℃で2時間加
熱する。引続き、懸濁液を真空下でガラスフィルターを
介して吸yltf11遇する。次に、ス7エロシルの7
倍の容量の蒸留水で洗浄し、かつ5倍の容量の燐酸カリ
ウム10ミリモル/l。Su7erosilu NH2t IQ % nof Mix with rutaraldehyde solution pH 3.7 and heat at 55° C. for 2 hours. Subsequently, the suspension is filtered under vacuum through a glass filter. Next, Su7 Erosil's 7
Wash with twice the volume of distilled water and 5 times the volume of potassium phosphate 10 mmol/l.
pH8,0/塩化ナトリウム0.1モル/llで後洗浄
する。Postwash with pH 8.0/sodium chloride 0.1 mol/l.
SMLC101n9tスフエロシル1Nにつキ丸底フラ
スコ中の使用したス7エロシル容量の約50%中の燐酸
カリウム10ミリモル/l、pJ(8,0/塩化ナトリ
ウム0.1モル/lに添加する。For SMLC 101n9t Supherosil 1N, add 10 mmol/l of potassium phosphate, pJ (8,0/0.1 mol/l of sodium chloride) in approximately 50% of the volume of Supharosil used in a round bottom flask.
このフラスコを室温で1晩中回転蒸発器で回転嘔せる。The flask is spun on a rotary evaporator overnight at room temperature.
濾過後、スフエロシルを数回0.9%のIJaO1溶液
ならびにエタノールアミノ溶液で後洗浄する。引続き、
エタノールアミノ溶液6容量部を添加し、かつ室温で1
時間恒温保持する。再度のg通抜、再びNaC1溶液で
洗浄する。After filtration, the spherosil is washed several times with a 0.9% IJaO1 solution as well as an ethanolamino solution. Continuing,
Add 6 parts by volume of ethanolamino solution and 1 volume at room temperature.
Maintain constant temperature for an hour. Pass through the tube again and wash again with NaCl solution.
引続き、免疫吸層剤f:PB8でpH7,5に調節し、
I#I貌り:MAK、IB1[]
かつPB8 /す) IJウムアジVで平衡にする。貯
蔵は、4°Cで行なわれる。Subsequently, the pH was adjusted to 7.5 with immunoabsorbing agent f: PB8,
I#I appearance: MAK, IB1 [] and PB8 /su) Balance with IJ Umuazi V. Storage takes place at 4°C.
例 9
モノクローナル抗体を用いてのEL工f3A−サンドイ
ッチ試皺によるHMLC−測定
測定には、不動態化された( HMLC) −PAK(
例5により製造した)と、(HMLC) −MAK(4
D12もしくはlB10)およびPODからの結合体と
からなる試験系を使用した(例6bと同様の結合体製造
)。Example 9 EL engineered f3A using monoclonal antibodies - HMLC-measurement by sandwich probing
prepared according to Example 5) and (HMLC)-MAK(4
A test system was used consisting of a conjugate from D12 or lB10) and POD (conjugate preparation similar to Example 6b).
固体相、被覆、後負荷および測定の実施は、例7と同様
であった。The solid phase, coating, afterloading and measurement implementation were similar to Example 7.
結果は、第1図から認めることができる。The results can be seen from FIG.
曲線は、僅かな試料空試験値の場合に高い感度を得るこ
とができることを示す。The curves show that high sensitivities can be obtained with small sample blank values.
第1図は、2つの異なるMAKを用いての曲線1; M
AK 4 D 12
ng/mLHMLCFigure 1 shows curve 1 with two different MAK;
AK4D 12 ng/mL HMLC
Claims (1)
MLCに対する特異的抗体。 2、2%以下のSMLCに対する交叉反応率を有する、
請求項1記載の特異的抗体。 3、1%以下のSMLCに対する交叉反応率を有する、
請求項1記載の特異的抗体。 4、哺乳動物をHMLC I および/またはHMLCII
で免疫化し、粗製血清を取得し、かつ珪酸塩を基礎とす
るSMLC−免疫吸着剤で免疫吸着精製することによつ
て得ることができる、請求項1、2または3のいずれか
1項に記載の特異的抗体。 5、HMLCに対する特典的抗体を製造する方法におい
て、哺乳動物をHMLC I および/またはHMLCII
で免疫化し、粗製血清を取得し、珪酸塩を基礎とするS
MLC−免疫吸着剤で免疫吸着精製することを特徴とす
る、HMLCに対する特異的抗体の製造法。6、シリカ
ゲルを免疫吸着剤の担体として使用する、請求項5記載
の方法。 7、SMLCを二官能性リンカーを介して担体に結合さ
せる、請求項5または6に記載の方法。 8、SMLCをグルタルジアルデヒドを介してアミノ基
によつて活性化された担体に結合させる、請求項5から
7までのいずれか1項に記載の方法。 9、SMLCを原子20個以下の距離をもつて担体に結
合させる、請求項5から8までのいずれか1項に記載の
方法。 10、HMLCを測定するための試薬において、5%以
下のSMLCに対する交叉反応率を有するHMLCに対
する特異的抗体を含有することを特徴とする、HMLC
を測定するための試薬。 11、前記抗体を不動態化された形で含有する、請求項
10記載の試薬。 12、HMLC−抗体と測定可能な基とからなる結合体
を含有する、請求項11記載の試薬。 13、HMLCに対するモノクローナル抗体と測定可能
な基とからなる結合体を含有する、請求項10または1
1に記載の試薬。 14、モノクローナル抗体4D12または1B10と測
定可能な基とからなる結合体を含有する、3請求項13
記載の試薬。 15、ハイブリドーマー細胞系ECACC880225
03から得ることができるモノクローナル抗体4D12
。 16、ハイブリドーマー細胞系ECACC880225
04から得ることができるモノクローナル抗体1B10
。 17、HMLCを測定する方法において、試料を5%以
下のSMLCに対する交叉反応率を有するHMLCに対
する不動態化された特異的抗体およびHMLCに対する
モノクローナル抗体と測定可能な基とからなる結合体と
一緒にし、相を分離し、測定可能な基を2つの相の一方
の中で測定することを特徴とする、HMLCの測定法。 18、細胞系ECACC88022503またはECA
CC88022504から得ることができる抗体をモノ
クローナル抗体として使用する、請求項17記載の方法
。[Claims] H having a cross-reactivity rate to SMLC of 1.5% or less
Specific antibody against MLC. 2, having a cross-reactivity rate to SMLC of 2% or less;
The specific antibody according to claim 1. 3. Has a cross-reactivity rate to SMLC of 1% or less;
The specific antibody according to claim 1. 4. Mammals with HMLC I and/or HMLC II
according to any one of claims 1, 2 or 3, which can be obtained by immunization with, obtaining crude serum and immunoadsorbent purification with a silicate-based SMLC-immunadsorbent. specific antibodies. 5. In the method of producing a preferential antibody against HMLC, the mammal is treated with HMLC I and/or HMLC II.
to obtain crude serum and silicate-based S
A method for producing a specific antibody against HMLC, which is characterized by immunoadsorption purification using an MLC-immunodsorbent. 6. The method according to claim 5, wherein silica gel is used as a carrier for the immunoadsorbent. 7. The method according to claim 5 or 6, wherein the SMLC is attached to the carrier via a bifunctional linker. 8. The method according to any one of claims 5 to 7, wherein the SMLC is coupled via glutardialdehyde to a support activated by amino groups. 9. The method according to any one of claims 5 to 8, wherein the SMLC is bonded to the support with a distance of less than or equal to 20 atoms. 10. A reagent for measuring HMLC, characterized by containing a specific antibody for HMLC having a cross-reactivity rate for SMLC of 5% or less.
reagent for measuring. 11. The reagent according to claim 10, which contains said antibody in passivated form. 12. The reagent according to claim 11, which contains a conjugate of an HMLC-antibody and a measurable group. 13. Claim 10 or 1, which contains a conjugate consisting of a monoclonal antibody against HMLC and a measurable group.
1. The reagent according to 1. 14. Claim 3 containing a conjugate consisting of monoclonal antibody 4D12 or 1B10 and a measurable group.
Reagents listed. 15. Hybridoma cell line ECACC880225
Monoclonal antibody 4D12 which can be obtained from 03
. 16. Hybridoma cell line ECACC880225
Monoclonal antibody 1B10 which can be obtained from 04
. 17. In the method of measuring HMLC, the sample is combined with a passivated specific antibody against HMLC having a cross-reactivity with SMLC of 5% or less and a conjugate consisting of a monoclonal antibody against HMLC and a measurable group. , an HMLC measurement method, characterized in that the phases are separated and the measurable group is determined in one of the two phases. 18, cell line ECACC88022503 or ECA
18. The method according to claim 17, wherein an antibody obtainable from CC88022504 is used as monoclonal antibody.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP63056466A JPH01233298A (en) | 1988-03-11 | 1988-03-11 | Antibody, its production, reagent for measuring hmlc and monocronal antibody |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP63056466A JPH01233298A (en) | 1988-03-11 | 1988-03-11 | Antibody, its production, reagent for measuring hmlc and monocronal antibody |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH01233298A true JPH01233298A (en) | 1989-09-19 |
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ID=13027881
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP63056466A Pending JPH01233298A (en) | 1988-03-11 | 1988-03-11 | Antibody, its production, reagent for measuring hmlc and monocronal antibody |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH01233298A (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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1988
- 1988-03-11 JP JP63056466A patent/JPH01233298A/en active Pending
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