JP7453697B2 - Immune checkpoint inhibitor antibody - Google Patents
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Description
本発明は、免疫チェックポイント阻害抗体に関する。 The present invention relates to immune checkpoint inhibiting antibodies.
がん抗原の発見以来、がん免疫療法開発に向けて様々な研究が進行している。従来のがん免疫療法では、様々なアジュバント、がん抗原タンパク質やがん抗原ペプチドが、抗腫瘍免疫応答の誘導のために使用されている。しかし、がん抗原の多くが正常自己抗原であるため免疫原性が弱く、加えて自己抗原に対する免疫応答(自己免疫)を抑制する免疫制御機構が、がん抗原に対する免疫応答をも抑制していることが明らかになりつつある。このような免疫制御機構は「免疫チェックポイント分子」と呼ばれる分子により担われている。免疫チェックポイント分子は、抗腫瘍免疫応答及び自己免疫応答を負に制御しており、例としてT細胞に発現するCTLA-4やPD-1が挙げられる(非特許文献1)。これら「免疫チェックポイント分子」に対する阻害抗体を用いた免疫治療法が試みられている(非特許文献1)。しかしながら、そのような免疫治療法では一定の臨床効果が認められてはいるものの、多くのがん種では依然として不応答性であることが指摘されており、未だ満足すべき結果が得られているとはいえない。さらにT細胞に発現する免疫チェックポイント分子「CTLA-4・PD-1系」の阻害では、がんのみならず自己に対する免疫応答の活性化により発生する、自己免疫様病態等の有害事象が生じることが危惧されている。このように免疫チェックポイント阻害剤の開発では、がん不応答性の克服に加えて、自己免疫寛容の破綻に起因する免疫関連有害事象(immune-related adverse events: irAEs)の軽減を達成することも求められている。 Since the discovery of cancer antigens, various research efforts have been underway toward the development of cancer immunotherapy. In conventional cancer immunotherapy, various adjuvants, cancer antigen proteins and cancer antigen peptides are used to induce anti-tumor immune responses. However, because many cancer antigens are normal self-antigens, their immunogenicity is weak, and in addition, the immune control mechanism that suppresses the immune response to self-antigens (autoimmunity) also suppresses the immune response to cancer antigens. It is becoming clear that there is. Such immune control mechanisms are carried out by molecules called "immune checkpoint molecules." Immune checkpoint molecules negatively regulate antitumor immune responses and autoimmune responses, and examples include CTLA-4 and PD-1 expressed in T cells (Non-Patent Document 1). Immunotherapy methods using inhibitory antibodies against these "immune checkpoint molecules" have been attempted (Non-Patent Document 1). However, although such immunotherapy methods have shown some clinical efficacy, it has been pointed out that many cancer types remain unresponsive, and results are still unsatisfactory. I can't say that. Furthermore, inhibition of the immune checkpoint molecule "CTLA-4/PD-1 system" expressed in T cells causes adverse events such as autoimmune-like pathologies caused by activation of immune responses against not only cancer but also the self. There are concerns that this will happen. In this way, the development of immune checkpoint inhibitors aims to not only overcome cancer unresponsiveness but also reduce immune-related adverse events (irAEs) caused by breakdown of autoimmune tolerance. is also in demand.
樹状細胞(dendritic cells; DCs)は樹状突起を有する、系統マーカー陰性、かつ主要組織適合遺伝子複合体クラスII陽性の抗原提示細胞であり、通常型樹状細胞(conventional DCs; cDCs)と形質細胞様樹状細胞(plasmacytoid DCs; pDCs)に大別される亜集団から構成される。樹状細胞は炎症状態では自然免疫と適応免疫を繋ぐ最も強力な抗原提示細胞として抗原特異的エフェクターT細胞の誘導を介して免疫系を賦活し、定常状態では抗原特異的クローンの除去、不応答性の誘導や免疫抑制能を有する制御性T(regulatory T; Treg)細胞の生成・増幅を介した免疫寛容を誘導する制御細胞として、免疫学的恒常性の維持に重要な役割を果たしている。一方、がん環境下での樹状細胞の機能阻害によるがん免疫応答の低下が推察されているが、その作用機序には不明な点が多く残されている。 Dendritic cells (DCs) are antigen-presenting cells that have dendrites, are negative for lineage markers, and are positive for major histocompatibility complex class II, and have characteristics similar to conventional dendritic cells (cDCs). It consists of a subpopulation that is broadly classified as plasmacytoid dendritic cells (plasmacytoid DCs; pDCs). In inflammatory conditions, dendritic cells act as the most powerful antigen-presenting cells that connect innate immunity and adaptive immunity, activating the immune system through the induction of antigen-specific effector T cells, and in steady states, eliminating antigen-specific clones and nonresponsiveness. They play an important role in maintaining immunological homeostasis as regulatory cells that induce immune tolerance through the generation and expansion of regulatory T (Treg) cells, which have the ability to induce sex and suppress immunity. On the other hand, it has been speculated that the inhibition of dendritic cell function in the cancer environment reduces the cancer immune response, but many aspects of its mechanism of action remain unclear.
本発明者らは、ヒトとマウスにおいて特定の培養条件で炎症状態においても顕著なT細胞制御機能を有する免疫抑制性樹状細胞の作製に成功している(非特許文献2、3)。
The present inventors have succeeded in producing immunosuppressive dendritic cells that have remarkable T cell control functions even in inflammatory conditions in humans and mice under specific culture conditions (Non-patent
また本発明者らは、Cタイプレクチンレセプターファミリーに属する「Clec4A4 (DCIR2)」を同定し、Clec4A4が細胞内シグナル伝達を介して樹状細胞の機能を制御し、炎症及びT細胞免疫を減弱することを示した(非特許文献4)。Clec4A4欠損マウスでは自己反応性T細胞の過剰な増幅・活性化により自己免疫疾患の発症が早まり、自己免疫病態が増悪することも見出された(非特許文献4)。 The present inventors also identified "Clec4A4 (DCIR2)", which belongs to the C-type lectin receptor family, and found that Clec4A4 controls dendritic cell function through intracellular signal transduction and attenuates inflammation and T cell immunity. It was shown that (Non-Patent Document 4). It has also been found that in Clec4A4-deficient mice, the onset of autoimmune diseases is accelerated due to excessive expansion and activation of autoreactive T cells, and autoimmune pathology is exacerbated (Non-Patent Document 4).
本発明は、抗腫瘍免疫応答の活性化に有用な、新たな機序に基づく免疫チェックポイント阻害抗体を提供することを課題とする。 An object of the present invention is to provide an immune checkpoint inhibiting antibody based on a new mechanism that is useful for activating anti-tumor immune responses.
本発明者らは、上記課題を解決するため鋭意検討を重ねた結果、ヒトCLEC4Aタンパク質の細胞外領域内に結合する所定の抗体が、免疫チェックポイント阻害作用により高い抗腫瘍効果をもたらすことを見出し、本発明を完成するに至った。 As a result of intensive studies to solve the above problems, the present inventors discovered that a specific antibody that binds to the extracellular region of the human CLEC4A protein has a high antitumor effect due to its immune checkpoint inhibiting action. , we have completed the present invention.
すなわち、本発明は以下を包含する。
[1] ヒトCLEC4Aタンパク質の細胞外領域に特異的に結合する、免疫チェックポイント阻害作用を有する抗体又はその抗原結合性断片。
[2] ヒトCLEC4Aタンパク質の細胞外領域内の配列番号21で示されるアミノ酸配列からなる領域に特異的に結合する、上記[1]に記載の抗体又はその抗原結合性断片。
[3] アミノ酸配列WVDQTPYNESSTFW(配列番号15)を含むペプチド断片に特異的に結合する、上記[1]又は[2]に記載の抗体又はその抗原結合性断片。
[4] 配列番号2で示されるアミノ酸配列上のWVDQTPYNESSTFW(配列番号15)を含む15アミノ酸長のアミノ酸配列からなるペプチド断片に結合することができる、上記[1]~[3]のいずれかに記載の抗体又はその抗原結合性断片。
[5] 配列番号2で示されるアミノ酸配列上のQNLQEESAYF(配列番号16)を含む15アミノ酸長のアミノ酸配列からなるペプチド断片とアミノ酸配列FSSNCYFISTESASW(配列番号17)からなるペプチド断片に結合することができ、ヒトCLEC4Aタンパク質の不連続エピトープに結合する、上記[1]又は[2]に記載の抗体又はその抗原結合性断片。
[6] 配列番号2で示されるアミノ酸配列上のQNLQEESAYF(配列番号16)を含む15アミノ酸長のアミノ酸配列からなるペプチド断片と配列番号2で示されるアミノ酸配列上のSSNCYFISTESASW(配列番号18)を含む15アミノ酸長のアミノ酸配列からなるペプチド断片に結合することができ、ヒトCLEC4Aタンパク質の不連続エピトープに結合する、上記[1]又は[2]に記載の抗体又はその抗原結合性断片。
[7] アミノ酸配列KKNMPVEETAWSCC(配列番号19)を含むペプチド断片に特異的に結合する、上記[1]に記載の抗体又はその抗原結合性断片。
[8] 配列番号2で示されるアミノ酸配列上のKKNMPVEETAWSCC(配列番号19)を含む15アミノ酸長のアミノ酸配列からなるペプチド断片に結合することができる、上記[1]又は[7]に記載の抗体又はその抗原結合性断片。
[9] 上記[1]~[8]のいずれかに記載の抗体又はその抗原結合性断片を含む、抗腫瘍薬。
[10] T細胞に発現する免疫チェックポイント分子に対する阻害剤と併用するための、上記[9]に記載の抗腫瘍薬。
[11] T細胞に発現する免疫チェックポイント分子に対する阻害剤をさらに含む、上記[9]に記載の抗腫瘍薬。
[12] T細胞に発現する免疫チェックポイント分子がPD-1である、上記[10]又は[11]に記載の抗腫瘍薬。
[13] T細胞に発現する免疫チェックポイント分子に対する阻害剤が、抗PD-1抗体である、上記[10]~[12]のいずれかに記載の抗腫瘍薬。
[14] がんの進展抑制用である、上記[9]~[13]のいずれかに記載の抗腫瘍薬。
That is, the present invention includes the following.
[1] An antibody or antigen-binding fragment thereof that specifically binds to the extracellular region of human CLEC4A protein and has an immune checkpoint inhibiting effect.
[2] The antibody or antigen-binding fragment thereof according to [1] above, which specifically binds to a region consisting of the amino acid sequence shown by SEQ ID NO: 21 in the extracellular region of human CLEC4A protein.
[3] The antibody or antigen-binding fragment thereof according to [1] or [2] above, which specifically binds to a peptide fragment containing the amino acid sequence WVDQTPYNESSTFW (SEQ ID NO: 15).
[4] Any of the above [1] to [3] that can bind to a peptide fragment consisting of a 15 amino acid long amino acid sequence including WVDQTPYNESSTFW (SEQ ID NO: 15) on the amino acid sequence shown by SEQ ID NO: 2. The antibody or antigen-binding fragment thereof as described.
[5] Can bind to a peptide fragment consisting of a 15 amino acid long amino acid sequence including QNLQEESAYF (SEQ ID NO: 16) on the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2 and a peptide fragment consisting of an amino acid sequence FSSNCYFISTESASW (SEQ ID NO: 17). , the antibody or antigen-binding fragment thereof according to [1] or [2] above, which binds to discontinuous epitopes of human CLEC4A protein.
[6] A peptide fragment consisting of a 15 amino acid long amino acid sequence containing QNLQEESAYF (SEQ ID NO: 16) on the amino acid sequence shown by SEQ ID NO: 2 and SSNCYFISTESASW (SEQ ID NO: 18) on the amino acid sequence shown by SEQ ID NO: 2 The antibody or antigen-binding fragment thereof according to [1] or [2] above, which is capable of binding to a peptide fragment consisting of an amino acid sequence of 15 amino acids in length and binds to discontinuous epitopes of human CLEC4A protein.
[7] The antibody or antigen-binding fragment thereof according to [1] above, which specifically binds to a peptide fragment containing the amino acid sequence KKNMPVEETAWSCC (SEQ ID NO: 19).
[8] The antibody according to [1] or [7] above, which is capable of binding to a peptide fragment consisting of a 15 amino acid long amino acid sequence containing KKNMPVEETAWSCC (SEQ ID NO: 19) on the amino acid sequence shown by SEQ ID NO: 2. or an antigen-binding fragment thereof.
[9] An antitumor drug comprising the antibody or antigen-binding fragment thereof according to any one of [1] to [8] above.
[10] The antitumor drug according to [9] above, for use in combination with an inhibitor against immune checkpoint molecules expressed in T cells.
[11] The antitumor drug according to [9] above, further comprising an inhibitor against immune checkpoint molecules expressed in T cells.
[12] The antitumor drug according to [10] or [11] above, wherein the immune checkpoint molecule expressed on T cells is PD-1.
[13] The antitumor drug according to any one of [10] to [12] above, wherein the inhibitor against immune checkpoint molecules expressed in T cells is an anti-PD-1 antibody.
[14] The antitumor drug according to any one of [9] to [13] above, which is used to suppress the progression of cancer.
本明細書は本願の優先権の基礎となる日本国特許出願番号2019-209977号の開示内容を包含する。 This specification includes the disclosure content of Japanese Patent Application No. 2019-209977, which is the basis of the priority of this application.
本発明によれば、免疫チェックポイント阻害により抗腫瘍免疫応答を活性化し、抗腫瘍効果をもたらすことができる抗体を提供することができる。 According to the present invention, it is possible to provide antibodies that can activate anti-tumor immune responses through immune checkpoint inhibition and bring about anti-tumor effects.
以下、本発明を詳細に説明する。 The present invention will be explained in detail below.
本発明は、CLEC4Aの免疫チェックポイント分子としての機能に基づくものである。より具体的には、本発明は、ヒトCLEC4Aタンパク質の細胞外領域に特異的に結合する、免疫チェックポイント阻害作用を有する抗体に関する。本発明はまた、そのような抗体を用いた、免疫チェックポイント阻害に基づく抗腫瘍免疫応答の活性化及びそれによるがんの治療又は予防用途、並びに抗腫瘍薬に関する。 The present invention is based on the function of CLEC4A as an immune checkpoint molecule. More specifically, the present invention relates to an antibody that specifically binds to the extracellular region of human CLEC4A protein and has an immune checkpoint inhibitory effect. The present invention also relates to activation of an anti-tumor immune response based on immune checkpoint inhibition using such an antibody and its use in the treatment or prevention of cancer, as well as anti-tumor drugs.
本発明において、CLEC4Aは、Cタイプ(カルシウム依存性)レクチンドメインファミリー4メンバーA(C-type Lectin Domain Family 4 Member A)と称されるタンパク質である。CLEC4Aは樹状細胞などの抗原提示細胞で発現する免疫チェックポイント分子であり、抗原提示細胞の活性化を負に制御する免疫抑制機能を有し、がん免疫応答を負に制御する。
In the present invention, CLEC4A is a protein referred to as C-type (calcium-dependent)
本発明に係る免疫チェックポイント阻害作用を有する抗体は、ヒトCLEC4Aタンパク質に結合し、CLEC4Aの免疫チェックポイント分子としての機能を阻害することから、以下、CLEC4A機能阻害抗体とも称する。本発明に係るCLEC4A機能阻害抗体は、ヒトCLEC4Aタンパク質の細胞外領域に結合し、好ましくは特異的に結合してその機能を阻害する。CLEC4A機能阻害抗体は、それが投与される対象の内因性CLEC4Aタンパク質に結合し、その機能を阻害することができる。好ましい実施形態では、CLEC4A機能阻害抗体は、樹状細胞、B細胞(CD19+ B細胞)、単球(CD14+ 単球)などの抗原提示細胞の細胞表面上に発現したCLEC4Aタンパク質に結合し、そのCLEC4Aタンパク質の免疫チェックポイント分子としての機能を阻害することができる。 Since the antibody having an immune checkpoint inhibitory effect according to the present invention binds to human CLEC4A protein and inhibits the function of CLEC4A as an immune checkpoint molecule, it is also referred to hereinafter as a CLEC4A function-inhibiting antibody. The CLEC4A function-inhibiting antibody according to the present invention binds to the extracellular region of human CLEC4A protein, preferably specifically binds to inhibit its function. A CLEC4A function-inhibiting antibody can bind to and inhibit the function of endogenous CLEC4A protein in a subject to which it is administered. In a preferred embodiment, the CLEC4A function-inhibiting antibody binds to a CLEC4A protein expressed on the cell surface of an antigen-presenting cell, such as a dendritic cell, a B cell (CD19 + B cell), or a monocyte (CD14 + monocyte); The function of the CLEC4A protein as an immune checkpoint molecule can be inhibited.
ヒトCLEC4Aタンパク質の全長アミノ酸配列の例を配列番号2に、それをコードする塩基配列の例を配列番号1に示す。ヒトCLEC4Aタンパク質は、配列番号2で示されるアミノ酸配列からなるヒトCLEC4Aタンパク質又はその機能性変異体であってよい。CLEC4Aタンパク質は、配列番号2で示されるアミノ酸配列又はそのアミノ酸配列に対して90%以上、93%以上、95%以上、又は98%以上、好ましくは99%以上、例えば99.5%以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなるものであってよく、免疫チェックポイント機能(樹状細胞などの抗原提示細胞における免疫チェックポイント分子としての機能)を保持することが好ましい。 An example of the full-length amino acid sequence of human CLEC4A protein is shown in SEQ ID NO: 2, and an example of the nucleotide sequence encoding it is shown in SEQ ID NO: 1. The human CLEC4A protein may be a human CLEC4A protein consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2 or a functional variant thereof. The CLEC4A protein has a sequence identity of 90% or more, 93% or more, 95% or more, or 98% or more, preferably 99% or more, for example 99.5% or more, to the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2 or the amino acid sequence. It is preferable that the immune checkpoint function (function as an immune checkpoint molecule in antigen-presenting cells such as dendritic cells) is maintained.
本発明に係るCLEC4A機能阻害抗体は、ヒトCLEC4Aタンパク質の細胞外領域に特異的に結合するものであってよい。本発明において、ヒトCLEC4Aタンパク質の細胞外領域とは、典型的には、配列番号2で示されるアミノ酸配列の69位から237位までの領域(配列番号12)、又は他のCLEC4Aタンパク質のアミノ酸配列においてその領域とアラインメントされる領域を指す。一実施形態では、CLEC4A機能阻害抗体は、CLEC4Aタンパク質の細胞外領域内の糖鎖認識ドメイン(carbohydrate-recognition domain; CRD)に結合する(好ましくは、特異的に結合する)ものであってよい。本発明では、CLEC4Aタンパク質の細胞外領域内の糖鎖認識ドメインは、配列番号2で示されるアミノ酸配列の107番目(Phe)から237番目(Leu)までの領域、又は他のCLEC4Aタンパク質のアミノ酸配列においてその領域とアラインメントされる領域を指すものとする。 The CLEC4A function-inhibiting antibody according to the present invention may specifically bind to the extracellular region of human CLEC4A protein. In the present invention, the extracellular region of human CLEC4A protein typically refers to the region from position 69 to position 237 of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2 (SEQ ID NO: 12), or the amino acid sequence of other CLEC4A proteins. refers to the area that is aligned with that area. In one embodiment, the CLEC4A function-inhibiting antibody may bind (preferably specifically bind) to a carbohydrate-recognition domain (CRD) in the extracellular region of the CLEC4A protein. In the present invention, the sugar chain recognition domain in the extracellular region of the CLEC4A protein is the region from the 107th (Phe) to the 237th (Leu) of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2, or other amino acid sequences of the CLEC4A protein. It refers to the area that is aligned with that area in .
より好ましい一実施形態では、CLEC4A機能阻害抗体は、CLEC4Aタンパク質(好ましくは、配列番号2で示されるアミノ酸配列からなるタンパク質)の113番目(Phe)から192番目(His)までのアミノ酸配列(配列番号21)を含むか又はそれからなる領域に結合する(好ましくは、特異的に結合する)ものであってよい。 In a more preferred embodiment, the CLEC4A function-inhibiting antibody comprises the amino acid sequence (SEQ ID NO: 21) or may bind (preferably specifically bind) to a region comprising or consisting of the same.
CLEC4Aタンパク質の細胞外領域内の糖鎖認識ドメイン(CRD)は、配列番号2で示されるアミノ酸配列(ヒトCLEC4Aタンパク質)の195位~197位にEPSモチーフ(Glu-Pro-Ser)を有する。ヒトCLEC4Aタンパク質の細胞内領域内のITIM配列は、配列番号2で示されるアミノ酸配列の5位~10位に位置する領域を指す。
The carbohydrate recognition domain (CRD) in the extracellular region of the CLEC4A protein has an EPS motif (Glu-Pro-Ser) at positions 195 to 197 of the amino acid sequence shown by SEQ ID NO: 2 (human CLEC4A protein). The ITIM sequence within the intracellular region of human CLEC4A protein refers to the region located at
一実施形態では、本発明に係るCLEC4A機能阻害抗体(抗体又はその抗原結合性断片)は、配列番号2で示されるアミノ酸配列上のWVDQTPYNESSTFW(配列番号15)を含む15アミノ酸長のアミノ酸配列からなるペプチド断片、すなわち、QWVDQTPYNESSTFW(配列番号22)からなるペプチド断片及びWVDQTPYNESSTFWH(配列番号23)からなるペプチド断片に(特異的に)結合することができる。好ましい実施形態では、このCLEC4A機能阻害抗体は、ヒトCLEC4Aタンパク質のアミノ酸配列WVDQTPYNESSTFW(配列番号15)を含むエピトープ、好ましくは線状(連続)エピトープに特異的に結合する。本発明は、アミノ酸配列WVDQTPYNESSTFW(配列番号15)を含むか又はそれからなるペプチド断片(以下に限定するものではないが、例えば、14~20アミノ酸長、14~15アミノ酸長、又は14アミノ酸長のペプチド)に特異的に結合する抗体である、CLEC4A機能阻害抗体を提供する。 In one embodiment, the CLEC4A function-inhibiting antibody (antibody or antigen-binding fragment thereof) according to the present invention consists of a 15 amino acid long amino acid sequence including WVDQTPYNESSTFW (SEQ ID NO: 15) on the amino acid sequence shown by SEQ ID NO: 2. It can (specifically) bind to peptide fragments, namely the peptide fragment consisting of QWVDQTPYNESSTFW (SEQ ID NO: 22) and the peptide fragment consisting of WVDQTPYNESSTFWH (SEQ ID NO: 23). In a preferred embodiment, the CLEC4A function-inhibiting antibody specifically binds to an epitope, preferably a linear (continuous) epitope, comprising the amino acid sequence WVDQTPYNESSTFW (SEQ ID NO: 15) of the human CLEC4A protein. The present invention provides a peptide fragment comprising or consisting of the amino acid sequence WVDQTPYNESSTFW (SEQ ID NO: 15), such as, but not limited to, peptides of 14-20 amino acids in length, 14-15 amino acids in length, or 14 amino acids in length. ) provides a CLEC4A function-inhibiting antibody, which is an antibody that specifically binds to.
別の実施形態では、本発明に係るCLEC4A機能阻害抗体(抗体又はその抗原結合性断片)は、配列番号2で示されるアミノ酸配列上のQNLQEESAYF(配列番号16)を含む15アミノ酸長のアミノ酸配列からなるペプチド断片に(特異的に)結合することができる。すなわちこのCLEC4A機能阻害抗体は、アミノ酸配列QDFIFQNLQEESAYF(配列番号24)、DFIFQNLQEESAYFV(配列番号25)、FIFQNLQEESAYFVG(配列番号26)、IFQNLQEESAYFVGL(配列番号27)、FQNLQEESAYFVGLS(配列番号28)、及びQNLQEESAYFVGLSD(配列番号29)のそれぞれからなるペプチド断片に結合することができる。本発明は、アミノ酸配列QNLQEESAYF(配列番号16)を含むか又はそれからなるペプチド断片(以下に限定するものではないが、例えば、10~20アミノ酸長、10~15アミノ酸長、又は10アミノ酸長のペプチド)に特異的に結合する抗体である、CLEC4A機能阻害抗体を提供する。 In another embodiment, the CLEC4A function-inhibiting antibody (antibody or antigen-binding fragment thereof) according to the present invention consists of a 15 amino acid long amino acid sequence including QNLQEESAYF (SEQ ID NO: 16) on the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2. can (specifically) bind to peptide fragments. That is, this CLEC4A function inhibiting antibody has the amino acid sequences QDFIFQNLQEESAYF (SEQ ID NO: 24), DFIFQNLQEESAYFV (SEQ ID NO: 25), FIFQNLQEESAYFVG (SEQ ID NO: 26), IFQNLQEESAYFVGL (SEQ ID NO: 27), FQNLQEESAYFVGLS (SEQ ID NO: 28), and QNLQEESAYFVGLSD (SEQ ID NO: 28). 29). The present invention provides a peptide fragment comprising or consisting of the amino acid sequence QNLQEESAYF (SEQ ID NO: 16), including, but not limited to, peptides of 10 to 20 amino acids in length, 10 to 15 amino acids in length, or 10 amino acids in length. ) provides a CLEC4A function-inhibiting antibody, which is an antibody that specifically binds to.
CLEC4A機能阻害抗体(抗体又はその抗原結合性断片)は、アミノ酸配列QNLQEESAYF(配列番号16)を含むか又はそれからなるペプチド断片(以下に限定するものではないが、例えば、10~20アミノ酸長、10~15アミノ酸長、又は10アミノ酸長のペプチド)、例えば、配列番号2で示されるアミノ酸配列上のQNLQEESAYF(配列番号16)を含む15アミノ酸長のアミノ酸配列からなるペプチド断片に結合できることに加えて、アミノ酸配列FSSNCYFISTESASW(配列番号17)からなるペプチド断片に(特異的に)結合することができるものであってよい。このようなCLEC4A機能阻害抗体は、ヒトCLEC4Aタンパク質の不連続エピトープに結合する抗体であることが好ましく、特に、ヒトCLEC4Aタンパク質のFSSNCYFISTESASW(配列番号17)とQNLQEESAYF(配列番号16)を含むアミノ酸配列(例えば、配列番号2の113番目~164番目のアミノ酸配列)により構成される不連続エピトープに(特異的に)結合する抗体であることがより好ましい。そのような不連続エピトープは、当該CLEC4A機能阻害抗体によって認識される部位として、アミノ酸配列FSSNCYFISTESASW(配列番号17)及びQNLQEESAYF(配列番号16)の少なくとも一部のアミノ酸残基を含み、好ましくは、アミノ酸配列FSSNCYFISTESASW(配列番号17)の少なくとも一部のアミノ酸残基とアミノ酸配列QNLQEESAYF(配列番号16)の全体とを含む。このCLEC4A機能阻害抗体は、SSNCYFISTESASWQ(配列番号30)からなるペプチド断片に結合しないものであってもよい。 CLEC4A function-inhibiting antibodies (antibodies or antigen-binding fragments thereof) include peptide fragments (for example, but not limited to, 10 to 20 amino acids long, 10 ~15 amino acids long, or 10 amino acids long), for example, QNLQEESAYF (SEQ ID NO: 16) on the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2. It may be one that can (specifically) bind to a peptide fragment consisting of the amino acid sequence FSSNCYFISTESASW (SEQ ID NO: 17). Such a CLEC4A function-inhibiting antibody is preferably an antibody that binds to a discontinuous epitope of the human CLEC4A protein, and in particular, an antibody that binds to an amino acid sequence ( For example, it is more preferable that the antibody binds (specifically) to a discontinuous epitope constituted by the amino acid sequence from position 113 to position 164 of SEQ ID NO: 2). Such a discontinuous epitope includes at least some amino acid residues of the amino acid sequences FSSNCYFISTESASW (SEQ ID NO: 17) and QNLQEESAYF (SEQ ID NO: 16) as a site recognized by the CLEC4A function-inhibiting antibody, and preferably includes It contains at least some amino acid residues of the sequence FSSNCYFISTESASW (SEQ ID NO: 17) and the entire amino acid sequence QNLQEESAYF (SEQ ID NO: 16). This CLEC4A function-inhibiting antibody may not bind to the peptide fragment consisting of SSNCYFISTESASWQ (SEQ ID NO: 30).
あるいは、CLEC4A機能阻害抗体(抗体又はその抗原結合性断片)は、アミノ酸配列QNLQEESAYF(配列番号16)を含むか又はそれからなるペプチド断片(以下に限定するものではないが、例えば、10~20アミノ酸長、10~15アミノ酸長、又は10アミノ酸長のペプチド)、例えば、配列番号2で示されるアミノ酸配列上のQNLQEESAYF(配列番号16)を含む15アミノ酸長のアミノ酸配列からなるペプチド断片に結合できることに加えて、アミノ酸配列SSNCYFISTESASW(配列番号18)を含むか又はそれからなるペプチド断片(以下に限定するものではないが、例えば、14~20アミノ酸長、14~15アミノ酸長、又は14アミノ酸長のペプチド)、例えば、配列番号2で示されるアミノ酸配列上のSSNCYFISTESASW(配列番号18)を含む15アミノ酸長のアミノ酸配列からなるペプチド断片に(特異的に)結合することができるものであってもよい。すなわちそのCLEC4A機能阻害抗体は、アミノ酸配列FSSNCYFISTESASW(配列番号17)又はSSNCYFISTESASWQ(配列番号30)のそれぞれからなるペプチド断片に結合することができる。このようなCLEC4A機能阻害抗体は、ヒトCLEC4Aタンパク質の不連続エピトープに結合する抗体であることが好ましく、ヒトCLEC4Aタンパク質のSSNCYFISTESASW(配列番号18)とQNLQEESAYF(配列番号16)を含むアミノ酸配列(例えば、配列番号2の114番目~164番目のアミノ酸配列)により構成される不連続エピトープに(特異的に)結合する抗体であることがより好ましい。そのような不連続エピトープは、当該CLEC4A機能阻害抗体によって認識される部位として、アミノ酸配列SSNCYFISTESASW(配列番号18)及びQNLQEESAYF(配列番号16)の少なくとも一部のアミノ酸残基を含み、好ましくはSSNCYFISTESASW(配列番号18)の全体とQNLQEESAYF(配列番号16)の全体とを含む。 Alternatively, the CLEC4A function-inhibiting antibody (antibody or antigen-binding fragment thereof) may be a peptide fragment (for example, but not limited to, 10 to 20 amino acids long) comprising or consisting of the amino acid sequence QNLQEESAYF (SEQ ID NO: 16). , 10 to 15 amino acids long, or a 10 amino acid long peptide), for example, in addition to being able to bind to a peptide fragment consisting of a 15 amino acid long amino acid sequence including QNLQEESAYF (SEQ ID NO: 16) on the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2. a peptide fragment (for example, but not limited to, a 14-20 amino acid long, 14-15 amino acid long, or 14 amino acid long peptide) comprising or consisting of the amino acid sequence SSNCYFISTESASW (SEQ ID NO: 18); For example, it may be one that can (specifically) bind to a peptide fragment consisting of a 15 amino acid long amino acid sequence including SSNCYFISTESASW (SEQ ID NO: 18) on the amino acid sequence shown by SEQ ID NO: 2. That is, the CLEC4A function-inhibiting antibody can bind to a peptide fragment consisting of the amino acid sequence FSSNCYFISTESASW (SEQ ID NO: 17) or SSNCYFISTESASWQ (SEQ ID NO: 30). Such a CLEC4A function-inhibiting antibody is preferably an antibody that binds to a discontinuous epitope of the human CLEC4A protein, and is an antibody that binds to an amino acid sequence (for example, More preferably, it is an antibody that (specifically) binds to a discontinuous epitope constituted by the amino acid sequence (114th to 164th amino acid sequence of SEQ ID NO: 2). Such a discontinuous epitope includes at least some amino acid residues of the amino acid sequences SSNCYFISTESASW (SEQ ID NO: 18) and QNLQEESAYF (SEQ ID NO: 16) as a site recognized by the CLEC4A function-inhibiting antibody, and preferably SSNCYFISTESASW ( It includes the entirety of SEQ ID NO: 18) and the entirety of QNLQEESAYF (SEQ ID NO: 16).
さらに別の実施形態では、本発明に係るCLEC4A機能阻害抗体(抗体又はその抗原結合性断片)は、配列番号2で示されるアミノ酸配列上のKKNMPVEETAWSCC(配列番号19)を含む15アミノ酸長のアミノ酸配列からなるペプチド断片、すなわち、VKKNMPVEETAWSCC(配列番号31)からなるペプチド断片及びKKNMPVEETAWSCCP(配列番号32)からなるペプチド断片に(特異的に)結合することができる。好ましい実施形態では、このCLEC4A機能阻害抗体は、ヒトCLEC4Aタンパク質のアミノ酸配列KKNMPVEETAWSCC(配列番号19)を含む(例えば、その配列からなる)エピトープ、好ましくは線状(連続)エピトープに特異的に結合する。本発明は、アミノ酸配列KKNMPVEETAWSCC(配列番号19)を含むか又はそれからなるペプチド断片(以下に限定するものではないが、例えば、14~20アミノ酸長、14~15アミノ酸長、又は14アミノ酸長のペプチド)に特異的に結合する抗体である、CLEC4A機能阻害抗体を提供する。 In yet another embodiment, the CLEC4A function-inhibiting antibody (antibody or antigen-binding fragment thereof) according to the present invention has an amino acid sequence of 15 amino acids that includes KKNMPVEETAWSCC (SEQ ID NO: 19) on the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2. can (specifically) bind to the peptide fragment consisting of VKKNMPVEETAWSCC (SEQ ID NO: 31) and the peptide fragment consisting of KKNMPVEETAWSCCP (SEQ ID NO: 32). In a preferred embodiment, the CLEC4A function-inhibiting antibody specifically binds to an epitope comprising (e.g., consisting of) the amino acid sequence KKNMPVEETAWSCC (SEQ ID NO: 19) of the human CLEC4A protein, preferably a linear (continuous) epitope. . The present invention provides peptide fragments comprising or consisting of the amino acid sequence KKNMPVEETAWSCC (SEQ ID NO: 19), such as, but not limited to, peptides of 14-20 amino acids in length, 14-15 amino acids in length, or 14 amino acids in length. ) provides a CLEC4A function-inhibiting antibody, which is an antibody that specifically binds to.
ここで「ペプチド断片」とは、所定のタンパク質(特に、全長CLEC4Aタンパク質)の断片であるペプチド又はそれに相当する合成ペプチドを指すものであり得る。本発明において「ペプチド断片」という用語は、用語「ペプチド」と互換的に使用することができる。本発明におけるペプチド断片又はペプチドは、オリゴペプチドであってもよい。本発明においてオリゴペプチドとは、2~20アミノ酸長を有するペプチドを指す。 Here, the term "peptide fragment" may refer to a peptide that is a fragment of a predetermined protein (in particular, full-length CLEC4A protein) or a synthetic peptide corresponding thereto. In the present invention, the term "peptide fragment" can be used interchangeably with the term "peptide." The peptide fragment or peptide in the present invention may be an oligopeptide. In the present invention, oligopeptide refers to a peptide having a length of 2 to 20 amino acids.
なお本明細書において、アミノ酸残基やアミノ酸配列は当該分野で一般的に使用される一文字表記又は三文字表記に従って記載されている。 In this specification, amino acid residues and amino acid sequences are described according to the one-letter or three-letter notation commonly used in the field.
本発明に係るCLEC4A機能阻害抗体は、免疫グロブリン分子の任意のクラス、例えばIgG、IgE、IgM、IgA、IgD、又はIgYであってよく、さらに任意のサブクラス、例えばIgG1、IgG2、IgG3、IgG4、IgA1、IgA2等であってよい。 The CLEC4A function-inhibiting antibody according to the invention may be of any class of immunoglobulin molecules, such as IgG, IgE, IgM, IgA, IgD, or IgY, and further of any subclass, such as IgG1, IgG2, IgG3, IgG4, It may be IgA1, IgA2, etc.
CLEC4A機能阻害抗体は、モノクローナル抗体又はポリクローナル抗体であってよい。CLEC4A機能阻害抗体は、任意の抗体形態であってよく、例えば、多重特異性抗体(二重特異性抗体など)、組換え抗体、ヒト抗体、ヒト化抗体、キメラ抗体、一本鎖抗体、ミニボディ、ダイアボディ、トリアボディ等であってよい。CLEC4A機能阻害抗体はまた、全抗体であってもよいし、全抗体の抗原結合性断片、例えばFab、F(ab')2、Fab'、Fv、scFv、sdFv等であってもよい。CLEC4A機能阻害抗体は、グリコシル化、アセチル化、ホルミル化、アミド化、リン酸化、又はペグ(PEG)化等の任意の修飾がされていてもよい。 The CLEC4A function-inhibiting antibody may be a monoclonal antibody or a polyclonal antibody. The CLEC4A function-inhibiting antibody may be in any antibody form, such as a multispecific antibody (such as a bispecific antibody), a recombinant antibody, a human antibody, a humanized antibody, a chimeric antibody, a single chain antibody, a mini antibody, etc. It may be a body, a diabody, a diabody, etc. The CLEC4A function-inhibiting antibody may also be a whole antibody or an antigen-binding fragment of a whole antibody, such as Fab, F(ab') 2 , Fab', Fv, scFv, sdFv, and the like. The CLEC4A function-inhibiting antibody may be optionally modified such as glycosylation, acetylation, formylation, amidation, phosphorylation, or pegylation (PEG).
CLEC4A機能阻害抗体は、常法により作製することができる。CLEC4A機能阻害抗体は、公知の抗体作製法に基づいて作製することができる。例えば、まず、CLEC4A機能阻害抗体の産生を惹起し得る抗原を、動物の皮下、足蹠、腹腔内等に投与して免疫する。そのような抗原は、CLEC4A機能阻害抗体が結合するヒトCLEC4Aタンパク質中の標的配列(例えば、エピトープ又はその一部)を含む抗原であり、以下に限定するものではないが、全長ヒトCLEC4Aタンパク質、上記標的配列を含有するヒトCLEC4Aタンパク質断片、上記標的配列からなるポリペプチド、上記標的配列を含む抗原(例えば、上記標的配列を含むヒトCLEC4Aタンパク質部分配列からなるポリペプチドと免疫グロブリンFc分子などの他のポリペプチドとの融合タンパク質)、及び上記標的配列を含むポリペプチドを細胞表面に発現する細胞等が挙げられる。抗原は、任意のアジュバントと共に投与してもよい。抗原の投与は1回でもよいが、複数回(例えば、2回~10回、好ましくは2~5回)行うことが好ましい。免疫後、免疫細胞(例えば、リンパ節細胞、又は脾臓細胞)を通常の細胞融合法によって公知の親細胞(例えば、ミエローマ細胞などの不死化細胞)と融合させ、融合細胞を得る。融合相手の親細胞は、免疫細胞と同じ生物種に由来することが好ましい。融合相手の親細胞として用いられるマウス由来のミエローマ細胞としては、P3U1(P3-X63Ag8U1)、P3(P3x63Ag8.653)、P3x63Ag8U.1、NS-1、MPC-11等が挙げられるが、これらに限定されない。 CLEC4A function-inhibiting antibodies can be produced by conventional methods. CLEC4A function-inhibiting antibodies can be produced based on known antibody production methods. For example, first, an antigen capable of inducing the production of CLEC4A function-inhibiting antibodies is administered subcutaneously, into the footpad, intraperitoneally, etc. to immunize the animal. Such antigens are antigens that include a target sequence (e.g., an epitope or a portion thereof) in the human CLEC4A protein to which the CLEC4A function-inhibiting antibody binds, including, but not limited to, full-length human CLEC4A protein, the above-mentioned A human CLEC4A protein fragment containing the target sequence, a polypeptide consisting of the above target sequence, an antigen containing the above target sequence (for example, a polypeptide consisting of the human CLEC4A protein partial sequence containing the above target sequence and other proteins such as immunoglobulin Fc molecules) fusion proteins with polypeptides), and cells that express polypeptides containing the above target sequence on their cell surfaces. The antigen may be administered with an optional adjuvant. The antigen may be administered once, but it is preferably administered multiple times (eg, 2 to 10 times, preferably 2 to 5 times). After immunization, the immune cells (eg, lymph node cells or spleen cells) are fused with known parent cells (eg, immortalized cells such as myeloma cells) by a conventional cell fusion method to obtain fused cells. The parent cell of the fusion partner is preferably derived from the same species as the immune cell. Mouse-derived myeloma cells used as parent cells for fusion include, but are limited to, P3U1 (P3-X63Ag8U1), P3 (P3x63Ag8.653), P3x63Ag8U.1, NS-1, MPC-11, etc. Not done.
免疫細胞と親細胞との細胞融合は、例えば、ケーラーとミルステインの方法(Kohler, G. and Milstein, C. Methods Enzymol. (1981)73, 3-46)等に準じて行うことができる。具体的には、そのような細胞融合は、細胞融合促進剤の存在下で通常の栄養培養液中で実施される。細胞融合促進剤としては、例えば平均分子量1000~6000程度のポリエチレングリコール(PEG)(例えば、PEG4000)、センダイウイルス(HVJ)等を使用することができる。融合効率を高めるためにジメチルスルホキシド等の補助剤をさらに使用することもできる。免疫細胞と親細胞(ミエローマ細胞等)との使用割合は任意に設定することができる。 Cell fusion between immune cells and parent cells can be carried out, for example, according to the method of Kohler and Milstein (Kohler, G. and Milstein, C. Methods Enzymol. (1981) 73, 3-46). Specifically, such cell fusion is carried out in normal nutrient broth in the presence of a cell fusion promoter. As the cell fusion promoter, for example, polyethylene glycol (PEG) having an average molecular weight of about 1000 to 6000 (eg, PEG4000), Sendai virus (HVJ), etc. can be used. Additional adjuvants such as dimethyl sulfoxide can also be used to increase fusion efficiency. The usage ratio of immune cells and parent cells (myeloma cells, etc.) can be set arbitrarily.
得られた融合細胞を、目的のCLEC4A機能阻害抗体の産生能についてスクリーニングし、クローン化することにより、モノクローナルな抗体産生細胞(ハイブリドーマ)を取得することができる。そのハイブリドーマを培養して得られる培養上清から抗体を回収することによってCLEC4A機能阻害抗体を作製することができる。 The obtained fused cells are screened for their ability to produce the desired CLEC4A function-inhibiting antibody and cloned to obtain monoclonal antibody-producing cells (hybridoma). A CLEC4A function-inhibiting antibody can be produced by collecting the antibody from the culture supernatant obtained by culturing the hybridoma.
CLEC4A機能阻害抗体がポリクローナル抗体の場合には、上記のとおり免疫した動物(非ヒト動物)から血清を採取することにより取得することができる。この場合、免疫する動物として、ヒト抗体産生非ヒト動物を用いることができる。 When the CLEC4A function-inhibiting antibody is a polyclonal antibody, it can be obtained by collecting serum from an immunized animal (non-human animal) as described above. In this case, a non-human animal producing human antibodies can be used as the animal to be immunized.
CLEC4A機能阻害抗体のスクリーニングは、例えば、CLEC4A機能阻害抗体が結合する抗原及び/又はペプチド断片への結合性を調べることにより行ってもよい。例えば、ヒトCLEC4Aタンパク質の細胞外領域、及び/又はヒトCLEC4Aタンパク質の細胞外領域内の配列番号21で示されるアミノ酸配列からなる領域からなるポリペプチドに対する抗体の結合を検出することにより、CLEC4A機能阻害抗体をスクリーニングしてもよい。 Screening for CLEC4A function-inhibiting antibodies may be performed, for example, by examining the binding property to the antigen and/or peptide fragment to which the CLEC4A function-inhibiting antibody binds. For example, by detecting the binding of an antibody to the extracellular region of the human CLEC4A protein and/or the polypeptide consisting of the region consisting of the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 21 within the extracellular region of the human CLEC4A protein, CLEC4A function can be inhibited. Antibodies may also be screened.
一実施形態では、上述のアミノ酸配列WVDQTPYNESSTFW(配列番号15)からなるペプチド断片、並びに/又は、QWVDQTPYNESSTFW(配列番号22)及びWVDQTPYNESSTFWH(配列番号23)の一方又は両方のアミノ酸配列のそれぞれからなるペプチド断片に対する抗体の結合を検出することにより、CLEC4A機能阻害抗体をスクリーニングすることができる。 In one embodiment, a peptide fragment consisting of the above-mentioned amino acid sequence WVDQTPYNESSTFW (SEQ ID NO: 15) and/or a peptide fragment consisting of one or both of the amino acid sequences QWVDQTPYNESSTFW (SEQ ID NO: 22) and WVDQTPYNESSTFWH (SEQ ID NO: 23), respectively. CLEC4A function-inhibiting antibodies can be screened by detecting the binding of antibodies to CLEC4A.
別の実施形態では、上述のアミノ酸配列QNLQEESAYF(配列番号16)からなるペプチド断片、並びに/又は、QDFIFQNLQEESAYF(配列番号24)、DFIFQNLQEESAYFV(配列番号25)、FIFQNLQEESAYFVG(配列番号26)、IFQNLQEESAYFVGL(配列番号27)、FQNLQEESAYFVGLS(配列番号28)、及びQNLQEESAYFVGLSD(配列番号29)からなる群から選択される少なくとも1つ(例えば、少なくとも2つ、少なくとも3つ、少なくとも4つ、又は5つ全て)のアミノ酸配列のそれぞれからなるペプチド断片に対する抗体の結合を検出することにより、CLEC4A機能阻害抗体をスクリーニングすることができる。上記ペプチド断片に対する結合に加えて、上述のアミノ酸配列FSSNCYFISTESASW(配列番号17)からなるペプチド断片に対する抗体の結合をさらに検出することにより、CLEC4A機能阻害抗体をスクリーニングすることもできる。あるいは、上記ペプチド断片に対する結合に加えて、上述のアミノ酸配列SSNCYFISTESASW(配列番号18)からなるペプチド断片、並びに/又は、FSSNCYFISTESASW(配列番号17)及びSSNCYFISTESASWQ(配列番号30)の一方又は両方のアミノ酸配列のそれぞれからなるペプチド断片に対する抗体の結合を検出することにより、CLEC4A機能阻害抗体をスクリーニングすることもできる。 In another embodiment, a peptide fragment consisting of the above-mentioned amino acid sequence QNLQEESAYF (SEQ ID NO: 16) and/or QDFIFQNLQEESAYF (SEQ ID NO: 24), DFIFQNLQEESAYFV (SEQ ID NO: 25), FIFQNLQEESAYFVG (SEQ ID NO: 26), IFQNLQEESAYFVGL (SEQ ID NO: 26), 27), FQNLQEESAYFVGLS (SEQ ID NO: 28), and QNLQEESAYFVGLSD (SEQ ID NO: 29). CLEC4A function-inhibiting antibodies can be screened by detecting the binding of antibodies to peptide fragments consisting of each of the following. In addition to binding to the above-mentioned peptide fragment, CLEC4A function-inhibiting antibodies can also be screened by further detecting the binding of the antibody to the peptide fragment consisting of the above-mentioned amino acid sequence FSSNCYFISTESASW (SEQ ID NO: 17). Alternatively, in addition to binding to the above peptide fragment, a peptide fragment consisting of the above amino acid sequence SSNCYFISTESASW (SEQ ID NO: 18) and/or the amino acid sequence of one or both of FSSNCYFISTESASW (SEQ ID NO: 17) and SSNCYFISTESASWQ (SEQ ID NO: 30) It is also possible to screen for antibodies that inhibit CLEC4A function by detecting the binding of antibodies to peptide fragments consisting of each of the following.
さらに別の実施形態では、上述のアミノ酸配列KKNMPVEETAWSCC(配列番号19)からなるペプチド断片、並びに/又は、VKKNMPVEETAWSCC(配列番号31)及びKKNMPVEETAWSCCP(配列番号32)の一方又は両方のアミノ酸配列のそれぞれからなるペプチド断片に対する抗体の結合を検出することにより、CLEC4A機能阻害抗体をスクリーニングすることもできる。 In yet another embodiment, a peptide fragment consisting of the above-described amino acid sequence KKNMPVEETAWSCC (SEQ ID NO: 19) and/or consisting of one or both of the amino acid sequences VKKNMPVEETAWSCC (SEQ ID NO: 31) and KKNMPVEETAWSCCP (SEQ ID NO: 32), respectively. CLEC4A function-inhibiting antibodies can also be screened by detecting antibody binding to peptide fragments.
ペプチド断片に対する抗体の結合は、抗原抗体反応を検出可能な任意の方法により検出することができるが、例えば、標的となるペプチド断片をアレイ上に固定したペプチドアレイを使用して検出してもよい。 Binding of antibodies to peptide fragments can be detected by any method capable of detecting an antigen-antibody reaction; for example, it may be detected using a peptide array on which target peptide fragments are immobilized. .
CLEC4A機能阻害抗体は、さらに、抗体遺伝子をクローニングし、適当なベクターに組み込んで、これを宿主に導入し、遺伝子組換え技術を用いて産生させることにより、組換え抗体としても製造することができる。具体的には、抗体の可変領域(V領域)のcDNAを抗体定常領域(C領域)をコードするDNAと連結し、発現ベクターの発現制御領域、例えば、エンハンサー、プロモーターの制御下へ組み込み、その発現ベクターを宿主細胞に導入して形質転換し、宿主細胞により抗体を産生させることにより、CLEC4A機能阻害抗体を組換え抗体として作製することができる。 CLEC4A function-inhibiting antibodies can also be produced as recombinant antibodies by cloning the antibody gene, inserting it into an appropriate vector, introducing this into a host, and producing it using genetic recombination technology. . Specifically, the cDNA of the antibody variable region (V region) is ligated with the DNA encoding the antibody constant region (C region), and is inserted under the control of the expression control region of an expression vector, such as an enhancer or promoter. A CLEC4A function-inhibiting antibody can be produced as a recombinant antibody by introducing an expression vector into a host cell, transforming it, and causing the host cell to produce the antibody.
以上のようにして得られた抗体や核酸等は、公知の精製法により単離精製し、回収することができる。精製法としては、アフィニティ精製法、逆相クロマトグラフィー、逆相高速液体クロマトグラフィー(RP-HPLC)、イオン交換クロマトグラフィーなどのクロマトグラフィー法、ゲル濾過、カラム精製、ポリアクリルアミドゲル電気泳動(PAGE)等、又はそれらの任意の組み合わせが挙げられるが、これらに限定されない。 Antibodies, nucleic acids, etc. obtained as described above can be isolated and purified by known purification methods and recovered. Purification methods include affinity purification, reversed-phase chromatography, reversed-phase high performance liquid chromatography (RP-HPLC), ion exchange chromatography and other chromatography methods, gel filtration, column purification, and polyacrylamide gel electrophoresis (PAGE). etc., or any combination thereof, but is not limited to these.
本発明に係るCLEC4A機能阻害抗体は、免疫チェックポイント阻害作用を有する。CLEC4A機能阻害抗体は、CLEC4A機能阻害により、樹状細胞などの抗原提示細胞において免疫チェックポイント阻害を引き起こし、免疫チェックポイント分子が寄与する抗腫瘍免疫応答(がん免疫応答)抑制を解除し、抗腫瘍免疫応答を活性化し、有効な抗腫瘍免疫応答(がん免疫応答)を増強することができる。 The CLEC4A function-inhibiting antibody according to the present invention has an immune checkpoint inhibiting effect. CLEC4A function-inhibiting antibodies cause immune checkpoint inhibition in antigen-presenting cells such as dendritic cells by inhibiting CLEC4A function, release the suppression of anti-tumor immune responses (cancer immune responses) contributed by immune checkpoint molecules, and produce anti-tumor immune responses. It can activate tumor immune response and enhance effective anti-tumor immune response (cancer immune response).
ここで、本発明に係るCLEC4A機能阻害抗体により、免疫チェックポイント阻害が引き起こされる抗原提示細胞は、CLEC4Aタンパク質を細胞表面上に発現している抗原提示細胞であり、そのような抗原提示細胞としては、樹状細胞、B細胞(例えば、CD19+ B細胞)、単球(例えば、CD14+ 単球)等が挙げられるが、これらに限定されない。なお抗原提示細胞は、抗原を細胞表面上に提示してT細胞を活性化する細胞である。したがって本発明に係るCLEC4A機能阻害抗体は、免疫チェックポイント阻害剤、好ましくは樹状細胞、B細胞(例えば、CD19+ B細胞)、単球(例えば、CD14+ 単球)等の抗原提示細胞に対する免疫チェックポイント阻害剤として用いることができる。 Here, the antigen-presenting cells in which immune checkpoint inhibition is caused by the CLEC4A function-inhibiting antibody according to the present invention are antigen-presenting cells that express CLEC4A protein on the cell surface, and such antigen-presenting cells include , dendritic cells, B cells (eg, CD19 + B cells), monocytes (eg, CD14 + monocytes), and the like, but are not limited to these. Note that antigen-presenting cells are cells that present antigens on the cell surface to activate T cells. Therefore, the CLEC4A function-inhibiting antibody according to the present invention is an immune checkpoint inhibitor, preferably directed against antigen-presenting cells such as dendritic cells, B cells (e.g., CD19 + B cells), and monocytes (e.g., CD14 + monocytes). It can be used as an immune checkpoint inhibitor.
本発明に係るCLEC4A機能阻害抗体の免疫チェックポイント阻害作用(免疫チェックポイント阻害活性)や抗腫瘍免疫応答の活性化能は、CLEC4A機能阻害抗体で処理した抗原提示細胞、例えば樹状細胞において、当該CLEC4A機能阻害抗体で処理しない場合(CLEC4A機能を阻害しない対照抗体を投与する場合)と比較して、炎症性サイトカイン(例えば、IL-6、TNF-α、IL-12p40等)の産生量が増加する(好ましくは統計学的に有意に増加する)ことを指標として、評価することができる。より具体的には、CLEC4A機能阻害抗体の免疫チェックポイント阻害作用や抗腫瘍免疫応答の活性化能の評価は、抗原提示細胞、好ましくは樹状細胞を、TLR4リガンドやTLR9リガンド等のTLRリガンド、例えば、LPS又はCpG-B ODN 1668等の存在下で、CLEC4A機能阻害抗体を添加して培養し、培養液中のサイトカイン量を測定し、対照と比較することにより行うことができ、その際、炎症性サイトカイン(例えば、IL-6、TNF-α、IL-12p40等)の産生量が対照と比較して増加(好ましくは統計学的に有意に増加)した場合には当該抗体が免疫チェックポイント阻害作用(免疫チェックポイント阻害活性)及び抗腫瘍免疫応答の活性化能を有すると判断することができる。 The immune checkpoint inhibitory effect (immune checkpoint inhibitory activity) and the ability to activate anti-tumor immune responses of the CLEC4A function-inhibiting antibody of the present invention can be observed in antigen-presenting cells, such as dendritic cells, treated with the CLEC4A function-inhibiting antibody. Increased production of inflammatory cytokines (e.g., IL-6, TNF-α, IL-12p40, etc.) compared to when not treated with a CLEC4A function-inhibiting antibody (when a control antibody that does not inhibit CLEC4A function is administered) (preferably a statistically significant increase) can be used as an index for evaluation. More specifically, the evaluation of the immune checkpoint inhibiting effect and the ability to activate antitumor immune responses of CLEC4A function-inhibiting antibodies is carried out by targeting antigen-presenting cells, preferably dendritic cells, to TLR ligands such as TLR4 ligands and TLR9 ligands, For example, this can be carried out by culturing in the presence of LPS or CpG-B ODN 1668, etc., adding a CLEC4A function-inhibiting antibody, measuring the amount of cytokine in the culture solution, and comparing it with a control. If the production amount of inflammatory cytokines (e.g., IL-6, TNF-α, IL-12p40, etc.) is increased (preferably statistically significantly increased) compared to the control, the antibody may be detected as an immune checkpoint. It can be judged that it has an inhibitory effect (immune checkpoint inhibitory activity) and an ability to activate an antitumor immune response.
本発明に係るCLEC4A機能阻害抗体は、抗腫瘍薬の有効成分として用いることができる。本発明は、本発明に係るCLEC4A機能阻害抗体を含む、抗腫瘍薬又は医薬組成物も提供する。抗腫瘍薬又は医薬組成物は、本発明に係るCLEC4A機能阻害抗体を治療上有効量で含むことが好ましい。そのような抗腫瘍薬又は医薬組成物は、がんの治療又は予防用、例えば、がんの進展抑制又はがんの再発予防用のものであってよい。本発明に係る抗腫瘍薬又は医薬組成物は、樹状細胞、B細胞(CD19+ B細胞)、単球(CD14+ 単球)等の抗原提示細胞に対する免疫チェックポイント阻害に基づくがんの治療又は予防、例えば、がんの進展抑制又はがんの再発予防のために有用である。 The CLEC4A function-inhibiting antibody according to the present invention can be used as an active ingredient of an antitumor drug. The present invention also provides an antitumor drug or a pharmaceutical composition comprising the CLEC4A function-inhibiting antibody according to the present invention. Preferably, the antitumor drug or pharmaceutical composition contains the CLEC4A function-inhibiting antibody according to the present invention in a therapeutically effective amount. Such an antitumor drug or pharmaceutical composition may be used for cancer treatment or prevention, for example, for suppressing cancer progression or preventing cancer recurrence. The antitumor drug or pharmaceutical composition according to the present invention provides cancer treatment based on immune checkpoint inhibition of antigen-presenting cells such as dendritic cells, B cells (CD19 + B cells), and monocytes (CD14 + monocytes). Or it is useful for prevention, for example, suppressing cancer progression or preventing cancer recurrence.
本発明において「がんの進展抑制」とは、がんの病状の悪化(とりわけ、腫瘍サイズの増加)を遅らせるか若しくは防止する、又は病状を回復させることを含む。一実施形態では、がんの進展抑制は、腫瘍サイズ(例えば、腫瘍体積)を指標として評価することができる。例えば、本発明に係るCLEC4A機能阻害抗体を投与した対象(がん患者)又は担がん動物モデルにおいて、腫瘍サイズ(例えば、腫瘍体積)を(好ましくは経時的に)測定し、対照群(本発明に係るCLEC4A機能阻害抗体の代わりに抗腫瘍作用を有しない抗体を投与する)と比較して、腫瘍サイズの低下(好ましくは統計学的に有意な低下)が認められる場合にはがんの進展が抑制されたと判断することができる。 In the present invention, "suppressing the progression of cancer" includes delaying or preventing the deterioration of the cancer condition (in particular, increase in tumor size), or reversing the disease condition. In one embodiment, inhibition of cancer progression can be evaluated using tumor size (eg, tumor volume) as an index. For example, tumor size (e.g., tumor volume) is measured (preferably over time) in a subject (cancer patient) or tumor-bearing animal model to which the CLEC4A function-inhibiting antibody of the present invention has been administered, and If a reduction in tumor size (preferably a statistically significant reduction) is observed compared to administering an antibody that does not have antitumor activity in place of the CLEC4A function-inhibiting antibody according to the invention, cancer It can be judged that the progress has been suppressed.
本発明に係るCLEC4A機能阻害抗体による、抗腫瘍免疫応答の活性化、及び治療又は予防の対象となるがん又は腫瘍としては、以下に限定されないが、例えば、悪性黒色腫、肺がん、腎細胞がん、頭頚部がん、膀胱がん、膵がん、胃がん、肝臓がん、食道がん、胆道がん、大腸がん、尿路上皮がん、膠芽腫、多発性骨髄腫、卵巣がん、子宮頸がん、子宮体がん、乳がん、悪性胸膜中皮腫、軟部肉腫、リンパ腫(ホジキンリンパ腫、中枢神経系原発リンパ腫、精巣原発リンパ腫等)、ウイルス陽性又は陰性固形がん、メルケル細胞がん等が挙げられる。 Cancers or tumors targeted for activation of anti-tumor immune responses and treatment or prevention by the CLEC4A function-inhibiting antibody according to the present invention include, but are not limited to, malignant melanoma, lung cancer, and renal cells. Head and neck cancer, bladder cancer, pancreatic cancer, stomach cancer, liver cancer, esophageal cancer, biliary tract cancer, colorectal cancer, urothelial cancer, glioblastoma, multiple myeloma, and ovarian cancer. Cervical cancer, endometrial cancer, breast cancer, malignant pleural mesothelioma, soft tissue sarcoma, lymphoma (Hodgkin lymphoma, primary central nervous system lymphoma, primary testicular lymphoma, etc.), virus-positive or negative solid tumors, Merkel cell Examples include cancer.
本発明に係る抗腫瘍薬又は医薬組成物は、CLEC4A機能阻害抗体に加えて、製薬上許容される添加剤をさらに含んでもよい。そのような添加剤としては、以下に限定されないが、担体、懸濁剤、結合剤、賦形剤、滑沢剤、崩壊剤、湿潤剤、安定剤、緩衝剤、保存剤、着色剤、pH調整剤等が挙げられる。添加剤は、単独でも2種以上を組み合わせても用いることができ、製剤の剤形に応じて適宜用いることができる。 The antitumor drug or pharmaceutical composition according to the present invention may further contain a pharmaceutically acceptable additive in addition to the CLEC4A function-inhibiting antibody. Such additives include, but are not limited to, carriers, suspending agents, binders, excipients, lubricants, disintegrants, wetting agents, stabilizers, buffers, preservatives, colorants, pH Conditioners and the like can be mentioned. The additives can be used alone or in combination of two or more, and can be used as appropriate depending on the dosage form of the preparation.
本発明に係るCLEC4A機能阻害抗体、又はそれを含む抗腫瘍薬若しくは医薬組成物は、非経口又は経口投与などの任意の投与経路で投与することができるが、非経口投与が好ましく、例えば静脈内、動脈内、筋肉内、腹腔内、髄腔内、硬膜外、皮下、皮内、経鼻、経肺、又は腫瘍内等に投与することができる。本発明に係るCLEC4A機能阻害抗体、又はそれを含む抗腫瘍薬若しくは医薬組成物は、全身投与又は局所投与してもよい。 The CLEC4A function-inhibiting antibody of the present invention, or the antitumor drug or pharmaceutical composition containing the same, can be administered by any administration route such as parenteral or oral administration, but parenteral administration is preferable, such as intravenous administration. It can be administered intraarterially, intramuscularly, intraperitoneally, intrathecally, epidurally, subcutaneously, intradermally, nasally, pulmonaryly, or intratumorally. The CLEC4A function-inhibiting antibody of the present invention, or an antitumor drug or pharmaceutical composition containing the same, may be administered systemically or locally.
本発明はまた、本発明に係るCLEC4A機能阻害抗体、又はそれを含む抗腫瘍薬若しくは医薬組成物を対象(患者)に投与することを含む、免疫チェックポイント阻害方法も提供する。本発明はまた、CLEC4A機能阻害抗体、又はそれを含む抗腫瘍薬若しくは医薬組成物を対象(患者)に投与することを含む、免疫チェックポイント阻害に基づく、抗腫瘍免疫応答の活性化方法(又は抗腫瘍免疫応答の誘導方法)も提供する。本発明はまた、CLEC4A機能阻害抗体、又はそれを含む抗腫瘍薬若しくは医薬組成物を対象に投与することを含む、がんの治療又は予防方法も提供する。がんの治療又は予防方法は、がんの進展抑制方法又はがんの再発予防方法であってもよい。 The present invention also provides a method for inhibiting immune checkpoints, which comprises administering to a subject (patient) the CLEC4A function-inhibiting antibody according to the present invention, or an antitumor drug or pharmaceutical composition containing the same. The present invention also provides a method for activating an antitumor immune response (or Methods for inducing anti-tumor immune responses) are also provided. The present invention also provides a method for treating or preventing cancer, which comprises administering to a subject a CLEC4A function-inhibiting antibody, or an antitumor drug or pharmaceutical composition containing the same. The method for treating or preventing cancer may be a method for inhibiting cancer progression or a method for preventing cancer recurrence.
対象は、好ましくは哺乳動物であり、例えば、ヒト、チンパンジー、ゴリラ等の霊長類、マウス、ラット、モルモット等のげっ歯類、ウシ、ウマ、ブタ、ヒツジ、ヤギ、ラマ、ラクダ、イヌ、ネコ、ウサギ等の哺乳動物由来であってよいが、好ましくはヒトである。対象は、免疫チェックポイント分子による免疫抑制が生じているか又は生じている疑いのある対象であってよい。対象は、典型的には、がんを有するか又はがんを有する疑いのある対象であってよい。対象は、がん免疫治療法に不応性となっているか又はがん免疫治療法への応答性が低下している対象であってよい。そのようながん免疫治療法への不応性、又は応答性の低下は、免疫チェックポイント、特に、樹状細胞、B細胞(例えば、CD19+ B細胞)、単球(例えば、CD14+ 単球)等の抗原提示細胞における免疫チェックポイントによって引き起こされるものであり得る。対象はまた、T細胞に発現する免疫チェックポイント分子(CTLA-4、PD-1、PD-L1等)に対する阻害剤への不応性又は耐性を有するがんに罹患した患者であってもよい。対象は、既存の免疫チェックポイント阻害剤への不応性又は耐性を有するがん患者であってもよい。あるいは、対象は、免疫チェックポイント阻害剤(例えば、T細胞に発現する免疫チェックポイント分子に対する阻害剤;以下、T細胞発現免疫チェックポイント分子阻害剤とも称する)に対する不応性又は耐性を有しないがん患者であってもよい。 The target is preferably a mammal, such as humans, primates such as chimpanzees and gorillas, rodents such as mice, rats, and guinea pigs, cows, horses, pigs, sheep, goats, llamas, camels, dogs, and cats. , a mammal such as a rabbit, but preferably a human. The subject may be a subject who has developed or is suspected of having immunosuppression due to immune checkpoint molecules. The subject typically may be a subject who has cancer or is suspected of having cancer. The subject may be a subject who has become refractory to cancer immunotherapy or has decreased responsiveness to cancer immunotherapy. Refractoriness, or decreased responsiveness, to such cancer immunotherapies may be associated with immune checkpoints, particularly dendritic cells, B cells (e.g., CD19 + B cells), monocytes (e.g., CD14 + monocytes). ), etc., may be caused by immune checkpoints in antigen-presenting cells. The subject may also be a patient suffering from cancer that is refractory to or resistant to inhibitors of immune checkpoint molecules (CTLA-4, PD-1, PD-L1, etc.) expressed on T cells. The subject may be a cancer patient who is refractory or resistant to existing immune checkpoint inhibitors. Alternatively, the subject has cancer that is refractory or intolerant to immune checkpoint inhibitors (e.g., inhibitors against immune checkpoint molecules expressed on T cells; hereinafter also referred to as T cell-expressed immune checkpoint molecule inhibitors). It may be a patient.
投与方法は、対象(患者)の生物種、年齢、体重、性別、症状などにより、当業者が適宜選択することができる。CLEC4A機能阻害抗体の投与量としては、例えば、一回につき体重1kgあたり0.0001mg~1000mgの範囲で、及び/又は対象当たり0.001mg~100000mgの範囲で、投与量を設定することができるが、これらの範囲に限定されない。 The administration method can be appropriately selected by those skilled in the art depending on the species, age, weight, sex, symptoms, etc. of the subject (patient). The dosage of the CLEC4A function-inhibiting antibody can be set, for example, in the range of 0.0001 mg to 1000 mg per kg of body weight at a time, and/or in the range of 0.001 mg to 100000 mg per subject. is not limited to the range of
CLEC4A機能阻害抗体、又はそれを含む抗腫瘍薬若しくは医薬組成物の対象への投与により、抗原提示細胞、例えば樹状細胞において、炎症性サイトカインの産生が増強され、それがT細胞や他の免疫細胞の機能を活性化/増強し、抗腫瘍免疫応答を活性化(惹起)し、結果的に対象におけるがんの進展抑制、腫瘍退縮、又はがんの再発予防などの効果がもたらされる。好ましい実施形態では、本発明のCLEC4A機能阻害抗体、又はそれを含む抗腫瘍薬若しくは医薬組成物は、(i)リンパ組織及び/又はがん組織における、骨髄由来抑制細胞の誘導及び/又は集積の抑制、(ii)リンパ組織及び/又はがん組織における、エフェクターT細胞、腫瘍浸潤T細胞(例えば、CD4+ T細胞及びCD8+ T細胞)、及び活性化樹状細胞の誘導及び/又は集積の促進、(iii)がん微小環境での免疫寛容の抑制、並びに(iv)抗腫瘍免疫応答の活性化の少なくとも1つをもたらすことができる。 Administration of a CLEC4A function-inhibiting antibody, or an antitumor drug or pharmaceutical composition containing the same, to a subject enhances the production of inflammatory cytokines in antigen-presenting cells, such as dendritic cells, which stimulate T cells and other immune It activates/enhances cell functions and activates (induces) anti-tumor immune responses, resulting in effects such as suppressing cancer progression, tumor regression, or preventing cancer recurrence in the subject. In a preferred embodiment, the CLEC4A function-inhibiting antibody of the present invention, or an antitumor drug or pharmaceutical composition containing the same, (i) inhibits the induction and/or accumulation of myeloid-derived suppressor cells in lymphoid tissue and/or cancer tissue. (ii) induction and/or accumulation of effector T cells, tumor-infiltrating T cells (e.g., CD4 + T cells and CD8 + T cells), and activated dendritic cells in lymphoid and/or cancer tissues; (iii) suppression of immune tolerance in the cancer microenvironment; and (iv) activation of an anti-tumor immune response.
生体内で顕在化したがん細胞は免疫監視機構から逃れていると考えられており、免疫チェックポイント分子はその主要な逃避機序の一つであるとされる。近年、臨床応用された免疫チェックポイント阻害剤(抗CTLA-4抗体[イピリムマブ;ヤーボイ]、抗PD-1抗体[ニボルマブ;オプジーボ]、抗PD-L1抗体[アベルマブ;バベンチオ]等)は特定のがん種に対する高い奏功性が示されているが、多様ながんに対する不応答性や耐性獲得とともに、免疫関連有害事象(irAEs)の発症が問題とされている。それに対し、本発明のCLEC4A機能阻害抗体は、免疫関連有害事象(例えば、自己免疫疾患又は障害などの自己免疫病態、体重減少、組織傷害等)、特に、T細胞に発現する免疫チェックポイント分子の阻害に起因する免疫関連有害事象を生じるリスクを低減しながら高い抗腫瘍効果をもたらすことができる。したがって本発明のCLEC4A機能阻害抗体、又はそれを含む抗腫瘍薬若しくは医薬組成物は、高い抗腫瘍効果とともにより高い安全性も実現することができる。 Cancer cells that manifest in vivo are thought to escape from immune surveillance mechanisms, and immune checkpoint molecules are said to be one of the major escape mechanisms. In recent years, immune checkpoint inhibitors (anti-CTLA-4 antibody [ipilimumab; Yervoy], anti-PD-1 antibody [nivolumab; Opdivo], anti-PD-L1 antibody [avelumab; Bavencio], etc.) that have been clinically applied have certain Although it has been shown to be highly effective against various cancers, there are concerns about non-responsiveness and acquired resistance to various cancers, as well as the development of immune-related adverse events (irAEs). In contrast, the CLEC4A function-inhibiting antibody of the present invention is effective against immune-related adverse events (e.g., autoimmune pathologies such as autoimmune diseases or disorders, weight loss, tissue damage, etc.), particularly when immune checkpoint molecules expressed on T cells are suppressed. High antitumor effects can be brought about while reducing the risk of immune-related adverse events caused by inhibition. Therefore, the CLEC4A function-inhibiting antibody of the present invention, or an antitumor drug or pharmaceutical composition containing the same, can achieve both high antitumor effects and higher safety.
本発明では、上記のCLEC4A機能阻害抗体、又はそれを含む抗腫瘍薬若しくは医薬組成物を、他の免疫チェックポイント阻害剤と併用(併用投与)してもよい。他の免疫チェックポイント阻害剤としては、典型的には、T細胞に発現する免疫チェックポイント分子に対する阻害剤が挙げられるが、これに限定されない。T細胞に発現する免疫チェックポイント分子の例としては、以下に限定されないが、PD-1、CTLA-4、PD-L1、Tim-3、BTLA、LAG-3、TIGHT等が挙げられる。免疫チェックポイント分子に対する阻害剤は、免疫チェックポイント分子(タンパク質)自体の機能又は免疫チェックポイント分子をコードする遺伝子の機能を阻害する作用(アンタゴニスト作用)を有する任意の物質であり、例えば、抗体(好ましくは、中和抗体)であってもよいし、免疫チェックポイント分子の発現(当該分子をコードする遺伝子の発現)を阻害する核酸分子であってもよい。そのような阻害性核酸分子は、以下に限定するものではないが、siRNA(small interfering RNA)、shRNA(short hairpin RNA)、hpRNA(hairpin RNA)、又はそれを含むより長い核酸であってもよい。一実施形態では、T細胞に発現する免疫チェックポイント分子に対する阻害剤(T細胞発現免疫チェックポイント分子阻害剤)は、既存の免疫チェックポイント阻害剤であってもよく、例えば、抗CTLA-4抗体(イピリムマブなど)、抗PD-1抗体(ニボルマブなど)、抗PD-L1抗体(アベルマブなど)等であってもよい。上記のCLEC4A機能阻害抗体、又はそれを含む抗腫瘍薬若しくは医薬組成物は、例えばT細胞発現免疫チェックポイント分子阻害剤と併用することにより、上記のCLEC4A機能阻害抗体を単独で使用する場合と比較しても顕著に高い、相乗的ながん治療効果をもたらすことができる。したがって本発明は、T細胞発現免疫チェックポイント分子阻害剤と併用するための、上記のCLEC4A機能阻害抗体、又はそれを含む抗腫瘍薬若しくは医薬組成物も提供する。さらに本発明は、上記のCLEC4A機能阻害抗体に加えて、T細胞発現免疫チェックポイント分子阻害剤を含む、抗腫瘍薬又は医薬組成物も提供する。そのような抗腫瘍薬又は医薬組成物は、上記のCLEC4A機能阻害抗体、及びT細胞発現免疫チェックポイント分子阻害剤を、それぞれ治療上有効量で含むことが好ましい。上記のCLEC4A機能阻害抗体とT細胞発現免疫チェックポイント分子阻害剤を併用する抗腫瘍薬若しくは医薬組成物、又は併用療法を適用(投与)する対象は、既存の免疫チェックポイント阻害剤に対して不応性又は耐性を有するがん患者であってもよいし、免疫チェックポイント阻害剤(例えば、T細胞発現免疫チェックポイント分子阻害剤)に対する不応性又は耐性を有しないがん患者であってもよい。併用投与において、上記のCLEC4A機能阻害抗体、又はそれを含む抗腫瘍薬若しくは医薬組成物と、他の免疫チェックポイント阻害剤(T細胞発現免疫チェックポイント分子阻害剤等)は、任意の時期に、例えば、同時に、連続的に、又は別々の時期に投与してもよく、また、別個の薬剤として投与してもよいし単一の薬剤に含めて投与してもよい。 In the present invention, the above-described CLEC4A function-inhibiting antibody, or an antitumor drug or pharmaceutical composition containing the same, may be used in combination (concomitant administration) with other immune checkpoint inhibitors. Other immune checkpoint inhibitors typically include, but are not limited to, inhibitors against immune checkpoint molecules expressed on T cells. Examples of immune checkpoint molecules expressed on T cells include, but are not limited to, PD-1, CTLA-4, PD-L1, Tim-3, BTLA, LAG-3, TIGHT, and the like. An inhibitor for immune checkpoint molecules is any substance that has the effect of inhibiting the function of the immune checkpoint molecule (protein) itself or the function of the gene encoding the immune checkpoint molecule (antagonist effect), such as an antibody ( Preferably, it may be a neutralizing antibody) or a nucleic acid molecule that inhibits the expression of an immune checkpoint molecule (expression of a gene encoding the molecule). Such inhibitory nucleic acid molecules may be, but are not limited to, siRNA (small interfering RNA), shRNA (short hairpin RNA), hpRNA (hairpin RNA), or longer nucleic acids including . In one embodiment, the inhibitor against an immune checkpoint molecule expressed on T cells (T cell expressed immune checkpoint molecule inhibitor) may be an existing immune checkpoint inhibitor, such as an anti-CTLA-4 antibody. (ipilimumab, etc.), anti-PD-1 antibodies (nivolumab, etc.), anti-PD-L1 antibodies (avelumab, etc.), etc. may be used. The above-mentioned CLEC4A function-inhibiting antibody, or an antitumor drug or pharmaceutical composition containing the same, can be used in combination with, for example, a T cell-expressed immune checkpoint molecule inhibitor, compared to the case where the above-mentioned CLEC4A function-inhibiting antibody is used alone. However, it can bring about significantly higher and synergistic cancer treatment effects. Therefore, the present invention also provides the above-mentioned CLEC4A function-inhibiting antibody, or an antitumor drug or pharmaceutical composition containing the same, for use in combination with a T cell-expressed immune checkpoint molecule inhibitor. Furthermore, the present invention also provides an antitumor drug or a pharmaceutical composition containing an inhibitor of T cell-expressed immune checkpoint molecules in addition to the above-mentioned CLEC4A function-inhibiting antibody. Such an antitumor drug or pharmaceutical composition preferably contains the above-mentioned CLEC4A function-inhibiting antibody and T cell-expressed immune checkpoint molecule inhibitor, each in a therapeutically effective amount. Subjects to whom the above-mentioned antitumor drug or pharmaceutical composition, or combination therapy that uses a combination of the CLEC4A function-inhibiting antibody and T cell-expressed immune checkpoint molecule inhibitor, should be applied (administered) to existing immune checkpoint inhibitors. The patient may be a cancer patient who is responsive or resistant to the disease, or a cancer patient who is refractory or non-resistant to immune checkpoint inhibitors (eg, T cell-expressed immune checkpoint molecule inhibitors). In combined administration, the above-mentioned CLEC4A function-inhibiting antibody, or an antitumor drug or pharmaceutical composition containing it, and another immune checkpoint inhibitor (T cell-expressed immune checkpoint molecule inhibitor, etc.) are administered at any time. For example, they may be administered simultaneously, sequentially, or at separate times, and may be administered as separate agents or in a single agent.
上記のCLEC4A機能阻害抗体、又はそれを含む抗腫瘍薬若しくは医薬組成物の対象への投与は、がん組織における免疫抑制分子の発現を抑制することができる。上記のCLEC4A機能阻害抗体は、例えば、IL(インターロイキン)-10、IDO(インドールアミン2,3-ジオキシゲナーゼ)、アルギナーゼ、及びmPGES(膜関連プロスタグランジンE2シンターゼ)の発現を抑制することができる。上記のCLEC4A機能阻害抗体とT細胞発現免疫チェックポイント分子阻害剤の併用投与は、がん組織における免疫抑制分子の発現をより強力に抑制することができ、例えば、IL-10、IDO、アルギナーゼ、COX-2、mPGES、TGF(トランスフォーミング増殖因子)-β、及びiNOS(誘導型一酸化窒素合成酵素)からなる群から選択される少なくとも1つの発現を顕著に抑制することができる。
Administration of the above-mentioned CLEC4A function-inhibiting antibody or an antitumor drug or pharmaceutical composition containing the same to a subject can suppress the expression of immunosuppressive molecules in cancer tissues. The above CLEC4A function-inhibiting antibodies can, for example, suppress the expression of IL (interleukin)-10, IDO (
本発明では、上記のCLEC4A機能阻害抗体、又はそれを含む抗腫瘍薬若しくは医薬組成物の投与を含む方法、例えば、抗腫瘍免疫応答の活性化方法又はがんの治療若しくは予防方法を、がんワクチン療法と併用してもよい。併用するがんワクチン療法の例としては、がん抗原、がん抗原とアゴニストTLRリガンドの組み合わせ、又はがん抗原とアゴニストTLRリガンドとアゴニスト抗CD40抗体との組み合わせを患者に投与する方法が挙げられる。がん抗原としては、例えば、WT1、MAGE-A1、MAGE-A3、gp100、Melan A、NY-ESO-1、MUC1、LMP2、HPV E6 E7、EGFRvIII、HER-2/neu、イディオタイプ、p53非変異型(p53 nonmutant)、BAGE、チロシナーゼ、CEA、bcr/abl、ras等が挙げられるが、これらに限定されない。アゴニストTLRリガンド(アゴニスト作用性TLRリガンド又はTLRアゴニストとも呼ばれる)としては、TLR1、2、3、4、5、6、7、8、9、10、11、12、及び/又は13等のアゴニストリガンド、例えば、CpG ODN 2006やCpG-B ODN 1668等の非メチル化CpGジヌクレオチドモチーフ含有オリゴヌクレオチドであるアゴニストTLR9リガンドなどが挙げられる。ヒト対象への投与に好適なアゴニストTLRリガンドは、ヒトTLR1、2、3、4、5、6、7、8、9、又は10に対するアゴニストリガンドであり得る。 The present invention provides a method for activating an antitumor immune response or a method for treating or preventing cancer, including the administration of the above-mentioned CLEC4A function-inhibiting antibody or an antitumor drug or pharmaceutical composition containing the same. May be used in conjunction with vaccine therapy. Examples of combination cancer vaccine therapies include administering to a patient a cancer antigen, a combination of a cancer antigen and an agonist TLR ligand, or a combination of a cancer antigen, an agonist TLR ligand, and an agonist anti-CD40 antibody. . Examples of cancer antigens include WT1, MAGE-A1, MAGE-A3, gp100, Melan A, NY-ESO-1, MUC1, LMP2, HPV E6 E7, EGFRvIII, HER-2/neu, idiotype, p53 non- Examples include, but are not limited to, mutant (p53 nonmutant), BAGE, tyrosinase, CEA, bcr/abl, ras, and the like. Agonist TLR ligands (also called agonistic TLR ligands or TLR agonists) include agonist ligands such as TLR1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, and/or 13; Examples include agonist TLR9 ligands that are unmethylated CpG dinucleotide motif-containing oligonucleotides such as CpG ODN 2006 and CpG-B ODN 1668. Agonist TLR ligands suitable for administration to human subjects can be agonist ligands for human TLR1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, or 10.
本発明では、上記のCLEC4A機能阻害抗体、又はそれを含む抗腫瘍薬若しくは医薬組成物の投与を含む方法、例えば、抗腫瘍免疫応答の活性化方法又はがんの治療若しくは予防方法を、がん標準治療法(腫瘍切除のための外科治療、放射線治療、化学療法)と併用してもよい。 The present invention provides a method for activating an antitumor immune response or a method for treating or preventing cancer, including the administration of the above-mentioned CLEC4A function-inhibiting antibody or an antitumor drug or pharmaceutical composition containing the same. It may be used in conjunction with standard treatments (surgery for tumor removal, radiation therapy, chemotherapy).
以下、実施例を用いて本発明をさらに具体的に説明する。但し、本発明の技術的範囲はこれら実施例に限定されるものではない。 Hereinafter, the present invention will be explained in more detail using Examples. However, the technical scope of the present invention is not limited to these Examples.
なお、下記実施例におけるフローサイトメトリー法は以下のとおり実施した。
<フローサイトメトリー法>
フローサイトメトリー解析における細胞の染色には、以下の蛍光標識モノクローナル抗体を用いた。
In addition, the flow cytometry method in the following examples was implemented as follows.
<Flow cytometry method>
The following fluorescently labeled monoclonal antibodies were used to stain cells in flow cytometry analysis.
抗マウスCD3ε抗体(クローン145-2C11; BD Biosciences)、抗マウスCD4抗体(クローンRM4-5; BD Biosciences)、抗マウスCD8α抗体(クローン53.6.7; BD Biosciences)、抗マウスCD11b抗体(クローンM1/70; Biolegend)、抗マウスCD11c抗体(クローンHL3; BD Biosciences)、抗マウスCD40抗体(クローン3/23; BD Biosciences)、抗マウスCD44抗体(クローンIM7; BD Biosciences)、抗マウスCD80抗体(クローン16-10A1; BD Biosciences)、抗マウスCD86抗体(クローンGL1; BD Biosciences)、抗マウスCD62L抗体(クローンMEL-14; Biolegend)、抗マウスB220抗体(クローンRA3-6B2; BD Biosciences)、抗マウスF4/80抗体(クローンBM8; Biolegend)、抗マウスNK1.1抗体(クローンPK136; BD Biosciences)、抗マウスMHCクラスI抗体(クローンAF6-88.5; BD Biosciences)、抗マウスMHCクラスII抗体(クローンM5/114.15.2; BD Biosciences)、抗マウスB7-H1抗体(クローンMIH5; eBioscience)、抗マウスB7-DC抗体(クローンTY25; eBioscience)、抗マウスB7-H2抗体(クローンHK5.3; eBioscience)、抗マウスSiglecH抗体(クローン551; Biolegend)、抗マウスGr-1抗体(クローンRB6-8C5; Biolegend)、抗マウスClec4A4抗体(クローン33D1; Biolegend)、抗マウスIFN-γ抗体(クローンXMG1.2; BD Biosciences)、抗マウスCD19抗体(クローン6D5; Biolegend)、又は対照ラットIgG抗体(BD Biosciences)。 Anti-mouse CD3ε antibody (clone 145-2C11; BD Biosciences), anti-mouse CD4 antibody (clone RM4-5; BD Biosciences), anti-mouse CD8α antibody (clone 53.6.7; BD Biosciences), anti-mouse CD11b antibody (clone M1/ 70; Biolegend), anti-mouse CD11c antibody (clone HL3; BD Biosciences), anti-mouse CD40 antibody (clone 3/23; BD Biosciences), anti-mouse CD44 antibody (clone IM7; BD Biosciences), anti-mouse CD80 antibody (clone 16) -10A1; BD Biosciences), anti-mouse CD86 antibody (clone GL1; BD Biosciences), anti-mouse CD62L antibody (clone MEL-14; Biolegend), anti-mouse B220 antibody (clone RA3-6B2; BD Biosciences), anti-mouse F4/ 80 antibody (clone BM8; Biolegend), anti-mouse NK1.1 antibody (clone PK136; BD Biosciences), anti-mouse MHC class I antibody (clone AF6-88.5; BD Biosciences), anti-mouse MHC class II antibody (clone M5/114.15) .2; BD Biosciences), anti-mouse B7-H1 antibody (clone MIH5; eBioscience), anti-mouse B7-DC antibody (clone TY25; eBioscience), anti-mouse B7-H2 antibody (clone HK5.3; eBioscience), anti-mouse SiglecH antibody (clone 551; Biolegend), anti-mouse Gr-1 antibody (clone RB6-8C5; Biolegend), anti-mouse Clec4A4 antibody (clone 33D1; Biolegend), anti-mouse IFN-γ antibody (clone XMG1.2; BD Biosciences) , anti-mouse CD19 antibody (clone 6D5; Biolegend), or control rat IgG antibody (BD Biosciences).
抗ヒトCD3抗体(クローンUCHT1; TOMBO)、CD8α(クローンSK1; BD Biosciences)、抗ヒトCD11c抗体(クローン3.9; TOMBO)、抗ヒトCD14抗体(クローン61D3; TOMBO)、抗ヒトCD19抗体(クローンHIB19; TOMBO)、抗ヒトCD56抗体(クローンMY31; TOMBO)、抗ヒトCD1c抗体(クローンL161; Biolegend)、抗ヒトCD40抗体(クローン5C3; BD Biosciences)、抗ヒトCD80抗体(クローンL307.4; BD Biosciences)、抗ヒトCD86抗体(クローンIT2.2; BD Biosciences)、抗ヒトCD141抗体(クローンM80; Biolegend)、抗ヒトCD303抗体(クローン201A; Biolegend)、抗ヒトHLA-DR抗体(クローンL243; Biolegend)、抗ヒトCLEC4A抗体(クローン9E8; Biolegend)、又は対照マウスIgG抗体(BD Biosciences)。 Anti-human CD3 antibody (clone UCHT1; TOMBO), CD8α (clone SK1; BD Biosciences), anti-human CD11c antibody (clone 3.9; TOMBO), anti-human CD14 antibody (clone 61D3; TOMBO), anti-human CD19 antibody (clone HIB19; TOMBO), anti-human CD56 antibody (clone MY31; TOMBO), anti-human CD1c antibody (clone L161; Biolegend), anti-human CD40 antibody (clone 5C3; BD Biosciences), anti-human CD80 antibody (clone L307.4; BD Biosciences) , anti-human CD86 antibody (clone IT2.2; BD Biosciences), anti-human CD141 antibody (clone M80; Biolegend), anti-human CD303 antibody (clone 201A; Biolegend), anti-human HLA-DR antibody (clone L243; Biolegend), Anti-human CLEC4A antibody (clone 9E8; Biolegend) or control mouse IgG antibody (BD Biosciences).
細胞表面分子の染色は、細胞(1~5 x 105個)を、蛍光標識モノクローナル抗体と共に4℃で30分インキュベートすることにより染色した。
Cell surface molecules were stained by incubating cells (1-5
なお一部のフローサイトメトリー解析では、細胞の染色に、蛍光標識モノクローナル抗体の代わりに、以下の蛍光標識したMHC-ペプチド複合体を用いた:マウスH-2Kb OVAペプチドペンタマー。 In some flow cytometry analyses, the following fluorescently labeled MHC-peptide complexes were used to stain cells instead of fluorescently labeled monoclonal antibodies: Mouse H-2Kb OVA peptide pentamer.
蛍光染色解析はFACSVerseTMフローサイトメーター(BD Biosciences)及びFlowJoソフトウェア(Tree star)を用いて行った。 Fluorescent staining analysis was performed using a FACSVerse ™ flow cytometer (BD Biosciences) and FlowJo software (Tree star).
また、下記実施例で得られたデータについて、統計学的解析は以下のとおり行った。
<統計学的解析>
データの統計学的有意差の解析は分散分析(analysis of variance: ANOVA)を用いた。P値が0.01未満のものを有意とした。図中のデータは平均値(±標準偏差)で示した。
Moreover, statistical analysis was performed as follows regarding the data obtained in the following examples.
<Statistical analysis>
Analysis of variance (ANOVA) was used to analyze statistically significant differences in the data. A P value of less than 0.01 was considered significant. Data in the figure is shown as an average value (±standard deviation).
[実施例1]
1)マウス
本実施例では、野生型(WT)マウスとして、C57BL/6マウス(Japan Clea)を用いた。非特許文献4の記載に従い、C57BL/6マウスを用いて、Clec4A4欠損マウス(Clec4a4-/-マウス)を作製した。Clec4A4欠損マウス(系統名B6.Cg-Clec4a4<tm1.1Ksat>)は、国立研究開発法人理化学研究所バイオリソースセンター(RIKEN BRC; 日本)にアクセッション番号RBRC09657の下で寄託され、入手可能である。なおClec4A4は、CLEC4Aのマウスオルソログである。
[Example 1]
1) Mouse In this example, C57BL/6 mice (Japan Clea) were used as wild type (WT) mice. Clec4A4-deficient mice (Clec4a4 - / - mice) were produced using C57BL/6 mice according to the description in
2)非担がんマウスモデルのがんワクチン接種後の免疫応答
WTマウス、及びClec4A4欠損マウスに、がんワクチンとして卵白アルブミン(OVA)(500 μg/1匹; Sigma-Aldrich)、Toll様受容体(Toll-like receptor; TLR)9リガンドであるCpG-B ODN 1668(50 μg/1匹; Hokkaido System Science)、及びアゴニスト抗CD40抗体(10 μg/匹; クローン1C10; Biolegend)を腹腔内投与して免疫した。免疫後6日目に、脾臓におけるOVA特異的細胞傷害性T細胞(CTL)(CD44highOVA-MHCクラスIペンタマー結合CD8+ T細胞)及びOVA特異的IFN-γ産生CD8+T細胞の誘導を、上述のフローサイトメトリー法により解析した。対照として、ワクチン接種していないWTマウス及びClec4A4欠損マウスの脾臓についても同様の細胞解析を行った。
2) Immune response after cancer vaccination in non-tumor-bearing mouse model
Ovalbumin (OVA) (500 μg/mouse; Sigma-Aldrich) and CpG-B ODN, a Toll-like receptor (TLR) 9 ligand, were administered to WT mice and Clec4A4-deficient mice as cancer vaccines. 1668 (50 μg/mouse; Hokkaido System Science) and agonist anti-CD40 antibody (10 μg/mouse; clone 1C10; Biolegend) were administered intraperitoneally for immunization. On
WTマウスでは、ワクチン非接種群と比較して、がんワクチン(OVA、CpG-B ODN 1668、アゴニスト抗CD40抗体)免疫群において抗原特異的CTLであるCD44highOVA-MHCクラスIペンタマー結合CD8+ T細胞(図1A及びB)と抗原特異的IFN-γ産生CD8+ T細胞(図2A及びB)の誘導が増強されていることが示された。一方、Clec4A4欠損マウスのがんワクチン免疫群では、抗原特異的CTLと抗原特異的IFN-γ産生CD8+ T細胞が誘導されただけでなく、WTマウスのがんワクチン免疫群と比較して、抗原特異的CTLと抗原特異的IFN-γ産生CD8+ T細胞の誘導が著しく増強された(図1、図2)。 In WT mice, antigen-specific CTL CD44 high OVA-MHC class I pentamer-bound CD8 + It was shown that the induction of T cells (FIGS. 1A and B) and antigen-specific IFN-γ producing CD8 + T cells (FIGS. 2A and B) was enhanced. On the other hand, in the cancer vaccine immunized group of Clec4A4-deficient mice, not only were antigen-specific CTL and antigen-specific IFN-γ-producing CD8 + T cells induced, but compared to the cancer vaccine immunized group of WT mice, The induction of antigen-specific CTL and antigen-specific IFN-γ-producing CD8 + T cells was significantly enhanced (Figures 1 and 2).
3)担がんマウスモデルのがん進展評価及びがんワクチン接種後の免疫応答
WTマウス、及びClec4A4欠損マウスの背部に、卵白アルブミン(OVA)を発現する組換え悪性黒色腫細胞株(B16-OVAメラノーマ; Brown DM, et al., Immunology. (2001) 102:486-497)を皮下移植(1x105細胞/1匹)することにより、担がんマウスを作製した。がんの進展は、担がんマウスの腫瘍体積をがん移植の23日後まで毎日、デジタルキャリパー(Digimatic Caliper, Mitutoyo)を用いて測定し、それを指標として評価した。
3) Evaluation of cancer progression in tumor-bearing mouse models and immune responses after cancer vaccination
Tumor-bearing mice were generated by subcutaneously implanting (1x105 cells/mouse) a recombinant melanoma cell line expressing ovalbumin (OVA) (B16-OVA melanoma; Brown DM, et al., Immunology. (2001) 102:486-497) into the dorsum of wild-type and Clec4A4 -deficient mice. Tumor volume was measured daily using a digital caliper (Digimatic Caliper, Mitutoyo) until 23 days after tumor implantation, and tumor progression was evaluated.
担がんWTマウス及び担がんClec4A4欠損マウスに対し、がん細胞移植の7日後に、がんワクチンを腹腔内投与して免疫した。がん細胞移植の13日後に、OVA特異的CTLであるCD44highOVA-MHCクラスIペンタマー結合CD8+ T細胞、及びOVA特異的IFN-γ産生CD8+T細胞の誘導を、上述のフローサイトメトリー法により解析した。
Tumor-bearing WT mice and tumor-bearing Clec4A4-deficient mice were immunized with a cancer vaccine by
担がんWTマウス及び担がんClec4A4欠損マウスでは、非担がん状態のWTマウス及びClec4A4欠損マウスと比較して、がんワクチン免疫群での抗原特異的CTL及び抗原特異的IFN-γ産生CD8+T細胞の誘導が増強された(図1、図2)。さらに、担がんClec4A4欠損マウスのがんワクチン免疫群では、担がんWTマウスのがんワクチン免疫群と比較して、抗原特異的CTL及び抗原特異的IFN-γ産生CD8+T細胞の誘導が著しく増強された(図1、図2)。 In tumor-bearing WT mice and tumor-bearing Clec4A4-deficient mice, antigen-specific CTL and antigen-specific IFN-γ production in the cancer vaccine immunized group was significantly lower than in non-tumor-bearing WT mice and Clec4A4-deficient mice. Induction of CD8 + T cells was enhanced (Figures 1 and 2). Furthermore, the induction of antigen-specific CTL and antigen-specific IFN-γ-producing CD8 + T cells in the cancer vaccine-immunized group of tumor-bearing Clec4A4-deficient mice compared to the cancer-vaccine immunized group of tumor-bearing WT mice. was significantly enhanced (Figures 1 and 2).
がん細胞移植の15日後以降、担がんWTマウス(ワクチン非接種)と比較して、担がんClec4A4欠損マウス(ワクチン非接種)では、免疫関連有害事象の発生を示さずに、がん進展が著しく抑制された(図3A~C)。一方、担がんWTマウスのがんワクチン免疫群では、がん細胞移植の15日後以降、がん退縮が明らかに認められた。さらに、担がんClec4A4欠損マウスのがんワクチン免疫群では、担がんWTマウスのがんワクチン免疫群と比較して、がん細胞移植の23日後にはがんワクチンのがん進展抑制効果の亢進が認められた(図3)。 From 15 days after cancer cell transplantation, tumor-bearing Clec4A4-deficient mice (non-vaccinated) showed no immune-related adverse events and developed cancer resistance compared to tumor-bearing WT mice (non-vaccinated). Progression was significantly inhibited (Fig. 3A-C). On the other hand, in the cancer vaccine-immunized group of tumor-bearing WT mice, tumor regression was clearly observed 15 days after cancer cell transplantation. Furthermore, in the cancer vaccine immunized group of tumor-bearing Clec4A4-deficient mice, compared to the cancer vaccine immunized group of tumor-bearing WT mice, the effect of the cancer vaccine on suppressing cancer progression was significantly lower 23 days after cancer cell transplantation. An increase in the number of patients was observed (Figure 3).
以上の結果から、マウスClec4A4は樹状細胞上に発現する、免疫チェックポイント分子であり、抗腫瘍免疫応答にブレーキをかける働きをしていることが示された。 These results demonstrate that mouse Clec4A4 is an immune checkpoint molecule expressed on dendritic cells and acts as a brake on antitumor immune responses.
4)担がんマウスモデルにおける免疫応答
WTマウス、及びClec4A4欠損マウスの背部に、卵白アルブミン(OVA)を発現する組換え悪性黒色腫細胞株(B16-OVAメラノーマ; Brown DM, et al., Immunology. (2001) 102:486-497)を皮下移植(1x105細胞/1匹)することにより、担がんマウスを作製した。がん細胞移植の20日後に、担がんWTマウス及び担がんClec4A4欠損マウスの脾臓及びがん組織における各種免疫細胞の誘導を、上述のフローサイトメトリー法により解析した。なお、非担がんマウス及び担がんマウスの脾臓単核球は脾臓細胞から赤血球溶解バッファー(Red Blood Cell Lysing Buffer Hybri-MaxTM; Sigma-Aldrich)を用いて調製した(非特許文献4)。担がんマウスの脾臓単核球及びがん組織の調製はがん細胞移植の20日後に行った。対照として、非担がんWTマウス及び非担がんClec4A4欠損マウスにおいても同様にフローサイトメトリー法による解析を行った。解析の結果を図4~8に示す。
4) Immune response in tumor-bearing mouse model
A recombinant malignant melanoma cell line expressing ovalbumin (OVA) (B16-OVA melanoma; Brown DM, et al., Immunology. (2001) 102:486-497) was found in the backs of WT mice and Clec4A4-deficient mice. Tumor-bearing mice were produced by subcutaneously transplanting (1x10 5 cells/mouse). Twenty days after cancer cell transplantation, the induction of various immune cells in the spleens and cancer tissues of tumor-bearing WT mice and cancer-bearing Clec4A4-deficient mice was analyzed by the flow cytometry method described above. Spleen mononuclear cells from non-tumor-bearing mice and tumor-bearing mice were prepared from spleen cells using red blood cell lysis buffer (Red Blood Cell Lysing Buffer Hybri-Max ™ ; Sigma-Aldrich) (Non-Patent Document 4). . Spleen mononuclear cells and cancer tissues from tumor-bearing mice were prepared 20 days after cancer cell transplantation. As controls, non-tumor-bearing WT mice and non-tumor-bearing Clec4A4-deficient mice were similarly analyzed by flow cytometry. The results of the analysis are shown in Figures 4 to 8.
担がんWTマウスと比較して、担がんClec4A4欠損マウスでは、脾臓(図4A)とがん組織(図4B)におけるGr1-1+CD11b+F4/80+骨髄由来抑制細胞(myeloid-derived suppressor cells; MDSCs)の増加の抑制が認められた。 Compared to tumor - bearing WT mice, tumor-bearing Clec4A4-deficient mice showed increased myeloid-derived suppressor cells in the spleen ( Figure 4A) and cancer tissues (Figure 4B). Suppression of the increase in suppressor cells (MDSCs) was observed.
また担がんWTマウスと比較して、担がんClec4A4欠損マウスでは、がん組織におけるCD11c+SiglecH-cDCs(通常型樹状細胞)とCD11clowSiglecH+pDCs(形質細胞様樹状細胞)の集積亢進が認められた(図4B)。 In addition, compared to tumor-bearing WT mice, cancer-bearing Clec4A4-deficient mice showed increased levels of CD11c + SiglecH - cDCs (normal dendritic cells) and CD11c low SiglecH + pDCs (plasmacytoid dendritic cells) in cancer tissues. Enhanced accumulation was observed (Fig. 4B).
さらに、担がんWTマウスと比較して、担がんClec4A4欠損マウスでは、がん組織における腫瘍浸潤CD4+/CD8+リンパ球(T細胞)(tumor-infiltrating lymphocytes; TILs)や、NK1.1+NK細胞の集積亢進が認められた(図4B)。 Furthermore, compared to tumor-bearing WT mice, tumor-infiltrating CD4 + /CD8 + lymphocytes (TILs) and NK1.1 + Increased accumulation of NK cells was observed (Figure 4B).
担がんWTマウスでは、非担がんWTマウスと比較して、脾臓中のGr1-1+CD11b+F4/80+MDSCsの増加が認められるとともに(図4A)、がん組織での顕著な集積が認められた(図4B)。 In tumor-bearing WT mice, an increase in Gr1-1 + CD11b + F4/80 + MDSCs in the spleen was observed compared to non-tumor-bearing WT mice (Fig. 4A), and a marked increase in cancer tissue. Accumulation was observed (Fig. 4B).
担がんWTマウスでは、非担がんWTマウスと比較して、脾臓中のCD44+CD62L-エフェクターCD4+T細胞の増加が認められた(図5A)が、CD8+T細胞のその増加は認められなかった(図5B)。一方、担がんClec4A4欠損マウスでは、担がんWTマウスと比較して、脾臓(図5)とがん組織(図6)におけるCD44+CD62L-エフェクターCD4+T細胞/CD8+ T細胞の増加が認められた(A: CD4+T細胞、B: CD8+ T細胞)。 In tumor-bearing WT mice, an increase in CD44 + CD62L - effector CD4 + T cells in the spleen was observed compared with non-tumor-bearing WT mice (Fig. 5A), but the increase in CD8 + T cells was It was not observed (Fig. 5B). On the other hand, in tumor-bearing Clec4A4-deficient mice, CD44 + CD62L -effector CD4 + T cells/CD8 + T cells increased in the spleen (Figure 5) and cancer tissues (Figure 6) compared to tumor-bearing WT mice. were observed (A: CD4 + T cells, B: CD8 + T cells).
担がんWTマウスでは、非担がんWTマウスと比較して、脾臓中のcDCsにおけるMHC I、CD40、CD80、B7-H1、及びB7-H2の発現低下が認められた(図7)。一方、担がんClec4A4欠損マウスでは、非担がんClec4A4欠損マウスと比較して、脾臓中のcDCsにおけるMHC I、CD80、CD86、B7-H1、及びB7-H2の発現増強が認められた(図7)。 In tumor-bearing WT mice, decreased expression of MHC I, CD40, CD80, B7-H1, and B7-H2 in cDCs in the spleen was observed compared to non-tumor-bearing WT mice (FIG. 7). On the other hand, in tumor-bearing Clec4A4-deficient mice, enhanced expression of MHC I, CD80, CD86, B7-H1, and B7-H2 in cDCs in the spleen was observed compared to non-tumor-bearing Clec4A4-deficient mice ( Figure 7).
さらに、担がんWTマウスと比較して、担がんClec4A4欠損マウスでは脾臓cDCsにおけるMHCクラスI(MHC I)、CD80、CD86、B7-H1、及びB7-H2の発現増強が認められた(図7)。 Furthermore, compared to tumor-bearing WT mice, enhanced expression of MHC class I (MHC I), CD80, CD86, B7-H1, and B7-H2 in splenic cDCs was observed in tumor-bearing Clec4A4-deficient mice ( Figure 7).
また担がんWTマウスと比較して、担がんClec4A4欠損マウスでは腫瘍浸潤cDCsにおけるMHC I、MHCクラスII(MHC II)、CD80、CD86、及びB7-H1の発現増強と、B7-H2及びB7-DCの発現低下が認められた(図8)。 Furthermore, compared to tumor-bearing WT mice, tumor-bearing Clec4A4-deficient mice showed enhanced expression of MHC I, MHC class II (MHC II), CD80, CD86, and B7-H1 in tumor-infiltrating cDCs, and increased expression of B7-H2 and A decrease in the expression of B7-DC was observed (FIG. 8).
担がんClec4A4欠損マウスでは、担がんWTマウスと比較して、がん組織におけるcDCsのMHC I、MHC II、CD80、CD86、及びB7-H1の発現増強と、B7-H2及びB7-DCの発現低下が認められた(図8)。 In tumor-bearing Clec4A4-deficient mice, compared to tumor-bearing WT mice, the expression of MHC I, MHC II, CD80, CD86, and B7-H1 in cDCs was enhanced in cancer tissues, and the expression of B7-H2 and B7-DC was increased. A decrease in expression was observed (Fig. 8).
以上の解析結果から、Clec4A4による樹状細胞機能阻害は、リンパ組織とがん組織における、骨髄由来抑制細胞の誘導と集積の促進、並びにエフェクターT細胞、腫瘍浸潤T細胞、及び活性化樹状細胞の誘導と集積の抑制に基づいてがん微小環境での免疫寛容原性を誘発し、抗腫瘍免疫応答を抑制することにより、がん進展を促進することが示された(図4~図8)。上記解析結果は、Clec4A4機能の阻害が、抗腫瘍免疫応答の活性化、及びがん抑制につながることを示している。 From the above analysis results, inhibition of dendritic cell function by Clec4A4 promotes the induction and accumulation of myeloid-derived suppressor cells, as well as effector T cells, tumor-infiltrating T cells, and activated dendritic cells in lymphoid tissues and cancer tissues. It was shown that cancer progression was promoted by inducing immune tolerogenicity in the cancer microenvironment and suppressing anti-tumor immune responses based on the induction and suppression of accumulation of ). The above analysis results indicate that inhibition of Clec4A4 function leads to activation of anti-tumor immune response and cancer suppression.
さらに、マウスにおいてClec4A4欠損によりがん免疫応答が増強し、がん進展が抑制されることから、Clec4A4は樹状細胞に発現し、がん免疫(自己免疫)応答を制御する「免疫チェックポイント分子」であることが証明された。 Furthermore, in mice, Clec4A4 deficiency enhances cancer immune responses and suppresses cancer progression. ” was proven.
[実施例2]
ヒト末梢血(健常人末梢血)から、末梢血単核球を、Ficoll-PaqueTM PLUS(GE Healthcare Life Sciences)を用いた比重遠心法により分離した。分離した末梢血単核球画分から、末梢血単球を、単球単離キットII(Monocyte Isolation Kit II; Miltenyi Biotec)及び細胞分離装置autoMACS(R) Pro Separator(Miltenyi Biotec)を用いて精製した。
[Example 2]
Peripheral blood mononuclear cells were separated from human peripheral blood (peripheral blood of a healthy individual) by specific gravity centrifugation using Ficoll-Paque ™ PLUS (GE Healthcare Life Sciences). Peripheral blood monocytes were purified from the separated peripheral blood mononuclear cell fraction using Monocyte Isolation Kit II (Miltenyi Biotec) and cell separation device autoMACS (R) Pro Separator (Miltenyi Biotec). .
非特許文献3に記載の方法に従い、取得したヒト末梢血単球をヒト組換え顆粒球マクロファージコロニー刺激因子(GM-CSF)(50 ng/ml、Wako)とヒト組換えIL-4(100 ng/ml、Wako)の存在下で1週間培養することにより、ヒト末梢血単球由来樹状細胞を作製した。また、非特許文献3に記載の方法に従い、取得したヒト末梢血単球をヒト組換えGM-CSF(50 ng/ml、Wako)、ヒト組換えIL-4(100 ng/ml、Wako)、ヒト組換えIL-10(50 ng/ml、Wako)、及びヒト組換えTGF-β1(50 ng/ml、Wako)の存在下で1週間培養することにより、ヒト末梢血単球由来免疫抑制性樹状細胞を作製した。末梢血単球由来免疫抑制性樹状細胞はがん環境で生成することが知られている。
According to the method described in
健常人から得られた末梢血単核球画分中の、CD3+T細胞、CD19+ B細胞、CD14+単球、CD11c+樹状細胞、CD56+ナチュラルキラー(NK)細胞におけるCLEC4Aの発現を上述のフローサイトメトリー法により解析した。各細胞における細胞表面分子(CLEC4A)の発現を図9Aにヒストグラムで示す。 Expression of CLEC4A in CD3 + T cells, CD19 + B cells, CD14 + monocytes, CD11c + dendritic cells, and CD56 + natural killer (NK) cells in peripheral blood mononuclear cell fractions obtained from healthy subjects. Analysis was performed using the flow cytometry method described above. The expression of the cell surface molecule (CLEC4A) in each cell is shown in a histogram in FIG. 9A.
末梢血単核球画分においてCLEC4Aの発現はCD3+ T細胞やCD56+ NK細胞では認められず、CD19+B細胞、CD14+単球、CD11c+樹状細胞では認められた(図9A)。さらに、CD14+単球とCD11c+樹状細胞は、CD19+ B細胞と比較してCLEC4Aについてより高い発現を示した(図9A)。 In the peripheral blood mononuclear cell fraction, CLEC4A expression was not observed in CD3 + T cells or CD56 + NK cells, but was observed in CD19 + B cells, CD14 + monocytes, and CD11c + dendritic cells (FIG. 9A). Furthermore, CD14 + monocytes and CD11c + dendritic cells showed higher expression for CLEC4A compared to CD19 + B cells (Figure 9A).
健常人から得られた末梢血単核球画分中の、CD141+cDC1細胞、CD1c+cDC2細胞、CD303+pDC細胞におけるCD11c、HLA-DR、及びCLEC4Aの発現を上述のフローサイトメトリー法により解析した。各細胞表面分子(CD141、CD1c、CD303、CD11c、HLA-DR、及びCLEC4A)の発現を図9Bにヒストグラムで示す。 Analysis of the expression of CD11c, HLA-DR, and CLEC4A in CD141 + cDC1 cells, CD1c + cDC2 cells, and CD303 + pDC cells in the peripheral blood mononuclear cell fraction obtained from healthy individuals using the flow cytometry method described above. did. The expression of each cell surface molecule (CD141, CD1c, CD303, CD11c, HLA-DR, and CLEC4A) is shown in a histogram in FIG. 9B.
健常人由来の末梢血単核球画分中の末梢血樹状細胞亜集団において、CD1c+CD11c+HLA-DR+cDC2細胞は、CD141+CD11c+HLA-DR+cDC1細胞、及びCD303+CD11c-HLA-DR+pDC細胞と比較して、CLEC4Aについてより高い発現を示した(図9B)。なお、フローサイトメトリー解析で得られた、CD1c+末梢血単核球をcDC2、CD141+末梢血単核球をcDC1、CD303+末梢血単核球をpDCとした。 In peripheral blood dendritic cell subpopulations in the peripheral blood mononuclear cell fraction from healthy individuals, CD1c + CD11c + HLA-DR + cDC2 cells, CD141 + CD11c + HLA-DR + cDC1 cells, and CD303 + CD11c - showed higher expression for CLEC4A compared to HLA-DR + pDC cells (Figure 9B). Note that CD1c + peripheral blood mononuclear cells obtained by flow cytometry analysis were designated as cDC2, CD141 + peripheral blood mononuclear cells as cDC1, and CD303 + peripheral blood mononuclear cells as pDC.
さらに、健常人から得られた末梢血単球、作製された末梢血単球由来樹状細胞(図中、単球由来DC)、及び末梢血単球由来免疫抑制性樹状細胞(図中、単球由来DCreq)におけるCD11c、CD40、CD80、CD86、HLA-DR、及びCLEC4Aの発現を、上述のフローサイトメトリー法により解析した。各細胞表面分子の発現を図9Cにヒストグラムで示す。 Furthermore, peripheral blood monocytes obtained from healthy individuals, prepared peripheral blood monocyte-derived dendritic cells (in the figure, monocyte-derived DC), and peripheral blood monocyte-derived immunosuppressive dendritic cells (in the figure, The expression of CD11c, CD40, CD80, CD86, HLA-DR, and CLEC4A in monocyte-derived DCreq was analyzed by the flow cytometry method described above. The expression of each cell surface molecule is shown in a histogram in FIG. 9C.
末梢血単球由来免疫抑制性樹状細胞は、末梢血単球由来樹状細胞と比較して、CD11c、CD86、HLA-DRについてより低い発現を示したが、CLEC4Aについては同等に高い発現を示した(図9C)。 Peripheral blood monocyte-derived immunosuppressive dendritic cells showed lower expression of CD11c, CD86, and HLA-DR compared to peripheral blood monocyte-derived dendritic cells, but equally high expression of CLEC4A. (Fig. 9C).
マウスにおいてClec4A4の発現はCD1c+末梢血単核球(cDC2)にのみ限定されるが(非特許文献4)、ヒトにおいてはcDC2がCD141+末梢血単核球(cDC1)やCD303+末梢血単核球(pDC)よりも高いCLEC4A発現を示すとともに、単球やB細胞でもCLEC4A発現が認められた。また、がん環境で生成される免疫抑制性樹状細胞(非特許文献3、及びNagayama H., et al., Melanoma Res., (2003) 13, pp.521-530)においてもCLEC4Aの発現が認められた。これらの結果からヒトにおいてCLEC4Aは抗原提示細胞に発現する機能制御分子であると考えられた。
In mice, Clec4A4 expression is limited to CD1c + peripheral blood mononuclear cells (cDC2) (Non-Patent Document 4), but in humans, cDC2 is expressed in CD141 + peripheral blood mononuclear cells (cDC1) and CD303 + peripheral blood mononuclear cells. In addition to showing higher CLEC4A expression than pDCs, CLEC4A expression was also observed in monocytes and B cells. Furthermore, CLEC4A expression is also observed in immunosuppressive dendritic cells generated in the cancer environment (
[実施例3]
ヒトCLEC4Aタンパク質の全長(配列番号2; NCBIアクセッション番号NP_057268.1; M1-L237; 237アミノ酸長)をコードする塩基配列(配列番号1)の5'末端にBamHI認識配列(5'-ggatcc-3')、3'末端にXhoI認識配列(5'-ctcgag-3')を付加したcDNA(配列番号11)を、GeneArt(R)(Life Technologies)により合成した。
[Example 3]
A BamHI recognition sequence (5'-ggatcc- cDNA (SEQ ID NO: 11) with an XhoI recognition sequence (5'-ctcgag-3') added to the 3' end was synthesized using GeneArt (R) (Life Technologies).
同様に、ヒトCLEC4AのITIM(免疫受容体抑制性チロシンモチーフ(Immunoreceptor tyrosine-based Inhibition motif))配列欠損変異体(配列番号4; ΔI5-V10; 231アミノ酸長)、CLEC4Aの細胞外領域欠損変異体(配列番号6; ΔF69-L237; 68アミノ酸長)、CLEC4Aの糖鎖認識ドメイン(carbohydrate-recognition domain; CRD)-EPS欠損変異体(配列番号8; ΔE195-S197; 234アミノ酸長)、及びCLEC4Aの糖鎖修飾部位置換変異体(配列番号10; N185Q; 237アミノ酸長)をコードする塩基配列(それぞれ、配列番号3、配列番号5、配列番号7、配列番号9)の5'末端にBamHI認識配列、3'末端にXhoI認識配列を上記と同様に付加したcDNAを、GeneArt(R)(Life Technologies)により合成した。 Similarly, human CLEC4A ITIM (Immunoreceptor tyrosine-based Inhibition motif) sequence deletion mutant (SEQ ID NO: 4; ΔI5-V10; 231 amino acid length), CLEC4A extracellular region deletion mutant (SEQ ID NO: 6; ΔF69-L237; 68 amino acids long), CLEC4A carbohydrate-recognition domain (CRD)-EPS deletion mutant (SEQ ID NO: 8; ΔE195-S197; 234 amino acids long), and CLEC4A A BamHI recognition sequence is located at the 5' end of the base sequence (SEQ ID NO: 3, SEQ ID NO: 5, SEQ ID NO: 7, and SEQ ID NO: 9, respectively) encoding the sugar chain modification site substitution variant (SEQ ID NO: 10; N185Q; 237 amino acids long). , cDNA with an XhoI recognition sequence added to the 3' end in the same manner as above was synthesized using GeneArt (R) (Life Technologies).
次にこれらcDNAを、制限酵素BamHI及びXhoIで処理して、pMX-IRES-GFPレトロウイルスベクターのマルチクローニングサイト中のBamHI-XhoI部位に導入し、CLEC4A又は変異体発現レトロウイルスベクターを作製した。さらに、これらのレトロウイルスベクター、又は対照レトロウイルスベクター(CLEC4A又は変異体コード配列を含まない)を、レトロウイルスパッケージング細胞(Phoenix)にLipofectAMINE Plus Reagent(Life Technologies)を用いて感染させ、24時間後に培養上清からレトロウイルスを採取し、遠心法(8,000 g、16時間、4℃)により濃縮した。 Next, these cDNAs were treated with restriction enzymes BamHI and XhoI and introduced into the BamHI-XhoI site in the multiple cloning site of the pMX-IRES-GFP retroviral vector to produce a CLEC4A or mutant expression retroviral vector. Additionally, retroviral packaging cells (Phoenix) were infected with these retroviral vectors or a control retroviral vector (not containing CLEC4A or variant coding sequences) using LipofectAMINE Plus Reagent (Life Technologies) for 24 h. Later, retroviruses were collected from the culture supernatant and concentrated by centrifugation (8,000 g, 16 hours, 4°C).
得られたレトロウイルスを、マウス樹状細胞株DC2.4(Shen Z, et al., J. Immunol., (1997) 158:p.2723-2730)に対し、DOTAPリポソーム性トランスフェクション試薬(DOTAP Liposomal Transfection Reagent; Roche)の2日間処理により感染させた。得られた細胞から、GFP発現を指標として、FACSAriaTMIIセルソーター(BD Biosciences)を用いてトランスジェニック細胞株を精製分離した。 The obtained retrovirus was transfected with DOTAP liposomal transfection reagent (DOTAP The cells were infected by treatment with Liposomal Transfection Reagent (Roche) for 2 days. From the obtained cells, a transgenic cell line was purified and separated using a FACSAria ™ II cell sorter (BD Biosciences) using GFP expression as an indicator.
分離したトランスジェニック細胞株(CLEC4A発現細胞株又はCLEC4A変異体発現細胞株、対照レトロウイルス感染細胞株)、及びマウス樹状細胞株DC2.4における、GFP及びCLEC4Aの発現を、上述のフローサイトメトリー法により解析した。 Expression of GFP and CLEC4A in isolated transgenic cell lines (CLEC4A-expressing cell lines or CLEC4A mutant-expressing cell lines, control retrovirus-infected cell lines) and mouse dendritic cell line DC2.4 was measured by flow cytometry as described above. It was analyzed using the method.
マウス樹状細胞株DC2.4(図中、DC2.4)、対照レトロウイルス感染細胞株(図中、モック-GFP)、及びCLEC4A発現細胞株(図中、CLEC4A-GFP)における、GFP及びCLEC4Aの発現を、図10Aにドットプロットで示す。 GFP and CLEC4A in mouse dendritic cell line DC2.4 (DC2.4 in the figure), control retrovirus-infected cell line (mock-GFP in the figure), and CLEC4A-expressing cell line (CLEC4A-GFP in the figure) The expression of is shown as a dot plot in FIG. 10A.
糖鎖修飾部位置換変異体発現細胞株(図中、CLEC4AN185Q-GFP)、CRD-EPS欠損変異体発現細胞株(図中、CLEC4AΔE195-S197-GFP)、細胞外領域欠損変異体発現細胞株(図中、CLEC4AΔF69-L237-GFP)及びITIM配列欠損変異体発現細胞株(図中、CLEC4AΔI5-V10-GFP)における、GFP及びCLEC4Aの発現を、図10Bにドットプロットで示す。 Cell line expressing a glycosylation site substitution mutant (in the figure, CLEC4A N185Q -GFP), cell line expressing a CRD-EPS deletion mutant (in the figure, CLEC4A ΔE195-S197 -GFP), cell line expressing an extracellular region deletion mutant (In the figure, CLEC4A ΔF69-L237 -GFP) and the ITIM sequence deletion mutant-expressing cell line (In the figure, CLEC4A ΔI5-V10 -GFP) The expression of GFP and CLEC4A is shown as a dot plot in FIG. 10B.
マウス樹状細胞株DC2.4、対照レトロウイルス感染細胞株、CLEC4A発現細胞株、糖鎖修飾部位置換変異体発現細胞株、CRD-EPS欠損変異体発現細胞株、細胞外領域欠損変異体発現細胞株、及びITIM配列欠損変異体発現細胞株を、48ウェル培養プレート(BD Bioscience)にそれぞれ播種し、TLR4リガンドであるリポ多糖(LPS; 0.1 μg/ml; Sigma-Aldrich)又はTLR9リガンドであるCpG-B ODN 1668(0.1 μM)を刺激のために添加して16時間培養した後、培養上清中のIL-6(インターフェロン-6; eBioscience)とTNF-α(腫瘍壊死因子-α; eBioscience)の量をELISA法により測定した。対照として、同じ細胞株を、リポ多糖もCpG-B ODN 1668も添加せず無刺激で16時間培養後、同様に培養上清中のIL-6及びTNF-αの量をELISA法により測定した。その結果を図11に示す。 Mouse dendritic cell line DC2.4, control retrovirus-infected cell line, CLEC4A-expressing cell line, glycosylation site substitution mutant-expressing cell line, CRD-EPS-deficient mutant-expressing cell line, extracellular domain-deficient mutant-expressing cell line strain, and a cell line expressing an ITIM sequence deletion mutant were respectively seeded in 48-well culture plates (BD Bioscience) and treated with lipopolysaccharide (LPS; 0.1 μg/ml; Sigma-Aldrich), a TLR4 ligand, or CpG, a TLR9 ligand. -B ODN 1668 (0.1 μM) was added for stimulation and cultured for 16 hours, followed by IL-6 (interferon-6; eBioscience) and TNF-α (tumor necrosis factor-α; eBioscience) in the culture supernatant. The amount of was measured by ELISA method. As a control, the same cell line was cultured for 16 hours without stimulation without the addition of lipopolysaccharide or CpG-B ODN 1668, and the amounts of IL-6 and TNF-α in the culture supernatant were similarly measured by ELISA method. . The results are shown in FIG.
対照レトロウイルス感染細胞株(図中、モック-GFP)と比較して、CLEC4A発現細胞株(図中、CLEC4A-GFP)では、LPS又はCpG-B ODN 1668の刺激により、IL-6及びTNF-αの産生が著しく減弱した(図11)。 Compared to the control retrovirus-infected cell line (mock-GFP in the figure), the CLEC4A-expressing cell line (CLEC4A-GFP in the figure) was stimulated with LPS or CpG-B ODN 1668 to increase IL-6 and TNF- The production of α was markedly attenuated (FIG. 11).
CLEC4A発現細胞株(図中、CLEC4A-GFP)と比較して、CRD-EPS欠損変異体発現細胞株(図中、CLEC4AΔE195-S197-GFP)、細胞外領域欠損変異体発現細胞株(図中、CLEC4AΔF69-L237-GFP)及びITIM配列欠損変異体発現細胞株(図中、CLEC4AΔI5-V10-GFP)では、LPS又はCpG-B ODN 1668の刺激により、IL-6及びTNF-αの産生が著しく亢進し、これらの産生量は対照レトロウイルス感染細胞株(図中、モック-GFP)とほぼ同等であった(図11)。これらの細胞株に導入されたCLEC4A変異体はCLEC4A活性を保持しないことが示された。 Compared to a CLEC4A-expressing cell line (CLEC4A-GFP in the figure), a cell line expressing a CRD-EPS-deficient mutant (CLEC4A ΔE195-S197 -GFP in the figure) and a cell line expressing an extracellular domain-deficient mutant (in the figure , CLEC4A ΔF69-L237 -GFP) and ITIM sequence-deficient mutant-expressing cell lines (CLEC4A ΔI5-V10 -GFP in the figure), stimulation with LPS or CpG-B ODN 1668 inhibits the production of IL-6 and TNF-α. was significantly enhanced, and the production amount was almost equivalent to that of the control retrovirus-infected cell line (mock-GFP in the figure) (Figure 11). It was shown that CLEC4A mutants introduced into these cell lines do not retain CLEC4A activity.
一方、糖鎖修飾部位置換変異体発現細胞株(図中、CLEC4AN185Q-GFP)では、CLEC4A発現細胞株と比較して、LPS又はCpG-B ODN 1668の刺激により、IL-6及びTNF-αの産生の部分的な増強が認められた(図11)。この糖鎖修飾部位置換変異体は、CLEC4A活性を部分的に保持していると考えられた。Clec4A4の自己分子(内/間)結合には、CRD内の185位(N-186)におけるN-結合型糖鎖(N型修飾糖鎖)が必要とされている。 On the other hand, in the cell line expressing the glycosylation site substitution mutant (CLEC4A N185Q -GFP in the figure), compared to the CLEC4A expressing cell line, stimulation with LPS or CpG-B ODN 1668 increases IL-6 and TNF-α. Partial enhancement of the production of was observed (FIG. 11). This sugar chain modification site substitution mutant was thought to partially retain CLEC4A activity. N-linked sugar chain (N-type modified sugar chain) at position 185 (N-186) in CRD is required for self-molecule (intra/inter) binding of Clec4A4.
以上の結果から、CLEC4Aは抗原提示細胞の機能制御分子であり、樹状細胞などの抗原提示細胞におけるCLEC4Aの機能制御の分子基盤には、その細胞外領域の糖鎖認識ドメイン(CRD)とN型修飾糖鎖との会合を介した自己分子(内/間)結合に基づくITIM依存性抑制性シグナル経路が関与しており、当該経路の誘導によりサイトカイン産生能及びT細胞活性化能が抑制されることが示された。すなわちCLEC4Aの機能制御活性には、細胞外領域、CRD、及びITIM配列が重要であることが示された。 From the above results, CLEC4A is a functional regulatory molecule of antigen-presenting cells, and the molecular basis for the functional regulation of CLEC4A in antigen-presenting cells such as dendritic cells is that the carbohydrate recognition domain (CRD) in its extracellular region and the N An ITIM-dependent inhibitory signal pathway based on self-molecule (intra/inter) binding through association with type-modified sugar chains is involved, and induction of this pathway suppresses cytokine production ability and T cell activation ability. Rukoto has been shown. In other words, it was shown that the extracellular region, CRD, and ITIM sequence are important for the functional regulatory activity of CLEC4A.
[実施例4]
1)可溶型CLEC4A-マウスIgFcキメラ分子の作製
CLEC4A細胞外領域(配列番号12; F69-L237; 169アミノ酸長)をコードする塩基配列(配列番号1の205~711位の塩基配列に相当)の5'末端にBamHI認識配列(5'-ggatcc-3')、3'末端にEcoRV認識配列(5'-gatatc-3')を付加したcDNAを、GeneArt(R)(Life Technologies)により合成した。次に、得られたcDNAを、制限酵素BamHI及びXhoIで処理して、マウスIgFcキメラ分子発現ベクター(pFUSEN-mG2A-Fcベクター; InvivoGen)のマルチクローニングサイト中のBamHI-EcoRV部位に導入し、可溶型CLEC4A-マウスIgFcキメラ分子発現ベクターを作製した。可溶型CLEC4A-マウスIgFcキメラ分子発現ベクターを、293fectinTMトランスフェクション試薬(293fectinTMTransfection Reagent; Life Technologies)を用いてFreeStyleTM293-F細胞(Life Technologies)に遺伝子導入した。続いて遺伝子導入細胞を培養し、培養上清より、HiTrapTMProtein G HP(GE Healthcare Life Sciences)を用いて可溶型CLEC4A-マウスIgFcキメラ分子を精製した。
[Example 4]
1) Preparation of soluble CLEC4A-mouse IgFc chimera molecule
A BamHI recognition sequence (5'-ggatcc -3'), cDNA with an EcoRV recognition sequence (5'-gatatc-3') added to the 3' end was synthesized using GeneArt (R) (Life Technologies). Next, the obtained cDNA was treated with restriction enzymes BamHI and A soluble CLEC4A-mouse IgFc chimeric molecule expression vector was created. A soluble CLEC4A- mouse IgFc chimera molecule expression vector was transfected into FreeStyle TM 293-F cells (Life Technologies) using 293fectin TM Transfection Reagent (Life Technologies). Subsequently, the gene-transfected cells were cultured, and soluble CLEC4A-mouse IgFc chimera molecules were purified from the culture supernatant using HiTrap ™ Protein G HP (GE Healthcare Life Sciences).
2)抗CLEC4A抗体の作製
上記で作製した可溶型CLEC4A-マウスIgFcキメラ分子(12.5 μg/1匹)及びTiterMax(R) Gold Adjuvant(27.5 μl/1匹; Sigma-Aldrich)を用いて、マウスの足蹠に対し2週間隔で2回免疫した。さらに、初回免疫後31日目にマウスの尾静脈内へ可溶型CLEC4A-マウスIgFcキメラ分子(25 μg/1匹)を投与した。初回免疫後34日目にマウスのリンパ節を採取し、得られたリンパ節細胞と、P3U1ミエローマ細胞株を、ポリエチレングリコール4000(Wako)を用いて融合し、多数のハイブリドーマを作製した。
2) Preparation of anti-CLEC4A antibody Using the soluble CLEC4A-mouse IgFc chimera molecule prepared above (12.5 μg/1 mouse) and TiterMax (R) Gold Adjuvant (27.5 μl/1 mouse; Sigma-Aldrich), The footpads of the mice were immunized twice at 2-week intervals. Furthermore, on the 31st day after the first immunization, a soluble CLEC4A-mouse IgFc chimera molecule (25 μg/mouse) was administered into the tail vein of the mouse. Lymph nodes of the mice were collected 34 days after the first immunization, and the obtained lymph node cells and the P3U1 myeloma cell line were fused using polyethylene glycol 4000 (Wako) to create a large number of hybridomas.
3)抗体のスクリーニング
作製したハイブリドーマの培養上清について、CLEC4A発現細胞株に対する反応性を指標とし、二次抗体であるR-フィコエリスリン標識F(ab')2フラグメントヤギ抗マウスIgG(H+L)抗体(Jackson ImmunoResearch Laboratories)を用いて、上記フローサイトメトリー法により、抗体クローンのスクリーニングを行った。
3) Antibody screening Regarding the culture supernatant of the prepared hybridoma, using the reactivity against CLEC4A-expressing cell lines as an indicator, we used the secondary antibody R-phycoerythrin-labeled F(ab') 2 fragment goat anti-mouse IgG (H+ L) Antibody clones were screened by the flow cytometry method described above using the antibody (Jackson ImmunoResearch Laboratories).
具体的には、作製したハイブリドーマの培養上清を、マウス樹状細胞株DC2.4と実施例3で作製したCLEC4A発現細胞株(CLEC4A-GFP)の混合細胞(混合比1:1)に添加し、抗体と細胞の反応性を上記フローサイトメトリー法により調べた。なお混合細胞系を使用することにより、マウス樹状細胞株DC2.4(親株)とCLEC4A発現細胞株のそれぞれに対する反応性を一度に解析することが可能になる。 Specifically, the culture supernatant of the prepared hybridoma was added to a mixture of mouse dendritic cell line DC2.4 and the CLEC4A-expressing cell line (CLEC4A-GFP) prepared in Example 3 (mixing ratio 1:1). Then, the reactivity between the antibody and cells was examined using the flow cytometry method described above. Note that by using a mixed cell system, it is possible to analyze the reactivity to each of the mouse dendritic cell line DC2.4 (parent strain) and the CLEC4A-expressing cell line at the same time.
同様に、対照マウスIgG抗体又は抗CLEC4A抗体(クローン9E8)を、マウス樹状細胞株DC2.4と実施例3で作製したCLEC4A発現細胞株(CLEC4A-GFP)の混合細胞(混合比1:1)に添加し、抗体と細胞の反応性を上記フローサイトメトリー法により調べた。 Similarly, control mouse IgG antibody or anti-CLEC4A antibody (clone 9E8) was applied to a mixture of mouse dendritic cell line DC2.4 and CLEC4A-expressing cell line (CLEC4A-GFP) prepared in Example 3 (mixing ratio 1:1). ), and the reactivity between the antibody and cells was examined using the flow cytometry method described above.
このようにして、CLEC4A発現細胞株に特異的な反応を高レベルで示した数十個のクローンを樹立した。高反応性クローンとして選択されたハイブリドーマの培養上清から、HiTrapTM Protein G HPを用いて、マウス抗CLEC4A抗体を精製した。 In this way, several dozen clones that showed a high level of response specific to CLEC4A-expressing cell lines were established. Mouse anti-CLEC4A antibodies were purified from the culture supernatants of hybridomas selected as highly reactive clones using HiTrap ™ Protein G HP.
4)抗体の免疫チェックポイント阻害作用
実施例2で得られた末梢血単球由来樹状細胞(1x105細胞)を、96ウェル培養プレートに播種し、対照マウスIgG抗体(cont. Ig)(10 μg/ml; Sigma-Aldrich)若しくは上記で得られたマウス抗ヒトCLEC4A抗体(10 μg/ml)の存在下又は非存在下にてLPS(0.1 ng/ml)で刺激して16時間培養した後、培養上清中のIL-6量をELISA法により測定した。
4) Immune checkpoint inhibitory effect of antibodies Peripheral blood monocyte-derived dendritic cells (1x10 5 cells) obtained in Example 2 were seeded in a 96-well culture plate, and control mouse IgG antibody (cont. Ig) (10 μg/ml; Sigma-Aldrich) or the mouse anti-human CLEC4A antibody obtained above (10 μg/ml) after stimulation with LPS (0.1 ng/ml) and culture for 16 hours. The amount of IL-6 in the culture supernatant was measured by ELISA method.
その結果、マウス抗CLEC4A抗体#1、#2、#3、及び#4の存在下で、末梢血単球由来樹状細胞のLPSの刺激による炎症性サイトカインIL-6の産生が、抗CLEC4A抗体の非存在下及び対照マウスIgG抗体の存在下と比較して、約1.5倍に増強された。それらの抗CLEC4A抗体がCLEC4A機能阻害抗体として作用し、樹状細胞におけるCLEC4Aのサイトカイン産生抑制機能を制御(阻害)したと考えられた。すなわちそれらの抗体は免疫チェックポイント阻害作用を有していることが示された。
As a result, in the presence of mouse
ヒトCLEC4A発現マウス樹状細胞株DC2.4(4x105細胞)を、対照マウスIgG抗体(100 μg/ml)若しくは上記で得られたマウス抗ヒトCLEC4A抗体(100 μg/ml)の存在下又は非存在下にて60分間培養した後、可溶型ヒトCLEC4A-マウスIgFcキメラ分子(10 μg/ml)を添加して反応させた。その後、可溶型ヒトCLEC4A-マウスIgFcキメラ分子のCLEC4A発現マウス樹状細胞株DC2.4に対する反応性(結合)を指標に、二次抗体であるR-フィコエリスリン標識F(ab')2断片ヤギ抗マウスIgG(H+L)を用いたフローサイトメトリー法により結合阻害率を解析した。マウス抗CLEC4A抗体#1、#2、及び#3は、可溶型CLEC4A-マウスIgFcキメラ分子の、CLEC4A発現マウス樹状細胞株DC2.4に対する結合を80%以上阻害した。それらの抗CLEC4A抗体は、樹状細胞株DC2.4の細胞表面上に発現したCLEC4Aと可溶型CLEC4Aとの結合阻害を引き起こしたことが示された。
Human CLEC4A-expressing mouse dendritic cell line DC2.4 (4x10 5 cells) was incubated in the presence or absence of control mouse IgG antibody (100 μg/ml) or mouse anti-human CLEC4A antibody (100 μg/ml) obtained above. After culturing in the presence of the cells for 60 minutes, a soluble human CLEC4A-mouse IgFc chimera molecule (10 μg/ml) was added to react. Thereafter, using the reactivity (binding) of the soluble human CLEC4A-mouse IgFc chimera molecule to the CLEC4A-expressing mouse dendritic cell line DC2.4 as an indicator, a secondary antibody, R-phycoerythrin-labeled F(ab') 2 The binding inhibition rate was analyzed by flow cytometry using fragmented goat anti-mouse IgG (H+L). Mouse
[実施例5]
PEPperMAP(R)(PEPperPRINT)ペプチドマイクロアレイ受託解析サービスを利用して、CLEC4A機能阻害抗体である抗CLEC4A抗体#1、#2、#3、及び#4のエピトープマッピングを行った。
[Example 5]
Epitope mapping of
具体的には、エピトープマッピングでは、CLEC4A細胞外領域のアミノ酸配列(配列番号12; F69-L237; 169アミノ酸長)全長をカバーする、1アミノ酸ずつシフトさせた15アミノ酸長の重複ペプチド群(重複長: 14アミノ酸; 155個のペプチド)を、マイクロアレイ上にプリントした。さらに、抗CLEC4A抗体#1、#2、#3、及び#4及び標識二次抗体を用いて、抗原抗体反応により、マイクロアレイ上のペプチドプローブとハイブリダイゼーションした。マイクロアレイスキャナーを用いて、ハイブリダイゼーション後のマイクロアレイを走査後、PepSlide(R) Analyzer(PEPperPRINT)を用いて反応性を解析し、エピトープの同定を行った。抗CLEC4A抗体と強い結合を示した連続的に重複するペプチドプローブに共通して含まれるアミノ酸配列をコンセンサスモチーフとした。コンセンサスモチーフは、線状(連続)エピトープ、又は不連続エピトープ中に含まれる線状(連続)エピトープ部分の存在を示す。
Specifically, in epitope mapping, a group of overlapping peptides of 15 amino acids in length (overlapping length : 14 amino acids; 155 peptides) were printed on the microarray. Furthermore,
抗CLEC4A抗体の各クローンの解析結果は以下のとおりであった。 The analysis results of each anti-CLEC4A antibody clone were as follows.
- 抗体#1
エピトープマッピングによりWVDQTPYNESSTFW(配列番号15; 配列番号2のW178-W191)がコンセンサスモチーフとして同定された。抗体#1のエピトープは、CLEC4Aタンパク質上の、コンセンサスモチーフWVDQTPYNESSTFW(配列番号15)を含むペプチド配列によって構成されることが示された。
-
Epitope mapping identified WVDQTPYNESSTFW (SEQ ID NO: 15; W178-W191 of SEQ ID NO: 2) as a consensus motif. The epitope of
- 抗体#2
エピトープマッピングによりQNLQEESAYF(配列番号16; 配列番号2のQ155-F164)がコンセンサスモチーフとして同定された。ペプチドFSSNCYFISTESASW(配列番号17; 配列番号2のF113-W127)への抗体#2の結合も示された。抗体#2のエピトープは、CLEC4Aタンパク質上の、コンセンサスモチーフQNLQEESAYF(配列番号16)を含むペプチド配列とFSSNCYFISTESASW(配列番号17)を含むペプチド配列によって構成されることが示された。抗体#2はCLEC4Aタンパク質の一次配列上で離れた位置にある2つのぺプチド配列QNLQEESAYF(配列番号16)とFSSNCYFISTESASW(配列番号17)に結合できることから、抗体#2のエピトープは、QNLQEESAYF(配列番号16)と、FSSNCYFISTESASW(配列番号17)中の少なくとも一部のアミノ酸とを含む不連続エピトープ(立体構造エピトープ)であると考えられる。
-
Epitope mapping identified QNLQEESAYF (SEQ ID NO: 16; Q155-F164 of SEQ ID NO: 2) as a consensus motif. Binding of
- 抗体#3
エピトープマッピングによりSSNCYFISTESASW(配列番号18; 配列番号2のS114-W127)とQNLQEESAYF(配列番号16; 配列番号2のQ155-F164)がそれぞれコンセンサスモチーフとして同定された。抗体#3のエピトープは、CLEC4Aタンパク質上の、コンセンサスモチーフSSNCYFISTESASW(配列番号18)を含むペプチド配列とQNLQEESAYFを含むペプチド配列によって構成されることが示された。抗体#3はCLEC4Aタンパク質の一次配列上で離れた位置にある2つのペプチド配列SSNCYFISTESASW(配列番号18)及びQNLQEESAYF(配列番号16)に結合できることから、抗体#3のエピトープは、SSNCYFISTESASW(配列番号18)及びQNLQEESAYF(配列番号16)を含む不連続エピトープ(立体構造エピトープ)であると考えられる。
-
Epitope mapping identified SSNCYFISTESASW (SEQ ID NO: 18; S114-W127 of SEQ ID NO: 2) and QNLQEESAYF (SEQ ID NO: 16; Q155-F164 of SEQ ID NO: 2) as consensus motifs. The epitope of
- 抗体#4
エピトープマッピングによりKKNMPVEETAWSCC(配列番号19; 配列番号2のK93-C106)がコンセンサスモチーフとして同定された。抗体#4のエピトープは、CLEC4Aタンパク質上の、コンセンサスモチーフKKNMPVEETAWSCC(配列番号19)を含むペプチド配列によって構成されることが示された。
-
Epitope mapping identified KKNMPVEETAWSCC (SEQ ID NO: 19; K93-C106 of SEQ ID NO: 2) as a consensus motif. The epitope of
図12に、抗体#1~#4のエピトープを構成する抗体結合配列の、CLEC4Aタンパク質の一次配列上の位置を示す。
FIG. 12 shows the positions of the antibody binding sequences constituting the epitopes of
CLEC4A機能阻害抗体である抗体#1~#4のエピトープは、CLEC4A細胞外領域のC型レクチン様ドメイン内に存在することが明らかとなった。また、抗体#1のエピトープはCRD内のN型糖鎖修飾部位(N185)を含むことが示された(図12)。
It was revealed that the epitopes of
[実施例6]
1)CLEC4Aトランスジェニックマウスの作製
ヒトCLEC4Aタンパク質の全長(配列番号2; NCBIアクセッション番号NP_057268.1; M1-L237; 237アミノ酸長)をコードする塩基配列(配列番号1)の5'末端と3'末端にClaI認識配列(5'-atcgat-3')を付加したcDNA(配列番号20)を、GeneArt(R)(Life Technologies)により合成した。
[Example 6]
1) Preparation of CLEC4A transgenic mouse The 5' end and 3 of the nucleotide sequence (SEQ ID NO: 1) encoding the full-length human CLEC4A protein (SEQ ID NO: 2; NCBI accession number NP_057268.1; M1-L237; 237 amino acid length) A cDNA (SEQ ID NO: 20) with a ClaI recognition sequence (5'-atcgat-3') added to the 'end was synthesized using GeneArt (R) (Life Technologies).
ヒトCLEC4Aトランスジェニックマウスの作製には、マウスMHCクラスII発現細胞においてCLEC4A導入遺伝子の発現を誘導する目的で、マウスインバリアント鎖遺伝子のプロモーター領域及びエンハンサー領域を含有するpDOI-6ベクター(van Santen H., et al., J. Immunol. Methods, (2000) 245: 133-137)を用いた。 To generate human CLEC4A transgenic mice, we used the pDOI-6 vector (van Santen H ., et al., J. Immunol. Methods, (2000) 245: 133-137).
上記合成cDNAを制限酵素ClaIによる処理後、pDOI-6ベクターのマルチクローニングサイト中のClaI部位に導入し、CLEC4A発現pDOI-6ベクターを作製した。CLEC4A発現pDOI-6ベクターを制限酵素XhoI及びPvuIで処理して直鎖化し、精製した。直鎖化CLEC4A発現pDOI-6ベクターをマウスC57BL/6系統(CLEA Japan, Inc.)の受精卵前核へ顕微注入した後、その受精卵を偽妊娠マウスの卵管に移植した。妊娠・出産を経て得た産仔から、離乳後、尻尾を採取し、ゲノムDNAを抽出した。得られたゲノムDNAを用いたジェノタイピングPCR解析を行い、CLEC4Aが導入されたファウンダーマウス(F0)を同定した。さらに、ファウンダーマウス(F0)とC57BL/6マウスとの交配により、F1マウスを作出し、ジェノタイピングPCR解析によりヒトCLEC4Aトランスジェニックマウスを樹立した。実施した遺伝子組換え実験及び動物実験は所属機関の承認済みであった。 After treating the above synthetic cDNA with the restriction enzyme ClaI, it was introduced into the ClaI site in the multi-cloning site of the pDOI-6 vector to produce a CLEC4A expression pDOI-6 vector. The CLEC4A expression pDOI-6 vector was linearized by treatment with restriction enzymes XhoI and PvuI and purified. The linearized CLEC4A-expressing pDOI-6 vector was microinjected into the pronucleus of a fertilized egg of mouse C57BL/6 strain (CLEA Japan, Inc.), and then the fertilized egg was transplanted into the fallopian tube of a pseudopregnant mouse. After weaning, the tails of the offspring obtained after pregnancy and birth were collected, and genomic DNA was extracted. Genotyping PCR analysis was performed using the obtained genomic DNA, and a founder mouse (F0) into which CLEC4A was introduced was identified. Furthermore, F1 mice were generated by crossing the founder mouse (F0) with C57BL/6 mice, and human CLEC4A transgenic mice were established by genotyping PCR analysis. The genetic recombination experiments and animal experiments conducted were approved by the affiliated institution.
2)ヒトCLEC4Aトランスジェニックマウスの免疫細胞におけるCLEC4A発現
野生型マウス(WT; C57BL/6)及び上記1)で樹立したCLEC4A発現トランスジェニックマウス(CLEC4A Tg)より取得した脾臓細胞から赤血球溶解バッファー(Red Blood Cell Lysing Buffer Hybri-MaxTM; Sigma-Aldrich)(非特許文献4)を用いて脾臓単核球を調製した。脾臓単核球中のCD3+ T細胞、CD19+ B細胞、CD11b+マクロファージ、CD11c+樹状細胞、及びNK1.1+ NK細胞におけるCLEC4Aの発現を、上述のフローサイトメトリー法により解析した。図13Aに各細胞表面分子(CD3、CD19、CD11b、CD11c、及びNK1.1)発現陽性細胞におけるCLEC4Aの発現をヒストグラムで示す。数値は平均蛍光強度を示す。
2) CLEC4A expression in immune cells of human CLEC4A transgenic mice Red blood cell lysis buffer (Red Splenic mononuclear cells were prepared using Blood Cell Lysing Buffer Hybri-Max ™ (Sigma-Aldrich) (Non-Patent Document 4). The expression of CLEC4A in CD3 + T cells, CD19 + B cells, CD11b + macrophages, CD11c + dendritic cells, and NK1.1 + NK cells in splenic mononuclear cells was analyzed by the flow cytometry method described above. FIG. 13A shows a histogram of the expression of CLEC4A in cells positive for expressing each cell surface molecule (CD3, CD19, CD11b, CD11c, and NK1.1). Numbers indicate average fluorescence intensity.
野生型マウス(WT)の脾臓単核球では、CLEC4Aの発現は認められなかった。一方、CLEC4A発現トランスジェニックマウス(CLEC4A Tg)の脾臓単核球ではCLEC4Aの発現が認められ、特にCD11c+樹状細胞は他の免疫細胞と比較してもより高いCLEC4A発現レベルを示した(図13A)。 No expression of CLEC4A was observed in splenic mononuclear cells of wild-type mice (WT). On the other hand, CLEC4A expression was observed in splenic mononuclear cells of CLEC4A-expressing transgenic mice (CLEC4A Tg), and especially CD11c + dendritic cells showed higher CLEC4A expression levels compared to other immune cells (Fig. 13A).
さらに、野生型マウス(WT; C57BL/6)及びCLEC4A発現トランスジェニックマウス(CLEC4A Tg)由来の脾臓単核球中の脾臓樹状細胞亜集団(CD11c+CD8α+cDC1細胞、CD11c+CD4+cDC2細胞、及びCD11c+SiglecH+pDC細胞)におけるCLEC4Aの発現を、上述のフローサイトメトリー法により解析した。図13Bに各脾臓樹状細胞亜集団におけるCLEC4Aの発現をヒストグラムで示す。数値は平均蛍光強度を示す。 Additionally, splenic dendritic cell subpopulations (CD11c + CD8α + cDC1 cells, CD11c + CD4 + cDC2 cells) in splenic mononuclear cells from wild-type mice (WT; C57BL/6) and CLEC4A-expressing transgenic mice (CLEC4A Tg) , and CD11c + SiglecH + pDC cells) was analyzed by the flow cytometry method described above. FIG. 13B shows a histogram of CLEC4A expression in each splenic dendritic cell subpopulation. Numbers indicate average fluorescence intensity.
野生型マウス(WT)の脾臓樹状細胞亜集団のいずれにおいても、CLEC4Aの発現は認められなかった。一方、CLEC4A発現トランスジェニックマウス(CLEC4A Tg)の脾臓樹状細胞亜集団ではCLEC4Aの発現が認められ、CD11c+CD8α+cDC1細胞、CD11c+SiglecH+pDC細胞、CD11c+CD4+cDC2細胞の順に高いCLEC4A発現レベルを示した(図13B)。 CLEC4A expression was not observed in any of the splenic dendritic cell subpopulations of wild-type mice (WT). On the other hand, CLEC4A expression was observed in the splenic dendritic cell subpopulations of CLEC4A-expressing transgenic mice (CLEC4A Tg), with higher CLEC4A in CD11c + CD8α + cDC1 cells, CD11c + SiglecH + pDC cells, and CD11c + CD4 + cDC2 cells. Expression levels are shown (Figure 13B).
作製したヒトCLEC4Aトランスジェニックマウスは、免疫細胞においてヒトCLEC4Aを発現することが確認された。 It was confirmed that the created human CLEC4A transgenic mouse expressed human CLEC4A in immune cells.
[実施例7]
1)CLEC4A機能阻害抗体による担がんマウスのがん進展抑制効果
野生型マウス(WT; C57BL/6)及び実施例6で樹立したCLEC4A発現トランスジェニックマウス(CLEC4A Tg)の背部に、卵白アルブミン(OVA)を発現する組換え悪性黒色腫細胞株(B16-OVAメラノーマ; Brown DM, et al., Immunology. (2001) 102:486-497)を皮下移植(1x105細胞/1匹)することにより、担がんマウスを作製した。
[Example 7]
1) Effect of suppressing cancer progression in tumor-bearing mice by CLEC4A function-inhibiting antibody Ovalbumin ( By subcutaneously transplanting (1x10 5 cells/1 animal) a recombinant malignant melanoma cell line (B16-OVA melanoma; Brown DM, et al., Immunology. (2001) 102:486-497) expressing OVA). , we generated tumor-bearing mice.
担がんCLEC4A発現トランスジェニックマウスの腫瘍体積が約100m3に達した後(がん細胞移植の6日後)、対照マウスIgG抗体(cont. Ig(Sigma-Aldrich); 100μg/1匹)又はCLEC4A機能阻害抗体(抗体#1~#4; 100μg/1匹)を3日間隔で計6回、腹腔内投与した。がんの進展は、担がんマウスの腫瘍体積をがん細胞移植の22日後まで毎日、デジタルキャリパー(Digimatic Caliper, Mitutoyo)を用いて測定し、それを指標として評価した。
After the tumor volume of the tumor-bearing CLEC4A-expressing transgenic mouse reached approximately 100 m3 (6 days after cancer cell transplantation), control mouse IgG antibody (cont. Ig (Sigma-Aldrich); 100 μg/mouse) or CLEC4A Function-inhibiting antibodies (
また、免疫関連有害事象の指標として、担がんマウスの体重変化、飲水摂餌不良の有無、及び外見上変化(不動化、立毛等)を、がん移植の22日後まで観察した。 In addition, as indicators of immune-related adverse events, changes in body weight, poor food and water intake, and external changes (immobility, piloerection, etc.) of the tumor-bearing mice were observed up to 22 days after tumor transplantation.
図14Aに、がん細胞移植の13日後の腫瘍の写真を示す。図14B及びCに、がん細胞移植の13日後(B)及び22日後(C)の腫瘍体積を示す。図15にがん細胞移植後22日間の腫瘍体積の経時的変化を示す。
FIG. 14A shows a photograph of the
担がんCLEC4A発現トランスジェニックマウスにおいて、CLEC4A機能阻害抗体(抗体#1~#4)の投与は、対照抗体(cont. Ig)の投与と比較して、がん進展を顕著に抑制し、がんに対する顕著な治療効果が認められた(図14及び15)。
In tumor-bearing CLEC4A-expressing transgenic mice, administration of CLEC4A function-inhibiting antibodies (
さらにCLEC4A機能阻害抗体投与群では、対照群と比較して、体重減少は認められず(図16)、飲水摂餌不良や外見上変化(不動化、立毛等)も認められなかった。すなわち、CLEC4A機能阻害抗体は免疫関連有害事象(irAEs)をもたらさないことが示された。 Furthermore, in the CLEC4A function-inhibiting antibody administration group, no weight loss was observed compared to the control group (Figure 16), and no poor water intake or changes in appearance (immobilization, piloerection, etc.) were observed. In other words, it was shown that the CLEC4A function-inhibiting antibody did not cause immune-related adverse events (irAEs).
2)CLEC4A機能阻害抗体による腫瘍浸潤T細胞集積促進効果
上記1)と同様にして担がんマウスを作製し、腫瘍体積が約100m3に達した後、対照マウスIgG抗体(cont. Ig; 100μg/1匹)又はCLEC4A機能阻害抗体(抗体#1~#4; 100μg/1匹)を3日間隔で計6回、静脈内投与した。がん細胞移植の22日後に、がん組織を採取した。がん組織中の腫瘍浸潤CD4+ T細胞と腫瘍浸潤CD8+ T細胞の集積を、上述のフローサイトメトリー法により解析した。
2) Effect of promoting tumor-infiltrating T cell accumulation by CLEC4A function-inhibiting antibody Tumor-bearing mice were prepared in the same manner as in 1) above, and after the tumor volume reached approximately 100 m 3 , a control mouse IgG antibody (cont. Ig; 100 μg /1 animal) or CLEC4A function-inhibiting antibody (
フローサイトメトリー解析の結果を図17に示す。CLEC4A機能阻害抗体投与群では、対照抗体投与群と比較して、がん組織中に腫瘍浸潤CD4+ T細胞及び腫瘍浸潤CD8+ T細胞の著しい集積が認められた。CLEC4A機能阻害抗体が、がん組織中への腫瘍浸潤T細胞集積促進効果をもたらすことが示された。 The results of flow cytometry analysis are shown in FIG. 17. In the CLEC4A function-inhibiting antibody administration group, a significant accumulation of tumor-infiltrating CD4 + T cells and tumor-infiltrating CD8 + T cells was observed in cancer tissues compared to the control antibody administration group. It was shown that an antibody that inhibits CLEC4A function promotes the accumulation of tumor-infiltrating T cells into cancer tissues.
実施例7で示された結果は、実施例1~6の結果と併せて考慮すると、CLEC4A機能阻害抗体#1~#4がCLEC4Aの細胞外領域に存在するC型レクチン様ドメイン内のペプチド配列と結合することにより、CRDとN型修飾糖鎖との会合を介する自己分子結合に基づくITIM依存性抑制性シグナル経路を阻害し、樹状細胞の機能を増強すること、特にCLEC4A発現樹状細胞の抗原提示機能の増強によりがん抗原特異的細胞傷害性T細胞(CTL)の誘導を増幅し、がん進展を抑制することを示している。
When the results shown in Example 7 are considered together with the results of Examples 1 to 6, it is clear that CLEC4A function-inhibiting
さらに、CLEC4A機能阻害抗体#1~#3はがん進展抑制効果が特に高かったことから、それらの抗体が結合する、ヒトCLEC4Aタンパク質のF113~H192の領域(配列番号21)への抗体結合はより高い抗腫瘍活性をもたらすことが示された。
Furthermore, since CLEC4A function-inhibiting
また抗体#1~#4は、免疫関連有害事象(irAEs)の発生をもたらさないことから、既存のCTLA-4/PD-1に対する免疫チェックポイント阻害剤と比較して、安全性がより高いと考えられた。
CLEC4Aはがん免疫(自己免疫)応答を制御する「免疫チェックポイント分子」であり、免疫チェックポイント阻害作用を有する抗体#1~#4は、免疫チェックポイント阻害剤としてのがん免疫治療法への応用に有望である。CLEC4A機能阻害抗体#1~#4は、CTLA-4/PD-1系に対する既存の免疫チェックポイント阻害剤とは異なる作用機序により免疫チェックポイント阻害を引き起こすことから、既存の免疫チェックポイント阻害剤による不応答性や耐性獲得を示すがん種に対しても、有効な抗腫瘍効果を期待できる。
CLEC4A is an "immune checkpoint molecule" that controls cancer immune (autoimmune) responses, and
[実施例8]
1)担がんマウスにおけるCLEC4A機能阻害抗体及び抗PD-1中和抗体のがん進展抑制効果
野生型マウス(WT; C57BL/6)及び実施例6で樹立したCLEC4A発現トランスジェニックマウス(CLEC4A Tg)の背部に、卵白アルブミン(OVA)を発現する組換え悪性黒色腫細胞株(B16-OVAメラノーマ; Brown DM, et al., Immunology. (2001) 102:486-497)を皮下移植(1x105細胞/1匹)することにより、担がんマウス(担がんCLEC4A発現トランスジェニックマウス)を作製した。
[Example 8]
1) Effect of suppressing cancer progression of CLEC4A function-inhibiting antibodies and anti-PD-1 neutralizing antibodies in tumor-bearing mice Wild-type mice (WT; C57BL/6) and CLEC4A-expressing transgenic mice established in Example 6 (CLEC4A Tg A recombinant malignant melanoma cell line (B16-OVA melanoma; Brown DM, et al., Immunology. (2001) 102:486-497) expressing ovalbumin (OVA) was subcutaneously implanted (1x10 5 Tumor-bearing mice (tumor-bearing CLEC4A-expressing transgenic mice) were generated by cell/1 mouse).
担がんCLEC4A発現トランスジェニックマウスの腫瘍体積が約100m3に達した後(がん細胞移植の8日後)、(i)対照マウスIgG抗体(cont. Ig(Sigma-Aldrich); 100μg/1匹)、(ii)CLEC4A機能阻害抗体(抗体#1; 100μg/1匹)、(iii)抗PD-1中和抗体(クローン29F.1A12(Biolegend); 200μg/1匹)、又は(iv)CLEC4A機能阻害抗体(抗体#1; 100μg/1匹)と抗PD-1中和抗体(クローン29F.1A12(Biolegend); 200μg/1匹)の組み合わせ、を3日間隔で計5回、腹腔内投与した。対照として、担がんマウスに何も投与しない未処理群も用意した。がんの進展は、担がんマウスの腫瘍体積をがん細胞移植の21日後まで毎日、デジタルキャリパー(Digimatic Caliper, Mitutoyo)を用いて測定し、それを指標として評価した。
After the tumor volume of tumor-bearing CLEC4A-expressing transgenic mice reached approximately 100 m3 (8 days after cancer cell transplantation), (i) control mouse IgG antibody (cont. Ig (Sigma-Aldrich); 100 μg/mouse ), (ii) CLEC4A function-inhibiting antibody (
がん細胞移植の21日後、がん進展評価を行った後に担がんマウスを安楽死させ、担がんマウスから皮膚組織、肺組織、肝臓組織、及び小腸組織を採取し、4%パラホルムアルデヒド-リン酸緩衝食塩水で固定した後、パラフィンに包埋した。さらに、それらのパラフィン包埋組織を薄切後、組織切片(5μm厚)を作製し、ヘマトキシリン・エオジン染色を行った。 21 days after cancer cell transplantation, the tumor-bearing mice were euthanized after cancer progression was evaluated, and skin tissue, lung tissue, liver tissue, and small intestine tissue were collected from the tumor-bearing mice and treated with 4% paraformaldehyde. -Fixed in phosphate buffered saline and embedded in paraffin. Furthermore, after slicing these paraffin-embedded tissues, tissue sections (5 μm thick) were prepared and stained with hematoxylin and eosin.
図18に組織染色の結果を示す。担がんCLEC4A発現トランスジェニックマウスにおいて、未処理や対照マウスIgG抗体(cont. Ig)の投与と比較しても、CLEC4A機能阻害抗体(抗体#1)の投与は、皮膚、肺、肝臓、及び小腸において組織傷害を引き起こさなかった(図18)。CLEC4A機能阻害抗体は、実施例7で示したように体重減少等の免疫関連有害事象(irAEs)をもたらさないことに加えて、組織傷害を指標とする免疫関連有害事象(irAEs)の発生ももたらさないことから、高い安全性に資することが示された。The results of tissue staining are shown in Figure 18. In tumor-bearing CLEC4A-expressing transgenic mice, administration of the CLEC4A function-blocking antibody (antibody #1) did not cause tissue damage in the skin, lungs, liver, or small intestine, even when compared with untreated mice or administration of a control mouse IgG antibody (cont. Ig) (Figure 18). As shown in Example 7, the CLEC4A function-blocking antibody does not cause immune-related adverse events (irAEs), such as weight loss, and does not cause immune-related adverse events (irAEs) indicated by tissue damage, demonstrating its high safety.
図19に、がん進展評価の結果を示す。図19Aはがん細胞移植後21日間の担がんマウス腫瘍体積の経時変化を示す。図19Bはがん細胞移植の21日後の担がんマウスにおける腫瘍体積を示し、図19Cはがん細胞移植の21日後の担がんマウス及び摘出した腫瘍の写真を示す。未処理や対照マウスIgG抗体(cont. Ig)の投与と比較して、CLEC4A機能阻害抗体(抗体#1)の単独投与は、顕著ながん進展抑制効果を示し、また、抗PD-1中和抗体(クローン29F.1A12)の単独投与と比較してもさらに高いがん進展抑制効果を示した(図19A~C)。さらに、CLEC4A機能阻害抗体(抗体#1)と抗PD-1中和抗体(クローン29F.1A12)との併用投与は、CLEC4A機能阻害抗体(抗体#1)の単独投与と比較しても、より強力ながん進展抑制効果を示した(図19A~C)。CLEC4A機能阻害抗体と、T細胞に発現する免疫チェックポイント分子PD-1に対する抗PD-1中和抗体の併用は、より強力ながん治療効果を有することが示された。この結果から、CLEC4A機能阻害抗体と、T細胞に発現する免疫チェックポイント分子に対する阻害剤の併用は、相乗的ながん治療効果をもたらすことが示された。
Figure 19 shows the results of cancer progression evaluation. FIG. 19A shows the time course of tumor volume in tumor-bearing
2)担がんマウスにおけるCLEC4A機能阻害抗体及び抗PD-1中和抗体のがん組織浸潤免疫細胞制御効果とがん微小環境制御効果
実施例6で樹立したCLEC4A発現トランスジェニックマウス(CLEC4A Tg)の背部に、卵白アルブミン(OVA)を発現する組換え悪性黒色腫細胞株(B16-OVAメラノーマ; Brown DM, et al., Immunology. (2001) 102:486-497)を皮下移植(1x105細胞/1匹)することにより、担がんマウス(担がんCLEC4A発現トランスジェニックマウス)を作製した。
2) Effect of CLEC4A function-inhibiting antibody and anti-PD-1 neutralizing antibody on cancer tissue-infiltrating immune cells and cancer microenvironment control in tumor-bearing mice CLEC4A-expressing transgenic mouse (CLEC4A Tg) established in Example 6 A recombinant malignant melanoma cell line (B16-OVA melanoma; Brown DM, et al., Immunology. (2001) 102:486-497) expressing ovalbumin (OVA) was subcutaneously implanted (1x10 5 cells) on the back of the patient. /1 mouse) to generate tumor-bearing mice (tumor-bearing CLEC4A-expressing transgenic mice).
担がんCLEC4A発現トランスジェニックマウスの腫瘍体積が約100m3に達した後(がん細胞移植の8日後)、(i)対照マウスIgG抗体(cont. Ig(Sigma-Aldrich); 100μg/1匹)、(ii)CLEC4A機能阻害抗体(抗体#1; 100μg/1匹)、(iii)抗PD-1中和抗体(クローン29F.1A12(Biolegend); 200μg/1匹)、又は(iv)CLEC4A機能阻害抗体(抗体#1; 100μg/1匹)と抗PD-1中和抗体(クローン29F.1A12(Biolegend); 200μg/1匹)の組み合わせ、を3日間隔で計5回、腹腔内投与した。対照として、担がんマウスに何も投与しない未処理群も用意した。
After the tumor volume of tumor-bearing CLEC4A-expressing transgenic mice reached approximately 100 m3 (8 days after cancer cell transplantation), (i) control mouse IgG antibody (cont. Ig (Sigma-Aldrich); 100 μg/mouse ), (ii) CLEC4A function-inhibiting antibody (
上記1)でがん進展評価試験を行った担がんCLEC4A発現トランスジェニックマウスから、がん細胞移植の21日後に摘出した腫瘍より、がん組織を採取し組織中の細胞を取得した。 Cancer tissue was collected from a tumor excised 21 days after cancer cell transplantation from a tumor-bearing CLEC4A-expressing transgenic mouse that underwent the cancer progression evaluation test in 1) above, and cells within the tissue were obtained.
がん組織中の免疫細胞動態を調べるため、取得した細胞についてがん浸潤白血球中の各免疫細胞の割合をフローサイトメトリー法により解析した。図20Aに、各細胞表面分子の発現をドットプロットで示す。 In order to investigate immune cell dynamics in cancer tissues, the percentage of each immune cell in cancer-infiltrating leukocytes was analyzed using flow cytometry. Figure 20A shows the expression of each cell surface molecule as a dot plot.
担がんCLEC4A発現トランスジェニックマウスにおいて、未処理やコントロールマウスIgGの投与と比較して、CLEC4A機能阻害抗体(抗体#1)の単独投与や抗PD-1中和抗体(クローン29F.1A12)の単独投与では、がん組織におけるGr1-1+CD11b+F4/80+骨髄由来抑制細胞(MDSCs)の集積抑制がもたらされることが示された(図20A)。また、CLEC4A機能阻害抗体(抗体#1)の単独投与や抗PD-1中和抗体(クローン29F.1A12)の単独投与では、CD11c+SiglecH-cDCs(通常型樹状細胞)、CD11clowSiglecH+pDCs(形質細胞様樹状細胞)、NK1.1+NK細胞、がん組織(腫瘍)浸潤CD4+TILs/CD8+TILsのがん組織における集積亢進が認められた(図20A)。 In tumor-bearing CLEC4A-expressing transgenic mice, administration of CLEC4A function-inhibiting antibody (antibody #1) alone or anti-PD-1 neutralizing antibody (clone 29F.1A12) compared to untreated or administration of control mouse IgG. It was shown that single administration suppressed the accumulation of Gr1-1 + CD11b + F4/80 + myeloid-derived suppressor cells (MDSCs) in cancer tissues (FIG. 20A). In addition, single administration of CLEC4A function-inhibiting antibody (antibody #1) or anti-PD-1 neutralizing antibody (clone 29F.1A12) showed that CD11c + SiglecH - cDCs (conventional dendritic cells), CD11c low SiglecH + Increased accumulation of pDCs (plasmacytoid dendritic cells), NK1.1 + NK cells, and cancer tissue (tumor)-infiltrating CD4 + TILs/CD8 + TILs in cancer tissues was observed (FIG. 20A).
さらに、がん組織における免疫抑制分子発現状態を調べるため、がん細胞移植の21日後のがん組織における各免疫抑制分子の発現を定量的PCR(RT-PCR)法により解析した。がん組織から取得した細胞より、RNeasy plus micro kit(Qiagen)を用いて全RNAを調製した後、全RNAを鋳型としてoligo(dT)20プライマーを用いてPrimeScript RT reagent kit(Takara)を用いてcDNAを合成した。定量的PCRは、各免疫抑制分子に特異的な以下のプライマーセットとSYBR(R) Premix Ex Taq II(Takara)を用いて、Thermal Cycler Dice(Takara)により行った。定量的PCRにより得られた各免疫抑制分子の発現レベルは、参照遺伝子グリセルアルデヒドリン酸デヒドロゲナーゼ遺伝子(gapdh)の発現レベルに対して標準化した。
Furthermore, to examine the expression status of immunosuppressive molecules in cancer tissues, the expression of each immunosuppressive molecule in
a) IL-10遺伝子特異的プライマーセット(il10):
5'-TGCAGCAGCTCAGAGGGTT-3'(配列番号33)
5'-TGGCCACAGTTTTCAGGGAT-3'(配列番号34)
b) TGF-β遺伝子特異的プライマーセット(tgfb):
5'-ACCATGCCAACTTCTGTCTG-3'(配列番号35)
5'-CGGGTTGTGTTGGTTGTAGA-3'(配列番号36)
c) IDO遺伝子特異的プライマーセット(ido):
5'-TCGGAAGAGCCCTCAAATGTGGAA-3'(配列番号37)
5'-TGGAGCTTGCTACACTAAGGCCAA-3'(配列番号38)
d) アルギナーゼ遺伝子特異的プライマーセット(ariginase):
5'-AAGACAGCAGAGGAGGTGAAG-3'(配列番号39)
5'-TAGTCAGTCCCTGGCTTATGG-3'(配列番号40)
e) iNOS遺伝子特異的プライマーセット(inos):
5'-AACAATTCCTGGCGTTACCTT-3'(配列番号41)
5'-TGTATTCCGTCTCCTTGGTTC-3'(配列番号42)
f) COX-2遺伝子特異的プライマーセット(cox2):
5'-TGGGTGTGAAGGGAAATAAGG-3'(配列番号43)
5'-CATCATATTTGAGCCTTGGGG-3'(配列番号44)
g) mPGES遺伝子特異的プライマーセット(mpges):
5'-AGGATGCGCTGAAACGTGGAG-3'(配列番号45)
5'-CCGAGGAAGAGGAAAGGATAG-3'(配列番号46)
h) GAPDH遺伝子特異的プライマーセット(gapdh):
5'-AAATTCAACGGCACAGTCAAG-3'(配列番号47)
5'-TGGTGGTGAAGACACCAGTAG-3'(配列番号48)
a) IL-10 gene specific primer set (il10):
5'-TGCAGCAGCTCAGAGGGTT-3' (SEQ ID NO: 33)
5'-TGGCCACAGTTTTCAGGGAT-3' (SEQ ID NO: 34)
b) TGF-β gene specific primer set (tgfb):
5'-ACCATGCCAACTTCTGTCTG-3' (SEQ ID NO: 35)
5'-CGGGTTGTGTTGGTTGTAGA-3' (SEQ ID NO: 36)
c) IDO gene-specific primer set (ido):
5'-TCGGAAGAGCCCTCAAATGTGGAA-3' (SEQ ID NO: 37)
5'-TGGAGCTTGCTACACTAAAGGCCAA-3' (SEQ ID NO: 38)
d) Arginase gene-specific primer set (ariginase):
5'-AAGACAGCAGAGGAGGTGAAG-3' (SEQ ID NO: 39)
5'-TAGTCAGTCCCTGGCTTATGG-3' (SEQ ID NO: 40)
e) iNOS gene specific primer set (inos):
5'-AACAATTCCTGGCGTTACCTT-3' (SEQ ID NO: 41)
5'-TGTATTCCGTCTCCTTGGTTC-3' (SEQ ID NO: 42)
f) COX-2 gene specific primer set (cox2):
5'-TGGGTGTGAAGGGAAATAAGG-3' (SEQ ID NO: 43)
5'-CATCATATTTGAGCCTTGGGG-3' (SEQ ID NO: 44)
g) mPGES gene specific primer set (mpges):
5'-AGGATGCGCTGAAAACGTGGAG-3' (SEQ ID NO: 45)
5'-CCGAGGAAGAGGAAAGGATAG-3' (SEQ ID NO: 46)
h) GAPDH gene specific primer set (gapdh):
5'-AAATTCAACGGCACAGTCAAG-3' (SEQ ID NO: 47)
5'-TGGTGGTGAAGACACCAGTAG-3' (SEQ ID NO: 48)
解析結果を図20Bに示す。担がんCLEC4A発現トランスジェニックマウスにおいて、未処理や対照マウスIgGの投与と比較して、CLEC4A機能阻害抗体(抗体#1)の単独投与は、がん組織において、いずれも免疫抑制分子であるIL(インターロイキン)-10、IDO(インドールアミン2,3-ジオキシゲナーゼ)、アルギナーゼ、及びmPGES(膜関連プロスタグランジンE2シンターゼ)の発現を抑制した。また抗PD-1中和抗体(クローン29F.1A12)の単独投与は、未処理や対照マウスIgGの投与と比較して、いずれも免疫抑制分子であるIL-10、IDO、アルギナーゼ、COX(シクロオキシゲナーゼ)-2、及びmPGESの発現を抑制した。そして、CLEC4A機能阻害抗体(抗体#1)と抗PD-1中和抗体(クローン29F.1A12)との併用投与は、TGF(トランスフォーミング増殖因子)-βとiNOS(誘導型一酸化窒素合成酵素)の発現を抑制し、IL-10、IDO、アルギナーゼ、COX-2、及びmPGESの発現に対し、それぞれの単独投与と比較してもより強力な抑制効果を示した。
The analysis results are shown in FIG. 20B. In tumor-bearing CLEC4A-expressing transgenic mice, single administration of the CLEC4A function-inhibiting antibody (antibody #1) increased IL, an immunosuppressive molecule, in cancer tissue compared to untreated or administration of control mouse IgG. (interleukin)-10, IDO (
以上の結果から、CLEC4A機能阻害抗体はがん組織における免疫抑制分子の発現を抑制すること、さらに、CLEC4A機能阻害抗体とT細胞に発現する免疫チェックポイント分子PD-1に対する阻害剤である抗PD-1中和抗体の併用は、より強力に免疫抑制分子の発現を抑制することが示された。 From the above results, we found that CLEC4A function-inhibiting antibodies suppress the expression of immunosuppressive molecules in cancer tissues, and that CLEC4A function-inhibiting antibodies and anti-PD, an inhibitor of PD-1, an immune checkpoint molecule expressed in T cells. The combination of -1 neutralizing antibody was shown to suppress the expression of immunosuppressive molecules more strongly.
CLEC4A機能阻害抗体や抗PD-1中和抗体の投与は、がん微小環境制御効果をもたらし、特に、がん組織における免疫抑制分子の発現を抑制し、がん微小環境において免疫寛容原性を抑制してがん細胞(腫瘍)の免疫原性を誘導することにより、がん微小環境を改善し、がん免疫応答を増強すると考えられた。さらに、CLEC4A機能阻害抗体とT細胞に発現する免疫チェックポイント分子に対する阻害剤などの免疫チェックポイント阻害剤の併用は、異なる免疫細胞系の免疫チェックポイント分子の機能を阻害し、がん微小環境を免疫寛容原性から免疫原性により強力に改善(誘導)することにより、相乗的ながん治療効果をもたらすことができるといえる。 Administration of CLEC4A function-inhibiting antibodies and anti-PD-1 neutralizing antibodies has the effect of controlling the cancer microenvironment, and in particular suppresses the expression of immunosuppressive molecules in cancer tissues and suppresses immune tolerogenicity in the cancer microenvironment. It was thought that by suppressing and inducing immunogenicity of cancer cells (tumors), it would improve the cancer microenvironment and enhance the cancer immune response. Furthermore, the combination of CLEC4A function-blocking antibodies and immune checkpoint inhibitors, such as inhibitors of immune checkpoint molecules expressed on T cells, inhibits the function of immune checkpoint molecules in different immune cell lineages and disrupts the cancer microenvironment. It can be said that a synergistic cancer therapeutic effect can be brought about by strongly improving (inducing) immunogenicity from tolerogenicity.
本発明は、免疫チェックポイント分子であるCLEC4Aの機能阻害を介して免疫チェックポイント阻害を効果的に誘導し、抗腫瘍免疫応答を活性化することができ、かつ安全性も高い、新たながん治療手段として用いることができる。 The present invention provides a novel cancer therapy that can effectively induce immune checkpoint inhibition through functional inhibition of the immune checkpoint molecule CLEC4A, activate antitumor immune responses, and is highly safe. It can be used as a therapeutic tool.
本明細書で引用した全ての刊行物、特許及び特許出願はそのまま引用により本明細書に組み入れられるものとする。 All publications, patents, and patent applications cited herein are incorporated by reference in their entirety.
配列番号1:全長CLEC4Aコード配列
配列番号2:全長CLEC4Aタンパク質
配列番号3:ITIM(I5-V10)欠損変異体コード配列
配列番号4:ITIM(I5-V10)欠損変異体
配列番号5:細胞外領域(F69-L237)欠損変異体コード配列
配列番号6:細胞外領域(F69-L237)欠損変異体
配列番号7:CRD-EPS(E195-S197)欠損変異体コード配列
配列番号8:CRD-EPS(E195-S197)欠損変異体
配列番号9:N185Q変異体コード配列
配列番号10:N185Q変異体
配列番号11:BamHI及びXhoI部位付加配列
配列番号12:CLEC4A細胞外領域(F69-L237)
配列番号13:CLEC4A ITIM配列(I5-V10)
配列番号14:OVA257-264ペプチド
配列番号15:抗体#1結合配列
配列番号16:抗体#2及び#3結合配列
配列番号17:抗体#2結合配列
配列番号18:抗体#3結合配列
配列番号19:抗体#4結合配列
配列番号20:ClaI部位付加断片
配列番号21:CLEC4A F113-H192
配列番号22~32:合成ペプチド
配列番号33~48:プライマー
SEQ ID NO: 1: Full-length CLEC4A coding sequence SEQ ID NO: 2: Full-length CLEC4A protein SEQ ID NO: 3: ITIM (I5-V10) deletion mutant coding sequence SEQ ID NO: 4: ITIM (I5-V10) deletion mutant SEQ ID NO: 5: Extracellular region (F69-L237) deletion mutant coding sequence SEQ ID NO: 6: Extracellular region (F69-L237) deletion mutant SEQ ID NO: 7: CRD-EPS (E195-S197) deletion mutant coding sequence SEQ ID NO: 8: CRD-EPS( E195-S197) deletion mutant SEQ ID NO: 9: N185Q variant coding sequence SEQ ID NO: 10: N185Q variant SEQ ID NO: 11: BamHI and XhoI site addition sequence SEQ ID NO: 12: CLEC4A extracellular region (F69-L237)
Sequence number 13: CLEC4A ITIM sequence (I5-V10)
SEQ ID NO: 14: OVA257-264 peptide SEQ ID NO: 15:
SEQ ID NO: 22-32: Synthetic peptide SEQ ID NO: 33-48: Primer
Claims (12)
前記抗体又はその抗原結合性断片が:
(i)ヒトCLEC4Aタンパク質の細胞外領域内の配列番号21で示されるアミノ酸配列からなる領域に特異的に結合するか、又は
(ii)アミノ酸配列KKNMPVEETAWSCC(配列番号19)からなるペプチド断片に特異的に結合する、
抗腫瘍薬。 An antitumor drug for activating an antitumor immune response based on immune checkpoint inhibition, which specifically binds to the extracellular region of human CLEC4A protein and has an immune checkpoint inhibitory effect or its antigen binding Contains sexual fragments,
The antibody or antigen-binding fragment thereof:
(i) specifically binds to the region consisting of the amino acid sequence shown by SEQ ID NO: 21 in the extracellular region of human CLEC4A protein, or (ii) specifically binds to the peptide fragment consisting of the amino acid sequence KKNMPVEETAWSCC (SEQ ID NO: 19) join to,
Antitumor drug.
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