JP7367038B2 - Ｌｐａ１受容体のイメージングのための放射性リガンド - Google Patents

Description

関連出願の相互参照
本願は、米国特許仮出願第６２／７４５，５２４号（２０１８年１０月１５日出願）の優先権の利益を主張し、その全体的な内容が引用によって本明細書に援用される。

本発明は、新規な放射性標識リゾホスファチジン酸（ＬＰＡ）受容体１アンタゴニスト、および哺乳動物におけるＬＰＡ１受容体の標識および診断イメージングにおける使用に関する。

陽電子放出断層撮影（ＰＥＴ）は、生きている対象における生物学的プロセスについての機能的な情報を提供することができる、非侵襲性イメージング技術である。インビボ分子の事象をイメージングおよびモニターすることのできる能力は、生きている生物における生化学的および生理学的プロセスについての洞察を得るために大きな価値がある。これは同様に、疾患の治療、疾患の早期発見、および新薬の設計のための新たなアプローチの開発に重要である。ＰＥＴは、陽電子放出放射性同位体によって標識された分子の設計および合成に依存する。これらの分子は、放射性トレーサーまたは放射性リガンドとして既知である。ＰＥＴイメージングにおいて、最も一般的に用いられる陽電子放出（ＰＥＴ）放射性核種は^１１Ｃ、^１８Ｆ、^１５Ｏ、および^１３Ｎであり、これらは全てサイクロトロンによって製造され、それぞれ２０、１１０、２、および１０分の半減期を有する。陽電子放出放射性核種によって放射性標識された後、これらのＰＥＴ放射性リガンドは、一般に静脈内（ｉ．ｖ．）注射によって、哺乳動物に投与される。体内に入ると、放射性リガンドが崩壊するにつれ陽電子が放出され、これが電子と結合するまで短い距離を移動する。消滅事象として知られている事象が次に生じ、これによってそれぞれ５１１ｋｅＶのエネルギーを有する２つの共線光子が生じる。放射性リガンドから放出されるガンマ線を検出することができるＰＥＴイメージングスキャナーを用いると、平面および断層画像によって、放射性トレーサーの分布が時間の関数として明らかになる。ＰＥＴ放射性リガンドは、ヒト受容体への標的結合、および用量依存性受容体占有率に関する、有用なインビボ情報を提供する。

特発性肺線維症（ＩＰＦ）は、肺における瘢痕組織の存在、息切れ、および慢性乾性咳によって特徴付けられる、慢性疾患である。ＩＰＦは、間質性肺疾患（ＩＬＤ）として知られる肺疾患のファミリーに属し、通常の間質性肺線維症（ＵＩＰ）として知られる病理学的パターンに関連する。ゆっくりと進行する疾患（最も一般的）、一時的な急性憎悪を特徴とする疾患、または急速に進行する疾患など、ＩＰＦについてのいくつかの潜在的な臨床経過が存在する。診断時からの生存期間の中央値は、２から５年の間である。現在ＩＰＦの治療は存在せず、利用可能な治療の選択肢は非常に限定されており、望ましくない副作用がある。ＩＰＦの病因は不明であるが、仮説の１つは、上皮性細胞への最初の損傷が、リゾホスファチジン酸（ＬＰＡ）の生成を増加させるというものである。ＬＰＡは、細胞機能の様々な局面を制御する生理活性リン脂質であり、創傷治癒および組織線維症の新規なメディエーターとして認識されている。ＬＰＡは、ＬＰＡ受容体を介して生物学的効果を仲介し、そのうち少なくとも６個のアイソフォームが特定されている。最近の研究では、ＬＰＡ１アイソフォームが肺線維症の病因に関連づけられており、ＬＰＡ１受容体がＩＰＦの潜在的な臨床標的として特定されている。いくつかの発見によって、内皮バリアの崩壊、炎症、および線維芽細胞の動員／増殖をもたらす、ＬＰＡ１受容体を活性化するＩＰＦにおいて、ＬＰＡ／ＬＰＡ１経路の役割が支持される。ＬＰＡは、ＩＰＦ患者の気管支肺胞洗浄（ＢＡＬ）において増加する。ＬＰＡ濃度は、ＩＰＦを有するヒトのＢＡＬ液（ＢＡＬＦ）において増加し、ＬＰＡ１拮抗作用によって、ＩＰＦ ＢＡＬＦによって誘導される線維芽細胞の移動が阻害される。また、ＬＰＡ１受容体欠損ノックアウトマウスは、線維症のブレオマイシンモデルにおいて、肺の血管漏出の減少およびコラーゲン蓄積の減少を示す。これらのデータに基づいて、ＬＰＡ１シグナル伝達は、血管漏出の誘導および線維芽細胞移動の刺激を介して、少なくとも部分的には、肺線維症の進行に寄与すると考えられている。

ＬＰＡ１受容体に高い親和性を有する特定のＰＥＴ放射性リガンドを、補助的なイメージング技術と組み合わせて用いることで、ヒト肺ＬＰＡ１、または腎臓、肝臓、心臓、もしくは皮膚などの他の臓器におけるＬＰＡ１において、ＬＰＡ１アンタゴニストの標的結合および用量／占有率の関係の両方に関する、臨床的な進展のための方法が提供されうる。本明細書に記載される発明は、インビトロおよびインビボの両方における診査および診断イメージング応用、並びに放射性標識および非標識ＬＰＡ１アンタゴニストを用いた競合試験に有用でありうる、放射性標識ＬＰＡ１アンタゴニストに関する。

米国特許出願公開第２０１７／０３６０７５９号（ＰＣＴ出願公開第ＷＯ２０１７／２２３０１６号）は、肺などの様々な臓器の線維症などの、ＬＰＡ依存性またはＬＰＡ介在性病状または疾患の治療に用いるための、リゾホスファチジン酸受容体のいくつかのアゴニストを開示する。

本開示は、部分的に、放射性標識されたリゾホスファチジン酸（以後「ＬＰＡ１」）受容体アンタゴニストが、哺乳動物種の組織において、ＬＰＡ１受容体、および／またはＬＰＡ１発現、および／またはＬＰＡ１受容体を占有するための化合物の親和性の、検出および／または定量および／またはイメージングにおいて有用であるという認識に基づく。放射性同位体標識されたＬＰＡ１受容体アンタゴニストは、哺乳動物種に投与された場合、ＬＰＡ１受容体において蓄積するか、またはＬＰＡ１受容体を占有し、イメージング技術によって検出することができ、それによってＬＰＡ１受容体の存在、ＬＰＡ１受容体の占有についての化合物の親和性、およびＬＰＡ１受容体アンタゴニストの臨床的評価および用量選択についての、重要な診断マーカーを提供することが分かっている。さらに、本明細書に開示される、放射性標識ＬＰＡ１受容体アンタゴニストは、受容体への結合について、非標識薬物と放射性標識薬物との競合によって、非標識ＬＰＡ１受容体アンタゴニストの、インビボでのＬＰＡ１受容体との相互作用を研究するための研究ツールとして用いることができる。これらの種類の研究は、ＬＰＡ１受容体占有率と、非標識のＬＰＡ１受容体アンタゴニストの用量との関係を決定すること、並びに、様々な用量の非標識ＬＰＡ１受容体アンタゴニストによる、受容体の遮断期間を研究することに有用である。

臨床ツールとして、放射性標識ＬＰＡ１受容体アンタゴニストを用いて、ＬＰＡ１受容体アンタゴニストの臨床的に効果的な用量を定義するのに役立てることができる。動物実験において、放射性標識ＬＰＡ１受容体アゴニストを用いて、臨床開発のための選択のための潜在的な薬物候補からの選択に有用な情報を提供することができる。また、放射性標識ＬＰＡ１受容体アンタゴニストを用いて、ヒトおよび動物の生きている肺組織、並びに腎臓、心臓、肝臓、および皮膚などの他の組織、並びに組織サンプルにおいて、ＬＰＡ１受容体の局所分布および濃度を研究することができる。それらは、ＬＰＡ１受容体濃度の変化に薬理学的に関連する、疾患の研究に用いることができる。

本発明は、式（Ｉ）：

［式中、
Ｒ^２およびＲ^３は独立して、Ｃ_１－４アルキルであり；
Ｒ^５は独立して、Ｆ、Ｃｌ、Ｃ_１－４アルキル、またはＣ_１－４ハロアルキルであり；
ｎは独立して、０、１、２、または３である。］
で示される放射性標識化合物、またはその薬学的に許容可能な塩を提供する。

本発明のある実施態様において、以下の式（Ｉａ）：

で示される放射性標識化合物、またはその薬学的に許容可能な塩が提供される。

本発明の別の実施態様において、以下の式（ＩＩａ）：

で示される放射性標識化合物、またはその薬学的に許容可能な塩が提供される。

本発明のある実施態様によれば、医薬および診断組成物が提供される。そのような医薬および診断組成物は、放射性標識された式（Ｉ）、（Ｉａ）、または（ＩＩａ）の化合物、またはその薬学的に許容可能な塩；およびその薬学的に許容可能な担体を含む。ある実施態様において、放射性標識された式（Ｉ）、（Ｉａ）、または（ＩＩａ）の化合物、またはその薬学的に許容可能な塩はそれぞれ、医薬および診断組成物中に、治療上の有効量および診断上の有効量で存在する。

ある実施態様において、本発明は、以下のステップ：
（ａ）放射性標識された式（Ｉ）、（Ｉａ）、または（ＩＩａ）の化合物、またはその薬学的に許容可能な塩を、哺乳動物種に投与すること；および
（ｂ）陽電子放出断層撮影（ＰＥＴ）スキャンによって、放射性標識化合物のインビボ分布をイメージングすること
を含む、哺乳動物組織の既知のＬＰＡ１発現のインビボイメージング方法を提供する。

別の実施態様において、本発明は、以下のステップ：
（ａ）放射性標識された式（Ｉ）、（Ｉａ）、または（ＩＩａ）の化合物、またはその薬学的に許容可能な塩を、哺乳動物種に投与すること；
（ｂ）陽電子放出断層撮影（ＰＥＴ）によって、組織の既知のＬＰＡ１発現をインビボイメージングして、放射性標識化合物のベースライン取り込みを決定すること；
（ｃ）非放射性標識化合物、またはその薬学的に許容可能な塩を、哺乳動物種に投与すること；
（ｄ）放射性標識された式（Ｉ）、（Ｉａ）、または（ＩＩａ）の化合物、またはその薬学的に許容可能な塩の第二用量を、哺乳動物種に投与すること；
（ｅ）ＬＰＡ１受容体を発現している組織において、放射性標識された式（Ｉ）、（Ｉａ）、または（ＩＩａ）の化合物の分布をインビボイメージングすること；
（ｆ）ＬＰＡ１を発現する組織中のベースラインにおけるＰＥＴスキャンデータからのシグナルを、ＬＰＡ１受容体を発現する組織中の非放射性標識化合物を投与した後に得られるＰＥＴスキャンデータと比較すること
を含む、哺乳動物組織におけるＬＰＡ１受容体の結合部位の占有について親和性を決定するための、非放射性標識化合物のスクリーニング方法を提供する。

別の実施態様において、本発明は、以下のステップ：
（ａ）放射性標識された式（Ｉ）、（Ｉａ）、または（ＩＩａ）の化合物、またはその薬学的に許容可能な塩を患者に投与すること；
（ｂ）ＬＰＡ１受容体を発現する患者における組織の画像を、陽電子放出断層撮影（ＰＥＴ）によって取得すること；および
（ｃ）放射性標識化合物がＬＰＡ１受容体の結合部位をどの程度占有しているかを検出すること
を含む、ＬＰＡ１受容体アンタゴニストで処理された哺乳動物患者の治療をモニターするための方法を提供する。

別の実施態様において、本発明は、以下のステップ：
ＬＰＡ１受容体を含む組織を、式（Ｉ）、（Ｉａ）、または（ＩＩａ）で示される放射性標識化合物、またはその薬学的に許容可能な塩と接触させること；および
陽電子放出断層撮影（ＰＥＴ）イメージングを用いて、放射性標識化合物を検出すること
を含む、組織イメージング方法を提供する。そのような方法において、放射性標識化合物は、インビトロまたはインビボのいずれかで検出することができる。

別の実施態様において、本発明は、以下のステップ：
（ａ）線維性疾患の存在に関連するＬＰＡ１受容体に結合する、式（Ｉ）、（Ｉａ）、または（ＩＩａ）で示される放射性標識化合物、またはその薬学的に許容可能な塩を、必要な哺乳動物種に投与すること；および
（ｂ）哺乳動物種の少なくとも一部の放射線画像を得て、放射性標識化合物の存在または非存在を検出すること
を含む、哺乳動物種における線維性疾患の存在を診断するための方法であって、バックグラウンドを超える放射性標識化合物の存在および位置は、線維性疾患の存在または非存在を示す方法を提供する。

別の実施態様において、本発明は、以下のステップ：
（ａ）線維性疾患の存在に関連するＬＰＡ１受容体に結合する、式（Ｉ）、（Ｉａ）、または（ＩＩａ）で示される放射性標識化合物、またはその薬学的に許容可能な塩を、必要な哺乳動物種に投与すること；
（ｂ）哺乳動物種の放射性標識化合物の放射性放出を検出すること；
（ｃ）哺乳動物種の放射性標識化合物の放射性放出を、標準値と比較すること；および
（ｄ）哺乳動物種について検出された放射性放出を、標準値と比較して任意の有意な偏差があることを見出し、偏差を線維性疾患に帰すること
を含む、哺乳動物種における線維性疾患、例えば、特発性肺線維症の存在を診断するための方法を提供する。

別の実施態様において、本発明は、以下のステップ：
（ａ）疾患細胞または組織中に位置するＬＰＡ１受容体に結合する、式（Ｉ）、（Ｉａ）、または（ＩＩａ）で示される放射性標識化合物、またはその薬学的に許容可能な塩を、疾患細胞または組織を有する哺乳動物種に投与すること；および
（ｂ）疾患細胞または組織において、放射性標識化合物の放射性放出を検出すること
を含む、哺乳動物種において疾患細胞または組織を定量するための方法であって、疾患細胞または組織中の放射性放出の量および分布は、疾患細胞または組織を定量測定である方法を提供する。

別の実施態様において、本発明は、式（ＩＩｃ）のジアステレオマーを含む混合物から、炭酸カリウム、^１８Ｆ－フルオライド、および相間移動触媒、例えば、ｋｙｐｔｏｆｉｘ ２．２．を用いて、次いで水酸化ナトリウム中における鹸化反応を用いて、式（ＩＩａ）の好ましいジアステレオマーを分離するための方法を提供する。

図１は、^１８Ｆ－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸のセミ分取ＨＰＬＣクロマトグラムを表す。 図２は、^１８Ｆ－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸の分析ＨＰＬＣクロマトグラムを表す。 図３は、参照標準と共に注入した、^１８Ｆ－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸の分析キラルＨＰＬＣを表す。 図４は、ヒトＬＰＡ１を異種発現しているＣＨＯ細胞への、^１８Ｆ－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸の全細胞結合を表す。 図５は、野生型およびブレオマイシン処理ラットにおける、^１８Ｆ－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸の注射後６０－９０分後の、代表的なＰＥＴおよび透過スキャンの重ね合わせ合計画像を表す。

図６は、ラット肺における、^１８Ｆ－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸の置換率を、ＬＰＡ１アンタゴニストの事前投与の複数用量の関数として表したグラフを表す。 図７は、ベースライン、およびビヒクルまたは３、１０、および３０ｍｇ／ｋｇのＬＰＡ１アンタゴニストの投与の後の、カニクイサルにおける^１８Ｆ－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸の代表的なＰＥＴ／ＭＲＩ画像を表す。 図８は、ＬＰＡ１アンタゴニストまたはビヒクルによる処理の後の、カニクイサル肺組織における、^１８Ｆ－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸の置換率を表したグラフを表す。 図９は、^１８Ｆ－（１Ｒ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸のセミ分取ＨＰＬＣクロマトグラムを表す。

発明の詳細な説明
本発明は、式（Ｉ）：

［式中、
Ｒ^２およびＲ^３は独立して、Ｃ_１－４アルキルであり；
Ｒ^５は独立して、Ｆ、Ｃｌ、Ｃ_１－４アルキル、またはＣ_１－４ハロアルキルであり；
ｎは独立して、０、１、２、または３である。］
で示される放射性標識化合物、またはその薬学的に許容可能な塩を提供する。

ある実施態様において、本開示は、式（Ｉａ）：

で示される放射性化合物、またはその薬学的に許容可能な塩を提供する。

式（Ｉ）の立体異性体はまた、本発明の範囲内に含まれ、例えば、以下：

が挙げられる。

式（Ｉ）、（Ｉａ）、または（ＩＩａ）の化合物は、ＬＰＡ１受容体親和性を有する陽電子放出分子として有用な、放射性標識ＬＰＡ１受容体アンタゴニストである。本明細書において用いられる用語「放射性標識ＬＰＡ１受容体アンタゴニスト」は、式（Ｉ）、（Ｉａ）、または（ＩＩａ）の化合物、またはその薬学的に許容可能な塩をいう。

別の実施態様において、本開示は、放射性標識ＬＰＡ１受容体アンタゴニスト、すなわち式（Ｉ）、（Ｉａ）、または（ＩＩａ）の化合物、またはその薬学的に許容可能な塩、および薬学的に許容可能な担体を含む、ＬＰＡ１受容体イメージングのための、診断組成物を提供する。さらに別の実施態様において、本開示は、放射性標識ＬＰＡ１受容体アンタゴニスト、すなわち式（Ｉ）、（Ｉａ）、または（ＩＩａ）の化合物、またはその薬学的に許容可能な塩、および薬学的に許容可能な担体を含む、医薬組成物を提供する。さらに別の実施態様において、本開示は、哺乳動物組織の既知のＬＰＡ１発現のオートラジオグラフィー方法を提供し、これは放射性標識ＬＰＡ１受容体アンタゴニストを、哺乳動物種に投与するステップ、陽電子放出断層撮影によって組織の画像を取得するステップ、および組織における放射性標識化合物を検出して、前記組織のＬＰＡ１標的結合およびＬＰＡ１受容体占有率を決定するステップを含む。

放射性標識ＬＰＡ１受容体アンタゴニストは、適切な放射性核種によって標識されている場合、診断イメージング、基礎研究、および放射線治療応用などの、様々なインビトロおよび／またはインビボイメージング応用に、潜在的に有用である。可能な診断イメージングおよび放射性治療応用の具体的な例としては、哺乳動物、またはその臓器もしくは組織サンプルにおける、ＬＰＡ１受容体の位置、相対活性、および／または定量の決定；ＬＰＡ１受容体アンタゴニストのラジオイムノアッセイ；およびＬＰＡ１受容体の分布を決定するためのラジオオートグラフィーが挙げられる。

特に、当該放射性標識ＬＰＡ１受容体アンタゴニストは、生きているヒトおよび実験動物の肺、心臓、腎臓、肝臓、および皮膚、および他の臓器において、ＬＰＡ１受容体の陽電子放出断層（ＰＥＴ）イメージングに有用である。これらの放射性標識ＬＰＡ１受容体アンタゴニストは、非標識のＬＰＡ１受容体アンタゴニストとＬＰＡ１受容体のインビボでの相互作用を、受容体への結合についての、非標識薬物および放射性標識化合物の競合によって研究する、研究ツールとして用いられうる。このような種類の研究は、ＬＰＡ１受容体占有率と、非標識のＬＰＡ１受容体アンタゴニストの用量との関係を決定するため、並びに非標識のＬＰＡ１受容体アンタゴニストの様々な用量による、受容体の遮断期間を研究するために有用である。臨床ツールとして、放射性標識ＬＰＡ１受容体アンタゴニストを用いて、ＬＰＡ１受容体アンタゴニストの臨床的に有効な用量を定義する助けとなりうる。動物実験において、放射性標識ＬＰＡ１受容体アンタゴニストを用いて、臨床開発のための選択のための潜在的な薬物候補の選択に有用な情報を提供することができる。放射性標識ＬＰＡ１受容体アンタゴニストはまた、生きている実験動物および組織サンプル中の、ヒト肺、腎臓、肝臓、皮膚、心臓、および他の臓器におけるＬＰＡ１受容体の局所分布および濃度の研究にも用いられうる。放射性標識ＬＰＡ１受容体アンタゴニストはまた、ＬＰＡ１受容体濃度の変化に薬理学的に関連する疾患の研究に用いられうる。

例えば、当該放射性標識ＬＰＡ１受容体アンタゴニストなどの、陽電子放出断層撮影（ＰＥＴ）トレーサーを、現在利用可能なＰＥＴ技術と共に用いて、以下の情報を得ることができる：候補となるＬＰＡ１受容体アンタゴニストによる、受容体占有率の程度と、患者における臨床的効果の関係；長期臨床試験の開始前の、ＬＰＡ１受容体アンタゴニストの臨床試験のための用量選択；構造的に新規なＬＰＡ１受容体アンタゴニストの相対力価；ＬＰＡ１受容体アンタゴニストによる臨床的標的の治療中の、ＬＰＡ１受容体アンタゴニストの、インビボでのトランスポーター親和性および密度への影響の調査；特発性肺線維症、心線維症、または他の線維性疾患の有効な、および有効でない治療における、ＬＰＡ１受容体の密度および分布の変化。

当該放射性標識ＬＰＡ１受容体アンタゴニストは、ＬＰＡ１受容体のイメージングにおいて、またはＬＰＡ１受容体に関連する様々な障害に関する診断イメージングにおいて、有用性を有する。

本明細書において用いられる用語「線維症」または「線維性疾患」は、細胞および／またはフィブロネクチンおよび／またはコラーゲンの異常な蓄積、および／または増加した線維芽細胞の動員に関連する病状をいい、限定はされないが、特発性肺線維症、強皮症、および慢性腎症などの、心臓、腎臓、肝臓、関節、肺、胸膜組織、腹膜組織、皮膚、角膜、網膜、筋骨格、および消化管などの個々の臓器または組織の線維症が挙げられる。

線維症に関連する疾患、障害、または病状の例としては、限定されないが、線維症に関連する肺疾患、例えば、特発性肺線維症、リウマチ性関節炎、強皮症、狼瘡などの全身性炎症性疾患の二次的な肺線維症、特発性間質性肺炎、放射線誘導性線維症、慢性閉塞性肺疾患（ＣＯＰＤ）、慢性喘息、珪肺症、アスベスト誘導性肺または胸膜線維症、急性肺損傷、および急性呼吸窮迫症（細菌性肺炎誘導性、外傷誘導性、ウイルス肺炎誘導性、人工呼吸器誘導性、非肺敗血症誘導性、および吸引誘導性など）；傷害／線維症（腎線維症）に関連する慢性腎症、例えば、狼瘡および強皮症、糖尿病、糸球体腎炎、巣状分節性糸球体硬化症、ＩｇＡ腎症、高血圧、同種移植、およびアルポートなどの、全身性炎症疾患の二次的な糸球体腎炎；腸線維症、例えば、強皮症、および放射線誘導性腸線維症；肝線維症、例えば、硬変、アルコール誘導性肝線維症、非アルコール性脂肪肝炎（ＮＡＳＨ）、胆管傷害、原発性胆汁性肝硬変、感染またはウイルス誘導性肝線維症（例えば、慢性ＨＣＶ感染）、および自己免疫性肝炎；頭頸部線維症、例えば、放射性誘導性；角膜瘢痕、例えば、ＬＡＳＩＫ（レーザー角膜切削形成術）、角膜移植、および線維柱帯切除術；肥厚性瘢痕およびケロイド、例えば、熱傷誘導性または外科的；並びに、他の線維性疾患、例えば、サルコイドーシス、強皮症、脊髄傷害／線維症、骨髄線維症、血管性再狭窄、アテローム性動脈硬化症、動脈硬化症、ウェゲナー肉芽腫症、混合性結合組織疾患、およびペロニー病が挙げられる。

ＬＰＡ１受容体が関連しうる他の疾患、障害、または病状としては、アテローム性動脈硬化症、血栓症、心臓疾患、脈管炎、瘢痕組織形成、再狭窄、静脈炎、ＣＯＰＤ（慢性閉塞性肺疾患）、肺高血圧、肺線維症、肺炎症、腸癒着、膀胱線維症および膀胱炎、鼻腔内の線維症、副鼻腔炎、好中球介在性炎症、および線維芽細胞介在性線維症、皮膚の増殖性または炎症性障害などの皮膚障害、例えば、アトピー性皮膚炎、水疱性障害、膠原線維症、乾癬、乾癬病巣、皮膚炎、接触性皮膚炎、湿疹、酒さ、創傷治癒、瘢痕、肥厚性瘢痕、ケロイド、川崎病、酒さ、シェーグレン・ラルソン症候群、および蕁麻疹など、呼吸器疾患、例えば、喘息、成人呼吸窮迫症候群、およびアレルギー性（外因性）喘息、非アレルギー性（内因性）喘息、急性重症喘息、慢性喘息、臨床的喘息、夜間喘息、アレルゲン誘導性喘息、アスピリン感受性喘息、運動誘発性喘息、等炭酸ガス性過換気症、小児発症喘息、成人発症喘息、咳喘息、職業性喘息、ステロイド耐性喘息、季節性喘息、季節性アレルギー性鼻炎、通年性アレルギー性鼻炎、慢性閉塞性肺疾患、例えば、慢性気管支炎または気腫、肺高血圧、間質性肺線維症、および／または気道炎症、および嚢胞性線維症、および低酸素症、および炎症性／免疫障害、例えば、乾癬、リウマチ性関節炎、脈管炎、炎症性腸疾患、皮膚炎、骨関節症、喘息、炎症性筋肉疾患、アレルギー性鼻炎、膣炎、間質性膀胱炎、強皮症、湿疹、同種または異種移植（臓器、骨髄、幹細胞、および他の細胞および組織）移植片拒絶、移植片対宿主病、エリテマトーデス、炎症性疾患、Ｉ型糖尿病、肺線維症、皮膚筋炎、シェーグレン症候群、甲状腺炎（例えば、橋本および自己免疫性甲状腺炎）、重症筋無力症、自己免疫性溶血性貧血、多発性硬化症、嚢胞性線維症、慢性再発性肝炎、原発性胆汁性肝硬変、アレルギー性結膜炎、およびアトピー性皮膚炎が挙げられる。

探索または診断用の造影剤としての当該化合物の使用について、放射性標識化合物は、単体で、または、好ましくは薬学的に許容可能な担体または希釈剤との組み合わせのいずれかで、適宜ミョウバンなどの既知のアジュバントと共に、医薬組成物において、標準的な薬務に従って、哺乳動物、好ましくはヒトに投与されうる。そのような組成物は、経口投与、または静脈内、筋肉内、腹腔内、皮下、直腸、および局所投与経路などの非経口的に投与することができる。好ましくは、投与は静脈内である。ＬＰＡ１受容体アンタゴニストは、寿命の短い陽電子放出放射性核種によって標識された放射性トレーサーであり、そのため、一般に、その合成の１時間以内に静脈内注射によって投与される。これは関与する放射性核種の半減期が短いために必要である。

非標識ＬＰＡ１受容体アンタゴニストの適切な投与量は、１日あたり１ｍｇから５０００ｍｇの範囲であってもよく、好ましくは１日あたり２０ｍｇから１０００ｍｇである。当該放射性ＬＰＡ１受容体アンタゴニストがヒト対象に投与された場合、イメージングに必要な用量は通常、処方する医師によって決定され、一般に用量は放射性核種からの発光量に従って変化するであろう。しかしながら、ほとんどの場合において、有効量は約１～１０ｍＣｉの範囲の発光を生じるのに十分な化合物の量である。ある例示的な用途において、対象の体重に応じて哺乳動物に投与して、０．５～２０ｍＣｉの間の総放射能を生じるように、投与が行われる。上限は、齧歯類または非ヒト霊長類のいずれかにおける放射性標識分子の線量測定によって設定される。

以下の例示的な手順は、診療所の患者においてＰＥＴイメージング検査を行う場合に用いられうる。患者は、検査日の少し前に非標識のＬＰＡ１受容体アンタゴニストを前投与され、水を自由に摂取できるようにして、少なくとも１２時間絶食する。放射性トレーサー投与のために、２０Ｇ、２インチの静脈カテーテルを反対側の尺骨静脈に挿入する。ＰＥＴトレーサーの投与は、血中の最大（Ｔ_ｍａｘ）または最小（Ｔ_ｍｉｎ）ＬＰＡ１受容体アンタゴニスト濃度の時間が一致するように、調整されることがしばしばある。

患者をＰＥＴカメラに配置し、［^１８Ｆ］実施例１（＜２０ｍＣｉ）などの放射性標識ＬＰＡ１受容体アンタゴニストのＰＥＴトレーサーのトレーサー用量を、静脈カテーテルによって投与する。血漿中の［^１８Ｆ］実施例１の代謝されていないＰＥＴトレーサーの一部を分析および定量するために、ＰＥＴスキャンを通して、動脈血または静脈血サンプルのいずれかを、適切な時間間隔で採取する。画像は最大１２０分間取得される。放射性トレーサーの注入から１０分以内、およびイメージングセッションの終了時に、ＰＥＴトレーサーの前に投与されていてもよい、任意の非標識ＬＰＡ１受容体アンタゴニストの血漿濃度を決定するために、１ｍｌの血液サンプルを取得する。

断層画像は、画像の再構成によって取得する。放射性トレーサーの分布を決定するために、限定されないが、肺、肝臓、心臓、腎臓、皮膚、または他の臓器および組織などの再構成画像上に、関心領域（ＲＯＩ）が描かれる。これらの領域における経時的な放射性トレーサーの取り込みを用いて、介入の非存在下、または試験した様々な用量パラダイムにおける非標識ＬＰＡ１受容体アンタゴニストの存在下で得られる時間放射能曲線（ＴＡＣ）を作成する。データは、単位体積あたりの単位時間あたりの放射能（μＣｉ／ｃｃ／ｍＣｉ注入量）として表される。ＴＡＣデータは、占有されていないＬＰＡ１受容体の密度に応じた、結合能（ＢＰ）または分布容積（Ｖ_Ｔ）などの定量パラメーターを得るために、当技術分野において周知の様々な方法によって処理する。次いで、ＬＰＡ１受容体の阻害を、非投与状態におけるＢＰまたはＶ_Ｔと比較した、様々な用量パラダイムにおけるＬＰＡ１受容体アンタゴニストの存在での平衡分析による、ＢＰまたはＶ_Ｔの変化に基づいて計算する。阻害曲線は、上記データ対ＬＰＡ１受容体アンタゴニストの用量（濃度）をプロットすることによって作成する。次いで、ＬＰＡ１受容体の阻害を、Ｅ_ｍａｘ、Ｔ_ｍａｘ、またはＴ_ｍｉｎにおいて、阻害薬によって達成することができる最大のＰＥＴ放射性リガンドのＶ_ＴまたはＢＰの減少量、および非投与状態におけるＢＰまたはＶ_Ｔと比較した、さまざまな用量パラダイムにおけるＬＰＡ１受容体アンタゴニストの存在下での、非特異的分布容積（Ｖ_ＮＤ）およびＢＰの変化に基づいて計算する。ＩＤ５０値を、線量率/阻害曲線の曲線あてはめによって得る。

本開示はさらに、放射性標識ＬＰＡ１受容体アンタゴニストを、医薬担体または賦形剤と組み合わせるステップを含む、必要な哺乳動物におけるＬＰＡ１受容体診断イメージングのための方法に関する。

定義
特に断らない限り、明細書および特許請求の範囲など、本出願において用いられる以下の用語は、以下に示される定義を有する。本明細書および付属の特許請求の範囲において用いられるように、単数形「ａ」、「ａｎ」、および「ｔｈｅ」は、文脈から明らかにそうでないことが示されていない限り、複数形についての言及を含むことに注意する必要がある。特に断らない限り、質量分析、ＮＭＲ、ＨＰＬＣ、タンパク質化学、生化学、組み換えＤＮＡ技術、および薬理学の従来の方法が用いられる。さらに、用語「など」、並びに「含む」および「含まれる」などの他の形態の使用は、限定的でない。本明細書において用いられる節の見出しは、構成上の目的のみのためであり、記載される主題を限定すると解釈されるべきではない。

本明細書において、製剤、組成物、または成分に関して用いられる用語「許容可能な」は、治療される対象の一般的な健康に持続的に有害な影響を有しないことを意味する。

本明細書において用いられる用語「調節する」は、標的の活性を変更するように、例えば、ほんの一例として、標的の活性を増強させ、標的の活性を阻害し、標的の活性を制限し、または標的の活性を拡張するように、直接的または間接的のいずれかで標的と相互作用することを意味する。

本明細書において用いられる用語「モジュレーター」は、直接的または間接的のいずれかで標的と相互作用する分子をいう。相互作用としては、限定されないが、アゴニスト、部分的アゴニスト、逆アゴニスト、およびアンタゴニストの相互作用が挙げられる。ある実施態様において、モジュレーターはアンタゴニストである。

本明細書において用いられる用語「アゴニスト」は、特定の受容体に結合し、細胞内での応答を誘発する化合物、薬物、酵素活性化因子、またはホルモンモジュレーターなどの分子をいう。アゴニストは、同じ受容体に結合する内因性リガンド（ＬＰＡ、プロスタグランジン、ホルモン、または神経伝達物質など）の作用を模倣する。

本明細書において用いられる用語「アンタゴニスト」は、別の分子または受容体部位の活性を減少、抑制、または阻害する、化合物などの分子をいう。アンタゴニストとしては、限定されないが、競合的アンタゴニスト、非競合的アンタゴニスト、不競合的アンタゴニスト、部分的アゴニスト、および逆アゴニストが挙げられる。

本明細書において用いられる用語「ＬＰＡ依存性」は、ＬＰＡの非存在下では発生しない、または同程度に発生しない病状または障害をいう。
本明細書において用いられる用語「ＬＰＡ介在性」は、ＬＰＡの非存在下位では発生するかもしれないが、ＬＰＡの存在下では発生しうる病状または障害をいう。

本明細書において用いられる用語「共投与」などは、単一の患者に選択した治療剤を投与することを含むことを意味し、薬剤が同じまたは異なる投与経路によって、または同時または異なる時間において投与される、治療レジメンを含むことが意図される。

本明細書において用いられる用語「組成物」は、特定の成分を特定の分量において含む製品、並びに特定の成分の特定の分量における組み合わせから、直接的または間接的に生じる任意の製品を包含することが意図される。医薬組成物に関連するこのような用語は、担体を構成する活性成分および不活性成分、並びに任意の２つ以上の成分の組み合わせ、複合体、または凝集から、あるいは１つ以上の成分の解離から、あるいはその別の種類の反応または相互作用、またはその成分の無視によって、直接的または間接的に生じる任意の生成物を含む製品を包含することが意図される。そのため、本発明の医薬組成物は、本発明の化合物と薬学的に許容可能な担体の混合によって形成される、任意の組成物を包含する。「薬学的に許容可能な」によって、担体、希釈剤、または賦形剤が、他の製剤と適合しなければならず、その受容者に有害でないことが意味される。用語、化合物の「投与」および／または化合物を「投与すること」は、本発明の化合物、または本発明の化合物のプロドラッグを患者に提供することを意味すると理解されるべきである。

本明細書において用いられる用語「有効量」または「治療上の有効量」は、治療される疾患または病状の症状の１つ以上をある程度緩和する、投与される薬剤または化合物の十分な分量をいう。結果は、疾患の徴候、症状、または原因の軽減および／または緩和、または生物学的システムの他の任意の望ましい調整でありうる。例えば、治療的使用のための「有効量」は、疾患症状の臨床的に有意な軽減を提供するのに必要な、本明細書に開示される化合物を含む組成物の分量である。任意の個々の場合において、適切な「有効」量は、用量漸増試験などの技術を用いて決定されうる。

本明細書において用いられる用語「組み合わせ医薬」は、１つより多い活性成分の混合または組み合わせから生じ、活性成分の固定の、および非固定の両方の組み合わせを含む生成物を意味する。用語「固定の組み合わせ」は、活性成分、例えば、式（Ｉ）、（Ｉａ）、および（ＩＩa）の化合物、および共薬剤の両方を、単一の形態または剤形の形態で、同時に患者に投与することを意味する。用語「非固定の組み合わせ」は、活性成分、例えば、式（Ｉ）、（Ｉａ）、または（ＩＩａ）の化合物、および共薬剤が、同時に、同時的に、または順次のいずれかで、特定の時間間隔の制限なしで、別の形態として患者に投与されることを意味し、ここで、そのような投与は、患者の体内において２つの化合物の有効量を提供する。後者はまた、カクテル療法、例えば、３つ以上の活性成分の投与に適用される。

用語「対象」または「患者」は、哺乳動物を含む。哺乳動物の例としては、限定されないが、ヒト、チンパンジー、類人猿、サル、ウシ、ウマ、ヒツジ、ヤギ、ブタ、ウサギ、イヌ、ネコ、齧歯類、ラット、マウス、モルモットなどが挙げられる。ある実施態様において、哺乳動物はヒトである。

本明細書で用いられる用語「治療する」、「治療すること」、または「治療」としては、疾患または病状の少なくとも１つの症状を軽減すること、寛解させること、または改善すること、さらなる症状を予防すること、疾患または病状を抑制すること、例えば、疾患または病状の発症を抑止すること、疾患または病状を緩和すること、疾患または病状の退行を引き起こすこと、疾患または病状によって引き起こされる病状を緩和すること、または疾患または病状の症状を予防的および／または治療的のいずれかで停止させることが挙げられる。

本明細書に記載される化合物は、非対称中心を有しうる。非対称に置換された原子を含むそのような化合物は、光学活性体またはラセミ体において単離されうる。ラセミ体の分割または光学活性な出発物質からの合成などによって、光学活性体を調整する方法は、当技術分野において周知である。特定の立体化学または異性体形態が具体的に示されていない限り、構造の全てのキラル、ジアステレオマー、およびラセミ体が意図される。

語句「薬学的に許容される」は、健全な医学的判断の範囲内で、過度な毒性、刺激、アレルギー応答、または他の問題、または合併症がない、合理的な利益／リスク比に見合った、ヒトおよび動物の組織と接触させて用いるのに適切な、これらの化合物、物質、組成物、および／または投与形態をいうように本明細書において用いられる。

本明細書で用いられる「薬学的に許容可能な塩」は、親化合物の酸性塩または塩基性塩を製造することによって、親化合物が修飾されている、開示される化合物の誘導体をいう。

用語、薬学的に許容される「塩」は、無機および有機塩基と共に形成される塩基性塩をいいうる。そのような塩としては、アンモニウム塩；リチウム、ナトリウム、およびカリウム塩などの、アルカリ金属塩；カルシウムおよびマグネシウム塩などの、アルカリ土類金属塩；アミン様塩（例えば、ジシクロヘキシルアミン塩、ベンザチン、Ｎ－メチル－Ｄ－グルカミン、およびヒドラバミン塩）などの、有機塩基との塩；並びに、アルギニン、リシンなどのアミノ酸との塩；並びに双性イオン、いわゆる「分子内塩」が挙げられる。非毒性の、薬学的に許容可能な塩が好ましいが、他の塩もまた、例えば生成物の単離または精製に有用である。

用語、薬学的に許容可能な「塩」としてはまた、酸付加塩が挙げられる。これらは、例えば、鉱酸などの強い無機酸、例えば、硫酸、リン酸、またはＨＣｌもしくはＨＢｒなどのハロゲン化水素酸によって、強い有機カルボン酸、例えば、非置換、または例えばハロゲンによって置換された、１～４個の炭素原子のアルカンカルボン酸、例えば、酢酸、飽和または不飽和二カルボン酸など、例えば、シュウ酸、マロン酸、コハク酸、マレイン酸、フマル酸、フタル酸、またはテレフタル酸；ヒドロキシカルボン酸など、例えば、アスコルビン酸、グリコール酸、乳酸、リンゴ酸、酒石酸、またはクエン酸、アミノ酸（例えば、アスパラギン、またはグルタミン酸、またはリシン、またはアルギニン）など、または安息香酸；または有機スルホン酸、例えば、非置換、もしくは例えばハロゲンによって置換されている、（Ｃ_１－Ｃ_４）アルキルまたはアリールスルホン酸、例えば、メタンスルホン酸またはｐ－トルエンスルホン酸によって、形成される。

薬学的に許容可能な塩は、従来の化学的方法によって、塩基性または酸性基を含む親化合物から合成することができる。一般に、そのような塩は、これらの化合物の遊離酸または塩基形態を、適切な塩基または酸の化学量論と、水または有機溶媒中で、または２つの混合物中で反応させることによって調製することができ；一般に、エーテル、酢酸エチル、エタノール、イソプロパノール、またはアセトニトリルなどの非水性溶媒が好ましい。適切な塩の一覧は、Remington’s Pharmaceutical Sciences, 17th Edition, p. 1418, Mack Publishing Company, Easton, PA (1985)に存在し、この開示は引用によって本明細書に援用される。

明細書を通して、基およびその置換基は、安定した基および化合物、並びに薬学的に許容可能な化合物として有用な化合物、および／または薬学的に許容可能な化合物の製造に有用な中間体化合物を提供するように、当業者によって選択されうる。

実施例
本発明の化合物の合成は、代表として実施例に開示されている化合物を用いて、以下のスキームにおいて説明する。

非標識の式（Ｉ）の化合物の合成手順を、以下に概説する。スキーム１は、フルオロアルキルカルバモイルオキシメチルトリアゾールシクロヘキシル酸８の合成を記載する。出発物質、シクロヘキシルエステルトリアゾールアルコール１の合成は、ＵＳ２０１７／０３６０７５９において記載され（例えば、実施例１Ｅおよび１０Ｆ）、本開示は引用によって本明細書に援用される。トリアゾールアルコール１を、適切な塩基の存在下で、４－ニトロフェニル クロロホルメートと反応させて、対応するトリアゾール ４－ニトロフェニルカルボネート２を得る。トリアゾール ４－ニトロフェニルカルボネート２を次いで、適切な塩基の存在下で、適切なＮ－ヒドロキシアルキルアミン３（ｎ＝０－２）と反応させて、トリアゾール Ｎ－ヒドロキシルアルキルカルバメート４を得る。Ｎ－ヒドロキシアルキルカルバメート４を、適切なスルホニルクロライド５（例えば、ｐ－トルエンスルホニルクロライド）と反応させて、対応するスルホネート６を得る。スルホネート６を、適切なフルオライドアニオン源（例えば、ＫＦまたはＢｕ_４ＮＦ）と反応させて、クロヘキシルエステルトリアゾール Ｎ－フルオロアルキルカルバメート７を得て、これを次いでエステル脱保護して、目的のフルオロアルキルカルバモイルオキシメチルトリアゾール シクロヘキシル酸８を生じる。

スキーム２は、^１８Ｆ－フルオロアルキルカルバモイルオキシメチルトリアゾール シクロヘキシル酸の放射性合成を記載する。スルホネート前駆体６の放射性合成は、適切なフルオライド－１８アニオン源（例えば、Ｋ^１８ＦまたはＢｕ_４Ｎ^１８Ｆ）、適切な相間移動触媒（例えば、クリプトフィックス（登録商標）２２２）、および適切なイオン液体（例えば、１－ブチル－３－メチルイミダゾリウム ヘキサフルオロホスフェート）を反応させて、^１８Ｆ－シクロヘキシルエステルトリアゾール Ｎ－フルオロアルキルカルバメート９を得て、これが次いでエステル脱保護を受けて、目的の^１８Ｆ－フルオロアルキルカルバモイルオキシメチルトリアゾール シクロヘキシル酸１０を得る。

ＨＰＬＣ条件：
方法Ａ：以下の方法を用いた、Agilent 1100 series HPLC および Lab logic gamma ram radio-HPLC 検出器：カラム：Ｚｏｒｂａｘ ＳＢ Ｃ１８、４．６ｘ２５０ｍｍ、３μｍ粒子；移動相：６０％アセトニトリル／０．１％トリフルオロ酢酸水溶液；流速：１．００ｍＬ／分；検出：２５４ｎｍにおけるＵＶ。
方法Ｂ：カラム：Ｚｏｒｂａｘ ＳＢ Ｃ１８、４．６ｘ２５０ｍｍ、３μｍ粒子；移動相：２９％エタノール、１０％アセトニトリル、および６１％の１００ｍＭ ＫＨ_２ＰＯ_４水溶液；流速：１．００ｍＬ／分；検出：２５４ｎｍにおけるＵＶ。
方法Ｃ：カラム：Ｃｈｉｒａｌｐａｋ ＡＤ－Ｈ－２５０ｘ４．６ｍｍ ５μｍ粒子；移動相：１５％イソプロピルアルコール／ヘプタン；流速：０．９ｍＬ／分；検出：２５４ｎｍにおけるＵＶ。

実施例１．メチル （１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（ヒドロキシメチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボキシレート

表題の化合物は、特許出願ＵＳ２０１７／０３６０７５９から、対応するイソプロピルエステル（実施例１Ｅ）またはエチルエステル（実施例１０Ｆ）のいずれかの合成について記載される合成方法に従って合成した。表題の化合物を製造するために用いられる出発物質は、（対応するシクロヘキサンイソプロピルまたはエチルエステルではなく）（１Ｓ、３Ｒ）－メチル ３－ヒドロキシシクロヘキサン－１－カルボキシレートであった。

実施例２．メチル （１Ｒ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（ヒドロキシメチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボキシレート

実施例１化合物（１．９５ｇ、５．４１ｍｍｏｌ）のＭｅＯＨ（３８．６ｍＬ）中の透明な溶液を、５．４ＭのＮａＯＭｅ溶液（４．０ｍＬ、２１．６４ｍｍｏｌ）に加えた。反応液を６０℃で６時間加熱し、次いで室温に冷却した。反応物を氷浴に入れ、１Ｎ ＨＣｌで中性化し、次いで部分的に濃縮して、ＭｅＯＨを除去した。得られた濁った混合物を、１．０Ｍ Ｋ_２ＨＰＯ_４およびＥｔＯＡｃに分配し、層を分離した。水層をＥｔＯＡｃ（１ｘ）で抽出した。有機層を合わせて、ブラインで洗浄し、乾燥させ（Ｎａ_２ＳＯ_４）、濾過し、濃縮して、重量１．６６ｇの白色の固形物を得た。キラルＳＦＣ Ｐｒｅｐ（カラム：Ｃｈｉｒａｌｐａｋ ＩＡ、２１ｘ２５０ｍｍ、５ミクロン；移動相：２０％ＭｅＯＨ／８０％ＣＯ_２；流速条件：８５ｍＬ／分、１５０Ｂａｒ、４０℃；検出波長：２５４ｎｍ）による精製によって、白色の固形物の表題の化合物（７４０ｍｇ、収率３８％）として、第二溶出ジアステレオマーを得た。キラル分析ＨＰＬＣ（カラム：Ｃｈｉｒａｌｐａｋ ＩＡ、４．６ｘ２５０ｍｍ、５ミクロン；移動相：２５％ＭｅＯＨ／８０％ＣＯ_２；流速条件：２．０ｍＬ／分、１５０Ｂａｒ、４０℃；検出波長：２５４ｎｍ）によって、メチルエステル立体中心において、９８．２％ｄｅ［０．９：９９．１ トランス（４．３３分）：シス（５．４８分）］が示された。
LCMS, [M + H]⁺ = 361.1。 ¹H NMR (500 MHz, CDCl₃) δ 8.10 (d, J=8.8 Hz, 1H), 7.61 - 7.45 (m, 1H), 7.29 (d, J=8.8 Hz, 1H), 4.83 (s, 2H), 4.33 - 4.21 (m, 1H), 4.09 (s, 3H), 3.70 (s, 3H), 2.53 - 2.45 (m, 4H), 2.44 - 2.38 (m, 1H), 2.23 - 2.13 (m, 1H), 2.06 - 1.96 (m, 2H), 1.76 - 1.59 (m, 1H), 1.56 - 1.39 (m, 3H).

実施例３．メチル （１Ｓ，３Ｓ）－３－（（２－メチル－６－（１－メチル－５－（（（（４－ニトロフェノキシ）カルボニル）オキシ）メチル）－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）ピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボキシレート

実施例１化合物（９７０ｍｇ、２．６９ｍｍｏｌ）およびピリジン（１．０９ｍＬ、１３．５ｍｍｏｌ）のＤＣＭ（１７．９ｍＬ）中の０℃の溶液に、１時間にわたり、４－ニトロフェニルクロロホルメート（１．０９ｇ、５．３８ｍｍｏｌ）のＤＣＭ（３ｍＬ）中の溶液を滴下して加えた。反応液を次いで、室温に昇温させ、室温で２０時間撹拌し、次いで減圧下で濃縮して、固形物を得た。ＤＣＭの最小量を加えて懸濁液を得て、固体（ピリジン ヒドロクロライド）を濾過によって除去した。濾液を減圧下で濃縮した。残留物をクロマトグラフィーにかけ（１２０ｇ ＳｉＯ_２カラム；０－５０％ＥｔＯＡｃ／ヘキサンの連続的勾配）、表題の化合物（１．１２ｇ、収率７９％）を淡黄色の固形物として得た。
LCMS, [M + H]⁺ = 526.3。¹H NMR (500 MHz, CDCl₃) δ 8.33 - 8.28 (m, 2H), 8.03 (d, J=8.5 Hz, 1H), 7.43 - 7.38 (m, 2H), 7.23 (d, J=8.5 Hz, 1H), 6.06 (s, 2H), 4.76 - 4.71 (m, 1H), 4.22 (s, 3H), 3.72 (s, 3H), 2.89 - 2.80 (m, 1H), 2.51 (s, 3H), 2.21 - 2.12 (m, 1H), 2.04 - 1.89 (m, 3H), 1.83 - 1.72 (m, 1H), 1.71 - 1.61 (m, 3H).

実施例４．メチル （１Ｒ，３Ｓ）－３－（（２－メチル－６－（１－メチル－５－（（（（４－ニトロフェノキシ）カルボニル）オキシ）メチル）－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）ピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボキシレート

表題の化合物は、実施例３化合物の合成について記載される方法に従って、反応に実施例２化合物を、（実施例１化合物ではなく）４－ニトロフェニルクロロホルメートと共に用いることによって、合成した。LCMS, [M + H]⁺ = 526.1。¹H NMR (500 MHz, CDCl₃) δ 8.33 - 8.27 (m, 2H), 8.02 (d, J=8.5 Hz, 1H), 7.43 - 7.38 (m, 2H), 7.22 (d, J=8.5 Hz, 1H), 6.06 (s, 2H), 4.32 - 4.19 (m, 4H), 3.70 (s, 3H), 2.54 - 2.45 (m, 4H), 2.45 - 2.36 (m, 1H), 2.22 - 2.12 (m, 1H), 2.05 - 1.95 (m, 2H), 1.77 - 1.64 (m, 1H), 1.55 - 1.38 (m, 3H).

実施例５：メチル （１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－ヒドロキシブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボキシレート

実施例３化合物（１．９０ｇ、３．６２ｍｍｏｌ）のＴＨＦ（１８．１ｍＬ）中の室温溶液に、４－（メチルアミノ）ブタン－１－オール（０．４４８ｇ、４．３４ｍｍｏｌ）、次いでＤＩＥＡ（０．７６ｍＬ、４．３４ｍｍｏｌ）を加えた。室温で１８時間撹拌した後、反応液を減圧下で濃縮した。粗生成物をクロマトグラフィーにかけ（１２０ｇＳｉＯ_２カラム；２０分にわたり０－１０％ＭｅＯＨ／ＤＣＭの連続的勾配、次いで２０分間、１０％ＭｅＯＨ／ＤＣＭの定組成）、表題の化合物（２．１ｇ、収率１１９％）を黄色の油状物として得た。反応からの副生成物、４－ニトロフェノールもまた存在した。この物質をさらに精製することなく、次のステップで用いた。LCMS, [M + H]⁺ = 490.3。 ¹H NMR (500 MHz, CDCl₃) δ 7.96 (d, J=8.5 Hz, 1H), 7.21 (d, J=8.5 Hz, 1H), 5.84 - 5.71 (m, 2H), 4.74 - 4.69 (m, 1H), 4.15 (s, 3H), 3.77 - 3.65 (m, 4H), 3.54 - 3.45 (m, 1H), 3.41 - 3.31 (m, 1H), 3.27 - 3.16 (m, 1H), 2.99 - 2.80 (m, 4H), 2.52 (s, 3H), 2.22 - 2.11 (m, 1H), 2.05 - 1.87 (m, 3H), 1.84 - 1.73 (m, 1H), 1.71 - 1.36 (m, 8H)。いくつかのピークは回転異性体であると考えられる。

実施例６．メチル （１Ｓ，３Ｓ）－３－（（２－メチル－６－（１－メチル－５－（（（メチル（４－（トシルオキシ）ブチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）ピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボキシレート

実施例５化合物（１１５ｍｇ、０．２４ｍｍｏｌ）、ＤＭＡＰ（２．９ｍｇ、０．０２３ｍｍｏｌ）、およびＴＥＡ（７２．０μＬ、０．５２ｍｍｏｌ）の、ＤＣＭ（２．３５ｍＬ）中の冷却した溶液（０℃）に、ｐ－ＴｓＣｌ（５３．７ｍｇ、０．２８ｍｍｏｌ）を加えた。得られた反応液を室温に昇温させ、室温で一晩撹拌した。反応液を水（３ｍＬ）およびＥｔ_２Ｏ（３ｍＬ）に分配し、層を分離した。水層をＥｔ_２Ｏ（１ｘ）で抽出した。有機層を合わせて乾燥させ（ＭｇＳＯ_４）、減圧下で濃縮した。粗生成物をクロマトグラフィーにかけ（２４ｇ ＳｉＯ_２カラム；２５分にわたり、０－６０％ＥｔＯＡｃ／ヘキサンの連続的勾配、次いで３０分間にわたり、６０％ＥｔＯＡｃ／ヘキサンの定組成）、表題の化合物（１２６ｍｇ、収率８３％）を透明な無色の残留物として得た。LCMS, [M + H]⁺ = 644.2。¹H NMR (500 MHz, CDCl₃) δ 7.95 (d, J=8.5 Hz, 1H), 7.84 - 7.69 (m, 2H), 7.38 - 7.31 (m, 2H), 7.20 (d, J=8.5 Hz, 1H), 5.81 - 5.69 (m, 2H), 4.74 - 4.67 (m, 1H), 4.13 (s, 3H), 4.09 - 4.03 (m, 1H), 3.90 - 3.84 (m, 1H), 3.70 (s, 3H), 3.31 - 3.22 (m, 1H), 3.18 - 3.11 (m, 1H), 2.91 - 2.76 (m, 4H), 2.52 - 2.47 (m, 3H), 2.45 (s, 3H), 2.20 - 2.10 (m, 1H), 2.03 - 1.86 (m, 3H), 1.83 - 1.71 (m, 1H), 1.70 - 1.56 (m, 5H)、1.51 - 1.41 (m, 2H)。いくつかのピークは回転異性体であると考えられる。

実施例７．メチル （１Ｓ，３Ｓ）－３－（（２－メチル－６－（１－メチル－５－（（（メチル（４－（（（４－ニトロ－フェニル）スルホニル）オキシ）ブチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）ピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボキシレート

実施例５化合物（９０ｍｇ、０．１８ｍｍｏｌ）、ＤＭＡＰ（２．２ｍｇ、０．０１８ｍｍｏｌ）、およびＴＥＡ（５６μＬ、０．４０ｍｍｏｌ）のＤＣＭ（１．８ｍＬ）中の０℃の溶液に、ＮｓＣｌ（４５ｍｇ、０．２０ｍｍｏｌ）を加えた。得られた反応液をゆっくりと室温に昇温させた。２時間室温で撹拌した後、反応液を水（３ｍＬ）およびＥｔ_２Ｏ（３ｍＬ）に分配し、層を分離した。水層をＥｔ_２Ｏ（１ｘ）で抽出した。有機層を合わせて乾燥させ（ＭｇＳＯ_４）、濾過し、減圧下で濃縮した。粗生成物をクロマトグラフィーにかけ（１２ｇ ＳｉＯ_２カラム；０－６０％ＥｔＯＡｃ／ヘキサンの連続的勾配）、表題の化合物（２５ｍｇ、収率１９％）を黄色の固形物として得た。LCMS, [M + H]⁺ = 675.2。 ¹H NMR (500 MHz, CDCl₃) δ 8.46 - 8.38 (m, 2H), 8.14 (br d, J=8.0 Hz, 1H), 8.08 - 8.00 (m, 1H), 7.97 (d, J=8.5 Hz, 1H), 7.22 (d, J=8.5 Hz, 1H), 5.81 - 5.70 (m, 2H), 4.76 - 4.69 (m, 1H), 4.24 - 4.17 (m, 1H), 4.15 (s, 3H), 3.98 - 3.91 (m, 1H), 3.72 (s, 3H), 3.34 - 3.26 (m, 1H), 3.24 - 3.13 (m, 1H), 2.96 - 2.78 (m, 4H), 2.53 - 2.46 (m, 3H), 2.22 - 2.11 (m, 1H), 2.05 - 1.88 (m, 3H), 1.85 - 1.46 (m, 8H)。 いくつかのピークは回転異性体であると考えられる。

実施例８．イソプロピル （１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（ヒドロキシメチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボキシレート

表題の化合物は、ＵＳ２０１７／０３６０７５９、実施例１Ｅに記載される実験方法に従って合成した。

実施例９．イソプロピル （１Ｓ，３Ｓ）－３－（（２－メチル－６－（１－メチル－５－（（（（４－ニトロフェノキシ）カルボニル）オキシ）メチル）－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）ピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボキシレート

表題の化合物は、ＵＳ２０１７／０３６０７５９、実施例１Ｆの記載される実験方法に従って合成した。

実施例１０．イソプロピル （１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－ヒドロキシブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボキシレートの合成

表題の化合物は、（実施例３化合物の代わりに）実施例９化合物を４－（メチルアミノ）ブタン－１－オールとの反応に用いることによって、実施例５化合物の合成について記載される方法に従って合成した。LCMS, [M + H]⁺ = 518.3。 ¹H NMR (500 MHz, CDCl₃) δ 7.96 (d, J=8.5 Hz, 1H), 7.23 (d, J=8.5 Hz, 1H), 5.85 - 5.71 (m, 2H), 5.10 - 4.99 (m, 1H), 4.76 - 4.61 (m, 1H), 4.15 (br s, 3H), 3.78 - 3.63 (m, 1H), 3.55 - 3.44 (m, 1H), 3.41 - 3.30 (m, 1H), 3.26 - 3.14 (m, 1H), 2.99 - 2.82 (m, 3H), 2.82 - 2.73 (m, 1H), 2.52 (s, 3H), 2.14 - 2.07 (m, 1H), 2.02 - 1.86 (m, 3H), 1.86 - 1.35 (m, 9H), 1.32 - 1.20 (m, 6H)。 いくつかのピークは回転異性体であると考えられる。

実施例１１．イソプロピル （１Ｓ，３Ｓ）－３－（（２－メチル－６－（１－メチル－５－（（（メチル（４－（トシルオキシ）ブチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）ピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボキシレート

実施例１０化合物（１８０ｍｇ、０．３５ｍｍｏｌ）のピリジン（５ｍＬ）中の冷却した溶液（０℃）に、ｐ－ＴｓＣｌ（８０ｍｇ、０．４２ｍｍｏｌ）を加えた。得られた反応液を室温に昇温させ、次いで室温で２３時間撹拌した。反応液を水（３ｍＬ）およびＥｔ_２Ｏ（３ｍＬ）に分配し、層を分離した。水層をＥｔ_２Ｏ（１ｘ）で抽出した。有機層を合わせて乾燥させ（ＭｇＳＯ_４）、真空で濃縮した。粗製物質をクロマトグラフィーにかけ（２４ｇＳｉＯ_２；０－１００％ＥｔＯＡｃ／ヘキサンの連続的勾配）、表題の化合物（７５ｍｇ、収率３２％）を白色のゴム状残留物として得た。LCMS, [M + H]⁺ = 672.3。 ¹H NMR (500 MHz, CDCl₃) δ 7.94 (d, J=8.3 Hz, 1H), 7.83 - 7.67 (m, 2H), 7.38 - 7.30 (m, 2H), 7.21 (d, J=8.5 Hz, 1H), 5.80 - 5.68 (m, 2H), 5.08 - 4.96 (m, 1H), 4.72 - 4.64 (m, 1H), 4.12 (s, 3H), 4.08 - 4.01 (m, 1H), 3.91 - 3.82 (m, 1H), 3.31 - 3.21 (m, 1H), 3.18 - 3.08 (m, 1H), 2.91 - 2.72 (m, 4H), 2.52 - 2.46 (m, 3H), 2.44 (s, 3H), 2.12 - 2.04 (m, 1H), 2.00 - 1.86 (m, 3H), 1.81 - 1.70 (m, 1H), 1.70 - 1.55 (m, 5H)、1.50 - 1.40 (m, 2H), 1.27 - 1.22 (m, 6H)。 いくつかのピークは回転異性体であると考えられる。

実施例１２．メチル （１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－フルオロブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボキシレート

実施例３化合物（５５８ｍｇ、１．０６ｍｍｏｌ）および４－フルオロ－Ｎ－メチルブタン－１－アミン－ＨＣｌ塩（２２６ｍｇ、１．５９ｍｍｏｌ）のＴＨＦ（２．７０ｍＬ）およびＤＣＭ（２．７０ｍＬ）中の懸濁液に、ＴＥＡ（０．５９ｍＬ、４．２５ｍｍｏｌ）を滴下して加えた。得られた黄色の懸濁液を室温で撹拌した。さらにＴＨＦ（２．７０ｍＬ）およびＤＣＭ（２．７０ｍＬ）を加えて、混合を容易にした。室温で１時間撹拌した後、反応混合物をＥｔＯＡｃで希釈し、１．０Ｍ Ｋ_２ＨＰＯ_４水溶液（３ｘ）、ブライン（１ｘ）で洗浄し、乾燥させ（Ｎａ_２ＳＯ_４）、濾過し、減圧下で濃縮して、透明な黄色の油状物を得た。この物質をクロマトグラフィーにかけ（１２０ｇ ＳｉＯ_２カラム；０－１００％ＥｔＯＡｃ／ヘキサンの連続的勾配）、表題の化合物（４４０ｍｇ、収率８４％）を透明な無色の粘性油状物として得た。LCMS, [M + H]⁺ = 492.2。 ¹H NMR (500 MHz, CDCl₃) δ 7.97 (d, J=8.5 Hz, 1H), 7.21 (d, J=8.5 Hz, 1H), 5.78 (br d, J=12.7 Hz, 2H), 4.75 - 4.69 (m, 1H), 4.58 - 4.40 (m, 1H), 4.38 - 4.21 (m, 1H), 4.16 (br s, 3H), 3.71 (s, 3H), 3.42 - 3.31 (m, 1H), 3.27 - 3.16 (m, 1H), 2.97 - 2.81 (m, 4H), 2.52 (s, 3H), 2.22 - 2.13 (m, 1H), 2.05 - 1.88 (m, 3H), 1.84 - 1.46 (m, 8H)。いくつかのピークは回転異性体であると考えられる。¹⁹F NMR (471 MHz, CDCl₃) δ -218.58。

実施例１２（別の合成）．メチル （１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－フルオロブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボキシレート
実施例６化合物（７９ｍｇ、０．１２ｍｍｏｌ）のＴＢＡＦ（１．０ＭのＴＨＦ溶液、２．４５ｍＬ、２．４５ｍｍｏｌ）中の透明な淡黄色の溶液を、室温で１．５時間撹拌し、次いで水およびＥｔ_２Ｏに分配し、層を分離した。有機層をブラインで洗浄し、乾燥させ（Ｎａ_２ＳＯ_４）、濾過し、真空で濃縮して、透明な残留物を得た。粗生成物をクロマトグラフィーにかけ（１２ｇ ＳｉＯ_２カラム；０－６０％ＥｔＯＡｃ／ヘキサンの連続的勾配）、表題の化合物（０．０３５４ｇ、収率５８％）を透明な無色の油状物として得た。LCMS, [M + H]⁺ = 492.4。¹H NMR (500 MHz, CDCl₃) δ 7.97 (d, J=8.5 Hz, 1H), 7.21 (d, J=8.5 Hz, 1H), 5.78 (br d, J=12.7 Hz, 2H), 4.75 - 4.69 (m, 1H), 4.58 - 4.40 (m, 1H), 4.38 - 4.21 (m, 1H), 4.16 (br s, 3H), 3.71 (s, 3H), 3.42 - 3.31 (m, 1H), 3.27 - 3.16 (m, 1H), 2.97 - 2.81 (m, 4H), 2.52 (s, 3H), 2.22 - 2.13 (m, 1H), 2.05 - 1.88 (m, 3H), 1.84 - 1.46 (m, 8H)。いくつかのピークは回転異性体であると考えられる。¹⁹F NMR (471 MHz, CDCl₃) δ -218.58。

実施例１３．メチル （１Ｒ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－フルオロブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボキシレート

表題の化合物は、（実施例３化合物の代わりに）実施例４化合物を４－フルオロ－Ｎ－メチルブタン－１－アミン－ＨＣｌとの反応に用いることによって、実施例１２化合物の合成について記載された方法に従って合成した。LCMS, [M + H]⁺ = 492.3。¹H NMR (500 MHz, CDCl₃) δ 7.97 (d, J=8.3 Hz, 1H), 7.20 (d, J=8.5 Hz, 1H), 5.78 (br d, J=12.1 Hz, 2H), 4.58 - 4.40 (m, 1H), 4.37 - 4.20 (m, 2H), 4.16 (s, 3H), 3.70 (s, 3H), 3.41 - 3.30 (m, 1H), 3.27 - 3.16 (m, 1H), 2.98 - 2.81 (m, 3H), 2.53 - 2.44 (m, 4H), 2.44 - 2.37 (m, 1H), 2.22 - 2.12 (m, 1H), 2.05 - 1.95 (m, 2H), 1.78 - 1.64 (m, 3H), 1.58 - 1.40 (m, 5H)。

実施例１４．（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－フルオロブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸

実施例１２化合物（０．３００ｇ、０．６１０ｍｍｏｌ）のＴＨＦ（４．１ｍＬ）中の溶液に、１．０Ｍ ＬｉＯＨ水溶液（３．０ｍＬ、３．０ｍｍｏｌ）を室温で加えた。反応液を室温で１９時間撹拌し、次いで１Ｎ ＨＣｌ水溶液でｐＨ～４から５に酸性化し、次いでＥｔＯＡｃ（２ｘ）で抽出した。有機層を合わせて、ブラインで洗浄し、乾燥させ（Ｎａ_２ＳＯ_４）、濾過し、減圧下で濃縮して、透明な無色の残留物を得た。粗生成物をクロマトグラフィーにかけ（８０ｇ ＳｉＯ_２カラム、０－１０％ＭｅＯＨ／ＤＣＭの連続的勾配）、凍結乾燥の後、表題の化合物（２４１ｍｇ、収率８２％）を白色の固形物として得た。LCMS, [M + H]⁺ = 478.2。 ¹H NMR (500 MHz, DMSO-d₆) δ 12.21 (br s, 1H), 7.85 (d, J=8.5 Hz, 1H), 7.48 (d, J=8.8 Hz, 1H), 5.65 (br d, J=13.5 Hz, 2H), 4.82 - 4.76 (m, 1H), 4.53 - 4.36 (m, 1H), 4.31 - 4.15 (m, 1H), 4.10 (s, 3H), 3.27 - 3.20 (m, 1H), 3.16 - 3.09 (m, 1H), 2.85 - 2.73 (m, 3H), 2.68 - 2.59 (m, 1H), 2.42 (s, 3H), 2.08 - 1.96 (m, 1H), 1.92 - 1.74 (m, 3H), 1.69 - 1.34 (m, 8H)。いくつかのピークは回転異性体であると考えられる。¹⁹F NMR (471 MHz, DMSO-d₆) δ -216.79、-216.84。キラル分析ＨＰＬＣ（Ｃｈｉｒａｌｐａｋ ＯＪ－Ｈ、４．６ｘ２５０ｍｍ、５ミクロン。移動相：１０％ＭｅＯＨ／９０％ＣＯ_２。流速条件：２ｍＬ／分、１５０Ｂａｒ、４０℃。検出波長：２２０ｎｍ）によって、カルボン酸立体中心において、９７％ｄｅ［９８．６：１．４ トランス（８．６１分）：シス（１１．５８分）］が示された。（US2017/0360759、実施例１９２を参照されたい。）

実施例１４（別の合成）．（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－フルオロブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸、トリフルオロ酢酸塩
実施例１２（別の合成；０．０２３ｇ、０．０４６ｍｍｏｌ）のＴＨＦ（０．３１ｍＬ）中の溶液に、１．０Ｍ ＬｉＯＨ水溶液（０．２３ｍＬ、０．２３ｍｍｏｌ）を室温で加えた。反応液を室温で２２時間撹拌し、次いで減圧下で濃縮し、ＴＨＦを留去した。残留物を水およびＭｅＣＮに溶解させ、ＴＦＡで酸性化した。この物質を、分取ＨＰＬＣ（カラム：Ｓｕｎｆｉｒｅ Ｐｒｅｐ Ｃ１８ ＯＢＤ ５μｍ；３０ｘ１００ｍｍ。溶媒Ａ：１０：９０：０．１ ＭｅＣＮ：Ｈ_２Ｏ：ＴＦＡ；溶媒Ｂ：９０：１０：０．１ ＭｅＣＮ：Ｈ_２Ｏ：ＴＦＡ。４０ｍＬ／分の流速、１０－１００％溶媒Ｂの勾配溶出を用いる、ＵＶを２２０ｎｍにおいてモニターする。）によって精製し、凍結乾燥後、表題の化合物をＴＦＡ塩（０．０１９５ｇ、収率７１％）として白色の固形物として得た。LCMS, [M + H]⁺ = 478.4。¹H NMR (500 MHz, DMSO-d₆およびD₂O) δ 7.85 (d, J=8.5 Hz, 1H), 7.50 (br d, J=8.5 Hz, 1H), 5.64 (br d, J=12.4 Hz, 2H), 4.81 - 4.77 (m, 1H), 4.53 - 4.36 (m, 1H), 4.31 - 4.15 (m, 1H), 4.10 (s, 3H), 3.28 - 3.18 (m, 1H), 3.16 - 3.05 (m, 1H), 2.84 - 2.72 (m, 3H), 2.67 - 2.61 (m, 1H), 2.43 (s, 3H), 2.08 - 1.99 (m, 1H), 1.90 - 1.75 (m, 3H), 1.70 - 1.35 (m, 8H)。 いくつかのピークは回転異性体であると考えられる。¹⁹F NMR (471 MHz, DMSO-d₆およびD₂O) δ -74.66、-216.78、-216.84。キラル分析ＨＰＬＣ（Ｃｈｉｒａｌｐａｋ ＩＤ、４．６ｘ２５０ｍｍ、５ミクロン。移動相：２０％ＭｅＯＨ／８０％ＣＯ_２。流速条件：２ｍＬ／分、１５０Ｂａｒ、４０℃。検出波長：２２０ｎｍ）によって、カルボン酸立体中心において８３％ｄｅ［９１．６：８．４ トランス（８．４７分）：シス（９．５６分）］が示された。

実施例１５．（１Ｒ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－フルオロブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸

表題の化合物は、（実施例１２化合物の代わりに）実施例１３化合物をＬｉＯＨとの反応に用いることによって、実施例１４化合物の合成について記載される方法に従って合成した。LCMS, [M + H]⁺ = 478.2。 ¹H NMR (500 MHz, DMSO-d₆) δ 12.28 - 12.14 (m, 1H), 7.84 (d, J=8.5 Hz, 1H), 7.53 (d, J=8.5 Hz, 1H), 5.69 - 5.60 (m, 2H), 4.54 - 4.35 (m, 2H), 4.32 - 4.14 (m, 1H), 4.10 (s, 3H), 3.28 - 3.09 (m, 2H), 2.84 - 2.71 (m, 3H), 2.48 - 2.39 (m, 1H), 2.37 (s, 3H), 2.36 - 2.19 (m, 1H), 2.11 - 2.02 (m, 1H), 1.92 - 1.79 (m, 2H), 1.67 - 1.50 (m, 2H), 1.50 - 1.23 (m, 6H)。¹⁹F NMR (377 MHz, DMSO-d₆) δ -216.80、-216.84。いくつかのピークは回転異性体であると考えられる。キラル分析ＨＰＬＣ（Ｃｈｉｒａｌｐａｋ ＯＪ－Ｈ、４．６ｘ２５０ｍｍ、５ミクロン。移動相：１０％ＭｅＯＨ／９０％ＣＯ_２。流速条件：２ｍＬ／分、１５０Ｂａｒ、４０℃。検出波長：２２０ｎｍ）によって、カルボン酸立体中心において、＞９８％ ｄｅ［０．７：９９．３ トランス（８．６１分）：シス（１１．５８分）］が示された。

実施例１６．^１８Ｆ－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸（方法Ａ）の合成

^１８Ｆ－フッ化物水溶液（２．０ｍｌ、１１１ＧＢｑ（３０００ｍＣｉ））を、ＱＭＡ ｌｉｇｈｔ 固相抽出カートリッジに移した（カートリッジは、使用前に、順次５ｍｌの０．５Ｍ重炭酸カリウム、５ｍｌの脱イオン水、および５ｍｌのアセトニトリルで予め調整した）。移動が完了した後、炭酸カリウム（蒸留水（ＤＩ）中に２．０ｍｇ、０．１ｍｌ）、４，７，１３，１６，２１，２４－ヘキサオキサ－１，１０－ジアザビシクロ［８．８．８］ヘキサコサン（１０ｍｇ、０．０２７ｍｍｏｌ）、および１．５ｍｌのアセトニトリルの混合物の添加によって、［^１８Ｆ］－フルオライド水溶液をＱＭＡから溶出した。溶媒を９０℃で穏やかな窒素気流下および真空下で留去して、Ｋ．２．２．２／Ｋ［^１８Ｆ］Ｆ複合体を生成した。この工程が完了した後、２ｍｇの実施例６化合物、（メチル （１Ｓ，３Ｓ）－３－（（２－メチル－６－（１－メチル－５－（（（メチル（４－（トシルオキシ）ブチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）ピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボキシレート）（２ｍｇ、３．１１μｍｏｌ）を、０．７ｍｌ ＤＭＳＯに溶解させ、１－ブチル－３－メチルイミダゾリウム ヘキサフルオロホスフェート（３００μｌ、１．４４１ｍｍｏｌ）を乾燥クリプタンドに加えた。この生じた溶液を１２０℃で５分間加熱した。この加熱時間が終了した後、粗製反応混合物を４５℃に冷却した。次に、０．１％トリフルオロ酢酸水溶液中に溶解させた３７．５％アセトニトリルを含む、４．０ｍｌの溶液を、７０ｍｌのＤＩ水を含む希釈フラスコに移した。移動後、希釈フラスコの内容物を、Ｃ１８ Ｐｌｕｓ（３６０ｍｇ）固相抽出カートリッジにロードした。このサンプルを完全に移動させた後、最後から２番目の物質を、２ｍｌのエタノールでカートリッジから溶出させ、０．５ｍｌの２Ｎ ＮａＯＨを含む合成反応器に移した。この生じた反応液を、７０℃で１０分間加熱した。この後、反応液を４５℃に冷却し、この反応混合物に１ｍｌの１Ｎ ＨＣｌおよび１．５ｍｌの５０ｍＭ リン酸カリウム一塩基性緩衝液（ｐＨ５．０）を加えた。この粗製反応混合物をＺｏｒｂａｘ Ｃ１８ ９．６ｘ２５０ｍｍ ＨＰＬＣカラムにロードし、以下のＨＰＬＣ精製方法を用いて精製した：２９％エタノール １０％アセトニトリル／１００ｍＭリン酸カリウム一塩基性緩衝液＠ｐＨ５．０、３．５ｍｌ／分、２５４ｎｍ＆圧力：１７００ＰＳＩ。図１に示すように、^１８Ｆ－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸を、クロマトグラムの３８－４１分のマークの間で単離し、このサンプルを、ｐＨ８．０の５０ｍｌの２５０ｍＭ Ｔｒｉｓ緩衝液を含む希釈フラスコに回収した。この溶液をＣ１８ ｌｉｇｈｔ（１３０ｍｇ）固相抽出カートリッジに移した。このカートリッジを合成前に、５ｍｌのエタノール、次いで１０ｍｌの無菌水で予め活性化した。移動後、カートリッジを７ｍｌの０．５ｍｇ／ｍｌ アスコルビン酸ナトリウム ｐＨ７．０、次いで７ｍｌの無菌水で洗浄し、次いで最終的に２．０ｍｌのエタノールで、無菌生成物バイアルに溶出した。図２に示すように、７．５ＧＢｑ（２０４ｍＣｉ）の^１８Ｆ－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸を単離して、逆相ＨＰＬＣによって、非放射性標準の共注入による化学的同一性、放射性化学および化学純度、並びに比放射能を解析した。単離した生成物は、非放射性参照標準と共溶出した。サンプルは、１００％放射性化学的に純粋、９７％化学的に純粋、１００％ジアステレオマー過剰、および０．１５ＧＢｑ（４ｍＣｉ）／ｎｍｏｌの比放射能であった。以下の方法を用いて、分析逆相ＨＰＬＣを用いて、構造的同一性、放射性化学純度、および化学純度を決定した：Ｚｏｒｂａｘ ＳＢ－Ｃ１８－２５０ｘ４．６ｍｍ－５ｕｍセミ分取ＨＰＬＣカラム、２９％エタノール、１０％アセトニトリル、および６１％の１００ｍＭ ＫＨ_２ＰＯ_４水溶液から成る定組成方法を用いる、流速１．０ｍｌ／分、ＵＶを２５４ｎｍでモニターした。^１８Ｆ－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸の保持時間は、２６．５分であった。ジアステレオマー過剰率は、以下のパラメーターを用いて、分析キラルＨＰＬＣを用いて測定した。Ｃｈｉｒａｌｐａｋ ＡＤ－Ｈ－２５０ｘ４．６ｍｍカラム、１５％イソプロピルアルコール／ヘプタンの溶液を用いた定組成ＨＰＬＣ方法；流速 ０．９ｍｌ／分、ＵＶは２５４ｎｍでモニターした。^１８Ｆ－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸の保持時間は、３０分であった。比放射能は、４点標準曲線（分析ＨＰＬＣピーク面積（Ｙ）対標準濃度（Ｘ：ｎｍｏｌ））を用いて決定した。適合一次方程式は、以下のパラメーターを用いて、逆相ＨＰＬＣを用いて決定した：Ｚｏｒｂａｘ Ｃ１８－２５０ｘ４．６－５ｕｍ ＨＰＬＣカラム、６０％アセトニトリル／０．１％ＴＦＡ水溶液の移動相を用いる、１．０ｍｌ／分の流速、２５４ｎｍにおけるＵＶでモニターした。

図１は、表題の化合物のセミ分取ＨＰＬＣ精製を示す。

図２は、分析逆相ＨＰＬＣを用いた、（１Ｓ，３Ｓ）－３－（６－（５－（（（４－［^１８Ｆ］－フルオロブチル）（メチル）カルバモイルオキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イルオキシ）シクロヘキサンカルボン酸、並びに参照標準の（１Ｓ，３Ｓ）－３－（６－（５－（（（４－フルオロブチル）（メチル）カルバモイルオキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イルオキシ）シクロヘキサンカルボン酸および（１Ｒ，３Ｓ）－３－（６－（５－（（（４－フルオロブチル）（メチル）カルバモイルオキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イルオキシ）シクロヘキサンカルボン酸の混合物の共注入を示す。

図３は、分析キラルＨＰＬＣを用いた、（１Ｓ，３Ｓ）－３－（６－（５－（（（４－［^１８Ｆ］－フルオロブチル）（メチル）
カルバモイルオキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イルオキシ）シクロヘキサンカルボン酸、並びに（１Ｓ，３Ｓ）－３－（６－（５－（（（４－フルオロブチル）（メチル）カルバモイルオキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イルオキシ）シクロヘキサンカルボン酸および（１Ｒ，３Ｓ）－３－（６－（５－（（（４－フルオロブチル）（メチル）カルバモイルオキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イルオキシ）シクロヘキサンカルボン酸の参照標準の混合物の共注入を示す。

実施例１６（別の合成）．^１８Ｆ－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸の合成（方法Ｂ）
^１８Ｆ－フッ化物水溶液（２．０ｍｌ、１１１ＧＢｑ、３０００ｍＣｉ）を、ＱＭＡ ｌｉｇｈｔ 固相抽出カートリッジに移した（カートリッジは、使用前に、５ｍｌの０．５Ｍ 重炭酸カリウム、５ｍｌの脱イオン水、および５ｍｌのアセトニトリルで順次予め調整した）。この移動が完了した後、炭酸カリウム（２．０ｍｇ／蒸留水（ＤＩ）、０．１ｍｌ）、４，７，１３，１６，２１，２４－ヘキサオキサ－１，１０－ジアザビシクロ［８．８．８］ヘキサコサン（１０ｍｇ、０．０２７ｍｍｏｌ）および１．５ｍｌのアセトニトリルの混合物の添加によって、^１８Ｆ－フルオライド水溶液をＱＭＡから溶出させた。溶媒を９０℃の穏やかな窒素気流および真空下で留去し、Ｋ．２．２．２／Ｋ［^１８Ｆ］Ｆ複合体を生成した。この工程が完了した後、０．７ｍｌ ＤＭＳＯに溶解させた、２ｍｇのメチル （１Ｓ，３Ｓ）－３－（（２－メチル－６－（１－メチル－５－（（（メチル（４－（トシルオキシ）ブチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）ピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボキシレート（２ｍｇ、３．１１μｍｏｌ）、および１－ブチル－３－メチルイミダゾリウム ヘキサフルオロホスフェート（３００μｌ、１．４４１ｍｍｏｌ）を、乾燥クリプタンドに加えた。この生じた溶液を、１２０℃で５分間加熱した。この加熱期間が完了した後、粗製反応混合物を４５℃に冷却した。次に、４．０ｍｌの０．１％トリフルオロ酢酸水溶液を粗製反応液に加え、この溶液をＺｏｒｂａｘ Ｃ１８ ９．６ｘ２５０ｍｍ ＨＰＬＣカラムを用いて、以下のＨＰＬＣ方法：５０％アセトニトリル／０．１％トリフルオロ酢酸水溶液、５ｍｌ／分を用いて、精製した。最後から２番目の物質を、クロマトグラムの７．５－８．５分の間で単離し、このサンプルを、さらにＤＩ水中の７０ｍｌの０．１％トリフルオロ酢酸水溶液を含む希釈フラスコに回収した。この溶液を次いで、Ｃ１８ ｐｌｕｓ ３６０ｍｇ 固相抽出カートリッジに移した。この移動の後、希釈フラスコの内容物を、Ｃ１８ Ｐｌｕｓ（３６０ｍｇ）固相抽出カートリッジにロードした。ロードした後、最後から２番目の物質を、５ｍｌのＤＩ水で洗浄し、次いで１ｍｌのアセトニトリルで、１ｍｌの２Ｎ ＮａＯＨ溶液に溶出し、得られた溶液を７０℃で２５分間加熱した。この時間が完了した後、粗製反応混合物を、１０ｍｌの２Ｎ ＮａＯＨおよび４０ｍｌのＤＩ水を含む希釈フラスコに移した。希釈フラスコの内容物を、次いで、Ｃ１８ ｌｉｇｈｔ（１３０ｍｇ）固相抽出カートリッジに加えた。移動が完了した後、カートリッジをさらに１０ｍｌの０．５ｍｇ／ｍｌ アスコルビン酸溶液で洗浄し、次いで注入のために１０ｍＬの無菌水で洗浄し、最終的に、精製した^１８Ｆ－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸を、１ｍｌのエタノールを用いて、カートリッジから無菌バイアルに溶出させた。７．８ＧＢｑ（２１２ｍＣｉ）の最終生成物を単離し、得られた溶液を、０．２ミクロンフィルターを介して濾過し、４ｍｌの生理食塩水で希釈した。放射性標準の共注入による化学的同一性、放射性化学純度および化学純度、比放射能を、前記の通り分析ＨＰＬＣを用いて測定した。単離した生成物は、非放射性参照標準と共溶出した。サンプルは、１００％放射化学的に純粋、９７％化学的に純粋であり、０．１４ＧＢｑ（３．８ｍＣｉ）／ｎｍｏｌの比放射能を有していた。

^１８Ｆ－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸は、診断イメージング、基礎研究、および放射性治療応用などの、様々なインビトロおよび／またはインビボイメージング応用に用いることができる。可能な診断イメージングおよび放射性治療応用の具体的な例としては、ＬＰＡ１陽性組織の位置の決定、相対的活性およびまたは定量化、ＬＰＡ１陽性組織のラジオイムノアッセイ、および哺乳動物またはその臓器もしくは組織サンプルにおける、ＬＰＡ１陽性組織の分布を決定するためのオートラジオグラフィーが挙げられる。特に、^１８Ｆ－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸は、ヒトおよび実験動物の肺、心臓、腎臓、肝臓、および皮膚、および他の臓器におけるＬＰＡ１陽性腫瘍のポジトロン放出断層（ＰＥＴ）イメージングに有用である。［^１８Ｆ］－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸を用いたＰＥＴイメージングを用いて、以下の情報を得ることができる：患者における、医薬品のＬＰＡ１アンタゴニスト候補による組織占有度と臨床効果との関係；長期臨床試験の開始前の、ＬＰＡ１治療医薬の臨床試験の用量選択；構造的に新規なＬＰＡ１治療医薬の効力の比較；ＬＰＡ１治療医薬を用いた臨床標的の治療の間の、インビボトランスポーター親和性および密度におけるＬＰＡ１治療医薬の効果の調査；効果的および非効果的な治療の間の、ＬＰＡ１陽性組織の密度および分布の変化。

実施例１７．［^１８Ｆ］－（１Ｒ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸（方法Ａ）の合成

^１８Ｆ-フッ化物水溶液（２．０ｍｌ、１１１ＧＢｑ（３０００ｍＣｉ））を、ＱＭＡ ｌｉｇｈｔ 固相抽出カートリッジに移した（カートリッジは、使用前に、５ｍｌの０．５Ｍ 重炭酸カリウム、５ｍｌの脱イオン水、および５ｍｌのアセトニトリルで順次予め調整した）。この移動が完了した後、炭酸カリウム（蒸留水（ＤＩ）中に２．０ｍｇ、０．１ｍｌ）、４，７，１３，１６，２１，２４－ヘキサオキサ－１，１０－ジアザビシクロ［８．８．８］ヘキサコサン（１２ｍｇ、０．０３２ｍｍｏｌ）、および１．５ｍｌのアセトニトリルの混合物の添加によって、［^１８Ｆ］－フルオライド水溶液をＱＭＡから溶出させた。溶媒を９０℃の穏やかな窒素気流および真空下で留去させ、Ｋ．２．２．２／Ｋ［^１８Ｆ］Ｆ複合体を得た。この工程が完了した後、２ｍｇのメチル （１Ｓ，３Ｓ）－３－（（２－メチル－６－（１－メチル－５－（（（メチル（４－（トシルオキシ）ブチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）ピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボキシレート（２ｍｇ、３．１１μｍｏｌ）を、０．７ｍｌ ＤＭＳＯに溶解させ、１－ブチル－３－メチルイミダゾリウム ヘキサフルオロホスフェート（３００μｌ、１．４４１ｍｍｏｌ）を乾燥クリプタンドに加えた。この生じた溶液を１２０℃で１５分間加熱した。この加熱時間が完了した後、粗製反応混合物を４５℃に冷却した。次いで、０．１％トリフルオロ酢酸水溶液に溶解させた３７．５％アセトニトリルを含む４．０ｍｌの溶液を、７０ｍｌのＤＩ水を含む希釈フラスコに移した。この移動の後、希釈フラスコの内容物をＣ１８ Ｐｌｕｓ（３６０ｍｇ）固相抽出カートリッジにロードした。このサンプルを完全に移動させた後、最後から２番目の物質を、２ｍｌのエタノールによってカートリッジから０．５ｍｌの２Ｎ ＮａＯＨを含む合成反応器に溶出させた。この生じた反応液を７０℃で１０分間加熱した。この後、反応液を４５℃に冷却し、この反応混合物に１ｍｌの１Ｎ ＨＣｌおよび１．５ｍｌの５０ｍＭ リン酸カリウム一塩基性緩衝液（ｐＨ５．０）を加えた。この粗製反応混合物を、Ｚｏｒｂａｘ Ｃ１８ ９．６ｘ２５０ｍｍ ＨＰＬＣカラムにロードし、以下のＨＰＬＣ精製方法を用いて精製した：２９％エタノール １０％アセトニトリル／１００ｍＭ リン酸カリウム一塩基性緩衝液＠ｐＨ５．０、３．５ｍｌ／分。２５４ｎｍ＆圧力：１７００ＰＳＩ。［^１８Ｆ］－（１Ｒ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸を、クロマトグラムの２８－３１分のマークの間で単離し、このサンプルを、ｐＨ８．０の５０ｍｌの２５０ｍＭ Ｔｒｉｓ緩衝液を含む希釈フラスコに回収した。この溶液をＣ１８ ｌｉｇｈｔ（１３０ｍｇ）固相抽出カートリッジに移した。このカートリッジを合成前に、５ｍｌのエタノール、次いで１０ｍｌの無菌水で予め活性化した。移動の後、カートリッジを７ｍｌの０．５ｍｇ／ｍｌ アスコルビン酸ナトリウム ｐＨ７．０、次いで７ｍｌの無菌水で洗浄し、次いで最終的に２．０ｍｌのエタノールで無菌生成物バイアルに溶出した。４．１ＧＢｑ（１１２ｍＣｉ）の［^１８Ｆ］－（１Ｒ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸を単離して、逆相ＨＰＬＣによって非放射性標準の共注入による化学的同一性、放射性化学および化学純度、並びに比放射能を分析した。単離した生成物は、非放射性参照標準と共に溶出した。サンプルは１００％放射化学的に純粋、９７％化学的に純粋、１００％ジアステレオマー過剰、０．１５ＧＢｑ（４ｍＣｉ）／ｎｍｏｌの比放射能であった。分析逆相ＨＰＬＣを用いて、以下の方法を用いて、構造的同一性、放射化学的純度、および化学的純度を決定した：Ｚｏｒｂａｘ ＳＢ－Ｃ１８－２５０ｘ４．６ｍｍ－５ｕｍ セミ分取ＨＰＬＣカラム、２９％のエタノール、１０％のアセトニトリル、および６１％の１００ｍＭ ＫＨ_２ＰＯ_４水溶液の溶液から成る定組成方法を使用、２５４ｎｍにおけるＵＶを追跡しながら、流速１．０ｍｌ／分を用いる。［^１８Ｆ］－（１Ｒ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸の保持時間は２６．５分であった。ジアステレオマー過剰率は、以下のパラメーターを用いて、分析キラルＨＰＬＣを用いて測定した：Ｃｈｉｒａｌｐａｋ ＡＤ－Ｈ－２５０ｘ４．６ｍｍカラム、１５％イソプロピルアルコール／ヘプタン溶液を用いた定組成ＨＰＬＣ法を用いた；流速０．９ｍｌ／分、２５４ｎｍにおいてＵＶを追跡。［^１８Ｆ］－（１Ｒ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸の保持時間は、３７．５分であった。比放射能は、４点標準曲線（分析ＨＰＬＣピーク面積（Ｙ）対標準濃度（Ｘ：ｎｍｏｌ））を用いて決定した。適合一次方程式は、以下のパラメーターを用いて、逆相ＨＰＬＣを用いて決定した：Ｚｏｒｂａｘ Ｃ１８－２５０ｘ４．６－５ｕｍ ＨＰＬＣカラム、６０％アセトニトリル／０．１％ＴＦＡ水溶液の移動相を用いる、１．０ｍｌ／分の流速、２５４ｎｍにおけるＵＶでモニターした。

あるいは、^１８Ｆ－フッ化物水溶液（２．０ｍｌ、１１１ＧＢｑ（３０００ｍＣｉ））を、ＱＭＡ ｌｉｇｈｔ 固相抽出カートリッジに移した（カートリッジは、使用前に、５ｍｌの０．５Ｍ重炭酸カリウム、５ｍｌの脱イオン水、および５ｍｌのアセトニトリルで順次、予め調整した）。この移動が完了した後、炭酸カリウム（蒸留水（ＤＩ）中に１．０ｍｇ、０．１ｍｌ）、４，７，１３，１６，２１，２４－ヘキサオキサ－１，１０－ジアザビシクロ［８．８．８］ヘキサコサン（１０ｍｇ、０．０３２ｍｍｏｌ）、および０．９ｍｌのアセトニトリルの混合物を添加して、［^１８Ｆ］－フルオライド水溶液をＱＭＡから溶出させた。溶媒を１２０℃の穏やかな窒素気流および真空下で留去して、Ｋ．２．２．２／Ｋ［^１８Ｆ］Ｆ複合体を得た。この工程が完了した後、２ｍｇのメチル （１Ｓ，３Ｓ）－３－（（２－メチル－６－（１－メチル－５－（（（メチル（４－（トシルオキシ）ブチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）ピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボキシレート（２ｍｇ、３．１１μｍｏｌ）を０．７ｍｌのＤＭＳＯに溶解させ、乾燥クリプタンドに加えた。この生じた溶液を１２０℃で５分間加熱した。この加熱時間が完了した後、粗製反応混合物を４５℃に冷却した。次に、０．１％トリフルオロ酢酸水溶液中に溶解させた３７．５％アセトニトリルを含む４．０ｍｌの溶液を、７０ｍｌのＤＩ水を含む希釈フラスコに移した。この移動の後、希釈フラスコの内容物をＣ１８ Ｐｌｕｓ（３６０ｍｇ）固相抽出カートリッジにロードした。このサンプルを完全に移動させた後、最後から二番目の物質を、１．９ｍｌのエタノールを用いて、カートリッジから０．５ｍｌの２Ｎ ＮａＯＨを含む合成反応器に溶出させた。この生じた反応液を７０℃で１０分間加熱した。この時間の後、反応液を４５℃に冷却し、この反応混合物に、１ｍｌの１Ｎ ＨＣｌおよび１．５ｍｌの５０ｍＭ リン酸カリウム一塩基性緩衝液（ｐＨ５．０）を加えた。この粗製反応混合物をＺｏｒｂａｘ Ｃ１８ ９．６ｘ２５０ｍｍ ＨＰＬＣカラムにロードし、以下のＨＰＬＣ精製方法を用いて精製した：２９％エタノール １０％アセトニトリル／１００ｍＭ リン酸カリウム一塩基性緩衝液＠ｐＨ５．０、３．５ｍｌ／分。２５４ｎｍ＆圧力：１７００ＰＳＩ。［^１８Ｆ］－（１Ｒ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸を、クロマトグラムの２８－３１分のマークで単離し、このサンプルを５０ｍｌのｐＨ８．０の２５０ｍＭ Ｔｒｉｓ緩衝液、２００ｍｇ アスコルビン酸ナトリウムを含む希釈フラスコに回収した。この溶液をＣ１８ ｌｉｇｈｔ（１３０ｍｇ）固相抽出カートリッジに移した。このカートリッジを、使用前に、５ｍｌのエタノール、次いで１０ｍｌの無菌水によって予め活性化した。移動の後、カートリッジを７ｍｌの１ｍｇ／ｍｌのアスコルビン酸ナトリウム ｐＨ７．０で洗浄し、０．２２ミクロンのフィルターを介して、１．０ｍｌのエタノール、次いで７ｍｇのアスコルビン酸ナトリウムを含む７ｍｌの食塩水で、無菌生成物バイアルに溶出した。３．６ＧＢｑ（９７ｍＣｉ）の［^１８Ｆ］－（１Ｒ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸を単離し、非放射性標準の共注入による化学的同一性、放射性化学および化学純度、および比放射能について、逆相ＨＰＬＣによって分析した。単離した生成物は、非放射性参照標準と共に溶出した。サンプルは１００％放射性化学的に純粋、９７％化学的に純粋、１００％ジアステレオマー過剰、および０．１５ＧＢｑ（４ｍＣｉ）／ｎｍｏｌの比放射能であった。分析逆相ＨＰＬＣを用いて、以下の方法を用いて、構造的同一性、放射化学的純度および化学的純度を決定した：カラム：Ｇｅｍｉｎｉ ＮＸ Ｃ１８、５μｍ、４．６ｘ２５０ｍｍ；移動相：３７％アセトニトリルおよび６３％の０．５％酢酸を含む０．１Ｍ ギ酸アンモニウム、ｐＨ４．２；流速：２ｍＬ／分；２５１ｎｍにおいてＵＶをモニターした。

実施例１８．インビトロでの［^１８Ｆ］－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸の全細胞結合
ＬＰＡ１阻害剤としての本発明の化合物の有効性を、以下のように、ＬＰＡ１結合アッセイにおいて決定することができる：ヒトＬＰＡ１を過剰発現するチャイニーズハムスター卵巣細胞を、１０％ウシ胎児血清および１ｍｇ／ｍｌハイグロマイシン（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ ＃１０６８７－０１０）を補充した、Ｆ１２培地（Ｇｉｂｃｏ＃１１７６５）中に維持した。アッセイの日において、サブコンフルエントな細胞の１５０ｃｍ^２フラスコを、ＴｒｉｐＬＥ Ｅｘｐｒｅｓｓ Ｄｉｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ試薬（Ｇｉｂｃｏ＃１２６０５－０１０）によって回収し、計測し、遠心分離し、氷冷結合アッセイ緩衝液（ＢＡＢ：５０ｍＭ ＨＥＰＥＳ ｐＨ７．２、１００ｍＭ ＮａＣｌ、２ｍＭ ＥＤＴＡ）中に２ｘ１０^６細胞／ｍｌで再懸濁させた。細胞は使用まで氷上に置いた。試験化合物希釈プレートは、試験化合物をＤＭＳＯ中に段階的に希釈し（１００％ＤＭＳＯ中に２ｍＭストック、１：３．２６希釈）、次いでＢＡＢ中に１：５０に希釈して、４Ｘ最終濃度において１２のハーフログ試験濃度を生じることによって調製した。結合アッセイは、非結合表面９６ウェルプレート（Ｃｏｒｎｉｎｇ＃３６０５）において、室温で１時間行った。アッセイは以下のように構築した：５０μｌの４Ｘ化合物および７５μｌの^１８Ｆトレーサー（４０００Ｃｉ／ｍｍｏｌ、最終アッセイ濃度３．８ｎＭ）をそれぞれのウェルに加え、次いで７５μｌ細胞懸濁液（計１５００００細胞／ウェル）の添加によってアッセイを開始した。室温で１時間インキュベートした後、プレートをＵｎｉｆｉｌｔｅｒ－９６ ＧＦ／Ｂフィルタープレート（Ｐｅｒｋｉｎ－Ｅｌｍｅｒ＃６００５１７７、０．３％ポリエチレンイミン／水で予め濡らす）において、真空濾過によって回収した。フィルタープレートを３５０μｌのＰＢＳ／０．０１％ＴｒｉｔｏｎＸ－１００で３ｘ洗浄し、２０分間空気乾燥させた。個々のフィルターディスクをフィルタープレートから切り出し、ガンマカウンターで計測した。データを４パラメーターロジスティック方程式（ＧｒａｐｈＰａｄ Ｐｒｉｓｍ，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ ＣＡ）に当てはめることによって、ＩＣ_５０値を決定した。図４は、^１９Ｆ－非標識ＰＥＴトレーサー化合物（Ａ）が、濃度依存性様式における、［^１８Ｆ］－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸のヒトＬＰＡ１受容体過剰発現ＣＨＯ細胞からの結合を阻害することができたことを示す（ＩＣ_５０＝２４．５ｎＭ）。さらに、２つの他の既知のＬＰＡ１選択的化合物（Ｂ、Ｃ）もまた、それぞれ１３．９および３５．２ｎＭのＩＣ_５０値で、濃度依存性様式で、トレーサーと競合することができた。これらのデータによって、Ｆ－１８標識トレーサーがＬＰＡ１に結合することが示された。

実施例１９．野生型およびブレオマイシン処理ラットモデルにおける、標的の発現を検証するための、［^１８Ｆ］－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸によるインビボＰＥＴイメージング
［^１８Ｆ］－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸を試験して、年齢を一致させた野生型（Sprague Dawley rat, Charles River Laboratory, PA）およびブレオマイシン誘発性肺線維症ラットモデルにおいて、その特性、特異性、およびＬＰＡ１受容体の標的化を確認した。ブレオマイシン誘発性肺線維症ラットモデルは、中咽頭点滴注入によってブレオマイシン（２μＬ／ｇ）を投与した、麻酔ラットにおいて生成した。中咽頭点滴注入のために、麻酔ラット（イソフルラン、４％／１００％Ｏ_２）を傾斜したボード／傾斜したワークステーションに置き、ブレオマイシンを声帯に点滴し、吸引を促進した。ラットを次いで、麻酔から完全に回復するまでケージに戻し、実験期間中毎日モニターした。この実験において、上記の実施例において記載されるように生成した［^１８Ｆ］－標識ＬＰＡ１アンタゴニストを、野生型ラットの正常な肺と、ブレオマイシンラット疾患モデルのＬＰＡ１発現が増加した肺とを区別する能力について試験した。ブレオマイシン処理ラットは、ブレオマイシン処理の後１４および１５日目に用いた。ＰＥＴ画像は、１４日（ベースライン）および１５日（ＰＥＴスキャンの３０分前に投与したＬＰＡ１アンタゴニストの１０ｍｇ／ｋｇ経口投与による阻害）において取得した。２つの群のラットがＰＥＴイメージング研究において用いられた－年齢を一致させた野生型ラット（グループ１、ｎ＝４）およびブレオマイシン処理ラット（グループ２、ｎ＝４）。全ての動物は、ベースラインＰＥＴイメージングスキャン、およびＬＰＡ１アンタゴニストの１回の１０ｍｇ／ｋｇの経口投与の後の、反復ＰＥＴイメージングスキャンを受けた。ＰＥＴ画像取得のために、ラットを麻酔導入チャンバーに置き、３％イソフルラン吸入麻酔を、１－１．５Ｌ／分の速度で１００％Ｏ_２において行った。鎮静させた後、ラットを導入チャンバーから取り出し、ＰＥＴシステム（microPET（登録商標） F220（登録商標）、Siemens Preclinical Solutions、Knoxville、TN）のガントリー内のプレキシガラス ２チャンバーホルダー（ＢＭＳが利用するバイオテクノロジーグループによる注文品）に置き、試験の間その場に置かれた。麻酔は、ノーズコーンを介して２Ｌ／分の速度で１００％Ｏ_２において送達される、１－１．５％イソフルラン吸入麻酔によって維持した。イメージング中の低体温を防ぐために、外部の独立型の温度制御ユニット（M2M Imaging Corp）を用いて、動物を温かく保った。ラットの呼吸は、イメージング手順の間継続的にモニターし、イソフルランは麻酔の深さに応じて調節した。最終的なＰＥＴ画像の減衰補正、および関心領域（ＲＯＩ）分析のための肺局在化の確認の目的のために、^５７Ｃｏ点光源を使用して、１０分間の透過画像を最初に取得した。７．６ｃｍのｍｉｃｒｏＰＥＴシステム軸方向視野（ＦＯＶ）内に肺を配置するために、スキャン領域を、それぞれの動物の頸部から始まり、後脚に向かって配置した。透過スキャンが完了した後、それぞれのラットは、尾静脈カテーテルを介して、１９．５－２９．７ＭＢｑ（５４２－８０３μＣｉ）の間の［^１８Ｆ］－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸トレーサーの投与を受け、次いで２時間の動的ＰＥＴ放出スキャンを受けた。阻害試験については、１０ｍｇ／ｋｇのＬＰＡ１アンタゴニストの経口投与の後、同じプロトコルを３０分間行った。画像は、収集した透過画像を用いた減衰補正によって、最大事後（ＭＡＰ）アルゴリズムを用いて再構築され、放射性同位体の減衰が補正された。次いで、解剖学的ランドマーク（肺の空気）および動物ホルダーの境界線を用いて、ＰＥＴ画像は対応する透過画像と共に登録された。画像は、Inveon Research Workstation(Siemens Medical Solutions USA Inc., PA)によって分析した。各ラットの分析は、共に登録された透過画像を用いて、肺全体と肝臓の部位のそれぞれに描かれた関心領域（ＲＯＩ）内で行った。それぞれの肺気量（左肺全体および右肺全体）について、３～４のＲＯＩが描画され、肝臓の部位に３のＲＯＩが描画されていた。ＲＯＩは、心臓および肝臓からの波及シグナルを避けるために、肺全体の内部に描画された。同じ方法を用いて、肝臓の部位にＲＯＩを描画した。これらのＲＯＩ（ｎＣｉ／ｃｃ）からの定量値に基づいて、％注入量／ｃｃ（％ＩＤ／ｇ）を計算した。放射性リガンド注射の６０－９０分後の時間を用いて、これらのグループの肺組織全体で、放射性トレーサーの取り込みを比較した。この方法を用いて、ベースラインでの肺組織における放射性トレーサー取り込みの平均および標準偏差（ＳＥ）は、それぞれ、野生型ラット（グループ１）で０．０８０＋／－０．００７％注射用量／グラム（％ＩＤ／ｇ）、およびブレオマイシン処理ラット（グループ２）で０．１１６＋／－０．０１１％ＩＤ／ｇであった。表１に示されるように、疾患誘発モデルにおける［^１８Ｆ］－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸の肺取り込みは、野生型動物において見られるよりも、肺放射性リガンドシグナルの４６％の上昇を表す（ｐ＜０．０５、ｔ検定：等しい分散を想定した２つのサンプル）。１０ｍｇ／ｋｇのＬＰＡ１アンタゴニストの経口投与による処理の後、肺組織における平均的な放射性リガンドの取り込みは、それぞれ、野生型ラット（グループ１）において０．０３６＋／－０．００３％ＩＤ／ｇであり、ブレオマイシン処理ラット（グループ２）において０．０４６＋／－０．００１％ＩＤ／ｇであった。ブレオマイシン処理ラットおよび野生型ラットの両方の肺組織におけるＰＥＴ放射性リガンド結合を比較すると、表１および図５に示すように、動物を１０ｍｇ／ｋｇのＬＰＡ１アンタゴニストの経口投与によって予め処理した場合、放射性リガンド結合において有意な減少（ブレオマイシン処理動物において６１％、ｐ＜０．０５、および野生型動物において５５％、ｐ＜０．０５、ｔ検定：等しい分散を想定した２つのサンプル）が、肺組織において見られた。これらの結果は、［^１８Ｆ］－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸による、ＬＰＡ１の特異性および標的化についてのインビボでの証拠を提供する。

表１：野生型およびブレオマイシン処理ラットにおける取得データおよび肺取り込み

図５は、Ａ）野生型ラット、Ｂ）ブレオマイシン処理ラット、Ｃ）ＰＥＴスキャンの３０分前の１０ｍｇ／ｋｇのＬＰＡ１アンタゴニストで処理した野生型ラット、Ｄ）ＰＥＴスキャンの３０分前の１０ｍｇ／ｋｇのＬＰＡ１アンタゴニストで処理した、ブレオマイシン処理ラットにおける、［^１８Ｆ］－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸の注入後６０－９０分から合計した、代表的な共に登録されたＰＥＴ透過画像および放出画像を示す。

実施例２０：ＬＰＡ１アンタゴニストのＬＰＡ１標的結合を決定するための、［^１８Ｆ］－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸を用いたブレオマイシン処理ラットモデルにおけるインビボＰＥＴイメージング
［^１８Ｆ］－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸を試験して、ブレオマイシン誘発性肺線維症ラットモデルにおいて用いられるＬＰＡ１アンタゴニストの標的結合を検証した。ブレオマイシン誘発性肺線維症ラットモデルの生成、［^１８Ｆ］標識ＬＰＡ１アンタゴニストの生成、ＰＥＴイメージングの時機、ＰＥＴイメ－ジングのための動物操作、ＰＥＴ画像の取得、およびＰＥＴ画像の後処理は、実施例１４において記載される通りであった。この実験において、［^１８Ｆ］標識ＬＰＡ１アンタゴニストを用いて、ブレオマイシン処理ラットへの様々な経口用量の投与における、ＬＰＡ１アンタゴニストの標的結合（または％置換）を測定した。標的結合研究のために、ブレオマイシン処理ラットを５つのグループに分けた：グループ１のラット（ｎ＝６）を１ｍｇ／ｋｇのＬＰＡ１アンタゴニストで前処理した；グループ２のラット（ｎ＝６）を３ｍｇ／ｋｇで；グループ３（ｎ＝６）のラットを１０ｍｇ／ｋｇで；グループ４（ｎ＝７）のラットを３０ｍｇ／ｋｇで；グループ５（ｎ＝６）のラットを１００ｍｇ／ｋｇで前処理した。それぞれの動物は、ブレオマイシン処理の１４日後に、ベースラインＰＥＴスキャンを受けた。翌日（ブレオマイシン処理の１５日後）、それぞれのグループにおける動物は、前記の通り、［^１８Ｆ］－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸の投与およびＰＥＴスキャン開始の３０分前に、ＬＰＡ１アンタゴニストの経口投与を受けた。実施例１４に記載される方法を用いて、ブレオマイシン処理ラットの肺組織における放射性トレーサー取り込み（％ＩＤ／ｇ）の平均値および標準誤差を、ベースラインおよび治療（阻害）画像の両方について計算した。ベースラインにおいて測定したトレーサーシグナルは、グループ１（１ｍｇ／ｋｇ）で０．１２±０．０１％ＩＤ／ｇであり；グループ２（３ｍｇ／ｋｇ）で０．１０±０．０１％ＩＤ／ｇであり；グループ３（１０ｍｇ／ｋｇ）で０．１２±０．０２％ＩＤ／ｇであり；グループ４で０．０９±０．０１％ＩＤ／ｇであり；グループ５で０．１０±０．０１％ＩＤ／ｇであった。表２に示すように、ＬＰＡ１アンタゴニストの経口投与の３０分後に、これらの値をそれぞれのラットの肺組織について計算した％ＩＤ／ｇと比較した。［^１８Ｆ］－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸の置換率の平均値および標準偏差は、ＬＰＡ１アンタゴニストの用量依存性置換を示した：グループ１（１ｍｇ／ｋｇ）において－３７．９±８．７％、グループ２（３ｍｇ／ｋｇ）において－４８．８±１１．５％、グループ３（１０ｍｇ／ｋｇ）において－５８．９±７．７％、グループ４（３０ｍｇ／ｋｇ）において－６６．４±２．３％、およびグループ５（１００ｍｇ／ｋｇ）において－５６．０±２．８％。この結果は、［^１８Ｆ］－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸を用いて、ＬＰＡ１標的結合およびＬＰＡ１アンタゴニストによる置換率を決定することができる、インビボでの証拠を提供する。

表２は、ベースラインおよびＬＰＡ１アンタゴニスト処理後の取得データ、および［^１８Ｆ］標識アンタゴニストの肺取り込みをまとめる。

図６は、ラットの肺における［^１８Ｆ］－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸の置換率を、ＬＰＡ１アンタゴニストの前投与の複数用量の関数としてグラフ表示したものを示す。表示されているエラーバーは、ＬＰＡ１アンタゴニストで前処理したそれぞれのグループの標準誤差である。

実施例２１．ＬＰＡ１アンタゴニストのＬＰＡ１標的結合を決定するための、非ヒト霊長類における［^１８Ｆ］－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸を用いたインビボＰＥＴイメージング。
［^１８Ｆ］－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸をＬＰＡ１ ＰＥＴ放射性リガンドとして試験して、正常な健康なカニクイサルにおいて用いられるＬＰＡ１アンタゴニストの標的結合を検証し、本薬剤のＰＥＴ放射性リガンドとしての将来の臨床的使用を支持した。この実験において、ＬＰＡ１への特異的結合、正常な健康なカニクイサル（ｎ＝３）におけるＰＥＴイメージングが行われた。ＰＥＴ画像は、ベースラインにおいて取得し、ＬＰＡ１アンタゴニスト（３、１０、および３０ｍｇ／ｋｇ）またはビヒクル溶液（０．５％メトセルＡ４Ｍ：０．１％Ｔｗｅｅｎ８０（ポリソルベート８０）：９９．４％水）のみの経口投与の後、再び取得した。ＬＰＡ１アンタゴニストまたはビヒクルの経口投与時間は、［^１８Ｆ］標識アンタゴニスト注入の３時間前であった。研究において、カニクイサルは、イメージングの日の朝から絶食を開始した。獣医学者は、０．０２ｍｇ／ｋｇアトロピン、および５ｍｇ／ｋｇテラゾール、０．１ｍｇ／ｋｇヒドロモルフォンＩＭの初期麻酔術前カクテルを導入した。鎮静下で、サルはイソフルランによる麻酔の維持、２本のカテーテルの挿管、装着（それぞれ、１本のカテーテルは［^１８Ｆ］標識アンタゴニストの注入のために伏在静脈中にあり、他方は生理食塩水注入のために頭部にある）、イメージングのための動物ホルダーへの設置によって、イメージングのために準備した。バイタルサインは、イメージング研究の間、継続的にモニターした。ＰＥＴ画像からの機能情報を、ＭＲＩからの分析学的情報と組み合わせるために、Ｔ２強調磁気共鳴画像を最初に取得した。この研究の全てのＭＲ画像は、ＰＥＴイメージングの前に、呼吸ゲーティングを備えた４．７－Ｔ ＭＲＩ装置（Ｂｒｕｋｅｒ Ｂｉｏｓｐｉｎ、Ｂｉｌｌｅｒｉｃａ ＭＡ）において取得した。次いで、サルを腹側臥位に置き、通常のＭＲＩ互換モニターを取り付けた。動物を毛布に包み、高周波送受信のための直交２１ｃｍコイル内に置いた。最初のスカウト画像の後に、以下のパラメーターを用いて、Ｂｒｕｋｅｒ ＲＡＲＥシークエンスを用いて、高解像度の冠状断面画像を取得した：ＴＲ／ＴＥ＝３１００／４０ｍｓ、ＦＯＶ＝１８ｃｍ^２、マトリックス＝２５６^２、スライス厚＝５ｍｍ、脳から肺領域をカバーするために、４つの信号平均および１５分の取得時間で、３３の軸方向スライスを取得した。ＭＲＩイメージングの終了時に、同じ拡張イメージングベッド内の麻酔されたサルを、ＭＲＩシステムからｍｉｃｒｏＰＥＴシステム（microPET（登録商標） F220（登録商標）、Siemens Preclinical Solutions、Knoxville、TN）に速やかに移動させた。最終的なＰＥＴ画像の減衰補正、および関心領域（ＲＯＩ）分析のための肺局在化の確認の目的で、^５７Ｃｏ点光源を用いて肺領域の１０分間の透過スキャンを最初に取得した。透過スキャンが完了すると、次いで、それぞれのサルに、伏在静脈を介して１００．３－５９．２ＭＢｑ（２．７－１．６ｍＣｉ）の［^１８Ｆ］－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸トレーサーを注入し、次いで２時間の動的ＰＥＴ放出スキャンを取得した。治療（阻害試験）イメージングについて、ＬＰＡ１アンタゴニストまたはビヒクルを投与した３時間後、前記と同じプロトコルを行った。イメージングが完了した後、サルをホルダーから移動して、覆った加熱パッドで回復させ、酸素補給を行った。意識状態に戻った後、放射能がバックグラウンド量に減衰するまで、サルを餌および水と共に隔離室に移した。

ＰＥＴ画像は、収集した透過画像を用いた減衰補正によって、最大事後（ＭＡＰ）アルゴリズムによって再構築され、放射性同位体の減衰について補正した。ＡＭＩＤＥソフトウェアシステム（version 0.9.1, amide.sourceforge.net）を用いて、基準および分析ランドマークに従って、ＰＥＴ画像を対応するＭＲＩ画像と共に手動で登録した。軸方向に共に登録したＰＥＴ／ＭＲＩにおいて、両方の肺のＲＯＩを手動で描画した。動物の体重（ｋｇ）および注入した放射線量（ｍＣｉ）によって標準化した、平均標準化取り込み値（ＳＵＶ）を計算した。ベースラインにおいて、個々の動物の平均ＳＵＶは、０．３９８（動物Ｂ６２０３）、０．３２１（動物Ｂ７１１１）、および０．３９１（動物Ｂ７１１２）であった。ベースライン研究からの％置換を計算するために、トレーサー投与の６０－９０分後からの平均ＳＵＶを用いて、それぞれの個々の動物についてのベースライン値と比較した。表３は、それぞれのイメージングスキャンについて、それぞれのサルにおける取得データ、投与３時間後における血漿中のＬＰＡ１アンタゴニスト曝露、および６０－９０分の平均ＳＵＶを示す。図７は、ベースライン時、およびビヒクルまたは３、１０、および３０ｍｇ／ｋｇのＬＰＡ１アンタゴニストの投与後の、代表的なＰＥＴ画像を示す。ベースラインと比較した、それぞれの治療群について計算した置換率（平均±標準誤差）は、以下の通りであった：７．７±１．１％（ビヒクル）、－３０．８±１２．０％（３ｍｇ／ｋｇ ＬＰＡ１アンタゴニスト）、－５３．７±３．７％（１０ｍｇ／ｋｇ ＬＰＡ１アンタゴニスト）、および－６０．３±７．４％（３０ｍｇ／ｋｇ ＬＰＡ１アンタゴニスト）（図６）。これらの結果は、ＬＰＡ１発現および標的結合の評価のために、［^１８Ｆ］－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸は、実行可能なＰＥＴイメージング放射性リガンドでありうることを示している。

表３は、ベースラインおよびＬＰＡ１アンタゴニストによる前処理において、［^１８Ｆ］－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸を用いた、健康なカニクイサルにおけるＰＥＴ取得データ、および肺取り込み（６０－９０分の平均ＳＵＶ）をまとめる。

図７は、ベースライン時、およびビヒクルまたは３、１０、および３０ｍｇ／ｋｇのＬＰＡ１アンタゴニストの投与後の、カニクイサルにおける［^１８Ｆ］－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸の代表的なＰＥＴ／ＭＲＩ画像を示す。

図８は、ＬＰＡ１アンタゴニストまたはビヒクルの治療後の、カニクイサル肺組織における［^１８Ｆ］－（１Ｓ，３Ｓ）－３－（（６－（５－（（（（４－（フルオロ）ブチル）（メチル）カルバモイル）オキシ）メチル）－１－メチル－１Ｈ－１，２，３－トリアゾール－４－イル）－２－メチルピリジン－３－イル）オキシ）シクロヘキサン－１－カルボン酸の置換率のグラフ表示を示す。エラーバーはそれぞれのグループの標準誤差を表す。

本発明の化合物は、ＬＰＡ１標的結合および用量依存性受容体占有率を決定するのに、さらに有用なＰＥＴ放射性リガンドとなる、いくつかの利点および設定上の特性を提供することを発見した。例えば、１）本発明のＰＥＴ放射性リガンドは、５－１１％以内のタンパク質結合のない遊離画分を有し、これによって肺組織内において、さらに放射性リガンドシグナルによる定量化が可能になり；２）その放射性代謝は、注入の９０分後に８０％未代謝であり、ＬＰＡ１受容体の定量化について、肺組織内でさらなる放射性リガンドシグナルを有し；３）肝臓と肺の比率が改善され（肝臓：肺の比は、野生型で８：１、ブレオマイシン処理ラットで５：１、および非ヒト霊長類で７：１）、これによってより定量可能な肺組織内でのシグナルを生じ；４）単離された放射化学収率が増加し（３７０ｍＣｉ対２５ｍＣｉ）、２０分の半減期を有する炭素－１１と比較して、１１０分の半減期を有するフッ素－１８によって標識され、より有効な比放射能を有する（５．０ｍＣｉ／ｎｍｏｌ対２．２ｍＣｉ／ｎｍｏｌ）。これらの要因の全てが組み合わさって、さらに定量可能な肺組織内でのシグナルが生じる。

Claims (12)

1. 式：
   で示される放射性標識化合物、またはその薬学的に許容可能な塩を含む、ＰＥＴイメージングに用いるための医薬組成物。
2. 薬学的に許容可能な担体をさらに含む、請求項１に記載の医薬組成物。
3. 既知のＬＰＡ１発現の哺乳動物組織のインビボイメージング方法に使用する請求項１に記載の医薬組成物であって、該方法が以下のステップ：
   （ａ）請求項１に記載の医薬組成物を、哺乳動物種に投与すること；および
   （ｂ）陽電子放出断層撮影（ＰＥＴ）スキャンによって、放射性標識化合物のインビボ分布をイメージングすること
   を含む、医薬組成物。
4. 哺乳動物組織におけるＬＰＡ１受容体の結合部位の占有について親和性を決定するための、非放射性標識化合物のスクリーニング方法に使用する請求項１に記載の医薬組成物であって、該方法が以下のステップ：
   （ａ）請求項１に記載の医薬組成物を、哺乳動物種に投与すること；
   （ｂ）陽電子放出断層撮影（ＰＥＴ）によって、組織の既知のＬＰＡ１発現をインビボイメージングして、放射性標識化合物のベースライン取り込みを決定すること；
   （ｃ）非放射性標識化合物またはその薬学的に許容可能な塩を、哺乳動物種に投与すること；
   （ｄ）放射性標識化合物の第二用量を哺乳動物種に投与すること；
   （ｅ）ＬＰＡ１受容体を発現している組織において、放射性標識化合物の分布をインビボイメージングすること；
   （ｆ）ＬＰＡ１を発現する組織中のベースラインにおけるＰＥＴスキャンデータからのシグナルを、ＬＰＡ１受容体を発現する組織中の非放射性標識化合物を投与した後に得られたＰＥＴスキャンデータと比較すること
   を含む、医薬組成物。
5. ＬＰＡ１受容体アンタゴニストで処理された哺乳動物患者の治療をモニターする方法に使用する請求項１に記載の医薬組成物であって、該方法が以下のステップ；
   （ａ）請求項１に記載の医薬組成物を患者に投与すること；
   （ｂ）ＬＰＡ１受容体を発現する患者における組織の画像を、陽電子放出断層撮影（ＰＥＴ）によって取得すること；および
   （ｃ）放射性標識化合物がＬＰＡ１受容体の結合部位をどの程度占有しているかを検出すること
   を含む、医薬組成物。
6. 組織イメージング方法に使用する請求項１に記載の医薬組成物であって、該方法が以下のステップ：
   ＬＰＡ１受容体を含む組織を、請求項１に記載の放射性標識化合物またはその薬学的に許容可能な塩と接触させること；および
   陽電子放出断層撮影（ＰＥＴ）イメージングを用いて、放射性標識化合物を検出すること
   を含む、医薬組成物。
7. 放射性標識化合物がインビトロで検出される、請求項６に記載の医薬組成物。
8. 放射性標識化合物がインビボで検出される、請求項６に記載の医薬組成物。
9. 哺乳動物種における線維性疾患の存在を診断する方法に使用する請求項１に記載の医薬組成物であって、該方法が以下のステップ：
   （ａ）線維性疾患の存在に関連するＬＰＡ１受容体に結合する、請求項１に記載の医薬組成物を、必要な哺乳動物種に投与すること；および
   （ｂ）哺乳動物種の少なくとも一部の放射線画像を得て、放射性標識化合物の存在または非存在を検出することを含み、そこでバックグラウンドを超える放射性標識化合物の存在および位置は、線維性疾患の存在または非存在を示す、医薬組成物。
10. 哺乳動物種における線維性疾患の存在を診断する方法に使用する請求項１に記載の医薬組成物であって、該方法が以下のステップ：
    （ａ）線維性疾患の存在に関連するＬＰＡ１受容体に結合する、請求項１に記載の医薬組成物を、必要な哺乳動物種に投与すること；
    （ｂ）哺乳動物種の放射性標識化合物の放射性放出を検出すること；
    （ｃ）哺乳動物種の放射性標識化合物の放射性放出を、標準値と比較すること；および
    （ｄ）哺乳動物種について検出された放射性放出を、標準値と比較して任意の有意な偏差があることを見出し、その偏差を線維性疾患に帰すること
    を含む、医薬組成物。
11. 線維性疾患が特発性肺線維症である、請求項９または請求項１０に記載の医薬組成物。
12. 哺乳動物種において疾患細胞または組織の定量する方法に使用する請求項１に記載の医薬組成物であって、該方法が以下のステップ：
    （ａ）疾患細胞または組織中に位置するＬＰＡ１受容体に結合する、請求項１に記載の医薬組成物を、疾患細胞または組織を有する哺乳動物種に投与すること；および
    （ｂ）疾患細胞または組織において、放射性標識化合物の放射性放出を検出することを含み、そこで疾患細胞または組織中の放射性放出の量および分布は、疾患細胞または組織の定量測定である、医薬組成物。

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