JP7265476B2 - Fgfr1を対象とするモノクローナル抗体 - Google Patents
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Description
-用語「免疫グロブリン」(Ig)とは、免疫グロブリン遺伝子により実質的にコード化された1つ以上のポリペプチドからなるたんぱく質を指す。免疫グロブリンの1つの形態は、抗体の基本的な構造単位を構成する。この形態は四量体であり、且つ免疫グロブリン鎖の2つの相同対からなり、各対は1本の軽鎖及び1本の重鎖を有する。軽鎖は可変ドメイン(VL)と定常ドメイン(CL)との2つの部分を有し、軽鎖の文脈では定常領域とも呼ばれる。重鎖は可変ドメイン(VH)と定常領域(CH)との2つの部分を有する。各ペアにおいて、軽鎖及び重鎖可変ドメインは共に抗原への結合に関与し、定常領域は抗体エフェクター機能に関与する。完全長免疫グロブリン「軽鎖」(通常、約25kDa)は、N末端における可変ドメイン遺伝子(通常、約110アミノ酸)、及びC末端におけるカッパ又はラムダ定常ドメイン(それぞれ、CK及びCλ)遺伝子によってコード化される。完全長免疫グロブリン「重鎖」(通常、約50kDa)は、可変ドメイン遺伝子(通常、約116アミノ酸)、及び後述する他の定常領域遺伝子(通常、約330アミノ酸)の1つによって同様にコード化される。哺乳類の重鎖には、ギリシャ文字で[アルファ]、[デルタ]、[イプシロン]、[ガンマ]、及び[ミュー]の5つの型がある。重鎖の型は、抗体のアイソタイプを、IgA、IgD、IgE、IgG、及びIgMとしてそれぞれ規定する。定常領域は同じアイソタイプの全抗体において同一であるが、異なるアイソタイプの抗体では異なる。重鎖[ガンマ]、[アルファ]、及び[デルタ]は、3つのIg定常ドメイン(CH1、CH2、及びCH3)からなる定常領域、並びに更なる柔軟性のためのヒンジ領域を有する。重鎖[ミュー]及び[イプシロン]は、4つのIg定常ドメイン(CH1、CH2、CH3、及びCH4)、並びにヒンジ領域からなる定常領域を有する。
表1は、ヒトFGFR1(huFGFR1b-IIIb、huFGFR1b-IIIc、及びhuFGFR1a-IIIc)の異なるアイソフォームに対する、並びに異なる種であるマウス(mu)、ラット(rat)、アカゲザル(rhe)、及びカニクイザル(cy)からのFGFR1a-IIIcに対する、mAb#A05(二価IgG)及びmAb#A08(二価IgG)について、SPRによって計算された親和性定数KD(モル、M)を報告する。
配列番号1:抗体#A08ヒット(アミノ酸配列)の可変重鎖
EVQLQESGPGLVKPSGTLSLTCAVSGGSISSNNWWSWVRQPPGKGLEWIGEIYHSGSTSYNPSLKSRVTISVDKSKNQFSLKLNSVTAADTAVYYCARGTDWFDPWGQGTLVTVSS
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CAGTCTGCCCTGACTCAGCCTGCCTCCGTGTCTGGGTCTCCTGGACAGTCGATCACCATCTCCTGCACTGGAACCAGCAGTGATGTTGGGAGTTATAACCTTGTCTCCTGGTACCAACAGCACCCAGGCAAAGCCCCCAAACTCATGATTTATGGGGGCAGTAAGCGGCCCTCAGGGGTCCCTGACCGATTCTCTGGCTCCAAGTCTGGCAACACCGCCTCCCTGACCATCTCTGGGCTCCAGGCTGAGGACGAGGCTGATTATTACTGCAGCTCATATACATACAGCGGGGATGTCTTCGGAACTGGGACCAAGGTCACCGTCCTA
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1.1.一過性且つ安定したヒト及びマウスFGFR1発現の作成
NCBI参考文献NP_075594、NP_056934(それぞれ、配列番号80~83)に基づく、ヒト及びマウスのFGFR1b-IIIb及びFGFR1b-IIIcの細胞外ドメインをコード化するcDNAを、C末端6-ヒスチジンタグを用いた遺伝子合成によって作成した。cDNAを哺乳類発現ベクターpVAC2ベクター(InvivoGen)へサブクローニングして、胎盤アルカリ燐酸分解酵素のGPIアンカードメインと融合されたFGFR1たんぱく質をコード化した。
組換えヒトFGFR1b-IIIb及びFGFR1b-IIIc細胞外ドメイン(配列番号80、配列番号81)を、6-ヒスチジンタグに融合させた。FGFR1融合構築物は、標準的な組換えDNA技術を用いて調製した。一過性発現のためにPEIを用いてHEK293細胞へDNAをトランスフェクトした。ニッケルキレートアフィニティーカラム及びイミダゾール溶出によって細胞上清からたんぱく質を精製した。精製たんぱく質についてQC分析を行った:還元及び非還元条件下におけるSDS PAGE、純度及び見かけMW測定のためのSEC、濃度測定のためのUV分光法、並びにエンドトキシン汚染測定のためのLimulus Amebocyte Lysateアッセイ。FGFR1のFGF1又はFGF2誘導リン酸化を阻害する能力によって、たんぱく質をインビトロで機能的に試験した(実施例1.10.を参照)。マウス、ラット、カニクイザル、及びアカゲザルのFGFR1a-IIIc His6タグをCreative BioMart及びSino Biologicalsから購入し、ヒトFGFR2及びFGFR3His6タグをSino Biologicalsから購入した。
抗FGFR1ヒトモノクローナル抗体を、ヒト抗体遺伝子であるヒト軽鎖(VLCL又はVKCK)及びヒトVHを発現するトランスジェニックラット(Open Monoclonal Technologies,Inc./Ligand Pharmaceuticals,Inc.より認可されたOmniRats)を用いて、重鎖のラット定常領域を発現させながら作製した(Geurts et al.2009,Menoret et al.2010,Ma et al.2013,Osborn et al.2013)。
FGFR1に特異的なモノクローナル抗体を、ファージディスプレイ技術、並びにHisタグ化ヒトFGFR1b-IIIb及びFGFR1b-IIIc抗原を用いて作成した。ドナー由来の重鎖及び軽鎖の自然な多様性を有するヒトファージscFv抗体ライブラリを、パニングに用いた。いくつかの異なるアームを使用して、ヒトFGFR1と特異的に結合するscFvを選択した(3~4回の選択)。17944個のファージクローンをELISAによってスクリーニングして、458個の個々のFGFR1結合体を同定した。79のクローンが、FGFR2、FGFR3、又はFGFR4ではなく、FGFR1へ特異的に結合することがELISAによって確認された。これらのうち、25のクローンは、FACSによってFGFR1を発現する細胞との結合を示した。20のユニークなクローンを、IgG1発現のため成功裏に再フォーマットした。FGFR1のリン酸化をブロックする能力に基づいて、ヒット候補を選択した(実施例1.10.を参照)。FGFR1との結合は当初ELISAによって測定され、後にBiacoreによって定量され(実施例1.8.を参照)、そしてFACSによってFGFR1発現細胞との結合が定量された(実施例1.7.を参照)。mAb#A05を含む3つの候補が事前定義されたプロファイルに適合した。
あるいは、FGFR1に対する完全ヒトモノクローナル抗体を作製するために、トランスジェニックラットであるOmniRatsTMを、ヒトFGFR1b-IIIb及びFGFR1b-IIIc抗原(配列番号80及び配列番号81)のHisタグD2-D3で免疫した。前述のように、複数部位での反復免疫化のために一般免疫化スキームを使用した(Kilpatrick et al.1997)。血清免疫応答はFGFR1過剰発現細胞を用いてFACSによりモニターした。
抗体の重鎖及び軽鎖を、pTT5ベクター中へ別々にサブクローニングし、ExpiFectamineトランスフェクション試薬を用いたトランスフェクション後にExpi293細胞中で一時的に共発現させた。細胞を、5%CO2加湿インキュベーター内において37℃で振盪しながら7日間インキュベートした。条件培地を回収し、遠心分離して、細胞片を除去した。標準的な方法を用いてたんぱく質Aアフィニティークロマトグラフィーによって、抗体を培養上清から精製した。精製たんぱく質について次のQC分析を行った:還元及び非還元条件下におけるSDS PAGE、純度及び見かけMW測定のためのSEC、濃度測定のためのUV分光法、並びにエンドトキシン汚染測定のためのLimulus Amebocyte Lysateアッセイ。
細胞株との抗FGFR1抗体の結合を、FACSによって評価した。簡単に述べれば、おおよそ1×105のFGFR1発現細胞を、100~0nMの範囲の抗FGFR1抗体の段階希釈を含有するFACS緩衝剤(1%FBSを有するDPBS)中に再懸濁し、氷上で30分間インキュベートした。細胞を洗浄し、FITC共役ヤギ抗ヒトIgG Fc抗体(Jackson ImmunoResearch Laboratories#109-096-098)を含有するFACS緩衝剤中に、氷上で30分間再懸濁した。次いで、細胞を遠心分離し、7-AAD及び1%中性緩衝ホルマリンを含有するFACS緩衝剤中に再懸濁した。分析はGuava EasyCyte機器(MilliporeSigma)で行った。血流強度中央値(MFI、Median Flow Intensity)を抗体濃度に対してプロットし、GraphPad Prismソフトウェアを用いてEC50値を計算した。mAbs#A08及び#A05は、ヒト及びマウスFGFR1発現細胞に対して高度に特異的であり、対照親Expi293細胞への結合を示さなかった(データ示さず)。
FGFR1に対する抗FGFR1抗体の結合親和性は、以下のようにGE Healthcare BIAcore4000装置を用いて表面プラズモン共鳴(SPR)によって測定した。製造業者によって記載された手順に従って、遊離アミノ基への直接カップリングを用いてBIAcoreカルボキシメチル化デキストランCM5チップ上に、ヤギ抗ヒトFc抗体(Jackson ImmunoResearch Laboratories#109-005-098)を最初に固定化した。次いで、抗体をCM5バイオセンサ・チップ上に捕獲して、おおよそ200応答単位(RU)を達成した。結合測定は、実行中のHBS-EP+緩衝剤を用いて行った。HisタグFGFR1たんぱく質の2倍希釈系列を、25℃において30μl/分の流速で注入した。会合速度(kon、mol/秒ごと)及び解離速度(koff、秒ごと)を、簡単な1:1Langmuir結合モデル(Biacore 4000 Evaluation Software)を用いて計算した。平衡解離定数(KD、モル)をkoff/kon比として算出した。
抗体の結合選択性を、異なるFGFRファミリーメンバーである、FGFR1、FGFR2、FGFR3、及びFGFR4に対してELISAにより試験した。簡単に述べれば、1%ウシ血清アルブミンでブロッキングした後、異なるHis6タグFGFRたんぱく質でプレートを一晩コーティングし、1又は0.1μg/mlの抗FGFR1抗体を室温で1時間インキュベートした。洗浄後、結合した抗体をペルオキシダーゼaffiniPure F(ab’)2断片ヤギ抗ヒトFc(Jackson ImmunoResearch Laboratories#109-036-098)と共に室温で1時間インキュベートし、TMB HRP基質溶液(BioFx Lab#TMBW-1000-01号)を用いて検出を行った。0.1μg/mlでは、mAb#A05のみがFGFR2及びFGFR4に対して強いシグナルを示したが、mAb#A08はFGFR2と非常に弱い結合を示した(データ示さず)。
FGFR1活性化の阻害については、NCI-H520細胞(肺扁平上皮がん由来)を、10%FCS含有RPMI培地中で2×104細胞/ウェルに蒔き、37℃において5%CO2で一晩インキュベートした。培地を無血清RPMI培地で置換することにより、細胞を24時間絶食させた。抗FGFR1抗体又は一本腕分子(すなわち、一価SEED体)の五倍段階希釈をOptimem培地で調製し、37℃で45分間細胞に加えた。ヒトFGF1(Biomol#50440.50)又はFGF2(Biomol#50361.50)をヘパリン(Sigma Aldrich#H3149)と混合し、37℃で10分間、100ng/mlのFGF1又は及びFGF2の5μg/mlのヘパリンの最終濃度を細胞に添加した。細胞を洗浄し、トリトン溶解緩衝剤で氷上において20分間溶解した。溶解した細胞を、遠心分離によって、可溶化液フィルタープレートを通して濾過した。Luminex装置で検出するために、捕獲用ウサギ抗FGFR1(細胞シグナル伝達、クローンD8E4)、並びにマウス抗ホスホFGFR(Tyr653/654)(細胞シグナル伝達クローン55H2)、及びロバ抗マウスPE(Dianova#715-116-151)で被覆したビーズを用いて、リン酸化FGFR1(pFGFR1)を定量した。未処理対照(非刺激性)を100%として設定し、抗体処理試料を%対照として計算した。pFGFR1の%対照を抗体濃度に対してプロットし、GraphPad Prismソフトウェアを用いてIC50値を計算した(表2)。抗FGFR1抗体の活性を、FGFR1リガンドを捕捉するためにFcドメインへ融合したFGFR1の細胞外ドメインからなる分子(国際公開第2005037235号パンフレット)であるFGFトラップの活性と比較し、FP-1039(国際公開第2007014123号パンフレット)、並びにFGFR1-IIIb及びFGFR1-IIIcと結合するIMC-H7とFGFR1-IIIcのみに結合するIMC-A1との他の2つの抗FGFR1(国際公開第2005037235号パンフレット)として示す。全ての分子はFGF-1及びFGF2誘導細胞においてpFGFR1を阻害したが、FGF-1039及びmAb#A08のみがFGF1の存在下においてpFGFR1を完全に阻害した。mAb#A08は4/0.2nMのIC50で最強の阻害活性を示し、mAb#A05はそれぞれFGF1-/FGF2-誘導pFGFR1に対して1/1nMのIC50を示した。このアッセイでは、mAb#A08及びIMC-H7のみがリガンド非依存性pFGFR1を阻害した。
2.1.重鎖及び軽鎖変異体
重鎖及び軽鎖可変領域におけるフレームワーク領域とCDR配列との両方を改変することによって、mAb#A08及びmAb#A05重鎖(配列番号1及び配列番号26;VH)の可変領域のアミノ酸配列、並びにmAb#A08及びmAb#A05軽鎖(配列番号2及び配列番号28;VL)の可変領域のアミノ酸配列を、別々に改変した。これらの配列改変の目的は、その位置で見出される最も相同なヒト生殖系列残基にフレームワークアミノ酸残基を変異させること、関連する細胞アッセイにおける効力を増加させること、Asp異性化、Asn脱アミド化、及びMet酸化を防止することによって分子の製造可能性を改善すること、又はインシリコ同定ヒトT細胞エピトープの抗体を枯渇させることでヒトにおける免疫原性を減少又は消滅させることのいずれかである。
-#A08 VHリード:N92S
-#A05 VHリード:Q1E、M2V
-#A08 CDR1:S35G(配列番号6)又はS31N、N37H(配列番号7)
-#A08 CDR2:T65V(配列番号8)
-#A08 CDR3:G107A、P、Q、A、L、H、S、若しくはTからなる群から選択されるあらゆる残基であるXを有するP117X(配列番号9);G107A、F115Y(配列番号10)、G107A、F115I、P117T(配列番号11)、G107S(配列番号12)、F115I、P117A(配列番号13)、F115Y、P117L(配列番号14)、S若しくはV(配列番号15)からなる群から選択されるあらゆる残基であるXを有するG107X、G107A、T108K、P117A(配列番号16)、又はG107A、F115Y(配列番号17)
-#A08 VLリード:Q1S、A2Y
-#A05 VLリード:D84G、T85N、S86T、C105S、N114S
3.1.バイオプロダクション、清澄、及び精製
配列番号46並びに配列番号41(重鎖)及び配列番号50(軽鎖)に対応するアミノ酸配列を有する一価SEED体#A08を、CHO-LF細胞から作製した(増強ADCCのためのアフコシル化たんぱく質作成)。細胞培養は、250L単回使用バイオリアクタ中においてバッチモードで行った。37℃でグルコースを補充した専用CHO流加増殖培地中において、細胞を増殖させた。培養物には、接種後3、5、7、及び10日目に、独自の飼料成分の混合物を与えた。
抗FGFR1 SEED体(一価)及びIgG1(二価)の親和性を、実施例1.8.に記載したプロトコルと類似するプロトコルを用いてBiacoreにより比較した。SPR実験は、SEED本体及びIgG1フォーマットについて、FGFR1b-IIIcに対する類似の結合親和性を測定した。一価分子へのフォーマッティングは、Fab部分の結合動力学を変化させなかった(データ示さず)。
実施例1.10.に記載されたプロトコルと類似するプロトコルを用いて、二価(IgG1)及び一価(SEED体)としての抗体の活性を比較した。データは、一価フォーマットへ再フォーマットされた場合、全ての抗体が約10倍高いIC50を有するということを示し、これはおそらく細胞面上における結合力の消失によるものである(表3)。クローン#A08のみが、それぞれ70、6、及び20nMのIC50を有するFGF1、FGF2誘導の両方において及びリガンドの非存在下において、一価分子として阻害活性を保持する。同様の知見がFRS2及びErk1/2のリン酸化といった下流シグナル伝達イベントについても得られた(データ示さず)。
ADCCを誘導する抗FGFR1抗体の能力を、ADCCレポーターバイオアッセイコアキット(Promega#G7018)を用いて評価した。簡単に述べれば、DMS53(ヒト小細胞肺がん由来)又はNCI-H520標的細胞を、96ウェルプレート中の1.25×104細胞/ウェルに蒔き、低IgG血清を含有する培地中で一晩増殖させた。次いで、予め加温したADCCアッセイ緩衝剤で培地を置き換えた。抗体の五倍段階希釈を、予め加温したADCCアッセイ緩衝剤中の6:1(エフェクター:標的細胞)の比で、エフェクター細胞(キットに付属のJurkat NFAT-luc)と共に細胞へ加えた。プレートを37℃で6時間インキュベートした。プレートを室温で15分間平衡化した後、Bio-Gloルシフェラーゼアッセイ試薬を添加した。室温で5分間インキュベートした後、Envision2104プレートリーダーを用いて発光を測定した。発光量は、シグナル(誘導マイナスバックグラウンド)/シグナル(抗体対照マイナスバックグラウンドなし)の比として計算した。発光量を抗体濃度に対してプロットした。フコースの存在又は非存在下におけるCHO-LF細胞中に産生された、対照のアフコシル化抗EGFR(EGFR陽性DMS53細胞の陽性対照)、アフコシル化抗CD20(陰性対照)、抗FGFR1を、DMS53(図3a)及びNCI-H520(図3b)細胞に対するADCC活性について比較した。アフコシル化抗FGFR1 SEED体はDMS53及びNCI-H520細胞の両方のADCCを誘導したが、CHO-LF細胞で作成されたフコシル化たんぱく質は中等度のADCCを誘導した。
7~9週齢のH2d RAG3マウス(Taconic)を、Matrigel(BD#354234)で5×106DMS53細胞と共に皮下注射した。腫瘍を増殖させ、動物を無作為に10匹ずつ5群に分けて、平均腫瘍量をおおよそ115mm3とした。群を、媒体(10mMヒスチジン緩衝剤中)又はSEED体#A08と共に、25、12、6、3mg/kg(処方緩衝剤、実施例3.1.参照)で週に二回腹腔内投与した。動物を毎日チェックし、体重を週2回測定した。腫瘍は長さ及び幅をまとめて週2回測定した。腫瘍量は次の式を用いて算出した:長さ×幅×幅/2。
11週齢のH2d RAG3マウス(Taconic)を、2.5×106NCI-H226細胞(ヒト肺扁平上皮がん、中皮腫由来)と共に脇腹へ皮下注射した。47~94mm3の範囲の腫瘍量に達するまで腫瘍を増殖させ、動物を10匹からなる6群にランダム化した。群を、媒体(10mMヒスチジン緩衝剤中)又はSEED体#A08と共に50mg/kg(実施例3.1.に従って処方)で週に二回腹腔内投与した。動物を毎日チェックし、体重を週2回測定した。腫瘍は長さ及び幅をまとめて週2回測定した。腫瘍量は次の式を用いて算出した:長さ×幅×幅/2。
SEED体#A08(一価の形態として)がpan-FGFR阻害剤と同様の作用をインビボで有するかどうかを試験することが重要であった。FGF23経路への干渉により、血漿FGF23レベルの上昇がした(Wohrle et al.2013,Yanochko et al.2013)。媒体、20mg/kgのpan-FGFR阻害剤(BGJ39)、並びに12、50、及び100mg/kgのSEED体#A08を注射したマウスの血漿試料を、24時間後に採取し、製造者の勧告に従いマウスFGF-23ELISAキット(Millipore#EZMFGF23-43K)を用いてマウスFGF23の定量を行った。データは、pan-FGFR阻害剤とは対照的に、SEED体#A08が、全ての試験用量について血漿中のホルモン性FGF23レベルを修飾しないということを示している(図6)。
4.1.ドメインマッピング
抗FGFR1抗体のドメインレベルエピトープマッピングを、ドメインD2(配列番号84に対応する、配列番号81の残基1~142)及びD3(配列番号85に対応する、配列番号81の残基142~164)についてのFGFR1b-IIIc(配列番号81)の部分構築物を作成することによって確立した。これらのD2ドメインに対する抗体結合を、ELISA及びD2によって試験した(図7)。データは、mAb#A08がD2ドメインと結合し、且つmAb#A05がD2と結合しないことを示した。ELISAデータはまた、FGFR1b-IIIb及びFGFR1b-IIIcの両方とmAb#A05が結合するということも実証した。SPRデータは、D2ドメインへのmAb#A08の結合、及びD3ドメインへのmAb#A05の結合を確認した(データ示さず)。
FGFR1抗原(配列番号81)の細胞外ドメインを重水(D2O)溶液中でインキュベートして、過剰な抗FGFR1Fab又は非特異的Fabの存在下又は非存在下において、たんぱく質骨格上のアミドプロトンを溶媒からの重陽子と交換できるようにした。試料をプロテアーゼで消化し、液体クロマトグラフィー質量分析(LC-MS)により分析して、各ペプチド中の重水素化レベルを判定した。
i.細胞外ドメイン及びHisタグにおける、配列番号81の残基52~63、並びに
ii.細胞外ドメイン及びHisタグにおける、配列番号81の残基79~95であって、
mAb#A08の官能性エピトープを含有する、ペプチド。
エピトープのより微細な残基レベルのマッピングを得て、且つHD交換データを補完するために、FGFR1[(Beenken et al.2012);PDBレコード3OJV]の結晶構造の分子モデリング及び手動検査を用いて、HD交換により同定したエピトープ内及びエピトープ周囲の溶媒曝露残基を選択した。選択された残基を、アラニン(大から小)、又は選択された残基がアラニンである場合はグリシンのいずれかへ変異させた。全部で35の点突然変異体を設計し、HEK細胞中で発現させ、精製し、そして実施例1.8.に記載したような表面プラズモン共鳴を用いてmAb#A08への結合について試験した。野生型及び各突然変異体に対する抗体の親和性を測定し、これを使用して結合エネルギーに対する各エピトープ残基の寄与を計算した。
式1:
IgG1(二価)及びSEED体(一価)の両方としての抗体#A08を、(Rhiel et al.2014)に記載された酵母ディスプレイ技術を用いて親和性亢進させ、免疫化OmniRats及びナイーブなヒトライブラリーから軽鎖シャフリングを行い、続いてCDR-H3の簡潔な変異原性を実施した。数回の選別ラウンドの後、酵母クローンを採取し、実施例1.6.及び3.1.に記載されるようにユニークなクローンを再フォーマットした。ヒトFGFR1b-IIIb)及びヒトFGFR1b-IIIc)に対する抗FGFR1分子の結合親和性を、実施例1.9.に記載の類似するプロトコルを用いてELISAにより測定した。OD450を抗体濃度に対してプロットし、GraphPad Prismソフトウェアを用いてEC50値を計算した(図10を参照)。親和性亢進抗FGFR1分子は、より高いEC50値(mAb#A08について8pMと比較して、15pM)を示すIgG1フォーマットにおけるmAb#D01、及びSEED体#A07を除いて、両方のフォーマット(すなわち、IgG1及びSEED体)におけるmAb#A08に対して類似の結合活性を有する。最良の結果はmAb#A02及び#C01で得られ、IgG1及びSEED体フォーマットの両方におけるEC50の改善が示された。
Claims (14)
- FGFR1と結合し、以下:
a.H-CDR1、H-CDR2、及びH-CDR3を含む重鎖可変ドメインであって、H-CDR1、H-CDR2、及びH-CDR3が、それぞれ配列番号3、配列番号4、及び配列番号5のアミノ酸配列からなる重鎖可変ドメイン;
;そして、
b.L-CDR1、L-CDR2、及びL-CDR3を含む軽鎖可変ドメインであって、L-CDR1、L-CDR2、及びL-CDR3が、それぞれ配列番号18、配列番号19、及び配列番号20のアミノ酸配列からなる軽鎖可変ドメイン
を含む、モノクローナル抗体又はその一部。 - a.前記重鎖可変ドメインが、フレームワーク領域H-FR1、H-FR2、H-FR3、及びH-FR4を更に含み、
i.H-FR1が、配列番号30のアミノ酸配列を含むか、又はこのアミノ酸配列からなり、
ii.H-FR2が、配列番号31のアミノ酸配列を含むか、又はこのアミノ酸配列からなり、
iii.H-FR3が、配列番号32のアミノ酸配列を含むか、又はこのアミノ酸配列からなり、
iv.H-FR4が、配列番号33のアミノ酸配列を含むか、又はこのアミノ酸配列からなり、そして、
b.前記軽鎖可変ドメインが、フレームワーク領域L-FR1、L-FR2、L-FR3、及びL-FR4を更に含み、
i.L-FR1が、配列番号34のアミノ酸配列を含むか、又はこのアミノ酸配列からなり、
ii.L-FR2が、配列番号35のアミノ酸配列を含むか、又はこのアミノ酸配列からなり、
iii.L-FR3が、配列番号36のアミノ酸配列を含むか、又はこのアミノ酸配列からなり、
iv.L-FR4が、配列番号37のアミノ酸配列を含むか、又はこのアミノ酸配列からなる、請求項1に記載のモノクローナル抗体。 - a.重鎖可変ドメインが、配列番号1又は配列番号24のアミノ酸配列を含むか、又はこのアミノ酸配列からなり、そして、
b.軽鎖可変ドメインが、配列番号2又は配列番号25のアミノ酸配列を含むか、又はこのアミノ酸配列からなる、請求項1又は2に記載のモノクローナル抗体。 - 前記モノクローナル抗体が重鎖定常領域を含み、前記定常領域が、好ましくは、IgG1型、IgG2型、IgG3型、又はIgG4型から選択される、請求項1~3のいずれか一項に記載のモノクローナル抗体。
- 前記モノクローナル抗体が、IgA/IgG重鎖定常領域を含む、請求項1~3のいずれか一項に記載のモノクローナル抗体。
- 前記IgA/IgG重鎖定常領域が、配列番号46及び配列番号47からなる群から選択されるアミノ酸配列を有する、請求項5に記載のモノクローナル抗体。
- 請求項1~6のいずれか一項に記載の、前記モノクローナル抗体の前記重鎖及び前記軽鎖の両方をコード化するポリヌクレオチド。
- 請求項7に記載のポリヌクレオチドを含む発現ベクター。
- 宿主細胞であって、請求項8に記載の発現ベクター、で形質転換された、宿主細胞。
- 前記細胞が、哺乳類細胞である、請求項9に記載の宿主細胞。
- 請求項1~6のいずれか一項に記載のモノクローナル抗体を製造する方法であって、以下のステップ:
a.請求項9又は10に記載の宿主細胞の培養、及び、
b.前記宿主細胞によって製造された前記抗体の単離、を含む、方法。 - 請求項1~6のいずれか一項に記載のモノクローナル抗体を含む医薬組成物、又は請求項11に記載の方法によって製造されたモノクローナル抗体。
- 薬剤として使用するための、請求項1~6のいずれか一項に記載のモノクローナル抗体、又は請求項11に記載の方法によって製造されたモノクローナル抗体。
- がんの治療に使用するための、請求項1~6のいずれか一項に記載のモノクローナル抗体、又は請求項11に記載の方法によって製造されたモノクローナル抗体。
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