JP7249712B2 - 複合酵素および耐性デキストリンの製造方法 - Google Patents
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Description
1.本発明は、従来の酵素法押出加工工程に比べ、合理的にスクリュー押出(μmスケールの非指向性せん断)と酵素(nmスケールの特異性せん断)の同期作用を用いて、デンプンの秩序(一重/二重らせん)、無秩序(非晶質領域)ならびに分子構造の分解順序および程度を制御して差異性CLDを形成し、この基礎の上で、分岐二重らせん、直鎖一重らせんおよび直鎖-分岐混合らせんなどを含む異なるDP鎖を主とする耐性らせん構造を結晶で形成する。
RDの同時押出および制限的酵素分解の製造方法のステップは次のとおりである。
(2)温度制御高せん断押出:普通のコーンスターチの水分含有量を40wt%に調節し、押出時に、ステップ(1)で配合した混合酵素液を同時に添加した。二軸押出機バレルのシステムパラメータは、温度領域分布が順に40℃、60℃、80℃、100℃、120℃(ダイ領域)であり、スクリュー回転速度が250r/分であり、1回でデンプン糊を押出した。
(3)老化制御:押出したデンプン糊を0℃の条件下で2日間冷却老化した。真空凍結乾燥後に、200メッシュで研磨し、前記RDを得た。
(4)分子量測定:高速液体分子排斥クロマトグラフィーと多角度光散乱検出器および示差屈折率検出器マルチシステム(HPSEC-MALLS-RI)を採用し、Mark-Houwinkパラメータを用いて計算し較正して、サンプルの重量平均分子量(Mw)を得た。
(5)in vitroシミュレーション消化:その場で配合した混合酵素液を用い、37℃でサンプルを計時消化した。混合酵素液の酵素活性配合比は、パンクレアチン(500 U/ml):グリコシダーゼ(700 U/ml):インベルターゼ(400 U/ml)とした。グルコースオキシダーゼ測定キット(GOPOD-FORMAT)を用いて遊離グルコース(Free-sugar glucose, FSG)、消化20 分後グルコース(Glucose of 20, G20)、消化120 分後グルコース(Glucose of 120, G120)および総グルコース(Total glucose, TG)における吸光度を測定し、耐性デンプン(Resistant starch, RS)の収率(%)を計算した。公式は次のとおりである。
RS(%)=(TG-G120)× 0.9/ TS ×100
式中、換算係数0.9を用いて多糖グルコースを異なる消化成分のデンプン値に変換した。TSは総デンプン質量(g)である。
(6)CLDの測定:ゲル補助糖電気泳動技術を採用し、すなわちPA-800Plus Faceシステムで、N-CHOでコーティングしたキャピラリーにおいて分岐デンプン鎖の数量分布を測定し、すなわち検出器信号を用いてNde(X)を得た。
RDの同時押出および制限的酵素分解の製造方法のステップは次のとおりである。
(2)温度制御高せん断押出:普通のコーンスターチの水分含有量を30wt%に調節し、押出時に、ステップ(1)で配合した混合酵素液を同時に添加した。二軸押出機バレルのシステムパラメータは、温度領域分布が順に30℃、50℃、70℃、90℃、110℃(ダイ領域)であり、スクリュー回転速度が200r/分であり、1回でデンプン糊を押出した。
(3)老化制御:押出したデンプン糊を5℃の条件下で2日間冷却老化した。真空凍結乾燥後に、200メッシュで研磨し、前記RDを得た。
(4)分子量測定:高速液体分子排斥クロマトグラフィーと多角度光散乱検出器および示差屈折率検出器マルチシステム(HPSEC-MALLS-RI)を採用し、Mark-Houwinkパラメータを用いて計算し較正して、サンプルの重量平均分子量(Mw)を得た。
(5)in vitroシミュレーション消化:その場で配合した混合酵素液を用い、37℃でサンプルを計時消化した。混合酵素液の酵素活性配合比は、パンクレアチン(500 U/ml):グリコシダーゼ(700 U/ml):インベルターゼ(400 U/ml)とした。グルコースオキシダーゼ測定キット(GOPOD-FORMAT)を用いてFSG、G20、G120およびTGにおける吸光度を測定し、RSの収率(%)を計算した。公式は次のとおりである。
RS(%)=(TG-G120)× 0.9/ TS ×100
式中、換算係数0.9を用いてグルコースを異なる消化成分のデンプン値に変換した。TSは総デンプン質量(g)である。
(6)CLDの測定:ゲル補助糖電気泳動技術を採用し、すなわちPA-800Plus Faceシステムで、N-CHOでコーティングしたキャピラリーにおいて分岐デンプン鎖の数量分布を測定し、すなわち検出器信号を用いてNde(X)を得た。
RDの同時押出および制限的酵素分解の製造方法のステップは次のとおりである。
(2)温度制御高せん断押出:普通のコーンスターチの水分含有量を20wt%に調節し、押出時に、ステップ(1)で配合した混合酵素液を同時に添加した。二軸押出機バレルのシステムパラメータは、温度領域分布が順に20℃、40℃、60℃、80℃、100℃(ダイ領域)であり、スクリュー回転速度が150r/分であり、1回でデンプン糊を押出した。
(3)老化制御:押出したデンプン糊を10℃の条件下で8日間冷却老化した。真空凍結乾燥後に、200メッシュで研磨し、前記RDを得た。
(4)分子量測定:高速液体分子排斥クロマトグラフィーと多角度光散乱検出器および示差屈折率検出器マルチシステム(HPSEC-MALLS-RI)を採用し、Mark-Houwinkパラメータを用いて計算し較正して、サンプルの重量平均分子量(Mw)を得た。
(5)in vitroシミュレーション消化:その場で配合した混合酵素液を用い、37℃でサンプルを計時消化した。混合酵素液の酵素活性配合比は、パンクレアチン(500 U/ml):グリコシダーゼ(700 U/ml):インベルターゼ(400 U/ml)とした。グルコースオキシダーゼ測定キット(GOPOD-FORMAT)を用いてFSG、G20、G120およびTGにおける吸光度を測定し、RSの収率(%)を計算した。公式は次のとおりである。
RS(%)=(TG-G120)× 0.9/ TS ×100
式中、換算係数0.9を用いてグルコースを異なる消化成分のデンプン値に変換した。TSは総デンプン質量(g)である。
(6)CLDの測定:ゲル補助糖電気泳動技術を採用し、すなわちPA-800Plus Faceシステムで、N-CHOでコーティングしたキャピラリーにおいて分岐デンプン鎖の数量分布を測定し、すなわち検出器信号を用いてNde(X)を得た。
RDの同時押出の製造方法のステップは次のとおりである。
(2)温度制御高せん断押出:普通のコーンスターチの水分含有量を30wt%に調節した。二軸押出機バレルのシステムパラメータは、温度領域分布が順に30℃、50℃、70℃、90℃、110℃(ダイ領域)であり、スクリュー回転速度が150r/分であり、1回でデンプン糊を押出した。
(3)老化制御:押出したデンプン糊を4℃の条件下で4日間冷却老化した。真空凍結乾燥後に、200メッシュで研磨し、前記RDを得た。
(4)分子量測定:高速液体分子排斥クロマトグラフィーと多角度光散乱検出器および示差屈折率検出器マルチシステム(HPSEC-MALLS-RI)を採用し、Mark-Houwinkパラメータを用いて計算し較正して、サンプルの重量平均分子量(Mw)を得た。
(5)in vitroシミュレーション消化:その場で配合した混合酵素液を用い、37℃でサンプルを計時消化した。混合酵素液の酵素活性配合比は、パンクレアチン(500 U/ml):グリコシダーゼ(700 U/ml):インベルターゼ(400 U/ml)とした。グルコースオキシダーゼ測定キット(GOPOD-FORMAT)を用いてFSG、G20、G120およびTGにおける吸光度を測定し、RSの収率(%)を計算した。公式は次のとおりである。
RS(%)=(TG-G120)× 0.9/ TS ×100
式中、換算係数0.9を用いてグルコースを異なる消化成分のデンプン値に変換した。TSは総デンプン質量(g)である。
(6)CLDの測定:ゲル補助糖電気泳動技術を採用し、すなわちPA-800Plus Faceシステムで、N-CHOでコーティングしたキャピラリーにおいて分岐デンプン鎖の数量分布を測定し、すなわち検出器信号を用いてNde(X)を得た。
RDの同期押出および単一酵素分解の製造方法のステップは次のとおりである。
(2)温度制御高せん断押出:普通のコーンスターチの水分含有量を30wt%に調節した。二軸押出機バレルのシステムパラメータは、温度領域分布が順に20℃、40℃、60℃、80℃、100℃(ダイ領域)であり、スクリュー回転速度が150r/分であり、1回でデンプン糊を押出した。
(3)老化制御:押出したデンプン糊を4℃の条件下で4日間冷却老化した。真空凍結乾燥後に、200メッシュで研磨し、前記RDを得た。
(4)分子量測定:高速液体分子排斥クロマトグラフィーと多角度光散乱検出器および示差屈折率検出器マルチシステム(HPSEC-MALLS-RI)を採用し、Mark-Houwinkパラメータを用いて計算し較正して、サンプルの重量平均分子量(Mw)を得た。
(5)in vitroシミュレーション消化:その場で配合した混合酵素液を用い、37℃でサンプルを計時消化した。混合酵素液の酵素活性配合比は、パンクレアチン(500 U/ml):グリコシダーゼ(700 U/ml):インベルターゼ(400 U/ml)とした。グルコースオキシダーゼ測定キット(GOPOD-FORMAT)を用いてFSG、G20、G120およびTGにおける吸光度を測定し、RSの収率(%)を計算した。公式は次のとおりである。
RS(%)=(TG-G120)× 0.9/ TS ×100
式中、換算係数0.9を用いてグルコースを異なる消化成分のデンプン値に変換した。TSは総デンプン質量(g)である。
(6)CLDの測定:ゲル補助糖電気泳動技術を採用し、すなわちPA-800Plus Faceシステムで、N-CHOでコーティングしたキャピラリーにおいて分岐デンプン鎖の数量分布を測定し、すなわち検出器信号を用いてNde(X)を得た。
Claims (4)
- 作用部位がα-1,4グリコシド結合またはβ-1,4グリコシド結合であるA類アミラーゼと、作用部位がα-1,6グリコシド結合であるB類アミラーゼとを含み、A類アミラーゼの総酵素活性とB類アミラーゼの総酵素活性との比が1:1.5~6である複合酵素とデンプンとの混合材料を、スクリューせん断共押出処理し、冷却老化した後、高結晶度の低分子量耐性デキストリンを形成し、前記混合材料において、A類アミラーゼの酵素活性は5~20U/gであり、B類アミラーゼの酵素活性は7.5~120U/gであり、上記酵素活性は材料無水ベース(g)で計算され、前記スクリューせん断共押出処理は、五段階温度領域押出を含み、温度は順に、20~50℃、40~70℃、60~90℃、80~110℃、100~130℃であり、五段階温度領域の温度は順に高くなり、スクリュー回転速度は150~400r/分であることを特徴とする耐性デキストリンの製造方法。
- 前記デンプンは、コーンスターチ、ハイアミロースコーンスターチ、ワキシーコーンスターチ、馬鈴薯デンプン、小麦デンプン、タピオカデンプン、甘藷デンプン、米デンプンの一種または複数種であることを特徴とする請求項1に記載の製造方法。
- 複合酵素とデンプンの混合材料の含水量が20~40wt%であることを特徴とする請求項1に記載の製造方法。
- 前記冷却老化は、スクリューせん断共押出処理後に得られた構造再構築デンプン糊を0~10℃の条件下に置き、2~8日間冷却再結晶することを特徴とする請求項1に記載の製造方法。
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