JP7072090B2 - Coronavirus propagation method - Google Patents

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Description

本発明は宿主におけるコロナウイルスの増殖方法に関する。 The present invention relates to a method for growing a coronavirus in a host.

風邪や急性呼吸器症候群(COVID-19、中東呼吸器症候群(MERS)、重症急性呼吸器症候群(SARS))は、コロナウイルス(SARSコロナウイルス、SARSコロナウイルス-2、MERSコロナウイルス、ヒトコロナウイルスOC43、ヒトコロナウイルス229E、ヒトコロナウイルスHKU1、ヒトコロナウイルスNL63)によって引き起こされる感染症であり、飛沫感染や接触感染、エアロゾル感染、空気感染等により感染し、高熱、せき、頭痛、筋肉痛、関節痛、肺炎、息切れ、倦怠感、疲労、のどの痛み等の強い全身症状を伴う呼吸器感染症である。コロナウイルスに起因する感染症を予防する目的でコロナウイルスワクチンの開発が世界中で進められており、コロナウイルスを不活化したコロナウイルスワクチンの接種は急性呼吸器症候群の重症化の防御に最良の手段と考えられる。 Colds and acute respiratory syndrome (COVID-19, Middle East respiratory syndrome (MERS), severe acute respiratory syndrome (SARS)) are coronaviruses (SARS coronavirus, SARS coronavirus-2, MERS coronavirus, human coronavirus). It is an infectious disease caused by OC43, human coronavirus 229E, human coronavirus HKU1, human coronavirus NL63), and is infected by droplet infection, contact infection, aerosol infection, air infection, etc. It is a respiratory infection with strong systemic symptoms such as joint pain, pneumonia, shortness of breath, malaise, fatigue, and sore throat. Coronavirus vaccines are being developed around the world to prevent infections caused by coronavirus, and coronavirus-inactivated coronavirus vaccines are the best way to prevent the aggravation of acute respiratory syndrome. Considered a means.

不活化コロナウイルスワクチンは、ワクチン製造用のコロナウイルスを培養細胞により培養増殖させ、培養液中から遠心にて濃縮精製し、ウイルス粒子を界面活性剤等で処理し、ホルマリンで不活化した全粒子ワクチン又はウイルス粒子をエーテルや界面活性剤で破砕後更に精製を行ったスプリットワクチン又はサブユニットワクチンなどが考えられる。開発が進められている不活化SARSコロナウイルス-2ワクチンには、コロナウイルスに対する中和抗体の誘導能が報告されている(非特許文献1)。
しかしながら、コロナウイルスに対するワクチンを培養細胞で大量に製造する場合、時間、労働及び費用を要し、急な大量生産ができないという供給安定性の面で問題がある。
In an inactivated coronavirus vaccine, coronavirus for vaccine production is cultured and propagated in cultured cells, concentrated and purified from the culture solution by centrifugation, virus particles are treated with a surfactant or the like, and all particles inactivated with formarin. A split vaccine or a subunit vaccine in which a vaccine or virus particles are crushed with ether or a surfactant and then further purified can be considered. The inactivated SARS coronavirus-2 vaccine under development has been reported to have the ability to induce a neutralizing antibody against coronavirus (Non-Patent Document 1).
However, when a large amount of a vaccine against coronavirus is produced by cultured cells, it takes time, labor and cost, and there is a problem in terms of supply stability that sudden mass production cannot be performed.

SARSコロナウイルスの場合は、ウイルスタンパク質のNsp15は宿主のアポトーシスを抑制することでウイルスの増殖を効率的に行い、Nsp15のアポトーシス抑制機構を欠損した変異体ではウイルスの増殖性が低下することが示唆されている(非特許文献2)。しかしながら、別の報告では、SARSコロナウイルスは宿主へ感染することでアポトーシスを誘導するものの、アポトーシスシグナルを阻害しても複製を抑制できなかったと報告されている(非特許文献3)。また、SARSコロナウイルスの7Aタンパク質は宿主のアポトーシス抑制因子であるBcl-XL、Bcl-2、Mcl-1、Bcl-w、A1タンパク質と結合することでその機能を抑制し、アポトーシスを誘導する可能性が示唆されているが、アポトーシス誘導因子であるBaxやBakには結合性を示さず、制御していないことが示唆されている(非特許文献4)。 In the case of SARS coronavirus, it is suggested that the viral protein Nsp15 efficiently proliferates the virus by suppressing the apoptosis of the host, and that the virus proliferation is reduced in the mutant lacking the apoptosis suppression mechanism of Nsp15. (Non-Patent Document 2). However, another report reports that although SARS coronavirus induces apoptosis by infecting the host, it cannot suppress replication even if the apoptosis signal is inhibited (Non-Patent Document 3). In addition, the 7A protein of SARS coronavirus can suppress its function and induce apoptosis by binding to the host apoptosis suppressors Bcl-XL, Bcl-2, Mcl-1, Bcl-w, and A1 proteins. Although sex is suggested, it does not show binding to or regulates apoptosis-inducing factors Bax and Bak (Non-Patent Document 4).

上記、非特許文献から得られた結果より、コロナウイルスの感染に伴い、宿主ではアポトーシスシグナルが作動していることが推察されるが、数多あるシグナル構成因子の中で、どのタンパク質を制御することがウイルスの増殖に必須であるか、また、化合物によるタンパク質の機能阻害や活性化、特定遺伝子の欠損によりウイルスの増殖性を亢進させるかどうかは、現時点で明らかとなっていない。加えて、化合物によるタンパク質の機能阻害や活性化、特定遺伝子の欠損によりウイルスの増殖性を亢進させるといった報告はない。 From the results obtained from the above non-patent literature, it is inferred that the apoptotic signal is activated in the host with the infection of coronavirus, but which protein is regulated among many signal components. It is not clear at this time whether this is essential for virus growth, and whether compound-induced protein function inhibition or activation, or deletion of a specific gene enhances virus growth. In addition, there are no reports that the growth of the virus is enhanced by the functional inhibition or activation of the protein by the compound or the deletion of a specific gene.

Science.2020;369:77-81Science.2020; 369: 77-81 Proc Natl Acad Sci USA. 2017;114:E4251-E4260Proc Natl Acad Sci USA. 2017; 114: E4251-E4260 DNA Cell Biol. 2005;24:496-502DNA Cell Biol. 2005; 24: 496-502 J Virol. 200781:6346-5)J Virol. 200781: 6346-5)

本発明はワクチンの材料となるコロナウイルスを、宿主中でより効率よく増殖させる方法を提供することに関する。 The present invention relates to providing a method for more efficiently propagating a coronavirus, which is a material for a vaccine, in a host.

本発明者等は、鋭意研究を重ねた結果、コロナウイルスを感染させる宿主において、アポトーシス促進タンパク質として知られるBaxのミトコンドリア内膜への移行を抑制してアポトーシスを抑制した場合に、ウイルスの増殖性が定常状態(ウイルスを感染させた対照)よりも向上し、ウイルスの産生量が増加することを見出した。 As a result of diligent research, the present inventors have suppressed the translocation of Bax, which is known as an apoptosis-promoting protein, to the mitochondrial inner membrane in a host infected with coronavirus, thereby suppressing the proliferation of the virus. Was found to be higher than in the steady state (virus-infected control) and increased virus production.

すなわち、本発明は、以下の1)~4)に係るものである。
1)宿主においてコロナウイルスを増殖する方法であって、宿主細胞のBaxのミトコンドリア内膜への移行を抑制する工程を含む、方法。
2)1)の方法によってコロナウイルスを増殖させ、宿主からウイルス粒子を回収する、コロナウイルス粒子の調製方法。
3)2)の方法によって調製されたコロナウイルス粒子を用いてワクチンを製造する、コロナウイルスワクチンの製造方法。
4)Bax阻害剤を有効成分とするコロナウイルス増殖促進剤。
That is, the present invention relates to the following 1) to 4).
1) A method for propagating a coronavirus in a host, comprising the step of suppressing the transfer of Bax to the inner mitochondrial membrane of the host cell.
2) A method for preparing coronavirus particles, in which the coronavirus is propagated by the method of 1) and the virus particles are recovered from the host.
3) A method for producing a coronavirus vaccine, which comprises producing a vaccine using coronavirus particles prepared by the method of 2).
4) A coronavirus growth-promoting agent containing a Bax inhibitor as an active ingredient.

本発明の方法によれば、コロナウイルスを効率よく増殖でき、ワクチン調製のためのコロナウイルスを大量生産することができる。 According to the method of the present invention, the coronavirus can be efficiently propagated, and the coronavirus for vaccine preparation can be mass-produced.

Bax阻害ペプチド添加によるコロナウイルス(HCoV-OC43)増殖促進効果。Coronavirus (HCoV-OC43) growth promoting effect by adding Bax inhibitory peptide. Bax阻害化合物添加によるコロナウイルス(HCoV-OC43)増殖促進効果。Coronavirus (HCoV-OC43) growth promoting effect by adding Bax inhibitor compound. Bax阻害化合物添加によるコロナウイルス(SARS-CoV-2)増殖促進効果。Coronavirus (SARS-CoV-2) growth promoting effect by adding Bax inhibitor compound.

本発明において、コロナウイルスとしては、アルファ型、ベータ型、ガンマ型及びデルタ型のいずれの遺伝子型でも良いが、ベータ型を好適に例示することができる。ベータ型コロナウイルスとしては、MERSコロナウイルス(MERS-CoV)、SARSコロナウイルス(SARS-CoV)、SARSコロナウイルス-2(SARS-CoV-2)、ヒトコロナウイルスOC43(HCoV-OC43)、ヒトコロナウイルスHKU1(HCoV-HKU1)が挙げられる。また、アルファ型コロナウイルスとしては、ヒトコロナウイルス229E(HCoV-229)、ヒトコロナウイルスNL63(HCoV-NL63)が挙げられる。 In the present invention, the coronavirus may be any genotype of alpha type, beta type, gamma type and delta type, but the beta type can be preferably exemplified. Examples of beta-type coronaviruses include MERS coronavirus (MERS-CoV), SARS coronavirus (SARS-CoV), SARS coronavirus-2 (SARS-CoV-2), human coronavirus OC43 (HCoV-OC43), and human coronavirus. The virus HKU1 (HCoV-HKU1) can be mentioned. Examples of the alpha coronavirus include human coronavirus 229E (HCoV-229) and human coronavirus NL63 (HCoV-NL63).

また、対象となるウイルス株は宿主としてヒトに感染できるモノであればよく、他に霊長類、家畜、家禽、ペットとして飼育される動物へ感染が考えられるウイルス株であれば特に限定されず、これまでに単離報告がなされたコロナウイルスの他、将来単離・同定される亜型も包含される。 In addition, the target virus strain may be any virus strain that can infect humans as a host, and is not particularly limited as long as it is a virus strain that can infect primates, livestock, poultry, and animals raised as pets. In addition to the coronaviruses that have been reported to be isolated, subtypes that will be isolated and identified in the future are also included.

また、本発明のコロナウイルスは、感染動物や患者等の感染個体から単離された株であってもよく、遺伝子工学的に培養細胞で樹立された組換えウイルスであってもよい。 Further, the coronavirus of the present invention may be a strain isolated from an infected individual such as an infected animal or a patient, or may be a recombinant virus genetically engineered in cultured cells.

本発明において、「Bax」とは、Bcl-2ファミリーに属するアポトーシス促進タンパク質を指す。Bcl-2ファミリーに属するタンパク質はBH(Bcl-2 homology)ドメインと呼ばれるアミノ酸配列を1つ以上有している。また、C末端側に疎水性の高いTM(transmembrane)領域を有しているため、ミトコンドリア膜上に移行し、アポトーシスを制御することが可能となる。 In the present invention, "Bax" refers to an apoptosis-promoting protein belonging to the Bcl-2 family. Proteins belonging to the Bcl-2 family have one or more amino acid sequences called BH (Bcl-2 homology) domains. In addition, since it has a highly hydrophobic TM (transmembrane) region on the C-terminal side, it can migrate to the mitochondrial membrane and control apoptosis.

Bcl-2ファミリータンパク質の主要機能は、ミトコンドリアの透過性を調節することによるアポトーシスの制御である。抗アポトーシスタンパク質であるBcl-2とBcl-xLはミトコンドリアの外壁に存在し、シトクロムcの放出を阻害する。アポトーシス促進性のタンパク質であるBad、Bid、Bax及びBimは細胞質に存在し、細胞死のシグナルによりミトコンドリア内膜へと移動し、そこでシトクロムcの放出を促進する。BaxはKu70タンパク質に結合してミトコンドリア外膜付近へ誘導される。Bidは、Caspase-9によって切断されて活性化体tBit(truncated Bid)となり、これがミトコンドリア外膜付近へ誘導されたBaxと結合することにより、Baxのミトコンドリア内膜への貫通を誘導する。細胞外へ流出したシトクロムcはApaf-1と複合体を形成し、カスパーゼ9を活性化、さらにカスパーゼ3、6、7を活性化することでアポトーシスが起こると考えられている(Annu Rev Genet (2009)43:95-118)。 The main function of the Bcl-2 family proteins is the regulation of apoptosis by regulating mitochondrial permeability. The anti-apoptotic proteins Bcl-2 and Bcl-xL are present on the outer wall of mitochondria and inhibit the release of cytochrome c. The apoptotic proteins Bad, Bid, Bax and Bim are present in the cytoplasm and migrate to the inner mitochondrial membrane by the signal of cell death, where they promote the release of cytochrome c. Bax binds to the Ku70 protein and is induced near the outer mitochondrial membrane. The Bid is cleaved by Caspase-9 to become an activator tBit (truncated Bid), which binds to the Bax induced near the outer mitochondrial membrane to induce the penetration of the Bax into the inner mitochondrial membrane. Cytochrome c that has flowed out of the cell forms a complex with Apaf-1, activates caspase-9, and further activates caspases 3, 6, and 7 to cause apoptosis (Annu Rev Genet (Annu Rev Genet). 2009) 43: 95-118).

本発明において、「Baxのミトコンドリア内膜への移行の抑制」とは、ウイルス感染から放出の過程で細胞内に生じるシグナル伝達に起因する、Baxの細胞質からミトコンドリア内膜への移行を抑制することを意味する。 In the present invention, "suppression of the translocation of Bax to the inner mitochondrial membrane" means suppressing the translocation of Bax from the cytoplasm to the inner mitochondrial membrane due to signal transduction that occurs inside the cell in the process of release from viral infection. Means.

抑制手段としては、宿主の細胞質に存在するBaxのミトコンドリア内膜への移行を抑制可能であれば、特に限定されない。例えばBaxと相互作用してBaxのミトコンドリア移行を抑制する分子又はBaxのミトコンドリア移行を促進するBax以外の分子を阻害する分子(「Bax阻害剤」と称する)を当該細胞に適用すること、細胞質内に存在するBaxを遺伝子工学的に低減すること等が挙げられるが、好適には、Bax阻害剤の使用である。すなわち、本発明において、Bax阻害剤は、宿主の培養によってコロナウイルスを増殖させるためのコロナウイルス増殖促進剤であると云え、宿主の培養によってコロナウイルスを増殖させるために使用できる。また、Bax阻害剤はコロナウイルス増殖促進剤を製造するために使用することができるとも云える。 The suppressing means is not particularly limited as long as it can suppress the transfer of Bax present in the cytoplasm of the host to the inner mitochondrial membrane. For example, applying a molecule that interacts with Bax to suppress the mitochondrial translocation of Bax or a molecule other than Bax that promotes mitochondrial translocation of Bax (referred to as "Bax inhibitor") to the cell, intracytoplasmic reticulum. The use of a Bax inhibitor is preferable, although it may be mentioned that the Bax present in the above is genetically engineered. That is, in the present invention, the Bax inhibitor can be said to be a coronavirus growth promoter for growing coronavirus by culturing the host, and can be used to grow coronavirus by culturing the host. It can also be said that the Bax inhibitor can be used to produce a coronavirus growth promoter.

Bax阻害剤としては、好適には、Baxのミトコンドリア内膜への移行に必要なKu70タンパク質とBaxとの結合を阻害するペプチドや化合物が挙げられ、例えばBiochem Biophys Res Commun (2004)321:961-966)やNat Cell Biol (2003)5:352-357)に記載のペプチドが挙げられる。
具体的には、Val-Pro-Met-Leu-Lys(配列番号1)、Pro-Met-Leu-Lys-Glu(配列番号2)、Val-Pro-Thr-Leu-Lys(配列番号3)、及びVal-Pro-Ala-Leu-Arg(配列番号4)が挙げられるが、この他にもVal-Pro-Ala-Leu-Lys(配列番号5)、Pro-Ala-Leu-Lys-Asp(配列番号6)、Val-Ser-Ala-Leu-Lys(配列番号7)及びSer-Ala-Leu-Lys-Asp(配列番号8)等が挙げられる。ここで、配列番号1及び2で示されるアミノ酸配列は、ヒトのKu70におけるBax結合領域の配列であり、また、配列番号3はマウスのKu70におけるBax結合領域の配列、配列番号4はラットのKu70におけるBax結合領域の配列である。これらのアミノ酸配列からなるペプチドは、Ku70とBaxとの結合を阻害し、Baxの機能を抑制する(Biochem Biophys Res Commun (2004)321:961-966)、Nat Cell Biol (2003)5:352-357)。また、配列番号5及び配列番号6で示されるアミノ酸配列は、水鳥由来のKu70のBax結合領域のアミノ酸配列として、配列番号7及び配列番号8で示されるアミノ酸配列は、ニワトリ由来のKu70のBax結合領域のアミノ酸配列として、特定されたものであり、配列番号1~4のペプチドと同様に、Baxに結合し、Baxの機能を抑制する蓋然性が高いと云える。
Bax inhibitors preferably include peptides and compounds that inhibit the binding of Bax to the Ku70 protein required for Bax translocation to the mitochondrial inner membrane, eg, Biochem Biophys Res Commun (2004) 321: 961-. The peptides described in 966) and Nat Cell Biol (2003) 5: 352-357) can be mentioned.
Specifically, Val-Pro-Met-Leu-Lys (SEQ ID NO: 1), Pro-Met-Leu-Lys-Glu (SEQ ID NO: 2), Val-Pro-Thr-Leu-Lys (SEQ ID NO: 3), And Val-Pro-Ala-Leu-Arg (SEQ ID NO: 4), but also Val-Pro-Ala-Leu-Lys (SEQ ID NO: 5) and Pro-Ala-Leu-Lys-Asp (SEQ ID NO: 5). No. 6), Val-Ser-Ala-Leu-Lys (SEQ ID NO: 7), Ser-Ala-Leu-Lys-Asp (SEQ ID NO: 8) and the like. Here, the amino acid sequences shown in SEQ ID NOs: 1 and 2 are the sequences of the Bax binding region in human Ku70, SEQ ID NO: 3 is the sequence of the Bax binding region in mouse Ku70, and SEQ ID NO: 4 is the sequence of the Bax binding region in rat Ku70. Is an array of Bax binding regions in. Peptides consisting of these amino acid sequences inhibit the binding of Ku70 to Bax and suppress the function of Bax (Biochem Biophys Res Commun (2004) 321: 961-966), Nat Cell Biol (2003) 5: 352- 357). The amino acid sequences shown in SEQ ID NO: 5 and SEQ ID NO: 6 are the amino acid sequences of the Bax-binding region of Ku70 derived from water birds, and the amino acid sequences shown in SEQ ID NO: 7 and SEQ ID NO: 8 are the Bax binding of Ku70 derived from chickens. It is specified as the amino acid sequence of the region, and it can be said that it is highly probable that it binds to Bax and suppresses the function of Bax, similarly to the peptides of SEQ ID NOs: 1 to 4.

斯かるBax阻害剤におけるBax阻害効果は、例えば、BaxとKu70タンパク質との結合阻害活性を測定することにより評価できる。また、Bax阻害剤を添加した条件において、当該細胞へアポトーシスを誘導し、そのアポトーシス細胞の割合を評価することにより評価できる。 The Bax inhibitory effect of such a Bax inhibitor can be evaluated, for example, by measuring the binding inhibitory activity between Bax and the Ku70 protein. Further, it can be evaluated by inducing apoptosis in the cells under the condition to which the Bax inhibitor is added and evaluating the ratio of the apoptotic cells.

また、別のBax阻害剤としては、好適には、Baxのミトコンドリア内膜への移行に必要なtBitとBaxとの結合を阻害する化合物(Bax-tBit結合阻害剤)が挙げられ、例えばBiochem J. (2009)423:381-387、J. Med Chem. (2003)46:4365-4368、Cell Chem Biol. (2017)24:493-506に記載の化合物が挙げられる。
具体的には、下記(a)~(s)で示される化合物が挙げられる。
Further, as another Bax inhibitor, preferably, a compound (Bax-tBit binding inhibitor) that inhibits the binding between tBit and Bax, which is necessary for the translocation of Bax to the inner mitochondrial membrane, can be mentioned, for example, Biochem J. (2009) 423: 381-387, J. Med Chem. (2003) 46: 4365-4368, Cell Chem Biol. (2017) 24: 493-506.
Specific examples thereof include the compounds shown in the following (a) to (s).

Figure 0007072090000001
Figure 0007072090000001

Figure 0007072090000002
Figure 0007072090000002

化合物(a):(±)-1-(3,6-Dibromocarbazol-9-yl)-3-piperazin-1-ylpropan-2-ol (CAS No. 335165-68-9; Bax channel blocker, BAI1,iMAC1)、<Biochem J. (2009)423:381-387>
化合物(b):(±)-3,6-Dibromo-9-(2-fluoro-3-piperazin-1-yl-propyl)-carbazole(CAS No. 335166-36-4;iMAC2) <Biochem J. (2009)423:381-387>
化合物(c):9H-Carbazole-9-ethanol, 3,6-dibromo-α-[[4-(3-phenylpropyl)-1-piperazinyl]methyl] (CAS No. 335166-34-2; iMAC3)<Biochem J. (2009)423:381-387>
化合物(d):9H-Carbazole-9-ethanol, 3,6-dibromo-α-[[4-[2-(4-morpholinyl)ethyl]-1-piperazinyl]methyl] (CAS No. 607393-53-3; iMAC4)<Biochem J. (2009)423:381-387>
化合物(e):9H-Carbazole-9-ethanol, 3,6-dichloro-α-[[4-[2-(4-morpholinyl)ethyl]-1-piperazinyl]methyl] (CAS No. 1198394-60-3; iMAC5<Biochem J. (2009)423:381-387>
化合物(f):9H-Carbazole-9-ethanol, 3,6-dibromo-α-[[4-[(4-methoxyphenyl)methyl]-1-piperazinyl]methyl] (CAS No. 758683-33-9)<J. Med Chem. (2003)46:4365-4368>
化合物(g):1-Piperazinecarboxamide, 4-[3-(3,6-dibromo-9H-carbazol-9-yl)-2-hydroxypropyl]-N-(4-fluorophenyl) (CAS No. 607393-52-2)<J. Med Chem. (2003)46:4365-4368>
化合物(h):9H-Carbazole-9-ethanol, 3,6-dibromo-α-[[4-[(4-fluorophenyl)methyl]-1-piperazinyl]methyl] (CAS No. 335166-30-8)<J. Med Chem. (2003)46:4365-4368>
化合物(i):9H-Carbazole-9-ethanol, 3,6-dibromo-α-[[4-(4-fluorophenyl)-1-piperazinyl]methyl] (CAS No. 607393-54-4)<J. Med Chem. (2003)46:4365-4368>
化合物(j):2-Propanone, 1-(3,6-dibromo-9H-carbazol-9-yl)-3-(1-piperazinyl) (CAS No. 335166-13-7)<J. Med Chem. (2003)46:4365-4368>
化合物(k):9H-Carbazole-9-ethanamine, 3,6-dibromo-α-(1-piperazinylmethyl) (CAS No. 607393-56-6)<J. Med Chem. (2003)46:4365-4368>
化合物(l):9H-Carbazole, 3,6-dibromo-9-[2,2-difluoro-3-(1-piperazinyl)propyl] (CAS No. 607393-55-5)<J. Med Chem. (2003)46:4365-4368>
化合物(m):2-Piperidinecarboxamide, N-(6-aminohexyl)-1-(1-oxotridecyl) (CAS
No. 355138-94-2, 355138-95-3) Bci1<Biochem J. (2009)423:381-387>
化合物(n):2-Pyrrolidinecarboxamide, N-(5-aminopentyl)-1-(1-oxotridecyl) (CAS No. 355139-25-2)Bci2<Biochem J. (2009)423:381-387>
化合物(o):2-Benzofurancarboxylic acid, 3-[[(4-bromophenyl)methyl]amino]-2,3-dihydro-6-hydroxy-, ethyl ester, (2S,3S) (CAS No. 2251048-54-9; BJ-1)<Cell Chem Biol. (2017)24:493-506>
化合物(p):2-Benzofurancarboxylic acid, 6-hydroxy-, ethyl ester (CAS No. 906448-92-8; BJ-1-BP) <Cell Chem Biol. (2017)24:493-506>
化合物(q):(S)-N-{1-[(3-Amino-propyl)-(4-bromo-benzyl)-carbamoyl]-2-phenyl-ethyl}-benzamide (DAN004) <Cell Chem Biol. (2017)24:493-506>
化合物(r):N-{1(S)-[[3(S)-Amino-6-(2-methoxy-ethoxymethoxy )-2,3-dihydro-benzofuran-2(R)-ylmethyl]-(4-bromo-benzyl)-carbamoyl]-2-phenyl-ethyl}-benzamide(CAS No. 1592908-75-2; MSN-50)<Cell Chem Biol. (2017)24:493-506>
化合物(s)N-{1(S)-[[2(R)-Aminomethyl-6-(2-methoxy-ethoxymethoxy)-2,3-dihydro-benzofuran-3(S)-yl]-(4-bromo-benzyl)-carbamoyl]-2-phenyl-ethyl}-benzamide(CAS No. 1592908-16-1;MSN-125)<Cell Chem Biol. (2017)24:493-506>等が挙げられる。
Compound (a): (±) -1- (3,6-Dibromocarbazol-9-yl) -3-piperazin-1-ylpropan-2-ol (CAS No. 335165-68-9; Bax channel blocker, BAI1, BAI1, iMAC1), <Biochem J. (2009) 423: 381-387>
Compound (b): (±) -3,6-Dibromo-9- (2-fluoro-3-piperazin-1-yl-propyl) -carbazole (CAS No. 335166-36-4; iMAC2) <Biochem J. (2009) 423: 381-387 >
Compound (c): 9H-Carbazole-9-ethanol, 3,6-dibromo-α-[[4- (3-phenylpropyl) -1-piperazinyl] methyl] (CAS No. 335166-34-2; iMAC3) < Biochem J. (2009) 423: 381-387 >
Compound (d): 9H-Carbazole-9-ethanol, 3,6-dibromo-α-[[4- [2- (4-morpholinyl) ethyl] -1-piperazinyl] methyl] (CAS No. 607393-53- 3; iMAC4) <Biochem J. (2009) 423: 381-387>
Compound (e): 9H-Carbazole-9-ethanol, 3,6-dichloro-α-[[4- [2- (4-morpholinyl) ethyl] -1-piperazinyl] methyl] (CAS No. 1198394-60- 3; iMAC5 <Biochem J. (2009) 423: 381-387>
Compound (f): 9H-Carbazole-9-ethanol, 3,6-dibromo-α-[[4-[(4-methoxyphenyl) methyl] -1-piperazinyl] methyl] (CAS No. 758683-33-9) <J. Med Chem. (2003) 46: 4365-4368>
Compound (g): 1-Piperazinecarboxamide, 4- [3- (3,6-dibromo-9H-carbazol-9-yl) -2-hydroxypropyl] -N- (4-fluorophenyl) (CAS No. 607393-52- 2) <J. Med Chem. (2003) 46: 4365-4368>
Compound (h): 9H-Carbazole-9-ethanol, 3,6-dibromo-α-[[4-[(4-fluorophenyl) methyl] -1-piperazinyl] methyl] (CAS No. 335166-30-8) <J. Med Chem. (2003) 46: 4365-4368>
Compound (i): 9H-Carbazole-9-ethanol, 3,6-dibromo-α-[[4- (4-fluorophenyl) -1-piperazinyl] methyl] (CAS No. 607393-54-4) <J. Med Chem. (2003) 46: 4365-4368 >
Compound (j): 2-Propanone, 1- (3,6-dibromo-9H-carbazol-9-yl) -3- (1-piperazinyl) (CAS No. 335166-13-7) <J. Med Chem. (2003) 46: 4365-4368 >
Compound (k): 9H-Carbazole-9-ethanamine, 3,6-dibromo-α-(1-piperazinylmethyl) (CAS No. 607393-56-6) <J. Med Chem. (2003) 46: 4365-4368 >
Compound (l): 9H-Carbazole, 3,6-dibromo-9- [2,2-difluoro-3- (1-piperazinyl) propyl] (CAS No. 607393-55-5) <J. Med Chem. ( 2003) 46: 4365-4368 >
Compound (m): 2-Piperidinecarboxamide, N- (6-aminohexyl) -1- (1-oxotridecyl) (CAS)
No. 355138-94-2, 355138-95-3) Bci1 <Biochem J. (2009) 423: 381-387>
Compound (n): 2-Pyrrolidinecarboxamide, N- (5-aminopentyl) -1- (1-oxotridecyl) (CAS No. 355139-25-2) Bci2 <Biochem J. (2009) 423: 381-387>
Compound (o): 2-Benzofurancarboxylic acid, 3-[[(4-bromophenyl) methyl] amino] -2,3-dihydro-6-hydroxy-, ethyl ester, (2S, 3S) (CAS No. 2251048-54) -9; BJ-1) <Cell Chem Biol. (2017) 24: 493-506>
Compound (p): 2-Benzofurancarboxylic acid, 6-hydroxy-, ethyl ester (CAS No. 906448-92-8; BJ-1-BP) <Cell Chem Biol. (2017) 24: 493-506>
Compound (q): (S) -N- {1-[(3-Amino-propyl)-(4-bromo-benzyl) -carbamoyl] -2-phenyl-ethyl} -benzamide (DAN004) <Cell Chem Biol. (2017) 24: 493-506 >
Compound (r): N- {1 (S)-[[3 (S) -Amino-6- (2-methoxy-ethoxymethoxy) -2,3-dihydro-benzofuran-2 (R) -ylmethyl]-(4) -bromo-benzyl) -carbamoyl] -2-phenyl-ethyl} -benzamide (CAS No. 1592908-75-2; MSN-50) <Cell Chem Biol. (2017) 24: 493-506>
Compound (s) N- {1 (S)-[[2 (R) -Aminomethyl-6- (2-methoxy-ethoxymethoxy) -2,3-dihydro-benzofuran-3 (S) -yl]-(4- bromo-benzyl) -carbamoyl] -2-phenyl-ethyl} -benzamide (CAS No. 1592908-16-1; MSN-125) <Cell Chem Biol. (2017) 24: 493-506> and the like.

斯かるBax阻害剤におけるBax阻害効果は、例えば、BaxとtBitタンパク質との結合阻害活性を測定することにより評価できる。また、Bax阻害剤を添加した条件において、当該細胞へアポトーシスを誘導し、そのアポトーシス細胞の割合を評価することや、ミトコンドリアの膜電位及びCytochrome cの放出量を測定することにより評価できる。 The Bax inhibitory effect of such a Bax inhibitor can be evaluated, for example, by measuring the binding inhibitory activity between Bax and the tBit protein. Further, it can be evaluated by inducing apoptosis in the cells under the condition of adding a Bax inhibitor and evaluating the ratio of the apoptotic cells, or by measuring the membrane potential of mitochondria and the amount of cytochrome c released.

本発明において、斯かるBax阻害剤は、上記のペプチドからなる群及び上記の(a)~(s)で示される化合物からなる群から選ばれる1つ又は2つ以上を適宜組み合わせて用いることができる。 In the present invention, such a Bax inhibitor may be used in an appropriate combination of one or two or more selected from the group consisting of the above peptides and the group consisting of the compounds represented by the above (a) to (s). can.

Bax阻害剤は、コロナウイルス(アルファ型、ベータ型、ガンマ型、及びデルタ型)を増殖させるための宿主に対して、濃度0.001μM以上、好ましくは0.01μM以上、より好ましくは0.1μM以上で、且つ200μM以下、好ましくは100μM以下、より好ましくは50μM以下、また、0.001~200μM、好ましくは0.010.1~100μM、より好ましくは0.1~50μMで使用される。また、Bax阻害剤を1種類使用する、又は2種以上併用することで、コロナウイルス増殖能をペプチド又は化合物単独の使用よりもさらに向上させても良い。 The Bax inhibitor has a concentration of 0.001 μM or more, preferably 0.01 μM or more, and more preferably 0.1 μM with respect to the host for growing the coronavirus (alpha type, beta type, gamma type, and delta type). As described above, it is used at 200 μM or less, preferably 100 μM or less, more preferably 50 μM or less, and 0.001 to 200 μM, preferably 0.010.1 to 100 μM, more preferably 0.1 to 50 μM. Further, the coronavirus growth ability may be further improved as compared with the use of the peptide or the compound alone by using one kind of Bax inhibitor or using two or more kinds of them in combination.

コロナウイルスの増殖は、具体的には、宿主中にコロナウイルスを感染させる工程、及び当該感染宿主をウイルスが複製可能な条件下で培養する工程により行われるが、本発明においては、Baxのミトコンドリア内膜への移行を抑制する工程が、例えばウイルス感染前、ウイルス感染後、又はウイルス感染と同時に行われるが、ウイルス感染後3時間以内に、Baxのミトコンドリア内膜への移行を抑制するのが好ましい。好適な態様として、Bax阻害剤をウイルス感染前、ウイルス感染後、又はウイルス感染と同時に宿主に添加することが挙げられ、好ましくは、ウイルス感染後3時間以内にBax阻害剤を宿主に添加することが挙げられる。 The growth of coronavirus is specifically carried out by a step of infecting the host with the coronavirus and a step of culturing the infected host under conditions in which the virus can replicate. In the present invention, the mitochondria of Bax are carried out. The step of suppressing the transfer to the intima is performed, for example, before the virus infection, after the virus infection, or at the same time as the virus infection, but within 3 hours after the virus infection, the transfer of Bax to the mitochondrial inner membrane is suppressed. preferable. A preferred embodiment is to add the Bax inhibitor to the host before, after the virus infection, or at the same time as the virus infection, preferably to add the Bax inhibitor to the host within 3 hours after the virus infection. Can be mentioned.

コロナウイルスの増殖に用いられる宿主としては、好適には培養細胞が良い。
培養細胞としては、コロナウイルスに感受性であれば如何なる細胞も使用できる。このような細胞として、Vero細胞(アフリカミドリザル腎臓由来の株化細胞)、例えばVero E6 rhesus kidney cells(ATCC CRL-1586),Vero FM rhesus kidney cells(ATCC CCL-81),HCT-8 cells(ATCC CCL-244)、MRC-5 cells(ATCC CCL-171)、CaCo-2 human colon carcinoma(ATCC HTB-37)、Calu 1 human lung carcinoma(ICLC HTL95002)、Calu 6 human lung carcinoma(ICLC HTL97003)、POEK porcine foetal kidney(cell culture collection of the
Robert Koch-Institute(RKI),Berlin,Germany)、PK13 porcine kidney(cell culture collection of the Bernhard-Nocht-Institute(BNI),Hamburg,Germany)、293 human embryonic kidney(ATCC CRL-1573)、FEA feline embryonic fibroblast(established by Dr.Marcel Asper,NewLab Inc.,Cologne)、RD human rhabdomyosarcoma cells(RKI)、PS porcine kidney cells(RKI)、LLC-MK2 African green monkey kidney cells(ATTC CCL-7)等が挙げられる。これらの細胞は、さらにコロナウイルスへの感受性を変化させる目的やウイルス増殖性を亢進させる目的で遺伝的に改変を行っても良く、また、コロナウイルスへの感受性を示す細胞であれば上記株化細胞に限らず初代培養細胞を用いても良く、これらに限定されるものではない。
As a host used for the growth of coronavirus, cultured cells are preferably preferable.
As the cultured cells, any cells that are sensitive to coronavirus can be used. Such cells include Vero cells (strained cells derived from African green monkey kidney), such as Vero E6 rhesus kidney cells (ATCC CRL-1586), Vero FM rhesus kidney cells (ATCC CCL-81), HCT-8 cells (ATCC). CCL-244), MRC-5 cells (ATCC CCL-171), CaCo-2 human kidney carcinoma (ATCC HTB-37), Calu 1 human lung carcinoma (ICLC HTL95002), Calu 6 humanKlCl porcine focal kidney (cell culture collection of the)
Robert Koch-Institute(RKI),Berlin,Germany)、PK13 porcine kidney(cell culture collection of the Bernhard-Nocht-Institute(BNI),Hamburg,Germany)、293 human embryonic kidney(ATCC CRL-1573)、FEA feline embryonic fibroblast (estavlyshed by Dr. Marcel Asper, NewLab Inc., Koch Institute), RD human rhabdomyosarcoma cells (RKI), PS porcine Kidney Cell .. These cells may be genetically modified for the purpose of further changing the susceptibility to coronavirus or enhancing the viral proliferation, and if the cells show susceptibility to coronavirus, the above-mentioned strains may be obtained. Not limited to cells, primary cultured cells may be used, and the present invention is not limited thereto.

宿主として培養細胞を用いる場合、細胞を培養するための培地としては、通常細胞培養に用いられる培地、例えば、ウシ胎児血清(FBS)含有MEM培地(Wako社製)、無血清培地(Serum-Free Medium)(ThermoFisher社製)、RPMI培地(ThermoFisher社製)、DMEM培地(ThermoFisher社製)等が挙げられるが何れを使用しても良い。 When cultured cells are used as the host, the medium for culturing the cells is a medium usually used for cell culture, for example, a MEM medium containing fetal bovine serum (FBS) (manufactured by Wako), a serum-free medium (Serum-Free). Medium) (manufactured by Thermo Fisher), RPMI medium (manufactured by Thermo Fisher), DMEM medium (manufactured by Thermo Fisher) and the like may be used.

当該培地には、細胞の増殖効率を上げるために、非必須アミノ酸やL-グルタミンを添加することができる。また、コロナウイルスの培養においては、効率的なウイルス増殖を実現するためにトリプシンやアセチル化トリプシン等のプロテアーゼを添加することができる。また、微生物のコンタミネーションを避けるために、ペニシリンやストレプトマイシン、ゲンタマイシン等の細胞培養に一般的に使用される抗生物質を添加してもよい。培地のpHは、適当な緩衝液(例えば、炭酸水素ナトリウム、HEPES)で動物細胞の増殖に適した6.5~8、好ましくは、6.8~7.3に調整される。 Non-essential amino acids and L-glutamine can be added to the medium in order to increase the growth efficiency of cells. Further, in the culture of coronavirus, proteases such as trypsin and acetylated trypsin can be added in order to realize efficient viral growth. Further, in order to avoid contamination of microorganisms, antibiotics generally used for cell culture such as penicillin, streptomycin, and gentamicin may be added. The pH of the medium is adjusted to 6.5-8, preferably 6.8-7.3, suitable for the growth of animal cells with a suitable buffer (eg, sodium hydrogen carbonate, HEPES).

細胞培養の方法としては、培養器の底に細胞を付着させた静止培養、細胞を培地中に浮遊させて培養する浮遊培養が挙げられるが、工業生産レベルで行なうときは、浮遊培養が好ましい。浮遊培養の方法としては、マイクロキャリアなどの担体に細胞を付着させてこれを浮遊させて培養する方法又は担体を用いずに細胞を浮遊させて培養する方法等が挙げられるが、何れの方法を用いても良い。 Examples of the cell culture method include static culture in which cells are attached to the bottom of an incubator and suspension culture in which cells are suspended and cultured in a medium, but suspension culture is preferable when performing at an industrial production level. Examples of the method of suspension culture include a method of attaching cells to a carrier such as a microcarrier and suspending and culturing the cells, a method of suspending and culturing cells without using a carrier, and the like. You may use it.

細胞培養物(培養した細胞と培地の混液)は、そのままコロナウイルスの接種に使用することができるが、コロナウイルスの接種に際しては、新鮮な培地又は適当な緩衝液、例えば、PBS、トリス緩衝液により細胞の洗浄が行なわれることが好ましい。
具体的には、スピナ-フラスコ等で培養増殖した細胞を低速遠心又は膜ろ過し、細胞と培養上清に分離し、遠心沈渣又は膜ろ過濃縮液の細胞に新鮮培地を加え、細胞を懸濁することにより培地交換が行われる。
The cell culture (mixture of cultured cells and medium) can be used as it is for coronavirus inoculation, but when inoculating coronavirus, fresh medium or a suitable buffer, for example, PBS, Tris buffer, etc. It is preferable that the cells are washed with the virus.
Specifically, cells cultured and proliferated in a spinner flask or the like are subjected to slow centrifugation or membrane filtration, separated into cells and culture supernatant, and fresh medium is added to the cells of the centrifugal sediment or membrane filtration concentrate to suspend the cells. By doing so, the medium is exchanged.

斯くして得られる細胞培養物に、コロナウイルス液が添加され、一定条件下で培養が行なわれる。ウイルス培養開始時の初期細胞密度は0.001~100×10 cells/mLを用いることができるが、好ましくは0.01~10×10 cells/mL、より好ましくは0.1~10×10 cells/mLである。なお、細胞密度の測定は、血球計算盤等による一般的な方法に従って行えばよい。細胞培養物に添加されるコロナウイルス液は、感染価MOI(Multiplicity of infection)が0.00001~10となるように添加できるが、好ましくは0.0001~0.1、より好ましくは0.0001~0.01で添加することができる。 A coronavirus solution is added to the cell culture thus obtained, and the culture is carried out under certain conditions. The initial cell density at the start of virus culture can be 0.001 to 100 × 10 6 cells / mL, preferably 0.01 to 10 × 10 6 cells / mL, more preferably 0.1 to 10 ×. It is 10 6 cells / mL. The cell density may be measured according to a general method using a blood cell calculator or the like. The coronavirus solution added to the cell culture can be added so that the infectious titer MOI (Multiplicity of infection) is 0.00001 to 10, but is preferably 0.0001 to 0.1, more preferably 0.0001. It can be added at ~ 0.01.

培養条件は、宿主内でコロナウイルスが増殖可能な条件であればいかなる条件であってもよい。細胞の種類、ウイルス接種量及び培養スケール・方法等の組み合わせにより適切に調節される。例えば、宿主として培養細胞を用いる場合、培養温度は、32℃~39℃、好ましくは33~38℃、培養期間は、1~10日間、好ましくは2~7日間、炭酸ガス濃度は3~8%、好ましくは4~5%、酸素濃度は、17~25%、好ましくは20~22%が使用される。 The culture conditions may be any conditions as long as the coronavirus can grow in the host. It is appropriately adjusted by the combination of cell type, virus inoculation amount, culture scale, method and the like. For example, when cultured cells are used as a host, the culture temperature is 32 ° C to 39 ° C, preferably 33 to 38 ° C, the culture period is 1 to 10 days, preferably 2 to 7 days, and the carbon dioxide concentration is 3 to 8. %, preferably 4 to 5%, and the oxygen concentration is 17 to 25%, preferably 20 to 22%.

本発明の方法によれば、コロナウイルスを効率的に増殖させることができる。なお、宿主中のウイルス含量は、ウイルス感染価を測定するプラークアッセイやTCID50、ウイルスRNA量を測定できるリアルタイムPCR、Indirect Immunoperoxidase Assay(IPA法)等により測定することができる。 According to the method of the present invention, the coronavirus can be efficiently propagated. The virus content in the host can be measured by a plaque assay for measuring the virus infectivity titer, a TCID 50 , a real-time PCR capable of measuring the amount of virus RNA, an Indirect Immunoperoxidase Assay (IPA method), or the like.

コロナウイルスは、感染した培養細胞の細胞内及び培養上清に含まれる。培養終了後、宿主中のウイルス浮遊液又は細胞溶解物からウイルス粒子が回収され、濃縮、精製及び不活化することにより、不活化全粒ワクチンや不活化スプリットワクチン用のウイルス粒子を調製することができる。生ワクチンや弱毒化生ワクチンとして用いる場合は、濃縮及び精製後にコロナウイルスワクチン用のウイルス粒子として調製することができる。 Coronavirus is contained in the cells of infected cultured cells and in the culture supernatant. After the culture is completed, virus particles can be recovered from the virus suspension or cell lysate in the host and concentrated, purified and inactivated to prepare virus particles for inactivated whole-grain vaccine or inactivated split vaccine. can. When used as a live vaccine or an attenuated live vaccine, it can be prepared as virus particles for a coronavirus vaccine after concentration and purification.

ウイルス粒子の回収は、ウイルス浮遊液を清澄化すること、具体的には遠心分離又は濾過することにより行われ、次いで、濃縮のために、限外濾過が行われる。ウイルスの精製は、サイズ排除クロマトグラフィーやショ糖密度勾配遠心分離等の超遠心分離や液体クロマトグラフィー等の手段を用いて行うことができる。精製ウイルス液は、不活化全粒ワクチンや不活化スプリットワクチンの場合、ホルマリン処理、紫外線照射、ベータプロピオラクトン、バイナリーエチレンイミン等により、不活化処理される。生ワクチンや弱毒化生ワクチンとして用いる場合は、上記精製ウイルス液をコロナウイルスワクチン用のウイルス粒子として調製される。不活化処理と精製の工程はどちらを先に行っても良く、特に限定されない。 Recovery of virus particles is performed by clarification of the virus suspension, specifically by centrifugation or filtration, followed by extrafiltration for concentration. Purification of the virus can be performed by means such as ultracentrifugation such as size exclusion chromatography and sucrose density gradient centrifugation, and liquid chromatography. In the case of an inactivated whole-grain vaccine or an inactivated split vaccine, the purified virus solution is inactivated by formalin treatment, ultraviolet irradiation, beta-propiolactone, binary ethyleneimine, or the like. When used as a live vaccine or an attenuated live vaccine, the purified virus solution is prepared as virus particles for a coronavirus vaccine. Either the inactivation treatment or the purification step may be performed first, and is not particularly limited.

斯かるコロナウイルス粒子に、適宜医薬として許容され得る担体(緩衝剤、乳化剤、保存剤(例えば、チメロサール)、等張化剤、pH調整剤、アジュバント(例えば、水酸化アルミニウムゲル)等を添加し、各種剤型のワクチンを製造することができる。 A carrier (buffer, emulsifier, preservative (eg, Timerosar), tonicity agent, pH adjuster, adjuvant (eg, aluminum hydroxide gel), etc., which is appropriately acceptable as a medicine, is added to such coronavirus particles. , Various types of vaccines can be produced.

上述した実施形態に関し、本発明においてはさらに以下の態様が開示される。
<1>宿主においてコロナウイルスを増殖する方法であって、宿主細胞のBaxのミトコンドリア内膜への移行を抑制する工程を含む、方法。
<2>Baxのミトコンドリア内膜への移行を抑制する工程が、Bax阻害剤を前記細胞に添加する工程である、<1>の方法。
<3>Bax阻害剤が、Val-Pro-Met-Leu-Lys(配列番号1)、Pro-Met-Leu-Lys-Glu(配列番号2)、Val-Pro-Thr-Leu-Lys(配列番号3)、Val-Pro-Ala-Leu-Arg(配列番号4)、Val-Pro-Ala-Leu-Lys(配列番号5)、Pro-Ala-Leu-Lys-Asp(配列番号6)、Val-Ser-Ala-Leu-Lys(配列番号7)、及びSer-Ala-Leu-Lys-Asp(配列番号8)からなるペプチド群、並びに下記(a)~(s)で示される化合物群から選ばれる1以上である、<2>の方法。
<4>宿主が、Vero E6 rhesus kidney cells(ATCC
CRL-1586),Vero FM rhesus kidney cells(ATCC CCL-81),HCT-8 cells(ATCC CCL-244)、MRC-5 cells(ATCC CCL-171)、CaCo-2 human colon carcinoma(ATCC HTB-37)、Calu 1 human lung carcinoma(ICLC HTL95002)、Calu 6 human lung carcinoma(ICLC HTL97003)、POEK porcine foetal kidney(cell culture collection of the Robert Koch-Institute(RKI),Berlin,Germany)、PK13 porcine kidney(cell culture collection of the Bernhard-Nocht-Institute(BNI),Hamburg,Germany)、293 human
embryonic kidney(ATCC CRL-1573)、FEA feline embryonic fibroblast(established by Dr.Marcel Asper,NewLab Inc.,Cologne)、RD human rhabdomyosarcoma cells(RKI)、PS porcine kidney cells(RKI)、及びLLC-MK2 African
green monkey kidney cells(ATTC CCL-7)から選ばれる培養細胞である、<1>~<3>のいずれかの方法。
<5>Bax阻害剤が、コロナウイルスを増殖させるための宿主に対して、濃度0.001μM以上、好ましくは0.01μM以上、より好ましくは0.1μM以上で、且つ200μM以下、好ましくは100μM以下、より好ましくは50μM以下、また、0.001~200μM、好ましくは0.01~100μM、より好ましくは0.1~50μMで使用される、<2>~<4>のいずれかの方法。
<6><1>~<5>のいずれかの方法によってコロナウイルスを増殖させ、宿主からウイルス粒子を回収する、コロナウイルス粒子の調製方法。
<7>前記ウイルス粒子が、コロナウイルスに起因する疾患を予防するためのワクチン製造に用いられる、<6>の方法。
<8>コロナウイルスが、MERSコロナウイルス、SARSコロナウイルス、SARSコロナウイルス-2、ヒトコロナウイルスOC43、ヒトコロナウイルスHKU1、ヒトコロナウイルス229E又はヒトコロナウイルスNL63である、<6>の方法。
<9><6>~<8>のいずれかの方法によって調製されたコロナウイルス粒子を用いてワクチンを製造する、コロナウイルスワクチンの製造方法。
<10>Bax阻害剤を有効成分とするコロナウイルス増殖促進剤。
<11>コロナウイルスの増殖を促進するための、Bax阻害剤の使用。
<12>コロナウイルス増殖促進剤を製造するための、Bax阻害剤の使用。
<13>Bax阻害剤が、Val-Pro-Met-Leu-Lys(配列番号1)、Pro-Met-Leu-Lys-Glu(配列番号2)、Val-Pro-Thr-Leu-Lys(配列番号3)、Val-Pro-Ala-Leu-Arg(配列番号4)、Val-Pro-Ala-Leu-Lys(配列番号5)、Pro-Ala-Leu-Lys-Asp(配列番号6)、Val-Ser-Ala-Leu-Lys(配列番号7)、及びSer-Ala-Leu-Lys-Asp(配列番号8)からなるペプチド群、並びに下記(a)~(s)で示される化合物群から選ばれる1以上である、<10>の剤又は<11>若しくは<12>の使用。
Regarding the above-described embodiments, the following aspects are further disclosed in the present invention.
<1> A method for propagating a coronavirus in a host, which comprises a step of suppressing the transfer of Bax to the inner mitochondrial membrane of a host cell.
<2> The method of <1>, wherein the step of suppressing the transfer of Bax to the inner mitochondrial membrane is a step of adding a Bax inhibitor to the cells.
<3> The Bax inhibitor is Val-Pro-Met-Leu-Lys (SEQ ID NO: 1), Pro-Met-Leu-Lys-Glu (SEQ ID NO: 2), Val-Pro-Thr-Leu-Lys (SEQ ID NO: 1). 3), Val-Pro-Ala-Leu-Arg (SEQ ID NO: 4), Val-Pro-Ala-Leu-Lys (SEQ ID NO: 5), Pro-Ala-Leu-Lys-Asp (SEQ ID NO: 6), Val- Selected from the peptide group consisting of Ser-Ala-Leu-Lys (SEQ ID NO: 7) and Ser-Ala-Leu-Lys-Asp (SEQ ID NO: 8), and the compound group represented by the following (a) to (s). The method of <2>, which is 1 or more.
<4> The host is Vero E6 rhesus kidney cells (ATCC).
CRL-1586), Vero FM kidney cells (ATCC CCL-81), HCT-8 cells (ATCC CCL-244), MRC-5 cells (ATCC CCL-171), CaCo-2 human lung cellinoma (ATCC CCL-37C) )、Calu 1 human lung carcinoma(ICLC HTL95002)、Calu 6 human lung carcinoma(ICLC HTL97003)、POEK porcine foetal kidney(cell culture collection of the Robert Koch-Institute(RKI),Berlin,Germany)、PK13 porcine kidney(cell culture collection of the Bernhard-Nocht-Institute (BNI), Hamburg, Germany), 293 human
embryonic kidney(ATCC CRL-1573)、FEA feline embryonic fibroblast(established by Dr.Marcel Asper,NewLab Inc.,Cologne)、RD human rhabdomyosarcoma cells(RKI)、PS porcine kidney cells(RKI)、及びLLC-MK2 African
The method according to any one of <1> to <3>, which is a cultured cell selected from green monkey kidney cells (ATTC CCL-7).
<5> The Bax inhibitor has a concentration of 0.001 μM or more, preferably 0.01 μM or more, more preferably 0.1 μM or more, and 200 μM or less, preferably 100 μM or less, with respect to the host for growing the coronavirus. The method according to any one of <2> to <4>, which is more preferably 50 μM or less, and more preferably 0.001 to 200 μM, preferably 0.01 to 100 μM, and more preferably 0.1 to 50 μM.
<6> A method for preparing coronavirus particles, wherein the coronavirus is propagated by any of the methods <1> to <5>, and the virus particles are recovered from the host.
<7> The method of <6>, wherein the virus particles are used in the production of a vaccine for preventing a disease caused by a coronavirus.
<8> The method of <6>, wherein the coronavirus is MERS coronavirus, SARS coronavirus, SARS coronavirus-2, human coronavirus OC43, human coronavirus HKU1, human coronavirus 229E or human coronavirus NL63.
<9> A method for producing a coronavirus vaccine, which comprises producing a vaccine using coronavirus particles prepared by any of the methods <9> and <8>.
<10> A coronavirus growth-promoting agent containing a Bax inhibitor as an active ingredient.
<11> Use of a Bax inhibitor to promote the growth of coronavirus.
<12> Use of a Bax inhibitor for producing a coronavirus growth promoter.
<13> Bax inhibitors are Val-Pro-Met-Leu-Lys (SEQ ID NO: 1), Pro-Met-Leu-Lys-Glu (SEQ ID NO: 2), Val-Pro-Thr-Leu-Lys (SEQ ID NO: 1). 3), Val-Pro-Ala-Leu-Arg (SEQ ID NO: 4), Val-Pro-Ala-Leu-Lys (SEQ ID NO: 5), Pro-Ala-Leu-Lys-Asp (SEQ ID NO: 6), Val- Selected from the peptide group consisting of Ser-Ala-Leu-Lys (SEQ ID NO: 7) and Ser-Ala-Leu-Lys-Asp (SEQ ID NO: 8), and the compound group represented by the following (a) to (s). Use of <10> agent or <11> or <12>, which is 1 or more.

Figure 0007072090000003
Figure 0007072090000003

Figure 0007072090000004
Figure 0007072090000004

実施例1 Bax阻害剤の添加によるコロナウイルス増殖促進効果
(1)HCT-8細胞(ヒト大腸がん細胞由来細胞株、DSファーマバイオケミカル社より入手)を10%ウマ血清(Horse serum;HS)含有RPMI培地(Wako社製)にて37℃、5%CO存在下で培養した。上記HCT-8細胞を24ウェルプレートに播種し、コンフルエントの状態で試験に用いた。上述の24ウェルプレートに播種したHCT-8細胞をPBSで洗浄後、2%HS含有RPMI培地(高グルコース含有;Wako社製)を400μL/ウェルで添加し、1時間馴化させた。
Example 1 Coronavirus growth promoting effect by addition of Bax inhibitor (1) HCT-8 cells (cell line derived from human colon cancer cells, obtained from DS Pharma Biochemical) 10% horse serum (HS) The cells were cultured in a containing RPMI medium (manufactured by Wako) at 37 ° C. in the presence of 5% CO 2 . The above HCT-8 cells were seeded on a 24-well plate and used in the test in a confluent state. The HCT-8 cells seeded on the above-mentioned 24-well plate were washed with PBS, and then 2% HS-containing RPMI medium (high glucose content; manufactured by Wako) was added at 400 μL / well and acclimatized for 1 hour.

(2)上記細胞にベータ型コロナウイルスであるBetacoronavirus 1(HCoV-OC43株:ATCC VR-1558)を感染価MOI(Multiplicity of infection)=0.0005となるように感染させ、1時間インキュベートした。感染時にウイルスは2%HS含有RPMI培地(高グルコース含有)を用い1ウェル当たり300μL加えた。その後、Bax阻害剤(VPMLK(配列番号1)又はPMLKE(配列番号2)又はiMAC2(化合物(b))又はBAI1(化合物(a));TOCRIS bioscience社製)を0~200μM濃度にウイルス感染培地で希釈し、アセチル化トリプシン(Sigma社製)を2.0μg/mL濃度となるように添加し、300μL/ウェル量加え、33℃、5%CO濃度条件下で3~5日間培養した(アセチル化トリプシンの最終濃度は1.0μg/mL)。感染3~5日後に細胞中のウイルスを溶出する目的で3回凍結融解を繰り返し、培養上清及び細胞溶解液を回収し、4℃の条件下、1,200×gで10分間遠心分離し、不純物を取り除き、後述のTCID50測定により、コロナウイルスの感染価を測定した(図1)。なお、以降の実験においてコロナウイルスの増殖性を評価する試験では、終濃度で1.0μg/mL-アセチル化トリプシン及び2%-HSを含有するRPMI培地(高グルコース含有)をコロナウイルスの培養に用いた。試験は独立して3回行った。 (2) The cells were infected with Betacoronavirus 1 (HCoV-OC43 strain: ATCC VR-1558), which is a betacoronavirus, so that the infection value was MOI (Multiplicity of infection) = 0.0005, and the cells were incubated for 1 hour. At the time of infection, 300 μL of virus was added per well using RPMI medium containing 2% HS (containing high glucose). Then, a Bax inhibitor (VPMLK (SEQ ID NO: 1) or PMLKE (SEQ ID NO: 2) or iMAC2 (Compound (b)) or BAI1 (Compound (a)); manufactured by TOCRIS bioscience) was added to a virus infection medium at a concentration of 0 to 200 μM. Dilute with, add acetylated trypsin (manufactured by Sigma) to a concentration of 2.0 μg / mL, add 300 μL / well, and incubate under the conditions of 33 ° C. and 5% CO 2 concentration for 3 to 5 days (). The final concentration of acetylated trypsin is 1.0 μg / mL). After 3 to 5 days of infection, freeze-thaw was repeated 3 times for the purpose of elution of the virus in the cells, and the culture supernatant and cell lysate were collected and centrifuged at 1,200 × g for 10 minutes under the condition of 4 ° C. , The impurities were removed, and the infectious titer of coronavirus was measured by TCID50 measurement described later (FIG. 1). In the subsequent experiments to evaluate the growth of coronavirus, RPMI medium (containing high glucose) containing 1.0 μg / mL-acetylated trypsin and 2% -HS at the final concentration was used for coronavirus culture. Using. The test was performed independently three times.

(3)TCID50測定
平面の96ウェルプレートにHCT-8細胞を培養し、コンフルエントの状態で試験に用いた。PBS及びウイルス培養培地で細胞を洗浄後、コロナウイルス培養上清を1000倍希釈し、そこから2倍ずつ希釈系列を作製したウイルス液を6~8ウェル/希釈系列で感染させた。液量は100μL/ウェルとし、33℃条件下で1時間感染させ、その後、終濃度で1.0μg/mL-アセチル化トリプシン及び2%-HSを含有するRPMI培地(高グルコース含有)を100μL/ウェル添加し、33℃、5%CO濃度条件下で3~5日間培養した。培養後、-20℃に冷却したメタノールで固定化し、コロナウイルスの感染が認められる最小希釈濃度を検出した。感染細胞の検出は、0.5%牛血清アルブミン(BSA、Wako社製)を50μL/ウェルで添加し常温で2時間反応させた後、コロナウイルスに対する一次抗体としてAnti-Coronavirus Group Antigen Antibody(nucleoprotein of OC-43,clone 542-7D;Merck社製、MAB9013)をPBS用いて2000倍希釈(0.05%BSA含有)した溶液を50μL/ウェルで添加し4℃条件で一晩反応させた。その後、PBSで5回洗浄し、二次抗体としてgoat anti-mouse IgG + IgM HRP抗体(Jackson社製)をPBS用いて2000倍希釈(0.05%BSA含有)した溶液を50μL/ウェルで添加し常温で2時間反応させ、PBSで5回洗浄し、DEPDA反応を用いてHRPを発色させた。その後、発色が認められたウェルを基にReed and Muench法(Am J Hyg 1938;27:493-497)に従いTCID50を算出した。試験は6重測定にてウイルス感染細胞を検出した。検出結果は独立した3回の増殖性評価(上記(2)に記載の手順)の後、各回6重測定により検出したTCID50値を試験3回分の結果の平均値±標準誤差として示した(図1及び2)。
(3) TCID50 measurement HCT-8 cells were cultured on a flat 96-well plate and used in the test in a confluent state. After washing the cells with PBS and virus culture medium, the coronavirus culture supernatant was diluted 1000-fold, and the virus solution prepared with 2-fold dilution series was infected with 6 to 8 wells / dilution series. The liquid volume was 100 μL / well, and the cells were infected for 1 hour under 33 ° C. conditions, and then 100 μL / L of RPMI medium (high glucose content) containing 1.0 μg / mL-acetylated trypsin and 2% -HS at the final concentration. Wells were added and the cells were cultured at 33 ° C. and 5% CO 2 concentration for 3 to 5 days. After culturing, the cells were immobilized with methanol cooled to −20 ° C., and the minimum dilution concentration at which coronavirus infection was observed was detected. For detection of infected cells, 0.5% bovine serum albumin (BSA, manufactured by Wako) was added at 50 μL / well and reacted at room temperature for 2 hours, and then Anti-Coronavirus Group Antibodies (nucleoprotein) were used as the primary antibody against coronavirus. A solution of of OC-43, clone 542-7D; manufactured by Merck, MAB9013) diluted 2000-fold with PBS (containing 0.05% BSA) was added at 50 μL / well and reacted overnight at 4 ° C. Then, it was washed 5 times with PBS, and a solution obtained by diluting goat anti-mouse IgG + IgM HRP antibody (manufactured by Jackson) 2000 times with PBS (containing 0.05% BSA) as a secondary antibody was added at 50 μL / well. The reaction was carried out at room temperature for 2 hours, washed 5 times with PBS, and HRP was developed using the DEPDA reaction. Then, TCID50 was calculated according to the Reed and Muench method (Am J Hyg 1938; 27: 493-497) based on the wells in which color development was observed. The test detected virus-infected cells by 6-fold measurement. The detection results are shown as the average value ± standard error of the results for the three tests, with the TCID50 value detected by six-fold measurement each time after three independent growth evaluations (procedure described in (2) above). 1 and 2).

(4)本検討の結果、Bax阻害剤の添加は、コロナウイルスの感染性ウイルス量を増加させることが明らかとなった(図1及び2)。Bax-tBit結合阻害剤の中では、特にBAI1のウイルス増殖亢進効果が顕著であった。 (4) As a result of this study, it was clarified that the addition of the Bax inhibitor increases the amount of infectious virus of coronavirus (FIGS. 1 and 2). Among the Bax-tBit binding inhibitors, the virus growth-promoting effect of BAI1 was particularly remarkable.

実施例2 Bax阻害剤の添加によるSARS-CoV-2増殖促進効果
(1)VeroE6/TMPRSS2細胞(JCRB1819、国立感染症研究所より分与)を10%FBS含有DMEM培地(Wako社製)にて37℃、5%CO存在下で培養した。上記VeroE6細胞を平面6ウェルプレートに播種し、コンフルエントの状態で試験に用いた。上述の平面6ウェルプレートに播種したVeroE6細胞をPBSで洗浄後、ウイルス感染まで無血清DMEM培地(Wako社製)で培養した。
Example 2 SARS-CoV-2 proliferation promoting effect by addition of Bax inhibitor (1) VeroE6 / TMPRSS2 cells (JCRB1819, distributed by National Institute of Infectious Diseases) in DMEM medium containing 10% FBS (manufactured by Wako). The cells were cultured at 37 ° C. in the presence of 5% CO 2 . The VeroE6 cells were seeded on a flat 6-well plate and used in the test in a confluent state. VeroE6 cells seeded on the above-mentioned flat 6-well plate were washed with PBS and then cultured in serum-free DMEM medium (manufactured by Wako) until virus infection.

(2)上記細胞に新型コロナウイルスであるSARS-CoV-2 NIID分離株(JPN/TY/WK-521、国立感染症研究所分離株)を感染価MOI(Multiplicity of infection)=0.001となるように感染させ、1時間インキュベートした。感染時にウイルスはEMEM培地(低グルコース含有、Sigma社製)を用い希釈し、上記(1)に記載の通り無血清DMEM培地で培養しているVeroE6細胞の培養培地を除去した後、1ウェル当たり100μLのウイルス溶液を加え、細胞に感染させた。ウイルスを感染後、添加したウイルス溶液は吸引除去し、その後、Bax阻害剤(VPMLK(配列番号1)又はPMLKE(配列番号2)を0~100μM濃度になるよう無血清EMEM培地で希釈した培地を2mL/ウェルとなるように添加し、37℃、5%CO濃度条件下で培養した。感染48時間後に細胞中のウイルスを溶出する目的で-80℃に凍結し、融解した培養上清及び細胞溶解液を回収し、4℃の条件下、1,000×gで15分間遠心分離し、不純物を取り除き得られたコロナウイルス溶出液の後述のプラーク測定により、コロナウイルスの感染価を測定した(図3)。試験は独立して3回行った。 (2) SARS-CoV-2 NIID isolate (JPN / TY / WK-521, National Institute of Infectious Diseases isolate), which is a new type of coronavirus, was applied to the cells with an infection titer MOI (Multiplicity of infection) = 0.001. Infected to become and incubated for 1 hour. At the time of infection, the virus was diluted with EMEM medium (low glucose content, manufactured by Sigma), and as described in (1) above, the culture medium of VeroE6 cells cultured in serum-free DMEM medium was removed, and then per well. 100 μL of virus solution was added to infect cells. After infection with the virus, the added virus solution is removed by suction, and then a medium obtained by diluting the Bax inhibitor (VPMLK (SEQ ID NO: 1) or PMLKE (SEQ ID NO: 2) with a serum-free EMEM medium to a concentration of 0 to 100 μM) is used. The cells were added at 2 mL / well and cultured under the conditions of 37 ° C. and 5% CO 2 concentration. 48 hours after infection, the culture supernatant was frozen at -80 ° C for the purpose of elution of the virus in the cells, and thawed. The cell lysate was collected and centrifuged at 1,000 × g for 15 minutes under the condition of 4 ° C. to remove impurities, and the infectious titer of coronavirus was measured by the plaque measurement described later of the obtained coronavirus eluent. (Fig. 3). The test was independently performed 3 times.

(3)プラーク測定
平面の6ウェルプレートにVeroE6細胞を培養し、コンフルエントの状態で試験に用いた。PBS及び無血清EMEM培地で細胞を洗浄後、コロナウイルス溶出液を無血清EMEM培地を用いて適宜希釈し、作製したウイルス液を3ウェル/希釈系列(三重測定)で感染させた。感染時の液量は100μL/ウェルとし、37℃条件下で1時間感染させ、PBSにて洗浄後、0.8% アガロース含有EMEM培地を2mL/ウェル添加し、37℃、5%CO濃度条件下でプラークが形成されるまで42時間培養した。培養後、プラーク数を目視でカウントし、ウイルス感染細胞をPFU/mL単位で検出した。検出結果は独立した3回の増殖性評価(上記(2)に記載の手順)の後、三重測定により検出したウイルス量を平均値±標準誤差として示した(図3)。有意水準は危険率を5%とした(student’s t-test)。
(3) Plaque measurement VeroE6 cells were cultured on a flat 6-well plate and used for the test in a confluent state. After washing the cells with PBS and serum-free EMEM medium, the coronavirus eluate was appropriately diluted with serum-free EMEM medium, and the prepared virus solution was infected with a 3-well / dilution series (triple measurement). The liquid volume at the time of infection was 100 μL / well, infected under 37 ° C. conditions for 1 hour, washed with PBS, and then 2 mL / well of EMEM medium containing 0.8% agarose was added to 37 ° C. and 5% CO 2 concentration. Under the conditions, the cells were cultured for 42 hours until plaques were formed. After culturing, the number of plaques was visually counted and virus-infected cells were detected in PFU / mL units. As for the detection results, the amount of virus detected by triple measurement was shown as an average value ± standard error after three independent growth evaluations (procedure described in (2) above) (FIG. 3). The significance level was a risk rate of 5% (student's t-test).

(4)本検討の結果、Bax阻害剤の添加は、SARSコロナウイルス-2(SARS-CoV-2)の感染性ウイルス量を増加させることが明らかとなった(図3)。VeroE6細胞を用いたSARS-CoV-2の増殖性評価について、VPMLK(配列番号1)は100μM濃度でウイルスの増殖性亢進効果が認められ、PMLKE(配列番号2)は10-50μMと、低濃度でウイルス増殖亢進効果を示した。 (4) As a result of this study, it was clarified that the addition of the Bax inhibitor increases the amount of infectious virus of SARS coronavirus-2 (SARS-CoV-2) (Fig. 3). Regarding the evaluation of the proliferation of SARS-CoV-2 using VeroE6 cells, VPMLK (SEQ ID NO: 1) was found to have an effect of enhancing the proliferation of the virus at a concentration of 100 μM, and PMLKE (SEQ ID NO: 2) had a low concentration of 10-50 μM. Showed a virus growth promoting effect.

Claims (7)

ヒトを除く宿主においてコロナウイルスを増殖する方法であって、宿主細胞のBaxのミトコンドリア内膜への移行を抑制する工程を含み、Baxのミトコンドリア内膜への移行を抑制する工程がKu70タンパク質とBaxとの結合を阻害するか又はtBitとBaxとの結合を阻害するBax阻害剤を前記宿主に添加する工程である、方法A method for propagating coronavirus in a host other than human, including a step of suppressing the transfer of Bax to the mitochondrial inner membrane of a host cell, and a step of suppressing the transfer of Bax to the mitochondrial inner membrane is a Ku70 protein. A method of adding a Bax inhibitor that inhibits binding to Bax or inhibits binding of tBit to Bax to the host . Bax阻害剤が、Val-Pro-Met-Leu-Lys(配列番号1)、Pro-Met-Leu-Lys-Glu(配列番号2)、Val-Pro-Thr-Leu-Lys(配列番号3)、Val-Pro-Ala-Leu-Arg(配列番号4)、Val-Pro-Ala-Leu-Lys(配列番号5)、Pro-Ala-Leu-Lys-Asp(配列番号6)、Val-Ser-Ala-Leu-Lys(配列番号7)及びSer-Ala-Leu-Lys-Asp(配列番号8)からなるペプチド群、並びに下記(a)~(s)で示される化合物群から選ばれる1以上である、請求項記載の方法。
Figure 0007072090000005
Figure 0007072090000006
Bax inhibitors are Val-Pro-Met-Leu-Lys (SEQ ID NO: 1), Pro-Met-Leu-Lys-Glu (SEQ ID NO: 2), Val-Pro-Thr-Leu-Lys (SEQ ID NO: 3), Val-Pro-Ala-Leu-Arg (SEQ ID NO: 4), Val-Pro-Ala-Leu-Lys (SEQ ID NO: 5), Pro-Ala-Leu-Lys-Asp (SEQ ID NO: 6), Val-Ser-Ala -One or more selected from the peptide group consisting of Leu-Lys (SEQ ID NO: 7) and Ser-Ala-Leu-Lys-Asp (SEQ ID NO: 8), and the compound group represented by the following (a) to (s). , The method according to claim 1 .
Figure 0007072090000005
Figure 0007072090000006
請求項1又は2記載の方法によってコロナウイルスを増殖させ、培養上清からウイルス粒子を回収する、コロナウイルス粒子の調製方法。 A method for preparing coronavirus particles, wherein the coronavirus is propagated by the method according to claim 1 or 2 , and the virus particles are recovered from the culture supernatant. 前記ウイルス粒子が、コロナウイルスに起因する疾患を予防するためのワクチン製造に用いられる、請求項記載の方法。 The method of claim 3 , wherein the virus particles are used in the production of a vaccine for preventing a disease caused by a coronavirus. コロナウイルスが、MERSコロナウイルス、SARSコロナウイルス、SARSコロナウイルス-2、ヒトコロナウイルスOC43、ヒトコロナウイルスHKU1、ヒトコロナウイルス229E又はヒトコロナウイルスNL63である、請求項記載の方法。 The method according to claim 4 , wherein the coronavirus is MERS coronavirus, SARS coronavirus, SARS coronavirus-2, human coronavirus OC43, human coronavirus HKU1, human coronavirus 229E or human coronavirus NL63. 請求項3~5のいずれか1項記載の方法によって調製されたコロナウイルス粒子を用いてワクチンを製造する、コロナウイルスワクチンの製造方法。 A method for producing a coronavirus vaccine, which comprises producing a vaccine using coronavirus particles prepared by the method according to any one of claims 3 to 5 . Bax阻害剤を有効成分とするコロナウイルス増殖促進剤であって、
Bax阻害剤が、Val-Pro-Met-Leu-Lys(配列番号1)、Pro-Met-Leu-Lys-Glu(配列番号2)、Val-Pro-Thr-Leu-Lys(配列番号3)、Val-Pro-Ala-Leu-Arg(配列番号4)、Val-Pro-Ala-Leu-Lys(配列番号5)、Pro-Ala-Leu-Lys-Asp(配列番号6)、Val-Ser-Ala-Leu-Lys(配列番号7)及びSer-Ala-Leu-Lys-Asp(配列番号8)からなるペプチド群、並びに下記(a)~(s)で示される化合物群から選ばれる1以上である、コロナウイルス増殖促進剤
Figure 0007072090000007
Figure 0007072090000008
A coronavirus growth-promoting agent containing a Bax inhibitor as an active ingredient .
Bax inhibitors are Val-Pro-Met-Leu-Lys (SEQ ID NO: 1), Pro-Met-Leu-Lys-Glu (SEQ ID NO: 2), Val-Pro-Thr-Leu-Lys (SEQ ID NO: 3), Val-Pro-Ala-Leu-Arg (SEQ ID NO: 4), Val-Pro-Ala-Leu-Lys (SEQ ID NO: 5), Pro-Ala-Leu-Lys-Asp (SEQ ID NO: 6), Val-Ser-Ala -One or more selected from the peptide group consisting of Leu-Lys (SEQ ID NO: 7) and Ser-Ala-Leu-Lys-Asp (SEQ ID NO: 8), and the compound group represented by the following (a) to (s). , Corona virus growth promoter .
Figure 0007072090000007
Figure 0007072090000008
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