RU2733831C1 - Artificial gene coding a bicistronic structure formed by receptor-binding domain sequences of the glycoprotein s of the sars-cov-2 coronavirus, p2a-peptide and glycoprotein g vsv, recombinant plasmid pstem-rvsv-stbl_rbd_sc2, providing expression of artificial gene, and a recombinant strain of vesicular stomatitis virus rvsv-stbl_rbd_sc2, used to create a vaccine against sars-cov-2 coronavirus - Google Patents

Artificial gene coding a bicistronic structure formed by receptor-binding domain sequences of the glycoprotein s of the sars-cov-2 coronavirus, p2a-peptide and glycoprotein g vsv, recombinant plasmid pstem-rvsv-stbl_rbd_sc2, providing expression of artificial gene, and a recombinant strain of vesicular stomatitis virus rvsv-stbl_rbd_sc2, used to create a vaccine against sars-cov-2 coronavirus Download PDF

Info

Publication number
RU2733831C1
RU2733831C1 RU2020123453A RU2020123453A RU2733831C1 RU 2733831 C1 RU2733831 C1 RU 2733831C1 RU 2020123453 A RU2020123453 A RU 2020123453A RU 2020123453 A RU2020123453 A RU 2020123453A RU 2733831 C1 RU2733831 C1 RU 2733831C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
cov
sars
rbd
coronavirus
glycoprotein
Prior art date
Application number
RU2020123453A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Ильназ Рамисович Иматдинов
Мария Дмитриевна Бочкарева
Елена Юрьевна Прудникова
Антон Евгеньевич Тишин
Олег Викторович Пьянков
Елена Васильевна Гаврилова
Ринат Амирович Максютов
Original Assignee
Федеральное государственное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФБУН ГНЦ ВБ "Вектор" Роспотребнадзора)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФБУН ГНЦ ВБ "Вектор" Роспотребнадзора) filed Critical Федеральное государственное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФБУН ГНЦ ВБ "Вектор" Роспотребнадзора)
Priority to RU2020123453A priority Critical patent/RU2733831C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2733831C1 publication Critical patent/RU2733831C1/en

Links

Images

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K39/12Viral antigens
    • A61K39/215Coronaviridae, e.g. avian infectious bronchitis virus
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/85Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for animal cells
    • C12N15/86Viral vectors
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N7/00Viruses; Bacteriophages; Compositions thereof; Preparation or purification thereof

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Pulmonology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Mycology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Abstract

FIELD: biotechnology; molecular biology; genetic engineering; medicine.
SUBSTANCE: described is an artificial gene used to create a vaccine against SARS-CoV-2 coronavirus, coding an artificial protein-immunogen, which is a bicistronic structure consisting of receptor-binding domain (RBD) sequences of SARS-CoV-2 coronavirus glycoprotein S, heterological signal peptide haemagglutinin (HA) of influenza A virus, a linker, P2A-peptide for splitting polyprotein during translation and glycoprotein G with mutation M(1)>P(1), preventing alternative translation initiation, presented in SEQ ID NO: 1, length of 2355 bp. Disclosed is a recombinant plasmid pStem-rVSV-Stbl_RBD_SC2, used to create a vaccine against SARS-CoV-2 coronavirus, having molecular weight 8.85⋅106 Da, size 14309 bp and comprising, in accordance with physical and genetic map presented in Fig. 2, target gene according to item 1, coding artificial protein-immunogen RBD of SARS-CoV-2 coronavirus glycoprotein S, having amino acid sequence SEQ ID NO: 2 and under control of viral promoter providing its expression in mammalian cells. Strain rVSV-Stbl_RBD_SC2 of a recombinant virus of vesicular stomatitis obtained using a recombinant plasmid pStem-rVSV-Stbl_RBD_SC2, providing independent synthesis of coronavirus antigen (receptor-binding domain of SARS-CoV-2 glycoprotein S) and protein G of virus of vesicular stomatitis used to develop a vaccine against SARS-CoV-2 coronavirus and deposited in the State collection of viral infection causative agents, rickettsioses of State Research Center of Virology and Biotechnology VECTOR of Federal Service for Surveillance on Consumer Rights Protection and Human Wellbeing, No. V-984.
EFFECT: improved folding and higher infectious titre of the recombinant virus, stability of the target transgene and immunogenic / antigenic properties of the declared recombinant virus.
3 cl, 5 dwg, 3 tbl, 5 ex

Description

Изобретение относится к искусственному гену, кодирующему бицистронную структуру, образованную последовательностями рецептор-связывающего домена (RBD) гликопротеина S коронавируса SARS-CoV-2, P2A-пептидом и гликопротеином G вируса везикулярного стоматита, рекомбинантной плазмиде, обеспечивающей экспрессию указанного искусственного гена и рекомбинантному штамму вируса везикулярного стоматита, экспрессирующему антигены коронавируса SARS-CoV-2, индуцирующему специфический иммунный ответ к SARS-CoV-2 и используемому для создания вакцины против коронавируса SARS-CoV-2 и может быть использовано в биотехнологии, молекулярной биологии, генетической инженерии и медицине.The invention relates to an artificial gene encoding a bicistronic structure formed by the sequences of the receptor-binding domain (RBD) of the glycoprotein S of the coronavirus SARS-CoV-2, P2A peptide and the glycoprotein G of the vesicular stomatitis virus, a recombinant plasmid providing expression of the said artificial gene and a recombinant strain vesicular stomatitis, expressing the antigens of the SARS-CoV-2 coronavirus, inducing a specific immune response to SARS-CoV-2 and used to create a vaccine against the SARS-CoV-2 coronavirus and can be used in biotechnology, molecular biology, genetic engineering and medicine.

Известно решение по патенту (US, 20190062785 A1, МПК A61K 39/215, A61K 39/205; C12N15/86, опубл. 28.02.2019 г.), где описана вакцина на основе рекомбинантного вируса бешенства, которая обеспечивает защиту против бешенства и тяжелого острого респираторного синдрома (SARS-CoV). Транскрипционная кассета локализована в межгенном регионе N и P, что гарантирует высокий уровень экспрессии трансгена за счет особенностей организации генома рабдовирусов. В патенте раскрыты основные существующие подходы дизайна целевых коронавирусных иммуногенов/антигенов, такие как полноразмерный гликопротеин S, вариант с усеченным цитоплазматическим доменом (Δ19), а также рецептор-связывающий домен RBD с трансмембранным регионом и цитоплазматическим доменом вируса бешенства.Known patent solution (US, 20190062785 A1, IPC A61K 39/215, A61K 39/205; C12N15 / 86, publ. 02/28/2019), which describes a vaccine based on a recombinant rabies virus, which provides protection against rabies and severe acute respiratory syndrome (SARS-CoV). The transcriptional cassette is located in the intergenic region N and P, which guarantees a high level of transgene expression due to the peculiarities of the organization of the rhabdovirus genome. The patent discloses the main existing approaches for the design of target coronavirus immunogens / antigens, such as the full-length S glycoprotein, the variant with the truncated cytoplasmic domain (Δ19), and the RBD receptor-binding domain with the transmembrane region and the cytoplasmic domain of the rabies virus.

Однако использование данного вектора осложнено остаточной нейровирулентностью и возможными побочными эффектами. В тоже время использование функционального гликопротеина S коронавирусов в качестве иммуногена может привести к созданию рекомбинантного вируса бешенства, обладающего двойной тропностью за счет экспонированных вирусных гликопротеинов. Недостатком данного решения также является использование антигенов вируса SARS-CoV, что, вероятно, не позволит сформировать противовирусный иммунитет против нового коронавируса SARS-CoV-2. However, the use of this vector is complicated by residual neurovirulence and possible side effects. At the same time, the use of functional glycoprotein S of coronaviruses as an immunogen can lead to the creation of a recombinant rabies virus, which has double tropism due to exposed viral glycoproteins. The disadvantage of this solution is also the use of antigens of the SARS-CoV virus, which probably will not allow the formation of antiviral immunity against the new SARS-CoV-2 coronavirus.

Известно иммунобиологическое средство для профилактики заболеваний, вызванных вирусом тяжелого респираторного синдрома SARS-CoV-2 на основе рекомбинантного аденовируса человека 5-го серотипа или рекомбинантного аденовируса человека 26-го серотипа, содержащее оптимизированную под экспрессию в клетках млекопитающих последовательность протективного антигена S вируса SARS-CoV-2 с делецией 18 аминокислот на С'-конце гена (RU, 2720614, МПК A61K39/215; A61P31/12, опубл. 12.05.2020 г.), или последовательность полного протективного антигена S вируса SARS-CoV-2 и последовательность Fc-фрагмента от человеческого IgG1, или последовательность рецептор-связывающего домена белка S вируса SARS-CoV-2 с последовательностью лидерного пептида вируса, или последовательность рецептор-связывающего домена белка S вируса SARS-CoV-2 с трансмембранным доменом гликопротеина вируса везикулярного стоматита, или последовательность рецептор-связывающего домена белка S вируса SARS-CoV-2 с последовательностью лидерного пептида и последовательностью Fc-фрагмента от человеческого IgG1, или их комбинации. Known immunobiological agent for the prevention of diseases caused by the virus of severe respiratory syndrome SARS-CoV-2 based on recombinant human adenovirus 5th serotype or recombinant human adenovirus 26th serotype, containing optimized for expression in mammalian cells sequence of protective antigen S of SARS-CoV virus -2 with a deletion of 18 amino acids at the C'-end of the gene (RU, 2720614, IPC A61K39 / 215; A61P31 / 12, publ. 05/12/2020), or the sequence of the complete protective antigen S of the SARS-CoV-2 virus and the Fc sequence -fragment from human IgG1, or the sequence of the receptor-binding domain of the protein S of the SARS-CoV-2 virus with the sequence of the leader peptide of the virus, or the sequence of the receptor-binding domain of the protein S of the SARS-CoV-2 virus with the transmembrane domain of the glycoprotein of the vesicular stomatitis virus, or the sequence the receptor-binding domain of the SARS-CoV-2 protein S with the leader sequence a peptide and an Fc sequence from human IgG1, or a combination thereof.

Однако показано, что использование векторов на основе циркулирующих в человеческой популяции агентов (аденовирусы, герпесвирусы, респираторно-синцитиальный вирус и т.д.) может быть осложнено наличием специфического иммунитета против вируса «дикого типа», в результате чего не будет происходить достаточного продуктивного инфицирования клеток рекомбинантным вирусом, и как следствие, не будет эффективно обеспечена экспрессия целевого трансгена.However, it has been shown that the use of vectors based on agents circulating in the human population (adenoviruses, herpes viruses, respiratory syncytial virus, etc.) can be complicated by the presence of specific immunity against the "wild-type" virus, as a result of which there will not be sufficient productive infection cells with a recombinant virus, and as a result, the expression of the target transgene will not be efficiently provided.

Наиболее близким аналогом (прототипом) является решение по патенту (CN, 111088283 A, МПК A61K 39/215; A61P 31/14; C12N 15/86; опубл. 01.05.2020 г.), где предложены вирусные векторы на основе аттенуированного вируса везикулярного стоматита, в котором химерный ген гетерологичного антигена локализован между генами G и L. В патенте также раскрываются классические подходы дизайна целевых коронавирусных иммуногенов/антигенов (кодон-оптимизация, полноразмерный S (Spike), RBD). В патенте раскрывается подход получения химерных поверхностных гликопротеинов вируса везикулярного стоматита, с целью индукции иммунитета на коронавирусный компонент.The closest analogue (prototype) is the solution under the patent (CN, 111088283 A, IPC A61K 39/215; A61P 31/14; C12N 15/86; publ. 05/01/2020), where viral vectors are proposed based on an attenuated vesicular virus stomatitis, in which the chimeric gene of the heterologous antigen is localized between the G and L genes. The patent also discloses classical approaches to the design of target coronavirus immunogens / antigens (codon optimization, full-length S (Spike), RBD). The patent discloses an approach to obtain chimeric surface glycoproteins of the vesicular stomatitis virus in order to induce immunity to the coronavirus component.

Недостатком данного решения является дизайн иммуногенов в виде N- и C-концевых слитых белков, что может сказаться на фолдинге коронавирусных антигенных компонентов и инфекционном титре рекомбинантного вируса. Предлагаемая строгая локализация трансгена в геноме вируса (между генами G и L, фактически 5-ая транскрипционная кассета, начиная с 3'-конца генома), не позволяет в полной мере контролировать транскрипционный уровень трансгена. Также нерешенным остается вопрос стабильности целевых трансгенов в составе РНК-содержащих вирусов, что может повлечь снижение иммуногенных/антигенных свойств и/или изменение тропизма и вирулентных свойств рекомбинантных вирусов.The disadvantage of this solution is the design of immunogens in the form of N- and C-terminal fusion proteins, which can affect the folding of coronavirus antigenic components and the infectious titer of the recombinant virus. The proposed strict localization of the transgene in the genome of the virus (between genes G and L, in fact, the 5th transcriptional cassette, starting from the 3'-end of the genome) does not allow full control of the transcriptional level of the transgene. Also, the issue of stability of target transgenes in the composition of RNA-containing viruses remains unresolved, which may result in a decrease in immunogenic / antigenic properties and / or a change in the tropism and virulent properties of recombinant viruses.

Таким образом, в уровне техники существует острая потребность в разработке новых рекомбинантных вакцин от коронавирусной инфекции COVID-19 (SARS-CoV-2).Thus, in the prior art, there is an urgent need for the development of new recombinant vaccines against coronavirus infection COVID-19 (SARS-CoV-2).

Раскрытие изобретенияDisclosure of invention

Целью заявленного изобретения является создание рекомбинантного вируса везикулярного стоматита, обеспечивающего экспрессию антигенов коронавируса SARS-CoV-2, и индуцирующего специфический иммунный ответ к SARS-CoV-2.The aim of the claimed invention is to provide a recombinant vesicular stomatitis virus that provides expression of SARS-CoV-2 coronavirus antigens and induces a specific immune response to SARS-CoV-2.

Техническим результатом является улучшение фолдинга и повышение инфекционного титра рекомбинантного вируса, стабильности целевого трансгена, и иммуногенных/антигенных свойств заявляемого рекомбинантного вируса.The technical result is to improve folding and increase the infectious titer of the recombinant virus, the stability of the target transgene, and the immunogenic / antigenic properties of the claimed recombinant virus.

Указанный технический результат достигается созданием искусственного гена, используемого для создания вакцины против коронавируса SARS-CoV-2, кодирующего искусственный белок-иммуноген, представляющий собой бицистронную структуру, состоящую из последовательностей рецептор-связывающего домена (RBD) гликопротеина S коронавируса SARS-CoV-2, гетерологического сигнального пептида гемагглютинина (HA) вируса гриппа А, линкера, P2A-пептида для расщепления полипротеина во время трансляции, и гликопротеина G с мутацией M(1)>P(1), предотвращающей альтернативную инициацию трансляции, представленных в SEQ ID NO: 1 длиной 2355 п.н.The specified technical result is achieved by creating an artificial gene used to create a vaccine against the SARS-CoV-2 coronavirus, which encodes an artificial immunogen protein, which is a bicistronic structure consisting of the receptor-binding domain (RBD) sequences of the S coronavirus SARS-CoV-2 glycoprotein, heterologous signal peptide hemagglutinin (HA) of influenza A virus, linker, P2A peptide for cleavage of polyprotein during translation, and glycoprotein G with mutation M (1)> P (1), preventing alternative translation initiation, shown in SEQ ID NO: 1 length 2355 bp

Указанный технический результат достигается также созданием рекомбинантной плазмиды pStem-rVSV-Stbl_RBD_SC2, используемой для создания вакцины против коронавируса SARS-CoV-2, имеющей молекулярную массу 8,85⋅106 дальтон, размер 14309 п.н. и содержащей в соответствии с физической и генетической картой, представленной на Фиг. 2 целевой ген по п. 1, кодирующий искусственный белок-иммуноген RBD гликопротеина S коронавируса SARS-CoV-2, имеющий аминокислотную последовательность SEQ ID NO: 2 и находящийся под контролем вирусного промотора, обеспечивающего его экспрессию в клетках млекопитающих и состоящая из следующих фрагментов:The specified technical result is also achieved by creating a recombinant plasmid pStem-rVSV-Stbl_RBD_SC2 used to create a vaccine against the SARS-CoV-2 coronavirus, having a molecular weight of 8.85x10 6 daltons, size 14309 bp. and containing, in accordance with the physical and genetic map shown in FIG. 2 the target gene according to claim 1, encoding an artificial immunogen RBD of the glycoprotein S of the coronavirus SARS-CoV-2, having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2 and under the control of a viral promoter that ensures its expression in mammalian cells and consists of the following fragments:

- ORI - (ORI, origin of replication) точка начала репликации плазмидного вектора pUC (координаты 13483- 14071 п.н.);- ORI - (ORI, origin of replication) the origin of replication of the plasmid vector pUC (coordinates 13483-14071 bp);

- AmpR - ген β-лактамазы, обеспечивающий устойчивость трансформантов E.coli к селективному антибиотику ампициллину (координаты 12452-13312 п.н.);- AmpR - β-lactamase gene providing resistance of E. coli transformants to the selective antibiotic ampicillin (coordinates 12452-13312 bp);

- T7 promoter - нуклеотидная последовательность промотора бактериофага T7, необходимая для транскрипции антигеномной последовательности РНК рекомбинантного вируса везикулярного стоматита (координаты 166-183 п.н.);- T7 promoter - the nucleotide sequence of the T7 bacteriophage promoter required for transcription of the antigenomic RNA sequence of the recombinant vesicular stomatitis virus (coordinates 166-183 bp);

- T7 terminator - нуклеотидная последовательность терминатора бактериофага T7, необходимая для терминации транскрипции антигеномной последовательности РНК рекомбинантного вируса везикулярного стоматита (координаты 12224-12330 п.н.);- T7 terminator - the nucleotide sequence of the T7 bacteriophage terminator, which is necessary for terminating the transcription of the antigenomic RNA sequence of the recombinant vesicular stomatitis virus (coordinates 12224-12330 bp);

- HDV-Rbz - нуклеотидная последовательность рибозима HDV, которая после транскрибирования отщепляется с формированием аутентичной 3'-концевой некодирующей последовательности (координаты 12137-12219 п.н.);- HDV-Rbz - the nucleotide sequence of the HDV ribozyme, which, after transcription, is cleaved with the formation of an authentic 3'-terminal non-coding sequence (coordinates 12137-12219 bp);

- N - открытая рамка считывания гена N (нуклеопротеин) (координаты 247-1515 п.н.);- N - open reading frame of the N gene (nucleoprotein) (coordinates 247-1515 bp);

- P - открытая рамка считывания гена P (фосфопротеин) (координаты 1579-2376 п.н.);- P - open reading frame of the P gene (phosphoprotein) (coordinates 1579-2376 bp);

- L - открытая рамка считывания гена L (РНК-зависимая РНК-полимераза) (координаты 5708-12037 п.н.);- L - open reading frame of the L gene (RNA-dependent RNA polymerase) (coordinates 5708-12037 bp);

- VSV-G - открытая рамка считывания гликопротеина G с мутацией M(1)>P(1) (координаты 3322-4032 п.н.);- VSV-G - open reading frame of glycoprotein G with mutation M (1)> P (1) (coordinates 3322-4032 bp);

- P2A - 2A-пептид тешовируса-1, обеспечивающий расщепление полипротеина на этапе трансляции (координаты 4033-4089 п.н.);- P2A - 2A-peptide of teshovirus-1, providing cleavage of the polyprotein at the translation stage (coordinates 4033-4089 bp);

- Signal peptide - сигнальный пептид гемагглютинина (HA) вируса гриппа А, обеспечивающий эффективный внутриклеточный транспорт синтезируемого полипротеина (координаты 3268-3321 п.н.);- Signal peptide - hemagglutinin (HA) signal peptide of influenza A virus, which provides efficient intracellular transport of synthesized polyprotein (coordinates 3268-3321 bp);

- Spike protein - фрагмент гена S (Spike) SARS-CoV-2 (координаты 3322-4032 п.н.);- Spike protein - a fragment of the S (Spike) SARS-CoV-2 gene (coordinates 3322-4032 bp);

- Receptor-binding domain (RBD) - рецептор-связывающий домен гликопротеина S (Spike) SARS-CoV-2 (координаты 3334-4002 п.н.).- Receptor-binding domain (RBD) - receptor-binding domain of glycoprotein S (Spike) SARS-CoV-2 (coordinates 3334-4002 bp).

Указанный технический результат достигается также созданием штамма rVSV-Stbl_RBD_SC2 рекомбинантного вируса везикулярного стоматита, полученный с использованием рекомбинантной плазмиды pStem-rVSV-Stbl_RBD_SC2 по п. 2, обеспечивающего независимый синтез коронавирусного антигена (рецептор-связывающего домена гликопротеина S SARS-CoV-2) и белка G вируса везикулярного стоматита, используемого для создания вакцины против коронавируса SARS-CoV-2 и депонированного в Государственной коллекции возбудителей вирусных инфекций, риккетсиозов ФБУН ГНЦ ВБ «Вектор» Роспотребнадзора под № V-984.The specified technical result is also achieved by creating a strain rVSV-Stbl_RBD_SC2 of the recombinant vesicular stomatitis virus, obtained using the recombinant plasmid pStem-rVSV-Stbl_RBD_SC2 according to claim 2, providing an independent synthesis of the coronavirus antigen (receptor-binding domain S of SARS-CoV protein) G of the vesicular stomatitis virus used to create a vaccine against the SARS-CoV-2 coronavirus and deposited in the State Collection of pathogens of viral infections, rickettsioses of the FBSI SSC VB "Vector" of Rospotrebnadzor under No. V-984.

Существенными отличиями от прототипа, обеспечивающими достижение технического результата, являются:Significant differences from the prototype, ensuring the achievement of the technical result, are:

1. Оптимизация искусственного гена посредством нормализации кодонного состава и исключение из последовательности элементов, оказывающих негативное влияние на уровень экспрессии и стабильности мРНК;1. Optimization of an artificial gene by normalizing the codon composition and excluding elements from the sequence that have a negative effect on the level of expression and stability of mRNA;

2. Использование гетерологичного сигнального пептида гемагглютинина (HA) вируса гриппа А, необходимого для эффективного внутриклеточного транспорта синтезируемого полипротеина;2. The use of a heterologous signal peptide of hemagglutinin (HA) of the influenza A virus, which is necessary for efficient intracellular transport of the synthesized polyprotein;

3. Использование P2A-пептида для формирования бицистронной структуры для независимого синтеза и фолдинга коронавирусного антигена (рецептор-связывающий домен гликопротеина S SARS-CoV-2) и необходимого для репродукции вируса гликопротеина G вируса везикулярного стоматита;3. Use of P2A-peptide to form a bicistronic structure for independent synthesis and folding of coronavirus antigen (receptor-binding domain of S SARS-CoV-2 glycoprotein S) and vesicular stomatitis virus glycoprotein G necessary for viral reproduction;

4. Внесение мутации M(1)>P(1) в открытую рамку считывания гликопротеина G в составе искусственного гена, необходимой для предотвращения альтернативной инициализации трансляции необходимого для репродукции вируса гликопротеина.4. Introduction of the M (1)> P (1) mutation into the open reading frame of glycoprotein G as part of an artificial gene, which is necessary to prevent alternative translation initiation of the glycoprotein necessary for viral reproduction.

Осуществление изобретенияImplementation of the invention

Сущность заявленного изобретения поясняется чертежами. На фиг. 1 приведена схема клонирования нуклеотидных последовательностей генов, кодирующих конструкционные варианты гликопротеина S и RBD в плазмидном векторе для обратной генетики вируса везикулярного стоматита pStem-rVSV_P2A_G. На фиг. 2 изображена схема конструкции рекомбинантной плазмиды pStem-rVSV-Stbl_RBD_SC2, используемой для создания вакцины против коронавируса SARS-CoV-2.The essence of the claimed invention is illustrated by drawings. FIG. 1 shows a scheme for cloning the nucleotide sequences of genes encoding constructive variants of glycoprotein S and RBD in a plasmid vector for reverse genetics of vesicular stomatitis virus pStem-rVSV_P2A_G. FIG. 2 shows a diagram of the construction of the recombinant plasmid pStem-rVSV-Stbl_RBD_SC2 used to create a vaccine against the SARS-CoV-2 coronavirus.

На фиг. 3 представлена нуклеотидная последовательность (SEQ ID NO: 1) искусственного гена, кодирующего искусственный белок-иммуноген рецептор-связывающего домена (RBD) гликопротеина S коронавируса SARS-CoV-2 c гетерологической сигнальной последовательностью гемагглютинина (HA) вируса гриппа А, линкером и P2A-пептидом для расщепления полипротеина во время трансляции, гликопротеином G с мутацией M(1)>P(1).FIG. 3 shows the nucleotide sequence (SEQ ID NO: 1) of an artificial gene encoding an artificial immunogen protein of the receptor binding domain (RBD) of the glycoprotein S of the SARS-CoV-2 coronavirus with a heterologous hemagglutinin (HA) signal sequence of the influenza A virus, a linker and P2A- a peptide for cleavage of a polyprotein during translation, a glycoprotein G with a mutation M (1)> P (1).

На фиг. 4 приведена аминокислотная последовательность секретируемого рецептор-связывающего домена (RBD) гликопротеина S (Spike) SARS-CoV-2 c гетерологической сигнальной последовательностью, линкером и P2A-пептидом, обеспечивающим независимый синтез коронавирусного антигена и белка G вируса везикулярного стоматита (SEQ ID NO: 2).FIG. 4 shows the amino acid sequence of the secreted receptor-binding domain (RBD) of the S (Spike) glycoprotein SARS-CoV-2 with a heterologous signal sequence, a linker and a P2A peptide providing independent synthesis of coronavirus antigen and G protein of vesicular stomatitis virus (SEQ ID NO: 2 ).

На фиг. 5 приведена иммуногистохимия монослоя культуры клеток Vero E6: А - интактный; Б - инфицированный SARS CoV-2 штамм nCoV/Victoria/1/2020.FIG. 5 shows the immunohistochemistry of a monolayer of a Vero E6 cell culture: A - intact; B - SARS CoV-2 infected strain nCoV / Victoria / 1/2020.

Дизайн искусственного гена и получение рекомбинантной плазмиды. Первым этапом создания рекомбинантного вируса везикулярного стоматита для создания вакцины стал дизайн целевого антигена/иммуногена. Согласно литературным данным, наиболее перспективными вирусными компонентами, для индукции протективного иммунитета, являются поверхностный трансмембранный гликопротеин S (Spike), а также нуклеопротеин N.Artificial gene design and recombinant plasmid production. The first step in creating a recombinant vesicular stomatitis virus to create a vaccine was the design of the target antigen / immunogen. According to the literature, the most promising viral components for the induction of protective immunity are surface transmembrane glycoprotein S (Spike), as well as nucleoprotein N.

В ходе проведенного биоинформатического анализа опубликованных полногеномных нуклеотидных последовательностей вируса SARS-CoV-2 (референс последовательность GenBank: NC_045512.2), а также фрагментарных нуклеотидных последовательностей, кодирующих гликопротеин S, подтверждена относительная стабильность аминокислотных последовательностей целевых антигенов.The bioinformatic analysis of the published whole genome nucleotide sequences of the SARS-CoV-2 virus (reference sequence GenBank: NC_045512.2), as well as fragmentary nucleotide sequences encoding glycoprotein S, confirmed the relative stability of the amino acid sequences of the target antigens.

Важно отметить, что нативный вирусный гликопротеин S представлен трансмембранным триммером, с сигналами удержания в ER/Гольджи в C-концевом фрагменте белка. С использованием онлайн инструментов SignalIP-5.0 и TMHMM был локализован эктодомен гликопротеина S, по гомологии с гликопротеином S SARS-CoV выделен рецептор-связывающий домен (RBD), с фланкирующими регионами, необходимыми для корректного фолдинга домена. Согласно литературным данным, иммунизация животных рекомбинантным белком RBD родственных коронавирусов (SARS-CoV, MERS-CoV и др.), или конструкциями, обеспечивающими его экспрессию, приводит к индукции специфических вируснейтрализующих антител. It is important to note that the native viral glycoprotein S is represented by a transmembrane trimmer, with retention signals in the ER / Golgi at the C-terminal fragment of the protein. Using the online tools SignalIP-5.0 and TMHMM, the ectodomain of glycoprotein S was localized, the receptor-binding domain (RBD) was isolated by homology with the glycoprotein S SARS-CoV, with flanking regions necessary for correct folding of the domain. According to the literature, immunization of animals with the recombinant RBD protein of related coronaviruses (SARS-CoV, MERS-CoV, etc.), or constructs that ensure its expression, leads to the induction of specific virus-neutralizing antibodies.

Следовательно, экспрессия эктодомена гликопротеина S, либо рецептор-связывающего домена (RBD) посредством рекомбинантного вируса в составе вакцины будет индуцировать синтез вирусспецифических антител к SARS-CoV-2. В изобретении предложена оптимизированная нуклеотидная последовательность, кодирующая рецептор-связывающий домен (RBD) гликопротеина S (Spike) SARS-CoV-2. Оптимизация синтетических конструкций, кодирующих полноразмерный гликопротеин S SARS-CoV, а также рецептор-связывающего домена (RBD) гликопротеина S была проведена посредством нормализации кодонного состава и исключения из последовательностей элементов, оказывающих негативное влияние на уровень экспрессии или стабильность мРНК. Нуклеотидные последовательности искусственных генов были химически синтезированы и использованы для получения рекомбинантных конструкций для обратной генетики репликационно-компетентного вируса везикулярного стоматита.Therefore, the expression of the ectodomain of glycoprotein S, or the receptor binding domain (RBD) by means of the recombinant virus in the vaccine will induce the synthesis of virus-specific antibodies to SARS-CoV-2. The invention provides an optimized nucleotide sequence encoding the receptor binding domain (RBD) of the S (Spike) SARS-CoV-2 glycoprotein. Optimization of synthetic constructs encoding the full-length SARS-CoV glycoprotein S, as well as the receptor-binding domain (RBD) of glycoprotein S, was carried out by normalizing the codon composition and excluding from the sequences elements that negatively affect the level of expression or stability of mRNA. Nucleotide sequences of artificial genes were chemically synthesized and used to obtain recombinant constructs for reverse genetics of the replication-competent vesicular stomatitis virus.

Вирус везикулярного стоматита использован в качестве вектора в силу безопасности, широкого клеточного тропизма, а также из-за отсутствия предсуществующего иммунитета у большинства людей, что является необходимым требованием для проведения эффективной иммунизации. Показано, что использование векторов на основе других циркулирующих в человеческой популяции агентов (аденовирусы, герпесвирусы, респираторно-синцитиальный вирус и т.д.) может быть осложнено наличием специфического иммунитета против вируса «дикого типа», в результате чего не будет происходить продуктивного инфицирования клеток рекомбинантным вирусом и, как следствие, не будет обеспечена экспрессия целевого трансгена. Важным свойством, позволяющим рекомендовать рабдовирусы в качестве вакцинных вирусных векторов, является высокий титр накопления в перевиваемых культурах клеток (до 1010 ТЦД50/мл), а также относительно низкие иммунизирующие дозы (105 - 107 ТЦД50). Показано также, что рекомбинантные вирусы везикулярного стоматита, экспрессирующие гликопротеины гетерологичных вирусов (Эбола, Марбург, Ласса и т.д.) обеспечивают формирование протективного иммунитета в отношении широкого круга инфекционных заболеваний.Vesicular stomatitis virus has been used as a vector because of its safety, wide cellular tropism, and the lack of preexisting immunity in most people, which is a prerequisite for effective immunization. It has been shown that the use of vectors based on other agents circulating in the human population (adenoviruses, herpes viruses, respiratory syncytial virus, etc.) can be complicated by the presence of specific immunity against the wild-type virus, as a result of which there will be no productive cell infection recombinant virus and, as a consequence, the expression of the target transgene will not be provided. An important property that allows rhabdoviruses to be recommended as vaccine viral vectors is a high accumulation titer in transplanted cell cultures (up to 10 10 TCD 50 / ml), as well as relatively low immunizing doses (10 5 - 10 7 TCD 50 ). It has also been shown that recombinant vesicular stomatitis viruses expressing glycoproteins of heterologous viruses (Ebola, Marburg, Lassa, etc.) provide the formation of protective immunity against a wide range of infectious diseases.

Изобретение также представляет собой штамм рекомбинантного вируса везикулярного стоматита, содержащий оптимизированную нуклеотидную последовательность (SEQ ID NO: 1) искусственного гена, кодирующего искусственный белок-иммуноген рецептор-связывающего домена (RBD) гликопротеина S коронавируса SARS-CoV-2 c гетерологической сигнальной последовательностью пептида гемагглютинина (HA) вируса гриппа А, линкером и P2A-пептидом для расщепления полипротеина во время трансляции, гликопротеином G с мутацией M(1)>P(1), благодаря чему достигается независимый синтез антигена SARS-CoV-2 и поверхностного белка слияния.The invention also provides a recombinant vesicular stomatitis virus strain containing an optimized nucleotide sequence (SEQ ID NO: 1) of an artificial gene encoding an artificial immunogen protein receptor binding domain (RBD) of the SARS-CoV-2 coronavirus glycoprotein S with a heterologous hemagglutinin peptide signal sequence (HA) influenza A virus, a linker and a P2A peptide for cleavage of the polyprotein during translation, glycoprotein G with a mutation M (1)> P (1), which results in independent synthesis of the SARS-CoV-2 antigen and the surface fusion protein.

Способ индукции специфического иммунитета к SARS-CoV-2, предусматривает:The method of inducing specific immunity to SARS-CoV-2 includes:

1) 1-, 2- или 3-кратное введение в организм человека или животного одного, двух или более иммуногенных композиций на основе заявляемого штамма рекомбинантного вируса везикулярного стоматита.1) 1-, 2- or 3-fold introduction into the human or animal organism of one, two or more immunogenic compositions based on the inventive strain of the recombinant vesicular stomatitis virus.

Осуществление изобретения подтверждается следующими примерами.The implementation of the invention is confirmed by the following examples.

Пример 1. Получение конструкционного варианта гликопротеина S RBD вируса SARS-CoV-2.Example 1. Obtaining a constructive variant of the glycoprotein S RBD of the SARS-CoV-2 virus.

Прототипом для дизайна синтетической конструкции вариантов гликопротеина S, выступала аминокислотная последовательность, кодируемая геном S (Spike), представленным в депонированной полногеномной последовательности вируса SARS-CoV-2 (GenBank: NC_045512). Химерный синтетический иммуноген представляет собой секретируемый рецептор-связывающий домен (RBD) гликопротеина S (Spike) SARS-CoV-2 c гетерологической сигнальной последовательностью, линкером и P2A-пептидом, обеспечивающим независимый синтез коронавирусного антигена и белка вируса везикулярного стоматита G (SEQ ID NO: 2). При экспрессии данного варианта в эукариотических клетках происходит синтез и необходимые посттрансляционные модификации RBD гликопротеина S, после чего коронавирусный антиген транспортируется в межклеточное пространство, что обеспечивает индукцию иммунного ответа, в том числе, на конформационные антигенные детерминанты. P2A-пептид обеспечивает отщепление коронавирусного антигена на этапе трансляции, с последующим независимым синтезом и фолдингом белка G, необходимого для репродукции вируса. Данная стратегия обеспечивает более высокую стабильность целевого трансгена за счет того, что возникновение любых мутаций, приводящих к сдвигу рамки считывания (инсерции, делеции, инверсии и т.д.), исключает возможность синтеза необходимого для полноценного репродуктивного цикла вирусного белка, находящегося после P2A-пептида.The prototype for the design of a synthetic construct of glycoprotein S variants was the amino acid sequence encoded by the S (Spike) gene presented in the deposited genome-wide sequence of the SARS-CoV-2 virus (GenBank: NC_045512). A chimeric synthetic immunogen is a secreted receptor-binding domain (RBD) of the S (Spike) SARS-CoV-2 glycoprotein with a heterologous signal sequence, a linker, and a P2A peptide that provides independent synthesis of coronavirus antigen and vesicular stomatitis G virus protein (SEQ ID NO: 2). When this variant is expressed in eukaryotic cells, synthesis and the necessary post-translational modifications of RBD glycoprotein S occur, after which the coronavirus antigen is transported into the extracellular space, which ensures the induction of an immune response, including to conformational antigenic determinants. P2A peptide provides the cleavage of the coronavirus antigen at the stage of translation, followed by the independent synthesis and folding of the G protein, which is necessary for the reproduction of the virus. This strategy provides a higher stability of the target transgene due to the fact that the occurrence of any mutations leading to a shift in the reading frame (insertions, deletions, inversions, etc.) excludes the possibility of synthesizing the viral protein necessary for a full reproductive cycle, located after P2A- peptide.

Пример 2. Получение генетической конструкции.Example 2. Obtaining a genetic construct.

Для получения генетической конструкции гликопротеина S и RBD был рассчитан оптимизированный искусственный ген с нуклеотидной последовательностью (SEQ ID NO: 1, фиг. 3). Оптимизация гена была направлена на нормализацию кодонного состава искусственного гена и исключения из последовательностей элементов, оказывающих негативное влияние на уровень экспрессии или стабильность мРНК.To obtain the genetic construct for glycoprotein S and RBD, an optimized artificial gene with a nucleotide sequence (SEQ ID NO: 1, Fig. 3) was calculated. The optimization of the gene was aimed at normalizing the codon composition of the artificial gene and excluding from the sequences elements that have a negative effect on the level of expression or stability of mRNA.

Нуклеотидные последовательности генов были получены методом химического синтеза ЗАО «Биокад» и ЗАО «Евроген».Nucleotide sequences of genes were obtained by the method of chemical synthesis of ZAO Biocad and ZAO Evrogen.

Для получения рекомбинантного вируса везикулярного стоматита, с формированием бицистронной структуры трансгенов с гликопротеином G посредством саморасщепляющегося P2A-пептида (для стабилизации трансгенов в составе рекомбинантных вирусов), нуклеотидные последовательности генов, кодирующих конструкционные варианты гликопротеина S и RBD, были клонированы в плазмидном векторе для обратной генетики вируса везикулярного стоматита pStem-rVSV_P2A_G. Схема клонирования приведена на фиг. 1. Направленное клонирование проведено по сайтам узнавания эндонуклеаз рестрикций NheI и SmaI, располагающихся в полилинкере транскрипционной кассеты гена G в геномной кДНК последовательности. Для этого 2 мкг плазмидной ДНК pStem-rVSV_P2A_G гидролизовали эндонуклеазой рестрикции SmaI (NEB) в буфере CutSmart при 25°C 1 час, после чего вносили 10 е.а. рестриктазы NheI (NEB) и 2 е.а. рекомбинантной щелочной фосфатазы креветок (rSAP) (NEB), необходимой для предотвращения «самолигирования» вектора, с инкубацией при 37°C 1 час. Продукты гидролиза разделяли методом электрофореза, фрагменты ДНК, соответствующие гидролизованному вектору (~13500 п.н.), выделяли из агарозного геля с использованием коммерческого набора QIAquick Gel Extraction Kit (QIAGEN) согласно инструкции производителя. Нуклеотидную вставку, кодирующую целевой трансген, возможно подготовить посредством постановки гидролиза клонировочной плазмиды, амплификацией нуклеотидных последовательностей в LAMP или ПЦР, либо любым другим методом, доступным исследователю. Клонирование может быть проведено любым из существующих методов (лигирование, метод Гибсона, гомологической рекомбинации и др.), при этом в целевом трансгене должен присутствовать старт-кодон (ATG) в оптимальном фланкирующем контексте (консенсусная последовательность Козак; GCCACC) и не должна нарушаться рамка считывания гликопротеина G. На фиг. 1 представлена схема «тупого-липкого» клонирования трансгена, с формированием единой рамки считывания. Для этого 1 мкг гидролизованного вектора pStem-rVSV_P2A_G/SmaI+NheI смешивали с гидролизованным по NheI фрагментом ДНК трансгена в эквимолярном соотношении, добавляли реакционный буфер и T4 ДНК лигазу. После инкубации при 20°C 1 час, лигазную смесь использовали для трансформации компетентных клеток E.coli. Скрининг клонов-трансформантов проводили с использованием методов ПЦР и рестрикционного анализа рекомбинантных плазмид.To obtain a recombinant vesicular stomatitis virus, with the formation of a bicistronic structure of transgenes with glycoprotein G by means of a self-cleaving P2A peptide (to stabilize transgenes in the composition of recombinant viruses), the nucleotide sequences of genes encoding constructive variants of glycoprotein S and RBD were reverse vector cloned in plasmid vesicular stomatitis virus pStem-rVSV_P2A_G. The cloning scheme is shown in FIG. 1. Directed cloning was carried out at the recognition sites of restriction endonucleases NheI and SmaI located in the polylinker of the G gene transcriptional cassette in the genomic cDNA sequence. For this, 2 μg of plasmid DNA pStem-rVSV_P2A_G was digested with restriction endonuclease SmaI (NEB) in CutSmart buffer at 25 ° C for 1 hour, after which 10 ua was added. restriction enzymes NheI (NEB) and 2 ea. recombinant shrimp alkaline phosphatase (rSAP) (NEB), necessary to prevent the "self-ligation" of the vector, with incubation at 37 ° C for 1 hour. The hydrolysis products were separated by electrophoresis, DNA fragments corresponding to the hydrolyzed vector (~ 13500 bp) were isolated from the agarose gel using a commercial QIAquick Gel Extraction Kit (QIAGEN) according to the manufacturer's instructions. The nucleotide insert encoding the target transgene can be prepared by setting up the hydrolysis of the cloning plasmid, amplifying the nucleotide sequences in LAMP or PCR, or by any other method available to the researcher. Cloning can be performed by any of the existing methods (ligation, Gibson method, homologous recombination, etc.), while the target transgene must have a start codon (ATG) in the optimal flanking context (Kozak consensus sequence; GCCACC) and the frame must not be disturbed readout of glycoprotein G. FIG. 1 shows the scheme of "blunt-sticky" cloning of the transgene, with the formation of a single reading frame. For this, 1 μg of the hydrolyzed vector pStem-rVSV_P2A_G / SmaI + NheI was mixed with the NheI-hydrolyzed transgene DNA fragment in an equimolar ratio, reaction buffer and T4 DNA ligase were added. After incubation at 20 ° C for 1 hour, the ligase mixture was used to transform competent E. coli cells. Screening of transformant clones was performed using PCR methods and restriction analysis of recombinant plasmids.

Корректность нуклеотидных последовательностей плазмидных конструкций подтверждена секвенированием по Сэнгеру. Получена генетическая конструкция, кодирующая нуклеотидную последовательность конструкционного варианта антигена SARS-CoV-2 (SEQ ID NO: 1, фиг. 3).The correctness of the nucleotide sequences of the plasmid constructs was confirmed by Sanger sequencing. A genetic construct was obtained that encodes the nucleotide sequence of the constructive variant of the SARS-CoV-2 antigen (SEQ ID NO: 1, Fig. 3).

Рекомбинантная плазмида pStem-rVSV-Stbl_RBD_SC2 имеет молекулярную массу 8,85⋅106 дальтон, размер 14309 п.н. и содержит в соответствии с физической и генетической картой, представленной на Фиг. 2 целевой искусственный ген по п. 1, кодирующий искусственный белок-иммуноген RBD гликопротеина S коронавируса SARS-CoV-2, имеющий аминокислотную последовательность SEQ ID NO: 2 (фиг. 4) длиной 784 а.к.о. и находящийся под контролем вирусного промотора, обеспечивающего его экспрессию в клетках млекопитающих и состоящая из следующих фрагментов:The recombinant plasmid pStem-rVSV-Stbl_RBD_SC2 has a molecular weight of 8.85⋅10 6 daltons, a size of 14309 bp. and contains, in accordance with the physical and genetic map shown in FIG. 2 target artificial gene according to claim 1, encoding artificial protein-immunogen RBD glycoprotein S coronavirus SARS-CoV-2, having the amino acid sequence SEQ ID NO: 2 (Fig. 4) length 784 aa. and under the control of a viral promoter, ensuring its expression in mammalian cells and consisting of the following fragments:

- ORI - (ORI, origin of replication) точка начала репликации плазмидного вектора pUC (координаты 13483- 14071 п.н.);- ORI - (ORI, origin of replication) the origin of replication of the plasmid vector pUC (coordinates 13483-14071 bp);

- AmpR - ген β-лактамазы, обеспечивающий устойчивость трансформантов E.coli к селективному антибиотику ампициллину (координаты 12452- 13312 п.н.);- AmpR - β-lactamase gene providing resistance of E. coli transformants to the selective antibiotic ampicillin (coordinates 12452-13312 bp);

- T7 promoter - нуклеотидная последовательность промотора бактериофага T7, необходимая для транскрипции антигеномной последовательности РНК рекомбинантного вируса везикулярного стоматита (координаты 166-183 п.н.);- T7 promoter - the nucleotide sequence of the T7 bacteriophage promoter required for transcription of the antigenomic RNA sequence of the recombinant vesicular stomatitis virus (coordinates 166-183 bp);

- T7 terminator - нуклеотидная последовательность терминатора бактериофага T7, необходимая для терминации транскрипции антигеномной последовательности РНК рекомбинантного вируса везикулярного стоматита (координаты 12224-12330 п.н.);- T7 terminator - the nucleotide sequence of the T7 bacteriophage terminator, which is necessary for terminating the transcription of the antigenomic RNA sequence of the recombinant vesicular stomatitis virus (coordinates 12224-12330 bp);

- HDV-Rbz - нуклеотидная последовательность рибозима HDV, которая после транскрибирования отщепляется с формированием аутентичной 3'-концевой некодирующей последовательности (координаты 12137-12219 п.н.);- HDV-Rbz - the nucleotide sequence of the HDV ribozyme, which, after transcription, is cleaved with the formation of an authentic 3'-terminal non-coding sequence (coordinates 12137-12219 bp);

- N - открытая рамка считывания гена N (нуклеопротеин) (координаты 247-1515 п.н.);- N - open reading frame of the N gene (nucleoprotein) (coordinates 247-1515 bp);

- P - открытая рамка считывания гена P (фосфопротеин) (координаты 1579-2376 п.н.);- P - open reading frame of the P gene (phosphoprotein) (coordinates 1579-2376 bp);

- L - открытая рамка считывания гена L (РНК-зависимая РНК-полимераза) (координаты 5708-12037 п.н.);- L - open reading frame of the L gene (RNA-dependent RNA polymerase) (coordinates 5708-12037 bp);

- VSV-G - открытая рамка считывания гликопротеина G с мутацией M(1)>P(1) (координаты 3322-4032 п.н.);- VSV-G - open reading frame of glycoprotein G with mutation M (1)> P (1) (coordinates 3322-4032 bp);

- P2A - 2A-пептид тешовируса-1, обеспечивающий расщепление полипротеина на этапе трансляции (координаты 4033-4089 п.н.);- P2A - 2A-peptide of teshovirus-1, providing cleavage of the polyprotein at the translation stage (coordinates 4033-4089 bp);

- Signal peptide - сигнальный пептид гемагглютинина (HA) вируса гриппа А, обеспечивающий эффективный внутриклеточный транспорт синтезируемого полипротеина (координаты 3268-3321 п.н.);- Signal peptide - hemagglutinin (HA) signal peptide of influenza A virus, which provides efficient intracellular transport of synthesized polyprotein (coordinates 3268-3321 bp);

- Spike protein - фрагмент гена S (Spike) SARS-CoV-2 (координаты 3322-4032 п.н.);- Spike protein - a fragment of the S (Spike) SARS-CoV-2 gene (coordinates 3322-4032 bp);

- Receptor-binding domain (RBD) - рецептор-связывающий домен гликопротеина S (Spike) SARS-CoV-2 (координаты 3334-4002 п.н.).- Receptor-binding domain (RBD) - receptor-binding domain of glycoprotein S (Spike) SARS-CoV-2 (coordinates 3334-4002 bp).

Пример 3. Получение репликационно-компетентного штамма rVSV-Stbl_RBD_SC2 вируса везикулярного стоматита, экспрессирующего антиген SARS-CoV-2.Example 3. Obtaining a replication-competent strain of rVSV-Stbl_RBD_SC2 vesicular stomatitis virus expressing the SARS-CoV-2 antigen.

Выделение плазмидной ДНК генетической конструкции для обратной генетики вируса везикулярного стоматита, кодирующего антигены SARS-CoV-2, выполнено с использованием коммерческого набора QIAGEN Plasmid Maxi Kit, согласно инструкции производителя.Isolation of plasmid DNA of the genetic construct for reverse genetics of the vesicular stomatitis virus encoding SARS-CoV-2 antigens was performed using the commercial QIAGEN Plasmid Maxi Kit, according to the manufacturer's instructions.

Получение репликационно-компетентного вируса везикулярного стоматита проведено с использованием методов обратной генетики в перевиваемой линии клеток Vero и/или 4647 (коллекция культур клеток ФБУН ГНЦ ВБ Вектор Роспотребнадзора). Для этого монослой клеточной культуры (конфлюентность 90%) трансфецировали с использованием липофектамина 3000 (Thermo Scientific, США) полученной генетической плазмидной конструкцией pStem-rVSV-Stbl_RBD_SC2 совместно с хелперными плазмидами pStem-vN, pStem-vP, pStem-vL обеспечивающими экспрессию белковой репликативной машинерии вируса везикулярного стоматита (N, P и L), а также ДНК-зависимой РНК-полимеразы бактериофага T7. Количество плазмидной конструкции составило pStem-rVSV-Stbl_RBD_SC2 (конструкционный вариант) - 2 мкг. Через сутки производили смену питательной среды на поддерживающую с 2% фетальной сыворотки крови, с последующим культивированием 48-72 часа в CO2-инкубаторе (5% CO2; 37°C; влажная атмосфера). При оптической микроскопии по истечению срока культивирования отмечали полную деструкцию монослоя клеток. Вируссодержащую культуральную жидкость рекомбинантного вируса собирали, осветляли посредством центрифугирования (10 мин при 10 тыс об/мин), аликвотировали и хранили до использования при минус 80°C.Generation of replication-competent vesicular stomatitis virus was carried out using reverse genetics methods in a transplantable cell line Vero and / or 4647 (collection of cell cultures of the Federal State Budgetary Scientific Institution SSC VB Vector of Rospotrebnadzor). For this, a cell culture monolayer (90% confluence) was transfected using Lipofectamine 3000 (Thermo Scientific, USA) with the obtained genetic plasmid construct pStem-rVSV-Stbl_RBD_SC2 together with the helper plasmids pStem-vN, pStem-vP, pStem-vL, providing expression of the protein replication machine vesicular stomatitis virus (N, P and L), as well as DNA-dependent RNA polymerase of bacteriophage T7. The amount of the plasmid construct was pStem-rVSV-Stbl_RBD_SC2 (constructive variant) - 2 μg. A day later, the culture medium was changed to a supporting one with 2% fetal blood serum, followed by cultivation for 48-72 hours in a CO 2 incubator (5% CO 2 ; 37 ° C; humid atmosphere). Optical microscopy showed complete destruction of the cell monolayer at the end of the cultivation period. The virus-containing culture fluid of the recombinant virus was collected, clarified by centrifugation (10 min at 10 thousand rpm), aliquoted and stored at minus 80 ° C until use.

Штамм идентифицирован в ФБУН ГНЦ ВБ Вектор» Роспотребнадзора в апреле 2020 г. и депонирован в Государственной коллекции возбудителей вирусных инфекций, риккетсиозов ФБУН ГНЦ ВБ «Вектор» Роспотребнадзора под номером V-984.The strain was identified at the FBSI SSC VB Vector of Rospotrebnadzor in April 2020 and deposited in the State collection of causative agents of viral infections, rickettsioses of the FBSI SSC VB Vector of Rospotrebnadzor under number V-984.

Инфекционную активность рекомбинантного вируса везикулярного стоматита оценивали при постановках классических вирусологических методов титрования в чувствительную культурах клеток Vero и/или 4647, с выражением в 50 % тканевых цитопатических дозах (ТЦД50), либо в бляшкообразующих единицах (БОЕ). При изучении культуральных свойств установлено, что полученный рекомбинантный вирус сохранил основные свойства исходного штамма вируса везикулярного стоматита (клеточная чувствительность, характер цитопатического действия, оптимальные параметры культивирования и др.).The infectious activity of the recombinant vesicular stomatitis virus was assessed when performing classical virological titration methods in sensitive cell cultures Vero and / or 4647, expressed in 50% tissue cytopathic doses (TCID 50 ), or in plaque-forming units (PFU). When studying the cultural properties, it was found that the resulting recombinant virus retained the basic properties of the original vesicular stomatitis virus strain (cellular sensitivity, the nature of cytopathic action, optimal cultivation parameters, etc.).

Титр накопления в культуре клеток Vero рекомбинантного штамма вируса везикулярного стоматита, кодирующий нуклеотидную последовательность антигена SARS-CoV-2 (SEQ ID NO: 15) составил - 7,80 ± 0,19 lg ТЦД50/см3. Титр накопления в культуре клеток 4647 рекомбинантного вируса везикулярного стоматита, кодирующий нуклеотидную последовательность антигена SARS-CoV-2 (SEQ ID NO: 15) составил - 9,25 ± 0,2 lg ТЦД50/см3.The titer of accumulation in the culture of Vero cells of the recombinant strain of the vesicular stomatitis virus encoding the nucleotide sequence of the SARS-CoV-2 antigen (SEQ ID NO: 15) was 7.80 ± 0.19 lg TCD 50 / cm 3 . The titer of accumulation in 4647 cell culture of the recombinant vesicular stomatitis virus encoding the nucleotide sequence of the SARS-CoV-2 antigen (SEQ ID NO: 15) was 9.25 ± 0.2 lg TCD 50 / cm 3 .

Пример 4. Подтверждение наличия гена Stbl_RBD, кодирующего антигены SARS-CoV-2, в составе генома заявляемого штамма rVSV-Stbl_RBD_SC2 рекомбинантного вируса везикулярного стоматита.Example 4. Confirmation of the presence of the Stbl_RBD gene encoding the SARS-CoV-2 antigens in the genome of the inventive rVSV-Stbl_RBD_SC2 strain of the recombinant vesicular stomatitis virus.

Подтверждение наличия и экспрессии искусственного гена Stbl_RBD, кодирующего антиген (рецептор-связывающий домен гликопротеина S коронавируса SARS-CoV-2), проводили в полимеразной цепной реакции совмещенной с обратной транскрипцией (ОТ-ПЦР). Выделение РНК из образцов культуральных сред, полученных после инфицирования монослоя клеток Vero рекомбинантным вирусом везикулярного стоматита, проводили с использованием набора реагентов «Рибо-преп» (Интерлабсервис, Россия) согласно инструкции производителя. Для оценки экспрессии и наличия трансгенов использовали специфические олигонуклеотидные праймеры, фланкирующие открытые рамки считывания химерных генов:Confirmation of the presence and expression of the artificial gene Stbl_RBD encoding the antigen (receptor-binding domain of the S glycoprotein SARS-CoV-2 coronavirus) was carried out in polymerase chain reaction combined with reverse transcription (RT-PCR). Isolation of RNA from culture media samples obtained after infection of a monolayer of Vero cells with a recombinant vesicular stomatitis virus was performed using the Ribo-prep reagent kit (Interlabservice, Russia) according to the manufacturer's instructions. To assess the expression and presence of transgenes, specific oligonucleotide primers flanking the open reading frames of chimeric genes were used:

F-Sig_NheI (5'-ACAAAGCTAGCCACCATGAAGGCAATACTAGTAGTTC TG-3') и R-vG_SbfI (5'- TTTTGCCCTGCAGGAGTGCGGCCGCTTAC-3'), а также F-NCR (5'-ACGAAGACAAACAAACCATTATTATCATTAAAAGGC-3') и R-VSV_1_seq (5'-TTGTGTTCTGCCCACTCTGT-3'). F-Sig_NheI (5'-ACAAAGCTAGCCACCATGAAGGCAATACTAGTAGTTC TG-3 ') and R-vG_SbfI (5'- TTTTGCCCTGCAGGAGTGCGGCCGCTTAC-3'), and F-NCR (5'-ACGAAGACAAACAAACCATTATTATCATTAAAAGGC-3 ') and R-VSV_1_seq (5'-TTGTGTTCTGCCCACTCTGT -3 ').

Синтез первой цепи кДНК проводили с использованием набора реагентов «обратная транскриптаза RNAscribe RT» (Биолабмикс, Россия) в соответствии с инструкцией производителя. Амплификацию фрагментов кДНК вируса везикулярного стоматита проводили с Phusion-полимеразы (NEB, США) в соответствии с инструкцией производителя. Продукты амплификации анализировали посредством электрофоретического разделения в агарозном геле и последующего окрашивания гелей рабочим раствором этидия бромида (0,5 мкг/мл). Корректность открытых рамок считывания трансгенов подтверждали секвенированием по Сэнгеру элюированных из агарозного геля целевых ампликонов.The first strand of cDNA was synthesized using the RNAscribe RT reverse transcriptase reagent kit (Biolabmix, Russia) in accordance with the manufacturer's instructions. Amplification of vesicular stomatitis virus cDNA fragments was performed with Phusion polymerase (NEB, USA) in accordance with the manufacturer's instructions. Amplification products were analyzed by electrophoretic separation in an agarose gel and subsequent staining of the gels with a working solution of ethidium bromide (0.5 μg / ml). The correctness of the open reading frames of the transgenes was confirmed by Sanger sequencing of the target amplicons eluted from the agarose gel.

Наличие и функциональная активность гена G, кодирующего поверхностный гликопротеин вируса везикулярного стоматита подтверждается секвенированием ампликонов трансгена по Сэнгеру, а также репродукцией рекомбинантного вируса в пермиссивных клеточных линиях (Vero, 4647, BHK-21/13 и т.д.) с культуральными свойствами, аналогичными «дикому типу» ВВС.The presence and functional activity of the G gene encoding the surface glycoprotein of the vesicular stomatitis virus is confirmed by sequencing of the transgene amplicons according to Sanger, as well as the reproduction of the recombinant virus in permissive cell lines (Vero, 4647, BHK-21/13, etc.) with cultural properties similar to To the "wild type" of the Air Force.

Пример 5. Исследование и использование штамма rVSV-Stbl_RBD_SC2 рекомбинантного вируса везикулярного стоматита, экспрессирующего антиген (RBD SARS_CoV-2) коронавируса SARS-CoV-2, и индуцирующего специфический иммунный ответ к SARS-CoV-2.Example 5. Research and use of the rVSV-Stbl_RBD_SC2 strain of the recombinant vesicular stomatitis virus expressing the SARS-CoV-2 coronavirus antigen (RBD SARS_CoV-2) and inducing a specific immune response to SARS-CoV-2.

Композиции могут включать приемлемые адъюванты, стабилизаторы, наполнители и заявляемый штамм рекомбинантного везикулярного стоматита, экспрессирующего антигены коронавируса SARS-CoV-2. Индукция специфического иммунного ответа к антигенам SARS-CoV-2 обеспечивается путем введения в организм человека или животного иммуногенных композиций на основе заявляемого штамма rVSV-Stbl_RBD_SC2 рекомбинантного вируса везикулярного стоматита, экспрессирующего антигены коронавируса SARS-CoV-2, любым из известных способов (внутримышечно, внутривенно, подкожно, интраназально и др.). The compositions may include suitable adjuvants, stabilizers, excipients and the claimed strain of recombinant vesicular stomatitis expressing SARS-CoV-2 coronavirus antigens. Induction of a specific immune response to SARS-CoV-2 antigens is provided by introducing into the human or animal body immunogenic compositions based on the inventive rVSV-Stbl_RBD_SC2 strain of the recombinant vesicular stomatitis virus expressing the SARS-CoV-2 coronavirus antigens, by any of the known methods (intramuscularly, intravenously , subcutaneously, intranasally, etc.).

Изучение иммуногенных свойств заявляемого штамма rVSV-Stbl_RBD_SC2, проводили посредством однократной внутримышечной иммунизации мышей и хорьков рекомбинантным вирусом везикулярного стоматита, экспрессирующим антигены коронавируса SARS-CoV-2, в дозе 2x107 БОЕ. Однократная иммунизация данной дозы оправдана результатами предыдущих исследований в Центре, при разработке вакцинных препаратов против ООВИ, а также актуальными публикациями, при разработке кандидатных вакцинных препаратов на данной платформе.The study of the immunogenic properties of the inventive strain rVSV-Stbl_RBD_SC2 was carried out by means of a single intramuscular immunization of mice and ferrets with a recombinant vesicular stomatitis virus expressing the antigens of the SARS-CoV-2 coronavirus at a dose of 2x10 7 PFU. A single immunization of this dose is justified by the results of previous studies at the Center, in the development of vaccine preparations against OVI, as well as by current publications in the development of candidate vaccine preparations on this platform.

Иммуногенные свойства оценивали по титру вирусспецифических антител в твердофазном иммуноферментном анализе с использованием инактивированного природного культурального антигена SARS-CoV-2. Для выявления комплекса «антиген-антитело» использовали конъюгаты антивидовые, либо протеин G.Immunogenic properties were assessed by the titer of virus-specific antibodies in a solid-phase enzyme-linked immunosorbent assay using inactivated natural culture antigen SARS-CoV-2. To identify the antigen-antibody complex, we used anti-species conjugates, or protein G.

Таблица 1.Table 1.

Группа животныхGroup of animals Титр вирусспецифических антител
на 28 сутки после иммунизации
Virus-specific antibody titer
28 days after immunization
rVSV-Stbl_RBD_SC2rVSV-Stbl_RBD_SC2 1:200 - 4 шт
1:400 - 2 шт
1:800 - 1 шт
1:1600 - 2 шт
1: 200 - 4 pieces
1: 400 - 2 pieces
1: 800 - 1 piece
1: 1600 - 2 pieces
rVSV контрольrVSV control <1:100 - 9 шт<1: 100 - 9 pcs

В таблице 1 приведены титры вирусспецифических антител в сыворотках крови лабораторных мышей после иммунизации рекомбинантным вирусом везикулярного стоматита, кодирующий рецептор-связывающий домен (RBD) гликопротеина S коронавируса SARS-CoV-2 c гетерологической сигнальной последовательностью, P2A-пептид и гликопротеин G (SEQ ID NO: 1). Table 1 shows the titers of virus-specific antibodies in the blood sera of laboratory mice after immunization with the recombinant vesicular stomatitis virus encoding the receptor-binding domain (RBD) of the glycoprotein S of the SARS-CoV-2 coronavirus with a heterologous signal sequence, P2A peptide and glycoprotein G (SEQ ID NO : 1).

Показано, что на 28 сутки после иммунизации титр вирусспецифических антител в сыворотках крови лабораторных мышей в группе «rVSV-Stbl_RBD_SC2» составил не менее 1:200.It was shown that on the 28th day after immunization, the titer of virus-specific antibodies in the blood serum of laboratory mice in the rVSV-Stbl_RBD_SC2 group was at least 1: 200.

В таблице 2 представлены титры вирусспецифических антител в сыворотках крови хорьков после иммунизации рекомбинантным штаммом вируса везикулярного стоматита, кодирующего рецептор-связывающий домен (RBD) гликопротеина S коронавируса SARS-CoV-2 c гетерологической сигнальной последовательностью, P2A-пептид и гликопротеин G (SEQ ID NO: 1). Table 2 shows the titers of virus-specific antibodies in the blood sera of ferrets after immunization with a recombinant strain of vesicular stomatitis virus encoding the receptor-binding domain (RBD) of the glycoprotein S of SARS-CoV-2 coronavirus with a heterologous signal sequence, P2A peptide and glycoprotein ID NO G (SE : 1).

Таблица 2.Table 2.

Группа животныхGroup of animals Титр вирусспецифических антител на 28 сутки после иммунизацииVirus-specific antibody titer on day 28 after immunization rVSV-Stbl_RBD_SC2rVSV-Stbl_RBD_SC2 1:400 - 1 шт
1:800 - 1 шт
1: 400 - 1 piece
1: 800 - 1 piece
rVSV контрольrVSV control <1:100 - 2 шт<1: 100 - 2 pieces

Показано, что на 28 сутки после иммунизации титр вирусспецифических антител в сыворотках крови хорьков в группе «штамм rVSV-Stbl_RBD_SC2» составил не менее 1:400.It was shown that on the 28th day after immunization the titer of virus-specific antibodies in the blood serum of ferrets in the group "strain rVSV-Stbl_RBD_SC2" was at least 1: 400.

Для детального изучения иммуногенных свойств штамма rVSV-Stbl_RBD_SC2 рекомбинантного вируса везикулярного стоматита, кодирующего рецептор-связывающий домен (RBD) гликопротеина S коронавируса SARS-CoV-2 c гетерологической сигнальной последовательностью, P2A-пептид и гликопротеин G (SEQ ID NO: 1) проводили иммунизацию приматов (3 шт), хомяков (4 шт) и хорьков (4шт).For a detailed study of the immunogenic properties of the rVSV-Stbl_RBD_SC2 strain of the recombinant vesicular stomatitis virus encoding the receptor-binding domain (RBD) of the S glycoprotein of SARS-CoV-2 coronavirus with a heterologous signal sequence, P2A peptide and glycoprotein G: 1 (carried out by SEQ ID immunization) primates (3 pcs), hamsters (4 pcs) and ferrets (4 pcs).

Оценка специфического противовирусного гуморального иммунитета была проведена в реакции нейтрализации против коронавируса SARS CoV-2 штамм nCoV/Victoria/1/2020 (ЦПД50), а также в реакции подавления (ингибирования) фокусообразования. В качестве положительного контроля выступала сыворотка крови человека, переболевшего COVID-19.The assessment of specific antiviral humoral immunity was carried out in the neutralization reaction against the SARS CoV-2 coronavirus strain nCoV / Victoria / 1/2020 (CPE 50 ), as well as in the reaction of suppression (inhibition) of focus formation. The blood serum of a person who had recovered from COVID-19 was used as a positive control.

Реакцию подавления (ингибирования) фокусообразования проводили согласно разработанному протоколу в культуре клеток Vero E6 против 100 фокусообразующий единиц (ФОЕ) SARS CoV-2 штамм nCoV/Victoria/1/2020, каждое разведение нанесено в лунки 96-луночного культурального планшета.The reaction of suppression (inhibition) of focusing was carried out according to the developed protocol in a Vero E6 cell culture against 100 focusing units (FRU) SARS CoV-2 strain nCoV / Victoria / 1/2020, each dilution was applied to the wells of a 96-well culture plate.

Из лунок планшета удаляют ростовую среду, монослой клеток Vero E6 промывают два раза поддерживающей средой. Готовят 2-кратные разведения иммунных и интактных сывороток крови, затем вносят рабочую дозу вируса (100 ФОЕ), с последующей инкубацией в течение 1 часа. Весь объем переносят в соответствующие лунки планшета с монослоем клеток, инкубируют 60 мин в CO2-инкубаторе при температуре 37°C, после чего пробу из лунок удаляют, и планшет 1 раз промывают поддерживающей средой. Во все лунки планшета вносят по 100 мкл поддерживающей среды. После 16-18 часов инкубации питательную среду из лунок удаляют и добавляют по 200 мкл охлажденного до -20°C ацетона (80 % ацетона и 20 % воды). Фиксация занимает 25-30 мин, после чего ацетон удаляют, а планшет подсушивают.The growth medium is removed from the wells of the plate, the monolayer of Vero E6 cells is washed twice with the supporting medium. Prepare 2-fold dilutions of immune and intact blood sera, then add a working dose of the virus (100 FRU), followed by incubation for 1 hour. The entire volume is transferred into the appropriate wells of the plate with a monolayer of cells, incubated for 60 min in a CO 2 incubator at 37 ° C, after which the sample is removed from the wells, and the plate is washed once with a supporting medium. In all wells of the plate, add 100 μl of the supporting medium. After 16-18 hours of incubation, the culture medium is removed from the wells and 200 μl of acetone cooled to -20 ° C (80% acetone and 20% water) are added. Fixation takes 25-30 minutes, after which the acetone is removed and the plate is dried.

Готовят разведение моноклонального антитела человека к нуклеопротеину N SARS-CoV-2 (AHA006/Anti-N protein SARS-CoV-2 mAb(IgG)/Sanyou Biopharmaceuticals/Human) в ФСБР (фосфатно-солевой буферный раствор) в рабочем разведении 1:8000, раствор по 50 мкл добавляют в каждую лунку. Планшет инкубируют при температуре 37°C в течение 1 часа, после чего лунки промывают ФСБР 3 раза и наносят аффинно очищенные антитела кролика против IgG человека, конъюгированные с пероксидазой хрена, в разведении 1:1000. Через 60 мин инкубации лунки промывают 3 раза ФСБР, после чего вносят раствор хромогенного субстрата AEC (3-amino-9-ethylcarbazole, Sigma). Через 30 мин инкубации при комнатной температуре в темном месте субстратный раствор удаляют, планшет промывают 1 раз ФСБР. Подсчет инфицированных клеток проводят посредством световой микроскопии по окрашиванию в красно-коричневый цвет (фиг. 5). Вируснейтрализующим титром считается наибольшее разведение сыворотки крови, при котором количество ФОЕ меньше на 50% по сравнению со средним значением ФОЕ в контрольных лунках с рабочим разведением вируса.Prepare a dilution of a human monoclonal antibody to nucleoprotein N SARS-CoV-2 (AHA006 / Anti-N protein SARS-CoV-2 mAb (IgG) / Sanyou Biopharmaceuticals / Human) in PBS (phosphate buffered saline) in a working dilution of 1: 8000 , a solution of 50 μl is added to each well. The plate is incubated at 37 ° C for 1 hour, after which the wells are washed with PBS 3 times and affinity purified rabbit antibodies against human IgG conjugated with horseradish peroxidase are applied at a dilution of 1: 1000. After 60 min of incubation, the wells are washed 3 times with PBS, after which a solution of the chromogenic substrate AEC (3-amino-9-ethylcarbazole, Sigma) is added. After 30 min of incubation at room temperature in a dark place, the substrate solution is removed, the plate is washed once with PBS. Infected cells are counted by light microscopy by red-brown staining (FIG. 5). Virus neutralizing titer is the highest dilution of blood serum, at which the amount of FRU is less by 50% compared to the average FRU in control wells with a working dilution of the virus.

Таблица 3 - Титры вируснейтрализующих антител в сыворотках крови иммунизированных животныхTable 3 - Titers of neutralizing antibodies in the blood serum of immunized animals

Вид животныхAnimal species №, п/пNo., p / p РН (ФОЕ)RN (FOE) ПриматыPrimates 11 >2560> 2560 22 >2560> 2560 33 25602560 ХорькиFerrets 44 52605260 5five 25602560 66 52605260 77 >2560> 2560 ХомякиHamsters 88 >2560> 2560 9nine 52605260 10ten >640> 640 11eleven >640> 640

Установлено, что титр вируснейтрализующих антител в реакции подавления ФОЕ у всех иммунизированных приматов и хорьков составил не менее 1:2560, у хомяков - не менее 1:640 (таблица 3). Таким образом, введение иммуногенной композиции на основе штамма rVSV-Stbl_RBD_SC2 рекомбинантного вируса везикулярного стоматита, экспрессирующего антигены коронавируса SARS-CoV-2, индуцирует синтез вирусспецифических и вируснейтрализующих антител.It was found that the titer of neutralizing antibodies in the reaction of suppressing FRU in all immunized primates and ferrets was at least 1: 2560, in hamsters - at least 1: 640 (Table 3). Thus, the introduction of an immunogenic composition based on the rVSV-Stbl_RBD_SC2 strain of the recombinant vesicular stomatitis virus expressing the antigens of the SARS-CoV-2 coronavirus induces the synthesis of virus-specific and virus-neutralizing antibodies.

Иммуногенная композиция на основе заявляемого штамма rVSV-Stbl_RBD_SC2 рекомбинантного вируса везикулярного стоматита, экспрессирующего антигены коронавируса SARS-CoV-2, может рассматриваться в качестве кандидатного вакцинного препарата для защиты людей и животных от коронавирусной инфекции COVID-19 (SARS-CoV-2).An immunogenic composition based on the inventive strain rVSV-Stbl_RBD_SC2 of the recombinant vesicular stomatitis virus expressing the antigens of the SARS-CoV-2 coronavirus can be considered as a candidate vaccine preparation for protecting humans and animals from COVID-19 coronavirus infection (SARS-CoV-2).

--->--->

Перечень последовательностейSequence listing

<110> Федеральное бюджетное учреждение науки «Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии «Вектор» Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (ФБУН ГНЦ ВБ «Вектор» Роспотребнадзора)<110> Federal Budgetary Institution of Science "State Scientific Center of Virology and Biotechnology" Vector "of the Federal Service for Surveillance on Consumer Rights Protection and Human Welfare (FBSI SSC VB" Vector "of Rospotrebnadzor)

<120> Искусственный ген, кодирующий бицистронную структуру, образованную последовательностями рецептор-связывающего домена гликопротеина S коронавируса SARS-CoV-2, P2A-пептида и гликопротеина G VSV, рекомбинантная плазмида pStem-rVSV-Stbl_RBD_SC2, обеспечивающая экспрессию искусственного гена и рекомбинантный штамм вируса везикулярного стоматита rVSV-Stbl_RBD_SC2, используемого для создания вакцины против коронавируса SARS-CoV-2<120> Artificial gene encoding the bicistronic structure formed by the sequences of the receptor-binding domain of the SARS-CoV-2 coronavirus S glycoprotein, P2A-peptide and VSV glycoprotein G, the recombinant plasmid pStem-rVSV-Stbl_RBD_SC2, which provides the expression of the artificial gene virus and recombinant vascular gene stomatitis rVSV-Stbl_RBD_SC2, used to create a vaccine against the SARS-CoV-2 coronavirus

<160> SEQ ID NO 2<160> SEQ ID NO 2

<210> SEQ ID NO: 1<210> SEQ ID NO: 1

<211> 2355<211> 2355

<212> PRT<212> PRT

<213> Artificial Sequence<213> Artificial Sequence

<220> <220>

<223> Нуклеотидная последовательность искусственного гена, кодирующего искусственный белок-иммуноген, представляющий собой бицистронную структуру, состоящую из последовательностей рецептор-связывающего домена (RBD) гликопротеина S коронавируса SARS-CoV-2, гетерологического сигнального пептида гемагглютинина (HA) вируса гриппа А, линкера, P2A-пептида для расщепления полипротеина во время трансляции, и гликопротеина G с мутацией M(1)>P(1), предотвращающей альтернативную инициацию трансляции.<223> Nucleotide sequence of an artificial gene encoding an artificial immunogen protein, which is a bicistronic structure consisting of the receptor binding domain (RBD) sequences of the SARS-CoV-2 coronavirus S glycoprotein, a heterologous influenza A hemagglutinin (HA) signal peptide, a linker , A P2A peptide for cleavage of a polyprotein during translation, and a glycoprotein G with a mutation M (1)> P (1), which prevents alternative translation initiation.

<400> 1<400> 1

ATGAAGGCAATACTAGTAGTTCTGCTATATACATTTGCAACCGCAAACGCA 51ATGAAGGCAATACTAGTAGTTCTGCTATATACATTTGCAACCGCAAACGCA 51

GATACCAGCAACTTCCGGGTGCAGCCCACCGAATCCATCGTGCGGTTCCCC 102 GATACCAGCAACTTCCGGGTGCAGCCCACCGAATCCATCGTGCGGTTCCCC 102

AATATCACCAATCTGTGCCCCTTCGGCGAGGTGTTCAATGCCACCAGATTC 153AATATCACCAATCTGTGCCCCTTCGGCGAGGTGTTCAATGCCACCAGATTC 153

GCCTCTGTGTACGCCTGGAACCGGAAGCGGATCAGCAATTGCGTGGCCGAC 204GCCTCTGTGTACGCCTGGAACCGGAAGCGGATCAGCAATTGCGTGGCCGAC 204

TACTCCGTGCTGTACAACTCCGCCAGCTTCAGCACCTTCAAGTGCTACGGC 255TACTCCGTGCTGTACAACTCCGCCAGCTTCAGCACCTTCAAGTGCTACGGC 255

GTGTCCCCTACCAAGCTGAACGACCTGTGCTTCACAAACGTGTACGCCGAC 306 GTGTCCCCTACCAAGCTGAACGACCTGTGCTTCACAAACGTGTACGCCGAC 306

AGCTTCGTGATCCGGGGAGATGAAGTGCGGCAGATTGCCCCTGGACAGACA 357AGCTTCGTGATCCGGGGAGATGAAGTGCGGCAGATTGCCCCTGGACAGACA 357

GGCAAGATCGCCGACTACAACTACAAGCTGCCCGACGACTTCACCGGCTGT 408GGCAAGATCGCCGACTACAACTACAAGCTGCCCGACGACTTCACCGGCTGT 408

GTGATTGCCTGGAACAGCAACAACCTGGACTCCAAAGTCGGCGGCAACTAC 459GTGATTGCCTGGAACAGCAACAACCTGGACTCCAAAGTCGGCGGCAACTAC 459

AATTACCTGTACCGGCTGTTCCGGAAGTCCAATCTGAAGCCCTTCGAGCGG 510AATTACCTGTACCGGCTGTTCCGGAAGTCCAATCTGAAGCCCTTCGAGCGG 510

GACATCTCCACCGAGATCTATCAGGCCGGCAGCACCCCTTGTAACGGCGTG 561GACATCTCCACCGAGATCTATCAGGCCGGCAGCACCCCTTGTAACGGCGTG 561

GAAGGCTTCAACTGCTACTTCCCACTGCAGTCCTACGGCTTTCAGCCCACA 612GAAGGCTTCAACTGCTACTTCCCACTGCAGTCCTACGGCTTTCAGCCCACA 612

AATGGCGTGGGCTATCAGCCCTACAGAGTGGTGGTGCTGAGCTTCGAACTG 663AATGGCGTGGGCTATCAGCCCTACAGAGTGGTGGTGCTGAGCTTCGAACTG 663

CTGCATGCCCCTGCCACAGTGTGCGGCCCTAAGAAAAGCACCAATCTCGTG 714CTGCATGCCCCTGCCACAGTGTGCGGCCCTAAGAAAAGCACCAATCTCGTG 714

AAGAACAAATGCGTGAACTTCAACTTCAACGGCCTGACCGGCACAGGCGGG 765AAGAACAAATGCGTGAACTTCAACTTCAACGGCCTGACCGGCACAGGCGGG 765

GCCACCAACTTCAGCCTCCTTAAACAGGCCGGCGACGTGGAGGAGAACCCT 816GCCACCAACTTCAGCCTCCTTAAACAGGCCGGCGACGTGGAGGAGAACCCT 816

GGCCCCAAGTGCCTTTTGTACTTAACCTTTTTATTCATTGGGGTGAATTGC 867GGCCCCAAGTGCCTTTTGTACTTAACCTTTTTATTCATTGGGGTGAATTGC 867

AAGTTCACCATAGTTTTTCCACACAACCAAAAAGGAAACTGGAAAAATGTT 918AAGTTCACCATAGTTTTTCCACACAACCAAAAAGGAAACTGGAAAAATGTT 918

CCTTCTAATTACCATTATTGCCCGTCAAGCTCAGATTTAAATTGGCATAAT 969CCTTCTAATTACCATTATTGCCCGTCAAGCTCAGATTTAAATTGGCATAAT 969

GACTTAATAGGCACAGCCTTACAAGTCAAAATGCCCAAGAGTCACAAGGCT 1020GACTTAATAGGCACAGCCTTACAAGTCAAAATGCCCAAGAGTCACAAGGCT 1020

ATTCAAGCAGACGGTTGGATGTGTCATGCTTCCAAATGGGTCACTACTTGT 1071ATTCAAGCAGACGGTTGGATGTGTCATGCTTCCAAATGGGTCACTACTTGT 1071

GATTTCCGCTGGTATGGACCGAAGTATATAACACATTCCATCCGATCCTTC 1122GATTTCCGCTGGTATGGACCGAAGTATATAACACATTCCATCCGATCCTTC 1122

ACTCCATCTGTAGAACAATGCAAGGAAAGCATTGAACAAACGAAACAAGGA 1173ACTCCATCTGTAGAACAATGCAAGGAAAGCATTGAACAAACGAAACAAGGA 1173

ACTTGGCTGAATCCAGGCTTCCCTCCTCAAAGTTGTGGATATGCAACTGTG 1224ACTTGGCTGAATCCAGGCTTCCCTCCTCAAAGTTGTGGATATGCAACTGTG 1224

ACGGATGCCGAAGCAGTGATTGTCCAGGTGACTCCTCACCATGTGCTGGTT 1275ACGGATGCCGAAGCAGTGATTGTCCAGGTGACTCCTCACCATGTGCTGGTT 1275

GATGAATACACAGGAGAATGGGTTGATTCACAGTTCATCAACGGAAAATGC 1326GATGAATACACAGGAGAATGGGTTGATTCACAGTTCATCAACGGAAAATGC 1326

AGCAATTACATATGCCCCACTGTCCATAACTCTACAACCTGGCATTCTGAC 1377AGCAATTACATATGCCCCACTGTCCATAACTCTACAACCTGGCATTCTGAC 1377

TATAAGGTCAAAGGGCTATGTGATTCTAACCTCATTTCCATGGACATCACC 1428 TATAAGGTCAAAGGGCTATGTGATTCTAACCTCATTTCCATGGACATCACC 1428

TTCTTCTCAGAGGACGGAGAGCTATCATCCCTGGGAAAGGAGGGCACAGGG 1479 TTCTTCTCAGAGGACGGAGAGCTATCATCCCTGGGAAAGGAGGGCACAGGG 1479

TTCAGAAGTAACTACTTTGCTTATGAAACTGGAGGCAAGGCCTGCAAAATG 1530TTCAGAAGTAACTACTTTGCTTATGAAACTGGAGGCAAGGCCTGCAAAATG 1530

CAATACTGCAAGCATTGGGGAGTCAGACTCCCATCAGGTGTCTGGTTCGAG 1581CAATACTGCAAGCATTGGGGAGTCAGACTCCCATCAGGTGTCTGGTTCGAG 1581

ATGGCTGATAAGGATCTCTTTGCTGCAGCCAGATTCCCTGAATGCCCAGAA 1632ATGGCTGATAAGGATCTCTTTGCTGCAGCCAGATTCCCTGAATGCCCAGAA 1632

GGGTCAAGTATCTCTGCTCCATCTCAGACCTCAGTGGATGTAAGTCTAATT 1683 GGGTCAAGTATCTCTGCTCCATCTCAGACCTCAGTGGATGTAAGTCTAATT 1683

CAGGACGTTGAGAGGATCTTGGATTATTCCCTCTGCCAAGAAACCTGGAGC 1734CAGGACGTTGAGAGGATCTTGGATTATTCCCTCTGCCAAGAAACCTGGAGC 1734

AAAATCAGAGCGGGTCTTCCAATCTCTCCAGTGGATCTCAGCTATCTTGCT 1785AAAATCAGAGCGGGTCTTCCAATCTCTCCAGTGGATCTCAGCTATCTTGCT 1785

CCTAAAAACCCAGGAACCGGTCCTGCTTTCACCATAATCAATGGTACCCTA 1836CCTAAAAACCCAGGAACCGGTCCTGCTTTCACCATAATCAATGGTACCCTA 1836

AAATACTTTGAGACCAGATACATCAGAGTCGATATTGCTGCTCCAATCCTC 1887AAATACTTTGAGACCAGATACATCAGAGTCGATATTGCTGCTCCAATCCTC 1887

TCAAGAATGGTCGGAATGATCAGTGGAACTACCACAGAAAGGGAACTGTGG 1938TCAAGAATGGTCGGAATGATCAGTGGAACTACCACAGAAAGGGAACTGTGG 1938

GATGACTGGGCACCATATGAAGACGTGGAAATTGGACCCAATGGAGTTCTG 1989GATGACTGGGCACCATATGAAGACGTGGAAATTGGACCCAATGGAGTTCTG 1989

AGGACCAGTTCAGGATATAAGTTTCCTTTATACATGATTGGACATGGTATG 2040AGGACCAGTTCAGGATATAAGTTTCCTTTATACATGATTGGACATGGTATG 2040

TTGGACTCCGATCTTCATCTTAGCTCAAAGGCTCAGGTGTTCGAACATCCT 2091TTGGACTCCGATCTTCATCTTAGCTCAAAGGCTCAGGTGTTCGAACATCCT 2091

CACATTCAAGACGCTGCTTCGCAACTTCCTGATGATGAGAGTTTATTTTTT 2142CACATTCAAGACGCTGCTTCGCAACTTCCTGATGATGAGAGTTTATTTTTT 2142

GGTGATACTGGGCTATCCAAAAATCCAATCGAGCTTGTAGAAGGTTGGTTC 2193GGTGATACTGGGCTATCCAAAAATCCAATCGAGCTTGTAGAAGGTTGGTTC 2193

AGTAGTTGGAAAAGCTCTATTGCCTCTTTTTTCTTTATCATAGGGTTAATC 2244AGTAGTTGGAAAAGCTCTATTGCCTCTTTTTTCTTTATCATAGGGTTAATC 2244

ATTGGATATTCTTGGTTCTCCGAGTTGGTATCCATCTTTGCATTAAATTAC 2295ATTGGATATTCTTGGTTCTCCGAGTTGGTATCCATCTTTGCATTAAATTAC 2295

AAGCACACCAAGAAAAGACAGATTTATACAGACATAGAGATGAACCGACTT 2346AAGCACACCAAGAAAAGACAGATTTATACAGACATAGAGATGAACCGACTT 2346

GGAAAGTAA 2355GGAAAGTAA 2355

<210> SEQ ID NO: 2<210> SEQ ID NO: 2

<211> 784<211> 784

<212> PRT<212> PRT

<213> Artificial Sequence<213> Artificial Sequence

<220> <220>

<223> Аминокислотная последовательность секретируемого рецептор-связывающего домена (RBD) гликопротеина S (Spike) SARS-CoV-2 2 c гетерологической сигнальной последовательностью, линкером и P2A-пептидом, обеспечивающим независимый синтез коронавирусного антигена и белка G вируса везикулярного стоматита<223> Amino acid sequence of the secreted receptor-binding domain (RBD) of the S (Spike) glycoprotein SARS-CoV-2 2 with a heterologous signal sequence, linker, and P2A-peptide providing independent synthesis of coronavirus antigen and G protein of vesicular stomatitis virus

<400> 2<400> 2

MKAILVVLLYTFATANADTSNFRVQPTESIVRFPNITNLCPFGEVFNATRFASVYAWNRK 60MKAILVVLLYTFATANADTSNFRVQPTESIVRFPNITNLCPFGEVFNATRFASVYAWNRK 60

RISNCVADYSVLYNSASFSTFKCYGVSPTKLNDLCFTNVYADSFVIRGDEVRQIAPGQTG 120RISNCVADYSVLYNSASFSTFKCYGVSPTKLNDLCFTNVYADSFVIRGDEVRQIAPGQTG 120

KIADYNYKLPDDFTGCVIAWNSNNLDSKVGGNYNYLYRLFRKSNLKPFERDISTEIYQAG 180KIADYNYKLPDDFTGCVIAWNSNNLDSKVGGNYNYLYRLFRKSNLKPFERDISTEIYQAG 180

STPCNGVEGFNCYFPLQSYGFQPTNGVGYQPYRVVVLSFELLHAPATVCGPKKSTNLVKN 240STPCNGVEGFNCYFPLQSYGFQPTNGVGYQPYRVVVLSFELLHAPATVCGPKKSTNLVKN 240

KCVNFNFNGLTGTGGATNFSLLKQAGDVEENPGPKCLLYLTFLFIGVNCKFTIVFPHNQK 300KCVNFNFNGLTGTGGATNFSLLKQAGDVEENPGPKCLLYLTFLFIGVNCKFTIVFPHNQK 300

GNWKNVPSNYHYCPSSSDLNWHNDLIGTALQVKMPKSHKAIQADGWMCHASKWVTTCDFR 360GNWKNVPSNYHYCPSSSDLNWHNDLIGTALQVKMPKSHKAIQADGWMCHASKWVTTCDFR 360

WYGPKYITHSIRSFTPSVEQCKESIEQTKQGTWLNPGFPPQSCGYATVTDAEAVIVQVTP 420WYGPKYITHSIRSFTPSVEQCKESIEQTKQGTWLNPGFPPQSCGYATVTDAEAVIVQVTP 420

HHVLVDEYTGEWVDSQFINGKCSNYICPTVHNSTTWHSDYKVKGLCDSNLISMDITFFSE 480HHVLVDEYTGEWVDSQFINGKCSNYICPTVHNSTTWHSDYKVKGLCDSNLISMDITFFSE 480

DGELSSLGKEGTGFRSNYFAYETGGKACKMQYCKHWGVRLPSGVWFEMADKDLFAAARFP 540DGELSSLGKEGTGFRSNYFAYETGGKACKMQYCKHWGVRLPSGVWFEMADKDLFAAARFP 540

ECPEGSSISAPSQTSVDVSLIQDVERILDYSLCQETWSKIRAGLPISPVDLSYLAPKNPG 600ECPEGSSISAPSQTSVDVSLIQDVERILDYSLCQETWSKIRAGLPISPVDLSYLAPKNPG 600

TGPAFTIINGTLKYFETRYIRVDIAAPILSRMVGMISGTTTERELWDDWAPYEDVEIGPN 660TGPAFTIINGTLKYFETRYIRVDIAAPILSRMVGMISGTTTERELWDDWAPYEDVEIGPN 660

GVLRTSSGYKFPLYMIGHGMLDSDLHLSSKAQVFEHPHIQDAASQLPDDESLFFGDTGLS 720GVLRTSSGYKFPLYMIGHGMLDSDLHLSSKAQVFEHPHIQDAASQLPDDESLFFGDTGLS 720

KNPIELVEGWFSSWKSSIASFFFIIGLIIGLFLVLRVGIHLCIKLKHTKKRQIYTDIEMN 780 KNPIELVEGWFSSWKSSIASFFFIIGLIIGLFLVLRVGIHLCIKLKHTKKRQIYTDIEMN 780

RLGK* 784RLGK * 784

<---<---

Claims (16)

1. Ген для создания вакцины против коронавируса SARS-CoV-2, имеющий последовательность SEQ ID NO:1.1. Gene for creating a vaccine against the coronavirus SARS-CoV-2, having the sequence SEQ ID NO: 1. 2. Рекомбинантная плазмида pStem-rVSV-Stbl_RBD_SC2 для получения вакцины против коронавируса SARS-CoV-2, имеющая молекулярную массу 8,85х106 дальтон, размер 14309 п.н. и содержащая в соответствии с физической и генетической картой, представленной на Фиг. 2, целевой ген по п. 1, кодирующий искусственный белок-иммуноген RBD гликопротеина S коронавируса SARS-CoV-2, имеющий аминокислотную последовательность SEQ ID NO: 2 длиной 784 а.к.о. и находящийся под контролем вирусного промотора, обеспечивающего его экспрессию в клетках млекопитающих, и состоящая из следующих фрагментов:2. Recombinant plasmid pStem-rVSV-Stbl_RBD_SC2 for obtaining a vaccine against the coronavirus SARS-CoV-2, having a molecular weight of 8.85x10 6 daltons, size 14309 bp. and containing, in accordance with the physical and genetic map shown in FIG. 2, the target gene according to claim 1, encoding an artificial protein-immunogen RBD of the glycoprotein S of the coronavirus SARS-CoV-2, having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2 in length of 784 a.c. and is under the control of a viral promoter, ensuring its expression in mammalian cells, and consisting of the following fragments: - ORI - (ORI, origin of replication) точка начала репликации плазмидного вектора pUC (координаты 13483- 14071 п.н.); - ORI - (ORI, origin of replication) the origin of replication of the plasmid vector pUC (coordinates 13483-14071 bp); - AmpR - ген β-лактамазы, обеспечивающий устойчивость трансформантов E.coli к селективному антибиотику ампициллину (координаты 12452- 13312 п.н.); - AmpR - β-lactamase gene providing resistance of E. coli transformants to the selective antibiotic ampicillin (coordinates 12452-13312 bp); - T7 promoter - нуклеотидная последовательность промотора бактериофага T7, необходимая для транскрипции антигеномной последовательности РНК рекомбинантного вируса везикулярного стоматита (координаты 166-183 п.н.); - T7 promoter - the nucleotide sequence of the T7 bacteriophage promoter required for transcription of the antigenomic RNA sequence of the recombinant vesicular stomatitis virus (coordinates 166-183 bp); - T7 terminator - нуклеотидная последовательность терминатора бактериофага T7, необходимая для терминации транскрипции антигеномной последовательности РНК рекомбинантного вируса везикулярного стоматита (координаты 12224- 12330 п.н.); - T7 terminator - the nucleotide sequence of the T7 bacteriophage terminator, which is necessary for the termination of transcription of the antigenomic RNA sequence of the recombinant vesicular stomatitis virus (coordinates 12224-12330 bp); - HDV-Rbz - нуклеотидная последовательность рибозима HDV, которая после транскрибирования отщепляется с формированием аутентичной 3’-концевой некодирующей последовательности (координаты 12137- 12219 п.н.); - HDV-Rbz - nucleotide sequence of the HDV ribozyme, which, after transcription, is cleaved to form an authentic 3'-terminal non-coding sequence (coordinates 12137-122219 bp); - N - открытая рамка считывания гена N (нуклеопротеин) (координаты 247- 1515 п.н.); - N - open reading frame of the N gene (nucleoprotein) (coordinates 247-1515 bp); - P - открытая рамка считывания гена P (фосфопротеин) (координаты 1579- 2376 п.н.); - P - open reading frame of the P gene (phosphoprotein) (coordinates 1579-2376 bp); - L - открытая рамка считывания гена L (РНК-зависимая РНК-полимераза) (координаты 5708- 12037 п.н.); - L - open reading frame of the L gene (RNA-dependent RNA polymerase) (coordinates 5708-12037 bp); - VSV-G - открытая рамка считывания гликопротеина G с мутацией M(1)>P(1) (координаты 3322-4032 п.н.); - VSV-G - open reading frame of glycoprotein G with mutation M (1)> P (1) (coordinates 3322-4032 bp); - P2A - 2A-пептид тешовируса-1, обеспечивающий расщепление полипротеина на этапе трансляции (координаты 4033- 4089 п.н.); - P2A - 2A-peptide of teshovirus-1, providing cleavage of polyprotein at the translation stage (coordinates 4033-4089 bp); - Signal peptide - сигнальный пептид гемагглютинина (HA) вируса гриппа А, обеспечивающий эффективный внутриклеточный транспорт синтезируемого полипротеина (координаты 3268-3321 п.н.); - Signal peptide - hemagglutinin (HA) signal peptide of influenza A virus, which provides efficient intracellular transport of synthesized polyprotein (coordinates 3268-3321 bp); - Spike protein - фрагмент гена S (Spike) SARS-CoV-2 (координаты 3322-4032 п.н.); - Spike protein - a fragment of the S (Spike) SARS-CoV-2 gene (coordinates 3322-4032 bp); - Receptor-binding domain (RBD) - рецептор-связывающий домен гликопротеина S (Spike) SARS-CoV-2 (координаты 3334-4002 п.н.).- Receptor-binding domain (RBD) - receptor-binding domain of glycoprotein S (Spike) SARS-CoV-2 (coordinates 3334-4002 bp). 3. Рекомбинантный штамм вируса везикулярного стоматита rVSV-Stbl_RBD_SC2, содержащий рекомбинантную плазмиду pStem-rVSV-Stbl_RBD_SC2 по п. 2, обеспечивающий независимый синтез антигена коронавируса SARS-CoV-2 и белка G вируса везикулярного стоматита, используемый для создания вакцины против коронавируса SARS-CoV-2 и депонированный в Государственной коллекции возбудителей вирусных инфекций, риккетсиозов ФБУН ГНЦ ВБ «Вектор» Роспотребнадзора под номером V-984.3. Recombinant strain of vesicular stomatitis virus rVSV-Stbl_RBD_SC2, containing the recombinant plasmid pStem-rVSV-Stbl_RBD_SC2 according to claim 2, providing independent synthesis of the SARS-CoV-2 coronavirus antigen and protein G of the vesicular vaccine against SARS-CoV used to create a coronavirus vaccine against SARS -2 and deposited in the State collection of pathogens of viral infections, rickettsioses of the FBSI SSC VB "Vector" of the Federal Service for Supervision of Consumer Rights Protection and Human Welfare under the number V-984.
RU2020123453A 2020-07-08 2020-07-08 Artificial gene coding a bicistronic structure formed by receptor-binding domain sequences of the glycoprotein s of the sars-cov-2 coronavirus, p2a-peptide and glycoprotein g vsv, recombinant plasmid pstem-rvsv-stbl_rbd_sc2, providing expression of artificial gene, and a recombinant strain of vesicular stomatitis virus rvsv-stbl_rbd_sc2, used to create a vaccine against sars-cov-2 coronavirus RU2733831C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2020123453A RU2733831C1 (en) 2020-07-08 2020-07-08 Artificial gene coding a bicistronic structure formed by receptor-binding domain sequences of the glycoprotein s of the sars-cov-2 coronavirus, p2a-peptide and glycoprotein g vsv, recombinant plasmid pstem-rvsv-stbl_rbd_sc2, providing expression of artificial gene, and a recombinant strain of vesicular stomatitis virus rvsv-stbl_rbd_sc2, used to create a vaccine against sars-cov-2 coronavirus

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2020123453A RU2733831C1 (en) 2020-07-08 2020-07-08 Artificial gene coding a bicistronic structure formed by receptor-binding domain sequences of the glycoprotein s of the sars-cov-2 coronavirus, p2a-peptide and glycoprotein g vsv, recombinant plasmid pstem-rvsv-stbl_rbd_sc2, providing expression of artificial gene, and a recombinant strain of vesicular stomatitis virus rvsv-stbl_rbd_sc2, used to create a vaccine against sars-cov-2 coronavirus

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2733831C1 true RU2733831C1 (en) 2020-10-07

Family

ID=72927115

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2020123453A RU2733831C1 (en) 2020-07-08 2020-07-08 Artificial gene coding a bicistronic structure formed by receptor-binding domain sequences of the glycoprotein s of the sars-cov-2 coronavirus, p2a-peptide and glycoprotein g vsv, recombinant plasmid pstem-rvsv-stbl_rbd_sc2, providing expression of artificial gene, and a recombinant strain of vesicular stomatitis virus rvsv-stbl_rbd_sc2, used to create a vaccine against sars-cov-2 coronavirus

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2733831C1 (en)

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2738081C1 (en) * 2020-10-14 2020-12-07 Федеральное бюджетное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" Федеральной службы по надзору в сфере зашиты прав потребителей и благополучия человека (ФБУН ГНЦ ВБ "Вектор" Роспотребнадзора) Peptide immunogens and a vaccine composition against coronavirus infection covid-19 using peptide immunogens
CN113186204A (en) * 2021-06-11 2021-07-30 北京华芢生物技术有限公司 Novel gene of Brazilian coronavirus P.1 mutant strain RBD and application thereof
CN113238048A (en) * 2021-05-11 2021-08-10 上海真测生物科技有限公司 Diagnostic marker and application thereof in distinguishing new coronavirus infection and new coronavirus inactivated vaccination
RU2761879C1 (en) * 2021-07-27 2021-12-13 Закрытое Акционерное Общество "Биокад" VACCINE BASED ON AAV5 FOR THE INDUCTION OF SPECIFIC IMMUNITY TO THE SARS-CoV-2 VIRUS AND/OR THE PREVENTION OF CORONAVIRUS INFECTION CAUSED BY SARS-CoV-2
RU2772905C1 (en) * 2021-12-13 2022-05-26 Общество с ограниченной ответственностью "ЭС ДЖИ" (ООО "ЭС ДЖИ") Recombinant plasmid pvbl-rbdomik providing synthesis and secretion of the recombinant receptor-binding domain (rbd) of the sars-cov-2 coronavirus line b.1.1.529 in mammalian cells.

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EA032284B1 (en) * 2012-05-31 2019-05-31 Зоэтис Ллс Vaccination with canine respiratory coronavirus for protection against b. bronchiseptica infections
CN111088283A (en) * 2020-03-20 2020-05-01 苏州奥特铭医药科技有限公司 mVSV viral vector, viral vector vaccine thereof and mVSV-mediated novel coronary pneumonia vaccine
CN111358953A (en) * 2020-03-25 2020-07-03 上海市公共卫生临床中心 Vaccine vector for efficiently inducing humoral immune response of organism, preparation method and application thereof

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EA032284B1 (en) * 2012-05-31 2019-05-31 Зоэтис Ллс Vaccination with canine respiratory coronavirus for protection against b. bronchiseptica infections
CN111088283A (en) * 2020-03-20 2020-05-01 苏州奥特铭医药科技有限公司 mVSV viral vector, viral vector vaccine thereof and mVSV-mediated novel coronary pneumonia vaccine
CN111358953A (en) * 2020-03-25 2020-07-03 上海市公共卫生临床中心 Vaccine vector for efficiently inducing humoral immune response of organism, preparation method and application thereof

Cited By (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2783313C1 (en) * 2020-08-28 2022-11-11 Акционерное общество "БИОКАД" VACCINE BASED ON AAV5 FOR INDUCTION OF SPECIFIC IMMUNITY TO SARS-CoV-2 VIRUS AND/OR PREVENTION OF CORONAVIRUS INFECTION CAUSED BY SARS-CoV-2
RU2738081C1 (en) * 2020-10-14 2020-12-07 Федеральное бюджетное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" Федеральной службы по надзору в сфере зашиты прав потребителей и благополучия человека (ФБУН ГНЦ ВБ "Вектор" Роспотребнадзора) Peptide immunogens and a vaccine composition against coronavirus infection covid-19 using peptide immunogens
WO2022081042A1 (en) * 2020-10-14 2022-04-21 Федеральное бюджетное учреждение науки "Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Vaccine composition against coronavirus covid-19 infection
CN113238048A (en) * 2021-05-11 2021-08-10 上海真测生物科技有限公司 Diagnostic marker and application thereof in distinguishing new coronavirus infection and new coronavirus inactivated vaccination
CN113238048B (en) * 2021-05-11 2024-03-15 抗码(苏州)生物科技有限公司 Diagnostic markers and their use in differentiating between new coronavirus infection and new coronavirus inactivated vaccination
CN113186204A (en) * 2021-06-11 2021-07-30 北京华芢生物技术有限公司 Novel gene of Brazilian coronavirus P.1 mutant strain RBD and application thereof
RU2776484C1 (en) * 2021-07-02 2022-07-21 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Институт экспериментальной медицины" (ФГБНУ "ИЭМ") Recombinant dna ensuring production of the recombinant protein cov1 exhibiting immunogenic properties against sars-cov-2 virus
RU2761879C1 (en) * 2021-07-27 2021-12-13 Закрытое Акционерное Общество "Биокад" VACCINE BASED ON AAV5 FOR THE INDUCTION OF SPECIFIC IMMUNITY TO THE SARS-CoV-2 VIRUS AND/OR THE PREVENTION OF CORONAVIRUS INFECTION CAUSED BY SARS-CoV-2
RU2772905C1 (en) * 2021-12-13 2022-05-26 Общество с ограниченной ответственностью "ЭС ДЖИ" (ООО "ЭС ДЖИ") Recombinant plasmid pvbl-rbdomik providing synthesis and secretion of the recombinant receptor-binding domain (rbd) of the sars-cov-2 coronavirus line b.1.1.529 in mammalian cells.
RU2772904C1 (en) * 2021-12-13 2022-05-26 Общество с ограниченной ответственностью "ЭС ДЖИ" (ООО "ЭС ДЖИ") Recombinant plasmid pvbl-rbddelta providing synthesis and secretion of the recombinant receptor-binding domain (rbd) of the sars-cov-2 coronavirus line b.1.617.2 in mammalian cells
RU2784655C1 (en) * 2021-12-31 2022-11-29 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова Российской академии наук (ИБХ РАН) METHOD FOR DETERMINING THE ACTIVITY OF NEUTRALISING ANTIBODIES AGAINST SARS-CoV-2 IN THE SERUM OR PLASMA OF PEOPLE WITH PAST CASES OF COVID-19 OR VACCINATED WITH PREVENTIVE VACCINES AGAINST THE NOVEL CORONAVIRUS INFECTION COVID-19 USING A SET OF ENZYME IMMUNOASSAY REAGENTS CONTAINING A RECOMBINANT RECEPTOR-BINDING DOMAIN (RBD) OF SURFACE GLYCOPROTEIN S OF CORONAVIRUS SARS-CoV-2 AND RECOMBINANT HUMAN RECEPTOR ACE2
RU2782531C1 (en) * 2022-04-15 2022-10-28 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Институт экспериментальной медицины" (ФГБНУ "ИЭМ") Recombinant vaccine strain for live intranasal vaccine providing combined prevention of influenza and coronavirus infections

Similar Documents

Publication Publication Date Title
RU2733832C1 (en) Artificial gene stbl_rbd_trm_sc2, coding a bicistronic structure formed by the sars-cov-2 coronavirus glycoprotein s receptor-binding domain sequences, transmembrane region, p2a-peptide and glycoprotein g vsv, recombinant plasmid pstem-rvsv-stbl_rbd_trm_sc2, providing expression of artificial gene, and a recombinant strain of vesicular stomatitis virus rvsv-stbl_rbd_trm_sc2, used to create a vaccine against sars-cov-2 coronavirus
RU2733834C1 (en) Artificial ectos_sc2 gene encoding an ectodomain of the sars-cov-2 coronavirus s glycoprotein with a c-terminal trimerization domain, a recombinant plasmid pstem-rvsv-ectos_sc2, which provides expression of the artificial gene, and a recombinant strain of vesicular stomatitis virus rvsv-ectos_sc2, used to create a vaccine against sars-cov-2 coronavirus
RU2733831C1 (en) Artificial gene coding a bicistronic structure formed by receptor-binding domain sequences of the glycoprotein s of the sars-cov-2 coronavirus, p2a-peptide and glycoprotein g vsv, recombinant plasmid pstem-rvsv-stbl_rbd_sc2, providing expression of artificial gene, and a recombinant strain of vesicular stomatitis virus rvsv-stbl_rbd_sc2, used to create a vaccine against sars-cov-2 coronavirus
WO2021254327A1 (en) Envelope replacement-type viral vector vaccine and construction method therefor
CN111088283A (en) mVSV viral vector, viral vector vaccine thereof and mVSV-mediated novel coronary pneumonia vaccine
CA3156350A1 (en) Immunobiological agent for inducing specific immunity against severe acute respiratory syndrome virus sars-cov-2
CA3166811A1 (en) Measles-vectored covid-19 immunogenic compositions and vaccines
Ferko et al. Hyperattenuated recombinant influenza A virus nonstructural-protein-encoding vectors induce human immunodeficiency virus type 1 Nef-specific systemic and mucosal immune responses in mice
TWI605124B (en) Novel baculovirus vectors and methods of ?use
Lokugamage et al. Chimeric coronavirus-like particles carrying severe acute respiratory syndrome coronavirus (SCoV) S protein protect mice against challenge with SCoV
US20240123053A1 (en) Coronavirus vaccine through nasal immunization
Kohlmann et al. Protective efficacy and immunogenicity of an adenoviral vector vaccine encoding the codon-optimized F protein of respiratory syncytial virus
Tan et al. Coexpression of double or triple copies of the rabies virus glycoprotein gene using a ‘self-cleaving’2A peptide-based replication-defective human adenovirus serotype 5 vector
US20230285540A1 (en) Polynucleotides encoding sars-cov-2 antigens and use thereof in the medical field as vaccines
US11179459B1 (en) Vaccine composition for preventing human infection of SARS coronavirus and alleviating infection symptoms
EP3103474A1 (en) Live recombinant measles-m2 virus and its use in eliciting immunity against influenza viruses
Li et al. A single immunization with a recombinant canine adenovirus expressing the rabies virus G protein confers protective immunity against rabies in mice
WO2022109068A1 (en) Influenza virus encoding a truncated ns1 protein and a sars-cov receptor binding domain
Liniger et al. Recombinant measles viruses expressing single or multiple antigens of human immunodeficiency virus (HIV-1) induce cellular and humoral immune responses
EP3004333A1 (en) Avian cells for improved virus production
Wang et al. Complex adenovirus-vectored vaccine protects guinea pigs from three strains of Marburg virus challenges
US11896658B2 (en) RSV vaccines and methods of production and use thereof
Wang et al. Parainfluenza virus 5 is a next‐generation vaccine vector for human infectious pathogens
EA011878B1 (en) A respiratory syncytial virus with a genomic deficiency complemented in trans
Zakhartchouk et al. Optimization of a DNA vaccine against SARS