JP7057076B2 - 植物体の生産方法 - Google Patents
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Description
造形工程は、分化能を有する植物細胞を含んだ三次元形状体を形成する工程である。本工程では、植物体を任意の形状に形成することができるとともに植物細胞を任意の組織に分化させることができるため、高い自由度にて植物体を設計することができる。
造形工程では、少なくとも分化能を有する植物細胞を用いる。分化能を有する植物細胞としては、脱分化細胞が挙げられる。脱分化細胞としては、植物組織から採取した細胞からカルスを得て、このカルスから得られた細胞等が挙げられる。そのような植物組織としては、根、茎、葉、花弁、種子、胚、胚珠、子房、葯、花粉及び成長点(茎頂分裂組織及び根端分裂組織)等が挙げられる。特に茎頂分裂組織の細胞(茎頂細胞)は、ウイルスフリーとなるので好ましい。
本明細書において「三次元形状体」とは、複数の細胞を積層して形成された構造体であり、目的とする植物体の概形に等しい形状に形成された構造体を意図している。ここで、目的とする植物体は、根、茎及び葉を備えた植物体全体であってもよく、一部の器官であってもよい。例えば、本発明の一実施形態に係る植物体の生産方法によれば、根を除去した植物体において、根に相当する領域に三次元形状体を形成し、根へと分化させることもできる。
三次元形状体の形成方法は、特に限定されず、分化能を有する植物細胞等を所望の形状に配置及び積層すればよい。植物細胞は、マニュピレータ等を用いて配置及び積層されてもよい。または、植物細胞を分散させた分散液に、基板を浸漬して、所望の形状を形成してもよい。あるいは、当該分散液を基板等に塗布もしくは滴下して所望の形状を形成してもよい。本明細書においては、このような分散液を「インク」とも称する。例えば、単離した細胞もしくはスフェロイド、またはその混合物を液体に分散させたインクを用いることが好ましい。当該液体としては、水が挙げられる。インクの調製に水を用いる場合、純水を用いてもよく、各種成分を溶解させた水溶液を用いてもよい。
造形工程において、植物細胞はゲルビーズに包まれていることが好ましい。すなわち、造形工程において、植物細胞を含むゲルビーズを、目的とする植物体の概形に等しい形状に配置することが好ましい。このゲルビーズを積層させて容易に三次元形状体を形成することができる。ゲルビーズは、アルギン酸のアルカリ土類金属塩(例えば、アルギン酸カルシウムまたはアルギン酸バリウム等)を含むことが好ましい。
三次元形状体は、表面で開口する中空部及び溝部の少なくともいずれか一方を備えていてもよい。後述の培養工程において三次元形状体の内部に対して酸素及び培養液が十分に供給されないと、内部の細胞が死んでしまうおそれがある。特に、三次元形状体が大きい場合(例えば、茎もしくは根に相当する部分の直径が大きい場合、または葉に相当する部分の厚みが大きい場合)、このようなおそれがある。三次元形状体が中空部または溝部を備えていれば、中空部または溝部を介して三次元形状体の内部に酸素及び培養液を供給することができる。例えば、茎に相当する部分の直径が数百μm以上である場合、中空部または溝部を設けることが好ましい。中空部の直径は、中空部を通過する分子の大きさ及び中空部における流路抵抗を鑑み、約100μm以上であることが好ましい。
本発明の一実施形態に係る植物体の生産方法は、造形工程の前、造形工程の後、または造形工程と同時に、植物細胞の組織化を促進する成分を含んだ組織化促進剤を、分化能を有する植物細胞に添加する組織化促進工程を備えることが好ましい。これにより、植物細胞の分化を促進することができる。例えば、造形工程で用いられる分化能を有する植物細胞が単一の種類の細胞であっても、これらの細胞を様々な器官へ分化させることができる。また、三次元形状体から植物体を得るための期間を短縮できる。
組織化促進剤は、植物細胞の組織化を促進する成分を含んでいる。組織化促進剤は、固体、液体及び気体のいずれであっても構わないが、扱いやすさの観点からは液体であることが好ましい。
組織化促進剤の添加方法は、特に限定されないが、例えば、以下の方法が挙げられる。造形工程の前に組織化促進工程を行う場合、予め植物細胞へ組織化促進剤を添加したうえで、三次元形状体を形成する方法が挙げられる。造形工程の後に組織化促進工程を行う場合、三次元形状体を組織化促進剤に浸漬する方法、または三次元形状体へ組織化促進剤を塗布もしくは滴下する方法等が挙げられる。造形工程と同時に組織化促進工程を行う場合、組織化促進剤を添加しながら植物細胞を所望の形状に配置する方法が挙げられる。
前記造形工程の後に、前記三次元形状体を培養して目的とする植物体に育成する培養工程を備えることが好ましい。尚、培養工程は、前記造形工程及び前記組織化促進工程の後に行われることがより好ましい。これにより、三次元形状体の分化を、より促進することができる。
<インク調製>
まず、造形工程で使用する細胞を以下のように準備した。イチゴ(品種「とちおとめ」)の葉片を採取し、エタノール及び次亜塩素酸ナトリウムを用いた一般的な方法によって殺菌処理及び滅菌処理を行った。また、MS培地の無機塩組成を3倍に希釈した1/3MS培地を調製した。この1/3MS培地に対して30g/Lのショ糖、1.0mg/LのTDZ及び0.1mg/Lの2,4-Dを添加した培地を用いて、上記葉片からカルス誘導を行った。得られたカルスは、セルラーゼ水溶液を用いて細胞毎に単離した。
続いて、造形工程で使用する、パターンが形成された基板を以下のように準備した。図15は、実施例1で使用される基板の作製方法の概要を表す模式図である。まず、図15の(a)及び(b)に示すように、ガラス基板46に対して、スリットコーターを用いてポジ型フォトレジスト47を塗布した。図15の(c)に示すように、このポジ型フォトレジスト47に対して、細胞を配置したいパターンが開口したメタルマスク48を用いてマスキングしたうえで、露光用照射光49を照射した。これにより、図15の(d)に示すように、フォトレジスト層50を形成した。その後、図15の(d)及び(e)に示すように、エッチング液(テトラメチルアンモニウムヒドロキシド溶液)を用いて露光部分51を除去した。その後、このパターンを形成したガラス基板46に、図15の(f)に示すように、アッシング装置を用いてプラズマ52を処理することで親水化処理を行った。これにより、図15の(g)に示すように、親水化された領域53を有するガラス基板46を得た。尚、プラズマ処理の条件は、水に対する接触角が、細胞を配置する領域(フォトレジスト層50の除去部分)では10°以下、細胞を配置したくない領域(フォトレジスト層50の残存部分)では60°以上となるように調整した。
上述のように得られたパターン形成済みの基板を、インクA-1を充填した水槽内にディッピングして取り出した。図16は、実施例1で使用される基板を表す模式図である。このディッピングにより、図16に示すように、所定のパターン上にのみインク54(インクA-1)を配置した。
続いて、組織化促進工程として、基板に配置されたインクA-1の上に、ディスペンサを用いてインクB-1、インクB-2及びインクB-3を滴下してインクA-1を被覆した。このとき、培養後に植物体の根になる部分にはインクB-1を、茎になる部分にはインクB-2を、葉になる部分にはインクB-3をそれぞれ滴下した。この滴下するインクB-1、インクB-2及びB-3の合計量は、パターン上に残存しているインクA-1を被覆するために、インクA-1の倍の量となるように滴下した。尚、滴下後のインクB-1、インクB-2及びインクB-3については、基板上で互いに交じり合うことがないよう粘度調整することにより、流動性を抑えた。
続いて、培養工程として、組織化促進工程で作製したサンプルを、ショ糖等を含んだ培養液に入れ、通気培養を行った。通気培養は、光強度40μmol・m-2・sec-1、16時間日長、25℃で管理しながら45日間行った。
<インク調製>
実施例1と同様に細胞を単離した。単離した細胞を、アルギン酸ナトリウムの濃度が1重量%、TDZの濃度が2.4mg/Lとなるように調整した水溶液に分散させてインクA-2とした。また2,4-Dの濃度が1.0mg/Lである水溶液をインクB-4として作製した。
本実施例では、図12に示した装置構成と同様の装置構成を用いた。インクA-2を吐出するインクジェットヘッドと、インクB-4を吐出するインクジェットヘッドとをそれぞれ用意し、鉛直方向に対して約-30~30°の傾きで対向させて配置した。これにより、インクA-2の液滴とインクB-4の液滴とを衝突させて1つの液滴を形成した。2つのインクジェットヘッドとしては、階調制御が可能なピエゾ式のシェアモード型インクジェットヘッドを用いた。
実施例2では、上記装置を用いて造形工程と組織化促進工程とを同時に行った。尚、実施例2ではインクジェットヘッドのインク吐出量を1滴あたり約7pLに設定しており、2階調の場合の吐出量は約14pL、3階調の場合の吐出量は約20pLとした。実施例2では、インクA-2を吐出するインクジェットヘッドは全て1階調、インクB-4を吐出するインクジェットヘッドは1~3階調の吐出とした。従って、2つのインクジェットヘッドから吐出された液滴を混合した液滴は14~27pLとなり、この液滴から形成されるゲルビーズの直径は30~40μmとなった。培養後の植物体として葉となる部分にはインクB-4を1階調、茎となる部分にはインクB-4を2階調、根となる部分にはインクB-4を3階調吐出した。このようにして作製したゲルビーズ内に含有されているTDZと2,4-Dとの重量比は下表のとおりである。
続いて、培養工程として、この三次元形状体を、ショ糖等を含んだ培養液に入れ、通気培養を行った。通気培養は、光強度40μmol・m-2・sec-1、16時間日長、25℃で管理しながら45日間、行った。
実施例2と同様にまず、採取した細胞を培養してインクA-3及びインクB-5を作製した。また、図12と同じ構成の装置を使用した。図17は、実施例3における造形工程の概要を表す模式図である。本実施例では、図17に示すように、塩化カルシウム水溶液32を充填した水槽31内に根を切除したイチゴ苗55(全長約7cm)を入れて固定し、その切除した部分に連続するようにゲルビーズ56を形成し、三次元形状体を作製した。尚、図17の(a)はZ軸方向から見た図であり、図17の(b)はY軸方向から見た図である。このときインクジェットヘッド23の1滴あたりの吐出量は約7pLで1階調とし、インクジェットヘッド24の1滴あたりの吐出量は約7pLで3階調とすることで約20pLとした。
実施例1と同様に細胞を単離した。単離した分化能を有する植物細胞を4グループに分け、そのうち3グループに対して葉、茎または根への分化に適した配合の組織化促進剤(下記表2参照)およびショ糖等をそれぞれ加え、インクC-1、C-2及びC-3を作製した。単離した分化能を有する植物細胞のうちの残りの細胞については、アルギン酸ナトリウム1重量%の水溶液に分散させてインクD-4とした。
2、15 タンク
3、16 インクジェットヘッド移動機構
4、17 液滴
5 三次元形状体
9 ゲルビーズ
10 インク成分
11 ゲル被膜
12 植物細胞を含まないゲルビーズ
13 植物細胞を含むゲルビーズ
Claims (13)
- 分化能を有する植物細胞を含むゲルビーズを含んだ、表面で開口する中空部及び溝部の少なくともいずれか一方を備える三次元形状体を形成する造形工程と、
前記造形工程の前、前記造形工程の後、または前記造形工程と同時に、植物細胞の組織化を促進する成分を含んだ組織化促進剤を、前記分化能を有する植物細胞に添加する組織化促進工程と、
前記造形工程の後に、前記三次元形状体が備える中空部及び溝部の少なくともいずれか一方に酸素及び培養液を供給しつつ前記三次元形状体を培養する培養工程と、を備える、植物体の生産方法。 - 前記分化能を有する植物細胞が、カルスから得られた脱分化細胞である、請求項1に記載の植物体の生産方法。
- 前記造形工程において、前記分化能を有する植物細胞を含むゲルビーズを、目的とする植物体の概形に等しい形状に配置する、請求項1または2に記載の植物体の生産方法。
- 前記三次元形状体が、前記分化能を有する植物細胞を含むゲルビーズと、前記分化能を有する植物細胞を含まないゲルビーズとから形成される、請求項3に記載の植物体の生産方法。
- 前記分化能を有する植物細胞が、複数種類の植物に由来するものである、請求項1~4のいずれか1項に記載の植物体の生産方法。
- 前記組織化促進工程において、前記三次元形状体の複数の箇所に、それぞれ異なる組織化促進剤を添加する、請求項1~5のいずれか1項に記載の植物体の生産方法。
- 前記造形工程及び前記組織化促進工程の後に、前記培養工程を備える、請求項1~6のいずれか1項に記載の植物体の生産方法。
- 前記培養工程において、前記三次元形状体を他の植物体と結合するように培養する、請求項1~7のいずれか1項に記載の植物体の生産方法。
- 前記培養工程において、前記三次元形状体の茎に相当する部分の長さ方向を重力方向と平行に保持する、請求項1~8のいずれか1項に記載の植物体の生産方法。
- 前記造形工程において、ディッピング方式、インクジェット方式またはディスペンサ方式によって、前記三次元形状体を形成する、請求項1~9のいずれか1項に記載の植物体の生産方法。
- 前記組織化促進工程において、ディッピング方式、インクジェット方式またはディスペンサ方式によって、前記組織化促進剤を前記三次元形状体または前記分化能を有する植物細胞に添加する、請求項1~10のいずれか1項に記載の植物体の生産方法。
- 階調制御可能な方式によって前記組織化促進剤を前記三次元形状体に添加する、請求項11に記載の植物体の生産方法。
- 前記三次元形状体は、葉及び茎の少なくともいずれか一方の配置が制御されたものである、請求項1~12のいずれか1項に記載の植物体の生産方法。
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