JP6885727B2 - 組成物 - Google Patents

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Description

本発明は、コレステロールレベルの管理に有用な、プロバイオティクスおよびプレバイオティクス組成物に関する。
プロバイオティクスは、宿主に健康上の利益を付与する細菌である。典型的に、腸内に天然に存在する細菌集団を補給するために、プロバイオティクス細菌株の培養物が個体によって消費され、または個体に投与される。数例を挙げると、がん、下痢症および過敏性腸症候群の発生の低減を含むいくつかの健康上の利益が、プロバイオティクスに関連するとされている。プロバイオティクスは、いくつかの生理的状態を管理する一助になる潜在可能性があり、摂取された脂質などのある特定の物質の吸収を低減するように作用する。また予備研究では、プロバイオティクスが、コレステロールの血清レベルおよび血圧の低下に有用であり、糖尿病をモジュレートし、体重を低減する一助になり得ることが示されている。
乳酸桿菌(Lactobacilli)は、乳製品に共通のプロバイオティクスであり、現在販売されているプロバイオティクスのおよそ75%を構成している。しかし、腸内で有用となるのに、乳酸桿菌用量の2%しか生存しないと推定されている。
プレバイオティクスは、乳酸桿菌またはビフィドバクテリウム属などの有益な常在性腸内微生物叢を選択的に増強することができる食事性成分であり、食品部門への適用がかなり増大することが見出されている。プレバイオティクスは、非消化性食品成分であり、大腸細菌によって選択的に代謝され、それによって健康の改善に寄与する。したがってプレバイオティクスを使用すると、常在性腸微生物の環境内の有益な変化を促進することができ、したがってプロバイオティクスの生存を助けることができる。プレバイオティクスは、腸内で選択的に代謝されないペクチン、セルロース、キシランなどのほとんどの食物繊維とは明確に異なる。プレバイオティクスとしての分類基準は、胃酸性度、哺乳動物の酵素による加水分解および胃腸管による吸収に抵抗しなければならないこと、腸管ミクロフローラによって発酵されること、ならびに健康および良好な状態と関連する腸管細菌の増殖および/または活性を選択的に刺激することである。
フラクトオリゴ糖(FOS、イヌリンおよびオリゴフルクトース)およびガラクトオリゴ糖(GOS)は、プレバイオティクス分類基準を満たすことがヒト介入研究で繰り返し実証されている。現在、乳酸桿菌のためのプレバイオティクスは、存在していない。
本発明の一目的は、個体のコレステロール吸収の改変に使用するのに適していると思われる、乳酸桿菌プロバイオティクスと、乳酸桿菌のための特定のプレバイオティクスの組合せを提供することである。またプロバイオティクス組成物が、心疾患、糖尿病または肥満などの他の生理的状態を処置するために使用できることは、やはり有益となるはずである。
本開示は、以下の[1]から[25]を含む。
[1]高い胆汁酸塩ヒドロラーゼ活性を有する乳酸桿菌の1つまたは複数の株、およびコレステロール改変剤を含む、組成物。
[2]高い胆汁酸塩ヒドロラーゼ活性を有する乳酸桿菌の1つまたは複数の株、およびコレステロール改変剤を含む、個体のコレステロール吸収の改変に使用するための、組成物。
[3]高い胆汁酸塩ヒドロラーゼ活性を有する乳酸桿菌の1つまたは複数の株、およびコレステロール改変剤を含む、高コレステロール、心疾患、糖尿病または肥満の処置に使用するための、組成物。
[4]上記1つまたは複数の株が、ラクトバチルス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)2828(ECGC13110403)、ラクトバチルス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)2830(ECGC13110402)、およびラクトバチルス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)2691(ECGC13110401)、およびラクトバチルス・アシドフィルス(Lactobacillus acidophilus)(ATCC43121)またはそれらの変異株から選択される少なくとも1つの株を含む、上記[1]から[3]のいずれかに記載の組成物。
[5]上記コレステロール改変剤が、オリゴ糖を含む、上記[1]から[4]のいずれかに記載の組成物。
[6]上記オリゴ糖が、β−ガラクトシダーゼ、α−ガラクトシダーゼ、α−およびβ−グルコシダーゼ、α−マンノシダーゼ、またはβ−キシロシダーゼの1つまたは複数から選択される、上記[5]に記載の組成物。
[7]上記細菌株が、逆酵素反応によって上記オリゴ糖を生成することができる、上記[5]または[6]に記載の組成物。
[8]上記コレステロール改変剤が、乳酸桿菌の上記1つまたは複数の株のための選択的増殖培地を含む、上記[1]から[7]のいずれかに記載の組成物。
[9]上記1つまたは複数の株が、10 cfu/g〜10 12 cfu/gの範囲の量で存在する、上記[1]から[8]のいずれかに記載の組成物。
[10]被包されている、上記[1]から[9]のいずれかに記載の組成物。
[11]食料品の形態である、上記[1]から[10]のいずれかに記載の組成物。
[12]栄養補助食品として使用するための、上記[1]から[11]のいずれかに記載の組成物。
[13]ビタミン、ミネラル、植物性化学物質、抗酸化剤、およびそれらの組合せから選択される1つまたは複数の活性成分をさらに含む、上記[1]から[12]のいずれかに記載の組成物。
[14]上記コレステロール改変剤がプレバイオティクスを含む場合、プレバイオティクスまたは二次プレバイオティクスをさらに含む、上記[1]から[13]のいずれかに記載の組成物。
[15]高い胆汁酸塩ヒドロラーゼ活性を有する乳酸桿菌の1つまたは複数の株を、生物学的に有効な量のコレステロール改変剤と混合するステップを含む、上記[1]から[14の組成物を生産する方法。
[16]有効量のラクトバチルス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)2828(ECGC13110403)、ラクトバチルス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)2830(ECGC13110402)、およびラクトバチルス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)2691(ECGC13110401)およびラクトバチルス・アシドフィルス(Lactobacillus acidophilus)ATCC43121またはそれらの変異株から選択される株の少なくとも1つ、ならびにコレステロール改変剤を投与することによって、高コレステロール血清レベル、心疾患、糖尿病または肥満を有する個体を処置する、方法。
[17]上記1つまたは複数の株が、ラクトバチルス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)2828(ECGC13110403)、ラクトバチルス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)2830(ECGC13110402)、およびラクトバチルス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)2691(ECGC13110401)およびラクトバチルス・アシドフィルス(Lactobacillus acidophilus)ATCC43121またはそれらの変異株から選択される2つまたはそれを超える株を含む、上記[15]に記載の方法。
[18]上記コレステロール改変剤が、オリゴ糖を含む、上記[16]または[17]のいずれかに記載の方法。
[19]上記オリゴ糖が、β−ガラクトシダーゼ、α−ガラクトシダーゼ、α−およびβ−グルコシダーゼ、α−マンノシダーゼ、またはβ−キシロシダーゼの1つまたは複数から選択される、上記[18]に記載の方法。
[20]上記細菌株が、逆酵素反応によって上記オリゴ糖を生成することができる、上記[18]または[19]に記載の方法。
[21]上記コレステロール改変剤が、乳酸桿菌の上記1つまたは複数の株のための選択的増殖培地を含む、上記[18]から[20]のいずれか一項に記載の方法。
[22]上記株が、10 cfu/g〜10 12 cfu/gの範囲の量で存在する、上記[18]から[21]のいずれか一項に記載の方法。
[23]組成物が被包されている、上記[18]から[22]のいずれか一項に記載の方法。
[24]ビタミン、ミネラル、植物性化学物質、抗酸化剤、およびそれらの組合せから選択される1つまたは複数の活性成分をさらに含む、上記[18]から[23]のいずれか一項に記載の方法。
[25]上記コレステロール改変剤がプレバイオティクスを含む場合、プレバイオティクスまたは二次プレバイオティクスをさらに含む、上記[18]から[24]のいずれか一項に記載の方法。
本発明の第1の態様によれば、高い胆汁酸塩ヒドロラーゼ活性を有する乳酸桿菌の1つまたは複数の株、およびコレステロール改変剤を含む組成物が提供される。
本発明のさらなる一態様によれば、高い胆汁酸塩ヒドロラーゼ活性を有する乳酸桿菌の1つまたは複数の株、およびコレステロール改変剤を含む、個体のコレステロール吸収の改変に使用するための組成物が提供される。
本発明のさらに別の態様によれば、高い胆汁酸塩ヒドロラーゼ活性を有する乳酸桿菌の1つまたは複数の株、およびコレステロール改変剤を含む、高コレステロール、心疾患、糖尿病または肥満の処置に使用するための組成物が提供される。
本発明のまたさらなる一態様によれば、高コレステロール、心疾患、糖尿病または肥満を処置するための薬品の製造における、高い胆汁酸塩ヒドロラーゼ活性を有する乳酸桿菌の1つまたは複数の株、およびコレステロール改変剤を含む組成物の使用が提供される。
任意の態様では、組成物の1つまたは複数の株は、ラクトバチルス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)2828(ECGC13110403)、ラクトバチルス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)2830(ECGC13110402)、およびラクトバチルス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)2691(ECGC13110401)、およびラクトバチルス・アシドフィルス(Lactobacillus acidophilus)ATCC43121またはそれらの変異株から選択される少なくとも1つの株を含むことができる。
本願の文脈における用語「変異株」は、開示されている株から直接導出されているが、1つまたは複数の遺伝子変異の導入によって(遺伝子操作または選択によって)、表現型的に異なっている任意の株を意味することを企図する。
コレステロール改変剤は、オリゴ糖を含む。好ましくは、オリゴ糖は、β−ガラクトシダーゼ、α−ガラクトシダーゼ、α−およびβ−グルコシダーゼ、α−マンノシダーゼ、またはβ−キシロシダーゼの1つまたは複数から選択される。より好ましくは、細菌株は、逆酵素反応によってオリゴ糖を生成することができる。
コレステロール改変剤は、乳酸桿菌の1つまたは複数の株のための選択的増殖培地を含むことができる。
組成物は、コレステロール改変剤がプレバイオティクスを含む場合、プレバイオティクスまたは二次プレバイオティクスをさらに含むことができる。
プロバイオティクス組成物は、好ましくは、小腸内のコレステロールの吸収プロファイルの変化を誘発するために、組成物中に有効量で存在する。好ましくは、培養物は、個体に10cfu/g〜1012cfu/gの範囲の量で投与される。より好ましくは、プロバイオティクス細菌株は、10cfu/g〜10cfu/gの範囲の量で存在する。ただし、個体の状態に応じて異なる投与量が投与され得ることを理解されよう。
株は、被包されていてもよい。多くの被包技術が、当業者には明らかであり、用いられる被包技術は、消化通過中にプロバイオティクス培養物に必要な安定性に合わせて調整される。被包は、プロバイオティクスに合わせて具体的に調整されたプレバイオティクスを含むことができる。
プロバイオティクス組成物は、コレステロール吸収を低下するのに最も適した時間に放出されるようにするための賦形剤または担体化合物をさらに含むことができる。典型的に、培養物は、小腸の腸管腸細胞に到達するまでに、相対的に無傷で生存していなければならない。
組成物は、いくつかの食料品型式、例えば飲むことのできる液体、スプレッド、および/または固体もしくは液体食料品と混合できる粉末であってもよい。
組成物は、1つまたは複数の活性成分、例えばビタミン、ミネラル、植物性化学物質、抗酸化剤、およびそれらの組合せと組み合わせることができる。
ビタミンには、脂溶性ビタミン、例えばビタミンA、ビタミンD、ビタミンE、およびビタミン、ならびにそれらの組合せが含まれ得る。一部の実施形態では、ビタミンには、水溶性ビタミン、例えばビタミンC(アスコルビン酸)、ビタミンB(チアミンまたはB1、リボフラビン(riboflavoin)またはB25ナイアシンまたはB3、ピリドキシンまたはB6、葉酸またはB9、シアノコバラミン(cyanocobalimin)またはB12、パントテン酸、ビオチン)、およびそれらの組合せが含まれ得る。
ミネラルには、ナトリウム、マグネシウム、クロム、ヨウ素、鉄、マンガン、カルシウム、銅、フッ化物、カリウム、亜リン酸、モリブデン、セレン、亜鉛、およびそれらの組合せが含まれ得るが、それらに限定されない。
抗酸化剤には、アスコルビン酸、クエン酸、ローズマリー油、ビタミンA、ビタミンE、ビタミンEリン酸塩、トコフェロール、ジ−アルファ−トコフェリルリン酸塩、トコトリエノール、アルファリポ酸、ジヒドロリポ酸、キサントフィル、ベータクリプトキサンチン、リコペン、ルテイン、ゼアキサンチン、アスタキサンチン、ベータ−カロテン、カロテン、混合カロテノイド、ポリフェノール、フラボノイド(fiavonoid)、およびそれらの組合せが含まれ得るが、それらに限定されない。
植物性化学物質には、カロテノイド(cartotenoid)、葉緑素、クロロフィリン、繊維、フラバノイド、アントシアニン(anthocyamn)、シアニジン(cyaniding)、デルフィニジン、マルビジン、ペラルゴニジン、ペオニジン、ペツニジン、フラバノール、カテキン、エピカテキン、エピガロカテキン、没食子酸エピガロカテキン(epigailocatechingallate)、テアフラビン、テラルビシン(thearubigin)、プロアントシアニジン(proanthocyanin)、フラボノール、ケルセチン、ケンフェロール、ミリセチン、イソラムネチン、フラバノンスヘスペレチン、ナリンゲニン、エリオジクチオール、タンゲレチン、フラボン、アピゲニン、ルテオリン、リグナン、フィトエストロゲン、レスベラトロール、イソフラボン、ダイゼイン、ゲニステイン、グリシテイン、ダイズイソフラボン、およびそれらの組合せが含まれ得るが、それらに限定されない。
組成物は、医薬品または薬品の代わりに(またはそれに加えて)、栄養補助食品、健康補助食品または機能性食品として使用することができる。さらに組成物は、既存の食料品、例えばヨーグルト、食品スプレッドに組み込むことができ、または食料品と容易にブレンドすることができ、もしくは液体飲料に製造することができる粉末として組み込むことができる。組成物はまた、栄養補助食品に配合することができる。
本発明のさらなる一態様によれば、本明細書で先に記載した組成物を生成する方法が提供され、該方法は、高い胆汁酸塩ヒドロラーゼ活性を有する乳酸桿菌の1つまたは複数の株を、生物学的に有効な量のコレステロール改変剤と混合するステップを含む。
当業者には、組成物を生成する方法に、さらなるステップを組み込むこともでき、組成物に前述の追加の構成成分を組み込み、または組成物を前述の追加の構成成分と混合すること組み込み得ることが明らかとなろう。
本発明のさらに別の態様によれば、有効量のラクトバチルス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)2828(ECGC13110403)、ラクトバチルス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)2830(ECGC13110402)、およびラクトバチルス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)2691(ECGC13110401)およびラクトバチルス・アシドフィルス(Lactobacillus acidophilus)ATCC43121またはそれらの変異株から選択される株の少なくとも1つ、ならびにコレステロール改変剤を投与することによって、高コレステロール血清レベル、心疾患、糖尿病または肥満を有する個体を処置する方法が提供される。
一方法は、ラクトバチルス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)2828(ECGC13110403)、ラクトバチルス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)2830(ECGC13110402)、およびラクトバチルス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)2691(ECGC13110401)およびラクトバチルス・アシドフィルス(Lactobacillus acidophilus)ATCC43121またはそれらの変異株から選択される2つまたはそれを超える株を投与するステップを含むことができる。
当業者には、本発明の初期の態様に関して列挙した組成物のいくつかの特徴が、当然のことながら、該方法と交換可能であり、個体に投与される組成物を形成し得ることが明らかとなろう。
本発明の詳細な説明
ここで、本発明の実施形態を、以下の図面の詳細な説明を単なる例として用いて説明する。
[図1A]実験1でL.プランタルム(plantarum)のための増殖培地として0.1%ラクトースを使用した、経時的な細菌計数のグラフである。[図1B]実験1でL.カゼイ(casei)のための増殖培地として0.1%ラクトースを使用した、経時的な細菌計数のグラフである[図1C]実験1でL.サリバリウス(salivarius)のための増殖培地として0.1%ラクトースを使用した、経時的な細菌計数のグラフである。[図1D]実験1でL.ファーメンタム(fermentum)のための増殖培地として0.1%ラクトースを使用した、経時的な細菌計数のグラフである。 [図1E]実験1でL.ラムノサス(rhanmosus)のための増殖培地として0.1%ラクトースを使用した、経時的な細菌計数のグラフである。[図1F]実験1でL.デルブリュッキ(delbrueckii)のための増殖培地として0.1%ラクトースを使用した、経時的な細菌計数のグラフである。 [図2A]実験1でL.プランタルム(plantarum)のための増殖培地として5%ラクトースを使用した、経時的な細菌計数のグラフである。[図2B]実験1でL.カゼイ(casei)のための増殖培地として5%ラクトースを使用した、経時的な細菌計数のグラフである。[図2C]実験1でL.サリバリウス(salivarius)のための増殖培地として5%ラクトースを使用した、経時的な細菌計数のグラフである。[図2D]実験1でL.デルブリュッキ(delbrueckii)のための増殖培地として5%ラクトースを使用した、経時的な細菌計数のグラフである。 [図2E]実験1でL.ラムノサス(rhanmosus)のための増殖培地として5%ラクトースを使用した、経時的な細菌計数のグラフである。[図2F]実験1でL.アシドフィルス(acidophilus)のための増殖培地として5%ラクトースを使用した、経時的な細菌計数のグラフである。[図2G]実験1でL.ヘルベティカス(helveticus)のための増殖培地として5%ラクトースを使用した、経時的な細菌計数のグラフである。 実験1のMRS培地中、0.4%のoxgallおよび100mg/Lのコレステロール濃度における、14時間にわたる異なる細菌株の結果を示すグラフである(OD600を毎時間測定した)。 実験1のMRS培地中、0.4%のoxgallおよび100mg/Lのコレステロール濃度における、試験前2日間にわたる異なる細菌株の結果を示すグラフである(OD600を毎時間測定した)。 実験2において96ウェルプレートで、MRSA中、好気条件下で増殖させた乳酸桿菌株の写真である。 実験2において96ウェルプレートで、MRSAだけ(対照)、MRSA+0.5%GDCA、MRSA+0.5%TDCA、MRSA+0.5%Oxgal、およびMRSA+2%Oxgal中、嫌気条件下で増殖させた乳酸桿菌株の写真である。 実験2において96ウェルプレートで、MRSAだけ(対照)、MRSA+0.5%GDCA、MRSA+0.5%TDCA、MRSA+0.5%Oxgal、およびMRSA+2%Oxgal中、好気条件下で増殖させた乳酸桿菌株の写真である。 ハイスループットスクリーニングに付した多様な乳酸桿菌株を示す円グラフである。 コレステロール低下能のさらなる分析のために識別された24種類の株の結果を示す棒グラフである。 光学密度に対してコレステロール同化を正規化した後の、図5に示されている24種類の株の結果を示す棒グラフである。 フリーズドライ実験中のいくつかの株の粉末計数を示す棒グラフである。 フリーズドライ実験中のいくつかの株のフリーズドライでの生存率を示す棒グラフである。 フリーズドライ状態にされたいくつかの株の胃内でのインビトロ生存率を示す棒グラフである。 株B4321、B2828およびB2830に関する200μMのGDCにおける胆汁酸塩ヒドロラーゼ活性を示す棒グラフである。 株B4321、B2828およびB2830に関する胆汁酸塩ヒドロラーゼ活性(Oxgal)を示す棒グラフである。
実験1
これらの実験の基礎は、新規なGOSを生成するために、微生物においてβ−ガラクトシダーゼを可逆的に使用することであった。β−ガラクトシダーゼは、普通はラクトースを消化するはずである。しかし、基質および温度に関して反応条件を変化させることによって、酵素は可逆的に作用し、ラクトース(GOS)のオリゴ糖版を産生する。
乳酸桿菌は、ビフィドバクテリウム属であるプロバイオティクスとしてより頻繁に使用されているが、乳酸桿菌に選択的なプレバイオティクスは存在していない。またこれらのプロバイオティクスは、β−ガラクトシダーゼ活性を備えているので、実験によって、これらのプロバイオティクスに特異的なGOSの生成を誘発した。GOSなどのプレバイオティクスの代謝作用は、種に特異的であり(バイ−イムノ(Bi-Immuno)細菌およびビフィド(Bifido)細菌によって証明される通り)、したがって乳酸桿菌のGOSは、乳酸桿菌の増殖、生存性、および健康上の利益を潜在的に増強する。
実施した実験は、以下の通りであった。
1.様々なプロバイオティクスの乳酸桿菌を集め、GOSを産生するそれらの能力について試験し、β−ガラクトシダーゼ活性を測定すること、
2.逆酵素手順を使用してプレバイオティクスGOSを産生すること、
3.新規な分子をスケールアップして、インビトロ試験を行うこと、
4.プロバイオティクスおよびシンバイオティクスを試験する一連の「腸モデル」実験において、プレバイオティクスが存在しない状態および存在する状態で、乳酸桿菌の生存および増殖を比較すること、
5.乳酸桿菌のための被包材料としてGOSを使用できる可能性を評価すること、ならびに
6.被包材料の送達特性を試験すること。
実験の第1段階中に最初に調査した細菌株を、以下の表1に示す。
Figure 0006885727
細菌増殖曲線の決定を、PBS900μL中、培養物の希釈系列100μLを使用して、0時間、3時間、5時間、8時間および24時間間隔で培養物をサンプリングすることによって行った。各系列20μLを、陰性対照と共に瓶上に広げ、増殖を評価した。
株のいくつかの細菌計数を、0.1%ラクトースを増殖培地として使用することによって評価した。図1A〜1Fは、L.プランタルム(plantarum)、L.カゼイ(casei)、L.サリバリウス(salivarius)、L.ファーメンタム(fermentum)、L.ラムノサス(rhanmosus)、およびL.デルブリュッキ(delbrueckii)のための増殖培地として0.1%ラクトースを使用した経時的な細菌計数が、すべておよそ6.5log10CFU/mlから、約13時間目には9.5log10CFU/mlをわずかに超える定常増殖曲線をもたらし、増殖が、25時間目までには増大しなくなった通り漸減したことを示している。
株のいくつかの細菌計数を、5%ラクトースを増殖培地として使用することによって評価した。図2A〜2Gは、L.プランタルム(plantarum)、L.カゼイ(casei)、L.サリバリウス(salivarius)、L.デルブリュッキ(delbrueckii)、L.ラムノサス(rhanmosus)、L.アシドフィルス(acidophilus)およびL.ヘルベティカス(helveticus)のための増殖培地として5%ラクトースを使用した、経時的な細菌計数を示している。ここでもすべてが、およそ6.5log10CFU/mlから、約13時間目には9.5log10CFU/mlをわずかに超える定常増殖曲線をもたらし、次に、増殖は、25時間目までには増大しなくなった通り平坦になった。
次に、コレステロールを細菌株の培養培地に含め、各株をインキュベーション後にコレステロールの量について試験した。
使用したコレステロールアッセイは、次式によるものである。
コレステロール%×乾燥重量(g)−1=(B−T/B×100)/W
式中、B=接種されなかった対照中のコレステロール含量(mg/l−1)、T=培養培地中のコレステロール(mg/l−1)およびW=細胞(12時間のインキュベーション後の乾燥重量(g))。
培養物のペレット重量を、上清(supernanent)とは独立に測定し、消費されたブロス(蒸発した残留物)も測定した。コレステロールアッセイを数回実施して、三連で実施した。
図3は、MRS培地中、0.4%のoxgallおよび100mg/Lのコレステロール濃度における、14時間にわたる異なる細菌株の増殖を示しており(OD600を毎時間測定した)、いくつかの細胞株が、この培地において増殖するのにはるかにより有効であったことを示している。L.プランタルム(Planatarum)は、最良の増殖プロファイルを示し、その後にL.デルブリュッキ(delbrueckii)、L.カゼイ(casei)およびL.ファーメンタム(fermentum)が続いた。
図3は、MRS培地中、0.4%のoxgallおよび100mg/Lのコレステロール濃度における、12時間にわたる異なる細菌株の増殖を示しており(OD600を毎時間測定した)、いくつかの細胞株が、この培地において増殖するのにはるかにより有効であったことを示している。L.プランタルム(planatarum)は、最良の増殖プロファイルを示し、その後にL.デルブリュッキ(delbrueckii)、L.カゼイ(casei)およびL.ファーメンタム(fermentum)が続いた。
図4は、MRS培地中、0.4%のoxgallおよび100mg/Lのコレステロール濃度における、試験前2日間にわたる異なる細菌株の結果を示すグラフである(OD600を毎時間測定した)。L.ファーメンタム(fermentum)は、最良の増殖プロファイルを示し、その後にL.ラムノサス(rhanmosus)、L.ヘルベティカス(halveticus)、L.ヘルベティカス(halveticus)およびL.サリバリウス(salivarius)が続いた。
次に、コレステロール活性をさらに測定するために、直接的なプレートアッセイ試験を株に対して実施した。静止細胞の胆汁酸塩ヒドロラーゼ(BSH)活性を測定して、コンジュゲートした胆汁酸の加水分解からのアミノ酸の放出を評価した。胆汁酸塩の脱コンジュゲーション(遊離コール酸の放出に基づく)を測定し、最後に、脱コンジュゲーションした胆汁とコレステロールの共沈殿を評価した。以下の表2は、直接的なプレートアッセイの結果を示す。
Figure 0006885727
L.カゼイ(casei)、L.デルブリュッキ(delbrueckii)およびL.アシドフィルス(acidophilus)は、すべて信頼できるBSH活性を有していたことが分かった。しかし、L.ファーメンタム(fermentum)およびL.プランタルム(plantarum)も増殖に成功しており(3回の実施のうち2回)、L.プランタルム(plantarum)は、図3および4に示されている通り、0.4%のoxgallおよび100mg/Lのコレステロールで増殖するのに特に有効であることが既に証明された。
コレステロールを含有する培地で増殖できる株およびBSH活性を有する株の結果を比較することによって、L.カゼイ(casei)、L.デルブリュッキ(delbrueckii)、L.ファーメンタム(fermentum)およびL.プランタルム(plantarum)は、特定のプレバイオティクスGOSを生成し、識別するのに適した候補であると思われた。
特定の株によって産生されたGOSプレバイオティクスは、GOSを生成するだけでなく代謝する、最適化された代謝作用を有する(逆酵素手順から産生される通り)。したがってGOSは、プロバイオティクスにとって非常に選択的な環境を作り出すことができるシンバイオティクスに、プロバイオティクスと共に組み込むことができる。プロバイオティクスは、健康上の特定の利益を有することができるので、健康上の特定の利益に合わせて調整されるシンバイオティクス配合物を産生することができる。
実験2
実験1と並列して、乳酸桿菌の718の株の初期ハイスループットスクリーニング(HTS)試験を実施して、異なるタイプの胆汁酸塩に対する耐性を評価した。次に、胆汁酸塩ヒドロラーゼ活性を確立するために、さらなる実験を実施して、286の耐性株における胆汁の沈殿を調査した。
試験した株は、乳酸桿菌アシドフィルス(acidophilus)、乳酸桿菌ヘルベティカス(helveticus)、乳酸桿菌アリメンタリス(alimentarius)、乳酸桿菌ブレビス(brevis)、乳酸桿菌ブチネリ(buchneri)、乳酸桿菌カゼイ(casei)(亜種:ラムノサス(rhamnosus)、カゼイ(casei)、トレランス(tolerans)、シュードプランタルム(pseudoplantarum)、パラカゼイ(paracasei)、アラクトスス(alactotsus)およびラムノサス(rhamnosus)を含む)、乳酸桿菌クリスパタス(crispatus)、乳酸桿菌クルバトゥス(curvatus)(亜種:クルバトゥス(curvatus)を含む)、乳酸桿菌デルブリュッキ(delbrueckii)(亜種:ブルガリクス(bulgaricus)およびラクチス(lactis)を含む)、乳酸桿菌ファーメンタム(fermentum)、乳酸桿菌パニス(panis)、乳酸桿菌パラカゼイ(paracasei)(亜種:パラカゼイ(paracasei)を含む)、乳酸桿菌ペントスス(pentosus)、乳酸桿菌プランタルム(planatarum)、乳酸桿菌ラムノサス(rhamnosus)、乳酸桿菌サケイ(sakei)、乳酸桿菌サリバリウス(salivarius)(亜種:サリバリウス(salivarius)を含む)であった。
株を、MRS中37℃で終夜増殖させた。これらの培養物の中からグリセロール原液を生成し、−80℃で保存した。マイクロタイタープレートに接種し、すべての株を、マスタプレートに四連で入れた。
これらの実験で使用した胆汁酸塩は、Sigma(登録商標)から購入し、以下の通りであった。グリコデオキシコール酸ナトリウム(GDCA)(Sigma製品番号G3258、CAS:16409−34−0)、タウロデオキシコール酸ナトリウム水和物(TDCA)(Sigma製品番号T0875、CAS:207737−97−1)およびウシ胆汁(Oxgal)(Sigma製品番号B3883、CAS:8008−63−7)。実験で使用した胆汁酸塩の濃度は、以下の通りであった。0.5%GDCA、0.5%TDCA、0.5%oxgal、および2.0%oxgal。グリコデオキシコール酸を使用するインビトロデータは、ヒトのインビボ環境をより厳密に模倣するので、生成物の有効性の可能性を反映する可能性がより高いと思われる。
培養物を、96ウェルプレートで、MRSA中37℃で終夜増殖させた。次に、96ウェルプレート中MRSA寒天150μlを含有し、添加した胆汁酸塩を含むウェルに、培養物5μlをスポッティングし、好気/嫌気条件下で48時間インキュベートした。株の適切な増殖を確実にするために、pH条件をモニタした。
結果は、ある特定の株が、嫌気条件下および好気条件下の両方で、MRSAプレート上で実際に増殖したことを示した。以下の表3は、初期HTSから得られた陽性結果のすべてを示しており、特定の株は、嫌気条件下で、様々な胆汁酸塩上で増殖することができる(OD600の測定によって評価した)。
Figure 0006885727
図5は、多くの株が、MRSA中、好気条件下で十分に増殖したことを示している。図7に示されている通り、GDCAは、好気条件下であらゆる場合において株の増殖を阻害するが、図6に示されている通り、嫌気条件下では、いくつかの株がGDCA中で実際に増殖する。2.0%Oxgalは、好気条件および嫌気条件の両方においていくつかの株の増殖を阻害することが見出された。図6および7のプレートは、以下の株(ラクトバチルス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)NCIMB8026、ラクトバチルス・ファーメンタム(Lactobacillus fermentum)ATCC11976、ラクトバチルス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)NCIMB8826、ラクトバチルス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)AbBio、ラクトバチルス・ヘルベティカス(Lactobacillus helveticus)LBK−16H、ラクトバチルス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)WCF51(1836)、ラクトバチルス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)NCIMB30187、ラクトバチルス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)299(1837)について良好な増殖を示している。これらの結果を、実験1の(ならびに図3および4に示されている)100mg/Lのコレステロールを含有する培地で増殖させた比較用の株の増殖データと比較すると、ラクトバチルス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)およびラクトバチルス・ファーメンタム(Lactobacillus fermentum)が、コレステロールが存在する状態で優れた増殖を示し、胆汁酸塩に抵抗性を示し、胆汁酸塩ヒドロラーゼ活性を有するように見える。
以下の表4は、増殖の結果の簡単な概要を示す。
Figure 0006885727
合計41の株は、3種類すべての胆汁酸塩が0.5%で存在する状態で増殖することが見出された。
次に、耐性株における胆汁酸塩ヒドロラーゼ活性を、5μlを「PCRチューブプレート」(薄肉微量遠心管中寒天150μl)にスポッティングすることによって評価した。これらのチューブプレートを、96ウェルプレートと同じ条件下で増殖させた(MRS+0.5%TDCA、MRS+0.5%GDCA、MRS+0.5%oxgal、MRS+2.0%oxgal、胆汁なしのMRS(対照))。
プレートを、37℃で嫌気的にインキュベートし、胆汁の沈殿(胆汁酸塩ヒドロラーゼ活性に関する)を、以下の採点系を使用して、24時間および48時間後に評価した。BSH活性については、+または−として増殖を記録する。次に、0.5%oxgalを含有するMRSプレート上へのその後の画線培養のために、陽性を選択した。
72時間後、陽性株を識別した。陽性培養物だけが、GDCAおよびTDCAにおける沈殿を示した。
図8は、初期ハイスループットスクリーニングアッセイに使用した株の範囲を示す。
初期(earler)BSH活性に基づいて株数を24まで絞った後、0.4%を補充したMRS培地におけるコレステロール同化のさらなるスクリーニングを実施した。
以下の表3は、選択された株およびそれらのコレステロール低下の平均(%)の結果を示す。
Figure 0006885727
図9は、表の結果を棒グラフで示しており、最初の8つの株の間には、株の残りと比較して大きな差異があることを示している。
以下の表4および図10は、光学密度に対して正規化されたコレステロール同化を示している。
Figure 0006885727
次に、コレステロール低下(%)(以下の表5)および腸内の株の潜在的な増殖有効性の文脈においてODに正規化したコレステロール低下(以下の表6)に基づいて、株の結果を比較して評価を行った。
Figure 0006885727
Figure 0006885727
株2828(ECGC13110403)、2830(ECGC13110402)、2691(ECGC13110401)およびATCC43121は、先の表5および6の両方の分析において、高コレステロールの低下および良好なBSH活性を示している。実施したインビトロ試験は、これらの株が、互いに組み合わせられようと、または個々であろうと、個体のコレステロール吸収の改変、または心疾患、糖尿病もしくは肥満の処置に使用するのに適し得ることを強力に示唆している。これらの株を、増殖に特異的なプレバイオティクスと併用すると、増殖を促進し、支持することができる。
次に、いくつかの株が、フリーズドライに上手く対処する方法、および選択された3種類の株の特定の胆汁酸塩に対するその後のBSH活性を調査するための実験を実施した。
第1のステップは、いくつかの株を発酵させることであった。株は、選択されたすべての担体および抗凍結剤を酸性にすることが見出された。配合物は、生成中に冷間加工されるべきであると評価された。担体の選択およびそれらの最終濃度は、以下の通りであった。82%MD+14%ソルビトール(MD=マルトデキストリン)(残りの培地、および細菌)および82%MD+14%スクロース。すべての株は、酵母エキスおよび大豆ペプトンのミックスを用いて、選択された窒素供給源上で十分に増殖した。動物成分は、この検証については提案されなかったが、大豆ペプトンは、不溶性沈殿物を生じる場合があり、これは将来的に下流処理を妨害するおそれがあると評価された。生成に使用される培地は、100%YEに基づくものと評価され、他の窒素供給源を含まないことが理想的であった。以下の表7は、選択された3種類の株(B4321、B2828およびB2830)に関する、培地中の発酵の結果および生存率の概要を示す。以下のデータでは、B4321は、過去に言及したB2691と同じ株に関する。
Figure 0006885727
図11は、いくつかの株の粉末計数を示し、図12は、同じ株のフリーズドライでの生存率を示す。
図13は、胃内の株の生存率を示す。株B4321(B2691)は、明らかに試験条件下でより良好に生存している。約109CFU/mLの定常細胞を、ペプシンおよびリパーゼを含むNa/K/HCl溶液中、pH2.45で60分間インキュベートした。
図14および15は、選択された株に対する胆汁酸塩ヒドロラーゼ活性を示している。B2828およびB2830は、3時間でほぼ100%の基質に変換された。したがって、これらの株を区別することは不可能であると思われた。
前述の実施形態は、特許請求の範囲によって与えられる保護範囲を制限するものではなく、本発明を実施することができる方法を例示する。
生物学的材料の寄託
生物学的材料の寄託は、英国National Collection of Type Cultures(NCTC)の英国特許出願の目的で行われた。NCTCは、ブダペスト条約の下で認知されている国際寄託当局(IDA)である。
英国のNCTCに寄託された株のそれぞれには、接頭辞ECGCを有する番号が割り当てられている。ECGCは、European Culture General Collectionを表す。
B2691(ECGC13110401)は、元々、NCTCに寄託されたとき、L.ロイテリ(reteri)として表現型的に分類されていたことに留意されたい。その後、B2691は、遺伝子分析に基づいてL.プランタルム(plantarum)であることが見出され、この株は、本願ではB2691と呼ばれており、後の実験ではB4321と改名された。
Figure 0006885727
Figure 0006885727
Figure 0006885727

Claims (11)

  1. 高い胆汁酸塩ヒドロラーゼ活性を有する乳酸桿菌の株およびオリゴ糖を含む組成物であって、前記株が、ラクトバチルス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)2830(ECGC13110402)を含む、組成物。
  2. 高い胆汁酸塩ヒドロラーゼ活性を有する乳酸桿菌の株およびオリゴ糖を含む、個体のコレステロール吸収の改変に使用するための組成物であって、前記株が、ラクトバチルス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)2830(ECGC13110402)を含む、組成物。
  3. 高い胆汁酸塩ヒドロラーゼ活性を有する乳酸桿菌の株およびオリゴ糖を含む、高コレステロールの処置に使用するための組成物であって、前記株が、ラクトバチルス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)2830(ECGC13110402)を含む、組成物。
  4. 前記株が、10cfu/g〜1012cfu/gの範囲の量で存在する、請求項1からのいずれかに記載の組成物。
  5. 被包されている、請求項1からのいずれかに記載の組成物。
  6. 食料品の形態である、請求項1からのいずれかに記載の組成物。
  7. 栄養補助食品として使用するための、請求項1からのいずれかに記載の組成物。
  8. ビタミン、ミネラル、植物性化学物質、抗酸化剤、およびそれらの組合せから選択される1つまたは複数の活性成分をさらに含む、請求項1からのいずれかに記載の組成物。
  9. レバイオティクスをさらに含み、またはプレバイオティクスを含む場合、二次プレバイオティクスをさらに含む、請求項1からのいずれかに記載の組成物。
  10. 高い胆汁酸塩ヒドロラーゼ活性を有する乳酸桿菌の株を、生物学的に有効な量のオリゴ糖と混合するステップを含む、請求項1からの組成物を生産する方法であって、前記株が、ラクトバチルス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)2830(ECGC13110402)を含む、方法。
  11. 前記組成物が、ラクトバチルス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)2828(ECGC13110403)、およびラクトバチルス・プランタルム(Lactobacillus plantarum)2691(ECGC13110401)から選択される1つまたはそれを超える株をさらに含む、請求項10に記載の方法。

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