JP6816332B1 - アデノウイルス結膜炎に対する医薬組成物 - Google Patents
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Abstract
アデノウイルス結膜炎に対して有効な医薬組成物を提供すること。抗アデノウイルスポリクローナル抗体を含有するアデノウイルス結膜炎に対する医薬組成物。前記医薬組成物が点眼剤である。前記医薬組成物がアデノウイルス結膜炎の治療用である。前記医薬組成物がアデノウイルス結膜炎の感染していない側の目の予防用である。
Description
本発明は、アデノウイルス結膜炎に対する医薬組成物に関する。
アデノウイルス結膜炎、すなわち、流行性角結膜炎に対しては、予防及び治療のいずれについても、有効な薬剤はないとされている。
例えば、非特許文献１には、流行性角結膜炎に関して、
「治療・予防
アデノウイルス全般について有効な薬剤はない。対症療法的に抗炎症剤の点眼を行い、さらに角膜に炎症が及び混濁がみられるときは、ステロイド剤を点眼する。細菌の混合感染の可能性に対しては、抗菌剤の点眼を行う。眼疾患患者の分泌物の取扱いと処分に注意し、手洗い、消毒をきちんと行う。点眼瓶類がウイルスで汚染されないように注意をし、汚染された病院内の器具類はオートクレーブで滅菌するか、あるいはアルコール、ヨード剤などで消毒する。予防の基本は接触感染予防の徹底である。タオルや点眼液など目に接触するものは個人用とする。」
と説明されている。
例えば、非特許文献１には、流行性角結膜炎に関して、
「治療・予防
アデノウイルス全般について有効な薬剤はない。対症療法的に抗炎症剤の点眼を行い、さらに角膜に炎症が及び混濁がみられるときは、ステロイド剤を点眼する。細菌の混合感染の可能性に対しては、抗菌剤の点眼を行う。眼疾患患者の分泌物の取扱いと処分に注意し、手洗い、消毒をきちんと行う。点眼瓶類がウイルスで汚染されないように注意をし、汚染された病院内の器具類はオートクレーブで滅菌するか、あるいはアルコール、ヨード剤などで消毒する。予防の基本は接触感染予防の徹底である。タオルや点眼液など目に接触するものは個人用とする。」
と説明されている。
国立感染症研究所感染症疫学センター、"流行性角結膜炎とは"、［online］、2014年4月1日、国立感染症研究所、［2020年4月8日検索］、インターネット〈URL：https://www.niid.go.jp/niid/ja/diseases/a/yellow-fever/392-encyclopedia/528-ekc.html〉
国立感染症研究所感染症疫学センター、"病原微生物検出情報"、Vol.38 No.7(No.449)、［online］、2017年7月、国立感染症研究所、［2020年4月8日検索］、インターネット〈https://www.niid.go.jp/niid/images/idsc/iasr/38/449.pdf〉
本発明の目的は、アデノウイルス結膜炎に対して非常に有効な医薬組成物を提供することにある。
本発明の医薬組成物は、抗アデノウイルスポリクローナル抗体を含有することを特徴とするアデノウイルス結膜炎の治療又は予防用である。
前記医薬組成物が点眼剤であるで、内服薬ほどには、厳密な規制に制約されることなく製品化できて、実用性が高い。
前記医薬組成物がアデノウイルス結膜炎の治療用であることで、アデノウイルス結膜炎の治療に寄与できる。
前記医薬組成物がアデノウイルス結膜炎の感染していない側の目の予防用であることで、アデノウイルス結膜炎の予防に寄与できる。
本発明によれば、アデノウイルス結膜炎に対して非常に有効な医薬組成物を提供することができる。
以下、本発明の実施形態について図面を参照して詳細に説明する。
本発明ではポリクローナル抗体の点眼によって感染症であるアデノウイルス結膜炎の予防及び治療に成功した。
本発明ではポリクローナル抗体の点眼によって感染症であるアデノウイルス結膜炎の予防及び治療に成功した。
具体的にはアデノウイルス抗体をマウスに腹内投与し、レポーター遺伝子(ルシフェラーゼ)を発現するアデノウイルスの眼への感染に対するルシフェラーゼ活性を測定することによりアデノウイルス結膜炎感染に対する予防及び治療効果を確認できた。
［マウスでの予防実験］
［材料及び方法］
［アデノウイルス及びベクター］
緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）（Ａｄ５−ＧＦＰ）、及びルシフェラーゼ（Ａｄ５−Ｌｕｃｉ）などのレポーター遺伝子を発現するＥ１、Ｅ３欠失アデノウイルス５型ベクターを構築した。これらのアデノウイルスベクターをＨＥＫ２９３細胞中で増殖させ、そして塩化セシウム平衡密度勾配遠心分離により精製した。１０ｍＭトリス（ｐＨ７．５）、１ｍＭ MgCl2、及び１０％グリセロールを含む溶液で、Float-A-Lyzer G2透析装置（ＭＷＣＯ：２０ｋＤ、Spectrum Laboratories Inc.）を用いて透析した。使用するまで−８０℃で保存した。各調製物中のビリオンの濃度は、次式
１ ＯＤ ２６０ ＝ １×１０12ウイルス粒子（ＶＰ）／ｍＬ （式１）
を用いて２６０ｎｍでの光学密度（ＯＤ ２６０）から計算した。
［材料及び方法］
［アデノウイルス及びベクター］
緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）（Ａｄ５−ＧＦＰ）、及びルシフェラーゼ（Ａｄ５−Ｌｕｃｉ）などのレポーター遺伝子を発現するＥ１、Ｅ３欠失アデノウイルス５型ベクターを構築した。これらのアデノウイルスベクターをＨＥＫ２９３細胞中で増殖させ、そして塩化セシウム平衡密度勾配遠心分離により精製した。１０ｍＭトリス（ｐＨ７．５）、１ｍＭ MgCl2、及び１０％グリセロールを含む溶液で、Float-A-Lyzer G2透析装置（ＭＷＣＯ：２０ｋＤ、Spectrum Laboratories Inc.）を用いて透析した。使用するまで−８０℃で保存した。各調製物中のビリオンの濃度は、次式
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を用いて２６０ｎｍでの光学密度（ＯＤ ２６０）から計算した。
［アデノウイルスに対する免疫血清の調整］
８週齢の雌ＩＣＲマウス（日本エスエルシー株式会社）を用いて抗アデノウイルス免疫血清を調製した。０及び１４日目にマウスあたり１０10 ＶＰのＡｄ５、Ａｄ７、Ａｄ８、Ａｄ１９及びＡｄ３７で筋肉内免疫し、最初の免疫の３か月後に採血した。
［免疫血清の点眼による抗体投与及び感染］
８週齢の雌ＢＡＬＢ／ｃマウス（１群あたり５匹のマウス、日本エスエルシー株式会社）に５μＬのＡｄ５特異的免疫血清、１０倍又は１００倍希釈した血清を３０分間隔で２回点眼した（抗体投与）。抗体処理の３０分後、５μＬの１０10 ＶＰのＡｄ５−Ｌｕｃｉをマウスに点眼した（感染）。通常血清を陰性対照として使用した。
８週齢の雌ＢＡＬＢ／ｃマウス（１群あたり５匹のマウス、日本エスエルシー株式会社）に５μＬのＡｄ５特異的免疫血清、１０倍又は１００倍希釈した血清を３０分間隔で２回点眼した（抗体投与）。抗体処理の３０分後、５μＬの１０10 ＶＰのＡｄ５−Ｌｕｃｉをマウスに点眼した（感染）。通常血清を陰性対照として使用した。
感染の７２時間後、結膜を含むマウスの眼を単離し、ＰＢＳで洗浄して血液を除去し、３００μＬの１×Cell Culture Lysis試薬（プロメガ株式会社）を含む１．５ｍＬのチューブ（Eppendorf AG）に浸した。組織を、１．５ｍＬの微量遠心管（Scientific Specialties, Inc.）用のマイクロチューブ乳棒でホモジナイズし、８，０００ｇで１０分間遠心分離した後、上清をルシフェラーゼ検定に使用した。４μＬの細胞溶解物を２０μＬのルシフェラーゼ検定基質と混合し、ルミノメータでルシフェラーゼ活性を測定した。
［中和実験］
Ａｄ５、Ａｄ７、Ａｄ８、Ａｄ１９及びＡｄ３７に対する免疫血清を５６℃で３０分間インキュベートした。連続２倍希釈液を対応するウイルスと共に３７℃で１時間それぞれインキュベートした。通常血清を対照として使用した。ウイルス−血清混合物を９６ウェルプレート中で３７℃、５％・ＣＯ2で７〜１０日間、Ａ５４７細胞（卵巣黒色腫細胞株）とインキュベートした。中和抗体価は、細胞変性効果（ＣＰＥ）をもたらす最高希釈として決定した。
Ａｄ５、Ａｄ７、Ａｄ８、Ａｄ１９及びＡｄ３７に対する免疫血清を５６℃で３０分間インキュベートした。連続２倍希釈液を対応するウイルスと共に３７℃で１時間それぞれインキュベートした。通常血清を対照として使用した。ウイルス−血清混合物を９６ウェルプレート中で３７℃、５％・ＣＯ2で７〜１０日間、Ａ５４７細胞（卵巣黒色腫細胞株）とインキュベートした。中和抗体価は、細胞変性効果（ＣＰＥ）をもたらす最高希釈として決定した。
［結果］
１．図１にＡｄ５についての結果を示した。横軸の「通常血清」は対照群である免疫されていない血清の群であり、「免疫血清」は上述の免疫血清の群であり、「１／１０血清」はその免疫血清の１０倍希釈免疫血清の群であり、「１／１００血清」は１００倍希釈血清の群である。縦軸は、通常血清を「１」とする相対ルシフェラーゼ活性である。この結果を見ると、免疫血清及び１０倍希釈免疫血清は、対照群と比較して、アデノウイルス感染の８６．６％及び６２．１％の阻害を示した（それぞれP = 0.0003及び0.0116）。しかし、１００倍希釈免疫血清群（１９．９％阻害、P = 0.448）ではそうではなかった。
１．図１にＡｄ５についての結果を示した。横軸の「通常血清」は対照群である免疫されていない血清の群であり、「免疫血清」は上述の免疫血清の群であり、「１／１０血清」はその免疫血清の１０倍希釈免疫血清の群であり、「１／１００血清」は１００倍希釈血清の群である。縦軸は、通常血清を「１」とする相対ルシフェラーゼ活性である。この結果を見ると、免疫血清及び１０倍希釈免疫血清は、対照群と比較して、アデノウイルス感染の８６．６％及び６２．１％の阻害を示した（それぞれP = 0.0003及び0.0116）。しかし、１００倍希釈免疫血清群（１９．９％阻害、P = 0.448）ではそうではなかった。
２．中和抗体：結膜炎を引き起こす他の種類のＡｄ５、Ａｄ７、Ａｄ８、Ａｄ１９及びＡｄ３７のようなアデノウイルスに対して、免疫血清がＡｄウイルス感染を阻害する同様の能力を有するかどうかを調べた。中和検定を実施した。
図２に結果を示した。横軸の「CTL」は、免疫をしていない通常血清の対照群（コントロール）であり、「Ad5」〜「Ad37」は、各アデノウイルスの群である。縦軸は、中和抗体価を対数目盛り（log2）で示した。図２に示されるように、各アデノウイルスの免疫化はＡｄ５(２13.4)と同様の中和抗体価を誘導した。この結果は、Ａｄ7(２12.8)、Ａｄ８(２12.5)、Ａｄ１９(２11.6)及びＡｄ３７(２13.5)の免疫血清が、対応するアデノウイルス感染に対して同様の能力を有していることを示している。
以上の結果から、本発明の、抗アデノウイルスポリクローナル抗体を含有する医薬組成物はアデノウイルス結膜炎の予防に対して強い効果があることが示された。
［ウサギでの治療実験］
［感染及び治療］
［感染］ ８週齢、１．３−１．６ｋｇ、メスのニュージーランド白ウサギを使用した。合計１１匹のウサギをソムノペンティル（共立製薬株式会社）で麻酔し、０日目に無菌２５ゲージ針（テルモ株式会社）で１２本のクロスハッチングストロークによる目の表面の擦過の後、４時間間隔で２回、１０10ｖｇ（vector genome）のＡｄ５、２０μＬを両眼に接種した。
［感染及び治療］
［感染］ ８週齢、１．３−１．６ｋｇ、メスのニュージーランド白ウサギを使用した。合計１１匹のウサギをソムノペンティル（共立製薬株式会社）で麻酔し、０日目に無菌２５ゲージ針（テルモ株式会社）で１２本のクロスハッチングストロークによる目の表面の擦過の後、４時間間隔で２回、１０10ｖｇ（vector genome）のＡｄ５、２０μＬを両眼に接種した。
［治療：抗体血清群］ その後、６匹のウサギを１日目から７日目までＡｄ５特異的マウス免疫血清（マウスにＡｄ５型ベクター１０10ｖｇを３回、筋肉注射した後、約１０日後に採血して得た血清、力価：１：１，０００）を、５０μＬ／目、３回／日、点眼した。
［対照：通常血清群］ ５匹のウサギを対照として、２００倍希釈した通常マウス血清を同様に点眼した。
［対照：通常血清群］ ５匹のウサギを対照として、２００倍希釈した通常マウス血清を同様に点眼した。
［採取］ 経過日数０、１、２、３、５、７、９、１２、１４、及び１６日に、血清治療する日はその血清治療の前に、綿棒で眼をぬぐう作業（涙液採取）を行った。その各綿棒によって抽出した細胞を、抗生物質と共に（抗生物質を入れないと、ウイルス力価を定量する時、細胞が雑菌に汚染されるから）、０．５ｍＬのＤＭＥＭ培地を含む１．５ｍＬチューブに入れた。チューブをボルテックスにて細粒拡散させ、プラークアッセイに使用するまで−８０℃で眼綿棒培養物を凍結・保存した。
［プラークアッセイ］
Ａｄ５力価は、ＴＣＩＤ５０の標準的なプラークアッセイ（http://www.virapur.com/protocols/TCID50%20Protocol.pdf）によりＡ５４９細胞（ヒト肺がん細胞株）で決定した。上記で凍結・保存した眼綿棒培養物を、２％ＦＢＳ（ウシ胎児血清）及び抗生物質を加えたＤＭＥＭ培地を用いて連続的に希釈し、９６ウェルプレートに入れ、次いで、３×１０4 Ａ５４９細胞／ウェルを加え、プレートを３７℃、５％・ＣＯ2で１０日間インキュベートした。そして、ウイルス力価を計算した。
Ａｄ５力価は、ＴＣＩＤ５０の標準的なプラークアッセイ（http://www.virapur.com/protocols/TCID50%20Protocol.pdf）によりＡ５４９細胞（ヒト肺がん細胞株）で決定した。上記で凍結・保存した眼綿棒培養物を、２％ＦＢＳ（ウシ胎児血清）及び抗生物質を加えたＤＭＥＭ培地を用いて連続的に希釈し、９６ウェルプレートに入れ、次いで、３×１０4 Ａ５４９細胞／ウェルを加え、プレートを３７℃、５％・ＣＯ2で１０日間インキュベートした。そして、ウイルス力価を計算した。
［結果］
図３に結果を示した。横軸は経過日数であり、縦軸は各群における平均のウイルス力価を対数目盛りで示した。対数目盛りであるため、小さい力価で誤差が大きく見える。２日目に高いウイルス性力価が検出された。その後、抗体血清群では緩やかな減少が認められたが、通常血清群では認められなかった。５日目から１６日目までのＰ値は０．０５以下となり、通常血清群と抗体血清群との間に有意差が認められた（＊印参照）。１４日と１６日には、抗体血清群の検体の半分ではウイルスを検出しなかったが、通常血清群ではすべての検体でウイルスを検出した。
以上の結果から、本発明の、抗アデノウイルスポリクローナル抗体を含有する医薬組成物はアデノウイルス結膜炎の治療に対して効果があることが示された。
図３に結果を示した。横軸は経過日数であり、縦軸は各群における平均のウイルス力価を対数目盛りで示した。対数目盛りであるため、小さい力価で誤差が大きく見える。２日目に高いウイルス性力価が検出された。その後、抗体血清群では緩やかな減少が認められたが、通常血清群では認められなかった。５日目から１６日目までのＰ値は０．０５以下となり、通常血清群と抗体血清群との間に有意差が認められた（＊印参照）。１４日と１６日には、抗体血清群の検体の半分ではウイルスを検出しなかったが、通常血清群ではすべての検体でウイルスを検出した。
以上の結果から、本発明の、抗アデノウイルスポリクローナル抗体を含有する医薬組成物はアデノウイルス結膜炎の治療に対して効果があることが示された。
ヒトに他の動物由来の抗体を注入すると、多くの場合アナフィラキシー等の症状が出現するが、体表面に点眼することは、このような副反応が出現しにくい。何よりも強力なウイルス中和抗体が直接患部に作用し、ただちに作用する点に高い有益性がある。
ヒトのアデノウイルス流行性角結膜炎は、約８割以上が３，４，８，１９／６４，３７，５３，５４，５６型の感染者であり、８種類の抗体を混合することで、ほとんどのＡｄ結膜炎の治療が可能である。ヒトのモノクローナル抗体を作成する技術は公知であるが、モノクローナル抗体の場合は本発明と比べて約１０００倍ぐらいのコストがかかり点眼液としては実用化できなかった。図３に示すように我々の作成した抗体の点眼によるＡｄの中和はベストである。安価に作成できるＡｄウイルスの抗体は結膜炎の治療かつ予防に高い実用的な効果を有する。
アデノウイルスには５１以上の血清型及び１００以上の遺伝子型があり多くの種類がある。呼吸型感染症はＡｄ３，７型である。プール熱と言われる咽頭結膜炎は、主として３型を中心として４，５，７，８，１９，３７型で発症する。夏期に起こす流行性角結膜炎も３,８，１９，３７，５４型に多くがある。１９，３７型は性行為により感染し、尿道炎や子宮頸管炎を起こす。
アデノウイルス流行性角結膜炎の８割程が３，４，８，１９／６４，３７，５３，５４，５６型であり我々の発見した動物由来抗体を８種類混合すれば８５％以上のウイルス性結膜炎の悪化を防ぐ重要な発見である（図４、非特許文献２）。アデノウイルス由来結膜炎は結膜炎で最も多く小児等ではインフルエンザに次ぐ大規模な発現であり、その点では治療薬及び予防薬としての必要性が大きい。
国内では上記アデノウイルス３，４，８，１９／６４，３７，５３，５４，５６で８５％以上のヒトのアデノウイルスの感染予防ができる。
本明細書で引用したすべての刊行物、特許及び特許出願は、そのまま参考として、ここにとり入れるものとする。
Claims (4)
- 抗アデノウイルスポリクローナル抗体を含有することを特徴とするアデノウイルス結膜炎の治療又は予防用医薬組成物。
- 前記医薬組成物が点眼剤であることを特徴とする請求項１記載の医薬組成物。
- 前記医薬組成物がアデノウイルス結膜炎の治療用であることを特徴とする請求項１又は２記載の医薬組成物。
- 前記医薬組成物がアデノウイルス結膜炎の感染していない側の目の予防用であることを特徴とする請求項１乃至３いずれかに記載の医薬組成物。
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| PCT/JP2020/016447 WO2021210070A1 (ja) | 2020-04-14 | 2020-04-14 | アデノウイルス結膜炎に対する医薬組成物 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JP6816332B1 true JP6816332B1 (ja) | 2021-01-20 |
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| JP2020538878A Active JP6816332B1 (ja) | 2020-04-14 | 2020-04-14 | アデノウイルス結膜炎に対する医薬組成物 |
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|---|---|---|---|---|
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-
2020
- 2020-04-14 JP JP2020538878A patent/JP6816332B1/ja active Active
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| Publication number | Publication date |
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| JPWO2021210070A1 (ja) | 2021-10-21 |
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