JP6788173B2 - 新規な抗菌ペプチド、その変異体及び使用 - Google Patents
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Description
a. D1−/R
b. C2−/K
c. W3−
d. S4−/R
e. A5−
f. M6W
g. I7W
h. A11W
i. Y13W/R
j. N14L/K
k. Q15R/L
l. V16K/W
(式中、「−」はアミノ酸の欠失を示す。)
からなる群から選択される1個以上の置換又は欠失を含む。
a. N1K/R/W
b. R2W
c. I3L
d. V4I/L
e. Q5W/K/R
f. Q6R/L/W
g. R7W/R
h. T8R/W/F/K
i. S9F/W/R/L
j. S10K/L
からなる群から選択される1個以上の置換又は欠失を含む。
a. Y1I/R/W/K
b. D2I/L/W/R
d. G4R/W
e. F5W/R
f. G6R/W/L
h. F8R
i. K9R
j. K10R
k. M11L/R/W/K
からなる群から選択される1個以上の置換又は欠失を含む。
セイヨウガンコウラン(Empetrum nigrum L.)の新鮮な若葉を70%エタノール(v/v)で1分間、及び次亜塩素酸ナトリウム(3.5%v/v)で5分間、表面滅菌し、ゲノムDNAの単離に用いたの(Pirttilaら,2001)。
セイヨウガンコウラン(Empetrum nigrum)から単離した植物DNAを滅菌水に溶解して、0.1μg/μlの濃度にした。次に、DNAをCHEF-DRII(Bio-Rad)システムで分取パルスフィールドゲル電気泳動に供した。電気泳動条件(パルス間隔及び時間)は、6V/cmの電圧及び120°固定角で、0.15×トリス/ホウ酸/EDTA(TBE)緩衝液を用いて、それぞれN/S 60秒及びE/W 60秒で6時間、N/S 90秒及びE/W 90秒で6時間;N/S 99秒及びE/W 99秒で6時間であった。電気泳動の間、温度を10℃に維持した。電気泳動後、ゲルの両側からストリップを切り取り、臭化エチジウムで染色してDNAを可視化した。その後、高分子量のDNAを、染色されていない残存するゲルの部分から切り取り、0.15×TBEを含む透析バッグ中で100Vで1時間電気溶出した。従来の方法(Koskimakiら,2010、Tejesviら,2010)に従って、真菌及び細菌に特異的なプライマーによる増幅を行い、微生物DNAの分離を確認した。クローニングのために、約25〜30kbのDNAを末端修復して5’−リン酸化DNAを生成し、平滑末端脱リン酸化pCC1FOS(商標)ベクターに連結した。MaxPlax Lambda Packaging Extracts(Epicenter)を用いて、連結混合物をラムダファージにパッケージングした。パッケージされたライブラリーをエシェリヒア・コリEPI-300に形質導入し、クロラムフェニコールを補充したLB寒天プレート上で形質転換体を選択した。スクリーニングするまで、パッケージされたフォスミッドライブラリーを、プール当たり約103個のクローンを含むクローンプールとしてクライオチューブ中で保存した。
EPI-300(商標)−T1(登録商標)ファージT1耐性エシェリヒア・コリ培養物を、適切な抗生物質を補充したLuria-Bertani(LB)寒天又はLBブロス+10mM MgSO4上で37℃で増殖させた。以下の抗生物質濃度をエシェリヒア・コリ株に用いた。クロラムフェニコール12.5μg/ml及びアンピシリン100μg/ml。セイヨウガンコウラン(Empetrum nigrum)のエンドファイトからメタゲノムライブラリーを構築するために、またこのような抗細菌活性を与える遺伝子をサブクローニングするために、2つの複製起点:単一コピー起点(ori2)及び誘導性高コピー起点(oriV)を有するプラスミドpCC1FOS(商標)(Epicentre,マディソン,米国)を用いた。pET11-cベクターを用いて、宿主株エシェリヒア・コリBL21(DE3)金中、抗細菌活性を担う遺伝子を発現させた。
寒天重層アッセイから選択した抗細菌性フォスミドクローンをpFosS1と命名した。プラスミドMidiprep Kit(Qiagen)を用いてメタゲノムフォスミドを単離し、Sau3AI(0.1U/μlのDNA,37℃,15分間)で部分消化し、DNAのサイズ選択及びサブクローニングのために、電気泳動に付した。1.5kbより大きな断片をゲルから抽出し、末端修復し、平滑末端脱リン酸化pCC1FOS(商標)に連結した。連結混合物をエシェリヒア・コリに形質転換し、組換えクローンを寒天重層アッセイでスクリーニングし、クロラムフェニコールを補充したLBプレート上に広げた。BamHIで消化した後、ゲル電気泳動でスタフィロコッカス・アウレウスの明確な阻止域を示すサブクローンを分析し、約1.8kbの最小挿入物を有するサブクローンを選択した。このサブクローンをpFosS1Aと命名し、製造者の指示(Abi 3730 DNA Analyzer,Abi Prism BigDye Terminator Cycle Sequencing Kit,Applied Biosystems,ウォリントン,英国)に従ってプライマーpCC1フォアードプライマー及びpCC1リバースプライマーを用いて配列決定した。サブクローンpFosS1A内に含まれるオープンリーディングフレームをEn-MAP1と命名し、GenbankのBLASTプログラム並びにSignalP及びPfamで分析した。
パルスフィールドゲル電気泳動後、アガロースゲルのウェルに残存したセイヨウガンコウラン(Empetrum nigrum)ゲノムDNAから、エンドファイトDNAに対応するバンドを分離した。バンド中のエンドファイトDNAの存在は、真菌及び細菌に特異的なプライマーを用いたPCR産物の増幅によって確認された。20μgのDNAから約8,000個のメタゲノムクローンを得た。寒天重層アッセイ法でメタゲノムライブラリーをスクリーニングすることで、スタフィロコッカス・アウレウスの阻止域を示す1個の抗細菌クローンを同定した。しかし、宿主エシェリヒア・コリの増殖阻害は観察されなかった。制限断片分析によって、クローンは30kb以上の挿入DNAを保持していることが示された。抗細菌性クローンから二次ライブラリーを作製して、抗細菌性サブクローンを選択し、抗細菌活性を担う個々の遺伝子を特徴付けた。抗細菌性サブクローンの制限断片分析によって、依然として寒天重層アッセイでスタフィロコッカス・アウレウスの増殖阻害を示したサブクローンpFosS1Aにおいて、最小1.8kbの挿入物が同定された(図1)。
サブクローンpFosS1A及びコントロール(空ベクター)を担持するエシェリヒア・コリ細胞を、クロラムフェニコールを含有するLBブロス中、37℃で一晩増殖させた。これらの培養物をコピー数増幅手順のための接種材料として用いた。これらの培養物の1容量を10倍量の新鮮なLB+クロラムフェニコールに添加し、1/100のCopyControl Induction Solution(Epicenter)を培地に加えてクローンを高コピー数に誘導した。培養物を37℃で20時間激しく振盪した後、4℃で、3040×gで20分間遠心分離することにより、上清を細菌細胞から分離した。上清をHeto PowerDry LL1500凍結乾燥機(ThermoElectron,ムカジョフ,チェコ共和国)で凍結乾燥させた。凍結乾燥したブロスを秤量し、50mgを蒸留水2mlに溶解させた。材料を超音波処理器で20分間保持し、10分間遠心分離し、濾過(GHP Bulk Acrodisc 13,Pall Life Sciences)し、セミ分取高速液体クロマトグラフィー(HPLC)で分画した。次いで、96ウェルプレート標準法で試験菌株としてスタフィロコッカス・アウレウスを用いて、この画分の抗細菌活性を試験した。Micromass LCT Time-of-flight質量分析法(TOFMS)(Micromass,オルトリナム,英国)と組み合わせたAlliance 2690 HPLC(Waters,ミルフォード,マサチューセッツ,米国)で、サブクローンpFosS1Aの上清及びコントロールを分析した。
サブクローンpFosS1Aの挿入部は、両方向で完全に配列決定され、約1650bpの特有のオープンリーディングフレームを含んでいた。推定のリボソーム結合部位及びプロモーター配列は、開始コドンから−35/−10上流領域に存在する。核酸配列をGenbankデータベースに存在する配列に対してBLAST分析に供したが、既知の配列との類似性は同定されなかった。これは、単離された遺伝子が新規な構造のタンパク質をコードしていることを示している。従って、このタンパク質を、セイヨウガンコウラン(Empetrum nigrum)メタゲノム抗菌タンパク質1(En-MAP1)と命名した。推定アミノ酸配列の解析から、En-MAP1が549アミノ酸のタンパク質(図2)をコードしており、シュードザイマ・フベイエンシス(Pseudozyma hubeiensis)由来の推定タンパク質と最も高い32%の類似性を有し、既知の機能を有するタンパク質と類似性を共有していないことが明らかになった。SignalP分析によって、En-MAP1のアミノ酸配列が、分泌又は転座のための推定上のアミノ末端シグナル配列を有さないことが示された。推定されたアミノ酸配列を、Pfamタンパク質ファミリーデータベースを用いて保存モチーフについて分析したところ、77〜107,126〜153及び392〜420AAの位置(図2)で3個のペンタトリコペプチドリピートモチーフが同定された。En-MAP1は、TMpred及びPSORTで分析したところ、膜貫通領域を有さない可溶性タンパク質であると推測された。残基147〜176はまた、PSORTで分析したところ、タンパク質−タンパク質相互作用に関与するタンパク質に典型的な推測コイル−コイル領域、及び残基490で開始する可能性のあるロイシンジッパーを有していた。
遺伝子En-MAP1を、Nde1及びSal1制限部位を有するプライマーpFosS1F(CATATGAGACTAGTAGCTCATCCTGTTCCTGATGC;配列番号2)及びpFosS1R(GTCGACTTATTAACGAGATGACGTCCTCTGCTGTACG;配列番号3)を用いて増幅した。増幅産物をpET23(b)ベクターにクローニングし、XL1コンピテント細胞に形質転換し、遺伝子同一性を配列決定により確認した。発現研究を、エシェリヒア・コリ株BL21 pLysS及びBL21 pRAREを宿主として用いて行った。タンパク質を封入体として両方の菌株で発現し、単離した(van Lithら,2007)。封入体を5Mグアニジン塩酸塩/0.2Mリン酸ナトリウム緩衝液(pH7.0)に懸濁した。AKTA FPLC中で4時間かけて3Mグアニジン/0.2Mリン酸ナトリウム(pH7.0)から0.2Mリン酸ナトリウム(pH7.0)に線状緩衝液交換を用いて、HisTrapカラム(GE Healthcare Life Sciences)でタンパク質をリフォールディングし、最後に50mMEDTA/20mMリン酸ナトリウム緩衝液(pH7.0)で溶出した。En-MAP1の核酸配列は、受託番号KC466596でGenBankに寄託されている。
10μgのタンパク質をLBプレート上のスタフィロコッカス・アウレウス培養物上にピペットで入れることによって、リフォールディングされたタンパク質及びリフォールディングされていないタンパク質の両方のスタフィロコッカス・アウレウスに対する抗細菌活性を試験した。0.01%酢酸中、トリプシンで消化したリフォールディングされたタンパク質及びリフォールディングされていないタンパク質の活性を、30及び60μg/mlの濃度で試験した。
タンパク質En-MAP1は、in silicoトリプシン消化され(http://au.expasy.org)、12個のペプチド(Met1〜Met12)が3つの異なるアルゴリズム(サポートベクターマシン(SVM)分類、ランダムフォレスト分類及び判別分析分類)によって、並びにAPD2(http://aps.unmc.edu/AP/prediction/prediction_main.php)によって、抗菌性であることが推測された(http://www.bicnirrh.res.in/antimicrobial)。合成ペプチドは、GenScript(米国)から購入した。
Andersenら(2010)の記載に従って、放射拡散アッセイ(RDA)を行った。簡潔には、1%アガロース、及び5.0×105CFU/mlのスタフィロコッカス・アウレウス、エシェリヒア・コリ、クレブシエラ・ニューモニエ又はシュードモナス・エルギノーサの細胞を補充した1/10ミューラー・ヒントン・ブロス(MHB)30mlを、1つのウェルのオムニトレイ(omnitray,Nunc)に移し、TSP96ウェルプレートを重ねた。100μgの各合成ペプチドを試験した。また、1/3ポテトデキストロースアガロースを用いて、フザリウム・オキシスポルム(Fusarium oxysporum)及びバーティシリウム・ダーリエ(Verticillium dahliae)に対してペプチドを試験した。ペプチドの相乗効果を試験するために、各ペプチドを等モル濃度で混合した。Mix1(Met1〜12)、Mix2(Met3,4及び5)、Mix3(Met8,9及び10)、Mix4(Met11,12)及びMix5(8,9,10,11,12)を調製し、エシェリヒア・コリ及びスタフィロコッカス・アウレウスに対して試験した。ゲンタマイシン及びバンコマイシンを細菌に対するポジティブコントロールとして含め、アンホテリシンBを真菌に対するコントロールとして用いた。
液体培地中の小さな抗菌分子の可能な生成について、pFosS1Aを発現するサブクローンをHPLC−MSで分析し、コントロール(空ベクター)と比較した。抗細菌クローン及びコントロールのピークのクロマトグラム及びスペクトルは同一であった。培地を分画し、スタフィロコッカス・アウレウスに対する抗細菌活性を試験したが、活性は検出されなかった。これによって、スタフィロコッカス・アウレウスに対する抗細菌活性が、En-MAP1活性によって生成された代謝産物に由来しないことが示唆された。
PBS緩衝液(pH7.4)中、2mg/mlの濃度にペプチドを希釈し、+4℃、25℃(RT)、37℃及び45℃等の異なる温度でインキュベートすることで、熱安定性を評価した。また、−20℃で保存したペプチドをコントロールとして使用した。各々の時間間隔の後、100μl(2mg/ml)のペプチドを採取し、放射拡散アッセイのために−20℃で保存して、抗細菌活性を測定した(図8)。ペプチドはまた、それらをpH4〜9の異なるpH値で希釈することで試験した。異なる濃度(50,100及び200mM)のNaClをMH培地に添加することで抗菌活性に対するNaClの効果を試験し、4個のATCC細菌株に対する最小阻止濃度を試験した。
被覆(鎖105又は鎖201)及び非被覆シリコンカテーテルを0.5cm片に切断し、リン酸緩衝生理食塩水(PBS)中、5×105CFU/mlの細菌(エシェリヒア・コリ及びスタフィロコッカス・アウレウス)培養物1mlで懸濁した24ウェルプレートに入れた。サンプルを37℃で6時間、150rpmでインキュベートした。インキュベーション後、新鮮なPBSを用いて各カテーテル片を1mlのPBSで2回すすいだ。カテーテル片をエッペンドルフチューブに移し、500μlのPBSを加え、水浴中で2分間超音波処理し、5秒間ボルテックスし、連続希釈し、CFUを測定した。
エシェリヒア・コリ及びスタフィロコッカス・アウレウスを等比級数増殖期(mid-exponential phase)まで増殖させ、600nmでの吸光度を測定することでミューラー・ヒントン・ブロス(MHB)培地で0.1の細胞密度に希釈し、10μg/mlの鎖ペプチドと共に37℃で1時間、インキュベートした。インキュベーション後、等容量の0.1Mリン酸緩衝液中の2%グルタルアルデヒドを添加し、2分間、5000rpmで遠心分離することで細胞をペレット化し、細胞ペレットを0.1Mリン酸塩中の1%グルタルアルデヒドで固定した。細胞を四酸化オスミウムで後固定し、アセトン又はアルコールの濃度を漸増させて脱水し、プラスチック樹脂(Epon)に包埋した。超薄切片(70〜80nm)を、酢酸ウラニル及びクエン酸鉛で後染色し、TEMで観察した。Veleta及びQuemesaCCDカメラを備えたTecnai G2 Spirit 120kV TEMを用いて顕微鏡撮影をした。
Andersen A.S., Sandvang D., Schnorr K.M., Kruse T., Neve S., Joergensen B., Karlsmark T., and Krogfelt K.A. (2010) A novel approach to the antimicrobial activity of maggot debridement therapy. J Antimicrob Chemother 65, 1646-1654.
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Van Lith, M., Karala, A.R., Bown, D., Gatehouse, J.A., Ruddock, L.W., Saunders, P.T., and Benham, A.M. (2007) A developmentally regulated chaperone complex for the endoplasmic reticulum of male haploid germ cells. Mol. Biol. Cell 18, 2795-2804.
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Claims (8)
- 配列番号55、58、59及び61〜65のいずれかを含む、抗菌ペプチド。
- 真菌又は酵母に対する活性を有する、請求項1に記載のペプチド。
- 細菌に対する活性を有する、請求項1に記載のペプチド。
- 治療における使用、特に抗菌剤としての使用のための、請求項1〜3のいずれかに記載のペプチド。
- 請求項1〜3のいずれかに記載のペプチドで微生物を処理する工程を含む、微生物の殺滅又は増殖阻害のインビトロ方法。
- 前記ペプチドが、細菌若しくは真菌に対して、又は細菌及び真菌の両方に対して活性を示す、請求項5に記載の方法。
- 医薬、飼料添加物、防腐剤又は界面活性剤としての請求項1〜3のいずれかに記載のペプチドのインビトロでの使用。
- 請求項1〜3のいずれかに記載のペプチドを含む、医薬、飼料添加物、防腐剤又は界面活性剤。
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