JP6430445B2 - バクロフェンおよびアカンプロセートに基づく神経疾患の治療 - Google Patents
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Description
に使用してもよい。バクロフェンのその他のプロドラッグは以下の特許出願に見受けられる:国際公開第2010/102071号、米国特許出願公開第2009/0197958号明細書、国際公開第2009/096985号、国際公開第2009/061934号、国際公開第2008/086492号、米国特許出願公開第2009/0216037号明細書、国際公開第2005/066122号、米国特許出願公開第2011/0021571号明細書、国際公開第2003/077902号、国際公開第2010/120370号。
−バクロフェンおよびアカンプロセート、
−バクロフェンおよびアカンプロセートおよびジエチルカルバマジン、
−バクロフェンおよびアカンプロセートおよびシナカルセト、
−バクロフェンおよびアカンプロセートおよびスルフィソキサゾール、
−バクロフェンおよびアカンプロセートおよびトルセミド、
−バクロフェンおよびアカンプロセートおよびイフェンプロジル、
−バクロフェンおよびアカンプロセートおよびメキシレチン、
−バクロフェンおよびアカンプロセートおよびエプレレノン、
−バクロフェンおよびアカンプロセートおよびレボシメンダン、
−バクロフェンおよびアカンプロセートおよびテルビナフィン、または
−バクロフェンおよびアカンプロセートおよびレフルノミド。
経口使用のための製剤は、本発明の組成物を医薬的に許容しうる非毒性の賦形剤との混合物中に含む錠剤を含有する。これらの賦形剤は、例えば、不活性希釈剤または充填剤(例えば、ショ糖、微結晶性セルロース、バレイショデンプンを包むデンプン、炭酸カルシウム、塩化ナトリウム、リン酸カルシウム、硫酸カルシウム、またはリン酸ナトリウム);顆粒剤および崩壊剤(例えば、微結晶性セルロースを含むセルロース誘導体、バレイショデンプンを包含するデンプン、クロスカルメロースナトリウム、アルギネイト、またはアルギン酸);結合剤(例えば、アカシア、アルギン酸、アルギン酸ナトリウム、ゼラチン、デンプン、α化デンプン、微結晶性セルロース、カルボキシメチルセルロースナトリウム、メチルセルロース、ヒドロキシプロピルメチルセルロース、エチルセルロース、ポリビニルピロリドン、又はポリエチレングリコール);並びに潤滑剤、滑剤、および粘着防止剤(例えば、ステアリン酸、シリカ、またはタルク)であろう。他の医薬的に許容しうる賦形剤は、着色剤、香料、可塑剤、湿潤剤、緩衝剤などであってよい。
水の添加により水性懸濁液の調製に適している散剤、分散性散剤、または顆粒剤は、経口投与に便利な投与剤形である。懸濁液としての製剤は、分散剤または湿潤剤、懸濁剤、および1種以上の保存料との混合物で活性成分を提供する。適切な懸濁剤は、例えば、カルボキシメチルセルロースナトリウム、メチルセルロース、アルギン酸ナトリウムなどである。
本医薬組成物はまた、注射、点滴又は注入(implantation)(静脈内、筋肉内、皮下など)により、従来の非毒性の薬学的に許容される担体およびアジュバントを含む、投与剤形、製剤で、または適切な送達装置もしくはインプラントを介して非経口投与してもよい。このような組成物の製剤設計および調製法は、医薬品製剤の当業者には周知である。
好ましさ、便利さには欠けるが、他の投与経路、およびそれによる他の製剤は考慮され得る。これに関して、直腸内適用では、組成物に適する投与剤形は、坐剤(乳剤または懸濁剤型)、および直腸用ゼラチンカプセル剤(液剤または懸濁剤)を含む。典型的な坐剤製剤では、活性薬剤は、適切な薬学的に許容される坐剤基剤(カカオバター、エステル化脂肪酸、グリセリンゼラチンなど)およびポリエチレングリコールのような種々の水溶性または分散性基剤と合わせられる。種々の添加剤、増強剤、または界面活性剤を組み込んでもよい。
組合せの薬剤は、同一もしくは異なる医薬品製剤のいずれかで同時に、または連続して投与するとよいであろう。連続投与であるならば、第2の(または追加の)活性成分を投与する際の遅延時間は、活性成分の組合せの有効な作用の恩恵を失わないようにすべきである。本説明の組合せにとって最小限の要件は、この組合せが、活性成分の組合せの有効作用の恩恵を持つ組合せ使用を目的とすることである。組合せの使用目的は、本発明の組合せの使用を助けるための施設、設備、適応および/または他の手段により推察することができる。
−アカンプロセート、1日当たり1mgを上回り1000mg未満、好ましくは1日当たり400mg未満、より好ましくは1日当たり200mg未満、さらにより好ましくは1日当たり50mg未満、このような用量は特に経口投与に適している。
−ブロモクリプチン、経口、1日当たり約0.01mg〜10mg、
−ジエチルカルバマジン、経口、1日当たり約0.6mg〜600mg、
−カベルゴリン、経口、1日当たり約1mg〜10μg、
−シナカルセト、経口、1日当たり約0.3mg〜36mg、
−シンナリジン、経口、1日当たり約0.6mg〜23mg、
−ジフィリン、経口、1日当たり約9mg〜320mg、
−エプレレノン、経口、1日当たり約0.25mg〜10mg、
−イフェンプロジル、経口、1日当たり約0.4mg〜6mg、
−レフルノミド、経口、1日当たり約0.1mg〜10mg、
−レボシメンダン、経口、1日当たり約0.04mg〜0.8mg、
−メキシレチン、経口、1日当たり約6mg〜120mg、
−モキシフロキサシン、経口、1日当たり約4mg〜40mg、
−フェンホルミン、経口、1日当たり約0.25mg〜15mg、
−キナクリン、経口、1日当たり約1mg〜30mg、
−スルフィソキサゾール、経口、1日当たり約20mg〜800mg、
−スロデキシド、経口、1日当たり約0.05mg〜40mg、
−テルビナフィン、経口、1日当たり約2.5mg〜25mg、
−トルセミド、経口、1日当たり約0.05mg〜4mg、
−トリメタジジン、経口、1日当たり約0.4mg〜6mg、
−ゾニサミド、経口、1日当たり約0.5mg〜50mg。
実験と同じく、動物の維持と管理は、I.A.S.P.の研究・倫理問題委員会のガイドライン(1983)に準じて行った。
この一連の実験では、候補組合せを、ヒトAβ1−42の毒性作用を阻止または縮小するその能力について試験した。Aβ1−42は、ADに苦しむヒト患者の生体組織検査に見られる凝集体を構成する完全長ペプチドである。効果は、ADの異なる生理学的特徴を示す体外モデルにおいて、その組合せの活性をさらに例証するために、種々の細胞型で測定する。また、生体内研究は、i)動物の認知行動、およびii)ADの分子特徴(アポトーシス誘発、酸化ストレス誘発、炎症経路誘発)において、組合せの作用を検証することで、ADについての防御作用を確認するために、マウスモデルで行われる。
1-1. ヒトHBME細胞に対するヒトAβ1−42ペプチドの毒性に対する作用
ヒトの脳微小血管内皮細胞培養は、Aβ1−42毒性の候補化合物による保護研究に用いられた。
ルにつき20,000細胞の密度で播種した。マトリゲルの補助により、血管内皮脳細胞は、毛細管網の形態形成プロセスを自然に開始した(参考文献33)。
Aβ1−42ペプチド(Bachem社、ref:H1368 batch 1010533)は、一時的に、20μM(母液)で既定培地において再構成され、そして暗所で3日間、+37℃で、ゆっくりと振動させた。対照培地は、同じ条件で調製された。
VEGF−Aの血管新生促進アイソフォームとして知られるVEGF−165は、この研究において、参照化合物としてすべての実験に用いられた。VEGF−165は、血管新生に関わる、最も豊富なVEGFアイソフォームうちの1つである。VEGFは参考テスト化合物として、10nMで用いられた(図1)。
次の条件で評価した
−陰性対照群:単独培地+0.1%DMSO
−中毒性:アミロイド‐β1−42(2.5μM)18時間
−陽性対照群:VEGF−165(10nM)(1参照化合物/培養)18時間のインキュベーション時間のためのAβ1−42(2.5μM)添加前の1時間
−テスト化合物:18時間のインキュベーション時間のためのAβ1−42(2.5μM)添加前の1時間の1つまたは複数のテスト化合物
<毛細管網の定量化>
ウェル毎に、InCell AnalyzerTM 1000(GE Healthcare社)を用いて、光透過にて、4倍のレンズで2枚の写真が撮影された。すべての画像は同じ条件で撮影された。血管新生網分析は、開発ソフトウェア(GE Healthcare社)を用いて行われ、毛細管網の全長が測定された。
データを、アミロイド障害を表すために、対照条件(中毒無し、アミロイド無し=100%)の割合で表した。すべての値は、3培養の平均+/−標準誤差(s.e.mean)として表す(n=条件に付き6)。統計分析は、様々な条件(一元配置分散分析、可能なら続いてDunnettテスト、Statview software version 5.0)でなされた。
バクロフェン−アカンプロセートの組合せは、図2に示すように、HBMECモデルにおけるヒトAβ1−42ペプチドの毒性に対する有意な防御作用を提供する(24%のAβ1−42ペプチド障害の低減が観察される)。この結果は、ヒトアミロイドペプチド(Aβ1−422.5μM)による中毒がこの薬剤組合せによって有意に抑えられるが、一方で、組合せの場合で使用したのと同じ濃度で単独のこれらの薬剤のでは上記の実験条件において中毒に対する有意な効果は有していない、ということを明らかに示す。
逆に、(本明細書では比較のためのだけに示す)バクロフェンとテルビナフィンとの組合せは、Aβ1−42に対する比較的弱い防御を提供する(15%のAβ1−42ペプチド障害の低減が観察される)(図3)。
<一次皮質ニューロンの培養>
ラットの皮質ニューロンは、Singer、他(参考文献47)の記述に添って培養を行なった。短時間で、妊娠後15日の妊娠期間の雌のラット(ウィスターラット)を、頚椎脱臼により安楽死させ、そしてその胎児は子宮から取り出した。皮質は取り出され、そして、2%のペニシリン10.000U/mlおよびストレプトマイシン10mg/mlと、1%のウシ血清アルブミン(BSA)とを含む、氷温のLeibovitz(L15)の培地に配置した。皮質はトリプシンにより、20分間、37℃で解離した(0.05%)。反応は、DNase1グレードIIおよび10%のウシ胎児血清(FCS)を含むダルベッコ改変イーグル培地(DMEM)の添加により停止した。その後細胞は、10mlピペットを用いて3連続継代で、機械的に解離し、そして+4℃で、10分間、515xgで遠心分離をした。上澄みは廃棄され、細胞のペレットは、B27(2%)、L−グルタミン(0.2mM)、2%PS溶液、および10ng/mlのBDNFで補完したNeurobasalからなる既定培地に再懸濁した。生存細胞は、トリパンブルー排除法を用いて、Neubauerサイトメータで数えられた。細胞は、96ウェルプレート(ウェルは、ポリ‐L‐リジン(10μg/ml)であらかじめコーティングした)を用いて、30,000cells/wellの密度で播種し、そして加湿空気(95%)/CO2(5%)環境において、+37℃で培養した。
Aβ1−42ペプチドは、一時的に、40μM(母液)で既定培地において再構成され、そして暗所で3日間、+37℃で、ゆっくりと振動させた。対照培地は、同じ条件で調製された。
ニューロン培養の10日後に、試験化合物が、培地に溶解され(+0.1%DMSO)、そして、Aβ1−42適用前に、ニューロンともに1時間プレインキュベートした(培養ウェルにつき100μlの最終量で)。さらなる試験化合物希釈を避けるために、試験化合物インキュベーション後1時間で、薬剤で10μM希釈の最終濃縮物に、100μlのAβ1−42ペプチドを加えた。皮質ニューロンは24時間で中毒になった。3つの異なる培養は、条件毎に行われ、1つの条件は6ウェルで行われた。
−対照群プレート:12ウェル/条件
・陰性対照群:単独培地+0.1%DMSO
・中毒性:アミロイド‐β1−42(10μM)24時間
・参照化合物:エストラジオール(150nM)1時間
−薬剤プレート:6ウェル/条件
・陰性対照群:単独培地+0.1%DMSO
・中毒性:アミロイド‐β1−42(10μM)24時間
・試験化合物:1つまたは複数の試験化合物、1時間、続いてアミロイド‐β1−42(10μM)24時間
<乳酸脱水素酵素(LDH)活性分析>
中毒後24時間で、上澄みを取り出し、そして細胞毒性検出キット(LDH、Roche Applied Science社、ref:11644793001、batch:11800300)で分析した。細胞毒性の定量化のための比色分析は、上澄み中へ死細胞のサイトゾルから放出された乳酸脱水素酵素(LDH)活性の測定に基づく。
データを、アミロイド障害を表すために、対照条件(中毒無し、アミロイド無し=100%)の割合で表した。すべての値は、3培養の平均+/−標準誤差(s.e.mean)として表す(n=条件に付き6)。統計分析は、様々な条件(一元配置分散分析、可能なら続いてDunnettテスト、Statview software version 5.0)でなされた。
バクロフェンおよびアカンプロセートの組合せは、図5に示すように、一次皮質神経細胞におけるヒトAβ1−42ペプチドの毒性に対する有意な防御作用を有する(34%の細胞生存の改善)。この結果は、ヒトアミロイドペプチド(Aβ1−4210μM)による中毒は、この組合せによって有意に抑えられるが、一方で、組合せの場合で使用したのと同じ濃度で単独のバクロフェンまたはアカンプロセートは、中毒に対する有意な効果は有していない、ということを明らかに示す。
ラットの皮質ニューロンは、Singer、他(参考文献35)の記述に添って培養を行なった。短時間で、妊娠後15日の妊娠期間の雌のラット(ウィスターラット)を、頚椎脱臼により安楽死させ、そしてその胎児は子宮から取り出した。皮質は取り出され、そして、2%のペニシリン10.000U/mlおよびストレプトマイシン10mg/mlと、1%のウシ血清アルブミン(BSA)とを含む、氷温のLeibovitz(L15)の培地に配置した。皮質はトリプシンにより、20分間、37℃で解離した(0.05%)。反応は、DNase1グレードIIおよび10%のウシ胎児血清(FCS)を含むダルベッコ改変イーグル培地(DMEM)の添加により停止した。その後細胞は、10mlピペットを用いて3連続継代で、機械的に解離し、そして+4℃で、10分間、515xgで遠心分離をした。上澄みは廃棄され、細胞のペレットは、B27(2%)、L−グルタミン(0.2mM)、2%PS溶液、および10ng/mlのBDNFで補完したNeurobasalからなる既定培地に再懸濁した。生存細胞は、トリパンブルー排除法を用いて、Neubauerサイトメータで数えられた。細胞は、96ウェルプレート(ウェルは、ポリ‐L‐リジン(10μg/ml)であらかじめコーティングした)を用いて、30,000cells/wellの密度で播種し、そして加湿空気(95%)/CO2(5%)環境において、+37℃で培養した。
24時間の中毒化の後、上澄みを取り出し、そして皮質ニューロンを、低温のエタノール(95%)および酢酸(5%)溶液で、5分間処理する。0.1%のサポニンで浸透後、細胞は、1%のウシ胎児血清を含むPBSで、2時間遮断した。その後、シナプスを定量化するために、細胞を、モノクローナル抗体である抗微小管結合タンパク質2(MAP−2;Sigma社)または抗シナプトフィジン(SYN、S5798、Sigma社)で、抗PSD95(P246、Sigma社)抗体と共にインキュベートする。これらの抗体は、ニュー
ロン(MAP2)のニューロンの細胞体および神経突起またはシナプス前部および後部のエレメント(それぞれ、SYNおよびPSD95)を特異的に染色する。
バクロフェンおよびアカンプロセートの組合せは、図7に示すように、一次皮質ニューロン細胞において、ヒトAβ1−42ペプチド毒性に対する有意な防御作用を有している(神経突起網を80%改善)。この結果は、ヒトアミロイドペプチド(Aβ1−422.5μM)による中毒が、この組合せにより有意に抑止されるが、一方で、組合せの場合で使用したのと同じ濃度で単独のバクロフェンまたはアカンプロセートは、中毒に対して有意な効果を有していないことを明らかに示す。
動物
オスのスイスマウスはこの研究全体で用いられる。動物は、行動実験時を除き、実験室の飼料と水に、自由に行き来できるプラスチックのおりで飼育し、そして12時間ごとの明暗周期下、管理環境で飼育した(午前8時に点灯)。実験は、防音で空調された実験室で行われ、マウスは、各実験の少なくとも30分前にこの実験室に慣らされている。
1または複数の薬剤を、チューブで(経口で)毎日投与する。β25-35ペプチドおよび凝集β25-35ペプチド(対照)は、殺菌2重蒸留水に溶解し、そして、使用するまで−20℃で保管した。その後、β‐アミロイドペプチドを脳室内(i.c.v.)投与した。手短に述べると、各マウスに、エーテルで軽く麻酔をかけ、そして、規格のステンレス鋼針を、各眼球から等距離の正中線の右に、両眼球および両耳から等距離のところ、並びに頭蓋骨の平面に垂直に、1mm一方的に挿入する。ペプチドまたはビヒクルは、約3秒以内で次第に送達する。マウスは、注射後、1分以内で通常行動を示す。投与場所は、予備実験で、墨汁を注入して確かめる。針の挿入も、またはビヒクルの注入も、生存、行動反応もしくは認知機能に有意な影響を与えない。
前日、つまりAβ25-35ペプチド注入前の24時間で、薬剤組合せ、またはビヒクル溶液は、1日に2回、強制経口投与される(午前8時および午後6時)。
自発的交替行動‐Y迷路試験
7日目に、すべての動物について、空間作業記憶の指標として、Y迷路試験で自発的交替行動をテストする。Y迷路は灰色でポリ塩化ビニル製である。各アームは、床が長さ40cm、高さ13cm、幅3cm、天井は幅10cmで、角度は等しくなっている。各マウスは、アームの端に置かれ、8分間のテスト期間中は、迷路の中を自由に動き回れる。一連のアーム進入で、同じアームに戻る可能性も含み、視覚的に確認する。交替反応は3つのアームすべてに連続して進入する場合と定める。したがって、最大の交替回数は、アームへの総進入回数引く2であり、交替反応率は、(実際の交替/最大の交替)×100で算出される。パラメータは交替反応率(記憶指標)および、アームへの総進入回数(探査指標)を含む。極端な行動を示す動物は除く(交替反応率<25%、もしくは、>85%もしくはアームへの進入回数<10)。通常、動物のうち0〜5%を占める。このテストは、Aβ25-35注入によりマウスに引き起こされる影響および記憶喪失作用の行動レベルの分析に、付随的に役立つ。
この器具は2つの区画に仕切られた(15cm×20cm×15cm)箱で、1区画は白いポリ塩化ビニルの壁で明るく、もう1区画は黒いポリ塩化ビニルの壁で暗くなっており、格子状の床を持つ。ギロチン戸は各区画を隔てている。器具の40cm上に配置された60Wの照明は、実験中に白い区画を照らす。格子状床には、shock generator scrambler(LafayetteInstruments、Lafayette、USA)を用いて、無作為のフットショック(0.3mAで3秒)が行われうる。訓練期間中に、ギロチン戸は、最初は閉じられている。各マウスは白い区画に配置される。5秒後、戸が上がる。マウスが暗い区画に入り、四肢が格子床に着いたとき、戸は閉まり、そして3秒間のフットショックが行われる。ステップスルー待ち時間、つまり、この待ち時間は、暗い区画に入るのにかかる時間のことであり、そして発声回数を記録する。記憶テストは、訓練後の24時間で行われる。各マウスは、再び白い区画に配置される。5秒後に戸が上がり、ステップスルー待ち時間および脱出待ち時間、すなわち、白い区画内に戻るのにかかる時間を、300秒上限で記録する。
Aβ中毒の生体モデルにおいて、併用療法をテストする。神経疾患に影響するいくつかのパラメータにおける併用療法の作用を評価する。
−酸化ストレスレベルのマーカとみなされる、脂質過酸化反応、
−脳の炎症レベルのマーカとみなされる、GFAP発現分析、
−血液脳関門の完全性、
−シナプス全体の完全性(シナプトフィジンELISA)。
Aβによる中毒の動物についての実験設計は、3部と同様である。
シナプトフィジンは、シナプスの完全性のマーカとして選択されており、市販のELISAキット(USCN、Ref.E90425Mu)を用いて分析される。サンプルは海馬組織から準備し、製造業者および参考文献に具体的に記述されている抽出緩衝剤で均質化する。
8日目に、各マウスは、前混合した200μのケタミン80mg/kgおよびキシラジン10mg/kgでi.p.で麻酔され、100mlの食塩水水溶液で、そして、続いて100mlの4%パラホルムアルデヒドで経心灌流した。脳を取り出し、4%パラホルムアルデヒド水溶液に4℃で24時間後固定した。
マウスを、頚椎切断により屠殺し、その後両海馬をすばやく取り除き、重量を測定、分析まで液体窒素で保存した。解凍後、海馬は冷メタノール(1/10w/v)で均質化し、1、000gで5分間遠心分離し、eppendorf社製チューブに上澄みを入れる。各ホモジネートの反応量は、1mMのFeSO4、0.25MのH2SO4、1mMのキシレノールオレンジに添加し、室温で30分間インキュベートする。吸収度を580nm(A580 1)で観測後、1mMのクメンヒドロペルオキシド(CHP)を10μl、サンプルに添加し、最大酸化レベルを測定するため、室温で30分間インキュベートする。吸収度は580nm(A580 2)で測定される。脂質過酸化反応レベルはCHP当量(CHPE)として次のように測定される:CHPE=A580 1/A580 2 x [CHP]、組織の重量毎のCHP当量および対照群データの割合として表される。
マウスを、頚椎切断により屠殺し、その後両海馬をすばやく取り除き、余分な血液を完全に取り除くため、氷温のPBS(0.02mol/l、pH7.0〜7.2)ですすがれ、重量を測定、分析まで液体窒素で保存した。組織は、小片に切り分けられ、ガラスホモジナイザーを用い、1mlの氷温PBSで均質化する。生じた懸濁液は超音波細胞破砕器で分解されるか、または細胞膜をさらに破壊するため、2回の凍結‐解凍循環にかける。そして、ホモジネートは、5,000gで5分間遠心分離され、上澄みは直ちに分析される。
このさらなる実験一式で、候補化合物の、ニューロン細胞におけるグルタミン酸塩毒性の毒性作用を抑止または低減する能力をテストした。グルタミン酸塩毒性は、神経疾患または障害の病因に関わり、その神経疾患または障害とは、多発性硬化症、アルツハイマー病、筋萎縮性側索硬化症、パーキンソン病、ハンチントン病、ニューロパシー、アルコール依存症もしくはアルコール離脱症、または脊髄損傷などである。薬剤は、最初に個別にテストされ、続いて組合せ作用の分析をする。
本発明の薬剤組合せの効能は、一次皮質ニューロン細胞で評価される。これらの分析で使用するプロトコルは、上記A.1−2項の記述と同様である。
化合物の神経保護作用は、特にグルタミン酸作動性ニューロンを示す神経突起網(ニューロフィラメント免疫染色(NF))の定量化により評価される。
バクロフェン−アカンプロセートの組合せは、グルタミン酸塩毒性に対する防御効果を皮質ニューロン細胞に与える。図15で例示するように、本発明の組合せは、上記記載の実験の条件下で、グルタミン酸塩毒性からニューロンを強力に保護する。単独で使用される薬剤が低い保護作用を有する薬剤濃度を用いても有効保護があることが分かったことは注目すべきである。バクロフェンおよびアカンプロセートの組合せは、単独のアカンプロセートと比較して、200%を上回る改善、そして、単独のバクロフェンと比較して47%を上回る改善をもたらす。
上記に記述した、本発明の薬剤および薬剤組合せのグルタミン酸塩毒性に対する生体保護作用は、いくつかのADモデルに例示した保護作用と同時に起こり、発明者に、MS、ALSおよび神経因性疼痛などのグルタミン酸塩毒性も関連する病因において、他の疾患のいくつかのモデルでこれら薬剤および組合せのテストを促した。
慢性の進行性EAEを有する、ミエリンオリゴデンドロサイト糖タンパク質免疫化(MOG免疫化)したマウスは、多発性硬化症治療における本発明の組成物の有益な作用を示すために用いられた。
C57L/6Jの雌マウス(生後8週)をJanvier(France)から購入する;2週間の馴化後、雌マウス(生後10週)は、MOG(ミエリンオリゴデンドロサイト糖タンパク質)ペプチドで免疫付与後、慢性麻痺状態になる。実験上の脳脊髄炎は、EAE誘導のためのHooke kit MOG35-55/CFA Emulsion PTX(百日咳毒素)で誘導する。対照群キットはCK−0115(Hooke laboratories社)である。
実験上の脳脊髄炎は次の手順により誘導する:
実験当日、各0.1mlの2回の皮下注射が行われ、1つはマウスの背中の上部、もう1つはマウスの背中の下部に行われる。各注射は100μgのMOG35−55ペプチド(MEVGWYRSPFSRVVHLYRNGK)、200μgの不活性ヒト結核菌H37Raを含み、フロイント完全アジュバント(CFA)(Hooke laboratories社)で乳化する。この乳化剤は、MOG特定自己免疫型T細胞の感作および区別に必要な抗原を提供する。
開示した雌のマウス群は、免疫付与の前に体重により均一化する:
−対照群:EAEマウスの条件と同様にビヒクルを注射(実験前日より28日目まで、プラセボを毎日投与)。
スモデル(Rパッケージ「survival」)で、各群間と対象「免疫」群を比較した。結果のp値は、一側性であり、対象「免疫」群よりよいという仮説の検証である。
全体臨床スコアの顕著な改善が、バクロフェンおよびアカンプロセートの組合せについて、「EAE+治療群」のマウスにおいて観察される。
ALSに対する本発明に係る併用療法の作用は、ALSの体外、共培養モデル、生体内、マウスモデルにおいて実証されている。プロトコルおよび結果をこの項目に示す。
<神経および筋肉の細胞の一次共培養>
ヒト筋肉を、健康な被験者の生検の部分から先述の方法にしたがって用意する(参考文献48)。筋肉細胞を、解離細胞(1ウェルにつき10000細胞)から株化し、48ウェルのプレート上に0.1%ゼラチン被覆で固定し、MEM媒体とM199媒体との混合からなる増殖媒体において成長させる。
27日目に、共培養物を、グルタミン酸塩中毒(60μM)の1時間前に、候補化合物またはリルゾールと共に20分間インキュベートする。その後、共培養物を、洗浄し、候補化合物またはリルゾールを、更に48時間の間加える。このインキュベーション時間の後、固定されていない共培養物を、濃度500nmol/LでAlexa488と結合したα−ブンガロトキシンによって、室温で15分インキュベートする。その後、共培養物は、室温で20分間PFAによって固定される。0.1%のサポニンで透過化後、共培養物を、抗ニューロフィラメント抗体(NF)によってインキュベートする。
バクロフェンおよびアカンプロセートの組合せは、共培養モデルにおける運動ニューロンおよび運動単位を効果的に保護する。
実験はオスのマウスに行う。遺伝子組み換えのオスのマウスB6SJL-Tg(SOD1)2Gur/Jマウスと、それらの対照(JacksonLaboratories、BenHarbor、USAの、および、FranceのCharlesRiverにより卸された、それぞれSN2726およびSN2297)を模擬ALSのためのこのセットの実験において選択する。
動物の割り当てグループおよびランダム化は、体重に基づいており;各グループについて、ランダム化は、第1治療の1日前に行う。
マウスに、生後60日目から死ぬまでビヒクルにおいて希釈した候補薬剤治療を行った。薬剤候補の希釈用液は、投与の直前に室温で水によって用意される。
リルゾールを、飲料水に、5%シクロデキストリン中6mg/ml(各グループに対して平均体重に調整した)の最終濃度で添加する。マウスは1日につき約5ml飲むので、推定投与量は30mg/kg/dayであり、これは、マウスの生存を上昇させることを示した用量である。
−薬剤組合せを毎日per osで投与する。
各マウスを、治療の最初の日(生後60日目)から死ぬ(または屠殺)まで毎日臨床観察する。臨床観察は、行動試験の研究にある:麻痺の開始、「開脚の損失」、「正向反射の損失」、および、一般的な歩行観察:
−麻痺の開始:この観察は、各肢の麻痺観察からなる。麻痺の開始は、麻痺の最初の兆候の日に対応する。
疾患の改善は、バクロフェンおよびアカンプロセートの組合せのために治療された罹患動物について観察される
〈3) 神経因性疼痛についての生体モデルとしてのオキサリプラチン誘発ニューロパシーにおける組合せの保護作用
本発明の併用療法は、生体内で試験され、末梢ニューロパシーの適切なモデル、すなわち、オキサリプラチン誘発ニューロパシーの急性モデルおよびオキサリプラチン誘発ニューロパシーの慢性モデルにおいて試験される。動物、プロトコル、結果をこの項目において示す。
Sprague−Dawleyラット(CERJ、France)、オキサリプラチン治療の実験の開始時(D0)において体重150g〜175gを使用する。動物を、アクセスが限定された動物施設において飼育し、温度(19.5℃〜24.5℃)および相対湿度(45%−65%)が制御された部屋で、12時間ずつの明暗サイクルで、固形飼料および水には実験中不断にアクセスできるようにして入れる。動物は、1つの檻毎に4から5匹入れられ、1週間の順化期間が各試験前に観察される。
4つの以下のグループのラットを全ての実験で使用する:
<<対照群>>
群1:オキサリプラチン(蒸留水)のビヒクル、i.p.で/候補組合せ(蒸留水)のビヒクル、p.o.で毎日。
群4:オキサリプラチン3mg/kgをi.p.で/蒸留水における候補組合せ、p.o.で、毎日x9。
ビヒクルおよび試験項目は、D1〜D7(試験最終日の前日)まで毎日与える一方で、ガバペンチンは、試験の日に(試験の120分前に)投与する。
急性ニューロパシーは、オキサリプラチン(3mg/kg)の単回の腹腔内注射により誘発される。
熱的な痛覚過敏は、最初の症状である。これは、アセトン試験または尾部浸漬試験により測定できる。
全ての薬剤組合せを、オキサリプラチン3mg/kgの最初の腹腔内注射の前日(D−1)から投与し、D7まで経口で毎日続けた。試験日の間(すなわち、D1とD7)、これらの薬剤組合せを、試験の後に投与する。基準治療グループ(ガバペンチン)の動物は、試験日だけ投与される。
冷感異痛を、熱的な非侵害受容刺激に対する反応を測定することによりアセトン試験を用いてD1(オキサリプラチン3mg/kgの最初の注射後約24時間(オキサリプラチンの急性作用)、および、D8(オキサリプラチンの慢性作用)に評価する。
各実験グループについて、結果は以下のように現れた:
−肢反応を引き起こすのに必要とされる、秒単位で表される時間として定義される反応
時間(各ラットを一緒にして6回測定の平均±SEM)。
スチューデント検定、一側性、タイプ3を行う。有意レベルをp<0.05と設定し;全てのグループを罹患+ビヒクルグループ(オキサリプラチン治療グループ)と比較する。平均および標準エラー誤差を図に示す。
オキサリプラチンは、アセトン適用(罹患グループ+ビヒクル)後、時間的経過中に、肢の引き離しの反応時間の顕著な低下を誘発した。この低下は、1日目(オキサリプラチン誘発ニューロパシーの急性モデル)から8日目(慢性モデル)まで、ビヒクルグループと比較して、進行性があり、顕著である。
バクロフェンおよびアカンプロセートの組合せは、オキサリプラチン誘発ニューロパシーの両モデルにおいて試験される。それは、オキサリプラチン−ビヒクル治療グループと比較して、累積コールドスコアの顕著な低下と反応時間の顕著な増加を引き起こす。結論として、この薬剤組合せは、慢性および急性のニューロパシーをから保護する。
Claims (14)
- 多発性硬化症の治療において、その治療を必要とする対象者に使用するためのバクロフェンまたはその薬学的に許容可能な塩、およびアカンプロセートまたはその薬学的に許容可能な塩を含む組成物。
- 請求項1に記載の組成物であって、
スルフィソキサゾール、メチマゾール、プリロカイン、ジフィリン、キナクリン、カルベノキソロン、アミノカプロン酸、カベルゴリン、ジエチルカルバマジン、シナカルセト、シンナリジン、エプレレノン、フェノルドパム、レフルノミド、レボシメンダン、スロデキシド、テルビナフィン、ゾニサミド、エトミデート、フェンホルミン、トリメタジジン、メキシレチン、イフェンプロジル、モキシフロキサシン、ブロモクリプチン若しくはトルセミド、またはそれらの薬学的に許容可能な塩から選択される少なくとも1つの化合物をさらに含む組成物。 - 請求項1又は2に記載の組成物であって、
以下の化合物の組合せ:
バクロフェンおよびアカンプロセート、
バクロフェンおよびアカンプロセートおよびジエチルカルバマジン、
バクロフェンおよびアカンプロセートおよびシナカルセト、
バクロフェンおよびアカンプロセートおよびスルフィソキサゾール、
バクロフェンおよびアカンプロセートおよびトルセミド、
バクロフェンおよびアカンプロセートおよびイフェンプロジル、
バクロフェンおよびアカンプロセートおよびメキシレチン、
バクロフェンおよびアカンプロセートおよびエプレレノン、
バクロフェンおよびアカンプロセートおよびレボシメンダン、
バクロフェンおよびアカンプロセートおよびテルビナフィン、若しくは
バクロフェンおよびアカンプロセートおよびレフルノミドの組合せ、または
上記化合物の組合せにおいて、各化合物のうちのいずれかがその薬学的に許容可能な塩である組合せ、
の少なくとも1つを含む組成物。 - 請求項1に記載の組成物であって、
ドネペジル、ガバペンチン、リバスチグミン若しくはメマンチン、またはそれらの薬学的に許容可能な塩から選択される少なくとも1つの化合物をさらに含む組成物。 - 請求項4に記載の組成物であって、
以下の化合物の組合せ:
バクロフェンおよびアカンプロセートおよびドネペジル、
バクロフェンおよびアカンプロセートおよびリバスチグミン、若しくは
バクロフェンおよびアカンプロセートおよびメマンチンの組合せ、または、
上記化合物の組合せにおいて、各化合物のうちのいずれかがその薬学的に許容可能な塩である組合せ、
の少なくとも1つを含む組成物。 - 請求項1に記載の組成物であって、
バクロフェンまたはそれらの薬学的に許容可能な塩、およびアカンプロセートまたはその薬学的に許容可能な塩のみを活性薬剤として含む組成物。 - 請求項1〜6のいずれか1項に記載の組成物であって、
薬学的に許容可能な担体又は賦形剤をさらに含む組成物。 - 請求項1〜7のいずれか1項に記載の組成物であって、
前記組成物における前記化合物は、一緒に、個別に、または連続して製剤化され、または、投与される組成物。 - 請求項1〜8のいずれか1項に記載の組成物であって、
対象者へ繰り返し投与される組成物。 - 請求項1〜9のいずれか1項に記載の組成物であって、
アカンプロセート/バクロフェンの比率(W:W)は、0.05と1000との間に含まれる組成物。 - 請求項1〜10のいずれか1項に記載の組成物であって、
バクロフェンの用量は、100mg/day未満である組成物。 - 請求項1〜11のいずれか1項に記載の組成物において、
アカンプロセートの用量は、1000mg/day未満である組成物。 - 請求項1〜12のいずれか1項に記載の組成物であって、
アカンプロセートのカルシウム塩が使用される組成物。 - ハンチントン病、神経因性疼痛、アルコール性神経障害、アルコール離脱症又は脊髄損傷の治療において、その治療を必要とする対象者に使用するためのバクロフェンまたはその薬学的に許容可能な塩、およびアカンプロセートまたはその薬学的に許容可能な塩を含む組成物。
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